JPWO2014192894A1

JPWO2014192894A1 - 生体における酸化還元反応を検出する方法

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Publication number: JPWO2014192894A1
Application number: JP2015519947A
Authority: JP
Inventors: 英雄内海; 文紀兵藤; 慎治伊藤
Original assignee: Kyushu University NUC
Current assignee: Kyushu University NUC
Priority date: 2013-05-29
Filing date: 2014-05-29
Publication date: 2017-02-23
Also published as: US20160216351A1; WO2014192894A1

Abstract

【課題】脂溶性部位における分子の酸化還元反応を検出し、且つ視覚化する方法を提供すること。【解決手段】脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を検出する方法であって、測定対象となる生体またはサンプルに磁気共鳴法を適用して、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得る工程と、前記プロトン画像における前記生体またはサンプルの画像強度を測定する工程とを有する方法。【選択図】なし

Description

本発明は、生体における酸化還元反応を検出する方法に関し、より詳細には、脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を検出する方法に関する。

現在、種々の疾患を診断し、または治療するために画像診断が用いられている。この画像診断は癌や脳梗塞などの病変部位を特定するものであり、疾患による形態的な変化を画像化し、その画像の特徴を読み取り、疾患の診断や治療に役立てている。一方、多くの疾患ではその症状として形態的な変化が伴うよりも前に、細胞レベルで慢性炎症による体内機能の変化を伴う。特にユビキノンやビタミンＫなどのラジカル中間体を形成する生体内因性分子は生体内で恒常性の維持（ホメオスタシス）のため重要な役割を担っている分子であるため、疾患においてもその動態や挙動に変化が多く見られる。

例えば、ユビキノンはすべての細胞が持つミトコンドリアの内膜や原核生物の細胞膜に存在する電子伝達体の１つであり、ミトコンドリア機能の保持に深く関与する。このため、ユビキノンは細胞内のミトコンドリア機能の改善、抗酸化効果、抗アルドステロン効果が期待され心機能補助役等としても用いられている。ユビキノンはミトコンドリア呼吸鎖Ｉ〜ＩＩＩにおいてＱサイクルと呼ばれる電子の授受に関わる分子であり、電子伝達系において呼吸鎖複合体ＩとＩＩの電子を仲介し、その代謝過程でセミキノンフリーラジカルを生成する。このようなフリーラジカルは生体レドックス反応に関係する。生体レドックス反応とは、酸化還元反応を介した生理機能発現及びそれに伴う活性種産生、産生された活性種と生体分子との代謝・反応の全体を表す概念であり、多くの生理現象やがん・糖尿病をはじめとする生体レドックス疾患に密接に関与することが示唆されている。

従って、ユビキノン等の生体内因性分子の酸化還元反応の挙動や状態を直接視覚化する方法があれば、様々な疾病において、生体内因性分子の情報から病気のメカニズム解明や診断・治療が可能となると考えられる。

ところで、このような生体内の画像化をおこなう方法としては、従来、Ｘ線ＣＴやＣＴ、磁気共鳴（ＭＲＩ）等があり、空間情報の画像化を行う形態画像化が主として行われてきた。また近年では形態画像化に加え、ＰＥＴ等による生体内の機能・現象を可視化する機能画像化が行われるようになってきている。

例えば、摘出臓器から調製した溶液中に生成するフリーラジカルを電子スピン共鳴法等で計測し、そのスペクトル波形・強度変化から機能解析をした例がある。この方法は、試験管レベルでの解析はできるものの、疾病に生体内物質がいつ、どこで、どのように関与するかを知ることはできなかった。

また、生体内の酸化還元反応を検出・解析する方法としては、合成ニトロキシルラジカル化合物をプローブ（造影剤）として体内に投与し、当該化合物の酸化還元反応を指標に検出・解析する方法が知られている。しかし、この方法ではニトロキシルラジカルのラジカル消失を検出しているのみであるため、生体内の酸化還元反応を合成ニトロキシルラジカル化合物の反応を指標に検出・解析しているに過ぎない。そのため、生体内因性分子の酸化還元反応を直接的に検出・解析しているわけではなかった。また、このニトロキシルラジカルは有機溶媒中ではＯＭＲＩなどの画像共鳴法で十分な画像強度を得るのが困難であった。

また本発明者らは水溶性環境下においては生体内因性分子を画像共鳴法で視覚化することに成功している（特許文献１）。しかし、脂溶性環境下においては効率的な視覚化ができなかった。

国際公開第２０１１／０５２７６０号

Ｎｏｎ−ｉｎｖａｓｉｖｅｍｏｎｉｔｏｒｉｎｇｏｆｒｅｄｏｘｓｔａｔｕｓｉｎｍｉｃｅｗｉｔｈｄｅｘｔｒａｎｓｏｄｉｕｍｓｕｌｐｈａｔｅ−ｉｎｄｕｃｅｄｃｏｌｉｔｉｓ．ＹａｓｕｋａｗａＫ，ＭｉｙａｋａｗａＲ，ＹａｏＴ，ＴｓｕｎｅｙｏｓｈｉＭ，ＵｔｓｕｍｉＨ．ＦｒｅｅＲａｄｉｃＲｅｓ．２００９Ｍａｙ；４３（５）：５０５−１３．Ｉｎｖｉｖｏｄｅｔｅｃｔｉｏｎｏｆｆｒｅｅｒａｄｉｃａｌｓｉｎｄｕｃｅｄｂｙｄｉｅｔｈｙｌｎｉｔｒｏｓａｍｉｎｅｉｎｒａｔｌｉｖｅｒｔｉｓｓｕｅ．ＹａｍａｄａＫ，ＹａｍａｍｉｙａＩ，ＵｔｓｕｍｉＨ．ＦｒｅｅＲａｄｉｃＢｉｏｌＭｅｄ．２００６Ｊｕｎ１；４０（１１）：２０４０−６．ＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆｉｎｖｉｖｏＥＳＲｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙｔｏｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔｏｆｃｅｒｅｂｒｏｖａｓｃｕｌａｒＲＯＳｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｉｎｓｔｒｏｋｅ．ＹａｍａｔｏＭ，ＥｇａｓｈｉｒａＴ，ＵｔｓｕｍｉＨ．ＦｒｅｅＲａｄｉｃＢｉｏｌＭｅｄ．２００３Ｄｅｃ１５；３５（１２）：１６１９−３１．

本発明は、このような状況を鑑みてなされたものであり、種々の疾病の初期症状を早期に発見し、その予防・治療を可能とするために、脂溶性部位における分子の酸化還元反応を検出し、且つ視覚化する方法を提供することを目的とする。

本発明者らは脂溶性分子を用いることにより、有機溶媒中であっても磁気共鳴装置による検出に十分な画像強度を得ることができるという知見を得、そのラジカル体を造影剤として使用できる可能性を得た。

そして、本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、磁気共鳴法（オーバーハウザーＭＲＩおよび電子スピン共鳴法を含む）を用いることにより、脂質環境下の分子の酸化還元反応を検出し、且つ視覚化することができることを見出した。

具体的には、本発明の第一の主要な観点によれば、脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を検出する方法であって、測定対象となる生体またはサンプルに磁気共鳴法を適用して、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得る工程と、
前記プロトン画像における前記生体またはサンプルの画像強度を測定する工程とを有する方法が提供される。

このような構成によれば、脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を検出するできるため、生きたままの動物の脂質部位での生体機能を可視化することが可能となる。

また本発明によれば、脂質環境下でラジカル反応を行う分子を造影剤として利用し、生体機能を可視化することができるため、疾患による形態的変化の前段階の視覚化が可能とり、超早期診断や予防薬の開発に寄与することができる。

また、本発明の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記プロトン画像を得る工程は、２若しくはそれ以上のプロトン画像を経時的に得るものであり、この方法は、さらに、前記プロトン画像における前記生体またはサンプルの画像強度の経時的変化を比較する工程を有するものであることが好ましい。

また、本発明の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記磁気共鳴法はオーバーハウザーＭＲＩであり、前記プロトン画像を得る工程は、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されたプロトン画像を得るものである。

この場合、この方法は、さらに、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されていないプロトン画像を得る工程と、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されたプロトン画像と、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されていないプロトン画像とを比較し、当該２枚の画像における前記生体またはサンプルの画像強度の差分または割合を算出する工程とを有するものであることが好ましい。

また、本発明の他の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子はキノン骨格を有する分子である。

この場合、前記キノン骨格を有する分子は、ユビキノン（ＣｏＱ_１０）、リボフラビン、ビタミンＫ_１、ビタミンＫ_２、ビタミンＫ_３、１，４−ベンゾキノン（ｐ−キノン）、２，６−ジクロロ−ｐ−キノン、１，４−ナフトキノン、及びセラトロダストから成る群から選択されるものであることが好ましい。

さらに、本発明の他の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記プロトン画像を得る工程は、２若しくはそれ以上の前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得るものである。

また、本発明の別の一実施形態によれば、上記のような方法は、さらに、水性環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得る工程を有することもできる。

さらに、本発明の他の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記生体またはサンプルは酸化還元物質が予め投与されているものである。

この場合、前記生体またはサンプルは前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子が予め投与されているものであることが好ましい。

また、本発明の一実施形態において、前記酸化還元物質はＮａＯＨ、ＮＡＤＨ、ＫＯ_２、及びこれらの組み合わせから成る群から選択されるものであることが好ましい。

また、本発明の他の一実施形態によれば、上記のような方法において、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子はエタノール、メタノール、ＤＭＳＯ、アセトン、ヘキサン、クロロホルム、アルカリ溶液、及びこれらの組み合わせから成る群から選択される溶媒に溶解しているものである。

なお、上記した以外の本発明の特徴及び顕著な作用・効果は、次の発明の実施形態の項及び図面を参照することで、当業者にとって明確となる。

図１は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによる酸化還元反応の可視化を示す写真およびグラフである。図２は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによる酸化還元反応の可視化を示す写真およびグラフである。図３は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるミトコンドリアでの酸化還元反応の可視化を示す写真およびグラフである。図４は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるマウスでの酸化還元反応の可視化を示す写真およびグラフである。図５ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるビタミンＫ_１ラジカルの可視化を示す写真である。図５ｂは、本発明の一実施形態におけるビタミンＫ_１ラジカルのＸバンドＥＳＲスペクトルを示すグラフおよび画像強度を示すグラフである。図６ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるビタミンＫ_２ラジカルの可視化を示す写真である。図６ｂは、本発明の一実施形態におけるビタミンＫ_２ラジカルのＸバンドＥＳＲスペクトルを示すグラフおよび画像強度を示すグラフである。図７ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるビタミンＫ_３ラジカルの可視化を示す写真である。図７ｂは、本発明の一実施形態におけるビタミンＫ_３ラジカルのＸバンドＥＳＲスペクトルを示すグラフおよび画像強度を示すグラフである。図８ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるビタミンＫ_３ラジカルの可視化を示す写真である。図８ｂは、本発明の一実施形態におけるビタミンＫ_３ラジカルの画像強度を示すグラフである。図９ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるビタミンＫ_２およびビタミンＫ_３ラジカルの可視化を示す写真である。図９ｂは、本発明の一実施形態におけるビタミンＫ_２およびビタミンＫ_３ラジカルの画像強度を示すグラフである。図１０ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるリボフラビン（ビタミンＢ_２）ラジカルの可視化を示す写真である。図１０ｂは、本発明の一実施形態におけるリボフラビン（ビタミンＢ_２）ラジカルのＸバンドＥＳＲスペクトルを示すグラフおよび画像強度を示すグラフである。図１１は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるＥＧＣＧラジカルの可視化を示す写真である。図１２は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるドーパミンラジカルの可視化を示す写真である。図１３は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるクロロゲン酸ラジカルの可視化を示す写真である。図１４は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるカフェイン酸ラジカルの可視化を示す写真である。図１５は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるロスマリン酸ラジカルの可視化を示す写真である。図１６は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるルチンラジカルの可視化を示す写真である。図１７は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるセラトロダストラジカルの可視化を示す写真である。図１８は、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるトロロックスラジカルの可視化を示す写真である。図１９ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるＴＥＭＰＯＬの可視化を示す写真である。図１９ｂは、本発明の一実施形態におけるＴＥＭＰＯＬの画像強度を示すグラフである。図２０ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるＴＥＭＰＯＬの可視化を示す写真である。図２０ｂは、本発明の一実施形態におけるＴＥＭＰＯＬの画像強度を示すグラフである。図２１ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの可視化を示す写真である。図２１ｂは、本発明の一実施形態におけるＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの画像強度を示すグラフである。図２２ａは、本発明の一実施形態におけるＲｅＭＩによるＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの可視化を示す写真である。図２２ｂは、本発明の一実施形態におけるＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの画像強度を示すグラフである。

以下に、本願発明に係る一実施形態および実施例を、図面を参照して説明する。
本願発明に係る一実施形態において、本願発明に係る方法は脂質環境下で行われるラジカル反応に伴う酸化還元反応を検出するものである。ここで、「脂質環境」とは水性環境以外の環境であり、有機溶媒を主体とし、膜脂質二重層やリポタンパク質を含む。

また、本願明細書において、「ラジカル反応」とは不対電子をもつ特定の原子や分子における電子の受け渡しを指す。ラジカルは不対電子を有し常磁性であり、生体レドックス反応に関係する。この生体レドックス反応とは、酸化還元反応を介した生理機能発現及びそれに伴う活性種産生、産生された活性種と生体分子との代謝・反応の全体を表す概念であり、多くの生理現象やがん・糖尿病をはじめとする生体レドックス疾患に密接に関与することが示唆されている。したがって、生体レドックス状態の可視化は低侵襲的な疾患機序解析あるいは新規治療薬の開発に新しい方法論を提供しうる。

本願明細書において「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」とは、脂質環境下でラジカル中間体を形成する分子（物質）であり、生体内に存在する分子および合成化合物を含む。生体内に存在する分子の場合、これらの分子は生体内の脂質環境下で恒常性の維持（ホメオスタシス）のため重要な役割を担う。「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」としては、これらに限定されるものではないが、例えば、ＣｏＱ_１０、リボフラビン（ビタミンＢ_２）、ビタミンＫ_１（フィロキノン、２−メチル−３−フィチル−１，４−ナフトキノン）、ビタミンＫ_２（メナキノン−４、メナキノン−７）、ビタミンＫ_３（メナジオン、２−メチル−１，４−ナフトキノン）、１，４−ベンゾキノン（ｐ−キノン）、２，６−ジクロロ−ｐ−キノン、及び１，４−ナフトキノン、ビタミンＥ（トコフェロール（α、β、γ、σ）およびトコトリエノール（α、β、γ、σ））、トロロックス、没食子酸エピガロカテキン（Ｅｐｉｇａｌｌｏｃａｔｅｃｈｉｎｇａｌｌａｔｅ：ＥＧＣＧ）、ドーパミン、クロロゲン酸、カフェイン酸、ロスマリン酸、ルチン、及びセラトロダストなどを挙げることができる。ユビキノン（ＣｏＱ_１０）、リボフラビン、ビタミンＫ_１、ビタミンＫ_２、ビタミンＫ_３、１，４−ベンゾキノン（ｐ−キノン）、２，６−ジクロロ−ｐ−キノン、１，４−ナフトキノン、及びセラトロダストはキノン骨格を有する分子である。

例えば、ビタミンＫ_１（フィロキノン）は以下のスキームでラジカル中間体を形成する。

このように、本願発明における「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」には、特定の細胞内などの生体内の脂質環境下でラジカル中間体を形成する分子が含まれる。

本発明において用いる磁気共鳴法は一般的な磁気共鳴法であり、測定対象物に外部から電磁波又は振動磁場を加えると、特定の周波数に対して一種の共鳴を起こして電磁波が強く吸収される現象（磁気共鳴）を利用して、共鳴吸収の起こる周波数や吸収の波形から物質内部の電子や原子核の状態を測定する方法である。このような磁気共鳴法の具体例としては、磁気共鳴映像（ＭＲＩ）法、オーバーハウザーＭＲＩ（ＯＭＲＩ）法、核磁気共鳴（ＮＭＲ）法、電子スピン共鳴（ＥＰＲ）法、等を挙げることができる。前記各種磁気共鳴法の測定条件は、それぞれの測定法に一般的に用いられる条件の範囲で適宜選択することができる。なお、本願明細書においては「ＲｅＭＩ（ＲｅｄｏｘＭｏｌｅｃｕｌａｒＩｍａｇｉｎｇ）」という文言を使用する場合があるが、これはＯＭＲＩと同義である。

係る磁気共鳴法による画像化のための装置としては、例えば国際公開公報ＷＯ２０１０／１１０３８４号に開示されている装置、すなわち、「計測対象物の磁気共鳴を励起させるための磁場を発生させる磁場発生手段と、計測対象物または磁場発生手段を移動させることにより計測対象物を磁場発生手段の磁場中を移動させる移動手段と、移動手段による移動中に停止することなく、計測対象物の磁場発生手段に対する移動方向ｙおよびこの移動方向ｙに対して直交する方向ｘのいずれか一方または両方に傾斜磁場を掛けて位相エンコードおよび周波数エンコードのいずれか一方または両方により、計測対象物中の計測画像信号を得る計測手段と、計測画像信号に対し、ｙ方向の移動の影響を補正した補正画像信号を得る補正手段と、を有する装置」を用いることができる。

例えば、ＲｅＭＩまたはＯＭＲＩを用いて本願発明に係る方法を実施する場合、電子スピン照射（ＥＰＲ照射、ＥＳＲ照射）のオン／オフでそれぞれ画像を取得することが可能である。具体的には、目的の「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」に対してＥＰＲ照射を行い、電子スピン励起を行う。これにより、電子スピンのエネルギーが核スピンに移行し、プロトンの画像強度が上昇する。例えば特定のラジカル体のスペクトルのピークトップの周波数にセットし、電子スピンを行い、ＭＲＩの画像を取得することにより、画像強度が上昇したプロトン画像を取得できる。また、電子スピン励起がない場合は、通常のＭＲＩで取得するプロトン画像となる。なお、本明細書において、「ＥＰＲ（ＥｌｅｃｔｒｏｎＰａｒａｍａｇｎｅｔｉｃＲｅｓｏｎａｎｃｅ）」と「ＥＳＲ（ＥｌｅｃｔｒｏｎＳｐｉｎＲｅｓｏｎａｎｃｅ）」は同義であり、いずれも電子スピン共鳴を指す。

本願発明の一実施形態において、このようにして取得した画像では、目的の「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」が酸化還元反応を経ていない場合、ラジカルが消失していないため、画像強度が強いまま画像化される。また酸化還元反応に伴いラジカルが消失すると画像強度も減少する。したがって、特定の「脂質環境下でラジカル反応を行う分子」に着目して経時的な画像強度の変化を観察することにより生体内での酸化還元反応の有無を検出することが可能となる。

また本願発明の一実施形態において、電子スピン励起のオンの画像を用いて酸化還元反応を検出することが可能であるが、電子スピン励起のオン／オフの２枚の画像を用いて酸化還元反応を検出することも可能である。例えば、ＥＰＲ照射オン画像の画像強度からＥＰＲ照射オフ画像の画像強度を引くことができる（引き算）。この結果得た画像強度を用いて酸化還元反応を検出することができる。またはＥＰＲ照射オン画像の画像強度をＥＰＲ照射オフ画像の画像強度で割ることも可能である（割り算）。このようにして得た画像強度を用いて酸化還元反応を検出してもよい。このように画像強度を引き算または割り算することにより、ＥＰＲ照射オン画像だけでは画像強度が小さい場合など、比較が困難な場合でも差分を強調することが可能となる。

また、ＭＲＩを用いて本願発明に係る方法を実施する場合、水の緩和時間（縦緩和、横緩和）の情報から画像強度を得ることができる。ＭＲＩでは造影剤として用いる分子が有するラジカルが水と交互作用し、緩和時間（縦緩和時間：Ｔ１緩和）を短縮させる。従って、ＭＲＩのＴ１強調画像法で画像を取得する場合、造影剤が有するラジカルの分だけ画像強度が上昇することとなる。従って、酸化還元反応に伴いラジカルが消失すると、画像強度が減少する。ＭＲＩを用いて本願発明に係る方法を実施する場合、酸化還元反応の検出をラジカルによる画像強度の上昇の割合を用いて表してもよい。

本願明細書において「酸化還元物質」とは、電子供与体または電子受容体として機能し、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子と酸化還元反応を行うものである。これらに限られるものではないが、例えばＮａＯＨ、ＮＡＤＨ、ＫＯ_２などが挙げられる。

また本願発明の一実施形態において、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子は有機溶媒または有機溶剤に溶解していても良い。有機溶媒または有機溶剤としては、これらに限られるものではないが、エタノール、メタノール、ＤＭＳＯ、アセトン、ヘキサン、クロロホルム、アルカリ溶液、及びこれらの組み合わせを挙げることができる。

また本願発明の一実施形態において、脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像は、複数種の脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を同時に得るものであってもよい。ＥＰＲ照射の周波数を複数種のフリーラジカル中間体が共通して有する帯域に調節することで複数種の分子のプロトン画像を同時に得ることができる。もちろん、同一検体上で複数の周波数のＥＰＲ照射と画像取得を連続して行うことでも、複数種の分子のプロトン画像を同時に得ることができる。さらに、本願発明では、脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応とともに水性環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を同時に検出することも可能である。この場合、水性環境としては水やＰＢＳなどの溶媒が挙げられ、ラジカル体を形成する分子がこのような溶媒に溶解している。また、脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応と水性環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応とを同時に検出する場合、脂質環境下でラジカル反応を行う分子と水性環境下でラジカル反応を行う分子との間における電子の移動を検出することが可能である。

以下に、実施例を用いて、本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
（実験手法および材料）
フリーラジカル中間体、ファントム、およびＥＰＲ測定
水溶性中間体ＦＭＮＨおよびＦＡＤＨは、それぞれ水に溶解し、ＦＭＮ（１０ｍＭ）およびＦＡＤ（１８ｍＭ）を同一量のＮＡＤＨと混合することで調製した。脂溶性中間体ＣｏＱ_１０Ｈ、およびビタミンＥおよびＫ_１ラジカルは、それぞれ、ＣｏＱ_１０（１０ｍＭ）／アセトン／ＮａＯＨ、ビタミンＥ（１．５Ｍ）／ヘキサン／ＫＯ_２、およびビタミンＫ_１（８３ｍＭ）／クロロホルム／エタノール／ＫＯ_２から作成した。それぞれのフリーラジカルのＥＰＲスペクトルおよびそれらのＥＰＲパラメータは、ＸバンドＥＰＲ分光計（ＪＥＯＬＬｔｄ．）によって室温にて以下の条件で得た。
マイクロ波周波数、９．４ＧＨｚ；マイクロ波電力、１ｍＷ；変調幅、０．０６ｍＴ；掃引時間、１分；掃引幅（±５ｍＴ）；時定数、０．０３ｓ
ＥＰＲパラメータの校正は、Ｍｎ^２＋の内部標準を使用して行った。ＲｅＭＩ実験において各フリーラジカル中間体の見かけの濃度は、ＣｍＰピーク域およびＭｎ^２＋の内部標準に基づいて経時的なＥＰＲスペクトルの領域の時間に依存する曲線を外挿することによって評価した。

ＲｅＭＩ計器
ＲｅＭＩ実験は九州大学で製作したＤＮＰ−ＭＲＩシステムを使用して行った。ＤＮＰ−ＭＲＩシステムは、ＥＰＲ装置の（ＪＥＳ−ＥＳ２０、ＪＥＯＬＬｔｄ．）の外部磁石およびＣＷ−ＥＰＲイメージングのための２つの軸フィールド傾斜磁場コイルを使用して構成した。共鳴器は、ＥＳＲ照射のための表面コイル、およびサドル内のＮＭＲ交差コイル、および伝送および受信のためのソレノイドからなる。ＥＳＲ照射コイルは、２つのＮＭＲコイルの間に配置される。ＥＰＲ照射およびＭＲＩのための外部磁場Ｂ_０は２０ｍＴで固定し、ＥＰＲ照射およびＭＲＩの高周波は、それぞれ５２７．５ＭＨｚおよび７９３ｋＨｚであった。表面コイル（直径２０ｍｍ）をＥＳＲ照射のために使用し、ＮＭＲコイルアセンブリは、ＮＭＲ伝送サドルコイル（９０ｍｍｉ．ｄ．、１７５ｍｍ長さ）および１ｋＨｚの帯域幅を有するソレノイド受信コイル（４０ｍｍｉ．ｄ．、６０ｍｍ長さ）からなる。最大伝送電力は１００Ｗであった。ＲｅＭＩ実験は、スピンエコー法を使用して行った。ＲｅＭＩ実験の条件は、１２ＷのＥＰＲ照射パワー、９０度フィリップ角、Ｔ_ＥＰＲ×繰り返し時間（Ｔ_Ｒ）×エコー時間（Ｔ_Ｅ）＝５００×１０００×４０ｍｓ、平均数＝１、スライス厚３０ｍｍ、６４位相変調ステップである。画像視野（３２×３２ｍｍ）は、６４×６４マトリックスを用いた。

ＲｅＭＩを用いたフリーラジカル中間体のスペクトロスコピックイメージング
ファントムは、ＣｏＱ_１０Ｈ、ＦＭＮＨ、^１４Ｎおよび^１５Ｎ標識ＣｍＰを含む４つのチューブからなる。ＣｏＱ_１０ＨおよびＦＭＮＨは上述したように調製した。ＲｅＭＩ実験は、５００〜５８０ＭＨｚの間の特定の周波数においてＥＰＲ照射を上述したＲｅＭＩシステムを使用して行った。

ミトコンドリアの存在下での代謝イメージング
ラットから採取したミトコンドリアを充填したファントムチューブにＦＡＤＨまたはＣｏＱ_０Ｈを添加して実験に用いた。そのうちの１つのサンプルを熱で不活性化した。ＲｅＭＩ実験は、上述したように５７２．５ＭＨｚのＥＰＲ照射下で、ＲｅＭＩシステムを使用い、ミトコンドリアとの反応開始後、画像を２分ごとに計測した。ＲｅＭＩ実験のための測定条件は、１２ＷのＥＰＲ照射、９０度フィリップ角、Ｔ_ＥＰＲ×繰り返し時間（Ｔ_Ｒ）×エコー時間（Ｔ_Ｅ）＝５００×１０００×４０ｍｓ、平均数＝１、スライス厚３０ｍｍ、６４位相エンコード、スキャンタイム＝７０秒である。ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈの代謝速度（減少率）は、ミトコンドリアとの反応後、最初の４つの画像強度の変化から算出した。

マウスにおける代謝イメージング
雌のＣ５７ＢＬ６マウス（５週目）を日本ＳＬＣ社（浜松、日本）から購入し、実験前に１週間馴化させた。マウスは実験時に６〜８週目であり、体重は２０〜３０ｇ、温度と湿度を調整し、２４時間周期のリズムに調整した室内に、各ケージに５匹で飼育した。餌および水は自由に与えた。全ての手順および動物飼育は、動物実験倫理委員会、九州大学によって承認を得たものであり、九州大学の動物実験のためのガイドラインに従って実行した。

マウスは、ＦＡＤＨ実験では２％イソフルレン、またはＣｏＱ_０Ｈ実験ではウレタン（２ｇ／ｋｇ）で麻酔し、胃を下にして皮膚粘着テープによって固定した。実験の間、マウスの体温を維持するため、温風で体温を３７±１°Ｃに保った。その後、マウスを共鳴器内に設置し、ＲｅＭＩ測定を開始した。下部腹部領域のＲｅＭＩ画像は、８ｍＭのＣｏＱ_０アルカリ性溶液（８００μＬ）を直腸投与またはＦＡＤ／ＮＡＤＨ溶液を筋肉内投与して計測を開始した。

ＲｅＭＩ画像はＦＡＤＨを用いた実験では製作した九州大学で製作したＤＮＰ−ＭＲＩシステム、およびＣｏＱ_０用の実験ではフィリップス・プロトタイプ・システムを使用して得た。ＲｅＭＩ実験は上述したパラメータで行った。ラジカル代謝画像（レドックス・マップ）は最初の４つのＲｅＭＩ画像間の各ピクセルにおけるＲｅＭＩ強度の変化を（経時的画像上の各ピクセルの半対数プロット線から）算出することによって得た。

画像分析
ＲｅＭＩデータは、ＩｍａｇｅＪソフトウェア（ｈｔｔｐ：／／ｒｓｂ．ｉｎｆｏ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／）を使用して解析した。

（実験結果）
以下に、図面を用いて実験結果について説明する。

１．内因性分子のＲｅＭＩによる同時可視化
ＦＭＮＨ、ＦＡＤＨ、ＣｏＱ_１０Ｈ、ビタミンＥ、ビタミンＫ_１由来のフリーラジカル、および合成ＣｍＰラジカルを含む７本のファントムを設計した。ＦＭＮＨ、ＦＡＤＨ、およびＣｍＰは水溶性溶媒に溶解し、ＣｏＱ_１０Ｈ、ビタミンＥ、およびビタミンＫ_１ラジカルは脂溶性溶媒で溶解した。各々のＥＰＲスペクトルを図１ａに示した。各フリーラジカル種の濃度（図１ａの各スペクトルの右側に示す）は、Ｘ−ｂａｎｄＥＳＲにより決定した（２７〜５５０ｎＭ）。通常のＭＲＩ画像は画像強度が低かった（図１ｂ右）。ＲｅＭＩ実験におけるＥＰＲ照射は５２７．５ＭＨｚ（図１ａの垂直線で示す）で１０Ｗの連続波によって行い、これは合成ＣｍＰの中心ピークである。ＲｅＭＩ画像において、すべての内因性フリーラジカル中間体、および合成ＣｍＰは、異なる画像強度を示した（図１ｂ左）。各フリーラジカル中間体のＲｅＭＩ画像は、溶媒プロトンに由来する（ＦＭＮＨ、ＦＡＤＨ、およびＣｍＰでは水プロトン、ＣｏＱ_１０Ｈ、ビタミンＥ、およびビタミンＫ_１ラジカルでは炭化水素プロトン）。内因性化合物のフリーラジカル中間体のＥＰＲスペクトルはＣｍＰのものよりも比較的複雑であり、且つ線幅も広いが（図１）ＲｅＭＩにより画像化することが可能であった。ＤＮＰあり、なしのファントムの画像強度を図１ｃに示し、それらの増強係数（ＥＰＲ照射あり／なしでの強度の比率）を図１ｄに示した。

２．シングルＲｅＭＩ実験でのフリーラジカル中間体の分光２Ｄイメージング
本発明者らは、ＲｅＭＩが、ＭＲＩまたは磁気共鳴分光イメージング（ＭＲＳＩ）における化学シフトと同様に、複数種のイメージングを実行することができることを報告した。図１の画像は全てのラジカル種が単一の周波数を照射することによって得ているが、本発明者らは、ＣｏＱ_１０Ｈ、ＦＭＮＨ、および合成^１４Ｎまたは^１５Ｎ標識ＣｍＰを有するファントムを使用して与えられた視野でいくつかのフリーラジカル種をそれぞれ区別するためのＲｅＭＩの能力をテストした（図２ａ）。図２ｂでは、これらの種の個々のＥＰＲ吸収スペクトルを、スペクトル範囲（５００〜５８０ＭＨｚ）に沿って重ね合わせた。画像データは上述の方法論に記載したパルスシーケンスを使用して得た（図２ｃ）。ＥＰＲ照射の周波数を変えることにより、フリーラジカル中間体ＦＭＮＨ、ＣｏＱ_１０Ｈおよび_１４Ｎ−ＣｍＰの異なる画像を、ＲｅＭＩ実験によって視覚化することができる。ＣｏＱ_１０Ｈおよび１４Ｎ−ＣｍＰは５２７．５ＭＨｚで鮮明な画像が得られ、５３１ＭＨｚでは不鮮明な画像が得られた。一方、ＦＭＮＨのシグナルは５２７．５〜５３７．５ＭＨｚで明白だった。本発明者らの以前の観察と同じく、^１５Ｎおよび^１４Ｎ標識ラジカルは、それぞれ５５５および５７０ＭＨｚでのＥＰＲ照射を用いて個々に視覚化することができる。それぞれのＥＰＲ照射周波数での常磁性中間体の各々の強度を図２ｄに示した。この結果は、各フリーラジカル種が、溶媒条件またはＥＰＲスペクトル複雑度とは独立して、得られる画像データから個々に認識されることを示している。これらのデータは、フリーラジカル中間体の個々のスペクトルの演繹的知識とともに、目的の種を選択的に画像化し、目的としない種の重複を回避するために適切な照射周波数を選択できることを示す。これは、コリン、乳酸塩、およびクエン酸塩のような代謝産物からの弱いシグナルを回収するため、水プロトンシグナルを抑制するために特別なパルスシーケンスを利用する必要がある^１ＨＭＲＳＩに対して有意な優位性となる。

フリーラジカルを撮像するためのＲｅＭＩの能力をさらにテストするため、図２ｅに示したファントムを使用し、ＲｅＭＩ画像は、５２７．５〜５３７．５ＭＨｚ間で１ＭＨｚごとにＥＰＲを連続して照射することで得た（図２ｆ〜ｈ）。この周波数範囲で得られた各画像は、各ラジカルのＥＰＲ吸収の減少に伴い、強度が明らかに減少した。この結果は、ＲｅＭＩが、ＥＰＲ照射周波数を掃引することで、個々のフリーラジカル中間体を同時に特徴づけることができることを証明するものである。

３．ミトコンドリアを用いた代謝イメージング
リアルタイムの酸化還元反応をモニターするためフリーラジカル中間体ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈとミトコンドリアとの反応を検討した。このファントムは２つのカラムに配置された６つのチューブからなり、ＦＡＤＨまたはＣｏＱ_０Ｈと反応させた種々の濃度のミトコンドリア分画からなる。図３ａにはラジカル濃度に依存してＲｅＭＩの画像強度が増強することを示している。ＲｅＭＩ画像は、ミトコンドリアとＦＡＤＨまたはＣｏＱ_０Ｈとの反応開始後に経時的に得た。ＦＡＤラジカルを添加した場合にはミトコンドリアとの反応を示さないのに対し（図３ｂおよび３ｃ）、ＣｏＱ_０Ｈを用いた場合にはミトコンドリア濃度に依存して画像強度が減少した（図３ｄおよび３ｅ）。不活性ミトコンドリア分画を用いた場合にはコントロールと同様に画像強度の減少はみられなかった。（中央列、右のカラム）。本願明細書において「レドックス・マップ」と称する強度減少の速度は、ＦＡＤＨでは変化を示さなかったが、ＣｏＱ_０Ｈを用いる場合にはミトコンドリア濃度依存的に亢進した（図３ｃおよび３ｅ）。このように、ＲｅＭＩによる代謝率の画像はＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈで全く異なり、ミトコンドリアにおけるＣｏＱ_０ＨからＣｏＱ_０Ｈ_２への転換をＲｅＭＩマップによって視覚化することができる（図３ｄおよび３ｅ）。

４．経時的ＲｅＭＩを用いたマウスにおける代謝イメージング
ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈをマウスに投与し、その後２分毎にＲｅＭＩ撮像を行った。図４ａは、両脚にＦＡＤＨの筋肉内投与をした後、２分毎に撮影した画像である。この２つの箇所からの画像強度は、試験期間（１４分）の間安定していた。図４ｂは、ＦＡＤＨ強度と、レドックス・マップとして表される、この強度の酸化還元率についての解剖学的画像である。筋肉内においてＦＡＤＨの代謝がゆっくり進むことがＲｅＭＩスキャンによりわかる。

ＲｅＭＩによる同様の実験を、ＣｏＱ_０Ｈを直腸内に導入することにより行った（図４ｄ）。ファントム実験におけるミトコンドリアとの反応と同様に、ＣｏＱ_０Ｈの強度は経時的に減少を示した（図３ｄおよび３ｅ）。腸管におけるＣｏＱ_０Ｈの解剖学的および代謝ＲｅＭＩ画像を図４ｄに示す。これはファントム実験と一致した。ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈは鮮明なＲｅＭＩ画像を提示し（図４ａおよび４ｄ）、ＭＲＩとＲｅＭＩの融合画像から、ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈがそれぞれ脚および腸において、部位特異的に分布しているということがわかる（図４ｂおよび４ｅ）。

ＦＡＤＨおよびＣｏＱ_０Ｈの薬物動態的特性は、その減少率から得られ、両者の薬物動態的特性は異なった。ＣｏＱ_０Ｈの薬物動態的マップは組織内の部位に強く依存し、一方、ＦＡＤＨの薬物動態的マップは一定であった（図４ｃおよび４ｆ）。フリーラジカル中間体は、ミトコンドリアにおける電子移動および／または酸化還元反応、再分布および排出によって、それらの常磁性を失うことがあり、そのいくつかはマウスの腸においてＣｏＱ_０Ｈの急速な減衰を誘発する可能性がある。図４ｇに示したように、ＲｅＭＩ画像強度変化の経時プロットは、生体内で目的領域全体（ＲＯＩ）、盲腸上部（ＲＯＩ−１）、盲腸下部（ＲＯＩ−２）、および結腸（ＲＯＩ−３）で異なり、一方、ＣｏＱ_０Ｈ溶液自体は安定であった（図３ｅ）。

５．ＲｅＭＩによるビタミンＫ_１の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてビタミンＫ_１を可視化した。その結果を図５ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではビタミンＫ_１を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。なお、ビタミンＫ_１とＮａＯＨの最終濃度は４．７６ｍＭである。
５ｍＭビタミンＫ_１（ｉｎＤＭＳＯ）５００μＬ
１００ｍＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）２５μＬ
５２５μＬ
混合後、すぐに５００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図５ａはＮａＯＨ溶液を加えてから２８分後に取得した画像である。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとビタミンＫ_１ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またビタミンＫ_１ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

また、本実施例におけるＸバンドＥＳＲスペクトル、およびＥＳＲ照射強度を変更した場合の画像強度を図５ｂに示した。

６．ＲｅＭＩによるビタミンＫ_２の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてビタミンＫ_２を可視化した。その結果を図６ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではビタミンＫ_２粉末を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。なお、ビタミンＫ_２とＮａＯＨの最終濃度は４．７６ｍＭである。
５ｍＭビタミンＫ_２（ｉｎＤＭＳＯ）５００μＬ
１００ｍＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）２５μＬ
５２５μＬ
混合後、すぐに５００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図６ａはＮａＯＨ溶液を加えてから２５分後に取得した画像である。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとビタミンＫ_２ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またビタミンＫ_２ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

また、本実施例におけるＸバンドＥＳＲスペクトル、およびＥＳＲ照射強度を変更した場合の画像強度を図６ｂに示した。

７．ＲｅＭＩによるビタミンＫ_３の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてビタミンＫ_３を可視化した。その結果を図７ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではビタミンＫ_３を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。なお、ビタミンＫ_３とＮａＯＨの最終濃度は４．７６ｍＭである。
５ｍＭビタミンＫ_３（ｉｎＤＭＳＯ）５００μＬ
１００ｍＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）２５μＬ
５２５μＬ
混合後、すぐに５００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図７ａはＮａＯＨ溶液を加えてから４５分後に取得した画像である。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとビタミンＫ_３ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またビタミンＫ_３ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

また、本実施例におけるＸバンドＥＳＲスペクトル、およびＥＳＲ照射強度を変更した場合の画像強度を図７ｂに示した。

８．ＲｅＭＩによるビタミンＫ_３の可視化
さらに本発明者らはＥＳＲ照射の周波数を変更してＲｅＭＩを用いてビタミンＫ_３を可視化した。その結果を図８ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン（５２３ＭＨｚ）、写真中央がＥＳＲ照射オン（５２７ＭＨｚ）、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではビタミンＫ_３を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。なお、ビタミンＫ_３とＮａＯＨの最終濃度は４６．８ｍＭである。
５０ｍＭビタミンＫ_３（ｉｎＤＭＳＯ）５０４μＬ
７２０ｍＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）３５μＬ
５３９μＬ
混合後、すぐに５００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図８ａはＮａＯＨ溶液を加えてから３日後に取得した画像である。

本実施例により、ＥＳＲ照射の周波数を調整することにより目的のフリーラジカル中間体を選択的に画像化することができることがわかる。また、本実施例における画像強度をグラフ化したものが図８ｂである。

９．ＲｅＭＩによるビタミンＫ_２およびビタミンＫ_３の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてビタミンＫ_２およびビタミンＫ_３を同時に可視化した。その結果を図９ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではビタミンＫ_２またはビタミンＫ_３の粉末を、有機溶媒であるエタノールまたはメタノールに溶解したＮａＯＨアルコール溶液に加えた。ビタミンＫ_２とビタミンＫ_３の最終濃度は１００ｍＭとなるように反応液を調製した。

混合後、すぐに３００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図９ａはＮａＯＨアルコール溶液を加えてから３時間後に取得した画像である。

本実施例により、ＲｅＭＩにより脂質環境下で複数のフリーラジカル中間体を良好に観察することができることがわかる。本実施例における画像強度をグラフ化したものが図９ｂである。各カラムの左がＥＳＲ照射オフ、右がＥＳＲ照射オンである。

１０．ＲｅＭＩによるリボフラビン（ビタミンＢ_２）ラジカルの可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてリボフラビン（ビタミンＢ_２）ラジカルを可視化した。その結果を図１０ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。本実施例ではリボフラビン粉末を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮＡＤＨ水溶液を加えた。

混合後、すぐに３００μＬをダーラム管に密封し、共振器にセットし、ＲｅＭＩ撮像を行った。図１０ａはＮａＯＨ溶液を加えてから３時間後に取得した画像である。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮＡＤＨを加えるとリボフラビン（ビタミンＢ_２）ラジカルを良好に観察することができることがわかる。

また、本実施例におけるＸバンドＥＳＲスペクトル、および画像強度をグラフ化したものが以下の図１０ｂである。画像強度のグラフにおいて、各カラムの左がＥＳＲ照射オフ、右がＥＳＲ照射オンである。

１１．ＲｅＭＩによる没食子酸エピガロカテキン（Ｅｐｉｇａｌｌｏｃａｔｅｃｈｉｎｇａｌｌａｔｅ：ＥＧＣＧ）の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いて没食子酸エピガロカテキンを可視化した。その結果を図１１に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例では没食子酸エピガロカテキンを有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。
２５ｍＭＥＧＣＧ（ｉｎＤＭＳＯ）２７０μＬ
１ＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）３０μＬ
３００μＬ

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えると没食子酸エピガロカテキンラジカルを良好に観察することができることがわかる。また没食子酸エピガロカテキンラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１２．ＲｅＭＩによるドーパミンの可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてドーパミンを可視化した。その結果を図１２に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例ではドーパミンを有機溶媒であるエタノールに溶解し、酸化還元物質としてＫＯ_２溶液を加えた。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＫＯ_２を加えるとドーパミンラジカルを良好に観察することができることがわかる。またドーパミンラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１３．ＲｅＭＩによるクロロゲン酸の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてクロロゲン酸を可視化した。その結果を図１３に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例ではクロロゲン酸を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。
２５ｍＭクロロゲン酸（ｉｎＤＭＳＯ）２８５μＬ
１ＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）１５μＬ
３００μＬ

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとクロロゲン酸ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またクロロゲン酸ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１４．ＲｅＭＩによるカフェイン酸の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてカフェイン酸を可視化した。その結果を図１４に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例ではカフェイン酸を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。
２５ｍＭカフェイン酸（ｉｎＤＭＳＯ）２８５μＬ
１ＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）１５μＬ
３００μＬ

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとカフェイン酸ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またカフェイン酸ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１５．ＲｅＭＩによるロスマリン酸の可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてロスマリン酸を可視化した。その結果を図１５に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例ではロスマリン酸を有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。
２５ｍＭロスマリン酸（ｉｎＤＭＳＯ）２７７．５μＬ
１ＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）２２．５μＬ
３００μＬ

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとロスマリン酸ラジカルを良好に観察することができることがわかる。またロスマリン酸ラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１６．ＲｅＭＩによるルチンの可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてルチンを可視化した。その結果を図１６に示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例ではルチンを有機溶媒であるＤＭＳＯに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。組成は以下の通りである。
２５ｍＭルチン（ｉｎＤＭＳＯ）２８５μＬ
１ＭＮａＯＨ（ｉｎｗａｔｅｒ）１５μＬ
３００μＬ

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとルチンラジカルを良好に観察することができることがわかる。またルチンラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。

１７．ＲｅＭＩによるセラトロダストの可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてセラトロダストを可視化した。その結果を図１７に示す。本実施例ではセラトロダストを有機溶媒であるアセトンに溶解し、酸化還元物質としてＮａＯＨ溶液を加えた。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えるとセラトロダストラジカルを良好に観察することができることがわかる。またセラトロダストラジカルはニトロキシルラジカルであるカルバモイル−プロキシルよりも良好に観察することができた。さらに、酸化還元物質としてＮａＯＨを加えない場合はセラトロダストラジカルの観察が良好ではないことがわかる。

１８．ＲｅＭＩによるトロロックスの可視化
本発明者らは続いてＲｅＭＩを用いてトロロックスを可視化した。その結果を図１８に示す。本実施例ではトロロックスを有機溶媒である１８−ｃｒｏｗｎ−６／エタノールに溶解し、酸化還元物質としてＫＯ_２を加えた。

本実施例により、脂質環境下である有機溶媒中では、酸化還元物質としてＫＯ_２を加えるとトロロックスラジカルを良好に観察することができることがわかる。またトロロックスラジカルはＯｘｏ６３よりも良好に観察することができた。

１９．ＴＥＭＰＯＬを有機溶剤に溶解させた場合のＲｅＭＩ画像
本発明者らは続いて比較例としてニトロキシルラジカルであるＴＥＭＰＯＬを有機溶剤に溶解させ、ＲｅＭＩ撮像を行った。その結果を図１９ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例では種々の濃度のＴＥＭＰＯＬを種々の有機溶剤（エタノール、メタノール、クロロホルム、アセトン、キシレン）及びコントロールとしての水に溶解している。

本実施例により、いずれの有機溶剤においても水に溶解させたときに比べてＴＥＭＰＯＬの画像強度が極端に減少していることがわかる。本実施例における画像強度をグラフ化したものが図１９ｂである。各カラムの左がＥＳＲ照射オフ、右がＥＳＲ照射オンである。

続いて有機溶剤としてＤＭＳＯを用いて、同じくＴＥＭＰＯＬを各種有機溶剤に溶解させ、ＲｅＭＩ撮像を行った。その結果を図２０ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。

本実施例により、ＴＥＭＰＯＬをＤＭＳＯに溶解させたときも、水に溶解させたときに比べてＴＥＭＰＯＬの画像強度が約１／３に減少していることがわかる。本実施例における画像強度をグラフ化したものが図２０ｂである。左グラフがＥＳＲ照射オフ、右グラフがＥＳＲ照射オンである。

１８．ＭＣ−ＰＲＯＸＹＬを有機溶剤に溶解させた場合のＲｅＭＩ画像
本発明者らは続いて比較例としてニトロキシルラジカルであるＭＣ−ＰＲＯＸＹＬを有機溶剤に溶解させ、ＲｅＭＩ撮像を行った。その結果を図２１ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オフ、写真右がＥＳＲ照射オンの画像である。本実施例では種々の濃度のＭＣ−ＰＲＯＸＹＬを種々の有機溶剤（エタノール、メタノール、クロロホルム、アセトン、キシレン、ヘキサン）及びコントロールとしての水に溶解している。

本実施例により、いずれの有機溶剤においても水に溶解させたときに比べてＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの画像強度が極端に減少していることがわかる。本実施例における画像強度をグラフ化したものが図２１ｂである。各カラムの左がＥＳＲ照射オフ、右がＥＳＲ照射オンである。

続いて有機溶剤としてＤＭＳＯを用いて、同じくＭＣ−ＰＲＯＸＹＬを各種有機溶剤に溶解させ、ＲｅＭＩ撮像を行った。その結果を図２２ａに示す。写真左がＥＳＲ照射オン、写真右がＥＳＲ照射オフの画像である。

本実施例により、ＭＣ−ＰＲＯＸＹＬをＤＭＳＯに溶解させたときも、水に溶解させたときに比べてＭＣ−ＰＲＯＸＹＬの画像強度が極端に減少していることがわかる。本実施例における画像強度をグラフ化したものが図２２ｂである。各カラムの左がＥＳＲ照射オフ、右がＥＳＲ照射オンである。

その他、本発明は、さまざまに変形可能であることは言うまでもなく、上述した一実施形態に限定されず、発明の要旨を変更しない範囲で種々変形可能である。

Claims

脂質環境下でラジカル反応を行う分子の酸化還元反応を検出する方法であって、
測定対象となる生体またはサンプルに磁気共鳴法を適用して、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得る工程と、
前記プロトン画像における前記生体またはサンプルの画像強度を測定する工程と
を有する方法。
請求項１記載の方法において、前記プロトン画像を得る工程は、２若しくはそれ以上のプロトン画像を経時的に得るものであり、
この方法は、さらに、前記プロトン画像における前記生体またはサンプルの画像強度の経時的変化を比較する工程を有するものである、方法。
請求項１記載の方法において、前記磁気共鳴法はオーバーハウザーＭＲＩであり、前記プロトン画像を得る工程は、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されたプロトン画像を得るものである、方法。
請求項３記載の方法であって、さらに、
前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されていないプロトン画像を得る工程と、
前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されたプロトン画像と、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子の電子スピンが励起されていないプロトン画像とを比較し、当該２枚の画像における前記生体またはサンプルの画像強度の差分または割合を算出する工程と
を有する、方法。
請求項１記載の方法において、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子はキノン骨格を有する分子である、方法。
請求項５記載の方法において、前記キノン骨格を有する分子は、ユビキノン（ＣｏＱ_１０）、リボフラビン、ビタミンＫ_１、ビタミンＫ_２、ビタミンＫ_３、１，４−ベンゾキノン（ｐ−キノン）、２，６−ジクロロ−ｐ−キノン、１，４−ナフトキノン、及びセラトロダストから成る群から選択されるものである、方法。
請求項１記載の方法において、前記プロトン画像を得る工程は、２若しくはそれ以上の前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得るものである、方法。
請求項１記載の方法であって、さらに、水性環境下でラジカル反応を行う分子のプロトン画像を得る工程を有する、方法。
請求項１記載の方法において、前記生体またはサンプルは酸化還元物質が予め投与されているものである、方法。
請求項９記載の方法において、前記生体またはサンプルは前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子が予め投与されているものである、方法。
請求項９記載の方法において、前記酸化還元物質はＮａＯＨ、ＮＡＤＨ、ＫＯ_２、及びこれらの組み合わせから成る群から選択されるものである、方法。
請求項１記載の方法において、前記脂質環境下でラジカル反応を行う分子はエタノール、メタノール、ＤＭＳＯ、アセトン、ヘキサン、クロロホルム、アルカリ溶液、及びこれらの組み合わせから成る群から選択される溶媒に溶解しているものである、方法。