KR100620080B1 - 대두가공 부산물로부터 피니톨의 회수방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 미생물학적 방법에 의하여 대두가공 부산물인 대부순물이나 탈지대두, 또는 대두당밀로부터 피니톨과 카이로이노시톨을 경제적으로 회수하는 방법에 관한 것으로, 대두가공 부산물로부터 제2형 당뇨병환자에게 혈당강화 효과가 있어 건강식품이나 의약품 소재로 이용되는 피니톨 또는 카이로이노시톨을 회수하기 전에 여러 종류의 세균이나 효모, 곰팡이 등의 미생물 처리를 통하여 대두부산물내 피니톨의 유도체를 피니톨로 전환시킴으로써 피니톨 또는 카이로이노시톨의 회수율을 극대화할 뿐만 아니라 원료 중에 들어있는 다른 당성분도 효과적으로 제거해 줌으로써 후속 회수공정에서의 부담을 경감시키고 또한 최종적으로 배출되는 폐기물중의 유기물 부하를 대폭 경감시키는 부수적인 효과가 있다.
카이로이노시톨(chiro-inositol), 피니톨(pinitol), 대두, 두부순물, 미생물

Description

대두가공 부산물로부터 피니톨의 회수방법{Method of recovering pinitol from byproducts of soybean processing}
도 1은 대두부산물로부터 카이로이노시톨 및 피니톨 성분의 분리정제 공정도를 나타내는 그림이다.
도 2는 활성탄 충진탑에 흡착된 두부순물 성분의 용출결과를 나타내는 그림이다: 이때, 충전탑의 부피(BV)는 50ml, 용리제는 에탄올, 에탄올 농도 10%(v/v) 500ml, 50%(v/v) 500ml, 용리액 속도 500ml/min; PI=피니톨(10배), CI=카이로이노시톨(10배), OS=대두올리고당.
본 발명은 미생물을 이용하여 대두가공 부산물로부터 피니톨을 경제적으로 회수하는 방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 대두를 사용하여 두부를 제조한 후 폐기되는 두부순물이나 대두단백질을 생산하는 과정에서 발생하는 대두당밀, 탈지대두박을 열수추출한 용액 등으로부터 피니톨을 경제적으로 분리하는 공정에 관한 것이다.
대두에 함유된 생리활성성분들 중에서 특히 근래에 많은 관심을 끌고 있는 성분이 제2형(인슐린 비의존형) 당뇨병 환자들에게 투여시 혈당강하 효과가 있는 것으로 알려진 카이로이노시톨과 그 메틸에테르 형인 피니톨이다. 카이로이노시톨의 혈당강하 효과는 1990년대 초부터 수많은 연구보고(Ortmeyer et al., Endocrinol. 132:646-651, 1993; Huang et al., Endocrinol. 132:652-657, 1993; Farese et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91:11040-11044, 1994; Fonteles et al., Diabetologia 39:731-734, 1996)를 통하여 입증된 바 있다. 또한 카이로이노시톨은 기존의 경구용 혈당강하제들이 가지고 있는 위장 장애나 간손상, 과사용시의 저혈당같은 부작용이 없으며 천연식품 중에 포함된 성분이므로 안전하게 사용할 수 있는 장점이 있어서 건강보조식품이나 의약품 소재로 개발시 성공 가능성이 높다. 이 외에도 카이로이노시톨은 비만, 다낭포성 난소증 등의 치료에도 효과가 있는 것으로 알려졌다(Nestler J. E. ef al., New Eng, J. Med., 340:1314-1320, 1999). 또한 대두 중의 카이로이노시톨 성분 중 주종인 피니톨도 그 자체로 동등한 혈당강하 효과가 있는 것으로 밝혀졌다(미국특허 제 5,827,896호; Narayanan et al., Current Science, 56(3):139-141, 1987).
그런데 카이로이노시톨을 제조하는 방법으로서 식물 잎으로부터 추출한 피니톨(디-카이로이노시톨의 메틸에테르)을 가수분해하는 방법(Anderson et al., Ind. Eng. Chem., 45:593-596, 1953), 마이오이노시톨(myo-inositol)을 유기화학적인 방법으로 카이로이노시톨로 전환시키는 방법(Shen et al., Tetrahedron Letters, 131: 1105-1108, 1990)이 소개된 바 있으나 제조공정이 길고 수율이 낮아 경제성이 없으며, 카수가마이신(kasugamycin)으로부터 합성하는 방법(미국특허 제 5,091,596 호)도 수율이 낮아 제조가격이 상당한 고가인 단점이 존재한다.
본 발명자들은 카이로이노시톨을 좀 더 경제적으로 생산하는 방법을 개발하기 위하여 113종의 식용 천연물이나 그 가공품 중의 카이로이노시톨 성분의 함량을 조사해본 결과 대두 및 대두가공품, 솔잎에 특히 많은 양의 카이로이노시톨이 함유되어 있는 것을 밝혀내고 전보특허에 그 내용을 수록하였다(대한민국 특허 출원 제 10-2000-12882호, 대한민국 특허 출원 제 10-2000-12881호). 이 전보특허는 각각 카이로이노시톨이 많이 함유된 식용자원을 혈당강하용 소재로 사용하는 방법과 이식용자원으로부터 카이로이노시톨 성분을 분리정제해 내는 방법으로써 산가수분해법을 이용하는 것을 특징으로 한다. 나아가, 본 발명자들은 더 개선된 공정으로서 활성탄을 이용하여 대두가공 부산물로부터 카이로이노시톨과 피니톨을 회수하는 방법을 발명하였다(대한민국 특허 제 10-2001-001611). 상기 방법은 종래의 지올라이트를 사용하는 방법(미국특허 제 4,482,761호), 양이온교환수지를 사용하는 방법(미국특허 제 5,096,594), 음이온교환수지를 사용하는 방법(미국특허 제 5,482,631호) 등에 비하여 더 경제적으로 피니톨과 카이로이노시톨을 분리하는 방법이었다.
그러나, 대두가공 부산물들 중의 카이로이노시톨 성분은 조사해보면 피니톨이나 카이로이노시톨 뿐만 아니라, 50% 이상이 피니톨의 배당체 혹은 인화합물의 형태로 존재하며, 대두가공 부산물로부터 카이로이노시톨이나 피니톨을 생산하는 종래의 기술들은 모두 이러한 피니톨의 배당체 혹은 인화합물들을 회수하지 못하는 단점이 있었다.
상기와 같은 문제점을 해결하기 위하여 연구시험한 결과 본 발명자들은 대두가공 부산물로부터 혈당강하 효과가 있는 카이로이노시톨과 피니톨을 회수하는데 있어서 세균, 효모, 곰팡이 등의 미생물을 이용하여 배당체나 인화합물 등 다른 형태로 존재하는 성분들을 피니톨과 카이로이노시톨로 전환시켜 줌으로써 피니톨과 카이로이노시톨을 더욱 효과적으로 회수하는 방법을 발견함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.
따라서, 본 발명의 목적은 미생물 생물전환을 이용하여 대두가공 부산물 내 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 효과적으로 증강시키는 방법을 제공하는 것이다.
이하, 본 발명의 구성을 상세히 설명한다. 본 발명의 목적 및 잇점들은 하기 구성 및 실시예를 통하여 보다 명백히 이해될 것이다.
본 발명은 여러 종류의 세균이나 효모, 곰팡이 등의 미생물 처리를 통하여 대두부산물내 피니톨의 유도체를 피니톨로 전환시킴으로써 피니톨의 회수율을 극대화할 뿐만 아니라 원료 중에 들어있는 다른 당성분도 효과적으로 제거해 줌으로써 후속 회수공정에서의 부담을 경감시키고 또한 최종적으로 배출되는 폐기물 중의 유기물 부하를 대폭 경감시킬 수 있는데 그 특징이 있다.
본 발명에 있어서 대두가공 부산물은 대두를 사용하여 두부를 제조한 후 폐기되는 두부순물이나 대두단백질을 생산하는 과정에서 발생하는 대두당밀, 탈지대두박을 열수추출한 용액 등을 포함하는 의미로 사용된다.
보통 대두 1 g 중에는 3.4∼6.8 mg의 카이로이노시톨 화합물이 존재하는데 이 중 15∼20%가 카이로이노시톨 형태로, 25∼35%가 피니톨 형태로, 나머지 50∼60%가 카이로이노시톨이나 피니톨의 배당체 혹은 인화합물 형태로 존재한다.
또한 대두에서 두부제조공정을 거친 후 폐기되는 두부순물에도 15∼20%가 카이로이노시톨 형태로, 30∼40%가 피니톨 형태로, 나머지 40∼55%가 카이로이노시톨이나 피니톨의 배당체 혹은 인화합물 형태로 존재한다. 이와 같이 보통 대두부산물 내에는 여러 종류의 카이로이노시톨 화합물이 함유되어 있는데 이 중에서 피니톨의 형태로 존재하는 것이 가장 많고 피니톨의 배당체나 인화합물 형태로도 상당량 존재하나, 이러한 피니톨의 유도체는 피니톨과 물성이 달라 기존의 피니톨 회수공정에서는 폐기되는 문제점이 있었다.
본 발명자들은 대두가공 후 방출되는 대두 부산물에 세균, 효모, 곰팡이 등의 미생물을 첨가하여 배양하면, 카이로이노시톨 또는 피니톨의 유도체 화합물들을 혈당강하에 효과가 있는 유리 카이로이노시톨 또는 피니톨로 전환시킬 수 있다는 사실을 밝혀내었다.
따라서, 본 발명은 상기 미생물을 대두가공 부산물에 첨가하고 배양하는 것을 포함하는, 대두가공 부산물 내 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 증가시키는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 미생물을 대두가공 부산물에 첨가, 배양시킨 후, 피니톨 또는 카이로이노시톨을 고수율로 회수하는 방법을 제공한다.
미생물 처리를 통하여 대두 부산물 내의 피니톨 유도체를 피니톨로 전환시키면, 결과적으로 대두부산물 내의 피니톨 회수율을 극대화할 수 있을 뿐만 아니라 대두 부산물 내 함유된 당성분들을 효과적으로 제거하여 후속 분리정제 공정에서의 처리 부담을 덜며 또한 발효 폐기물 내 유기물 함량을 대폭 경감시킬 수 있다.
본 발명에 사용되는 미생물로는 여러 종류의 세균이나 효모, 곰팡이를 모두 사용할 수 있으며, 사용하는 미생물의 종류에 따라서 전환공정의 반응조건이나 피니톨의 회수율, 기타 당류들의 제거효율이 달라질 수 있다. 특히, 상기 미생물중에서 사카로마이세스 칼스버겐시스(Saccharomyces carlsbergensis)가 피니톨의 생성능력이 가장 우수하고 또한 당성분들의 제거능력도 높아서 가장 적절한 것으로 평가되었다. 미생물 처리가 완료된 액은 균체를 제거한 후 여러 가지 후속 회수공정을 통하여 미생물을 회수한다. 본 발명의 한 바람직한 구현예로, 두부순물 중에 자연적으로 서식하며 피니톨의 함량을 증가시키는 작용을 하는 미생물들 중 우점종들을 순수분리하고 이들의 피니톨 생성능력을 조사하여 하기 표 1에 나타내었다. 표 1은 두부순물을 121℃에서 15분간 처리하여 완전멸균한 후에 자연 분리된 2종류의 효모균과 3종류의 세균을 정종하여 5일간 배양 후 피니톨과 카이로이노시톨의 함량변화를 측정한 결과이다.
Figure 112001520793236-pat00016
상기 표 1로부터 미생물의 종류가 효모균이나 세균이나 상관없이 피니톨과 카이로이노시톨의 함량 증가에 기여함을 알 수 있다. 그러나 미생물의 종류에 따라서 피니톨의 증가속도에는 차이가 있었으며 또한 순물 중에 함유된 당류들의 이용성에도 차이가 있는 것으로 나타났다. 본발명자들이 본 발명의 완성도를 높이기 위하여 여러 미생물 중에서 1) 피니톨의 생성속도가 빠르고, 2) 순물 중에 함유된 당류들을 잘 제거하며, 또한 3) 식품용으로서 안전성이 검정된 미생물을 선별하는 작업을 수행한 결과를 하기 표 2에 나타내었다.
Figure 112001520793236-pat00002
피니톨의 생성속도에 있어서 효모의 경우에는 사카로마이세스 칼스버겐시스(Saccharomyces carlsbergensis), 사카로마이세스 세레비제(Saccharomyces cerevisae), 곰팡이의 경우에는 아스퍼질러스 나이거(Aspergilus niger), 트리코더마 비리데(Trichoderma viride), 세균의 경우에는 대장균(E. coli)이 특히 우수하였으며, 그 중 효모인 사카로마이세스 칼스버 겐시스가 매우 우수한 것으로 나타났다. 당류 이용성 면에 있어서는 사카로마이세스 칼스버겐시스와 아스퍼질러스 나이거가 우수한 것으로 나타났다. 한편, 아스퍼질러스 나이거를 포함한 곰팡이류들은 효모나 세균과는 달리 배양시작 후 처음 2, 3일 동안에는 피니톨의 함량을 증가시키나 그 이후에는 도로 감소하는 현상을 보여 주었는데, 이것은 곰팡이류들의 경우에 다른 영양성분들이 부족하게되는 배양말기에는 생성된 피니톨을 영양성분으로 이용하기 때문인 것으로 판단되었다. 상기 표 2의 미생물들은 모두 일본 식품첨가물 공전 상에서 한 가지 이상의 용도로 사용이 허가된 것들로서 식품가공용으로서의 안전성은 대체로 확보가 된 미생물들을 선별한 것이다. 이상과 같은 현상들을 종합해 볼 때 피니톨 생성용 미생물로는 사카로마이세스 칼스버겐시스가 가장 이상적인 미생물인 것으로 판정되었다.
피니톨 생산을 위한 또다른 원료인 탈지대두박을 분말화하여 열수로 추출 후 미용해된 분말을 제거하고 이 추출물을 대상으로 사카로마이세스 칼스버겐시스 처리를 한 경우에도 피니톨 농도가 초기보다 1.5∼2.0배 증가하여 두부순물의 경우와 비슷한 결과를 얻었다. 이 때 탈지대두박을 제거하지 않고 그대로 미생물을 접종하여 배양한 경우에는 2.0∼2.5배 정도까지 피니톨 농도가 더 상승하였다. 이것은 며칠간의 배양기간 동안 분말의 내부에 존재하던 배당체들이 더 많이 추출되어 나온 때문인 것으로 판단된다.
이러한 피니톨 농도 증가 현상이 미생물에서 생성한 특정효소의 작용에 의한 것인지 확인하기 위하여 두부순물에서 사카로마이세스 칼스버겐시스와 아스퍼질러스 나이거 두 종류의 미생물을 배양한 후 0.45 μ의 여과지로 균체를 완전히 제거 한 후 멸균상태의 다른 순물과 혼합하여 이틀간 숙성해 본 결과, 피니톨 농도도 증가하지 않았고 조성에 별다른 변화도 발생하지 않았다. 이러한 사실로부터 미생물에 의한 피니톨 농도의 증가현상은 한 두 가지 효소에 의한 것보다 복합적인 메카니즘에 의한 것으로 판단된다. 두부순물 혹은 탈지대두 추출물에 대한 미생물 처리는 그대로 해도 되고 혹은 10∼20배 농축 후에 실시해도 된다.
미생물 처리를 통하여 피니톨의 농도가 증가된 시액은 원심분리나 여과를 통하여 균체를 제거한 후 전보특허(대한민국 특허 출원 2001-001611)에서와 같이 활성탄으로 흡착하거나 다른 적절한 공정을 거쳐서 피니톨을 높은 순도로 회수하게 된다. 즉, 본 발명에 있어서 대두부산물 내의 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 증가시켜 이들을 분리정제하는 기본적인 공정은 미생물 처리를 통해 대두부산물 내의 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 증가시키는 공정, 미생물 배양시 생성된 균체와 대두가공 부산물 중의 불용성 성분 및 단백질 등 고분자물질을 제거하는 전처리공정, 양이온 또는 음이온 교환수지나. 활성탄 흡착 방법 등을 이용한 분리공정등을 포함한다.
따라서, 대두가공 부산물로부터 피니톨 또는 카이로이노시톨 성분을 높은 수율로 분리하는 방법은 (a) 세균, 효모 또는 곰팡이 등의 미생물 생물전환을 이용하여 대두 부산물 내의 피니톨이나 카이로이노시톨의 함량을 증가시키는 방법; (b) 미생물 배양시 생성된 균체 및 대두가공 부산물 중의 불용성 물질과 고분자 물질을 원심분리나 여과를 통해 제거시키는 전처리 공정; 및 (c) 상기 (b) 전처리공정을 통해 불용성 성분과 고분자물질이 제거된 시료를 이온교환수지나 활성탄을 이용하 여 회수하는 공정을 포함한다(도 1).
이하 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하고자 한다. 단, 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다.
실시예 1 : 사카로마이세스 칼스버겐시스에 의한 순물 처리
사카로마이세스 칼스버겐시스(Saccharomyces carlsbergensis)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 3과 같은 결과를 얻었다. 5일간의 배양 후 피니톨은 0.371 g/L에서 0.857 g/L로 2.31배 증가하였으며 총당은 91%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00017
실시예 2 : 사카로마이세스 세레비제에 의한 순물 처리
사카로마이세스 세레비제(Saccharomyces cerevisae)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 4와 같은 결과를 얻었다. 5일간의 배양 후 피니톨은 0.371 g/L에서 0.676 g/L로 1.82배 증가하였으며 총당은 54%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00004
실시예 3 : 사카로마이세스 패스토리아누스에 의한 순물 처리
사카로마이세스 패스토리아누스(Saccharomyces pastorianus)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 5와 같은 결과를 얻었다. 5일간의 배양 후 피니톨은 0.371 g/L에서 0.590 g/L로 1.59배 증가하였으며 총당은 60%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00005
실시예 4 : 캔디다 유틸리티스에 의한 순물 처리
캔디다 유틸리티스(Candida utilitis)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 6과 같은 결과를 얻었다. 피니톨은 초기 0.371 g/L에서 3일 배양 후 0.539 g/L로 최고치가 된 후 이 이후에는 도로 감소하였으며 총당은 31%만이 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00006
실시예 5 : 아스퍼질러스 나이거에 의한 순물 처리
아스퍼질러스 나이거(Aspergilus niger)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 7과 같은 결과를 얻었다. 피니톨은 초기 0.371 g/L에서 3일 배양 후 0.566 g/L로 최고치가 된 후 이 이후에는 도로 감소하여 5일 후에는 거의 소멸되었으며 총당은 94%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00007
실시예 6 : 페니실시움 퓨니큘로섬에 의한 순물 처리
페니실리움 퓨니큘로섬(Penicillim funiculosum)을 멸균된 두부순물에 접종 하여 5일간 배양한 결과 표 8과 같은 결과를 얻었다. 피니톨은 초기 0.371 g/L에서 3일 배양 후 0.534 g/L로 최고치가 된 후 이 이후에는 도로 감소하였으며 총당은 49%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00018
실시예 7 : 트리코더마 비리데에 의한 순물 처리
트리코더마 비리데(Trichoderma viride)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 9와 같은 결과를 얻었다. 피니톨은 초기 0.371 g/L에서 1일 배양 후 0.709 g/L로 최고치가 된 후 이 이후에는 도로 감소하였으며 총당은 38%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00009
실시예 8 : 바실러스 스테아로떠마필러스에 의한 순물 처리
바실러스 스테아로떠마필러스(Bacillus stearothermophilus)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 10과 같은 결과를 얻었다. 5일간의 배양 후 피니톨은 0.371 g/L에서 0.514 g/L로 1.39배 증가하였으며 총당은 29%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00010
실시예 9 : 대장균에 의한 순물 처리
대장균(Escherichia coli)을 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 11과 같은 결과를 얻었다. 5일간의 배양 후 피니톨은 0.371 g/L에서 0.733 g/L로 1.98배 증가하였으며 총당은 31%가 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00011
실시예 10 : 슈도모나스 아밀로데르모사에 의한 순물 처리
슈도모나스 아밀로데르모사(Pseudomonas amylodermosa)를 멸균된 두부순물에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 12와 같은 결과를 얻었다. 피니톨은 초기 0.371 g/L에서 1일 배양 후 0.604 g/L로 최고치가 된 후 그 이후에는 도로 감소하였으며 총당은 24%만이 제거되었다.
Figure 112001520793236-pat00012
실시예 11 : 사카로마이세스 칼스버겐시스에 의한 탈지대두 열수추출액과 탈지대두 현탁액의 처리
사카로마이세스 칼스버겐시스(Saccharomyces carlsbergensis)를 멸균된 탈지대두의 열수추출액과 탈지대두 현탁액에 접종하여 5일간 배양한 결과 표 13와 같은 결과를 얻었다. 탈지대두 열수추출액의 경우 5일간의 배양 후 피니톨은 0.596 g/L에서 1.209 g/L로 2.02배 증가하였으며, 탈지대두현탁액의 경우에는 피니톨이 0.618 g/L에서 1.551 g/L로 2.51배 증가하였다.
Figure 112001520793236-pat00019
실시예 12 : 피니톨의 고회수공정
0.387 g/L의 피니톨 함량을 가진 두부순물 100 L를 20분간 끓여 두부제조 과정에 발생한 잡균들을 제거한 후 30℃까지 냉각시키고 미리 배양해 둔 사카로마이세스 칼스버겐시스 종균 2L를 접종하였다. 충분한 공기를 공급하면서 72시간 배양후 원심분리하여 균체 및 불용성 고형분을 제거하고 95L의 상등액을 획득하였다.
이 상등액 중의 피니톨 농도를 측정한 결과 0.793 g/L로 증가하였으며 카이로이노시톨 함량은 거의 변화가 없었다. 이 액을 10L의 활성탄을 충진한 칼럼에 시간당 20L의 속도로 통과시켜 피니톨을 흡착시켰다. 10L의 증류수로 활성탄을 세척한 후 다시 10% 농도의 에탄올 10 L를 시간당 10 L씩 주입하여 피니톨을 용리하였다. 그 이후 50% 에탄올 10 L를 시간당 10 L의 속도로 주입하여 당성분을 제거하고 증류수로 세척한 후 차기 흡착에 재사용하였다.
용리액 주입 시작 시부터 2L 단위로 분획한 후 각 분획 중의 피니톨과 총당 성분의 변화를 측정하여 도 2와 같은 결과를 얻었다. 이 중 피니톨이 함유된 분획 1.4 L를 모아서 농축 후 동결건조한 결과 피니톨 순도 68.0 %의 연한 황색 분말 90.2 g을 획득하였다. 카이로이노시톨 분획은 농도가 낮아 회수하지 않았다.
이상 살펴본 바와 같이, 본 발명 방법은 여러 종류의 세균이나 효모, 곰팡이 등의 미생물 처리를 통하여 대두부산물내 피니톨의 유도체를 피니톨로 전환시킴으로써 피니톨의 회수율을 극대화할 뿐만 아니라 원료 중에 들어있는 다른 당성분도 효과적으로 제거해 줌으로써 후속 회수공정에서의 부담을 경감시키고 또한 최종적으로 배출되는 폐기물 중의 유기물 부하를 대폭 경감시킬 수 있는 매우 뛰어난 효과가 있다.

Claims (7)

  1. 대두가공 부산물에 미생물을 첨가하고 배양하는 것을 포함하는, 대두가공 부산물 내 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 증가시키는 방법.
  2. 제1항에 있어서, 상기 대두가공 부산물이 다음 중 어느 한가지에 속하는 것임을 특징으로 하는 방법;
    (a) 대두 혹은 탈지대두박 자체나 그 추출물인 것
    (b) 두부제조과정의 부산물인 두부순물인 것
    (c) 대두단백 제조과정의 부산물인 대두당밀(soybean whey)인 것
    (d) 상기 (a)나 (b)의 농축액인 것.
  3. 제1항에 있어서, 상기 미생물이 사카로마이세스 속에 속하는 것임을 특징으로 하는 방법.
  4. 제1항에 있어서, 상기 미생물이 아스퍼질러스 속에 속하는 것임을 특징으로 하는 방법.
  5. 제3항에 있어서, 상기 미생물이 사카로마이세스 칼스버겐시스임을 특징으로 하는 방법.
  6. 제4항에 있어서, 상기 미생물이 아스퍼질러스 나이거임을 특징으로 하는 방법.
  7. (a) 상기 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 따라 대두가공 부산물내 피니톨 또는 카이로이노시톨 함량을 증가시키는 공정; (b) 미생물 배양시 발생한 균체 및 대두가공 부산물 중의 불용성 물질과 고분자 물질을 원심분리나 여과를 통해 제거시키는 전처리 공정; 및 (c) 상기 전처리공정을 통해 불용성 성분과 고분자물질이 제거된 시료로부터 이온교환수지나 활성탄을 이용하여 피니톨이나 카이로이노시톨을 회수하는 공정을 포함하는 것을 특징으로 하는 대두가공 부산물로부터 피니톨 또는 카이로이노시톨의 분리방법.
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