JPWO2018021357A1 - 幹細胞の分化を抑制する方法、幹細胞を調製する方法、及び幹細胞を分化誘導する方法 - Google Patents
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Abstract
Description
再生医療の重要度が加速的に増す中、幹細胞の果たす役割は益々重要となっている。例えば、自家細胞移植を実施する場合に大量の幹細胞が必要となる。しかし、増殖させる過程で幹細胞は自発的に分化しやすく、未分化性を維持しながら培養することは困難であることが知られている。
ポリイミド多孔質膜は、本出願前よりフィルター、低誘電率フィルム、燃料電池用電解質膜など、特に電池関係を中心とする用途のために利用されてきた。特許文献4〜6は、特に、気体などの物質透過性に優れ、空孔率の高い、両表面の平滑性が優れ、相対的に強度が高く、高空孔率にもかかわらず、膜厚み方向への圧縮応力に対する耐力に優れるマクロボイドを多数有するポリイミド多孔質膜を記載している。これらはいずれも、アミック酸を経由して作成されたポリイミド多孔質膜である。
[1]
幹細胞の分化を抑制する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通している、前記方法。
[2]
前記細胞がES細胞、EC細胞、EG細胞、核移植ES細胞、ntES細胞、iPS細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、皮膚幹細胞、骨髄幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、精原細胞、II型肺胞上皮細胞、脂肪幹細胞、歯髄幹細胞、脱分化脂肪細胞又はMUSE細胞である、[1]に記載の方法。
[3]
前記工程(2)が少なくとも30日間実施される、[1]又は[2]に記載の方法。
[4]
前記工程(2)において、細胞を、ポリマー多孔質膜1平方センチメートル当たりに1.0x105個以上となるまで増殖させる、[1]〜[3]のいずれか1つに記載の方法。
[5]
2以上のポリマー多孔質膜を、上下又は左右に細胞培養培地中に積層して用いる、[1]〜[4]のいずれか1つに記載の方法。
[6]
前記ポリイミド多孔質膜を
i)折り畳んで、
ii)ロール状に巻き込んで、
iii)シートもしくは小片を糸状の構造体で連結させて、あるいは、
iv)縄状に結んで
細胞培養容器中の細胞培養培地中で浮遊もしくは固定させて用いる、[1]〜[5]のいずれか1つに記載の方法。
[7]
工程(2)において、ポリイミド多孔質膜の一部分又は全体が、細胞培養培地の液相と接触していない、[1]〜[6]のいずれか1つに記載の方法。
[8]
工程(2)において、細胞培養容器中に含まれる細胞培養培地の総体積が、細胞生存域を含むポリイミド多孔質膜体積の総和の10000倍又はそれより少ない、[1]〜[7]のいずれか1つに記載の方法。
[9]
前記表面層Aの平均孔径が、0.01〜50μmである、[1]〜[8]のいずれか1つに記載の方法。
[10]
前記表面層Bの平均孔径が、20〜100μmである、[1]〜[9]のいずれか1つに記載の方法。
[11]
前記ポリマー多孔質膜の膜厚が、5〜500μmである、[1]〜[10]のいずれか1つに記載の方法。
[12]
前記ポリマー多孔質膜がポリイミド多孔質膜である、[1]〜[11]のいずれか1つに記載の方法。
[13]
ポリイミド多孔質膜が、テトラカルボン酸二無水物とジアミンとから得られるポリイミドを含む、ポリイミド多孔質膜である、[12]に記載の方法。
[14]
ポリイミド多孔質膜が、テトラカルボン酸二無水物とジアミンとから得られるポリアミック酸溶液と着色前駆体とを含むポリアミック酸溶液組成物を成形した後、250℃以上で熱処理することにより得られる着色したポリイミド多孔質膜である、[12]又は[13]に記載の方法。
[15]
前記ポリマー多孔質膜が、ポリエーテルスルホン多孔質膜である、[1]〜[11]のいずれか1つに記載の方法。
[16]
幹細胞を調製する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法。
[17]
幹細胞を分化誘導する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程、及び
(3)培養した前記幹細胞を分化誘導条件下で培養する工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法。
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通している、前記方法に関する。以下で「本発明の分化抑制方法」とも呼ぶ。
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法に関する。以下で「本発明の幹細胞調製方法」とも呼ぶ。
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程、及び
(3)培養した前記幹細胞を分化誘導条件下で培養する工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法に関する。以下で「本発明の分化誘導方法」とも呼ぶ。
本明細書において「幹細胞」とは、分裂して自分と同じ細胞を作る(self-renewal)能力(自己複製能)と、別の種類の細胞に分化する能力を持つ細胞のことである。近年、ダイレクト・リプログラミングなどの手法で最終分化細胞を別の最終分化細胞へと直接的に誘導することが可能であるが、本明細書における「幹細胞」は、最終分化細胞を含まない。幹細胞は、以下の分化能力の違いで分類することができる。
(1)多能性
本明細書において、「多能性」(pluripotency)とは、三胚葉(内胚葉、中胚葉、外胚葉)に属する細胞系列の全てに分化し得る能力のことである。例えば、胚性幹細胞(ES細胞)、胚性腫瘍細胞(EC細胞)、胚性生殖幹細胞(EG細胞)、核移植ES細胞、体細胞由来ES細胞(ntES細胞)、人工多能性幹細胞(iPS細胞)、MUSE細胞(Multi-lineage differentiating Stress Enduring cell)が挙げられるが、これらに限定されない。
(2)多分化能性
本明細書において、「多分化能性」(multipotency)とは、分化可能な細胞系列が限定されているが、多様な細胞種へ分化可能な能力のことである。一般的に胚葉を超えた分化は行えないが、例外もある。多分化能性は、組織幹細胞(生物の体内に見られる最終分化していない細胞)などが持つ分化能力である。例えば、造血幹細胞、間葉系幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、皮膚幹細胞、歯髄幹細胞、脂肪幹細胞、脱分化脂肪細胞が挙げられるが、これらに限定されない。
(3)寡能性
本明細書において、「寡能性」(oligopotentcy)とは、数種の細胞種にのみ分化可能な能力のことである。寡能性を有する細胞は、前駆細胞と呼ばれることもあり、本明細書において幹細胞に含まれる。例えば、骨髄幹細胞が挙げられるが、これに限定されない。
(4)単分化能性
本明細書において、「単分化能性」(unipotency)とは、分化可能な細胞種が一種類に限定されている分化能力のことである。単分化能性を有する細胞は、前駆細胞と呼ばれることもあり、本明細書において幹細胞に含まれる。幹細胞として分裂増殖するか、分化して別の(幹細胞以外の)細胞種に変化することができる。例えば、筋幹細胞、生殖幹細胞、精原細胞、II型肺胞上皮細胞が挙げられるが、これらに限定されない。
本発明で使用される幹細胞のポリマー多孔質膜への適用の具体的な工程は特に限定されない。本明細書に記載の工程、あるいは、幹細胞を膜状の担体に適用するのに適した任意の手法を採用することが可能である。限定されるわけではないが、本発明の方法において、幹細胞のポリマー多孔質膜への適用は、例えば、以下のような態様を含む。
(B)前記ポリマー多孔質膜の乾燥した表面に幹細胞懸濁液を載せ、
放置するか、あるいは前記ポリマー多孔質膜を移動して液の流出を促進するか、あるいは表面の一部を刺激して、幹細胞懸濁液を前記膜に吸い込ませ、そして、
幹細胞懸濁液中の幹細胞を前記膜内に留め、水分は流出させる、
工程を含む、態様;並びに、
(C)前記ポリマー多孔質膜の片面又は両面を、細胞培養液又は滅菌された液体で湿潤し、
前記湿潤したポリマー多孔質膜に幹細胞懸濁液を装填し、そして、
幹細胞懸濁液中の幹細胞を前記膜内に留め、水分は流出させる、
工程を含む、態様。
細胞培養は、細胞培養における存在形態により培養細胞は接着培養系細胞と浮遊培養系細胞に分類することができる。接着培養系細胞は培養容器に付着し増殖する培養細胞であり、継代には培地交換を行う。浮遊培養系細胞は培地中において浮遊状態で増殖する培養細胞であり、一般的には継代の際には培地交換は行わず、希釈培養を行う。浮遊培養は、浮遊状態、即ち液体中での培養が可能なため、大量培養が可能であり、培養容器表面にのみ生育する付着細胞と比較すると、立体的な培養である為に、単位空間当りの培養可能細胞数は多いという利点がある。
本発明で使用されるポリマー多孔質膜中の表面層A(以下で、「A面」又は「メッシュ面」とも呼ぶ)に存在する孔の平均孔径は、特に限定されないが、例えば、0.01μm以上200μm未満、0.01〜150μm、0.01〜100μm、0.01〜50μm、0.01μm〜40μm、0.01μm〜30μm、0.01μm〜20μm、又は0.01μm〜15μmであり、好ましくは、0.01μm〜15μmである。
1)1,4−ジアミノベンゼン(パラフェニレンジアミン)、1,3−ジアミノベンゼン、2,4−ジアミノトルエン、2,6−ジアミノトルエンなどのベンゼン核1つのべンゼンジアミン;
2)4,4’−ジアミノジフェニルエーテル、3,4’−ジアミノジフェニルエーテルなどのジアミノジフェニルエーテル、4,4’−ジアミノジフェニルメタン、3,3’−ジメチル−4,4’−ジアミノビフェニル、2,2’−ジメチル−4,4’−ジアミノビフェニル、2,2’−ビス(トリフルオロメチル)−4,4’−ジアミノビフェニル、3,3’−ジメチル−4,4’−ジアミノジフェニルメタン、3,3’−ジカルボキシ−4,4’−ジアミノジフェニルメタン、3,3’,5,5’−テトラメチル−4,4’−ジアミノジフェニルメタン、ビス(4−アミノフェニル)スルフィド、4,4’−ジアミノベンズアニリド、3,3’−ジクロロベンジジン、3,3’−ジメチルベンジジン、2,2’−ジメチルベンジジン、3,3’−ジメトキシベンジジン、2,2’−ジメトキシベンジジン、3,3’−ジアミノジフェニルエーテル、3,4’−ジアミノジフェニルエーテル、4,4’−ジアミノジフェニルエーテル、3,3’−ジアミノジフェニルスルフィド、3,4’−ジアミノジフェニルスルフィド、4,4’−ジアミノジフェニルスルフィド、3,3’−ジアミノジフェニルスルホン、3,4’−ジアミノジフェニルスルホン、4,4’−ジアミノジフェニルスルホン、3,3’−ジアミノベンゾフェノン、3,3’−ジアミノ−4,4’−ジクロロベンゾフェノン、3,3’−ジアミノ−4,4’−ジメトキシベンゾフェノン、3,3’−ジアミノジフェニルメタン、3,4’−ジアミノジフェニルメタン、4,4’−ジアミノジフェニルメタン、2,2−ビス(3−アミノフェニル)プロパン、2,2−ビス(4−アミノフェニル)プロパン、2,2−ビス(3−アミノフェニル)−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパン、2,2−ビス(4−アミノフェニル)−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパン、3,3’−ジアミノジフェニルスルホキシド、3,4’−ジアミノジフェニルスルホキシド、4,4’−ジアミノジフェニルスルホキシドなどのベンゼン核2つのジアミン;
3)1,3−ビス(3−アミノフェニル)ベンゼン、1,3−ビス(4−アミノフェニル)ベンゼン、1,4−ビス(3−アミノフェニル)ベンゼン、1,4−ビス(4−アミノフェニル)ベンゼン、1,3−ビス(4−アミノフェノキシ)ベンゼン、1,4−ビス(3−アミノフェノキシ)ベンゼン、1,4−ビス(4−アミノフェノキシ)ベンゼン、1,3−ビス(3−アミノフェノキシ)−4−トリフルオロメチルベンゼン、3,3’−ジアミノ−4−(4−フェニル)フェノキシベンゾフェノン、3,3’−ジアミノ−4,4’−ジ(4−フェニルフェノキシ)ベンゾフェノン、1,3−ビス(3−アミノフェニルスルフィド)ベンゼン、1,3−ビス(4−アミノフェニルスルフィド)ベンゼン、1,4−ビス(4−アミノフェニルスルフィド)ベンゼン、1,3−ビス(3−アミノフェニルスルホン)ベンゼン、1,3−ビス(4−アミノフェニルスルホン)ベンゼン、1,4−ビス(4−アミノフェニルスルホン)ベンゼン、1,3−ビス〔2−(4−アミノフェニル)イソプロピル〕ベンゼン、1,4−ビス〔2−(3−アミノフェニル)イソプロピル〕ベンゼン、1,4−ビス〔2−(4−アミノフェニル)イソプロピル〕ベンゼンなどのベンゼン核3つのジアミン;
4)3,3’−ビス(3−アミノフェノキシ)ビフェニル、3,3’−ビス(4−アミノフェノキシ)ビフェニル、4,4’−ビス(3−アミノフェノキシ)ビフェニル、4,4’−ビス(4−アミノフェノキシ)ビフェニル、ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕エーテル、ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕エーテル、ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕エーテル、ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕エーテル、ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕ケトン、ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕ケトン、ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕ケトン、ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕ケトン、ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕スルフィド、ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕スルフィド、ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕スルフィド、ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕スルフィド、ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕スルホン、ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕スルホン、ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕スルホン、ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕スルホン、ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕メタン、ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕メタン、ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕メタン、ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕メタン、2,2−ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕プロパン、2,2−ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕プロパン、2,2−ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕プロパン、2,2−ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕プロパン、2,2−ビス〔3−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパン、2,2−ビス〔3−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパン、2,2−ビス〔4−(3−アミノフェノキシ)フェニル〕−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパン、2,2−ビス〔4−(4−アミノフェノキシ)フェニル〕−1,1,1,3,3,3−ヘキサフルオロプロパンなどのベンゼン核4つのジアミン。
(i)ビフェニルテトラカルボン酸単位及びピロメリット酸単位からなる群から選ばれる少なくとも一種のテトラカルボン酸単位と、芳香族ジアミン単位とからなる芳香族ポリイミド、
(ii)テトラカルボン酸単位と、ベンゼンジアミン単位、ジアミノジフェニルエーテル単位及びビス(アミノフェノキシ)フェニル単位からなる群から選ばれる少なくとも一種の芳香族ジアミン単位とからなる芳香族ポリイミド、
及び/又は、
(iii)ビフェニルテトラカルボン酸単位及びピロメリット酸単位からなる群から選ばれる少なくとも一種のテトラカルボン酸単位と、ベンゼンジアミン単位、ジアミノジフェニルエーテル単位及びビス(アミノフェノキシ)フェニル単位からなる群から選ばれる少なくとも一種の芳香族ジアミン単位とからなる芳香族ポリイミド。
対数粘度0.5〜1.0のポリエーテルスルホンの0.3質量%〜60質量%と有機極性溶媒40質量%〜99.7質量%とを含むポリエーテルスルホン溶液を、フィルム状に流延し、ポリエーテルスルホンの貧溶媒又は非溶媒を必須成分とする凝固溶媒に浸漬又は接触させて、空孔を有する凝固膜を作製する工程、及び
前記工程で得られた空孔を有する凝固膜を熱処理して前記空孔を粗大化させて、PES多孔質膜を得る工程
を含み、前記熱処理は、前記空孔を有する凝固膜を、前記ポリエーテルスルホンのガラス転移温度以上、若しくは240℃以上まで昇温させることを含む、方法で製造されてもよい。
前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた、膜平面方向の平均孔径が10μm〜500μmである複数のマクロボイドとを有し、
前記マクロボイド層の隔壁は、厚さが0.1μm〜50μmであり、
前記表面層A及びBはそれぞれ、厚さが0.1μm〜50μmであり、
前記表面層A及びBのうち、一方が平均孔径5μm超200μm以下の複数の細孔を有し、かつ他方が平均孔径0.01μm以上200μm未満の複数の細孔を有し、
表面層A及び表面層Bの、一方の表面開口率が15%以上であり、他方の表面層の表面開口率が10%以上であり、
前記表面層A及び前記表面層Bの前記細孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記PES多孔質膜は、総膜厚が5μm〜500μmであり、かつ空孔率が50%〜95%である、
PES多孔質膜である。
ポリマー多孔質膜を用いた細胞培養のモデル図を図1に示す。図1は理解を助けるための図であり、各要素は実寸ではない。本発明の方法では、ポリマー多孔質膜に幹細胞を適用し、培養することにより、ポリマー多孔質膜の有する内部の多面的な連結多孔部分や表面に、大量の幹細胞が生育するため、大量の幹細胞を簡便に培養することが可能となる。また、本発明の方法では、細胞培養に用いる培地の量を従来の方法よりも大幅に減らしつつ、大量の幹細胞を培養することが可能となる。たとえば、ポリマー多孔質膜の一部分又は全体が、細胞培養培地の液相と接触していない状態であっても、大量の幹細胞を長期にわたって培養することができる。また、細胞生存域を含むポリマー多孔質膜体積の総和に対して、細胞培養容器中に含まれる細胞培養培地の総体積を著しく減らすことも可能となる。
本発明の方法において、幹細胞の培養システム及び培養条件は、幹細胞の種類等に応じて適宜決定することができる。種々の幹細胞に適した培養方法が公知であり、当業者は任意の公知の方法を用いてポリマー多孔質膜に適用した幹細胞を培養することができる。細胞培養培地も幹細胞の種類に応じて適宜調製することができる。
培養ユニットは細胞を担持するための1又は複数のポリマー多孔質膜を収容する培養ユニットであって、培地供給口および培地排出口を備えた培養ユニットであり、
培地供給ユニットは培地収納容器と、培地供給ラインと、培地供給ラインを介して連続的又は間歇的に培地を送液する送液ポンプとを備え、ここで培地供給ラインの第一の端部は培地収納容器内の培地に接触し、培地供給ラインの第二の端部は培養ユニットの培地供給口を介して培養ユニット内に連通している、培地供給ユニットである
細胞培養装置であってよい。
本発明の分化誘導方法において、ポリマー多孔質膜上で増殖した幹細胞は、分化誘導条件下で培養することで分化誘導がなされる。幹細胞の分化誘導に関する具体的な工程は特に限定されない。本明細書に記載の工程を含め、膜状の担体に生育する幹細胞を分化誘導培地等の分化誘導環境に接触させるのに適した任意の手法を採用することが可能である。
ポリイミド多孔質膜上で培養されたヒト間葉系幹細胞の遺伝子解析
1.サンプルの調製
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社、cat. 103)に幹細胞培養培地(LONZA社製、PT-3001)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個のヒト間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。当該シャーレ中で3日間培養した細胞、70日間培養した細胞及び182日間培養した細胞をそれぞれ遺伝子解析用サンプルとして使用した。ポリイミド多孔質膜を使用した上記培養を以下で「部材培養」と呼び、得られた細胞サンプルを「部材培養細胞サンプル」と呼ぶ。
得られたサンプルに関し、以下の手順で遺伝子解析を行なった。
(1) RNA抽出
RNeasy Plus micro Kit(Qiagen)を用いて付属のプロトコール通りにRNAの抽出を行った。RNAは30μLのNuclease Free Waterで抽出し、その後、TURBO DNA free Kit(Life Technologies)を用いてDNaseによるゲノムDNAの分解処理を行った。分解処理後、RNA 溶液の濃度をNano Drop 2000(Thermo Fishier Scientific)で測定した。
濃度測定後のRNA 溶液を12.5ng/μLに調製し、100ngをテンプレートとしてcDNA合成を行った。合成にはSuperScript(商標) III First-Strand Synthesis System for RT-PCR(Life Technologies)を使用した。cDNA 溶液の濃度をNano Drop 2000で測定した。
cDNA 溶液を200ng/μLに調製し、200ngをテンプレートとしてとしてリアルタイムPCRによる測定を行った。PCRはCFX connect(Bio-Rad)で行い、試薬はSsoAdvanced(商標) Universal SYBR Green Supermix(Bio-Rad)を使用した。間葉系幹細胞陽性マーカー(CD166、CD44、CD105、CD146、CD90、CD106、CD29、CD71)、間葉系幹細胞陰性マーカー(CD19、CD45、CD31、CD18、CD56、CD34、CD14、CD80、CD40、CD86)について、発現量を測定し、内部標準遺伝子としてはbeta-Actinを使用した。
測定で求められた各遺伝子のCt値を、内部標準遺伝子として測定したbeta-ActinのCt値で引いた値から、相対発現量を算出して比較した。また、通常培養細胞サンプルと部材培養細胞サンプルで遺伝子発現の経時変化を比較するために、3日間培養した細胞サンプルの発現量を1とした場合の変化をそれぞれ算出して比較した。結果を図3に示す。
間葉系幹細胞の陽性マーカー遺伝子については部材培養の方が通常培養よりも発現量が高い傾向を示した。測定した8つの陽性マーカー中5つのマーカーに関して、通常培養では、発現量が経時的に消失した。これは、培養日数の経過と共に間葉系幹細胞の性質が失われたことを示している。一方、ポリイミド多孔質膜を用いる部材培養では、全てのマーカーが182日間の長期培養において維持されたことから、間葉系幹細胞の性質は保持された。逆に間葉系幹細胞の陰性マーカー遺伝子は通常培養の方が部材培養よりも発現量が高い傾向を示した。これらのことから、部材培養により、間葉系幹細胞の分化が抑制されることが示された。
ポリイミド多孔質膜上で培養したヒト間葉系幹細胞の分化誘導
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社, cat. 103)に幹細胞培養培地(LONZA社製、PT-3001)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個のヒト間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。培養開始後、6日、70日、118日、182日目に分化誘導培地(PromoCell社製)に培地を切り替えた。
ポリイミド多孔質膜上でのヒト間葉系幹細胞の培養
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific 社 cat. 103)に細胞培養培地0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の間葉系幹細胞を播種し、週2回培地(GIBCO製;DMEM+FBS10%)を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。当該培養を以下で「部材培養」と呼び、得られたサンプルを「部材培養細胞サンプル」と呼ぶ。部材培養開始後7日目、14日目、21日目、28日目、35日目及び42日目にCCK8を用いて細胞数を計測し、細胞生育挙動を観察した。
ポリイミド多孔質膜上でのヒト間葉系幹細胞の培養
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社、cat. 103)に細胞培養培地(GIBCO製;DMEM+FBS10%)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。培養開始後、7日目、14日目、21日目、35日目、49日目、63日目、77日目、92日目、121日目、143日目にCCK8を用いて細胞数を計測し、細胞生育挙動を観察した。結果を図7に示す。部材培養した場合、長期間に亘る、安定したヒト間葉系幹細胞の増殖及び生育が観察された。
ポリイミド多孔質膜上でのヒト間葉系幹細胞の培養及び顕微鏡観察
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社、cat. 103)に細胞培養培地(GIBCO製;DMEM+FBS10%)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。培養開始後、7日目、14日目、28日目,42日目、56日目、70日目、85日目、114日目、136日目、143日目にCCK8を用いて細胞数を計測し、細胞生育挙動を観察した。結果を図9に示す。部材培養した場合、長期間に亘る、安定したヒト間葉系幹細胞の増殖及び生育が観察された。
ポリイミド多孔質膜上でのヒト間葉系幹細胞の長期培養、及び培養細胞の分化誘導
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社、cat. 103)に細胞培養培地(LONZA製;間葉系幹細胞用培地MSCBM)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を14日間行った。その後、MSCBM培地4mlを加えた20cm2ディッシュ中に、細胞の生着した当該ポリイミド多孔質膜を10枚移送し、培養を行った。310日間の培養後、細胞培養培地を含む2cm×2cmの滅菌された正方形容器にポリイミド多孔質膜を移送し、培養を継続した。CCK8を用いて細胞数を計測し、細胞生育挙動を観察した。結果を図13に示す。正方形容器に移送後、安定したヒト間葉系幹細胞の増殖及び生育が観察された。
ポリイミド多孔質膜上で長期間培養された間葉系幹細胞の遺伝子解析
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific社、cat. 103)に細胞培養培地(LONZA製;間葉系幹細胞用培地MSCBM)0.5mlを加え、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして浸漬させた。1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の間葉系幹細胞を播種し、週2回培地を交換しながらCO2インキュベータ内で培養を14日間行った。その後、MSCBM培地4mlを加えた20cm2ディッシュ中に、細胞の生着した当該ポリイミド多孔質膜を10枚移送し、培養を行った。培養開始後249日目の部材培養細胞サンプルを、実施例1と同様の方法で遺伝子解析した。また、実施例4における培養開始後32日目の部材培養細胞サンプル、実施例5における培養開始後146日目の部材培養細胞サンプル、実施例6における培養開始後496日目の部材培養細胞サンプルを、実施例1と同様の方法で遺伝子解析した。陽性マーカーに関する結果を図16A及びBに示す。比較のため、ポリイミド多孔質膜を用いずに7日間通常培養した細胞サンプルにおける各遺伝子の発現量を1とした。なお、陰性マーカーの発現量は全て低値であることを確認した。長期培養後においても、本発明の方法を用いることで、間葉系幹細胞の特性が維持されることが確認された。
ポリイミド多孔質膜上で培養されたヒトII型肺胞上皮細胞の遺伝子解析
1.サンプルの調製
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific 社、cat. 103)に、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして静置させた。20週胎児由来II型肺胞上皮細胞を、凍結液から溶解し、肺胞上皮細胞用培地(ScienCell Research Laboratories社製、製品コード3201)に懸濁して、1枚のポリイミド多孔質膜あたり1×105個の細胞を、乾いたポリイミド多孔質膜の上に懸濁細胞の液滴として載せ、液部の通過を待った(吸込み播種法)。液部通過後培地1mlを注加した後、CO2インキュベータ内で培養を継続的に行った。週2回培地(1ml)交換を行った。培養開始後、CCK8を用いた細胞数評価を定期的に行い、細胞の生育状況を確認した。細胞数の変化を図17に示す。4日間培養した細胞及び32日間培養した細胞をそれぞれ遺伝子解析用サンプルとして使用した。ポリイミド多孔質膜を使用した上記培養を以下で「部材培養」と呼び、得られた細胞サンプルを「部材培養細胞サンプル」と呼ぶ。
得られたサンプルに関し、実施例1と同様の手順で遺伝子解析を行った。II型肺胞上皮細胞陽性マーカー(Pro SP−C、SP−A、SP−B、SP−D、KL−6)、I型肺胞上皮細胞陽性マーカー(ポドプラニン(Podoplanin)、アクアポリン(Aquaporin)−5)について、発現量を測定した。結果を図18に示す。
II型肺胞上皮細胞の陽性マーカー遺伝子については、部材培養の方が通常培養よりも発現量が高い傾向を示した。これは、II型肺胞上皮細胞のI型肺胞上皮細胞への分化が部材培養によって抑制されたことを示唆している。また、培養の細胞数上昇と共に肺胞上皮II型細胞が増加し、それが維持されることが示唆された。これらを検証するため、Pro SP−Cとポドプラニンを免疫染色にて評価した(Day22)ところ、同様の結果を確認した(図19)。
ポリイミド多孔質膜上でのヒトII型肺胞上皮細胞の長期培養
実施例8の細胞培養を約1年間継続した。結果を図20に示す。長期間に亘る、安定したII型肺胞上皮細胞の増殖及び生育が観察された。
ポリイミド多孔質膜上で長期培養されたヒトII型肺胞上皮細胞の遺伝子解析
1.サンプルの調製
2cm×2cmの滅菌された正方形容器(Thermo Fisher Scientific 社 cat. 103)に、滅菌した1.4cm角の正方形のポリイミド多孔質膜をメッシュ構造のA面を上にして静置させた。20週胎児由来ヒトII型肺胞上皮細胞を凍結液から溶解し、培地懸濁液を調製した。以下の3種類の方法で細胞をポリイミド多孔質膜に播種した。
播種法2:1:1枚のポリイミド多孔質膜あたり4×104個の細胞を、予め培地で湿潤させたポリイミド多孔質膜の上に懸濁液として加えた(自然播種法)。
播種法3:1枚のポリイミド多孔質膜あたり1×105個の細胞を、乾いたポリイミド多孔質膜の上に懸濁細胞の液滴として載せ、液部の通過を待った(吸込み播種法)。
上記播種法3で細胞播種を行い、215日間培養した部材培養細胞サンプルを遺伝子解析した。なおコントロールサンプルとして、実施例9の通常培養細胞サンプルを使用した。結果を図22に示す。II型肺胞上皮細胞の陽性マーカー遺伝子については、部材培養の方が通常培養よりも発現量が高い傾向を示した。これは、II型肺胞上皮細胞のI型肺胞上皮細胞への分化が部材培養によって抑制されたことを示唆している。
Claims (17)
- 幹細胞の分化を抑制する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通している、前記方法。 - 前記細胞がES細胞、EC細胞、EG細胞、核移植ES細胞、ntES細胞、iPS細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、肝幹細胞、膵幹細胞、皮膚幹細胞、骨髄幹細胞、筋幹細胞、生殖幹細胞、精原細胞、II型肺胞上皮細胞、脂肪幹細胞、歯髄幹細胞、脱分化脂肪細胞又はMUSE細胞である、請求項1に記載の方法。
- 前記工程(2)が少なくとも30日間実施される、請求項1又は2に記載の方法。
- 前記工程(2)において、細胞を、ポリマー多孔質膜1平方センチメートル当たりに1.0x105個以上となるまで増殖させる、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 2以上のポリマー多孔質膜を、上下又は左右に細胞培養培地中に積層して用いる、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ポリイミド多孔質膜を
i)折り畳んで、
ii)ロール状に巻き込んで、
iii)シートもしくは小片を糸状の構造体で連結させて、あるいは、
iv)縄状に結んで
細胞培養容器中の細胞培養培地中で浮遊もしくは固定させて用いる、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。 - 工程(2)において、ポリイミド多孔質膜の一部分又は全体が、細胞培養培地の液相と接触していない、請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 工程(2)において、細胞培養容器中に含まれる細胞培養培地の総体積が、細胞生存域を含むポリイミド多孔質膜体積の総和の10000倍又はそれより少ない、請求項1〜7のいずれか1項に記載の方法。
- 前記表面層Aの平均孔径が、0.01〜50μmである、請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記表面層Bの平均孔径が、20〜100μmである、請求項1〜9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ポリマー多孔質膜の膜厚が、5〜500μmである、請求項1〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ポリマー多孔質膜がポリイミド多孔質膜である、請求項1〜11のいずれか1項に記載の方法。
- ポリイミド多孔質膜が、テトラカルボン酸二無水物とジアミンとから得られるポリイミドを含む、ポリイミド多孔質膜である、請求項12に記載の方法。
- ポリイミド多孔質膜が、テトラカルボン酸二無水物とジアミンとから得られるポリアミック酸溶液と着色前駆体とを含むポリアミック酸溶液組成物を成形した後、250℃以上で熱処理することにより得られる着色したポリイミド多孔質膜である、請求項12又は13に記載の方法。
- 前記ポリマー多孔質膜が、ポリエーテルスルホン多孔質膜である、請求項1〜11のいずれか1項に記載の方法。
- 幹細胞を調製する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、及び
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法。 - 幹細胞を分化誘導する方法であって、
(1)前記幹細胞をポリマー多孔質膜に適用する工程、
(2)前記幹細胞を培養し、増殖させる工程、及び
(3)培養した前記幹細胞を分化誘導条件下で培養する工程
を含み、
ここで、前記ポリマー多孔質膜が、複数の孔を有する表面層A及び表面層Bと、前記表面層A及び表面層Bの間に挟まれたマクロボイド層とを有する三層構造のポリマー多孔質膜であり、ここで前記表面層Aに存在する孔の平均孔径は、前記表面層Bに存在する孔の平均孔径よりも小さく、前記マクロボイド層は、前記表面層A及びBに結合した隔壁と、当該隔壁並びに前記表面層A及びBに囲まれた複数のマクロボイドとを有し、前記表面層A及びBにおける孔が前記マクロボイドに連通しており、
前記工程(2)において前記幹細胞の分化は抑制される、前記方法。
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