JPWO2019172210A1

JPWO2019172210A1 - がん特異的酵素活性を利用したプロドラッグ型抗がん剤

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Publication number: JPWO2019172210A1
Application number: JP2020505030A
Authority: JP
Inventors: 泰照浦野; 真子神谷; 林　健人; 健人林
Original assignee: University of Tokyo NUC
Current assignee: University of Tokyo NUC
Priority date: 2018-03-03
Filing date: 2019-03-04
Publication date: 2021-02-25
Anticipated expiration: 2039-03-04
Also published as: AU2019231422B2; CA3093110A1; EP3763699A4; CN111801315A; JP7442192B2; US20200399305A1; AU2019231422B9; AU2019231422A1; WO2019172210A1; EP3763699A1; US11655269B2

Abstract

【解決課題】プロドラッグ型抗がん剤として有望な新規化合物を提供すること。【解決手段】以下の一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩。

Description

本発明は、プロドラッグ型抗がん剤として有望な新規化合物、及び当該化合物を用いたプロドラッグ型抗がん剤、医薬組成物に関わる。

依然としてがん治療の重要な役割を担っているがん化学療法では、抗がん剤自体の組織・細胞・標的選択制が決して満足いくものではないため、薬効発現と同時に重篤な副作用を発現してしまうリスクが常に伴う。

これら抗がん剤をがん細胞で特異的に放出する手法の一つにプロドラッグ化が知られている。プロドラッグ化は、がん細胞内の酵素反応や化学反応により初めて活性体（抗がん剤）に変化するような構造修飾を薬剤に施すアプローチである。一方で、がん細胞特異的に亢進している酵素を同定することは難しく、複雑な構造を有した既存の抗がん剤に対する構造修飾が容易ではないことなどが問題として挙げられる。

本発明は、プロドラッグ型抗がん剤として有望な新規化合物を提供することを目的とする。

本発明者らの研究室では、疾患部位に特徴的な代謝反応特性を網羅的かつ非侵襲的に新鮮臨床検体上で評価可能な探索基盤技術を確立することを目指した研究を行っており、本発明者らは、これまでにヒト臨床検体から直接得られた疾患部位の代謝反応性に関する有用な情報を活用することで、プロドラッグ的アプローチによる特異性の高い治療薬の開発を効率的に行うことが可能ではないかと考えた。

また、本発明者らの研究グループでは、キノンメチド・ケミストリー（quinone methide chemistry）をベースとするアイディアに基づき、酵素反応によって蛍光を発すると共に細胞内チオール類へとタグ化されることで細胞から漏出しなくなる性質を持つＳＰｉＤＥＲプローブを開発した（図１）。
ここで、本発明者らが本プローブの生細胞適用実験を行っている際に、プローブを高濃度で用いると顕著な細胞毒性が見られることが明らかとなった。毒性のメカニズムは明らかとなっていないが、細胞内グルタチオンといったチオール類が酵素反応に伴って生成するキノンメチド中間体によって消費され、細胞に酸化ストレスが与えられたためと考えている。

そこで、本発明者らは、上記のような現象を利用し、がん細胞特異的な酵素活性によって細胞選択的に強い傷害を与えることが可能ではないかと着想し、新規プロドラッグ型抗がん剤の開発を行った結果、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は、
［１］以下の一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩。
（式中、
Ｘは、フッ素原子、エステル基（−ＯＣ（＝Ｏ）−Ｒ’）、カーボネート基（−ＯＣＯ_２−Ｒ’）、カーバメート基（−ＯＣＯＮＨ−Ｒ’）、リン酸およびそのエステル基（−ＯＰ（＝Ｏ）（−ＯＲ’）（―ＯＲ’’）、及び硫酸およびそのエステル基（―ＯＳＯ_２―ＯＲ’）からなる群から選択され、
ここで、Ｒ’、Ｒ’’は、各々独立に、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基から選択され；
Ｙは、−ＮＨ−ＣＯ−Ｌ、−ＮＨ−Ｌ’又は−ＯＬ’であり、
ここで、Ｌは、アミノ酸の部分構造であり、
Ｌ’は、糖類又は糖類の部分構造、自己開裂型のリンカーを有する糖類、自己開裂型のリンカーを有するアミノ酸類又はペプチドであり；
Ｒ^１及びＲ^２は、各々独立に、水素原子又は一価の置換基から選択され；
Ｒ^３は、水素原子、又はベンゼン環上に存在する１〜４個の同一又は異なる一価の置換基を示す。）
［２］Ｌのアミノ酸の部分構造は、それが結合しているＣ＝Ｏと一緒になって、アミノ酸、アミノ酸残基、ペプチド、アミノ酸の一部を構成している、［１］に記載の化合物又はその塩。
［３］Ｌ’の糖類の部分構造は、それが結合しているＯと一緒になって、糖類、糖類の一部を構成している、［１］に記載の化合物又はその塩。
［４］一般式（Ｉ）中の−Ｙが、−Ｃ（Ｒ^１）（Ｒ^２）Ｘに対してベンゼン環のオルト位又はパラ位上で結合している、［１］〜［３］のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
［５］Ｙが、以下から選択される構造を有する、［１］〜［４］のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
［６］Ｘは、フッ素原子又はエステル基（−ＯＣＯ−Ｒ’）である、［１］〜［５］のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
［７］Ｒ^１及びＲ^２は、各々独立に、水素原子又はフッ素原子から選択される、［１］〜［６］のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
［８］Ｒ^３の一価の置換基が、アルキル基、アルコキシカルボニル基、ニトロ基、アミノ基、水酸基、アルキルアミノ基（−ＮＨＲ’、−ＮＨＣＯＲ’）、アルコキシ基（−ＯＲ’、−ＯＣＯＲ’）、ハロゲン原子、ボリル基、シアノ基からなる群から選択される（Ｒ’は、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基である）、［１］〜［７］のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
［９］Ｒ^３の一価の置換基が、アルキル基（例えば、メチル基）又はアルコキシカルボニル基（例えば、メトキシカルボニル基）である、［８］に記載の化合物又はその塩。
［１０］［１］〜［９］のいずれか１項に記載の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、プロドラッグ型抗がん剤。
［１１］［１］〜［９］のいずれか１項に記載の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、がん細胞特異的な酵素活性により細胞選択的に作用するプロドラッグ型抗がん剤。
［１２］前記酵素が、ペプチダーゼ又はグリコシダーゼである、［１１］に記載のプロドラッグ型抗がん剤。
を提供するものである。

本発明により、プロドラッグ型抗がん剤として有望な新規化合物を提供することができる。

ＳＰｉＤＥＲβ−Ｇａｌプローブの蛍光発光の模式図。本発明の新規プロドラッグ型抗がん剤の発現機構の模式図。キノンメチド放出型プロドラッグ化合物の構造。化合物１、２、３を、夫々、β−Ｇａｌ、ＤＰＰ−ＩＶ、ＧＧＴとｉｎｖｉｔｒｏ反応させた生成物のＬＣ−ＭＳ分析結果を示す。化合物１のＣＣＫ−８アッセイの試験結果。化合物２のＣＣＫ−８アッセイの試験結果。化合物３のＣＣＫ−８アッセイの試験結果。化合物３を用いたＳＨＩＮ３細胞での細胞死観察に関する検討結果。化合物３を用いた共培養条件下での細胞死観察に関する検討結果。化合物３を用いたＳＨＩＮ３細胞及びＨ２２６細胞における細胞増殖のフローサイトメトリー分析の結果を示す。実施例で合成したアシル系脱離基を有する誘導体の構造式。ベンジル位脱離基変換誘導体を用いた酵素認識能を確認した結果。ベンジル位脱離基変換誘導体についてのＣＣＫ−８アッセイの結果。実施例で合成した４位置換誘導体のＣＣＫ−８アッセイの結果。実施例で合成した５位置換誘導体のＣＣＫ−８アッセイの結果。腹膜播種モデルマウスに対するｇＧｌｕ−ＦＭＡ投与試験概要。腸間膜上の腫瘍イメージング結果（上段：ＰＢＳ投与マウス、下段：ｇＧｌｕ−ＦＭＡ投与マウス）。

本明細書中において、「ハロゲン原子」とは、フッ素原子、塩素原子、臭素原子、又はヨウ素原子を意味する。

本明細書中において、「アルキル」は直鎖状、分枝鎖状、環状、又はそれらの組み合わせからなる脂肪族炭化水素基のいずれであってもよい。アルキル基の炭素数は特に限定されないが、例えば、炭素数１〜６個（Ｃ_１〜６）、炭素数１〜１０個（Ｃ_１〜１０）、炭素数１〜１５個（Ｃ_１〜１５）、炭素数１〜２０個（Ｃ_１〜２０）である。炭素数を指定した場合は、その数の範囲の炭素数を有する「アルキル」を意味する。例えば、Ｃ_１〜８アルキルには、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｓｅｃ−ブチル、ｔｅｒｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、イソペンチル、ｎｅｏ−ペンチル、ｎ−ヘキシル、イソヘキシル、ｎ−ヘプチル、ｎ−オクチル等が含まれる。本明細書において、アルキル基は任意の置換基を1個以上有していてもよい。そのような置換基としては、例えば、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシルなどを挙げることができるが、これらに限定されることはない。アルキル基が２個以上の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。アルキル部分を含む他の置換基（例えばアルコシ基、アリールアルキル基など）のアルキル部分についても同様である。

本明細書において、ある官能基について「置換されていてもよい」と定義されている場合には、置換基の種類、置換位置、及び置換基の個数は特に限定されず、２個以上の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。置換基としては、例えば、アルキル基、アルコキシ基、水酸基、カルボキシル基、ハロゲン原子、スルホ基、アミノ基、アルコキシカルボニル基、オキソ基などを挙げることができるが、これらに限定されることはない。これらの置換基にはさらに置換基が存在していてもよい。このような例として、例えば、ハロゲン化アルキル基、ジアルキルアミノ基などを挙げることができるが、これらに限定されることはない。

本明細書中において、「アリール」は単環式又は縮合多環式の芳香族炭化水素基のいずれであってもよく、環構成原子としてヘテロ原子（例えば、酸素原子、窒素原子、又は硫黄原子など）を１個以上含む芳香族複素環であってもよい。この場合、これを「ヘテロアリール」または「ヘテロ芳香族」と呼ぶ場合もある。アリールが単環および縮合環のいずれである場合も、すべての可能な位置で結合しうる。単環式のアリールの非限定的な例としては、フェニル基（Ｐｈ）、チエニル基（２−又は３−チエニル基）、ピリジル基、フリル基、チアゾリル基、オキサゾリル基、ピラゾリル基、２−ピラジニル基、ピリミジニル基、ピロリル基、イミダゾリル基、ピリダジニル基、３−イソチアゾリル基、３−イソオキサゾリル基、１，２，４−オキサジアゾール−５−イル基又は１，２，４−オキサジアゾール−３−イル基等が挙げられる。縮合多環式のアリールの非限定的な例としては、１−ナフチル基、２−ナフチル基、１−インデニル基、２−インデニル基、２，３−ジヒドロインデン−１−イル基、２，３−ジヒドロインデン−２−イル基、２−アンスリル基、インダゾリル基、キノリル基、イソキノリル基、１，２−ジヒドロイソキノリル基、１，２，３，４−テトラヒドロイソキノリル基、インドリル基、イソインドリル基、フタラジニル基、キノキサリニル基、ベンゾフラニル基、２，３−ジヒドロベンゾフラン−１−イル基、２，３−ジヒドロベンゾフラン−２−イル基、２，３−ジヒドロベンゾチオフェン−１−イル基、２，３−ジヒドロベンゾチオフェン−２−イル基、ベンゾチアゾリル基、ベンズイミダゾリル基、フルオレニル基又はチオキサンテニル基等が挙げられる。本明細書において、アリール基はその環上に任意の置換基を１個以上有していてもよい。該置換基としては、例えば、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシルなどを挙げることができるが、これらに限定されることはない。アリール基が２個以上の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。アリール部分を含む他の置換基（例えばアリールオキシ基やアリールアルキル基など）のアリール部分についても同様である。

本明細書中において、「アリールアルキル」は、上記アリールで置換されたアルキルを表す。アリールアルキルは、任意の置換基を１個以上有していてもよい。該置換基としては、例えば、アルコキシ基、ハロゲン原子、アミノ基、モノ若しくはジ置換アミノ基、置換シリル基、又はアシル基などを挙げることができるが、これらに限定されることはない。アシル基が２個以上の置換基を有する場合には、それらは同一でも異なっていてもよい。アリールアルキルの非限定的な例としては、ベンジル基、２−チエニルメチル基、３−チエニルメチル基、２−ピリジルメチル基、３−ピリジルメチル基、４−ピリジルメチル基、２−フリルメチル基、３−フリルメチル基、２−チアゾリルメチル基、４−チアゾリルメチル基、５−チアゾリルメチル基、２−オキサゾリルメチル基、４−オキサゾリルメチル基、５−オキサゾリルメチル基、１−ピラゾリルメチル基、３−ピラゾリルメチル基、４−ピラゾリルメチル基、２−ピラジニルメチル基、２−ピリミジニルメチル基、４−ピリミジニルメチル基、５−ピリミジニルメチル基、１−ピロリルメチル基、２−ピロリルメチル基、３−ピロリルメチル基、１−イミダゾリルメチル基、２−イミダゾリルメチル基、４−イミダゾリルメチル基、３−ピリダジニルメチル基、４−ピリダジニルメチル基、３−イソチアゾリルメチル基、３−イソオキサゾリルメチル基、１，２，４−オキサジアゾール−５−イルメチル基又は１，２，４−オキサジアゾール−３−イルメチル基等が挙げられる。

本明細書中において、「アルコキシ基」とは、前記アルキル基が酸素原子に結合した構造であり、例えば直鎖状、分枝状、環状又はそれらの組み合わせである飽和アルコキシ基が挙げられる。例えば、メトキシ基、エトキシ基、ｎ−プロポキシ基、イソプロポキシ基、シクロプロポキシ基、ｎ−ブトキシ基、イソブトキシ基、ｓ−ブトキシ基、ｔ−ブトキシ基、シクロブトキシ基、シクロプロピルメトキシ基、ｎ−ペンチルオキシ基、シクロペンチルオキシ基、シクロプロピルエチルオキシ基、シクロブチルメチルオキシ基、ｎ−ヘキシルオキシ基、シクロヘキシルオキシ基、シクロプロピルプロピルオキシ基、シクロブチルエチルオキシ基又はシクロペンチルメチルオキシ基等が好適な例として挙げられる。

本明細書中において、「アルキレン」とは、直鎖状または分枝状の飽和炭化水素からなる二価の基であり、例えば、メチレン、１−メチルメチレン、１，１−ジメチルメチレン、エチレン、１−メチルエチレン、１−エチルエチレン、１，１−ジメチルエチレン、１，２−ジメチルエチレン、１，１−ジエチルエチレン、１，２−ジエチルエチレン、１−エチル−２−メチルエチレン、トリメチレン、１−メチルトリメチレン、２−メチルトリメチレン、１，１−ジメチルトリメチレン、１，２−ジメチルトリメチレン、２，２−ジメチルトリメチレン、１−エチルトリメチレン、２−エチルトリメチレン、１，１−ジエチルトリメチレン、１，２−ジエチルトリメチレン、２，２−ジエチルトリメチレン、２−エチル−２−メチルトリメチレン、テトラメチレン、１−メチルテトラメチレン、２−メチルテトラメチレン、１，１−ジメチルテトラメチレン、１，２−ジメチルテトラメチレン、２，２−ジメチルテトラメチレン、２，２−ジ−ｎ−プロピルトリメチレン等が挙げられる。

１．一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩
本発明の１つの実施態様は、以下の一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩である。

即ち、本発明者らは、キノンメチド・ケミストリーをベースとする考えに基づき、前述した、酵素反応によって蛍光を発すると共に細胞内チオール類へとタグ化されることで細胞から漏出しなくなる性質を持つＳＰｉＤＥＲプローブ等から得られた本発明者らの研究の知見を活用して、がん細胞に特異的な酵素活性によって活性化されてキノンメチドを放出する化合物を分子設計した結果、上記の一般式（Ｉ）で表される化合物ががん細胞特異的な酵素活性によって細胞選択的に強い傷害を与えることが可能であり、新規プロドラッグ型抗がん剤に有用であることを見出した（図２参照）。

ここで、一般式（Ｉ）において、Ｙは、酵素認識部位であり、がん細胞特異的な酵素活性によってその一部が切断されてキノンメチドの形成を誘起する部位である。
Ｙは酵素の種類に応じて選択することができる。プロドラッグ型抗がん剤の標的酵素がグリコシダーゼである場合は、Ｙは糖類に由来する基から選択され、標的酵素がペプチダーゼである場合は、Ｙはアミノ酸類に由来する基、アミノ酸類を含む基から選択される。

一般式（Ｉ）において、Ｙは、好ましくは、−ＮＨ−ＣＯ−Ｌ、−ＮＨ−Ｌ’又は−ＯＬ’である。
ここで、Ｌは、アミノ酸の部分構造である。Ｌのアミノ酸の部分構造とは、Ｌが結合しているＣ＝Ｏと一緒になって、アミノ酸、アミノ酸残基、ペプチド、アミノ酸の一部を構成していることを意味する

本明細書において、「アミノ酸」は、アミノ基とカルボキシル基の両方を有する化合物であれば任意の化合物を用いることができ、天然及び非天然のものを含む。中性アミノ酸、塩基性アミノ酸、又は酸性アミノ酸のいずれであってもよく、それ自体が神経伝達物質などの伝達物質として機能するアミノ酸のほか、生理活性ペプチド（ジペプチド、トリペプチド、テトラペプチドのほか、オリゴペプチドを含む）やタンパク質などのポリペプチド化合物の構成成分であるアミノ酸を用いることができ、例えばαアミノ酸、βアミノ酸、γアミノ酸などであってもよい。アミノ酸としては、光学活性アミノ酸を用いることが好ましい。例えば、αアミノ酸についてはＤ−又はＬ−アミノ酸のいずれを用いてもよいが、生体において機能する光学活性アミノ酸を選択することが好ましい場合がある。

本明細書において、「アミノ酸残基」とは、アミノ酸のカルボキシル基からヒドロキシル基を除去した残りの部分構造に対応する構造をいう。
アミノ酸残基には、αアミノ酸の残基、βアミノ酸の残基、γアミノ酸の残基が含まれる。好ましいアミノ酸残基としては、ＧＧＴ基質の「γ―グルタミル基」やＤＰＰ４基質のジペプチド「アミノ酸―プロリンからなるジペプチド」などが挙げられる。

Ｌ’は、糖類又は糖類の部分構造、自己開裂型のリンカーを有する糖類、自己開裂型のリンカーを有するアミノ酸類又はペプチドである。
Ｌ’の糖類の部分構造は、Ｌ’が結合しているＯと一緒になって、糖類、糖類の一部を構成している。

糖類としては、β−Ｄ−グルコース、β−Ｄ−ガラクトース、β−Ｌ−ガラクトース、β−Ｄ−キシロース、α−Ｄ−マンノース、β−Ｄ−フコース、α−Ｌ−フコース、β−Ｌ−フコース、β−Ｄ−アラビノース、β−Ｌ−アラビノース、β−Ｄ−Ｎ−アセチルグルコサミン、β−Ｄ−Ｎ−アセチルガラクトサミン等が挙げられ、好ましくは、β−Ｄ−ガラクトースである。

自己開裂型のリンカーとは、自発的に切断・分解されるリンカーを意味し、例えば、カルバメート、ウレア、パラアミノベンジルオキシ基等が挙げられる。

本発明の１つの好ましい側面において、Ｙは、以下から選択される構造を有する。

一般式（Ｉ）において、Ｘは、Ｙの酵素認識部位ががん細胞特異的な酵素活性によってその一部が切断されることにより、ベンゼン環から脱離する脱離基として作用し、その結果、キノンメチドが形成される。

Ｘは、フッ素原子、エステル基（−ＯＣ（＝Ｏ）−Ｒ’）、カーボネート基（−ＯＣＯ_２−Ｒ’）、カーバメート基（−ＯＣＯＮＨ−Ｒ’）、リン酸およびそのエステル基（−ＯＰ（＝Ｏ）（−ＯＲ’）（―ＯＲ’’）、及び硫酸およびそのエステル基（―ＯＳＯ_２―ＯＲ’）からなる群から選択される。
ここで、Ｒ’、Ｒ’’は、各々独立に、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基から選択さる。
Ｘとしては、フッ素原子又はエステル基（−ＯＣＯ−Ｒ’）が好ましい。理論に拘束されることを意図するものではないが、Ｘがフッ素原子又はエステル基（−ＯＣＯ−Ｒ’）である場合は、Ｙが切断されると速やかにキノンメチドが形成される。

Ｒ^１及びＲ^２は、各々独立に、水素原子又は一価の置換基から選択される。一価の置換基としては、ハロゲン原子、炭素数１以上のアルキル基（例えば、炭素数１〜６程度のアルキル基）である。
Ｒ^１及びＲ^２は、好ましくは、各々独立に、水素原子又はフッ素原子から選択される。

一般式（Ｉ）中の−Ｙは、−Ｃ（Ｒ^１）（Ｒ^２）Ｘに対してベンゼン環のオルト位又はパラ位上で結合していることが好ましい。−Ｙと−Ｃ（Ｒ^１）（Ｒ^２）Ｘがベンゼン環上でこのような位置関係にあると、Ｙが切断された際にキノンメチド構造を形成可能である。

Ｒ^３は、水素原子、又はベンゼン環上に存在する１〜４個の同一又は異なる一価の置換基を示す。
Ｒ^３の一価の置換基としては、炭素数１以上のアルキル基（例えば、炭素数１〜６程度のアルキル基）、アルコキシカルボニル基、ニトロ基、アミノ基、水酸基、アルキルアミノ基（−ＮＨＲ’、−ＮＨＣＯＲ’）、アルコキシ基（−ＯＲ’、−ＯＣＯＲ’）、ハロゲン原子、ボリル基、シアノ基からなる群から選択される。ここで、Ｒ’は、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基である。
Ｒ^３の一価の置換基としては、好ましくは、炭素数１以上のアルキル基（例えば、炭素数１〜６程度のアルキル基（例えば、メチル基））である。理論に拘束されることを意図するものではにが、アルキル基は電子供与性を向上させ殺細胞活性を向上させることができる。

Ｒ^３の位置としては、−Ｃ（Ｒ^１）（Ｒ^２）Ｘのパラ位にあたる５位、または、メタ位にあたる４位が好ましい。

また、一般式(Ｉ)で表される化合物は、特に断らない限り、その互変異性体、幾何異性体（例えば、Ｅ体、Ｚ体など）、鏡像異性体等の立体異性体も含まれる。すなわち、一般式（Ｉ）で表される化合物中に、１個又は２個以上の不斉炭素が含まれる場合、不斉炭素の立体化学については、それぞれ独立して（Ｒ）体又は（Ｓ）体のいずれかをとることができ、該誘導体の鏡像異性体又はジアステレオ異性体などの立体異性体として存在することがある。従って、本発明の微小管重合阻害剤の有効成分としては、純粋な形態の任意の立体異性体、立体異性体の任意の混合物、ラセミ体などを用いることが可能であり、いずれも本発明の範囲に包含される。

一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩の非限定的例を以下に示す。

２．プロドラッグ型抗がん剤
本発明のもう１つの実施態様は、一般式（Ｉ）の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、プロドラッグ型抗がん剤である（以下「本発明のプロドラッグ型抗がん剤」ともいう）。
また、本発明のもう１つの実施態様は、一般式（Ｉ）の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、がん細胞特異的な酵素活性により細胞選択的に作用するプロドラッグ型抗がん剤である。

がん細胞特異的な酵素としては、ペプチダーゼ又はグリコシダーゼである。
ペプチダーゼとしては、ペプチダーゼが、γ-グルタミルトランスペプチダーゼ（ＧＧＴ）、ジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰ−ＩＶ）、カルパインが挙げられる。
グリコシダーゼとしては、β-ガラクトシダーゼ、β-グルコシダーゼ、α-マンノシダーゼ、α−Ｌ−フコシダーゼ、β−ヘキソサミニダーゼ、β−Ｎ−アセチルガラクトサミニダーゼ等が挙げられる。

また、本発明のもう１つの実施態様は、一般式（Ｉ）の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、乳がん、食道がん、肺がん、頭頚部癌、口腔癌、肝臓癌等の癌を治療又は予防するための医薬組成物である（以下「本発明の医薬組成物」ともいう）。

また、本発明のもう１つの実施態様は、哺乳動物、特にヒトにおける乳がん、食道がん、肺がん、頭頚部癌、口腔癌、肝臓癌等の癌の治療方法であって、そのような治療を必要とする哺乳動物に、有効量の一般式（Ｉ）の本発明の化合物又はその医薬的に許容される塩、或いは、一般式（Ｉ）で表される化合物又はその医薬的に許容される塩を含む医薬組成物を投与する方法である。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物は、一般式(Ｉ)で表される化合物のみならず、その塩又はそれらの溶媒和物若しくは水和物を含むものであってもよい。塩としては、医薬的に許容される塩であれば特に限定されないが、例えば、塩基付加塩、酸付加塩、アミノ酸塩などを挙げることができる。塩基付加塩としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩などのアルカリ土類金属塩、アンモニウム塩、又はトリエチルアミン塩、ピペリジン塩、モルホリン塩などの有機アミン塩を挙げることができ、酸付加塩としては、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、硝酸塩、リン酸塩などの鉱酸塩；メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸、パラトルエンスルホン酸、酢酸、プロピオン酸塩、酒石酸、フマル酸、マレイン酸、リンゴ酸、シュウ酸、コハク酸、クエン酸、安息香酸、マンデル酸、ケイ皮酸、乳酸、グリコール酸、グルクロン酸、アスコルビン酸、ニコチン酸、サリチル酸などの有機酸塩を挙げることができる。アミノ酸塩としてはグリシン塩、アスパラギン酸塩、グルタミン酸塩などを例示することができる。また、アルミニウム塩等の金属塩であってもよい。

溶媒和物を形成する溶媒の種類は特に限定されないが、例えば、エタノール、アセトン、イソプロパノールなどの溶媒を例示することができる。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤により治療又は予防され得る疾患としては、幅広いがん種、特に乳癌、食道癌、肺癌、頭頚部癌、口腔癌、肝臓癌などには大きな効果が期待できる。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物は、有効成分である一般式（Ｉ）で表される化合物又はその医薬的に許容される塩、水和物、若しくは溶媒和物自体を投与してもよいが、一般的には、有効成分である上記物質と１又は２以上の製剤用添加物とを含む医薬組成物の形態で投与することが望ましい。医薬組成物におけるような用語「組成物」は、活性成分と、担体を構成する不活性成分（医薬的に許容される賦形剤）とを含む生成物ばかりでなく、任意の２つ以上の成分の会合、複合体化もしくは凝集の結果として、または１つ以上の成分の解離の結果として、または１つ以上の成分の別のタイプの反応もしくは相互作用の結果として、直接もしくは間接的に生ずる任意の生成物も包含する。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物の有効成分としては、上記化合物の２種以上を組み合わせて用いることができる。

また、本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物は、有効成分である一般式（Ｉ）で表される化合物又はその医薬的に許容される塩、水和物、若しくは溶媒和物と、既存の抗癌剤と併用した組み合わせ医薬とすることも可能である。既存の抗癌剤としては、当該技術分野において公知のものを用いることができるが、例えば、メトトレキサート、ドキソルビシン、シスプラチン等を挙げることができる。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物の種類は特に限定されず、剤型としては、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤、懸濁剤、座剤、軟膏、クリーム剤、ゲル剤、貼付剤、吸入剤、注射剤等が挙げられる。これらの製剤は常法に従って調製される。なお、液体製剤にあっては、用時、水又は他の適当な溶媒に溶解又は懸濁する形であってもよい。また錠剤、顆粒剤は周知の方法でコーティングしてもよい。注射剤の場合には、本発明の化合物を水に溶解させて調製されるが、必要に応じて生理食塩水あるいはブドウ糖溶液に溶解させてもよく、また緩衝剤や保存剤を添加してもよい。経口投与用又は非経口投与用の任意の製剤形態で提供される。例えば、顆粒剤、細粒剤、散剤、硬カプセル剤、軟カプセル剤、シロップ剤、乳剤、懸濁剤又は液剤等の形態の経口投与用医薬組成物、静脈内投与用、筋肉内投与用、若しくは皮下投与用などの注射剤、点滴剤、経皮吸収剤、経粘膜吸収剤、点鼻剤、吸入剤、坐剤などの形態の非経口投与用医薬組成物として調製することができる。注射剤や点滴剤などは、凍結乾燥形態などの粉末状の剤形として調製し、用時に生理食塩水などの適宜の水性媒体に溶解して用いることもできる。また、高分子などで被覆した徐放製剤を脳内に直接投与することも可能である。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物の製造に用いられる製剤用添加物の種類、有効成分に対する製剤用添加物の割合、又は医薬組成物の製造方法は、組成物の形態に応じて当業者が適宜選択することが可能である。製剤用添加物としては無機又は有機物質あるいは固体又は液体の物質を用いることができ、一般的には、有効成分重量に対して１重量％から９０重量％の間で配合することができる。具体的には、その様な物質の例として乳糖、ブドウ糖、マンニット、デキストリン、シクロデキストリン、デンプン、蔗糖、メタケイ酸アルミン酸マグネシウム、合成ケイ酸アルミニウム、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ヒドロキシプロピルデンプン、カルボキシメチルセルロースカルシウム、イオン交換樹脂、メチルセルロース、ゼラチン、アラビアゴム、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、軽質無水ケイ酸、ステアリン酸マグネシウム、タルク、トラガント、ベントナイト、ビーガム、酸化チタン、ソルビタン脂肪酸エステル、ラウリル硫酸ナトリウム、グリセリン、脂肪酸グリセリンエステル、精製ラノリン、グリセロゼラチン、ポリソルベート、マクロゴール、植物油、ロウ、流動パラフィン、白色ワセリン、フルオロカーボン、非イオン性界面活性剤、プロピレングルコール、水等が挙げられる。

経口投与用の固形製剤を製造するには、有効成分と賦形剤成分例えば乳糖、澱粉、結晶セルロース、乳酸カルシウム、無水ケイ酸などと混合して散剤とするか、さらに必要に応じて白糖、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリビニルピロリドンなどの結合剤、カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースカルシウムなどの崩壊剤などを加えて湿式又は乾式造粒して顆粒剤とする。錠剤を製造するには、これらの散剤及び顆粒剤をそのまま或いはステアリン酸マグネシウム、タルクなどの滑沢剤を加えて打錠すればよい。これらの顆粒又は錠剤はヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、メタクリル酸−メタクリル酸メチルポリマーなどの腸溶剤基剤で被覆して腸溶剤製剤あるいはエチルセルロース、カルナウバロウ、硬化油などで被覆して持続性製剤とすることもできる。また、カプセル剤を製造するには、散剤又は顆粒剤を硬カプセルに充填するか、有効成分をそのまま或いはグリセリン、ポリエチレングリコール、ゴマ油、オリーブ油などに溶解した後ゼラチン膜で被覆し軟カプセルとすることができる。

注射剤を製造するには、有効成分を必要に応じて塩酸、水酸化ナトリウム、乳糖、乳酸、ナトリウム、リン酸一水素ナトリウム、リン酸二水素ナトリウムなどのｐＨ調整剤、塩化ナトリウム、ブドウ糖などの等張化剤と共に注射用蒸留水に溶解し、無菌濾過してアンプルに充填するか、更にマンニトール、デキストリン、シクロデキストリン、ゼラチンなどを加えて真空凍結乾燥し、用事溶解型の注射剤としてもよい。また、有効成分にレチシン、ポリソルベート８０、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油などを加えて水中で乳化せしめ注射剤用乳剤とすることもできる。

本発明のプロドラッグ型抗がん剤又は医薬組成物の投与量及び投与回数は特に限定されず、治療対象疾患の悪化・進展の防止及び／又は治療の目的、疾患の種類、患者の体重や年齢、疾患の重篤度などの条件に応じて、医師の判断により適宜選択することが可能である。一般的には、経口投与における成人一日あたりの投与量は０．０１〜１０００ｍｇ（有効成分重量）程度であり、一日１回又は数回に分けて、或いは数日ごとに投与することができる。注射剤として用いる場合には、成人に対して一日量０．００１〜１００ｍｇ（有効成分重量）を連続投与又は間欠投与することが望ましい。

一般式（Ｉ）で表される化合物の製造方法は特に限定されないが、一般式（Ｉ）に包含される化合物のうち代表的化合物についての合成方法を本明細書の実施例に具体的に示した。当業者は本明細書の実施例及び下記のスキームを参照しつつ、必要に応じて出発原料、反応試薬、反応条件などを適宜改変ないし修飾することにより、式（Ｉ）に包含される化合物を製造することができる。

以下、本発明を実施例により説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。

１．キノンメチド放出型プロドラッグ化合物の合成
まず図３に示すように、３種類の酵素(β−Ｇａｌ、ＤＰＰ−ＩＶ、ＧＧＴ）の酵素認識部位、脱離基にフッ素を有した単環式の化合物を以下の手順で合成した。

［合成実施例１］
本発明の化合物１（β−Ｇａｌ−ＦＭＰ）を以下のスキーム１により合成した。

スキーム１

（１）化合物１の合成

２−（（（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）フェノール（３０１ｍｇ、１．２６ｍｍｏｌ）と炭酸セシウム（４．１１ｇ、１２．６ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（７ｍＬ）に溶解させ、アルゴン雰囲気下０℃で５分間攪拌した。（２Ｒ，３Ｓ，４Ｓ，５Ｒ，６Ｒ）−２−（アセトキシメチル）−６−ブロモテトラヒドロ−２Ｈ−ピラン−３，４，５−トリチルトリアセテート（４．５１ｇ、１１．０ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、無色液体の目的物を得た（６２６．８ｍｇ，８７％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_２Ｃｌ_２，４００ＭＨｚ）：δ７．５０（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．０Ｈz），７．２０（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．０Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．０８（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．００（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），５．４７−５．４３（ｍ，２Ｈ），５．１３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ，Ｊ＝３．７Ｈｚ），５．０８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ），４．７５（ｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１５Ｈｚ），４．６２（ｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１５Ｈｚ），４．２２−４．０９（ｍ，３Ｈ），２．１６（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），２．０４（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），２．０３（ｓ３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），１．９８（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），０．９６（ｓ，９Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_３），０．１２（ｓ，６Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_２）．

（２）化合物２の合成

化合物１（７６．７ｍｇ、０．１３５ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（５ｍＬ）に溶解させ、−７８℃に冷却した。ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ、３９μＬ、０．１３５ｍｍｏｌ）を加え、−７８℃で１時間攪拌した。続いて、Ｄｅｏｘｏ−Ｆｌｏｕｒ（登録商標）（１３２μＬ、０．６７５ｍｍｏｌ）を加え、さらに１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、ジクロロメタンで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、薄黄色液体の目的物を得た（２９．７ｍｇ、４８％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ７．３８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ）, ７．３２（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．１０（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．０７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ），５．５４（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），５．４７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ，Ｊ_ｇｅｍ＝１１Ｈｚ），５．４６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝２．７Ｈｚ），５．２３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ，Ｊ_ｇｅｍ＝１１Ｈｚ），５．１１（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ，Ｊ＝３．７Ｈｚ），５．０３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），４．２５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），４．１５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ，Ｊ＝６．０Ｈｚ），４．０８（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．９Ｈｚ，Ｊ＝６．０Ｈｚ），２．１８（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），２．０６（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），２．０６（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３），２．０１（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３）．

（３）化合物３の合成

化合物２（２９．７ｍｇ、０．０６５０ｍｍｏｌ）を脱水メタノール（５ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。２８％ＮａＯＭｅ／ＭｅＯＨ（５０μＬ）を加え、−７８℃で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、ＡｍｂｅｒｌｉｔｅＩＲ１２０（登録商標）で中和を行い、ろ過、濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０％→１００％アセトニトリル／水）による生成を行い、白色固体の目的物を得た（２．２５ｍｇ，１２％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．３５（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．２９（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｃ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｄ}＝８．２Ｈｚ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．２１（ｄ，１Ｈ，Ｈｄ，Ｊ_{Ｈｄ−Ｈｃ}＝８．２Ｈｚ），７．０３（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｂ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈａ}＝Ｊ_{Ｈｂ−Ｈｃ}＝７．３Ｈｚ），５．５１（ｄ，２Ｈ，Ｈ_Ｂｎ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ），４．８５（ｄ，１Ｈ，Ｈ１，ＪＨ１−Ｈ２＝７．８Ｈｚ），３．８８（ｄ，１Ｈ，Ｈ４，Ｊ_{Ｈ４−Ｈ３}＝３．７Ｈｚ），３．７９（ｄｄ，１Ｈ，Ｈ２，Ｊ_{Ｈ２−Ｈ３}＝９．６Ｈｚ，Ｊ_{Ｈ２−Ｈ１}＝７．８Ｈｚ），３．７８−３．７０（ｍ，２Ｈ，Ｈ６，６‘），３．６５（ｄｄ，１Ｈ，Ｈ５，Ｊ_{Ｈ５−Ｈ６}＝６．９Ｈｚ，Ｊ_{Ｈ５−Ｈ６’}＝５．０Ｈｚ），３．５５（ｄｄ，１Ｈ，Ｈ３，Ｊ_{Ｈ３−Ｈ２}＝９．６Ｈｚ，Ｊ_{Ｈ３−Ｈ４}＝３．７Ｈｚ）；ＨＲＭＳ３１１．０８９７６（Ｍ＋Ｎａ^＋）.

［合成実施例２］
本発明の化合物２（ＧＰ−ＦＭＡ）を以下のスキーム２により合成した。

スキーム２

（１）化合物４の合成

ｔｅｒｔ−ブチル（Ｓ）−（２−（２−（（２−（（（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）フェニル）カルバモイル７）ピロリジン−１−イル）−２−オキソエチル）カルバメート（８６．４ｍｇ、０．１７６ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（２ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（２０６ｍｇ、０．５３２ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（１８３μＬ、１．０６ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、脱水ＤＭＦ（１ｍＬ）に溶解させた２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）アニリン（１０１ｍｇ、０．４２５ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，４０％→５０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、白色固体の目的物を得た（８８．１ｍｇ、５１％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．４４−７．４１（ｍ，２Ｈ），７．２８−７．１８（ｍ，２Ｈ），４．７５（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１４Ｈｚ），４．７０（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ‘，Ｊ_ｇｅｍ＝１４Ｈｚ），４．５３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，Ｊ＝２．７Ｈｚ），３．９５（ｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１７Ｈｚ），３．８８（ｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１７Ｈｚ），３．７１−３．５６（ｍ，２Ｈ），２．１７−１．９１（ｍ，３Ｈ），１．４１（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）３），０．９１（ｓ，９Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_３），０．０９（ｓ，６Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_２）．

（２）化合物５の合成

化合物４（９６．５ｍｇ、０．３５４ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（５ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ、８７９μＬ、０．８７９ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル、０％→７％メタノール／ジクロロメタン）による生成を行い、無色液体の目的物を得た（６３．９ｍｇ、９６％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．７０（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．３０（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．２５（ｄｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝１．４Ｈｚ），７．１３（ｄｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝１．４Ｈｚ），４．６１（ｄｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１４Ｈｚ，Ｊ＝４．１Ｈｚ），４．５７（ｄｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１４Ｈｚ，Ｊ＝４．１Ｈｚ），４．５５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，Ｊ＝３．７Ｈｚ），３．９４（ｓ，２Ｈ），３．７３−３．５５（ｍ，２Ｈ），２．３０−２．１２（ｍ，２Ｈ），２．１０−２．０３（ｍ，２Ｈ），１．４３（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）_３）．

（３）化合物６の合成

化合物５（６３．９ｍｇ、０．１６９ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。Ｄｅｏｘｏ−Ｆｌｏｕｒ（登録商標）（１６６μＬ、０．８４７ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、５０％→７０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、薄黄色液体の目的物を得た（２２．９ｍｇ、３６％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ８．９３（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．９５（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．３６（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．２９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．１３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），５．４１（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−），５．３９（ｄ，２Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ），４．７６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），４．０３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１７Ｈｚ，Ｊ＝５．０Ｈｚ），３．９３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ_ｇｅｍ＝１７Ｈｚ，Ｊ＝４．６Ｈｚ），３．６０−３．５４（ｍ，１Ｈ），３．４９−３．４０（ｍ，１Ｈ），２．２２−２．１１（ｍ，１Ｈ），２．１１−２．０２（ｍ，１Ｈ），２．０１−１．９０（ｍ，１Ｈ），１．４４（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）_３）．

（４）化合物７の合成

化合物６（２２．９ｍｇ、０．０６０４ｍｍｏｌ）を酢酸エチル（１ｍＬ）に溶解させ、４Ｍ．塩酸／酢酸エチル（２ｍＬ）を加え、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０．１％酢酸，０％→１００％アセトニトリル／水）による生成を行い、白色固体の目的物を得た（５．７ｍｇ、３０％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．４６（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．４１−７．２７（ｍ，３Ｈ，Ｈｂ，Ｈｃ，Ｈｄ），５．３８（ｄｄｄ，２Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ，Ｊ_{ＨＢｎ‘−Ｆ}＝３４Ｈｚ，Ｊ_ｇｅｍ＝１１Ｈｚ），４．６１（ｄｄ，１Ｈ，Ｈα₂,Ｊ_α2-β2＝８．２Ｈｚ，Ｊ_α2-β2’＝３．７Ｈｚ），３．８８（ｄ，２Ｈ，Ｈα1，Ｊ_ｇｅｍ＝４．１Ｈｚ）,３．６８−３．５２（ｍ，２Ｈ，Ｈδ），２．３９−２．２８（ｍ，１Ｈ，Ｈβ2），２．１７−１．９７（ｍ，３Ｈ，Ｈβ2，Ｈγ2）；^１３ＣＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，１００ＭＨｚ）：δ１７２．１，１６４．８，１２８．９，１２８．１，１２６．６，１２５．９，６０．６，４６．４，４０．２，２９．５，２４．5；ＨＲＭＳ２８０．１４６５７（Ｍ＋Ｈ^＋）．

［合成実施例３］
本発明の化合物３（ｇＧｌｕ−ＦＭＡ）を以下のスキーム３により合成した。

スキーム３

（１）化合物８の合成

（Ｓ）−５−（ｔｅｒｔ−ブトキシ）−４−（（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（１．２６ｇ、４．１７ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（１５ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（２．４２ｇ、６．２５ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（２．１６ｍＬ、１２．５ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、脱水ＤＭＦ（５ｍＬ）に溶解させた２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）アニリン（１．１９ｇ、５．００ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、１０％→３０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、黄色液体の目的物を得た（２．１８ｇ，定量的）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ８．８８（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），８．１５（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ），７．２９（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．１０（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），７．１３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），５．２０（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝７．８Ｈｚ），４．７５（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１３Ｈｚ），４．７１（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ‘，Ｊ_ｇｅｍ＝１３Ｈｚ），４．２７−４．１５（ｍ，１Ｈ），２．５２−２．３４（ｍ，２Ｈ），２．３２−２．２０（ｍ，１Ｈ），２．０７−１．９５（ｍ，１Ｈ），１．４６（ｓ，９Ｈ，ＣＯＯ（ＣＨ_３）_３），１．４２（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）_３），０．９０（ｓ，９Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_３），０．０７（ｓ，６Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_２）．

（２）化合物９の合成

化合物８（２．１８ｇ、４．１７ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（１０ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ、１０ｍＬ、１０ｍｍｏｌ）を加え、室温で２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、２０％→８０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、白色固体の目的物を得た（９４３ｍｇ、５４％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_２Ｃｌ_２，４００ＭＨｚ）：δ ８．６９（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．９１（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．２９（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．２３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．０９（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝６．３Ｈｚ），４．６６（ｍ，２Ｈ，ＨＢｎ），４．２２−４．１１（ｍ，１Ｈ），２．８０（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＨ_２ＯＨ），２．５１−２．３５（ｍ，２Ｈ），２．２９−２．１６（ｍ，１Ｈ），１．９７−１．８５（ｍ，１Ｈ），１．４４（ｓ，９Ｈ，ＣＯＯ（ＣＨ_３）_３），１．４０（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）_３）．

（３）化合物１０の合成

化合物９（２１５ｍｇ、０．５２７ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（１０ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。Ｄｅｏｘｏ−Ｆｌｏｕｒ（登録商標）（５１４μＬ、２．６４ｍｍｏｌ）を加え、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、２０％→３０％酢酸エチル／ヘキサン）による生成を行い、薄黄色液体の目的物を得た（１５１．８ｍｇ、７０％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_２Ｃｌ_２，４０ＭＨｚ）：δ８．０４（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．８４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ），７．３７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．３３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），７．１７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，Ｊ＝６．９Ｈｚ），５．４３（ｄ，２Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ，Ｊ_ｇｅｍ＝１１Ｈｚ），４．２２−４．１１（ｍ，１Ｈ），２．８０（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＨ_２ＯＨ），２．５１−２．３５（ｍ，２Ｈ），２．２９−２．１６（ｍ，１Ｈ），１．９７−１．８５（ｍ，１Ｈ），１．４４（ｓ，９Ｈ，ＣＯＯ（ＣＨ_３）_３），１．４０（ｓ，９Ｈ，ＮＨＣＯＯ（ＣＨ_３）_３）．

（４）化合物１１の合成

化合物１０（７０．３ｍｇ、０．１７１ｍｍｏｌ）を酢酸エチル（２ｍＬ）に溶解させ、４Ｍ．塩酸／酢酸エチル（２ｍＬ）を加え、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０．１％酢酸、０％→１００％アセトニトリル／水）による生成を行い、白色固体の目的物を得た（２８．９ｍｇ、５８％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_２Ｃｌ_２，４００ＭＨｚ）：δ７．４９（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．８Ｈｚ），７．４３（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｃ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｂ}＝Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｄ}＝７．８Ｈｚ），７．３６（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｂ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈａ}＝Ｊ_{Ｈｂ−Ｈｃ}＝７．８Ｈｚ），７．２９（ｄ，１Ｈ，Ｈｄ，Ｊ_{Ｈｄ−Ｈｃ}＝７．８Ｈｚ），５．３５（ｄ，２Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_{ＨＢｎ−Ｆ}＝４８Ｈｚ），３．８０−３．７７（ｍ，１Ｈ，Ｈα），２．６７−２．５６（ｍ，２Ｈ，Ｈγ），２．２０−２．１５（ｍ，２Ｈ，Ｈβ）；^１３ＣＮＭＲ（Ｄ_２Ｏ，１００ＭＨｚ）：δ１７４．７，１７３．８，１３４．３，１３２．０，１３０．４，１３０．０，１２８．１，１２７．５，８２．９，８１．３，５４．１，３１．６，２６．３；ＨＲＭＳ２５５．１１３７０（Ｍ＋Ｈ^＋）．

［実施例１］
次に、合成した３種の化合物と精製酵素を用いて酵素反応を以下の条件で行った。
化合物終濃度：１００μＭ
酵素終濃度：４ｎＭ（β−Ｇａｌ）、８．５μｇ／ｍＬ（ＤＰＰ−ＩＶ）、１０Ｕ／ｍＬ（ＧＧＴ）
反応温度：３７℃

（１）β−ガラクトシダーゼを用いた酵素反応
機種：ＡＣＱＵＩＴＹＵＰＬＣ（Ｗａｔｅｒｓ社製）
カラム：Ｐｏｒｏｓｈｅｌｌ１２０、４．６×１００ｍｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ社製）
移動相Ａ：水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
移動相Ｂ：８０％アセトニトリル／水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
グラジエント：Ａ／Ｂ：９５／５→５／９５、５分

（２）ＤＰＰ−ＩＶおよびＧＧＴを用いた酵素反応
機種：１２６０Ｉｎｆｉｎｉｔｙ（Ａｇｉｌｅｎｔ社製）
カラム：Ｐｏｒｏｓｈｅｌｌ１２０、４．６×１００ｍｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ社製）
移動相Ａ：水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
移動相Ｂ：８０％アセトニトリル／水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
グラジエント：Ａ／Ｂ：９５／５→５０／５０、２０分

結果を図４に示す。
化合物１〜３は、β−Ｇａｌ、ＤＰＰ−ＩＶ、ＧＧＴによってそれぞれ切断され、キノンメチドがＨ_２Ｏと反応した２−ヒドロキシベンジルアルコール（β−Ｇａｌ）あるいは２−アミノベンジルアルコール（ＤＰＰ−ＩＶ、ＧＧＴ）が反応生成物として確認された。
ＧＧＴについては、阻害剤を入れた実験も行ったが、ＧＧＴ阻害剤であるＧＧｓＴｏｐ（登録商標）を１００μＭの濃度で添加するとモデル化合物の酵素反応が阻害されることを確認した。

［実施例２］
酵素高発現／低発現細胞を用いたｉｎｖｉｔｒｏ薬効試験
次に、化合物１〜３を酵素高発現／低発現細胞に投与した時、それらがプロドラッグとして機能することで細胞生存率を変化させることが可能であるか検証した。薬効試験は、一般的な比色定量法であるＣＣＫ−８アッセイ（生細胞内の脱水素酵素活性を、無色のＷＳＴ−８から橙色のホルマザンへの還元という形で定量する方法）を用いて生細胞数を定量することで行った。以下にＣＣＫ−８アッセイの評価方法を記載する。

（１）使用した培養細胞
β−ガラクトシダーゼ活性化プロドラッグの評価は、ＨＥＫ／ｌａｃＺ細胞（ヒト腎細胞由来細胞、β−Ｇａｌ高発現）とＨＥＫ２９３細胞（ヒト腎細胞由来細胞、β−Ｇａｌ低発現）を用いて行った。ＤＰＰ−ＩＶ活性化プロドラッグの評価は、Ｈ２２６細胞（ヒト肺扁平上皮がん細胞、ＤＰＰ−ＩＶ高発現）とＨ４６０細胞（ヒト非小細胞性上皮性肺がん細胞、ＤＰＰ−ＩＶ低発現）を用いて行った。ＧＧＴ活性化プロドラッグの評価は、ＳＨＩＮ３細胞（ヒト卵巣がん細胞、ＧＧＴ高発現）とＨ２２６細胞（ヒト肺扁平上皮がん細胞、ＧＧＴ低発現）を用いて行った。

（２）評価方法
各種細胞を９６ウェルプレートに播種し（細胞密度：１．０×１０^４／ｗｅｌｌ）、一晩インキュベーションした。新鮮な培地に交換し、合成した誘導体を添加した（最終濃度１〜５０μＭ、０．５％ＤＭＳＯ、ｎ＝３）。さらに細胞を２４時間培養した後、ＣｅｌｌｃｏｕｎｔｉｎｇＫｉｔ−８（１０μＬ／ｗｅｌｌ、プロメガ社製）を添加し、２．５時間後、プレートリーダーにより４５０ｎｍの吸光度を測定し、生存細胞数の定量を行った。

ＣＣＫ−８アッセイの結果を図５〜７に示す。
まず、β−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄａｓｅ用の化合物１（β−Ｇａｌ−ＦＭＰ）を高発現細胞（ＨＥＫ／ｌａｃＺ）および低発現細胞（ＨＥＫ２９３）に投与し、２４時間後に生存率を算出した。その結果、５０μＭという高濃度で投与しても両細胞の生存率は全く低下せず、有意な差も観測されなかった（図５）。β−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄａｓｅでの結果とは対照的に、アミノペプチダーゼであるＤＰＰ−ＩＶおよびＧＧＴの化合物２、３（ＧＰ−ＦＭＡ、ｇＧｌｕ−ＦＭＡ）を用いた場合には、酵素高発現／低発現細胞間で細胞生存率の変化が観測された（図６、７）。この結果から、（ｉ）ＤＰＰ−ＩＶやＧＧＴ（細胞膜）とβ−ｇａｌａｃｔｏｓｉｄａｓｅ（細胞質）の局在の差、（ｉｉ）キノンメチド種の差（ＤＰＰ−ＩＶとＧＧＴはアザキノンメチドを放出）が重要であることが示唆されたが、現段階では不明である。特にＧＧＴプロドラッグは細胞種選択性が高く、ＧＧＴ阻害剤のＧＧｓＴｏｐ（登録商標）で完全に生存率が回復したことから、薬効発現の大部分がＧＧＴ活性に依存していることが予想された。

［実施例３］
共培養条件下での細胞死観察に関する検討
細胞種の変更を行い、培地をＲＰＭＩ−１６４０に統一することで共培養が可能となったため、続いて共培養条件下での細胞死観察および定量法の構築を目指した。これまでの結果を受け、ＧＧＴ用化合物３（ｇＧｌｕ−ＦＭＡ）を用いてこれらの検討を行うこととし、まずは初期検討として１種類の細胞を用い、蛍光観察によって細胞死を視覚的に観察可能か調べた（図８）。実験は以下のプロトコル１にて行った。

（プロトコル１）

図８は、化合物３及びＥｔｈＤ−１を用いたＳＨＩＮ３細胞（上）及びＨ２２６細胞（下）の経時的蛍光イメージングを示す（死細胞染色、Ｅｘ／Ｅｍ＝５２５ｎｍ／５１１〜５６４ｎｍ）。
レンズ６３ｘ／１．４Ｏｉｌ。
スキャンモード：ｘｙｚｔ、ｘ＝５１２、ｙ＝５１２、ｚ＝４、ｔ＝２４。スケールバー、５０μｍ。

図８の結果から、ＧＧＴ高発現細胞株であるＳＨＩＮ３細胞の方がより細胞死を起こしている様子が確認できたため、続いて共培養系での評価を行った。実験は以下のプロトコル２にて行った。

（プロトコル２）

結果を図９に示す。
図９は、化合物３及びＥｔｈＤ−１を用いた共培養細胞の微速度撮影蛍光イメージングを示す（死細胞染色、Ｅｘ／Ｅｍ＝５２５ｎｍ／５１１−５６４ｎｍ）（上）。
２４時間イメージング後の他の３つの視野における細胞の共焦点イメージング（下）。
レンズ６３ｘ／１．４Ｏｉｌ。
スキャンモード：ｘｙｚｔ、ｘ＝５１２、ｙ＝５１２、ｚ＝４、ｔ＝２４。スケールバー、５０μｍ。

図９上段に示した２４時間タイムラプスイメージングの結果から分かるように、ＧＧＴ用化合物３（ｇＧｌｕ−ＦＭＡ）は共培養系においても高発現細胞を選択的に傷害することが明らかとなった。また、これまでの検討で１０切片×２４回の撮像を行うと光毒性が観測された（視野内の細胞が多く死ぬ）ことから、今回は４切片×２４回の撮像ではあるものの、光毒性の影響が懸念された。そこで、２４時間のイメージング終了後に別の視野を３視野ほど撮像した（図９下段）ところ、低発現細胞（緑色）の隙間に死細胞が存在する同様の傾向が見られたため、化合物３が上手くワークすることで殺し分けが達成されていると判断した。

［実施例４］
ＦｌｏｗＣｙｔｏｍｅｔｒｙ（フローサイトメトリー）による薬効評価
蛍光色素を用いたイメージングにより共培養条件下での細胞死がリアルタイムで観測可能であることが示された。一方で、高発現／低発現細胞の生存率がどの程度変化したのかという定量的な議論はできないため、これらがフローサイトメトリーを用いて評価可能であるか検討した（図１０）。実験は以下プロトコル３にて行った。

（プロトコル３）

図１０は、化合物３を用いたＳＨＩＮ３細胞（緑色）およびＨ２２６細胞（染色されていない）における細胞増殖のフローサイトメトリー分析の結果を示す。（上）２５μＭモデル化合物、（中央）２５μＭモデル化合物＋１００μＭＧＧｓＴｏｐ、（下）０．２５％ＤＭＳＯコントロール。分析は２４時間のインキュベーション後に行われた。

図１０の結果より、ＧＧＴプロドラッグ投与群のみ細胞死が誘導され（ＥｔｈＤ−１での死染色が見られる）、ＧＧＴ高発現細胞であるＳＨＩＮ３細胞選択的な細胞死を引き起こすことがフローサイトメトリーによっても明らかとなった。

ベンジル位脱離基変換誘導体の合成
次に、ＧＧＴを標的としたベンジル位変換誘導体の合成の検討を行った。ＥｖａｎｓのｐＫ_ａ表（D.H. Ripin; D.A. Evans, http://evans.rc.fas.harvard.edu/pdf/evans_pKa_table.pdfを参照）を参考にして、図１１に示すようなアシル系脱離基を有する誘導体が合成可能か検証した。

［合成実施例４］
以下のスキーム４により、本発明の化合物を合成した。

スキーム４

（１）化合物１１の合成

（Ｓ）−５−（アリルオキシ）−４−（（（アリルオキシ）カルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（９３０ｍｇ、３．４５ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（１７ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（１．９６ｇ，５．１４ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（１．７５ｍＬ、１０．３ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、脱水ＤＭＦ（５ｍＬ）に溶解させた２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）アニリン（１．２２ｇ、５．１４ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，５０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、黄色液体の目的物を得た（８４８ｍｇ、８６％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ８．９１（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），８．１６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．２９（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．０８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．０２（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，５．９５−５．８２（ｍ，２Ｈ），５．６１（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝７．８Ｈｚ），５．３２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），５．１８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），４．７３（ｓ，２Ｈ，ＨＢｎ），４．６４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝５．５Ｈｚ），４．５６−４．５２（ｍ，２Ｈ），４．４７−４．３７（ｍ，１Ｈ），２．５６−２．３９（ｍ，２Ｈ），２．３８−２．２７（ｍ，１Ｈ），２．１８−２．０５（ｍ，１Ｈ），０．９０（ｓ，９Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_３），０．０８（ｓ，６Ｈ，Ｓｉ（ＣＨ_３）_２）．

（２）化合物１２の合成

化合物１１（１．２９ｇ、２．６３ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（２０ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ，７．８９ｍＬ、７．８９ｍｍｏｌ）と酢酸（３０４μＬ、５．２６ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、５０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（８４８ｍｇ、８６％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ８．７３（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．９７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ），７．３０（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝８．２Ｈｚ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．１８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．０７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），５．９５−５．７９（ｍ，２Ｈ，５．６７（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝７．８Ｈｚ），５．３２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１０Ｈｚ），５．１９（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１０Ｈｚ），４．７４−４．６１（ｍ，２Ｈ，ＨＢｎ），４．６３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．０Ｈｚ），４．５７−４．４５（ｍ，２Ｈ），４．４５−４．３５（ｍ，１Ｈ），２．９７（ｂｒｓ，１Ｈ，ＣＨ_２ＯＨ），２．５５−２．４０（ｍ，２Ｈ），２．３９−２．２６（ｍ，１Ｈ），２．１２−１．９６（ｍ，１Ｈ）．

（３）化合物１３の合成

化合物１２（２９．６ｍｇ、０．０７８６ｍｍｏｌ）とトリエチルアミン（１１０μＬ、０．７８６ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、無水酢酸（１５μＬ、０．１５７ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル、３０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（３１．８ｍｇ、９７％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ８．８６（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．９６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．３５（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．３４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．１３（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），５．９５−５．８１（ｍ，２Ｈ），５．６８（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝７．３Ｈｚ），５．３２（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），５．１８（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），５．１３（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），５．０８（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ‘，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），４．６３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝５．５Ｈｚ），４．５８−４．４８（ｍ，２Ｈ），４．４８−４．３９（ｍ，１Ｈ），２．６２−２．４６（ｍ，２Ｈ），２．４１−２．２７（ｍ，１Ｈ），２．１９−２．０５（ｍ，１Ｈ），２．０８（ｓ，３Ｈ，ＯＣＯＣＨ_３）．

（４）化合物１４の合成

化合物１３（３１．７ｍｇ、０．０７５８ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（２３４μＬ、１．８９ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２０ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（２１．８ｍｇ、０．０１８９ｍｍｏｌ）を加え、室温で２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（８．０ｍｇ、３６％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．４０（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．３８（ｄ，１Ｈ，Ｈｄ，Ｊ_{Ｈｄ−Ｈｃ}＝７．３Ｈｚ），７．３２（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｃ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｂ}＝Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｄ}＝７．３Ｈｚ），７．２４（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｂ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈａ}＝Ｊ_{Ｈｂ−Ｈｃ}＝７．３Ｈｚ），５．０９（ｓ，２Ｈ，ＨＢｎ），３．６３（ｔ，１Ｈ，Ｈα,Ｊ_Hα-Hβ＝６．２Ｈｚ），２．６５（ｔ，２Ｈ，Ｈγ，Ｊ_Ｈγ-Hα=Ｊ_Hγ-Hβ＝７．３Ｈｚ），２．１８（ｔｄ，２Ｈ，Ｈβ，Ｊ_Ｈβ-Hγ＝７．３Ｈｚ，Ｊ_Ｈβ-Hα＝６．２Ｈｚ），２．０５（ｓ，３Ｈ，ＣＨ_３ＣＯＯ−）；^１３ＣＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，１００ＭＨｚ）：δ１７２．３，１７２．４，１７１．４，１３５．３，１３１．１，１２９．４，１２８．６，１２６．３，１２６．１，６２．６，５４．３，３２．０，２６．５，１９．５；ＨＲＭＳ３１７．１１１２４（Ｍ＋Ｎａ^＋）．

（５）化合物１５の合成

化合物１２（３５．１ｍｇ、０．０９３３ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（９６μＬ、０．５６０ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．５ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、４−メトキシベンゾイルクロリド（１９ｍｇ、０．１１２ｍｍｏｌ）を加え、室温で４時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（４３．２ｍｇ、９１％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ９．２０（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），８．００（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．２Ｈｚ），８．００（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．４３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．３７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．１４（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），６．９０（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝９．２Ｈｚ），５．９５−５．８２（ｍ，２Ｈ），５．７１（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝６．９Ｈｚ），５．３５（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），５．３４（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１９Ｈｚ），５．３１（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ‘，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），５．２７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１９Ｈｚ），５．２３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），５．１７（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１１Ｈｚ），４．６３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．０Ｈｚ），４．５８−４．５０（ｍ，２Ｈ），４．５０−４．４１（ｍ，１Ｈ），３．８５（ｓ，３Ｈ，ＡｒＯＣＨ_３），２．６７−２．５２（ｍ，２Ｈ），２．４２−２．３０（ｍ，１Ｈ），２．２４−２．０７（ｍ，１Ｈ）．

（６）化合物１６の合成

化合物１５（２６．４ｍｇ、０．０５１７ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（１６０μＬ、１．２９ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（１４．９ｍｇ、０．０１２９ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（７．８ｍｇ、３９％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．９６（ｄ，２Ｈ，Ｈｅ，Ｈｆ，Ｊ_{Ｈｅ−Ｈｈ}＝Ｊ_{Ｈｆ−Ｈｇ}＝９．２Ｈｚ），７．５０（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．４１（ｄ，１Ｈ，Ｈｄ，Ｊ_{Ｈｄ−Ｈｃ}＝６．９Ｈｚ），７．３４（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｃ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｂ}＝７．８Ｈｚ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｄ}＝６．９Ｈｚ），７．２６（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｂ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈｃ}＝７．８Ｈｚ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈａ}＝７．３Ｈｚ），６．９７（ｄ，２Ｈ，Ｈｇ，Ｈｈ，Ｊ_{Ｈｇ−Ｈｆ}＝Ｊ_{Ｈｈ−Ｈｅ}＝９．２Ｈｚ），５．３２（ｓ，２Ｈ，ＨＢｎ），３．８３（ｓ，３Ｈ，−ＯＣＨ_３），３．６２（ｔ，１Ｈ，Ｈα,Ｊ_Hα-Hβ＝６．０Ｈｚ），２．６６（ｔ，２Ｈ，Ｈγ，Ｊ_Hγ-Hα＝Ｊ_Hγ-Hβ＝７．３Ｈｚ），２．１７（ｔｄ，２Ｈ，Ｈβ，Ｊ_Hβ-Hγ=７．３Ｈｚ，Ｊ_Hβ-Hα ＝６．０Ｈｚ）；^１３ＣＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，１００ＭＨｚ）：δ１７２．９，１６６．５，１６４．０，１３５．３，１３１．４，１３１．３，１２９．４，１２８．６，１２６．４，１２６．０，１２２．０，１１３．６，６２．８，５４．７，５４．４，３２．０，２６．５；ＨＲＭＳ４０９．１３２７１（Ｍ＋Ｎａ^＋）．

（７）化合物１７の合成

化合物１２（２９．７ｍｇ、０．０７８９ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（８２μＬ、０．４７３ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．０ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、４−クロロベンゾイルクロリド（１３μＬ、０．０９４７ｍｍｏｌ）を加え、室温で４時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（３３．８ｍｇ、８３％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤＣｌ_３，４００ＭＨｚ）：δ９．０２（ｂｒｓ，１Ｈ，−ＣＯＮＨ−），７．９７（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７Ｈｚ），７．９５（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．４３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ），７．４３（ｄ，２Ｈ，Ｊ＝８．７Ｈｚ），７．３７（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．８Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），７．１６（ｄｄ，１Ｈ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，Ｊ＝７．３Ｈｚ），５．９５−５．７９（ｍ，２Ｈ），５．６９（ｂｒｄ，１Ｈ，−ＯＣＯＮＨ−，Ｊ＝７．８Ｈｚ），５．３８（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），５．３５（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．３３（ｄ，１Ｈ，ＨＢｎ‘，Ｊ_ｇｅｍ＝１２Ｈｚ），５．２６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１７Ｈｚ），５．２３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝９．６Ｈｚ），５．１６（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝９．６Ｈｚ），４．６３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝６．０Ｈｚ），４．５６−４．４８（ｍ，２Ｈ），４．４９−４．４０（ｍ，１Ｈ），２．６６−２．５１（ｍ，２Ｈ），２．４３−２．３０（ｍ，１Ｈ），２．２０−２．０５（ｍ，１Ｈ）．

（８）化合物１８の合成

化合物１７（３３．７ｍｇ、０．０６５４ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（２０３μＬ，１．６３ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（１８．９ｍｇ、０．０１６３ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（３．８ｍｇ、１５％）。
^１ＨＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，４００ＭＨｚ）：δ７．９９（ｄ，２Ｈ，Ｈｅ，Ｈｆ，Ｊ_{Ｈｅ−Ｈｈ}＝Ｊ_{Ｈｆ−Ｈｇ}＝７．８Ｈｚ），７．５１（ｄ，１Ｈ，Ｈａ，Ｊ_{Ｈａ−Ｈｂ}＝７．８Ｈｚ），７．４８（ｄ，２Ｈ，Ｈｇ，Ｈｈ，Ｊ_{Ｈｇ−Ｈｆ}＝Ｊ_{Ｈｈ−Ｈｅ}＝７．８Ｈｚ），７．４０（ｄ，１Ｈ，Ｈｄ，Ｊ_{Ｈｄ−Ｈｃ}＝７．８Ｈｚ），７．３４（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｃ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｄ}＝７．８Ｈｚ，Ｊ_{Ｈｃ−Ｈｂ}＝７．３Ｈｚ），７．２７（ｄｄ，１Ｈ，Ｈｂ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈａ}＝７．８Ｈｚ，Ｊ_{Ｈｂ−Ｈｃ}＝７．３Ｈｚ），５．３６（ｓ，２Ｈ，ＨＢｎ），３．６２（ｔ，１Ｈ，Ｈα，Ｊ_Hα-Hβ＝６．０Ｈｚ），２．６６（ｔ，２Ｈ，Ｈγ，Ｊ_Hγ-Hα＝Ｊ_Hγ-Hβ＝７．３Ｈｚ），２．１６（ｔｄ，２Ｈ，Ｈβ，Ｊ_Hβ-Hγ＝７．３Ｈｚ，Ｊ_Ｈβ-Hα＝６．０Ｈｚ）；^１３ＣＮＭＲ（ＣＤ_３ＯＤ，１００ＭＨｚ）：δ１７２．９，１７２．５，１６５．６，１３９．４，１３５．４，１３１．１，１３０．９，１２９．５，１２８．８，１２８．６，１２６．５，１２６．２，６３．３，５４．３，３２．０，２６．５；ＨＲＭＳ４１３．０８８１７（Ｍ＋Ｎａ^＋）．

（９）化合物１９の合成

化合物１２（３１．５ｍｇ、０．０８３７ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（８７μＬ、０．５０２ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．２ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、４−ニトロベンゾイルクロリド（１８．６ｍｇ、０．１００ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，３０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（４０．５ｍｇ、９２％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.86 (brs, 1H, -CONH-), 8.27 (d, 2H, J = 8.7 Hz), 8.21 (d, 2H, J = 8.7 Hz), 7.91 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.45 (d, 1H, J = 7.3 Hz), 7.38 (dd, 1H, J = 7.8 Hz, J = 7.3 Hz), 7.18 (dd, 1H, J = 7.3 Hz, J = 7.3 Hz), 5.95-5.78 (m, 2H), 5.67 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 5.44 (d, 1H, HBn, J_gem = 12 Hz), 5.39 (d, 1H, HBn’, J_gem = 12 Hz), 5.31 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.25 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.23 (d, 1H, J = 11 Hz), 5.16 (d, 1H, J = 11 Hz), 4.63 (d, 1H, J = 6.0 Hz), 4.56-4.39 (m, 3H), 2.65-2.51 (m, 2H), 2.43-2.29 (m, 1H), 2.20-2.03 (m, 1H).

（１０）化合物２０（N⁵-(2-(((4-nitrobenzoyl)oxy)methyl)phenyl)-L-glutamine）の合成

化合物１９（４０．５ｍｇ、０．０７７１ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（２３９μＬ、１．９２ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（２２．３ｍｇ、０．０１９２ｍｍｏｌ）を加え、室温で２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（６．３ｍｇ、２０％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 8.31 (d, 2H, He, Hf, J_He-Hh = J_Hf-Hg = 9.2 Hz), 8.22 (d, 2H, Hg, Hh, J_Hg-Hf = J_Hh-He = 9.2 Hz), 7.53 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.3 Hz), 7.40-7.34 (m, 2H, Hc, Hd), 7.29 (ddd, 1H, Hb, J_Hb-Ha = J_Hb-Hc = 7.3 Hz, J_Hb-Hd = 1.8 Hz), 5.41 (s, 2H, HBn), 3.62 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ =6.0 Hz), 2.66 (t, 2H,Hγ, J_Hγ-Hα = J_Hγ-Hβ = 7.3 Hz), 2.16 (td, 2H, Hβ,J_Hβ-Hγ =7.3 Hz, J_Hβ-Hα =6.0 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 173.0, 172.5, 164.7, 150.8, 135.5, 130.9, 130.5, 129.7, 129.0, 128.0, 127.6, 126.5, 125.6, 124.6, 123.3, 63.9, 54.3, 32.0, 26.6; HRMS 413.11126 (M+Na⁺).

（１１）化合物２１の合成

化合物１２（３０．８ｍｇ、０．０８１８ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（８５μＬ、０．４９１ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．１ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、２−クロロベンゾイルクロリド（１２．４μＬ、０．０９７８ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間半攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，２０％→３０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（２７．３ｍｇ、６３％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.74 (brs, 1H, -CONH-), 7.94 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.83 (d, 1H, J = 7.6 Hz), 7.47-7.41 (m, 3H), 7.37 (ddd, 1H, J = 7.8 Hz, J = 7.8 Hz, J = 1.4 Hz), 7.30 (ddd, 1H, J = 7.3 Hz, J = 6.9 Hz, J = 1.8 Hz), 7.16 (dd, 1H, J = 7.3 Hz, J = 7.3 Hz), 5.95-5.80 (m, 2H), 5.66 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 5.40 (d, 1H, HBn, J_gem = 12 Hz), 5.36 (d, 1H, HBn’, J_gem = 12 Hz), 5.31 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.26 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.22 (d, 1H, J = 11 Hz), 5.16 (d, 1H, J = 11 Hz), 4.63 (d, 1H, J = 6.0 Hz), 4.58-4.49 (m, 2H), 4.49-4.39 (m, 1H), 2.67-2.50 (m, 2H), 2.44-2.30 (m, 1H), 2.18-2.04 (m, 1H).

（１２）化合物２２の合成

化合物２１（２７．３ｍｇ、０．０５３０ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（１６４μＬ、１．３２ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（１５．３ｍｇ、０．０１３２ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（１１．１ｍｇ、５４％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 7.81 (d, 1H, He, J_He-Hf = 7.3 Hz), 7.53 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.3 Hz), 7.49-7.48 (m, 2H, Hc, Hd), 7.41-7.34 (m, 3H, Hb, Hg, Hh), 7.29 (dd, 1H, Hb, J_Hb-Ha = J_Hb-Hc = 7.3 Hz), 5.37 (s, 2H, HBn), 3.63 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ =6.0 Hz), 2.67 (t, 2H, Hγ, J_Hγ-Hα = J_Hγ-Hβ = 7.3 Hz), 2.18 (td, 2H, Hβ,J_Hβ-Hγ = 7.3 Hz, J_Hβ-Hα = 6.0 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 172.9, 172.7, 135.4, 133.1, 132.7, 131.1, 130.8, 130.7, 130.1, 129.6, 128.8, 126.7, 126.4, 126.1, 63.6, 54.4, 32.0, 26.6; HRMS 413.08882 (M+Na⁺).

（１３）化合物２３の合成

化合物１２（３２．２ｍｇ、０．０８５５ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（８９μＬ、０．５１３ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．２ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、３−ニトロベンゾイルクロリド（１４μＬ、０．１０３ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，３０％→５０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（３７．８ｍｇ、８４％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.90 (brs, 1H, -CONH-), 8.85 (s, 1H), 8.41 (dd, 1H, J = 8.0 Hz, J = 2.3 Hz), 8.36 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.91 (d, 1H, J = 7.8Hz), 7.65 (dd, 1H, J = 8.2 Hz, J = 7.8 Hz), 7.47 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.38 (dd, 1H, J = 7.8 Hz, J = 7.3 Hz), 7.18 (dd, 1H, J = 7.3 Hz, J = 7.3 Hz), 5.95-5.78 (m, 2H), 5.68 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 5.45 (d, 1H, HBn, J_gem = 12 Hz), 5.40 (d, 1H, HBn’, J_gem = 12 Hz), 5.31 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.25 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.23 (d, 1H, J = 11 Hz), 5.15 (d, 1H, J = 11 Hz), 4.63 (d, 1H, J = 6.0 Hz), 4.56-4.40 (m, 2H), 2.67-2.51 (m, 2H), 2.44-2.30 (m, 1H), 2.22-2.05 (m, 1H).

（１４）化合物２４の合成

化合物２３（３６．９ｍｇ、０．０７０２ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（２１７μＬ、１．７６ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（２０．３ｍｇ、０．０１７６ｍｍｏｌ）を加え、室温で２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液をそのまま逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製に通し、白色固体の目的物を得た（１０．０ｍｇ、３５％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 8.78 (s, 1H, He), 8.45 (d, 1H, Hh, J_Hh-Hg = 8.2 Hz), 8.39 (d, 1H, Hf, J_Hf-Hg = 7.6 Hz), 7.75 (dd, 1H, Hg, J_Hg-Hh = 8.2 Hz, J_Hg-Hf = 7.6 Hz), 7.54 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.3 Hz), 7.43-7.35 (m, 2H, Hc, Hd), 7.41-7.34 (m, 3H, Hb, Hg, Hh), 7.30 (dd, 1H, Hb, J_Hb-Ha = J_Hb-Hc = 7.3 Hz), 5.43 (s, 2H, HBn), 3.60 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ =6.0 Hz), 2.66 (t, 2H,Hγ, J_Hγ-Hα = J_Hγ-Hβ = 7.3 Hz), 2.16 (td, 2H,Hβ, J_Hβ-Hγ =7.3 Hz, J_Hβ-Hα =6.0 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): no data; HRMS 424.11063(M+Na⁺).

（１５）化合物２５の合成

化合物１２（３７．３ｍｇ、０．０９９１ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（１０３μＬ、０．５９５ｍｍｏｌ）とＤＭＡＰ（３．７ｍｇ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、２−ニトロベンゾイルクロリド（１６μＬ、０．１１９ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間半攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和塩化アンモニウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル、３０％→５０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（４０．５ｍｇ、７８％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.23 (brs, 1H, -CONH-), 7.91 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.74 (d, 1H, J = 8.0 Hz),7.71-7.60 (m, 2H), 7.38 (dd, 1H, J = 7.8 Hz, J = 7.3 Hz), 7.37 (d, 1H, J = 7.3 Hz), 7.16 (dd, 1H, J = 7.3 Hz, J = 7.3 Hz), 5.95-5.80 (m, 2H), 5.69 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 5.38 (d, 1H, HBn, J_gem = 12 Hz), 5.31 (d, 1H, HBn’, J_gem = 12 Hz), 5.31 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.26 (d, 1H, J = 17 Hz), 5.22 (d, 1H, J = 11 Hz), 5.15 (d, 1H, J = 11 Hz), 4.63 (d, 1H, J = 6.0 Hz), 4.58-4.40 (m, 2H), 2.68-2.53 (m, 2H), 2.42-2.30 (m, 1H), 2.18-2.20 (m, 1H).

（１６）化合物２６の合成

化合物２５（４０．２ｍｇ、０．０７６５ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（２３６μＬ、１．９１ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（２２．１ｍｇ、０．０１９１ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液をそのまま逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製に通し、白色固体の目的物を得た（７．２ｍｇ、２３％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 7.94 (d, 1H, He, J_He-Hf = 7.8 Hz), 7.82-7.69 (m, 3H, Hf, Hg, Hh), 7.46 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.3 Hz), 7.42-7.33 (m, 2H, Hc, Hd), 7.27 (dd, 1H, Hb, J_Hb-Ha = J_Hb-Hc = 7.3 Hz), 5.34 (s, 2H, HBn), 3.63 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ =5.3 Hz), 2.69 (t, 2H,Hγ, J_Hγ-Hα = J_Hγ-Hβ = 6.6 Hz), 2.18 (td, 2H,Hβ, J_Hβ-Hγ =6.6 Hz, J_Hβ-Hα =5.3 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): 173.0, 172.6, 165.3, 135.5, 133.0, 132.3, 130.2, 129.8, 129.0, 126.9, 126.4, 126.1, 123.8, 64.4, 54.4, 32.0, 26.5; HRMS 424.11207 (M+Na⁺).

［実施例５］
（１）ベンジル位脱離基変換誘導体を用いた酵素認識能の確認
次に、合成したベンジル位脱離基変換誘導体と精製酵素を用いて酵素反応を以下の条件で行った。
化合物終濃度：１００μＭ
酵素終濃度：１０Ｕ／ｍＬ（ＧＧＴ）
反応温度：３７℃

ＧＧＴを用いた酵素反応
機種：１２６０Ｉｎｆｉｎｉｔｙ（Ａｇｉｌｅｎｔ社製）
カラム：Ｐｏｒｏｓｈｅｌｌ１２０、４．６×１００ｍｍ（Ａｇｉｌｅｎｔ社製）
移動相Ａ：水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
移動相Ｂ：８０％アセトニトリル／水（０．０１Ｍギ酸アンモニウム）
グラジエント：Ａ／Ｂ：９５／５→５０／５０、２０分

結果を図１２に示す。図１２は、それぞれ上から、原料の質量ピークの０時間後、１時間後のクロマトグラム、酵素反応生成物の質量ピークピークの０時間後、１時間後のクロマトグラムを示す。
図１２の結果から、アシル系脱離基を有する誘導体群は、精製ＧＧＴによって速度は違うもののアザキノンメチドを放出することが確認された。

（２）ベンジル位脱離基変換誘導体を用いたｉｎｖｉｔｒｏ薬効試験（ＣＣＫ−８アッセイ）
次に、ベンジル位脱離基変換誘導体について、前述したＣＣＫ−８アッセイを行った。結果を図１３に示す。
図１３に示すように、脱離基がフッ素のモデル化合物が薬効を示した２５μＭの濃度で、アシル系脱離基を有する誘導体はいずれも抗腫瘍活性を示さない結果となった。

ベンゼン環上置換基変換誘導体の合成
更に、ＧＧＴプロドラッグ誘導体としてベンゼン環上４、５位に置換基を導入した以下の４種の化合物の合成を行った。メチル基（電子供与基）とメチルエステル基（電子吸引基）を導入することで、ベンゼン環の電子密度が変化し、放出されるアザキノンメチドの反応性が変化するため、細胞死にも影響が出ると予想される。

［合成実施例５］
以下の合成スキーム５により、４位置換体を合成した。

（スキーム５）

（１）化合物２７の合成

（Ｓ）−５−（ｔｅｒｔ−ブトキシ）−４−（（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（３４７ｍｇ，１．１４ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（１０ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（４０８ｍｇ，１．７２ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（７４３μＬ，３．４３ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、メチル‐４‐アミノ‐３‐（（（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）ベンゾエート（４０５ｍｇ，１．３７ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，１０％→２０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、目的物を混合物として得た（１９７ｍｇ）。この混合物を脱水ＴＨＦ（５ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ，１ｍＬ，１．００ｍｍｏｌ）と酢酸（４６μＬ、０．６７８ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，４０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（３９．９ｍｇ、２ステップ６％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 9.16 (brs, 1H, -CONH-), 8.24 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.97 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.85 (s, 1H), 5.31 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.3 Hz), 4.84-4.64 (m, 2H, HBn), 4.27-4.15 (m, 1H), 3.88 (s, 3H, ArCOOCH₃), 3.26-3.18 (m, 1H, CH₂OH), 2.36-2.22 (m, 1H), 2.03-1.88 (m, 1H), 1.45 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.41 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（２）化合物２８の合成

化合物２７（３８．６ｍｇ，０．０８２４ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＤＡＳＴ（５４μＬ、０．４１２ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，２０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（２５．９ｍｇ、６７％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.48 (brs, 1H, -CONH-), 8.23 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 8.07 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.99 (s, 1H), 5.70-5.38 (m, 2H, HBn), 5.30 (brs, 1H, -OCONH-), 4.28-4.18 (m, 1H), 3.91 (s, 3H, ArCOOCH₃), 2.62-2.42 (m, 2H), 2.40-2.26 (m, 1H), 2.20-1.82 (m, 1H), 1.46 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.44 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（３）化合物２９の合成

化合物２８（２９．５ｍｇ、０．０５５３ｍｍｏｌ）を４Ｍ．塩酸／酢酸エチル（２ｍＬ）に溶解させ、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（１１ｍｇ、６４％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 8.09 (s, 1H, Ha), 7.99 (d, 1H, Hb, J_Hb-Hc = 8.7 Hz), 7.66 (d, 1H, Hb, J_Hb-Hc = 8.7 Hz), 5.44 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz), 4.06 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ = 6.4 Hz), 3.89 (s, 3H, ArCOOCH₃), 2.76 (t, 2H, Hγ, J_Hγ-Hα = 6.9 Hz), 2.25 (tt, 2H, Hβ, J_Hβ-Hγ = 6.9 Hz, J_Hβ-Hα = 6.4 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 173.1, 171.4, 167.7, 140.7, 131.9, 131.4, 131.0, 128.7, 126.0, 82.2 (d, CH₂F, J_C-F = 164 Hz), 53.4, 52.7, 32.7, 26.8; HRMS 335.10105 (M+Na⁺).

［合成実施例６］
以下の合成スキーム６により、４位置換体を合成した。

（スキーム６）

（１）化合物３０の合成

（Ｓ）−５−（ｔｅｒｔ−ブトキシ）−４−（（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（８１１ｍｇ、２．６７ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（２０ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（９５２ｍｇ、４．０１ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（１７４μＬ、８．０２ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）‐４‐メチルアニリン（８０７ｍｇ、３．２１ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、１０％→２０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（１．３１ｇ，９１％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.78 (brs, 1H, -CONH-), 8.00 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.09 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 6.91 (s, 1H), 5.21 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 4.70 (d, 1H, HBn, J_gem = 13 Hz), 4.67 (d, 1H, HBn’, J_gem = 13 Hz), 4.28-4.14 (m, 1H), 2.52-2.33 (m, 2H), 2.32-2.18 (m, 1H), 2.29 (s, 3H, ArCH₃), 2.06-1.92 (m, 1H), 1.46 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.42 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃), 0.90 (s, 9H, Si(CH₃)₃), 0.08 (s, 6H, Si(CH₃)₂).

（２）化合物３１の合成

化合物３０（１．３１ｇ、２．４３ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（１４ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ、７．３ｍＬ、７．３ｍｍｏｌ）と酢酸（３２９μＬ、４．８７ｍｍｏｌ）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、４０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（１．０３ｇ、定量的）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.75 (brs, 1H, -CONH-), 7.68 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.07 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.01 (s, 1H), 5.36 (brd, 1H, -OCONH-, J = 8.2 Hz), 4.60 (d, 1H, HBn, J_gem = 13 Hz), 4.54 (d, 1H, HBn’, J_gem = 13 Hz), 4.22-4.10 (m, 1H), 2.48-2.32 (m, 2H), 2.32-2.06 (m, 1H), 2.27 (s, 3H, ArCH₃), 2.20-1.82 (m, 1H), 1.44 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.40 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（３）化合物３２の合成

化合物３１（４７６ｍｇ、１．１３ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（１０ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＤＡＳＴ（７３８μＬ、５．６３ｍｍｏｌ）を加え、１時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、２０％→３０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（１２９ｍｇ、２７％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.14 (brs, 1H, -CONH-), 7.68 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.17 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.12 (s, 1H), 5.38 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz, J_gem = 11 Hz), 5.30 (brd, 1H, -OCONH-, J = 6.0 Hz), 4.32-4.16 (m, 1H), 2.56-2.36 (m, 2H), 2.36-2.20 (m, 1H), 2.31 (s, 3H, ArCH₃), 2.20-1.84 (m, 1H), 1.45 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.43 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（４）化合物３３の合成

化合物３２（３８．５ｍｇ、０．０９０７ｍｍｏｌ）を４Ｍ．塩酸／酢酸エチル（１ｍＬ）に溶解させ、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（７．５ｍｇ、３１％）。
¹H NMR (CD₂Cl₂, 400 MHz): δ 7.26 (s, 1H), 7.23 (d, 1H, Hc, J_Hc-Hb = 7.8 Hz), 7.17 (d, 1H, Hb, J_Hb-Hc = 7.8 Hz), 5.32 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz), 3.62 (t, 1H, Hα, J_Ha-Hβ = 6.0 Hz), 2.63 (t, 2H, Hγ, J_Hγ-Hβ = 7.3 Hz), 2.33 (s, 3H, ArCH₃), 2.22-2.10 (m, 2H, Hβ); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 174.2, 173.6, 137.7, 133.6, 132.8, 130.8, 130.2, 127.2, 82.5 (d, CH₂F, J_C-F = 163 Hz), 55.4, 33.2, 27.8, 21.0; HRMS 269.13277 (M+H⁺).

［合成実施例７］
続いて、以下のスキーム７により、５位置換体の合成を行った。

（スキーム７）

（１）化合物３４の合成

（Ｓ）−５−（ｔｅｒｔ−ブトキシ）−４−（（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（１７０ｍｇ、０．５６０ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（６ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（２００ｍｇ、０．８４０ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（３６４μＬ，１．６８ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、メチル−３−アミノ−４−（（（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）ベンゾエート（１９８ｍｇ、０．６７２ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（１９９ｍｇ、６１％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.93 (brs, 1H, -CONH-), 8.77 (s, 1H), 7.73 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.20 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 5.20 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 4.78 (d, 1H, HBn, J_gem = 13 Hz), 4.74 (d, 1H, HBn’, J_gem = 13 Hz), 4.26-4.16 (m, 1H), 3.88 (s, 3H, ArCOOCH₃), 2.53-2.34 (m, 2H), 2.34-2.20 (m, 1H), 2.06-1.90 (m, 1H), 1.45 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.41 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃), 0.90 (s, 9H, Si(CH₃)₃), 0.08 (s, 6H, Si(CH₃)₂).

（２）化合物３５の合成

化合物３４（１９９ｍｇ、０．３４３ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（１０ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ、１．０３ｍＬ、１．０３ｍｍｏｌ）と酢酸（４２μＬ、０．６８７ｍｍｏｌ）を加え、室温で２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、４０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（１１６ｍｇ、７３％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.96 (brs, 1H, -CONH-), 8.55 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.75 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 7.29 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 5.34 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 4.74 (dd, 1H, HBn, J_gem = 13 Hz, J = 6.0 Hz), 4.67 (dd, 1H, HBn’, J_gem = 13 Hz, J = 5.5 Hz), 4.26-4.12 (m, 1H), 3.88 (s, 3H, ArCOOCH₃), 3.51 (dd, 1H, CH₂OH, J = 6.0 Hz, J = 5.5 Hz), 2.54-2.38 (m, 2H), 2.34-2.20 (m, 1H), 2.01-1.84 (m, 1H), 1.45 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.41 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（３）化合物３６の合成

化合物３５（１１０ｍｇ、０．２３６ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（１０ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。Ｆｌｕｏｌｅａｄ（登録商標）（１１９ｍｇ、０．４７２ｍｍｏｌ）を加え、１時間半攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、ジクロロメタンで２回抽出を行った。ジクロロメタン層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル，２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（４３．６ｍｇ、３９％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.47 (brs, 1H, -CONH-), 8.45 (s, 1H), 7.85 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 7.43 (d, 1H, J = 8.2 Hz), 5.48 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz, J_gem = 12 Hz), 5.33 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 4.28-4.17 (m, 1H), 3.90 (s, 3H, ArCOOCH₃), 2.57-2.40 (m, 2H), 2.35-2.22 (m, 1H), 1.97 -1.82 (m, 1H), 1.45 (s, 9H, COO(CH₃)₃), 1.43 (s, 9H, NHCOO(CH₃)₃).

（４）化合物３７の合成

化合物３６（４３．６ｍｇ、０．０９３１ｍｍｏｌ）を４Ｍ．塩酸／酢酸エチル（１０ｍＬ）に溶解させ、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液の濃縮を行った。残渣は逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製を行い、白色固体の目的物を得た（１９．４ｍｇ、６０％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 8.04 (s, 1H, Hc), 7.91 (d, 1H, Hb, J_Hb-Ha = 7.8 Hz), 7.56 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.8 Hz), 5.44 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz), 4.07 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ = 6.4 Hz), 2.75 (t, 2H, Hγ, J_Hγ-Hα = 7.3 Hz), 2.26 (tt, 2H, Hβ, J_Hβ-Hγ = 7.3 Hz, J_Hβ-Hα= 6.4 Hz); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 172.0, 170.2, 166.3, 136.5, 134.6, 130.7, 127.8, 126.9, 126.6, 80.7 (d, CH₂F, J_C-F = 165 Hz), 52.1, 51.5, 31.1, 25.6; HRMS 313.11879 (M+H⁺).

［合成実施例８］
更に、以下のスキーム８により、５位置換体の合成を行った。

（スキーム８）

（１）化合物３８の合成

（Ｓ）−５−（アリルオキシ）−４−（（（アリルオキシ）カルボニル）アミノ）−５−オキソペンタン酸（６３．０ｍｇ、０．２３２ｍｍｏｌ）を脱水ＤＭＦ（５ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＨＡＴＵ（８３．０ｍｇ、０．３４８ｍｍｏｌ）とＤＩＰＥＡ（１５１μＬ、０．６９７ｍｍｏｌ）を加え、０℃で５分間攪拌した。続いて、２−（ｔｅｒｔ−ブチルジメチルシリル）オキシ）メチル）‐５‐メチルアニリン（７０ｍｇ、０．２７９ｍｍｏｌ）を加え、室温まで昇温し、さらに１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（３４ｇシリカゲル、２０％→３０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（５９．０ｍｇ、５０％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.80 (brs, 1H, -CONH-), 7.93 (s, 1H), 6.89 (d, 1H, J = 7.6 Hz), 6.76 (d, 1H, J = 7.6 Hz), 5.90-5.70 (m, 2H), 5.56 (brd, 1H, -OCONH-, J = 8.0 Hz), 5.28-5.10 (m, 4H), 4.62 (s, 2H, HBn), 4.58-4.40 (m, 4H), 4.40-4.30 (m, 1H), 2.51-2.30 (m, 2H), 2.36-2.21 (m, 1H), 2.26 (s, 3H, ArCH₃), 2.13-1.95 (m, 1H), 0.83 (s, 9H, Si(CH₃)₃), 0.00 (s, 6H, Si(CH₃)₂).

（２）化合物３９の合成

化合物３９（５９．０ｍｇ、０．１１７ｍｍｏｌ）を脱水ＴＨＦ（３ｍＬ）に溶解させ、ＴＢＡＦ（ｃａ．１ｍｏｌ／ＬｉｎＴＨＦ，３５１μＬ、０．３５１ｍｍｏｌ）と酢酸（１６μＬ、０．２３４ｍｍｏｌ）を加え、室温で１２時間攪拌した。反応終了を確認し、水を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は水と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル，４０％→６０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、無色液体の目的物を得た（３２．６ｍｇ、７１％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 8.68 (brs, 1H, -CONH-), 7.80 (s, 1H), 7.06 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 6.88 (d, 1H, J = 7.8 Hz), 5.96-5.80 (m, 2H), 5.66 (brd, 1H, -OCONH-, J = 7.8 Hz), 5.36-5.14 (m, 4H), 4.71-4.35 (m, 8H), 2.87 (brs, 1H, CH₂OH), 2.55-2.41 (m, 2H), 2.39-2.27 (m, 1H), 2.32 (s, 3H, ArCH₃), 2.14-1.97 (m, 1H).

（３）化合物４０の合成

化合物３９（３２．６ｍｇ、０．０８３５ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（２ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。ＤＡＳＴ（５５μＬ、０．４１７ｍｍｏｌ）を加え、３時間攪拌した。反応終了を確認し、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を加え、酢酸エチルで２回抽出を行った。酢酸エチル層は飽和炭酸水素ナトリウム水溶液と飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させたのち濃縮を行った。残渣はシリカゲルクロマトグラフィー（１４ｇシリカゲル、２０％→４０％酢酸エチル／ヘキサン）による精製を行い、薄黄色液体の目的物を得た（１０．３ｍｇ，３１％）。
¹H NMR (CDCl₃, 400 MHz): δ 7.77 (s, 1H), 7.17 (d, 1H, J = 7.3 Hz), 6.96 (d, 1H, J = 7.3 Hz), 5.97-5.82 (m, 2H), 5.57 (brd, 1H, -OCONH-, J = 6.9 Hz), 5.40 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz, J_gem = 11 Hz), 5.36-5.17 (m, 4H), 4.65 (d, 2H, J = 5.5 Hz), 4.59-4.42 (m, 3H), 2.59-2.42 (m, 2H), 2.45-2.27 (m, 1H), 2.36 (s, 3H, ArCH₃), 2.15-2.00 (m, 1H).

（４）化合物４１の合成

化合物４０（１０．３ｍｇ、０．０２６２ｍｍｏｌ）とフェニルシラン（３３μＬ、０．２６２ｍｍｏｌ）を脱水ジクロロメタン（１ｍＬ）に溶解させ、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（７．６ｍｇ、２５ｍｏｌ％）を加え、室温で１時間攪拌した。反応終了を確認し、反応液をそのまま逆相ＨＰＬＣ（２０％→１００％アセトニトリル／水）による精製に通し、白色固体の目的物を得た（３．１ｍｇ、４４％）。
¹H NMR (CD₃OD, 400 MHz): δ 7.31 (d, 1H, Hb, J_Hb-Ha = 7.8 Hz), 7.22 (s, 1H, Hc), 7.09 (d, 1H, Ha, J_Ha-Hb = 7.8 Hz), 5.32 (d, 2H, HBn, J_HBn-F = 48 Hz), 3.65 (t, 1H, Hα, J_Hα-Hβ = 6.0 Hz), 2.71-2.59 (m, 2H, Hγ), 2.32 (s, 3H, ArCH₃), 2.23-2.10 (m, 2H, Hβ); ¹³C NMR (CD₃OD, 100 MHz): δ 172.0, 170.1, 139.4, 134.8, 130.0, 128.7, 127.0, 126.4, 81.1 (d, CH₂F, J_C-F = 163 Hz), 52.3, 31.2, 25.7, 19.8; HRMS 291.08980 (M+Na⁺).

［実施例６］
ベンゼン環上置換基変換誘導体のｉｎｖｉｔｒｏ薬効評価
４位置換誘導体のＣＣＫ−８アッセイの結果を図１４に示す。電子供与基が置換した誘導体が相対的に強い抗腫瘍活性を示す傾向が見られた。

５位置換誘導体のＣＣＫ−８アッセイの結果を図１５に示す。脱離基のパラ位にあたる５位の置換基効果は４位に比べて強力であり、５−ＣＯＯＭｅ、５−Ｈ、５−Ｍｅの薬効の差がより顕著になっている。また、５−ＣＯＯＭｅ誘導体についてのＧＧＴ低発現細胞による薬効評価を図１５に下段に示す。

以上で示したように、本発明のプロドラッグ型抗がん剤は、ＧＧＴを高発現しているがん細胞膜上のＧＧＴによってＬ−グルタミン酸部が切断されると同時に、アザキノンメチド構造を有する高反応性物質（毒性誘引物質）が放出されるという仕組みで抗腫瘍効果を示す。ＧＧＴ高発現／低発現細胞株を用いた共培養イメージングにて薬効を確認した結果、本発明のプロドラッグ型抗がん剤は、隣接したＧＧＴ低発現細胞を死滅させることなくＧＧＴ高発現細胞株のみを選択的に死滅させることが可能であった。この結果は、本発明のプロドラッグ型抗がん剤がｉｎｖｉｖｏでも広い安全域を示す可能性を示唆するものであった。

［実施例７］
腹膜播種モデルマウスに対するｇＧｌｕ−ＦＭＡ（化合物３）の投与試験
（１）腹膜播種について
腹膜播種とは、腹膜内を覆う腹膜の表面に腫瘍細胞が散布され、生着した状態をさす。臨床では、胃癌・大腸癌、卵巣癌などから転移してくる場合が多く、化学療法を含め画期的な治療法が確立されていない。

（２）モデルマウス作製と試験概要
腹膜播種のモデルマウスは、腹腔内にＰＢＳに懸濁したＳＨＩＮ３細胞（卵巣癌由来癌細胞株、高ＧＧＴ活性）を腹腔内投与することにより作製した。細胞播種後７日目から５ｍｇ／ｋｇのｇＧｌｕ−ＦＭＡまたはＰＢＳ（コントロール）を腹腔内に連日投与し、細胞播種後２１日目にｇＧｌｕ−ＨＭＲＧを腹腔内投与し、１０分後にマウスをサクリファイス、開腹したのちｉｎｖｉｖｏイメージング装置ｍａｅｓｔｒｏにて蛍光画像の取得を行った（図１６）。

（３）結果
図１７にＰＢＳおよびｇＧｌｕ−ＦＭＡ投与マウスの腸間膜のマクロ画像とその蛍光画像２例を示した。マクロ画像と蛍光画像ともにｇＧｌｕ−ＦＭＡ投与マウスの方が腫瘍が全体的に減少しているように見える。

［産業上の利用可能性］
本発明のプロドラッグ型抗がん剤は、近接した２細胞間の代謝酵素活性の違いを認識し、酵素活性が亢進しているがん細胞のみを死滅させることが可能であり、重篤な副作用による患者のＱＯＬ低下というがん化学療法における大きな問題を改善し得る革新的な臨床薬剤となることが期待される。さらに、既存の抗がん剤を用いないアザキノンメチド放出型の本発明のプロドラッグは簡便に合成可能であることから、開発コストにも大きな寄与をもたらすものと期待される。このように、開発したプロドラッグの医療上、産業上の利用価値、経済価値は極めて大きいと考えられる。

Claims

以下の一般式（Ｉ）で表される化合物又はその塩。
（式中、
Ｘは、フッ素原子、エステル基（−ＯＣ（＝Ｏ）−Ｒ’）、カーボネート基（−ＯＣＯ_２−Ｒ’）、カーバメート基（−ＯＣＯＮＨ−Ｒ’）、リン酸およびそのエステル基（−ＯＰ（＝Ｏ）（−ＯＲ’）（―ＯＲ’’）、及び硫酸およびそのエステル基（―ＯＳＯ_２―ＯＲ’）からなる群から選択され、
ここで、Ｒ’、Ｒ’’は、各々独立に、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基から選択され；
Ｙは、−ＮＨ−ＣＯ−Ｌ、−ＮＨ−Ｌ’又は−ＯＬ’であり、
ここで、Ｌは、アミノ酸の部分構造であり、
Ｌ’は、糖類又は糖類の部分構造、自己開裂型のリンカーを有する糖類、自己開裂型のリンカーを有するアミノ酸類又はペプチドであり；
Ｒ^１及びＲ^２は、各々独立に、水素原子又は一価の置換基から選択され；
Ｒ^３は、水素原子、又はベンゼン環上に存在する１〜４個の同一又は異なる一価の置換基を示す。）
Ｌのアミノ酸の部分構造は、それが結合しているＣ＝Ｏと一緒になって、アミノ酸、アミノ酸残基、ペプチド、アミノ酸の一部を構成している、請求項１に記載の化合物又はその塩。
Ｌ’の糖類の部分構造は、それが結合しているＯと一緒になって、糖類、糖類の一部を構成している、請求項１に記載の化合物又はその塩。
一般式（Ｉ）中の−Ｙが、−Ｃ（Ｒ^１）（Ｒ^２）Ｘに対してベンゼン環のオルト位又はパラ位上で結合している、請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
Ｙが、以下から選択される構造を有する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
Ｘは、フッ素原子又はエステル基（−ＯＣＯ−Ｒ’）である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
Ｒ^１及びＲ^２は、各々独立に、水素原子又はフッ素原子から選択される、請求項１〜６のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
Ｒ^３の一価の置換基が、アルキル基、アルコキシカルボニル基、ニトロ基、アミノ基、水酸基、アルキルアミノ基（−ＮＨＲ’、−ＮＨＣＯＲ’）、アルコキシ基（−ＯＲ’、−ＯＣＯＲ’）、ハロゲン原子、ボリル基、シアノ基からなる群から選択される（Ｒ’は、置換又は無置換のアルキル基、又は、置換又は無置換のアリール基である）、請求項１〜７のいずれか１項に記載の化合物又はその塩。
Ｒ^３の一価の置換基が、アルキル基（例えば、メチル基）又はアルコキシカルボニル基（例えば、メトキシカルボニル基）である、請求項８に記載の化合物又はその塩。
請求項１〜９のいずれか１項に記載の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、プロドラッグ型抗がん剤。
請求項１〜９のいずれか１項に記載の化合物又はその医薬的に許容可能な塩を含む、がん細胞特異的な酵素活性により細胞選択的に作用するプロドラッグ型抗がん剤。
前記酵素が、ペプチダーゼ又はグリコシダーゼである、請求項１１に記載のプロドラッグ型抗がん剤。