KR100609490B1 - 항바이러스제로 유용한 6-메틸니코틴아미드 유도체 - Google Patents

항바이러스제로 유용한 6-메틸니코틴아미드 유도체 Download PDF

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Abstract

본 발명은 항바이러스제로 유용한 신규의 6-메틸니코틴아미드 유도체, 그의 제조방법 및 그를 포함하는 약학적 조성물에 관한 것으로서, 구체적으로 비핵산계 화합물인 하기 화학식 1로 표시되는 6-메틸니코틴아미드 유도체는 HBV (Hepatitis B Virus) 및 HCV (Hepatitis C virus)의 증식 뿐만 아니라 HIV (Human Immunodeficiency Virus) 증식을 억제하는 효과도 나타내므로 B형 간염과 C형 간염 및 후천성 면역 결핍증의 치료제 및 예방제로 유용하게 사용될 수 있다.
Figure 112000007591107-pat00001
상기 식에서, R1, R2 및 n은 명세서에 기재된 바와 같다.

Description

항바이러스제로 유용한 6-메틸니코틴아미드 유도체 {6-Methylnicotinamide derivatives as antiviral agents}
본 발명은 항바이러스제로 유용한 6-메틸니코틴아미드 유도체에 관한 것으로, 보다 상세하게는 HBV, HCV 및 HIV의 증식 억제 효과가 뛰어난 하기 화학식 1로 표시되는 신규의 6-메틸니코틴아미드 유도체 및 그의 약학적으로 허용되는 염, 그의 제조방법과 상기 화합물을 유효 성분으로 하는 항바이러스용 약학적 조성물에 관한 것이다.
화학식 1
Figure 112000007591107-pat00002
상기 화학식 1에서,
R1은 하이드록시기; C1∼C5인 직쇄 또는 분쇄상 알킬기; C3∼C 6인 사이클로 알킬기; C2∼C6인 디알킬아미노기; 포화 또는 불포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리; 또는
Figure 112000007591107-pat00003
을 나타내며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고 헤테로 고리는 치환되지 않거나 C1∼C3의 알킬기로 치환되며, m은 0 또는 1이고,
R2는 수소 원자 또는 C1∼C4인 알킬기이고,
또는 R1과 R2가 서로 결합하여 포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리를 형성하며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고,
n은 0∼4의 정수이다.
B형 간염 바이러스 (Hepatitis B virus, HBV; 이하 "HBV"라 함)는 만성 또는 급성 간염을 일으키고 악화될 경우 간경화와 간암의 원인이 되는 병원체로서, 전세계적으로 3억의 인구가 HBV에 감염된 것으로 추산되고 있다 (Tiollais & Buendia, Sci. Am., 264, 48, 1991). 따라서 B형 간염의 치료 및 예방을 목적으로, HBV의 분자생물학적 특징을 비롯하여 HBV와 간질환과의 관련성에 대해 많은 연구가 진행되어 왔으며 B형 간염에 대한 백신 및 진단 시약도 다양하게 개발되었다. 또한 B형 간염의 치료제를 개발하기 위한 노력이 지속적으로 진행 중이다.
HBV의 게놈은 중합효소 유전자 (P; polymerase), 표면 항원 유전자 (S; surface protein; pre-S1, pre-S2, S), 중심 항원 유전자 (C; core protein; pre-C, C), X 단백질 유전자 등의 4가지 유전자로 구성된다. 이 중 중합효소, 표면 항원, 중심 항원 유전자는 구조 단백질을 발현하고, X 단백질 유전자는 조절 단백질을 발현하는 것으로 알려져 있다.
HBV 중합효소 유전자는 전체 바이러스 게놈의 80%를 차지하고 845개의 아미노산으로 구성된 94kD 크기의 단백질을 생산하는데, 이 중합효소 단백질에는 바이러스 게놈의 복제에 필요한 일련의 기능들이 포함된다. 즉, 효소 활성으로 ⅰ) 단백질 시발체 (protein primer), ⅱ) RNA 의존 DNA 중합효소 (RNA dependent DNA polymerase, RT), ⅲ) DNA 의존 DNA 중합효소 (DNA dependent DNA polymerase,DDDP), ⅳ) RNA 분해효소 (RNase H) 기능 등이 하나의 폴리펩타이드에 존재한다. 이 중 중합효소 단백질의 역전사 활성에 대해서는 카프란 (Kaplan) 등이 처음으로 밝혔으며, 이를 통해 HBV의 복제 기작에 대한 많은 연구가 이루어졌다.
HBV는 비리온 (virion) 외부의 표면 항원 단백질이 간세포-특이 수용체 (specific receptor)에 인식되어 간세포 내로 들어가는데, 이 때 HBV 중합효소 활성에 의해 불완전한 이중나선 DNA의 나머지 부분이 합성되어 HBV DNA 게놈이 완성된다. 완성된 HBV DNA 게놈은 세포 내 RNA 중합효소 활성에 의하여 전게놈 (pre-genomic) mRNA 와 중심 항원 (C), 표면 항원 (S), 조절 단백질 (X) 등의 mRNA를 생산한다. 이들 mRNA로부터 바이러스 단백질이 만들어지며, 특히 중합효소 단백질은 바이러스 게놈을 합성하는 역할을 하며 중심 항원 단백질 및 전게놈 mRNA 등과 레플리카좀 (replicasome)이라는 구조물을 형성한다. 이를 캡시드화 (encapsidation)라고 하는데, 중합효소 단백질은 3'-말단에 글루탐산이 반복되는 부위의 핵산 친화력으로 캡시드화가 용이하다. 레플리카좀이 형성되면 HBV 중합효소 단백질의 역전사 활성에 의해 (-) DNA 사슬이 합성되고, DNA 의존 DNA 중합효소 활성에 의해 (+) DNA 사슬이 합성되고 이는 다시 전게놈 mRNA들을 생산하며, 이러한 과정이 반복됨으로써 세포 내에 200∼300개 이상의 게놈 DNA 풀 (pool)이 유지된다 (Tiollais and Buendia, Scientific American, 264: 48-54, 1991).
한편 HBV와 HIV는 서로 다른 종류의 바이러스지만 이들의 증식 과정에는 공통된 복제 과정이 있다. 즉, 바이러스 RNA로부터 DNA로 전사가 일어나는 역전사 과정과 역전사로 생성된 RNA-DNA 하이브리드의 RNA 부분을 분해 소거하는 과정이 공통적이다.
최근 후천성 면역 결핍증 (Acquired Immune Deficiency Syndrome, AIDS; 이하 "에이즈"라 함) 또는 대상포진 감염증의 치료제로 개발되어 오던 라미부딘 (lamivudine), 팜비어 (famvir) 등의 핵산계 (nucleosides) 화합물의 HBV 억제제로서의 유용성에 대해 보고된 바 있다 (Gerin J. L, Hepatology, 14: 198-199, 1991; Lok A. .S. P., J. Viral Hepatitis, 1: 105-124, 1994; Dienstag, J. L. et al., New England Journal of Medicine, 333: 1657-1661, 1995). 그러나 이러한 핵산계 화합물들은 값이 매우 비싸서 환자의 경제적인 부담이 크고, 더욱이 핵산계 화합물들은 본질적으로 부작용, 즉 독성, 내성 바이러스의 출현 및 약물 투여 중단 후 재 발 등에 있어 심각한 문제점을 내포하고 있기 때문에 B형 간염 치료제로서는 부적합한 것으로 알려져 있다. 따라서 비핵산계 (non-nucleosides) 화합물 중에서 B형 간염 치료제를 개발하려는 노력이 이어졌으며, HBV에 대해 항바이러스 활성을 갖는 퀴놀론계 화합물 (유럽 특허공개 제563732호, 제563734호), 이리도이드계 화합물 (대한민국 특허공개 제94-1886호), 테레프탈산아미드 유도체 (대한민국 특허출원 제 96-72384호, 제 97-36589호, 제99-5100호) 등이 보고되었다. 그러나 많은 노력에도 불구하고 아직까지는 B형 간염에 대한 뚜렷한 치료제는 개발되어 있지 않으며, B형 간염의 치료는 주로 대증요법 (對症療法)에 의존하고 있는 실정이다.
C형 간염 바이러스 (Hepatitis C virus, HCV; 이하 "HCV"라 함)는 플라비바이러스 (Flavivirus) 과에 속하는 막이 있는 바이러스이다. 게놈은 (+)-RNA (plus-strand RNA)로서 그 크기가 9.5 kb이며 3,010개의 아미노산으로 구성된 다단백질 (polyprotein)을 발현한다. 이 다단백질은 숙주 세포와 바이러스의 효소에 의해 3개의 구조 단백질과 6개의 비구조 단백질로 분리된다.
HCV 게놈의 5'과 3' 말단에는 거의 모든 유전형 (genotype)의 염기 서열이 동일하게 유지된 비해독 부위가 있다. 5' 말단에서는 330-341개의 뉴클레오티드가, 그리고 3' 말단에서는 폴리 A (poly A) 뒤에 98개의 뉴클레오티드가 최근 발견되었는데, 이곳이 바이러스의 RNA 복제나 해독에 중요한 역할을 하리라 추측된다. 바이러스 게놈의 아미노 말단은 바이러스 구조 단백질인 중심 항원 유전자 (Core), E1, E2를 만들고 나머지 부위는 비구조 단백질을 만들게 된다. 중심 항원 유전자 는 바이러스의 캡사이드 (Capsid) 단백질, E1과 E2는 바이러스의 외피 단백질로 되어 있고 이들 단백질은 내형질쇄막 (endoplasmic reticulum)에 있는 신호 펩티드 분해효소 (signal peptidase)에 의해 분리된다. 비구조 단백질은 세린 단백질 분해효소 (serine protease)인 NS3과 보조인자 (cofactor)인 NS4A에 의해 분리된다. NS5B는 RNA-의존적인 RNA 중합효소 (RNA-dependent RNA polymerase) 기능을 갖고 있으며 바이러스 복제에 가장 중요한 효소이다.
HCV에 의한 감염은 수혈 및 지역 특이적 전염 (community-acquired)에 의해 일어나고, 신장 투석에 의해 약 70% 정도가 감염된다는 보고가 있다. HCV에 감염이 되면 약 20% 정도가 5년 내에 간경화를 수반한 급성 간염을 일으키게 되고 간암으로 전이된다. 이러한 높은 만성 감염율은 RNA 바이러스에서 보기 드문 일로서 HCV가 높은 비율의 간암을 일으키는 매개체임을 보여주고 있다. HCV의 지속적인 감염 기작에 대해서는 연구된 바가 없다. 최근에는 모든 혈액에 대해서 HCV 검사가 잘 이루어지고 있어 수혈로 인한 감염은 현저히 줄어들었지만 지역 특이적 전염 (community-acquired) HCV 감염은 아직 조절할 수가 없어 전 세계적으로 중요한 문제점으로 대두되고 있다.
역학적으로 볼 때 HCV는 HBV와 달리 전세계에 골고루 분포되어 있고 전세계 인구의 1.5∼2%가 감염된 것으로 보고되고 있다. HCV에 감염되면 만성 간염으로 진행되는 것이 특징인데 간경화 및 간암으로 전이되는 확률이 B형보다 상당히 높다. C형은 분류학적으로도 B형과는 전혀 다른 바이러스과에 속하기 때문에 B형 백신으로는 예방이 불가능하며 α-인터페론으로 치료를 시도하고 있으나 유전형에 따 라 반응이 현저히 다르고 효과가 극히 미약하다.
1987년 HCV가 발견된 이래 많은 연구가 수행되었지만 아직까지 효과적인 치료제는 개발되지 못하고 있다. 현재 유일하게 인터페론이 사용되고 있지만 치료율은 30% 미만이며 투여 중단시 재발되고 인터페론에 내성을 갖는 변이 바이러스가 발생됨이 확인되었다. 따라서 아직까지 HCV에 대한 특이적인 증식 저해제로 개발된 것은 전무한 상태라 볼 수 있다.
한편 에이즈는 체내의 세포 면역 기능이 뚜렷하게 떨어져 보통 사람에게서는 볼 수 없는 희귀한 각종 감염증이 발생하고 이것이 전신에 퍼지는 질환으로서, 에이즈 바이러스인 HIV (Human Immunodeficiency Virus, 이하 "HIV"라 함)의 주된 공격목표는 면역 기능을 조절하는 T 세포 중 하나인 보조 T 세포 (helper T cell)인 것으로 알려져 있다. 보조 T 세포가 HIV에 감염되어 괴사를 일으키면 인체의 면역 기능이 제대로 작용하지 못하여 면역 결핍 상태를 일으키며, 이로 인해 치명적인 감염과 악성 종양 등을 일으키게 된다. 에이즈 환자는 1981년 미국에서 처음으로 발견된 이래, 1993년 187개국에서 85만 명이 넘는 것으로 보고되었다 (세계보건기구 (WHO)의 1993년 말 보고서). 더욱이 세계보건기구의 보고에 의하면, 2000년까지 3천만∼4천만 명이 더 감염되어 그 중 1천만∼2천만 명이 발병할 것으로 예측하였다.
현재 에이즈 치료에는 HIV의 증식 과정을 억제하는 약물이 가장 널리 사용되고 있는데, 1987년 가장 먼저 개발된 지도부딘 (Zidovudine (ZDV), 이전에는 Azidothymidine (AZT)로 명명되었음), 지도부딘에 의한 부작용이 있거나 치료 효과가 나타나지 않을 때 대체약으로서 1991년 개발된 디다노신 (Didanosine (ddI)) 및 1992년 지도부딘과 병용 사용이 허가된 잘시타빈 (Zalcitabine (ddC)) 등이 있다. 이들 약물은 에이즈 환자의 증세를 완화시키고 HIV 감염자의 에이즈로의 이행을 늦추거나 생존 기간을 다소 연장시키는 효과를 나타낸다. 그러나 완치 능력은 없으며 내성 및 부작용이 문제가 되고 있다.
이에 본 발명자들은 부작용 및 독성이 적고 내성 바이러스 출현이 낮은 새로운 B형 간염 치료제의 개발을 목적으로 HBV에 대해 우수한 항바이러스 활성을 나타내는 비핵산계 화합물을 개발하기 위해 노력한 결과, 상기 화학식 1로 표시되는 신규의 6-메틸니코틴아미드 유도체를 합성하였으며 이 물질이 HBV 증식 억제 효과 뿐만 아니라 HCV 증식 억제 효과 및 HIV 증식 억제 효과가 우수함을 밝힘으로써 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 목적은 새로운 6-메틸니코틴아미드 유도체와 약학적으로 허용되는 그의 염 및 그의 제조방법을 제공하는 것이다.
또한 본 발명의 목적은 상기 화합물을 유효 성분으로 하며 부작용이 적고 경제적인, B형 간염과 C형 간염 및 에이즈 치료 및 예방을 위한 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명에서는 하기 화학식 1로 표시되는 새로운 6-메틸니코틴아미드 유도체 및 약학적으로 허용되는 그의 염을 제공한다.
화학식 1
Figure 112000007591107-pat00004
상기 화학식 1에서,
R1은 하이드록시기; C1∼C5인 직쇄 또는 분쇄상 알킬기; C3∼C 6인 사이클로 알킬기; C2∼C6인 디알킬아미노기; 포화 또는 불포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리; 또는
Figure 112000007591107-pat00005
을 나타내며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고 헤테로 고리는 치환되지 않거나 C1∼C3의 알킬기로 치환되며, m은 0 또는 1이고,
R2는 수소 원자 또는 C1∼C4인 알킬기이고,
또는 R1과 R2가 서로 결합하여 포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리를 형 성하며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고,
n은 0∼4의 정수이다.
바람직하기로는 상기 화학식 1에서,
R1은 하이드록시기, 메틸기, 이소프로필기, t-부틸기, 사이클로프로필기, 디메틸아미노기, 4-모르포리닐기, 1-피페리디닐기, 4-메틸-1-피페라지닐기, 3-피리딜기, 1-이미다졸릴기, 2-피리딜아미노기 또는 3-피리딜카르보닐아미노기이고,
R2는 수소원자이며,
n은 0~3의 정수이다.
본 발명의 화학식 1의 화합물은 약학적으로 허용 가능한 염의 형태로 사용할 수 있으며, 염으로는 약학적으로 허용 가능한 유리산 (free acid)에 의해 형성된 산 부가염이 유용하다. 화학식 1의 화합물은 당해 기술 분야에서 통상적인 방법에 따라 약제학적으로 허용되는 산 부가염을 형성할 수 있다. 유리산으로는 유기산과 무기산을 사용할 수 있으며, 무기산으로는 염산, 브롬산, 황산, 인산 등을 사용할 수 있고 유기산으로는 구연산 (citric acid), 초산, 젖산, 주석산 (tartaric acid), 말레인산, 푸마르산 (fumaric acid), 포름산, 프로피온산 (propionic acid), 옥살산, 트리플루오로아세트산, 벤조산, 글루콘산, 메탄술폰산, 글리콜산, 숙신산, 4-톨루엔술폰산, 갈룩투론산, 엠본산, 글루탐산 또는 아스파르트산 등을 사용할 수 있다.
또한 본 발명에서는 하기 반응식 1로 표시되는 화학식 1의 6-메틸니코틴아미드 유도체의 제조 방법을 제공한다.
Figure 112000007591107-pat00006
상기 반응식 1에서, R1, R2 및 n은 화학식 1에서 정의한 바와 같다.
본 발명의 제조 방법은
1) 2-클로로-6-메틸니코틴산 (2)과 6-아미노인다졸 (3)을 염기 존재 하에 가열반응시켜 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 (4)을 제조하는 단계 (단계 1); 및
2) 상기 단계 1에서 제조된 화합물 (4)을 티오닐 클로라이드 (SOCl2)와 반응시켜 산염화물 상태로 활성화시킨 후, 아민 화합물 (5)과 반응시켜 화학식 1의 6-메틸니코틴아미드 유도체를 제조하는 단계 (단계 2)
로 이루어진다.
상기 단계 1 및 단계 2에서 출발 물질 및 반응 물질로 사용되는 2-클로로-6-메틸니코틴산 (2), 6-아미노인다졸 (3) 및 아민 화합물 (5)은 상업적으로 시판되는 물질로서 용이하게 구입하여 사용할 수 있다.
또한 상기 단계 2의 아민 화합물 (5)은 화학식 1의 목적 화합물에 치환기 [-NR2-(CH2)n-R1]를 도입하기 위한 물질로서, 치환기의 종류에 따라 적절한 아민 화합물 (5)을 선택할 수 있으며 이는 당해 기술 분야에 속하는 통상의 지식을 가진 자라면 용이하게 선택하여 사용할 수 있다.
상기 단계 1을 좀 더 구체적으로 설명하면, 염기로는 염기성이 강하지 않은 삼급 유기 염기를 사용할 수 있으며, 예를 들어 피리딘, 피콜린, 루티딘, N,N-디메틸아닐린, 4-디메틸아미노피리딘 등과 같은 유기 염기를 사용하는 것이 바람직하다.
또한 상기 단계 2를 좀 더 구체적으로 설명하면, 단계 1에서 제조된 화합물 (4)과 약간 과량의 티오닐 클로라이드 (SOCl2)를 가열하여 반응시켜 반응성이 매우 좋은 산염화물을 생성시킨 후, 아민화합물 (5)과 반응시켜 화학식 1의 목적 화합물을 제조한다.
이 때 반응 용매로는 프로톤 (proton)을 해리시킬 수 없는 (aprotic) 용매가 바람직하며, 예를 들어 클로로포름, 메틸렌 클로라이드, 아세토니트릴, 테트라하이드로퓨란, 에테르, 또는 이들의 혼합 용매를 사용하는 것이 바람직하다.
또한 반응 온도는 0∼10℃로 하는 것이 바람직하다.
또한 본 발명에서는 화학식 1의 6-메틸니코틴아미드 유도체 및/또는 약학적으로 허용되는 그의 염을 유효 성분으로 포함하는, B형 간염의 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물을 제공한다.
또한 본 발명에서는 화학식 1의 6-메틸니코틴아미드 유도체 및/또는 약학적으로 허용되는 그의 염을 유효 성분으로 포함하는, C형 간염의 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물을 제공한다.
HCV의 RNA 의존형 RNA 중합효소 (RNA-dependent RNA-polymerase) 저해제는 궁극적으로 HCV의 증식을 억제할 수 있을 것이고 또한 아직까지 RNA 의존형 RNA 중합효소가 인체 세포에서는 발견되지 않고 있으므로, 본 발명에 의한 상기 화합물은 부작용이 적은 C형 간염 치료제가 될 것으로 기대된다.
본 발명의 화학식 1로 표시되는 6-메틸니코틴아미드 유도체는 HBV와 HIV의 증식 과정에 공통적으로 존재하는 복제 과정, 즉 바이러스 RNA로부터 DNA로 역전사가 일어나고 생성된 RNA-DNA 하이브리드에서 RNA 부분이 분해되는 과정을 저해하는 작용 기전을 갖고 있어, HBV 뿐만 아니라 HIV에 대해서도 증식 억제 활성을 갖는다.
따라서 본 발명에서는 화학식 1의 6-메틸니코틴아미드 유도체 및/또는 약학적으로 허용되는 그의 염을 유효 성분으로 포함하는, 후천성 면역 결핍증 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물을 제공한다.
화학식 1의 화합물은 임상 투여시에 경구 또는 비경구로 투여, 예를 들어 정맥 내, 피하, 복강 내 또는 국소 적용할 수 있으며, 일반적인 의약품 제제의 형태로 사용될 수 있다.
본 발명의 약학적 조성물을 임상적으로 이용시에는 약제학적 분야에서 통상적인 담체와 함께 배합하여 약제학적 분야에서 통상적인 제제, 예를 들면 정제, 캅셀제, 트로키제, 액제, 현탁제 등의 경구 투여용 제제; 주사용 용액 또는 현탁액, 또는 주사시에 주사용 증류수로 제조하여 사용할 수 있는 즉시 사용형 주사용 건조분말 등의 형태인 주사용 제제 등의 다양한 제제로 제형화할 수 있다.
화학식 1의 화합물의 유효 용량은 일반적으로 성인에게 10∼500 mg/kg이고, 바람직하기로는 50∼300 mg/kg이며, 의사 또는 약사의 판단에 따라 일정 시간 간격으로 1일 수회, 바람직하기로는 하루 1∼6회 분할 투여될 수 있다.
이하 본 발명을 실시예에 의하여 더욱 상세하게 설명한다.
단, 하기 실시예들은 본 발명을 예시하는 것으로 본 발명의 내용이 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<제조예 1> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산의 제조
메탄올 100 ㎖에 2-클로로-6-메틸니코틴산 10 g, 6-아미노인다졸 8.6 g 및 피리딘 9.5 ㎖를 차례로 가한 후, 가열하여 3일 동안 환류시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 20℃에서 물 30 ㎖를 서서히 가한 후 2시간 동안 교반하고 여과하여 메탄올 20 ㎖로 세척하였다. 얻어진 결정을 40∼50℃에서 진공 건조하여 13.3 g (수율 85%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 273∼274 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm: δ 2.49(s, 3H), 6.75(d, 1H), 7.01(d, 1H), 7.65(m, 1H), 7.93(s, 1H), 8.14(m, 1H), 8.53(s, 1H), 10.70(s, 1H), 13.13(br s, 2H)
<실시예 1> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N- 메틸니코틴아미드의 제조
아세토니트릴 30 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 0.9 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.75 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시킨 후 냉각하였다. 0∼5℃에서 반응 혼합물에 메틸아민 (40% 메탄올 용액) 3 ㎖를 서서히 가하고 30분 동안 반응시켰다. 물 30 ㎖를 가한 후 감압 농축하여 유기 용매를 제거한 후 클로로포름 50 ㎖로 추출하였다. 분리된 유기층을 농축하여 얻어진 고체를 메틸렌 클로라이드와 에테르의 2 : 1 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 0.67 g (수율 71%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 210∼211 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.49(s,3H), 2.81(s,3H), 6.76(d ,1H), 6.95(d, 1H), 7.62(d, 1H), 7.91(s, 1H), 8.01(dd,1H), 8.53(s, 1H), 8.69(br s, 1H), 11.36(s, 1H), 12.81(br s 1H)
<실시예 2> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)- N- 이소프로필-6-메틸니코틴아미드의 제조
아세토니트릴 30 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 0.9 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.75 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 0∼5℃에서 이소프로필아민 2.5 ㎖를 서서히 가하고 30분 동안 반응시켰다. 물 30 ㎖를 가한 후 감압 농축하여 유기 용매를 제거하고 3N-수산화나트륨 수용액을 소량 가하여 pH = 9∼9.5로 맞춘 후 1시간 동안 교반하고 여과하였다. 물로 세척한 고체를 메틸렌 클로라이드와 에테르의 1 : 4 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 0.78 g (수율 75%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 212∼214 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ1.86(m, 6H), 2.49(s, 3H), 4.15(m, 1H), 6.76(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.61(dd, 1H), 7.92(s, 1H), 8.07(dd, 1H), 8.44(br s,1H), 8.53(s, 1H), 11.31(s, 1H), 12.86(br s, 1H)
<실시예 3> N -( t -부틸)-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
아세토니트릴 30 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 1 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.83 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 0∼5℃에서 t-부틸아민 3 ㎖를 서서히 가하고 30분 동안 반응시켰다. 20℃에서 메탄올 30 ㎖를 가하여 고체 생성물을 녹이고 녹지 않는 소량의 불순물을 여과하여 제거하였다. 여액을 감압 농축하고 잔사를 메탄올 5 ㎖에 녹인 후 물 30 ㎖를 가하여 석출시켰다. 혼합물을 1시간 동안 교반시킨 후 여과하고 물 5 ㎖로 세척하였다. 얻어진 고체를 칼럼 크로마토그라피 (n-헥산 : 에틸 아세테이트 : 메탄올 = 10 : 5: 1 (부피비))로 정제하고 농축하여 0.75 g (수율 62%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 107∼109 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ1.39(s, 9H), 2.49(s, 3H), 6.72(d, 1H), 6.93(d, 1H), 7.60(d, 1H), 7.90(s, 1H), 7.99(m, 2H), 8.48(s, 1H), 11.04(s,1H), 12.78(br s, 1H)
<실시예 4> N -(2-하이드록시에틸)-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
t-부틸아민 대신에 에탄올아민을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 58%
m.p. : 217∼220 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ2.49(s,3H), 3.33(m, 2H), 3.52(m, 2H), 4.77(br s,1H), 6.75(d, 1H), 6.93(d, 1H), 7.60(d, 1H),7.90(s, 1H), 8.06(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.67(br s, 1H), 11.29(s, 1H), 12.79(br s, 1H)
<실시예 5> N- 사이클로프로필-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
아세토니트릴 30 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 1 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.83 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 0∼5℃에서 사이클로프로필아민 2.3 ㎖를 서서히 가한 후 30분 동안 반응시켰다. 반응액에 메탄올 10 ㎖와 메틸렌 클로라이드 10 ㎖를 가하고 여과하여 녹지 않는 소량의 불순물을 제거하였다. 여액을 감압 농축하여 잔사를 메탄올 10 ㎖에 녹인 후 물 40 ㎖를 가하고 3N-수산화나트륨 수용액 2 ㎖를 가하여 1시간 동안 교반시켰다. 반응 혼합물을 여과하고 물로 세척하여 얻은 고체를 클로로포름과 에테르의 1 : 5 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 0.79 g (수율 69%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 189∼190 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ0.59(m, 2H), 0.70(m, 2H), 2.49(s, 3H), 2.85(m, 1H), 6.73(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.60(d, 1H), 7.90(s, 1H), 7.99(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.64(br s, 1H), 11.31(s, 1H), 12.80(br s, 1H)
<실시예 6> N -[2-(디메틸아미노)에틸]-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
t-부틸아민 대신에 N,N-디메틸에틸렌디아민을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 66%
m.p. : 182∼183 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ2.21(s,6H), 2.49(s, 3H), 3.38(m, 4H), 6.77(d, 1H), 6.96(d, 1H), 7.62(d, 1H), 7.92(s, 1H), 8.04(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.66(br s,1H), 11.29(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 7> N -[2-(디에틸아미노)에틸]-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
t-부틸아민 대신에 N,N-디에틸에틸렌디아민을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 58%
m.p. : 154∼155 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ0.99(m, 6H), 2.45∼2.55(m, 9H), 3.35(m, 2H), 6.77(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.62(d, 1H), 7.92(s, 1H), 8.02(d, 1H),8.52(s, 1H), 8.66(br s,1H), 11.28(s, 1H), 12.82(br s, 1H)
<실시예 8> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -[2-(4-모르포리닐)에틸]니코틴아미드의 제조
아세토니트릴 40 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 1 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.83 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 0∼5℃에서 4-(2-아미노에틸)모르포린 4 ㎖를 서서히 가한 후 30분 동안 반응시켰다. 반응 용액을 20℃에서 여과하고 아세토니트릴 5 ㎖로 세척하여 녹지 않는 소량의 불순물을 제거한 후 감압 농축하였다. 잔사를 메틸렌 클로라이드 40 ㎖에 녹이고 탄산나트륨 수용액과 물로 세척한 후 유기층을 감압 농축하였다. 얻어진 고체를 클로로포름과 에테르의 1 : 3 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 1.04 g (수율 73%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 165∼168 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ2.42(m, 4H), 2.49(s, 3H), 3.33∼3.42(m, 4H), 3.57(m, 4H), 6.77(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.62(d, 1H), 7.92(s, 1H), 8.03(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.66(br s, 1H), 11.27(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 9> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -[2-(1-피페리디닐)에틸]니코틴아미드의 제조
t-부틸아민 대신에 1-(2-아미노에틸)피페리딘을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 62%
m.p. : 177∼179 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 1.37(m, 2H), 1.50(m, 4H), 2.49(m, 7H), 3.35(m, 4H), 6.77(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.62(d, 1H), 7.92(s, 1H), 8.02(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.65(br s, 1H), 11.27(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 10> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(4-모르포리닐)니코틴아미드의 제조
4-(2-아미노에틸)모르포린 대신에 4-아미노모르포린을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 8과 동일한 방법으로 반응시키고 후처리 과정을 실시한 후 에틸 아세테이트와 헥산의 1 : 1 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 70%
m.p. : 265∼268 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.48(s, 3H), 2.88(s, 4H), 3.67(s, 4H), 6.75(d, 1H), 6.95(d, 1H), 7.60(d, 1H), 7.90(s, 1H), 7.96(d, 1H), 8.50(s, 1H), 9.69(br s, 1H), 10.93(s, 1H), 12.80(br s, 1H)
<실시예 11> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(4-메틸-1-피페라지닐)니코틴아미드의 제조
t-부틸아민 대신에 1-아미노-4-메틸피페라진을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 3과 동일한 방법으로 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 67%
m.p. : 263∼265 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.20(s, 3H), 2.49(s, 4H), 2.89(s, 4H), 3.36(s, 3H), 6.76(d, 1H), 6.98(d, 1H), 7.63(d, 1H), 7.92(s, 1H), 7.98(d, 1H), 8.52(s, 1H), 9.62(br s, 1H), 10.92(s, 1H), 12.83(br s, 1H)
<실시예 12> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(3-피리딜)니코틴아미드의 제조
사이클로프로필아민 대신에 3-아미노피리딘을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 5와 동일한 방법으로 합성하고 후처리 과정을 실시한 후, 메틸렌 클로라이드와 에테르의 1 : 2 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 51%
m.p. : > 280 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.49(s, 3H), 6.83(d, 1H), 6.97(d, 1H), 7.39(dd, 1H), 7.59(d, 1H), 7.89(s, 1H), 8.11(d, 1H), 8.21(d, 1H), 8.31(m, 1H), 8.47(s, 1H), 8.85(d, 1H), 10.52(br s, 1H), 10.68(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 13> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(3-피리딜메틸)니코틴아미드의 제조
사이클로프로필아민 대신에 3-(아미노메틸)피리딘을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 5와 동일한 방법으로 합성하고 후처리 과정을 실시한 후, 클로로포름과 이소프로필 에테르의 1 : 2 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 58%
m.p. : 170∼172 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.49(s, 3H), 4.52(s, 2H), 6.78(d, 1H), 6.94(d, 1H), 7.37(dd, 1H), 7.60(d, 1H), 7.91(s, 1H), 8.11(d, 1H), 8.48(d, 1H), 8.51(s, 1H), 8.58(s, 1H), 9.31(br s, 1H), 11.24(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 14> N -[3-(1 H -1-이미다졸릴)프로필]-2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴아미드의 제조
4-(2-아미노에틸)모르포린 대신에 1-(3-아미노프로필)이미다졸을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 8과 동일한 방법으로 합성하고 후처리 과정을 실시한 후, 에탄올과 이소프로필 에테르의 1 : 3 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 65%
m.p. : 203∼205 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 1.99(m, 2H), 2.49(s, 3H), 3.34(m, 2H), 4.04(m, 2H), 6.78(d, 1H), 6.89(s, 1H), 6.95(d, 1H), 7.22(s, 1H), 7.61(d, 1H), 7.67(s, 1H), 7.91(s, 1H), 8.05(d, 1H), 8.53(s, 1H), 8.73(br s, 1H), 11.24(s, 1H), 12.81(br s, 1H)
<실시예 15> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(2-피리딜)-3-피리딘카르보하이 드라지드의 제조
아세토니트릴 30 ㎖에 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 1 g을 넣고 티오닐 클로라이드 0.83 ㎖를 서서히 가한 후 가열하여 70 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 반응 혼합물을 냉각하여 0∼5℃에서 2-하이드라지노피리딘 2.7 g을 가하고 30분 동안 반응시켰다. 반응 용액에 메탄올 10 ㎖와 메틸렌 클로라이드 10 ㎖를 가하고 10분 동안 교반시킨 후 여과하였다. 여액을 감압 농축하고 잔사를 메탄올 10 ㎖에 녹인 후 물 20 ㎖를 서서히 가하고 3N-수산화나트륨 수용액을 소량 가하여 pH = 8로 조정하였다. 용액을 2시간 동안 교반시킨 후 여과하고 물과 메탄올의 4 : 1 (부피비) 혼합 용매로 세척하여 얻어진 결정을 40∼50 ℃에서 진공 건조하여 1.03 g (수율 77%)의 목적 화합물을 얻었다.
m.p. : 143∼145 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.49(s, 4H), 6.67∼6.72(m, 2H), 6.79(d, 1H), 6.93(d, 1H), 7.51∼7.59(m, 2H), 7.89(s, 1H), 8.06(d, 1H), 8.16(m, 1H), 8.48(s, 1H), 8.55(br s, 1H), 10.54(br s, 1H), 10.87(s, 1H), 12.80(br s, 1H)
<실시예 16> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸- N -(3-피리딜카르보닐)-3-피리딘카르보하이드라지드의 제조
2-하이드라지노피리딘 대신에 니코티닉 하이드라지드를 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 15와 동일한 실시하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 69%
m.p. : 244∼246 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ2.49(s, 3H), 6.83(d, 1H), 6.98(d, 1H), 7.60(m, 2H), 7.91(s, 1H), 8.15(d, 1H), 8.28(d, 1H), 8.52(s, 1H), 8.79(d, 1H), 9.09(s, 1H), 10.79∼10.84(m, 3H), 12.83(br s, 1H)
<실시예 17> 2-(1 H -6-인다졸릴아미노)-6-메틸-3-(4-모르포리닐카르보닐)피리딘의 제조
4-(2-아미노에틸)모르포린 대신에 모르포린을 사용한 것을 제외하고는 상기 실시예 8과 동일한 방법으로 합성하고 후처리 과정을 실시한 후, 메틸렌 클로라이드와 n-헥산의 1 : 1 (부피비) 혼합 용매로 재결정하여 목적 화합물을 얻었다.
수율 : 64%
m.p. : 103∼104 ℃
1H-NMR (DMSO-d6), ppm : δ 2.49(s, 3H), 3.33(m, 4H), 3.57(m, 4H), 6.76(d, 1H), 7.12(d, 1H), 7.53(d, 1H), 7.58(d, 1H), 7.89(s, 1H), 8.20(d, 1H), 8.63(br s, 1H), 12.76(br s, 1H)
<실험예 1> HBV 중합효소에 대한 생체외 역전사 활성 저해 효과
화학식 1의 화합물들이 HBV 중합효소의 역전사 활성을 저해하는 효과를 알아보기 위하여, 하기와 같은 생체외 (in vitro) 실험을 실시하였다.
본 발명자들은 대장균에서 발현시켜 분리한 HBV의 재조합 중합효소 단백질, 그의 제조방법 및 그의 효소 활성을 측정하는 방법에 대해 이미 특허 출원한 바 있으며 (대한민국 특허출원 제94-3918호 및 제96-33998호), 본 실험에서는 상기와 같이 대장균에 발현시킨 HBV 중합효소를 사용하였다.
본 발명에서 사용된 생체외에서 B형 간염 바이러스 중합효소의 역전사효소 활성을 측정하는 방법은 다음과 같다. 기본적인 원리는 효소면역학적 방법 (ELISA)과 동일하며, 바이오틴- (biotin-), DIG- (digoxigenin-)으로 수식된 뉴클레오티드를 기질에 포함시켜 반응시킨 다음, 중합된 기질을 과산화효소가 붙어 있는 항-DIG 항체로 인식하는 방법을 이용하였다.
HBV 중합효소 20㎕를 스트렙타비딘 (streptavidin)으로 코팅된 웰에 넣고 반응 혼합물 [각각 10 μM의 DIG-UTP, Biotin-UTP, 46 mM Tris-HCl, 266 mM KCl, 27.5 mM MgCl2, 9.2 mM DTT 기질/프라이머 하이브리드] 20㎕, 시험 물질 20 ㎕ (농도가 각각 1, 0.1, 0.01 ㎍/㎖이 되도록 첨가)를 섞어 22℃에서 15시간 반응시켰다. 이 때 HBV 중합효소의 작용에 의해 DNA가 만들어지고 디그옥시게닌 (digoxigenin) 및 바이오틴이 붙은 뉴클레오티드가 포함되었기 때문에 이 DNA는 웰 바닥에 코팅되어 있던 스트렙타비딘과 결합하게 된다. 반응이 끝나면 남아 있는 불순물 등을 제거하기 위해 각 웰 당 250 ㎕의 세척 완충액 (pH 7.0)으로 30초씩 5번 씻어 주었다. 각 웰에 항-DIG-POD 항체 (anit-DIG-POD antibody)를 200 ㎕씩 가하여 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후, 불순물을 제거하기 위해 세척 완충액으로 각 웰을 씻어 주었다. 그 후 POD (peroxidase)의 기질인 ABTS™를 각각 200㎕씩 가하여 30분간 상온에서 반응시키고 ELISA 판독기를 이용하여 405 nm에서의 흡광도를 측정하였다.
HBV 중합효소의 역전사 활성에 대한 저해율은 시험 화합물을 넣지 않은 대조군을 기준으로 계산하였으며, 그 결과를 하기 표 1에 나타내었다.
HBV 중합효소의 역전사 활성에 대한 저해 효과
시험 화합물 HBV-RT의 활성 저해율 (%)
1 ㎍/㎖ 0.1 ㎍/㎖ 0.01 ㎍/㎖
실시예 1 70 50 21
실시예 2 78 54 23
실시예 3 65 48 20
실시예 4 89 62 48
실시예 5 84 54 32
실시예 6 86 60 49
실시예 7 54 45 15
실시예 8 91 68 52
실시예 9 87 57 12
실시예 10 78 51 35
실시예 11 86 56 24
실시예 12 69 40 18
실시예 13 76 48 32
실시예 14 88 59 47
실시예 15 86 50 30
실시예 16 85 54 26
실시예 17 62 40 12

상기 표 1에서 볼 수 있듯이, 본 발명의 화합물들은 1 ㎍/㎖의 농도에서 HBV 중합효소에 대한 활성 저해율이 최고 91%에 이르는 등 HBV 중합효소의 활성을 억제 하는 효과가 매우 우수하다. 또한 본 발명의 화합물들은 비핵산계 물질이므로 핵산계 물질들이 갖고 있는 독성 및 내성 바이러스의 조기 출현 등의 문제점을 해결할 수 있을 것으로 기대되며, 핵산계 물질들과 작용 기전이 상이하므로 핵산계 물질들과 병용요법제로도 사용할 수 있다.
이와 같이 본 발명의 화합물들은 HBV의 복제에 중요한 역할을 하는 HBV 중합효소의 활성을 저해하는 효과가 우수하므로 이를 기전으로 HBV의 증식을 억제할 수 있으며, 따라서 B형 간염의 예방제 및 치료제로서 유용하게 사용될 수 있다.
<실험예 2> HCV RNA 의존형 RNA 중합효소에 대한 생체외 활성 저해 효과
화학식 1의 화합물들이 HCV RNA 의존형 RNA 중합효소의 활성을 저해하는 효과를 알아보기 위하여, 하기와 같은 생체외 (in vitro) 실험을 실시하였다.
본 발명에서 사용된 생체외에서 HCV RNA 의존형 RNA 중합효소의 활성을 측정하는 방법은 다음과 같다.
먼저, HCV NS5B (RNA 중합효소) 10㎕를 스트렙타비딘으로 코팅된 웰에 넣고 반응 완충액 [TrisㆍCl (pH 7.5) 0.25M, NaCl 0.25M, MgCl2 0.025M, KCl 0.25M, EDTA 0.005M, DTT 0.05M] 25㎕를 가하고 주형 (template)으로서 HCV 3'UTR-"X" RNA와 DIG-(digoxigenin)-UTP, biotin-UTP, ATP, UTP, CTP, GTP가 포함된 반응 혼합액 (reaction mixture) 10㎕를 가한 다음, 시험 물질 5㎕ (농도가 각각 10, 1, 0.1 ㎍/㎖이 되도록 첨가)를 섞어 22 ℃에서 1시간 동안 반응시켰다. 시료를 넣지 않 은 것을 대조군 (negative control)으로 하여 활성을 비교하였다. 이때 HCV 중합효소의 작용에 의하여 RNA가 만들어지며 디그옥시게닌 및 바이오틴이 붙은 뉴클레오티드가 포함되었기 때문에, 이 DNA는 웰 바닥에 코팅되어 있던 스트렙타비딘과 결합하게 된다. 반응이 끝나면 남아 있는 불순물 등을 제거하기 위하여 각 웰 당 200㎕의 세척 완충액 (washing buffer) (pH 7.0)를 가하여 30초간 3차례 씻어 주었다. 항-DIG-POD 항체를 200㎕씩 가하여 37℃에서 1시간 동안 반응시킨 후, 불순물을 제거하기 위해 세척 완충액으로 각 웰을 씻어 주었다. 그 후 POD의 기질인 ABTSR을 각각 200㎕씩 가하여 30분간 상온에서 반응시키고 ELISA 판독기를 이용하여 405 nm에서 흡광도를 측정하였다.
시험 화합물을 넣지 않은 대조군을 기준으로 계산한 HCV RNA 중합효소의 역전사 활성에 대한 저해율을 하기 표 2에 나타내었다.
HCV RNA 중합효소 활성에 대한 저해 효과
시험 화합물 HCV RNA 중합효소의 활성 저해율 (%)
10 ㎍/㎖ 1 ㎍/㎖ 0.1 ㎍/㎖
실시예 1 65 52 15
실시예 2 60 47 27
실시예 6 82 68 43
실시예 8 74 53 35
실시예 10 90 67 54
실시예 11 65 42 31
실시예 12 63 43 15
실시예 13 65 47 32
실시예 14 59 42 16
실시예 15 85 58 20
실시예 16 55 35 20

상기 표 2에서 볼 수 있듯이, 본 발명의 화합물들은 10 ㎍/㎖의 농도에서 HCV 중합효소에 대한 활성 저해율이 최고 90%에 이르며 1 ㎍/㎖의 농도에서도 약 70% 정도의 저해율을 나타내어, HCV RNA 중합효소의 활성을 억제하는 효과가 매우 우수한 것을 확인할 수 있다.
이와 같이 본 발명의 화합물들은 HCV의 복제에 중요한 역할을 하는 HCV RNA 중합효소의 활성을 저해하는 효과가 우수하므로 이를 기전으로 HCV의 증식을 억제할 수 있으며, 따라서 C형 간염의 예방제 및 치료제로서 유용하게 사용될 수 있다. 더욱이 본 발명의 화합물들은 비핵산계 물질이므로 핵산계 물질들이 갖고 있는 독성 및 내성 바이러스의 조기 출현 등의 문제점을 해결할 수 있을 것으로 기대되며, 핵산계 물질들과 작용 기전이 상이하므로 핵산계 물질들과 병용요법제로도 사용할 수 있다.
<실험예 3> HIV 역전사 효소에 대한 생체외 활성 저해 효과
화학식 1의 화합물들이 HIV 역전사 효소의 활성을 저해하는 효과를 알아보기 위하여, 하기와 같은 생체외 실험을 실시하였다.
비방사성 역전사 효소 분석 키트 (Non-radioactive reverse transcriptase assay Kit, Boehringer Mannheim)를 사용하여 생체외 저해 활성을 측정하였다.
스트렙타비딘으로 코팅된 웰에 HIV 역전사 효소 20 ㎕ (40 ng)을 넣고, 주형-시발체 하이브리드 poly(A)·올리고(dT)15와 DIG-(디그옥시게닌)-dUTP, 바이오 틴-dUTP, TTP가 포함된 반응 혼합액 (reaction mixture) 20 ㎕를 가한 후, 여기에 최종 농도 0.1, 1 ㎍/㎖가 되도록 시험 화합물을 가하여 1시간 동안 37℃에서 반응시켰다. 이 때, HIV 역전사 효소의 작용에 의하여 RNA로부터 DNA가 만들어지며, 디그옥시게닌 (digoxigenin)과 바이오틴 (biotin)이 표지된 뉴클레오티드가 함께 포함되어 있으므로 DNA가 웰의 바닥에 코팅되어 있는 스트렙타비딘과 결합하게 된다.
반응 종료 후, 남아 있는 불순물을 제거하기 위해 각 웰 당 250 ㎕의 세척용 완충 용액 (pH 7.0)으로 30초간 5회 세척하였다. 세척 후 항-DIG-POD 항체를 200 ㎕씩 가하여 37℃에서 1시간 동안 반응시키고, 불순물 제거를 위해 다시 상기와 같은 세척용 완충 용액으로 세척하였다. 세척 후 각 웰에 POD의 기질 (substrate)인 ABTS™을 각각 200 ㎕씩 가하여 30분간 상온에서 반응시켰다. 반응 종료 후, ELISA 판독기를 이용하여 각 용액의 405 nm에서의 흡광도를 측정함으로써 HIV의 역전사 효소 활성이 저해된 정도를 정량하였다. HIV 역전사 효소 활성에 대한 저해율은 시험 화합물을 넣지 않은 대조군을 기준으로 계산하였으며, 그 결과를 하기 표 3에 나타내었다.
HIV 역전사 효소 활성에 대한 저해 효과
시험 화합물 HIV-RT 활성 저해율 (%)
1 ㎍/㎖ 0.1 ㎍/㎖
실시예 2 65 28
실시예 5 82 45
실시예 8 70 41
실시예 9 78 43
실시예 11 84 50
실시예 14 88 47
실시예 15 75 49

상기 표 3에서 볼 수 있듯이, 본 발명의 화합물들은 1 ㎍/㎖의 농도에서 HIV-RT (HIV 역전사 효소)에 대한 활성 저해율이 80% 이상이며 0.1 ㎍/㎖의 농도에서도 약 50%의 저해율을 나타내어, HIV 역전사 효소의 활성을 억제하는 효과가 우수함을 알 수 있다.
이와 같이 본 발명의 화합물들은 HIV의 복제 단계 중 역전사 단계에 중요한 역할을 하는 HIV 역전사 효소의 활성을 저해하는 효과가 우수하므로 이를 기전으로 하여 HIV의 증식을 억제할 수 있으며, 따라서 후천성 면역 결핍증의 예방제 및 치료제로 사용될 수 있다. 특히, 본 발명의 화합물들은 비핵산계 물질이므로 핵산계 물질이 갖고 있는 독성, 내성 바이러스의 조기 출현 등의 문제점을 해결할 수 있을 것으로 기대된다. 또한 핵산계 물질들은 중합효소의 활성 도메인에 작용하는 반면 본 발명의 화합물들은 알로스테릭 바인딩 포켓 (allosteric binding pocket)에 작용할 것으로 예상되므로 본 발명의 화합물들은 핵산계 물질들과의 병용요법제로도 사용될 수 있다.

<실험예 4> 세포 독성 시험
화학식 1의 화합물들이 세포 독성 (cytotoxicity)을 나타내는지 알아보기 위하여, HepG2 세포를 이용하여 일반적으로 널리 알려진 MTT 분석 방법으로 시험관 내 (in vitro) 실험을 실시하였다.
그 결과, 실험에 사용된 화합물은 모두 CC50이 100 ㎍/㎖ 이상으로서, 세포에 대한 독성이 매우 적은 물질인 것으로 판명되었다.
<실험예 5> 랫트에 대한 경구 투여 급성 독성 실험
화학식 1의 화합물의 급성 독성을 알아보기 위하여 하기와 같은 실험을 수행하였다.
6주령의 특정병원부재 (SPF) SD계 랫트를 사용하여 급성 독성 실험을 실시하였다. 군당 6 마리씩의 동물에 실시예 1∼17의 화합물을 각각 0.5% 메틸셀룰로스 용액에 현탁하여 3 g/㎏/15㎖의 용량으로 1회 경구 투여하였다. 시험 물질 투여 후 동물의 폐사 여부, 임상 증상 및 체중 변화 등을 관찰하고 혈액학적 검사와 혈액 생화학적 검사를 실시하였으며 부검하여 육안으로 복강 장기와 흉강 장기의 이상 여부를 관찰하였다. 시험 결과, 시험 물질을 투여한 모든 동물에서 특기할 만한 임상 증상은 없었고 폐사된 동물도 없었으며, 또한 체중 변화, 혈액검사, 혈액 생화학 검사, 부검 소견 등에서도 독성 변화는 관찰되지 않았다. 이상의 결과 실험된 화합물은 모두 랫트에서 3 g/㎏까지 독성 변화를 나타내지 않으며, 경구 투여 최소 치사량 (LD50)은 3 g/㎏ 이상인 안전한 물질로 판단되었다.
상기에서 살펴 본 바와 같이, 본 발명에 의한 상기 화학식 1로 표시되는 신규의 6-메틸니코틴아미드 유도체는 HBV와 HCV 및 HIV의 증식을 억제하는 효과가 뛰어나고 부작용도 적으므로 B형 간염과 C형 간염 및 후천성 면역 결핍증의 예방제 및 치료제로서 유용하게 사용될 수 있다. 특히, 본 발명의 화합물들은 비핵산계 물질이기 때문에 핵산계 물질들이 갖고 있는 독성 및 내성 바이러스의 조기 출현 등의 문제점을 해결할 수 있을 것으로 기대된다. 또한 핵산계 화합물들은 중합효소의 활성 도메인에 작용하는 반면 본 발명의 화합물들은 알로스테릭 바인딩 포켓에 작용할 것으로 예상되므로, 본 발명의 화합물들은 핵산계 화합물들과의 병용요법제로도 사용될 수 있는 장점이 있다.

Claims (6)

  1. 하기 화학식 1로 표시되는 6-메틸니코틴아미드 유도체 및 약학적으로 허용되는 그의 염.
    화학식 1
    Figure 112000007591107-pat00007
    상기 화학식 1에서,
    R1은 하이드록시기; C1∼C5인 직쇄 또는 분쇄상 알킬기; C3∼C 6인 사이클로 알킬기; C2∼C6인 디알킬아미노기; 포화 또는 불포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리; 또는
    Figure 112000007591107-pat00008
    을 나타내며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고 헤테로 고리는 치환되지 않거나 C1∼C3의 알킬기로 치환되며, m은 0 또는 1이고,
    R2는 수소 원자 또는 C1∼C4인 알킬기이고,
    또는 R1과 R2가 서로 결합하여 포화된 5원자 또는 6원자의 헤테로 고리를 형 성하며, 이때 헤테로 고리에는 N, O, S 중에서 선택되는 1∼2개의 헤테로 원자가 포함되고,
    n은 0∼4의 정수이다.
  2. 제 1 항에 있어서,
    R1은 하이드록시기, 메틸기, 이소프로필기, t-부틸기, 사이클로프로필기, 디메틸아미노기, 4-모르포리닐기, 1-피페리디닐기, 4-메틸-1-피페라지닐기, 3-피리딜기, 1-이미다졸릴기, 2-피리딜아미노기 또는 3-피리딜카르보닐아미노기이고,
    R2는 수소원자이며,
    n은 0~3의 정수인 것을 특징으로 하는 6-메틸니코틴아미드 유도체 및 약학적으로 허용되는 그의 염.
  3. 1) 2-클로로-6-메틸니코틴산 (2)과 6-아미노인다졸 (3)을 염기 존재 하에 가열반응시켜 2-(1H-6-인다졸릴아미노)-6-메틸니코틴산 (4)을 제조하는 단계 (단계 1); 및
    2) 상기 단계 1에서 제조된 중간체 (4)를 티오닐 클로라이드 (SOCl2)와 반응시켜 산염화물 상태로 활성화시킨 후, 아민 화합물 (5)과 반응시켜 화학식 1의 6- 메틸니코틴아미드 유도체를 제조하는 단계 (단계 2)로 이루어지는 제 1 항의 6-메틸니코틴아미드 유도체의 제조 방법.
    반응식 1
    Figure 112000007591107-pat00009
    상기 반응식 1에서, R1, R2 및 n은 화학식 1에서 정의한 바와 같다.
  4. 제 1항의 6-메틸니코틴아미드 유도체 또는 그의 약학적으로 허용 가능한 염을 유효 성분으로 함유하는 B형 간염 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물
  5. 제 1항의 6-메틸니코틴아미드 유도체 또는 그의 약학적으로 허용 가능한 염 을 유효성분으로 함유하는 C형 간염 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물
  6. 제 1항의 6-메틸니코틴아미드 유도체 또는 그의 약학적으로 허용 가능한 염을 유효성분으로 함유하는 후천성 면역 결핍증 치료제 또는 예방제용 약학적 조성물.
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