KR100199892B1 - 단백질에 금속 이온을 부착하기 위한 킬레이트제 - Google Patents

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라마스와미 서브라마니안
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에프.쥐.엠.헤르만스;에이.지.제이.베르미렌
악조 엔.브이.
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Abstract

단백질에 금속 이온을 부착하기 위한 킬레이트제.
본 발명은 단백질, 폴리펩타이드 및 기타 중합체에 금속이온을 부착하기 위해 유용한 새로운 시리즈의 이작용기 킬레이트제 및 그 제조방법에 관한 것이다. 이러한 킬레이트제는 각종 금속이온들에 결합하고 단백질 분자당 높은 금속 이온 농도를 산출하는 능력에 특징이 있다. 이러한 방법을 사용하여, 성상으로 분지된 리간드로 불리워지는 이러한 이작용기 킬레이트제의 중합체성 유사체들을 수득할 수도 있다. 이렇게 수득된 단백질 금속 킬레이트는 생물의학적 적용에 적합하고 유용한 방사물리성, 화학성, 형광성, 광화학성 및 상자성을 갖을 수 있다.

Description

[발명의 명칭]
단백질에 금속 이온을 부착하기 위한 킬레이트제
[발명의 상세한 설명]
본 발명은 알부민, 트랜스페린, 항체 등과 같은 단백질에 금속 이온을 부착하기 위한 새로운 킬레이트제에 관한 것이다.
[발명의 배경]
단백질에 금속 이온을 부착시키면 다수의 유용한 생성물이 제공된다. 유용한 생성물로는 생물학적 시스템에서의 생체내 (in vivo) 프로브(probe) 및 방사성면역분석(radioimmunoassays)과 같은 분석 시스템에서의 시험관내(invitro) 프로브로 사용될 수 있는 형광성, 방사성 및 상자서(paramagnetic) 금속 이온이 부착된 단백질이 있다. 예를 들어, 종양 관련 항원을 인지하는 모노클로날 항체에 방사성 핵종을 부착시키면 암의 진단 및 치료에 유용한 방사성면역접합체(radioimmunoconjugate)가 제공된다. 모노클로날 항체는 생체내의 특정 부위에 대한 소정의 물질의 담체로서 사용된다. 디에틸렌트리아민펜타아세트산(DTPA), 에틸렌-디아민테트라아세트산(EDTA) 및 거대 고리 화합물들과 같은 다수의 킬레이트제들은 단백질에 부착된 때 안정한 착화합물을 형성하는 것으로 보고되어 왔다. 그러나, 생리적 조건하에서는 방사성면역접합체 또는 킬레이트의 속도론적 불안정성으로 인해 이들 착화합물이 분해된다. 킬레이트의 구조, 결합 방식 등을 변형하기 위한 다수의시도에도 불구하고, 이와 같은 방사성면역접합체를 생체내 투여하면 비표적 조직, 특히 간에 방사능이 축적된다. 그러므로, 환자에게 투여되었을 때에 해리되지 않는 착화합물을 형성하면서 항체를 방사성 금속에 결합시킬 수 있는 새로운 킬레이트제가 절대적으로 필요하다.
[발명의 요약]
본 발명의 제1목적은 단백질에 금속 이온을 부착하기 위한 새로운 세트의 킬레이트제를 제공하여 생체내에서 안정한 항체-킬레이트 접합체를 함유하는 수용액을 제공하는데 있다.
본 발명의 제2목적은 In, Y, Gd, Tb, Cu, Co, Sm, Rh, Ru, Re, Tc, Fe, Pb, Ba, 악티늄족 원소, 란탄족 원소 및 전이금속 이온을 포함하는 각종 금속 이온을 결합하기 위한 일련의 킬레이트제를 제공하는데 있다.
본 발명의 제3목적은 모노클로날 항체를 포함한 단백질에 금속 이온을 부착하는데 유용한 새로운 킬레이트 구조체를 합성하는데 있다.
본 발명의 제4목적은 알부민 및 IgG 와 같은 저분자량 단백질뿐만 아니라 IgM(9X105), 리포단백질(2X106)등과 같은 고분자량 단백질에 결합하는데 적합한 만능의 킬레이트제를 얻는데 있다.
본 발명의 제5목적은 금속 킬레이트 접합된 항체를 제조하는 개량된 방법을 제공하는데 있다.
본 발명의 제6목적은 접합된 단백질의 생물학적 활성을 상당한 정도까지 감퇴시키지 않으면서 항체1분자당 고농도의 금속 이온을 제공하는 킬레이트 구조체를 얻는데 있다.
본 발명의 제7목적은 단백질-킬레이트 접합체에 형광성/발광성 금속 이온을 부착하여 형광성 표지된 단백질을 얻는데 있다.
본 발명의 제8목적은 중합체 및 겔과 같은 크로마토그래피 컬럼 재료에 부착되어 킬레이트 친화성 컬럼을 형성할 수 있는 금속 이온 결합체를 얻는데 있다.
이들 목적 및 다른 목적들은 본 발명의 한가지 이상의 구체예에 의해달성된다.
[도면의 간단한 설명]
본 발명의 이작용기(bifunctional) 킬레이트제가 제1도에 도시되어 있다. 제1도에서, a는 LiLo1이고, b는 LiLo2이고, c는 DICAP이고, d는 IDAC이다.
제2도는 금속-결합 킬레이트제, DICAP, IDAC 및 LiLo를 얻기위한 합성과정을 설명하고 있다.
제3도는 37에서 인산염 완충 식염수(PBS, 0.05M, pH 7.2)에서 인듐-111 표지된 HSA-LiLo1 및 HSA-DTPA의 안정성을 비교하고 있다.
제4도는 단백질-킬레이트 접합체(IgM 동위원소 사람 모노클로날 항체 16-88에 접합된 LiLo1)의 생물학적 활성도(면역 반응성)를 비접합된 단백질(16-88)의 것과 비교하고 있다.
제5도는 겔 여과 크로마토그래피에 의한 (16.88) LiLo111In의 정제를 설명하고 있다.
제6도는 예정된 수의 N[CH2COO]2결합 부위가 일련의 N의 선택에 의해 혼입될 수 있는, 성상으로 분지된(Starburst) 리간드를 설명하고 있다.
제7도는 결합 부위가 LiLo 유형의 그룹(제1도에서 예시됨)인 성상으로 분지된 LiLo 리간드를 설명하고 있다. 결합 부위의 수는 디자인에 의해 미리 선택될 수 있다.
[발명의 상세한 설명]
[바람직한 구체예의 설명]
본 발명의 한가지 구체예는 모든 금속 이온들이 킬레이트제에 의해 단백질에 결합된, 항체 또는 단백질 킬레이트 접합체를 함유한 완충용액에 관한 것이다.
항체에 방사성 금속을 결합하려면 우선 항체에 리간드가 결합되어야 한다. 리간드(킬레이트제라고도 함)는 배위 결합의 형성을 통해 방사성 금속들을 효과적으로 결합시킬 수 있는 화합물이다. 폴리아미노카르복실산, 거대고리 화합물, 크라운 에테르, 크립탄드 및 시클람과 같은 리간드는 방사성 금속들을 결합시키기 위해 사용될 수 있는 것들이다. 리간드의 선택은 관련된 방사성 핵종의 선택 및 접합되는 단백질의 성질에 좌우된다. 방사성면역영상(radioimmunoimaging) 및 치료와 관련하여 관심을 끄는 방사성핵종으로는111In,90Y,203Pb,155Sm,101Rh,97Ru,67Cu,201Tl,99mTc,55Co,186Re,188Re,212Bi 및213Bi가 있다. 상자성 금속 이온으로는 Gd 및 다른 유사한 금속이온들이 사용될 수 있다. 형광성 또는 발광성에 기초한 연구를 위해서는 Tb, Eu, Ru 및 Rh와 같은 금속 이온들이 이용될 수 있다.
단백질 및 금속이온 양쪽에 부착시키기에 적합한 리간드는 종종 이작용기 킬레이트제라고 호칭된다. 금속 결합 부분을 갖는 것외에도, 이들 화합물들은 또한 단백질에 부착되기에 유용한 반응성 작용기를 갖고 있다. 반응성 작용기는 당해분야에 공지되어 있다. 이러한 작용기의 예로는 이소티오시네이토기, 브로모아세트아미도기, 디아조기, N-히드록시숙신이미드 에스테르기 및 무수물이 있으며 이러한 작용기들은 킬레이트제 내로 혼입될 수 있다. 금속 이온들은 다수의 탄소원자 [(CH2)n] 및 다수의 다른 기들을 함유하는 연결 분자의 일부가 될 수 있다. 면역 접합체를 구성하는 동안 고려되어야 할 요인은 하기와 같다; 킬레이트제는 (1) 안정하여야 하고, (2) 금속 이온을 쉽게 결합하여야 하고, (3) 단백질의 생물학적 활성도를 유지하여야 한다. 본 발명에서 기술된 킬레이트 구조체는 이러한 조건들을 만족시킨다.
킬레이트제외에도, 본 발명은 (p)-니트로벤질 브로마이드 및 디에틸말로네이트로부터 출발하는 일련의 이작용기 킬레이트제의 합성을 포함한다. 축합된 생성물로부터, (p)NO2-Ph-CH2-CH(CH2NH2)2, (p)NO2-Ph-CH(CH2.CH2.NH2)2및와 같은 다수의 아민이 C-3에서의 (p)NO2-Ph-CH2와 함께 제조될 수 있다. 이러한 아민은 제1도에서의 금속 결합 킬레이트제 a-d를 합성할 수 있는 중요한 중간생성물이다. 또한, 이러한 화합물들은 단백질에 이들을 부착시키기 위해 사용될 수 있는 -NCS, -NH-CO-, CH2Br, 또는 -N2Br과 같은 반응성 작용기도 갖고 있다.
통상적인 킬레이트제들은 단백질과 커플링되는 때 다수의 상이한 생성물(예, 응집물)들을 제공하기 때문에 이무수물(dianhydride)과 같은 결합제들이 자주 사용된다. 이소티오시아네이트 또는 -NH-CO- CH2Br과 같은 결합제를 사용하면 이러한 문제점을 회피할 수 있다.
본 발명의 킬레이트를 제조하기 위하여 모든 반응들을 메탄올, 염화메틸렌 및 THF와 같은 비수성 용매내에서 수행되었고, 정제는 실리카겔 크로마토그래피에 의해 수행되었다. 이러한 방법에 대해 몇 개의 중요한 측면들이 있다. 동일한 순서의 반응을 사용하여, 본 발명의 발명자들은 카르복실기 및/또는 페녹실기를 함유하는 킬레이트제, 거대고리 킬레이트제, 다수의 금속 결합기를 함유하는 킬레이트제 및 구조적으로 경질 부분을 함유하는 킬레이트제를 얻었다. 이러한 킬레이트제들은 독특하고 유용한 성질들을 갖는 다양한 금속 킬레이트를 제공한다. 또한, 상기 정의된 반응 순서는 성상으로 분지된 중합체성 리간드뿐만 아니라 다수의 다른 이작용기 시약을 얻기 위해서도 이용될 수 있다.
제7도에서 도시된 바와 같이, 성상으로 분지된 중합체성 LiLo 리간드는 IDAC 및 LiLo의 중합체성 유사체(analog)이다. 이들은 카르복시 메틸 에스테르 유도체(IDAC, LiLo 등의)를 암모니아와 반응시킨 후 환원 및 카르복시메틸화시켜 얻은 분자들이다.
암모니아 반응, 환원 및 카르복시메틸화의 공정은 소정의 수의 카르복실기를 함유하는 분자가 수득될 때까지 계속될 수 있다. 암모니아 대신에, 에틸렌 디아민(NH2CH2CH2NH2), 프로필렌디아민 (NH2CH2CH2CH2NH2), 디에틸렌트리아민(NH2(CH2CH2)-NH-(CH2CH2)- NH2)등을 사용할 수도 있다. 다중 카르복실 부분들과 같이 삼차원으로 확산하는 이들의 능력 때문에, 본 발명의 발명자들은 이들을 성상으로 분지된 리간드 (starburst ligand)라 명명하였다. 이러한 방법은 예정된 시간 동안 반응 단계를 자동적으로 반복하는 펩타이드 합성장치와 유사한 장치를 사용하는 자동화 시스템, 즉 다가의 성상으로 분지된 리간드 합성 장치내에서 대규모의 킬레이트를 생산하는데 이용될 수 있다. 중합체 리간드의 정제는 겔투과, 실리카 겔, 및/또는 이온-교환 크로마토그래피에 의해 달성될 수 있다. 성상으로 분지된 리간드가 제6도에서 예시되어 있는데, 식에서 X는 COO-또는 CH2-N-Y이고, Y는 CH2-COO-또는, 소정의 수의 COO-결합부위가 n열의 N에서 이용될 수 있을 때까지의 CH2-N-Y의 반복이고, 결합에 이용될 수 있는 COO-기의 수는 2n이다.
전술한 반응 순서를 사용하여, 상이한 유형의 금속 이온들을 단백질에 부착시키기 위해 유용한 일련의 킬레이트제(예,111In/90Y에 대한 LiLo,99mTc에 대한 IDAC 및 Gd, Tb, Eu 및 방사성 금속에 대한 성상으로 분지된 중합체)를 수득할 수 있다.
폴리아민의 카르복시메틸화 대신에, DTPA(LiLo1의 합성에 사용된 0방법을 사용함)와 함께 폴리아민을 축합하여 다수의N(CH2COO)2 CH2 CH2 N(CH2COO)CH2 CH2 N(CH2COO)CONH- 기들을 함유하는 성상으로 분지된 LiLo 중합체성 리간드를 수득할 수 있다. 이러한 리간드의 한가지 실시예가 제7도에 도시되어 있다. 제7도에서, Z는N(CH2COO)2 CH2 CH2 N(CH2COO)CH2 CH2 N(CH2COO)CONH- 또는 -N(CH2 CH2A)2(식에서, A는 상기 Z와 동일하거나 또는 소정의 수의 COO-결합부위가 n열의 N에서 이용될 수 있을 때 까지의 -N(CH2 CH2A)2의 반복이며, 결합에 이용될 수 있는 COO-기의 수는 2(n+1)임)이다.
이러한 킬레이트제들은 간단한 수단에 의해 단백질에 커플링 될 수 있다. 한가지 공정은 37에서 1 내지 3 시간동안 pH 6-9하에 적당한 완층액내에 단백질과 킬레이트제를 배양하고, 형성된 단백질-킬레이트 접합체를 겔 여과 크로마토그래피에 의해 정제하는 것이다. 본 발명의 발명자들은 이러한 킬레이트제를 사람 혈청 알부민에 커플링시켰고, 생성되는 킬레이트 접합된 알부민은 매우 높은 효율(95% 이상)로55Co와 같은 금속들에 결합한다. 단백질들은 모노클로날 항체 또는 폴리클로날 항체, 또는 트랜스페린, 알부민 및 그 유도체와 같은 다른 단백질일 수 있다. 최대면역 반응성을 얻기 위하여 결합제들을 개질할 수도 있다. 금속 이온은 전이 금속 이온, 상자성, 방사성 및 형광성/발광성 금속이온, 란탄족 원소, 악티늄족 원소일 수 있다. 이들의 예로는 Gd, Tb, Eu, Ru, Rh, Pd, Pb, Sm, Tb, Ga, In, Tl, Fe, Co, Ni, Re, Y, Tc,Cr, Os, Ir, Sb 및 Cu가 있으며, 이에 한정되는 것은 아니다. 금속 이온을 부착하기 위한 공정은 0.5 내지 6시간동안 20 내지 37의 온도에서 또는 24시간동안 4에서, pH 5-9하에 금속염 용액과 함께 면역 접합체를 배양시킨 후 겔 여과 크로마토그래피시키는 것을 포함한다.
만일 관련된 금속 이온이 방사성이 아닌 경우, 금속-킬레이트 접합체를 우선 제조 및 정제한 후 단백질에 부착하여 금속-킬레이트-단백질 접합체를 얻을 수 있다. LiLo 및 다른 고유사체의 경우에, 폴리아미노카르복실레이트의존재 때문에 높은 금속 이온 농도를 용이하게 얻을 수 있다. 방사성 면역 치료 및 자기 공명 영상(MRI)에 있어서 종종 환자내의 암에 흡수된 항체가 0.005% I.D/g미만이므로 이것은 제일 중요하다.
제1도에서의모든 킬레이트제 a-d는 방사성 금속 및 다른 금속 이온들에 결합되고, 모노클로날 항체와 같은 단백질에 부착될 수 있는 폴리아미노카르복실레이트이다. 킬레이트제의 선택은 하기에 좌우된다.
a. 적용도( 또는 최종 용도)
b. 금속 이온의 본성
c. 단백질(생물학적 성질)
예를 들어, LiLo1 및 IDAC를 HSA에 부착시키고 인듐-111로서 표지하고, 방사성면역접합체의 분해 속도를 37에서 DTPA 추적기법에 의해 측정하는 경우, HSA-LiLo1-111In은 하루 1% 미만의 속도로111In을 손실하지만, HSA-IDAC-In111은 하루 약 20% 정도의 속도로111In을 손실한다. 유사한 실험 조건하에서, HSA-DTPA-111In은 하루 10%의 속도로111In을 손실한다. 이러한 결과들은 LiLo1가 IDAC 및 DTPA에 비해 인듐에 대해 더 양호한 킬레이트제일 수 있다는 것을 보여준다. 그렇지만, 이러한 경우에 있어서는 짧은 기간의 안정성이 더 중요하므로, IDAC는99mTc 및55Co(반감기 약 6시간)와 같은 단기간 동위원소용으로 사용될 수 있다.
성상으로 분지된 중합체성 LiLo 리간드는 치료, 생체내 진단(형광성 금속 이온), MRI 대조제 등과 같이 고밀도 금속 이온이 요구되는 경우에 사용될 것이다. 성상으로 분지된 리간드를 사용하는 중요한 장점은 다수의 금속 이온들에 결합하는 이들의 능력이다.
만일 존재한다면, 정제된 접합체내의 비결합 금속 이온들의 존재는 박막 크로마토그래피(상행전개법), NMR, IR 또는 가시부 또는 형광 분광 분석과 같은 표준 분석법을 사용하여 측정할 수 있다.
[실시예 1]
접합 및 안정성 연구
안정성 연구를 위하여, 37에서 2시간 동안 HSA(30/, 0.05M PBS 용액, pH7.2)를 LiLo 또는 IDAC(HSA : LiLo/IDAC 몰비 1:10)와 반응시켜서 HSA-IDAC 또는 HSA-LiLo 접합체를 제조했다. 비결합 킬레이트를 겔 여과 크로마토그래피(G-50 Sephadex, Pharmacia)로 제거했다. 접합체(HSA-LiLo, HSA-IDAC)를 수집하고 단백질의 농도를 280nm에서 흡수하여 측정했다. PBS 완충액(0.05M,pH7.2)내의 HSA에 DTPA 이수물을 부가하고 실온에서 15분동안 배양하여 HSA-DTPA를 제조했다. 비결합 킬레이트를 전술한 겔 여과 크로마토그래피로 제거했다.
접합체를 완충액 (0.05M 시트레이트/0.5M 아세테이트, pH 5.5)내의 In-111로표지하고, DTPA를 부가하여 미결합 인듐-111을 결합시키고, 표지된 접합체를 G-50 또는 G-25 겔 여과 크로마토그래피로 정제했다. 면역 접합체의 순도를 Gelman ITLC-SG 크로마토그래피 페이퍼를 사용하여 PBS 완충용액중의 ITLC에 의해 측정했다.
37에서 0.05M PBS 완충액 (pH 7.2)중에서 안정성 연구를 수행했다. 주기적인 간격으로 일정량의용액을 제거하고 과량의 DTPA 용액으로처리하여 해리된111In을 킬레이트했다. PBS 완충액(0.05M, pH 7.2)내에서 ITLC-SG 스트립(Gelman Sciences)을 사용하여 박막 크로마토그래피 분석을 수행하고, ITLC 스트립을 두 조각으로 절단한 후 인듐(111)의 활성도를 감마 카운터(gammacounter)를 사용하여 측정했다.
111In-HSA-LiLo 및111In-HSA-DTPA에 의해 수득된 결과들이 제3도에 도시되어 있다.
또한, 킬레이트제 LiLo 및 IDAC를 사람 모노클로날 항체 16.88에 접합시켰다. 사람 모노클노날 항체 16.88은 엡스타인-바아(Epstain-Barr)핵항원을 발현시키는, 결장암 환자의 말초 혈 림프구로부터 수득된, 자연발생적으로 형질전환된 사람 림프아구 세포주(lymphoblastoid Cell line)에 의해 생산된 IgM 아이소타이프(isotype)이다. 방사성 금속의 IgM 모노클로날에의 부착은 IgG 또는 다른 단백질과 비교할 때 어려운 것으로 보고되어 왔다. DTPA 무수물과 같은 통상적인 킬레이트제는 항체의 응집을 유도한다. 또한 방사성 표지된 MoAb의 회수율은 낮다. 방사성 표지된 16.88-LiLo 및 16.88-IDAC의 경우에서는 이와 같이 낮은 회수율은 관찰되지 않는다.
IDAC 및 LiLo와 같은 새로운 킬레이트제를 16.88에 접합시켰다. 경쟁적 결합분석에 의하여, 비접합된 16.88과 비교하여 이들 접합체의면역 활성을 측정했다. 이러한 분석에서 항원을 마이크로티터 판(microtiter plate)상에 피복시키고 방사성 요오드로 표지된 16.88로 처리했다. 그후에 미접합된 16.88 또는 16.88-LiLo 및 16.88-IDAC로서 완료시켰다. 이러한 분석에 의해 얻어진 결과들은 16.88-LiLo 및 16.88-IDAC 양쪽 모두가 비접합된 16.88 만큼이나 면역 반응성이 있었다는 것을 보여준다. 16.88로서 얻어진 결과들은 제4도에서 도시되어 있다.
MoAb 당 킬레이트의 수를 당해 분야의 공지 방법에 따라 측정했다.일반적으로, 이러한 방법은111InCl3를 함유하는 기지량의 InCl3를 면역접합체에 부가한 후 그 혼합물을 실온(23-27)에서 30분간 0.05M 시트레이트/0.5M 아세테이트 완충액(pH 5.5)내에 배양하는 것이다. 그 후에, 과량의 DTPA 용액을 부가하여 비결합 인듐을 킬레이트화 했다. 5분후, 일정량의 혼합물을 TLC(박막 크로마토그래피)상에 반점찍었다. 용출 혼합물로서 10% 아세트산암모늄(수성) 및 메탄올(1:1부피)을 사용하여 크로마토그래피를 수행했다.111In 표지된 단백질은 원점에 머무르지만 In-DTPA는 이동한다(Rf=0.75), 반응 혼합물에서 취한 단백질 및 인듐의 농도를 알고 있으므로, TLC의 각종 부분을 절단하고 계산하여, 단백질당 킬레이트의 수를 측정할 수 있다. 일반적으로 이 비율은 1 내지 5이다.
또한, 이러한 접합체들의 면역 반응성을 하기 문헌 [Lindmo, T외 다수, J.Immunol. Meth, 72(1), 77-79(1984)]에 제시된 바와 같은 직접 세포 결합 분석법에 의해 측정했다. 이러한 분석에 있어서 16.88-킬레이트 접합체를111In으로 표지한 후 겔 여과 크로마토그래피에 의해 정제했다. 제5도는 겔 여과(Sephadex, G-25) 크로마토그래피에 의한 (16.88) LiLo111In의 정제를 설명하고 있다. 첫번째 피이크(분획 #3-#6, 0.9/분회)는 방사성 면역접합체를 함유한다. PBS 완충액 (0.05M, pH7.2)을 용출제로서 사용했다. 표지된 접합체를 WiDr 세포주 또는 항원과 함께 배양하고, 세포 또는 항원에 결합된 활성 %를 측정했다. 16.88-LiLo-111In 및 16.88-IDAC-111In 양쪽 모두의 경우에 있어서, 면역 반응성은 95% 이상이었다.
이 결과들은 킬레이트제 IDAC 및 LiLo가 면역성을 손실시키지 않고 사람 모노클로날 항체 16.88에111In을 부착하기 위해 사용될 수 있다는 것을 확인시켜 준다.
HSA-킬레이트제 접합체의 경우에서 관찰된 바와 같이, 생리적 조건하의 16.88-IDAC-111In(하루 10% 이상)에 비해 16.88-LiLo-111In은 PBS 완충용액(하루 1%미만)내에서 훨씬 더 안정했다. 그렇지만99mTc와 같은 단기간 동위원소에 대하여, 16.88-IDAC는 양호한 후보물질일 수 있다. 인듐과 유사한 성질들을 갖는111In 및90Y에 대하여 16.88-LiLo는 생체내 적용을 위한 양호한 접합체일 것이다.
[실시예 2]
DICAP의 합성 :
LiLo, DICAP 및 IDAC의 합성은 제2도에 기술되어 있다. p-니트로벤질 브로마이드를 디에틸 말로네이트와 축합시켜, 디올로 환원되는 p-니트로벤질 디에틸말로네이트를 수득호가, 디니트릴로 전환시킨 후 트리아민으로 전환시켰다. 카르복시메틸화시킨 후 환원시키고 CSCl2및 CF3COOH로 처리하여 DICAP를 얻었다.
p-니트로 벤질 디에틸말로네이트 디아민으로 직접 환원시키고 DTPA와 축합시켜 LiLo1을 수득했다. 이러한 축합은 세가지의 상이한 방식으로 수행되었다.
1. 디아민과 DTPA 메틸 에스테르 사이의 축합
2. 디아민과 DTPA 고리형 무수물 사이의 커플링
3. 혼합된 무수물 방법에 의한 디아민과 DTPA 사이의 반응,
경로 2 및 3의 본 발명의 실험에 있어서, 수득된 생성물을 메틸 에스테르로 전환시키고, 실리카겔 크로마토그래피로 정제하고 LiLo1으로 전환시켰다. 디니트릴(III)을 디아민으로 환원시킨 후, 카르복시메틸화하고 활성탄소상의 팔라듐의 존재하에 수소로 환원시키고 CSCl2및 트리플루오르아세트산으로 처리하여 LiLo2를 얻었다.
디아민을 카르복시메틸화한 후 환원시키고 CSCl2및 CF3COOH로 처리하여 IDAC를 얻는다.
합성의 세부사항들은 하기와 같다 :
A. 2(4-니트로벤질)디에틸말로네이트(I):
6.9g(0.3M)의 나트륨 금속을 질소 대기하에 300의 무수 에탄올의 교반 용액에 점차적으로 부가했다. 모든 금속율 용해시킨 후 96g(0.6M)의 디에틸말로네이트를 상기 용액에 서서히 적가했다. 그후에 65g(0.3M)의 4-니트로벤질브로마이드를 한시간에 걸쳐서 조금씩 부가했다. 상기 용액을 가열하여 24시간 동안 환류시키고, 침전된 부산물을 여과 제거했다. 용액을 증발시키고 결정화된 생성물을 여과하고 에탄올로 세척했다. 수득량 34.9g(40%), m.p. 60, Ir 1736 -1, 1524 -1, 1346 -1, 1151 -1, 852 -1, KBr 펠리트. NMR, CDCl3, 8.14d, 2H; 7.37d, 4.15, 9, 4H; 3.64, t 1H; 3.30, d,2H; 1.22, t, 6H.
B. 2-(4-니트로벤질)-1,3-프로판디올(II);
11.3g(0.038M)의 (I)을 20의무수 THF에 용해시키고 4에서 질소 대기하에 190의 1M BH-THF 교반용액에 주입시켰다. 상기 용액을 서서히 가열하여 18시간 동안 환류시켰다. 그후에, 상기 용액을 실온으로 냉각시키고 메탄올을 소량 부가하여 과량의 BH3착화합물을 팍칭시켰다. 상기 용액을 회전 증발시켰다. 실리카겔 크로마토그래피로 더 정제했다. 수득량은 6.3g(78%)이었다. m.p. 85. IR(KBr 펠리트) 3260 -1, 1539 -1, 1351 -1, 1030 -1, NMR 3.73ppm, d, 4H; 2.78ppm, d, 2H, 2.35ppm, s, 2H; 2.03ppm, s, 1H.
C. 3-(4-니트로벤질)1,5-펜탄디니트릴(III);
6.9(0.036M)의 p-톨루엔술포닐클로라이드(토실)를 10의건조 피리딘에 용해시키고 4까지 냉각시켰다. 2.5g(0.012M)의 (II)를 5의 건조 피리딘내로 희석시키고 냉각시키면서 교반 토실 용액에 서서히 부가했다. 상기 용액을 4에서 15분간 교반시키고, 실온으로 가온한 후 3시간 동안 교반시켰다. 4에서 교반하면서 상기 용액을 100의 30% HC1내로 서서히 주입하여 반응을 팍칭했다. 생성물을 CH2Cl2로 추출하고, 증발시킨 후 에탄올내에서 결정화시켜서 토실 유도체를 생성시켰다. m.p 85-89, IR(KBr 펠리트)1524 -1, 1352 -1, 1194 -1, 1176 -1.
3.1g의 KCN을 4에서 30의무수 에탄올의 교반 용액내의 현탁시켰다. 상기 토실 유도체를 CH2Cl2EtOH의 1:1 혼합물에 용해시킨 후 KCN 혼합물에 부가했다. 상기 용액을 서서히 가열하여 24시간 동안 환류시켰다. 그후에 상기 용액을 회전증발시키고, CH2Cl2로 추출한 후 여과 및 증발시켰다. 그 오일을 실리카겔 컬럼상에서 정제하여 오렌지새 오일(III)로서 분리시켰다. 수득량 1.9g(70%), IR(NaCl 판) 2248 -1, NMR 2.96ppm, s, 2H; 2.5ppm, s, 4H; 2.13ppm,m,1h.
D. (4-니트로벤질)글루타르이미딘(IV):
2.2g(0.0096M)의 (III)을 100의 건조 메탄올 용해시켰다. 용액을 통해 암모니아 기체를 버블링시켜서 포화시켰다. 상기 용액을 압력 반응기(bamb)에 부가하여, 밀봉시킨후 80 내지 100psi의 압력에서 15시간 동안 가열했다. 그 봄(bomb)을 상온으로냉각시키고, 그 반응 혼합물을 제거한 후 용매를 증발시켜 진한 어두운 색 오일을 수득했다. IR(NaCl 판) 1666 -1,
상기 생성물을 25의무수 THF(테트라히드로푸란)에 용해시키고, 4에서 질소 대기하에 75의 1M BH3'THF(보란 테트라 히드로푸란)용액에 부가했다. 상기 용액을 실온으로 가온하고 25에서 4일간 교반시켰다. 그후에, 메탄올에 의해 반응을 팍칭하고 증발시켜 용액을 농축시켰다. 그 오일을 CH2Cl2에 용해시키고 HCl 기체를 용액을 통해 버블링시켜서 생성물을 침전시켰다. IR(KBr 펠리트) 1604 -1, 3418 -1, 그 생성물은 1차 아민의 존재를 보여주는 플루오르에스카민 양성이었다. 또한, 2차 아민에 대한 양성 테스트를 얻었다.
E. 2,6-디아미노-4-(4-니트로벤질)-1-아자시클로헥실-N,N',N',N,N-펜타아세트산 3차-부틸 에스테르(V):
54의 (IV)를 3의건조 메탄올내에 용해시켰다. 트리에틸아민을 부가한 후, 250의 3차-부틸 브로모아세테이트를 부가했다. 상기 용액을 건조 상태까지 증발시킨 후 CH2Cl2및 메탄올 함량에서의 구배 증가를 갖는 실리카게 컬럼상에서 정제했다. 수득율 25%, NMR은 4:44.2(계산치 4:45)의 벤질 H 대 t-부틸 H의 비를 보여주었으며; 3차-부틸 H는 1.47ppm 이었고, 3개의 에스테르들의 비는 2:2:1 이었고; 카르복시메틸의 H는 3.40ppm 이었고, 9.6H'S(이론치 10)였다.
F. DICAP(VI);
15의 (v)를 5의 메탄올에 용해시키고 4가지 냉각시켰다. 촉매량의 10% 팔라듐-탄소를 교반시키면서 부가했다. 그후에 H2기체를 4에서 교반반응 혼합물을 통해 버블링시켰다. 10분후에 이 용액을 25가지 가온하고 차후의 12시간 동안 수소를 계속하여 부기시켰다. 그후에 상기 용액을 여과하여 촉매를 제거했다. 생성물을 플루오르에스카민 분석에 의하여 1차 아민에 대하여 양성 테스트했다.
상기의 용액을 0.1의 티오포스겐을 서서히 부가시키면서(5시간) 25에서 교반시켰다. 그후에 상기 용액을 증발시켜 오렌지색 점착성 필름을 수득했다. IR(KBr 펠리트)은 2106 -1에서 NCS 피이크를 나타냈다. 3차 부틸 에스테르를 가수분해하고 건조 상태까지 증발시켰다.
[실시예 3]
LiLo1의 합성 :
A. 3-(4-니트로벤질)디아미도말로네이트(VII);
4.3g의 (I)을 150의 메탄올에 용해시키고, 4가지 냉각하고, 암모니아를 포화점가지 용액을 통해 버블링시켰다. 상기 용액을 마개달린 병에 넣고 4에서 48시간 동안 유지시켰다. 침전된 생성물을 여과하고 메탄올로 세척했다. IR(KBr 펠리트)3441 -1, 3392 -1, 1678 -1, 1657 -1.
B. 2-(4-니트로벤질)1,3-디아미노프로판(VIII) : 이염산염
2.0g의 (VII)를 THF(테트라히드로푸란)(20)내에 현탁시키고 4에서 60의 1M BH3, THF 교반 용액에 부가했다. 상기 용액을 서서히 가열하여 15시간 동안 환류시켰다. 상기 용액을 메탄올로 팍칭하고 HCl을 외부 냉각이 없이 버블링 통과시켜서 생성물을 황색 오일로서 분리했다. 고체를 여과하고 메탄올로 세척했다. 수득량 2.17g(91%), IR(KBr 펠리트)2934 -1, 1600 -1, 1514 -1, 1353 -1.
C. 니트로 LiLo 메틸에스테르(IX) :
300의 (VIII) 및 3.3g의 DTPA 펜타메틸 에스테르를 10의 건조 메탄올내에 용해시키고 가열하여 7일간 환류시켰다. 상기 반응 혼합물을 증발시키고 실리카겔 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제했다. 상기 생성물은 플루오르에스카민 음성이었다. 수득율 17.5%, IR(KBr 펠리트)1741 -1, 1654 -1, 1348 -1, 1204 -1.
D. ICN-LiLo-메틸 에스테르(X) :
니트로기를 아미노기로 전환시킨 후, 전술한 DICAP의 공정에 의해 이소티오시아네이토기로 전환시켰다.
LiLo1의 합성 :
또한, 혼합 무수물 방법에 의해 LiLo-메틸에스테르(IX)를 수득했다.
1.0g(0.0025M)의 DTPA를 N2대기하에 2의 트리에틸아민과 함께 30의 CH2Cl2내에 현탁시켰다. 상기 용액을 25에서 24시간 동안 교반한 후 얼음/염 배스내에서 약 10까지 냉각시켰다.
상기 용액에 250(0.0025M)의 DXLF 클로로포르메이트를 적가했다. 상기 용액을 25분간 교반시키고, 367(0.00125M)의 (VIII)을 0.5의 트리에틸아민과 함께 5의 CH2Cl2내에 용해시키고 -5까지 냉각시켰다. 이것을 강하게 교반시키면서 혼합무수물 용액에 적가했다. 상기 용액을 2시간동안 0이하의 온도에서 유지시킨 후, 실온까지 서서히 가온하고 하룻밤동안 교반했다. 그후에 상기 용액을 증발시키고 그 잔류물을 건조 CH3OH(50)에 용해시키고, 4의 염화티오닐을 N2대기하에서 적가했다. 상기 용액을 가열하여 5시간 동안 환류시켰다. 휘발성 물질을 증발시킨 후, 그 잔류물을 실리카겔 컬럼상에서 정제했다(CH3OH 구배를 갖는 CH2Cl2).
IR(KBr 펠리트)1742 -1, 1664 -1, 1520 -1, 1347 -1, 1207 -1, IDAC-NO2(XI)의 합성 :
500(0.00177M)의 (VIII)을 10의 CH3OH 및 2의 트리에틸아민내에 용해시켰다. 2.0의 t-부틸브로모아세테이트를 부가했다. 상기 용액을 마개달린 병에 보관하고 25에서 7일간 반응시키는데, 트리에틸아민으로 염기성을 유지시켰다. 상기 용액을 증발시키고 그 잔류물을 실리카 컬럼 상에서 정제시켰다(CH2Cl2, CH3OH 구배). 그 생성물은 담황색의 오일(818, 69%)이었다. IR(KBr 펠리트)1736 -1, 1522 -1, 1368 -1, 1345 -1, 1149 -1IDAC-ICN(XII)를 DIDAP-ICN을 제조하기 위해 사용한 단계와 유사한 단계에 의해 제조했다.
[실시예 4]
또한, LiLo1을 DTPA 이무수물을 사용하여 다른 방법으로 제조했다. 20의 (VIII)를 10의 물에 용해시켰다. 105의 DTPA 이무수물을 부가하고 용해돌때까지 그 용액을 진탕시켰다. 이것을 5일간 4에서 유지시킨 후 즉시 환원시켰다. 촉매량의 10% Pd/c를 부가하고, 수소를 실온에서 6시간 동안 용액을 버블링시킨 후, 수소 대기하에 하룻밤동안 교반시켰다. 상기 용액을 여고하고, 티오포스겐을 사용하여 이소티오시아네이트로 전환시키고, 과량의 티오포스겐을 에테르로 추출했다. IR 스팩트럼은 이소티오시아네이트의 특징인 2126 -1에서 피이크를 나타냈다.
[실시예 5]
또한, DICAP(VI)를 다른 방법으로 제조했다. 200의 (IV)를 1N NaOH 용액의 부가와 함께 1의 물에 용해시켜서 염기성이 되게했다. 680의 브로모아세트산(pH 8이상)을 점차적으로 부가하고, 그 용액을 37에서 3일간 유지시켰다. 상기 용액은 플루오르에스카민 분석에 대하여 음성이었다. 상기 용액을 농축하고 1M 내지 7M 포름산의 구배 용출을 사용하여 AGlx8 음이온 교환 컬럼상에서 정제하였다. 분획(3)들을 동결 건조시켰다. DICAP는 분획 271-304로부터 용출시켰다. IR(KBr 펠리트)3424 -1, 2934 -1, 1736 -1, 1233 -1, 1063 -1.
이 실시예들은 설명하기 위해 제시된 것으로서 본 발명을 제한하는 것은 아니다. 또한, 전술한 단백질, 항체, 방사성 핵종 및 금속들은 실시예로서만 제시된 것이다. 본 발명은 모든 종류의 펩타이드, 단백질 또는 중합체와 모든 종류의 방사성 핵종 또는 금속들과의 접합을 특허청구 범위내에 포함한다.

Claims (20)

  1. 하기 일반식의 킬레이트제 LiLo:
    상기식에서, n은 1 또는 2이다.
  2. 제1항의 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  3. 제1항의 킬레이트제에 결합된 금속을 포함하는 착화합물.
  4. 제1항의 킬레이트제에 결합된 폴리펩타이드를 포함하는 착화합물.
  5. 제4항에 있어서, 폴리펩타이드가 항체인 착화합물.
  6. 제4항에 있어서, 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  7. 하기 일반식의 성상으로 분지된 리간드 킬레이트제:
    상기 식에서, R=NCS,NHCOCH2Br 또는 N2Br, X는 COO-및 CH2-N-Y로 이루어진 그룹에서 선택되고, Y는 CH2-COO-, 또는 소정의 수의 COO-결합부 위가 n열의 N에서 이용될 수 있을 때까지의 CH2-N-Y의 반복이고, N의 열은 n이고, N의 최종열에서 N의 수는 2(n-1)이고, 결합을 위한 COO-의 수는 2n이다.
  8. 제7항의 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  9. 제7항의 킬레이트제에 결합된 금속을 포함하는 착화합물.
  10. 제7항의 킬레이트제에 결합된 폴리펩타이드를 포함하는 착화합물.
  11. 제10항에 있어서, 폴리펩타이드가 항체인 착화합물.
  12. 제10항에 있어서, 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  13. 제7항에 있어서, n이 5이고, 결합을 위한 COO-의 수가 32인, 성상으로 분지된 리간드 킬레이트제.
  14. 하기 일반식의 성상으로 분지된 LiLo 리간드 :
    상기 식에서, R=NCS, NHCOCH2Br 또는 N2Br
    Z는및로 이루어진 그룹에서 선택된 것이고, A는또는 소정의 수의 COO-결합 부위가 n열의 N에서 이용될수 있을때까지의의 반복이고, 결합을 위한 COO-의 수는 2(M+1)이다.
  15. 제14항의 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  16. 제14항의 킬레이트제에 결합된 금속을 포함하는 착화합물.
  17. 제14항의 킬레이트제에 결합된 폴리펩타이드를 포함하는 착화합물.
  18. 제17항에 있어서, 폴리펩타이드가 항체인 착화합물.
  19. 제17항에 있어서, 킬레이트제에 결합된 방사성핵종을 포함하는 착화합물.
  20. 제14항에 있어서, n이 5이고, 결합을 위한 COO-의 수가 64인 성상으로 분지된 LiLo 리간드.
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