JPWO2013073454A1 - 生理活性物質徐放制御組成物 - Google Patents

Abstract

【課題】生体内にて必要な時機に生理活性物質を放出開始するように制御できる生理活性物質徐放制御組成物の提供を目的とする。【解決手段】生理活性物質を担持した生分解性物質からなる内層と、当該内層とは異なる生分解性物質からなる外層とからなる。【選択図】 図１

Description

本発明は生理活性物質の生体内における運搬及び放出をｉｎ ｓｉｔｕに制御できる生理活性物質徐放制御組成物に関する。

これまでにドラッグデリバリーシステム（ＤＤＳ）の研究が盛んに行われていて、近年では非特許文献１に示すようにタンパク質薬剤の徐放研究結果も報告されている。
しかし、これまでの徐放研究は薬物を長時間かけて徐々に放出するものであって、薬物の放出開始時期も含めて生体内にてｉｎ ｓｉｔｕに徐放制御できるものは報告されていない。

例えば現在、幹細胞の移植による難治疾患の治療が有望視されており、様々な研究がおこなわれている。
中でも、中枢神経疾患の一つであるパーキンソン病は、薬剤などで病態の進行を食い止めることは可能と言われているが、完治は、神経幹／前駆細胞の移植による治療でしか不可能であろうと言われており、細胞移植医療の実現に大きな期待が寄せられている。
しかしながら、この幹細胞移植による治療において、大きな問題として挙げられるのが、幹細胞を移植しても、損傷した組織には、幹細胞を制御できるだけの能力がなく、移植細胞が制御されないため、損傷組織の再生には至らないという問題である。
そこで、様々な方法が模索されているものの、有効な手法の確立には至っていない。
一方で、幹細胞の分化制御において、複数の因子が段階的に作用することで効率良く分化誘導されることが、分子生物学的知見から周知の事実となっている。
つまり、ある分化状態において、Ａという因子が作用し、その次にＢという因子が作用するといった具合に、段階的に且つ時機を規定して複数の因子を作用させることが、幹細胞の効率的な分化誘導には必要不可欠である。
しかし、従来のタンパク質ＤＤＳは、機能因子の作用時機を規定できるようなシステムの構築には至っていない。
この理由として、これまで、内包したタンパク質を目的の場所に運搬して目的の細胞の近くで徐放させることのみが目的事項とされ、作用させる時機を規定しようという考え方自体が要求されていなかったことも理由として挙げられる。
本発明者らは、移植した幹細胞を効率良く分化誘導させ組織を再生できる材料を創製することにより、パーキンソン病治療のための神経幹／前駆細胞移植医療が実現に向けて大きく前進すると考え、ｉｎ ｓｉｔｕで分化誘導制御できるタンパク質運搬材料の創製を課題として研究を行い、本発明に係る組成物創製に至った。

Mundargi R. C., et al. Journal of Controlled Release, Vol. 125, pp. 193-209 (2008)

本発明は生体内にて必要な時機に生理活性物質を放出開始するように制御できる生理活性物質徐放制御組成物の提供を目的とする。

本発明に係る生理活性物質徐放制御組成物は、生理活性物質を担持した生分解性物質からなる内層と、当該内層とは異なる生分解性物質からなる外層とからなる。
本発明において徐放制御とは、生体内において生理活性物質の放出を開始するタイミングと放出速度が制御されていることをいう。

本発明で生理活性物質とは、生体内で活性作用を示す物質で、タンパク質、ペプチド、およびドーパミン、セロトニン、Ｌ−ドーパなどの神経伝達にかかる物質をいうが、特に効果的なものは神経成長因子（ＮＧＦ）、グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、ニューロトロフィン−３、ニューロトロフィン−４、インスリン様成長因子−１（ＩＧＦ１）、幹細胞因子（ＳＣＦ）などが挙げられる。
また、神経分化に特化しない場合においては、塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）、血管新生関連因子の１つである血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）、神経細胞を取り巻く外環境を構築する細胞に効果的な血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、炎症反応の鎮静化を担う因子であるインターロイキン１０（ＩＬ１０）などのタンパク質も細胞制御のための効果的な因子である。
生理活性物質を内層の生分解性物質に担持させる際には、生理活性物質が不活性になることがなく且つ安定的な結合を用いる。
ここでいう安定的な結合とは、１０^８〜１０^１０Ｍ^−１の会合定数を有する生理活性物質と生分解性物質との間の特異的な分子間相互作用による結合である。
生理活性物質としてタンパク質を選び、内層の生分解性物質としてコラーゲンを選んだ際に、安定的な担持を達成する手段の一つとして、遺伝子工学技術を応用したキメラタンパク質合成法を利用することが挙げられる。
例えば、タンパク質のＣ末端にコラーゲン結合性ペプチド（ＣＢＰ）を融合したキメラタンパク質を作製すると、タンパク質はペプチド端とコラーゲンとの間に作用する分子間相互作用でコラーゲンに担持される。
また、この担持方法であれば、タンパク質が不活性になることもない。
例えば、神経幹／前駆細胞は脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）の作用をうけて初期神経に分化誘導されるが、その間はグリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）は不要とされている。
これは、ＧＤＮＦ受容体が、初期分化が誘導されることで大量に発現するものであり、ＧＤＮＦが必要となるのは受容体が発現した後だからである。
従って、ＧＤＮＦを作用させるタイミングを初期神経から中後期神経、ドーパミン神経に分化する段階に合せるのが有効である。
そこで例えば、ＧＤＮＦのＣ末端にコラーゲン結合性ペプチド（ＣＢＰ）を融合させたＧＤＮＦキメラタンパク質を合成し、内層として用いたコラーゲンに担持させると内層（コラーゲン）に酵素的又は加水分解的な分解が起こらない限り、ＧＤＮＦが放出されないことになるため、生理活性物質の放出開始のタイミングを制御することができる。
よって、内層の生分解が開始されると生理活性物質が外部に透過する外層を用いるのが好ましい。
本発明に用いる内層としてはコラーゲン，ゼラチン，ヒアルロン酸等の生体由来の天然高分子が好ましく、外層としては非晶質性の生分解性高分子が好ましい。
非晶質性の生分解高分子としては、ポリ乳酸（ＰＬＡ），ポリグリコール酸（ＰＧＡ），ポリカプロラクトン（ＰＣＬ），ポリヒドロキシ酪酸等のポリヒドロキシアルカン酸（ＰＨＡ）及び乳酸−グリコール酸共重合体（ＰＬＧＡ）等が例として挙げられる。
最終的には、外層そのものの消失が要求されるが、ＰＬＧＡは乳酸とグリコール酸の配合比率を変えることで、生体内での分解速度をコントロールすることができる。

本発明に係る生理活性物質徐放制御組成物を幹細胞の移植による疾患治療に適用する場合等には、幹細胞とともに体内に移植することになる。
そこで、体内で免疫担当細胞をはじめとする様々な細胞による貪食を受けない大きさの微粒子にするのが好ましい。
また、生理活性物質は微粒子から徐放されない限り、生体内の様々な細胞による消費を避けなければならない。
従って、そのような場合は、内層は生理活性物質を担持した略球状のコアであり、前記外層がコアの被覆層である粒子形状になっているのが好ましく、さらに粒子の大きさが平均で５〜６０μｍの範囲が好ましい。
粒子は細胞に貧食されない大きさであれば、問題はない。
この場合も、被覆層を形成した粒子の外層が生理活性物質の放出後に消失する。

本発明に係る生理活性物質徐放制御組成物は、生分解性物質からなる内層と同じく生分解性物質からなる外層との二重構造にし、この内層に生理活性物質を担持させたので、外層は内層の生理活性物質の物理的な保護を担うとともに、内層の生分解により初めて生理活性物質の放出が始まるので、体内で生理活性物質を作用させたいタイミングに合わせてｉｎ ｓｉｔｕに放出制御できる。
また、外層の厚さを調整することによっても内層の生分解を遅らせることが可能であり、放出させたいタイミングを厳密に制御することができる。
以下、具体例を挙げて説明する。
本発明者の過去の研究から、コラーゲンは、生体内での半減期が約１０日から２週間であることが分かっている。
神経幹／前駆細胞が神経前駆細胞や初期神経細胞に分化するのに約１週間程度必要とし、その後、ＧＤＮＦのシグナルを受けてドーパミン神経に分化する。
そのタイムスケールから考えて、神経へ分化している途中にちょうどコラーゲンの分解に伴うＧＤＮＦの放出が行われ、効率良く分化を誘導できることになる。
従来から存在するタンパク質ＤＤＳ技術を用いた場合では、神経幹／前駆細胞と微粒子の共移植直後からＧＤＮＦが少しずつ徐放される。
しかしながら、神経幹／前駆細胞にとって、移植直後にＧＤＮＦは必要なく、分化が進行した初期神経細胞において必要となる。
不必要なときにＧＤＮＦが放出されることは、無駄になるばかりか、ＧＤＮＦが移植細胞以外のホスト由来の細胞に作用することに伴う副作用も考えられる。
また、本当に必要な時にＧＤＮＦが枯渇している可能性が高い。
また、ＰＬＧＡをはじめとする外層を形成する生分解性高分子の膜厚を制御することによりコラーゲンの分解速度を調節でき、コラーゲンの生分解によりＧＤＮＦが放出後、数か月で微粒子自体が消失する。

（Ａ）は限外濾過などによるサイズ分画精製後に得られた微粒子の走査型電子位相差顕微鏡像を示す。（Ｂ）は赤色蛍光ラベル化ＧＤＮＦ−ＣＢＰを内包した微粒子の蛍光顕微鏡像を示す。 微粒子の粒径分布グラフを示す。 ＰＢＳに浸漬した微粒子とコラーゲン分解酵素含有ＰＢＳに浸漬した微粒子のＧＤＮＦ−ＣＢＰ放出グラフを示し、（Ａ）はコラーゲン分解酵素の濃度が０．３％で（Ｂ）はその濃度が０．１５％のものである。 （Ｃ）はコラーゲン分解酵素の濃度が０．０１％のＰＢＳに浸漬した微粒子のＧＤＮＦ−ＣＢＰ放出グラフを示し、（Ｄ）はＰＢＳに２０日間浸漬した際のＧＤＮＦ−ＣＢＰの放出の有無を確認したグラフを示す。 神経前駆細胞にＢＤＮＦ添加して４日間培養後、本発明に係る微粒子から放出したＧＤＮＦ−ＣＢＰを添加し７日間培養したときの顕微鏡像を示す。 （１）は神経前駆細胞（βチューブリンIII陽性細胞）の蛍光画像を示し（２）は成熟神経（ＭＡＰ２陽性細胞）の蛍光画像を示し（３）は神経前駆細胞、成熟神経及び核の蛍光画像を重ね合せたものを示す。 あらかじめ、初期神経細胞に誘導した細胞に実験１で作成した微粒子の添加量（ａ：５０μｇ，ｂ：１００μｇ，ｃ：１５０μｇ）を変化させ、０．０１％コラーゲン分解酵素を含む培地中で１４日間培養を行った際の成熟神経マーカー（ＭＡＰ２）の蛍光画像を示す。 実験１にて作成した微粒子の添加量に対するＭＡＰ２陽性細胞率（％）の変化を示す。 実験１にて作成した微粒子の添加量に対する細胞への影響調査結果を示す。 （ａ）は微粒子の添加量が３００μｇの場合の７日間培養後の顕微鏡写真を示し、（ｂ）は微粒子を添加しないものを対照にした生細胞数を示す。 実験１にて作成した微粒子を（ａ），（ｂ），（ｃ）の各条件にて１ヶ月間保存した後に２週間の分化誘導試験を行った後のＭＡＰ２蛍光画像を示す。 実験１にて作成した微粒子の各保存方法に対するＭＡＰ２陽性細胞率（％）を示す。 内層のＧＤＮＦを担持する生分解性物質としてヒアルロン酸を用いた微粒子をヒアルロン酸分解酵素含有ＰＢＳに浸漬させた場合のＧＤＮＦ−ＨＢＰ（ＨＢＰ：ヒアルロン酸結合ペプチド）の放出グラフを示す。 内層のコラーゲンの担持させる生理活性物質に脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）を用いた場合の微粒子からのＢＤＮＦ−ＣＢＰの放出グラフを示す。 外層の生分解性高分子にＰＨＡを用いた微粒子の顕微鏡写真を示す。 ラットを用いた ｉｎ ｖｉｖｏ評価結果を示す。移植後、所定の日数で移植部位周辺を採取し、その組織の細胞の遺伝子発現解析を行った結果である。

本発明に係る組成物の作製例を以下説明する。
＜実験１：タンパク質内包微粒子の作製＞
Ｗａｔｅｒ／Ｏｉｌ／Ｗａｔｅｒダブルエマルション法を用いて微粒子状の組成物を作製した。
４％ＰＬＧＡおよび０．１％Ｐｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ６８（ＳＩＧＭＡ ＡＬＤＲＩＣＨ社製：ポリエチレングリコール−ポリプロピレングリコール−ポリエチレングリコールブロック共重合体）を含むクロロホルム溶液をＯｉｌ相とし、０．５％コラーゲンおよび０．１％Ｐｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ６８を含む水溶液をＷａｔｅｒ相とした。
また、Ｗａｔｅｒ相にはコラーゲン結合性ペプチド融合グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ−ＣＢＰ）を２０μｇ／ｍＬになるように添加した。
この２種の溶液を混合し、マイクロ超音波処理を行うことにより微粒子を作製した。
得られた微粒子懸濁液を０．５％Ｐｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ１２７（ＳＩＧＭＡ ＡＬＤＲＩＣＨ社製）水溶液に滴下し、界面活性剤によるコーティング処理を行った後、遠心分離により回収した。
微粒子のコーティング処理においては、親水性生分解性高分子（例えばポリビニルアルコールなど）によるコーティングも可能である。
回収した微粒子は、限外濾過法などを利用して、５〜４０μｍ径の微粒子のみにサイズ分画した。
図１（Ａ）は、限外濾過によるサイズ分画精製後に得られた微粒子の走査型電子顕微鏡像である。
また、図２に上記微粒子の粒径分布をグラフに示す。

＜実験２：微粒子に内包されたＧＤＮＦの可視化＞
微粒子にＧＤＮＦ−ＣＢＰが取り込まれていることを調査するため、赤色蛍光（Ａｌｅｘａ５９４）でラベル化したＧＤＮＦ−ＣＢＰを用いて、同様に微粒子を作製した。
一般的なタンパク質の蛍光ラベル化方法を利用して、Ａｌｅｘａ５９４ラベル化ＧＤＮＦ−ＣＢＰを作製し、微粒子に内包させた。
図１（Ｂ）は、赤色蛍光ラベル化ＧＤＮＦ−ＣＢＰを内包した微粒子の蛍光顕微鏡像を示す。
なお、図１（Ｂ）はグレースケールになっているので分かりにくいが、実際の画像は微粒子が赤色蛍光を発していたことから、ＧＤＮＦ−ＣＢＰは目的通り、微粒子に内包されていることが分かった。

＜実験３：内包ＧＤＮＦの選択徐放＞
内包したＧＤＮＦ−ＣＢＰの放出時機規定が可能であることを調査するため、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）およびコラーゲン分解酵素含有ＰＢＳ中に浸漬した微粒子からのＧＤＮＦ−ＣＢＰの放出について評価した。
その結果を図３及び図４に示す。
図３のグラフ（Ａ）はコラーゲン分解酵素（コラゲナーゼ）の濃度が０．３％で図３のグラフ（Ｂ）はその濃度が０．１５％のものである。
図４のグラフ（Ｃ）はＰＢＳ中のコラーゲン分解酵素の濃度が０．０１％で、図４のグラフ（Ｄ）はコラーゲン分解酵素を含まないＰＢＳ中に２０日間浸漬した結果を示す。
グラフ（Ｄ）では２０日間にわたってＧＤＮＦの放出がほぼ認められないことから、実験１にて作成した組成物（微粒子）はコラーゲン分解酵素存在下でしかＧＤＮＦの徐放がないことが確認できた。
コラーゲン分解酵素の濃度を変えたグラフ（Ａ），（Ｂ），（Ｃ）を比較すると、ＰＢＳのみの段階ではＧＤＮＦ−ＣＢＰの放出が認められずにコラーゲン分解酵素を添加すると、ＧＤＮＦ−ＣＢＰの徐放が認められ、コラーゲン分解酵素の濃度が高い程、ＧＤＮＦ−ＣＢＰの放出速度が速い。
０．０１％コラーゲン分解酵素存在下では徐放量及び放出速度が０．１５％，０．３％に比べ減少するものの、充分に徐放効果があることが認められた。
また、１ｍｇの微粒子に含まれるＧＤＮＦ−ＣＢＰ量は１．４６±０．２１μｇであった。
この結果から、コラーゲンの分解に合わせて、タンパク質の放出が制御できることが分かった。
また、コラーゲン分解酵素の濃度又は、ＰＬＧＡの膜厚の変更（微粒子作製時のＰＬＧＡの濃度を変更することにより外層厚を変更）に応じて、放出速度が制御できることが分かっている。

＜実験４：微粒子から徐放されたＧＤＮＦによる細胞制御＞
微粒子に内包したＧＤＮＦ−ＣＢＰの活性について調査した。
まず、微粒子を作製する際に界面活性剤を使用している。
界面活性剤は、ポリエチレングリコール−ポリプロピレングリコール−ポリエチレングリコールの３元ブロック共重合体（ＳＩＧＭＡ ＡＬＤＲＩＣＨ社製：Ｐｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ６８またはＰｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ１２７）を使用した。
ここで、Ｐｌｕｒｏｎｉｃ−Ｆ６８およびＦ１２７と混合したタンパク質の活性を細胞培養試験により調査した結果、今回用いた界面活性剤はタンパク質に対して問題がないことが分かった。
また、微粒子から放出されたＧＤＮＦ−ＣＢＰについて、同様に細胞培養試験によって活性を調査した。
図５は、神経幹／前駆細胞にＢＤＮＦを添加した後、７日目に本発明に係る実験にて作成した微粒子から放出したＧＤＮＦ−ＣＢＰを添加した蛍光マーカー画像を示し、（１）は神経前駆細胞の蛍光画像を示し（２）は成熟神経の蛍光画像を示し（３）は神経前駆細胞、成熟神経及び核の蛍光画像を重ね合せたものを示す。
その結果、市販のＧＤＮＦと同等の活性を有することが分かった。
これらの結果から、微粒子の作製過程でもタンパク質の失活は無く、また、微粒子に内包されている状態においてもＧＤＮＦが失活することはないと考えられる。

次に実験１にて作成した微粒子を細胞に共存させ、細胞の分化状況を調査した。
あらかじめ一般的な初期神経分化誘導法を用いて４日間培養した初期神経細胞に、実験１にて作成した微粒子を図６に示すように、ａ：５０μｇ，ｂ：１００μｇ，ｃ：１５０μｇ添加した各群に、０．０１％コラーゲン分解酵素を含む培地中で１４日間培養を行った。
なお、０．０１％コラーゲン酵素は毎日添加し、培地は２日毎に半量を交換した。
図６はグレースケールにても分かりやすいように中後期神経マーカー（ＭＡＰ２）のみの蛍光画像を示す。
この結果から微粒子の添加量が多くなるに伴い、徐放されるＧＤＮＦ量が多くなり、成熟神経の割合が多くなることが分かった。
なお、図示を省略したが、神経マーカーであるβ−ｔｕｂｕｌｉｎIIIの蛍光画像を見ると微粒子の添加量が多くなるにつれて神経突起が太く成長していることも確認できた。
比較のために、微粒子を添加したがコラーゲン分解酵素を全く添加していないものも調査したところ、ＭＡＰ２陽性細胞の出現が全く認められず、β−ｔｕｂｕｌｉｎIII陽性細胞の突起も細く短いものばかりで神経の成長が殆ど認められなかった。
図７は実験１にて作成した微粒子の細胞分化誘導をＭＡＰ２陽性細胞率で評価したグラフを示す。
コラーゲン分解酵素の濃度は０．０１％である。
これにて２００μｇ／１０^６ｃｅｌｌｓの添加量までは、添加量が多くなるに伴いＭＡＰ２陽性細胞率は高くなるものの、３００μｇ／１０^６ｃｅｌｌｓでは若干低下することが明らかになった。

次に実験１にて作成した微粒子は界面活性剤を用いているので、細胞への影響がないか詳細に調査した。
図８は、あらかじめ培養を行った神経幹／前記細胞に、実験１にて作成した微粒子の添加をしないものと、各種量を添加したものの生細胞数を比較した結果を示す。
これにより今回調査した３００μｇ／１０^６ｃｅｌｌｓ以下の範囲であれば細胞への影響がないことが分かった。

次に、本発明に係る組成物の例として微粒子の保存方法による活性度への影響を調査した。
図９は、ＭＡＰ２の蛍光画像を示し、（ａ）はＰＢＳ中にて１ヶ月間冷蔵保存した微粒子、（ｂ）はＰＢＳ中にて１ヶ月間−３０℃の凍結保存した微粒子、（ｃ）はＰＢＳ中にて凍結乾燥させた状態で１ヶ月間保存した微粒子をそれぞれ用いて２週間培養による分化誘導試験を行った後のＭＡＰ２蛍光画像を示す。
図１０は、Ｔｙｐｅ１〜６に示す各保存条件にて１ヶ月間保存した後の２週間培養分化誘導におけるＭＡＰ２陽性細胞の割合を示す。
このことから保存方法としては、凍結保存又は凍結乾燥保存が好ましい。

他の実施例として、実験１の微粒子の作成において、コラーゲンの替わりにヒアルロン酸（ＨＡｃ）を用いて微粒子を作成し、内層をヒアルロン酸に担持させたＧＤＮＦ−ＨＢＰとした。
ここでＨＢＰとは、ヒアルロン酸に特異的な結合するペプチド配列のことをいう。
外層は実験１と同様にＰＬＧＡである。
図１１に、上記微粒子をヒアルロン酸分解酵素の濃度０．１％及び０．０１％のＰＢＳ中に浸漬した際の放出されるＧＤＮＦ−ＨＢＰの濃度変化を測定したグラフを示す。
この結果から、コラーゲンの替わりにヒアルロン酸を用いても徐放制御が可能であることが分かる。
また、この微粒子を神経幹／前駆細胞と共存させ、２週間培養を行ったところ、成熟神経への分化が認められ、ヒアルロン酸分解酵素を添加しなかった培養系では成熟神経への分化が認められなかった。
このことから本発明に係る徐放制御組成物は、内層のタンパク質等を担持する生分解性物質を適宜、替えても成立させることができる。

図１２は実験１において、内層のタンパク質を脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）に替えた微粒子の徐放性試験結果を示す。
これにより、内層に担持させる生理活性物質も適宜選択使用できることがわかる。

次に実験１における外層として用いたＰＬＧＡの替わりにポリヒドロキシアルカン酸（ＰＨＡ）を用いて微粒子を作成したものを図１３に示す。
また、外層としてポリＬ−乳酸（ＰＬＬＡ）を用いても同様に作成できた。
これにより、外層の高分子も適宜選択使用できることが分かる。

次にラットを用いてＩｎ ｖｉｖｏ評価したもので説明する。
移植は、ラット線条体に行った。
神経幹／前駆細胞（１０^６ｃｅｌｌｓ）＋ＧＤＮＦ内包ＰＬＧＡ／コラーゲン微粒子＋Ｍａｔｒｉｇｅｌ（市販品）を混合して線条体へインジェクションした。
移植後、所定期間で移植組織周辺（移植領域をメスで切り出してくる）を回収し、ＲＮＡを抽出し、ｃＤＮＡに逆転写しＰＣＲを行った（ＲＴ−ＰＣＲ）。
この実験により、分化マーカータンパク質のｍＲＮＡ発現について調査した。
その結果を図１４に示す。
ＧＡＰＤＨは、ハウスキーピング遺伝子で、これにより、ＰＣＲを行う際のサンプル間の遺伝子量を揃えた（規格化）。
Ｎｅｓｔｉｎは神経幹細胞マーカー、β−ｔｕｂｕｌｉｎ IIIは神経マーカーであり初期神経から成熟神経まですべてのステージの神経で発現している。
ＭＡＰ２は、中後期神経マーカーで成熟神経マーカーの１つ。
ＴＨ（Ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ）は、ドーパミン神経マーカーである。
移植前、組織（Ｓｔｒｉａｔｕｍ）にはＮｅｓｔｉｎの発現が極めて少ないが、移植後Ｎｅｓｔｉｎ発現が認められる＝移植細胞由来。
その後にＮｅｓｔｉｎ発現が減少し、移植細胞が分化していると考えられる。
ＴｕｂｕｌｉｎのｍＲＮＡ発現が、移植後７〜２１日にかけて増加している。
これは、移植細胞の神経への分化に由来するものと考える。
ＭＡＰ２のｍＲＮＡ発現が、移植後Ｄ１４から見られＤ２１で増大していること、また、ＴＨのｍＲＮＡ発現がＤ２１で発現が見られることから、移植後１週間くらいから、リリースされたＧＤＮＦの効果で分化が誘導されていると考えられ、そしてドーパミン神経へ誘導できていると言える。

本発明に係る生理活性物質徐放制御組成物は、生体内において生理活性物質をｉｎ ｓｉｔｕに放出制御できるので、例えば移植した幹細胞を効率良く分化誘導させ、組織を再生させるのに有効であり、難治疾患の治療等に有用である。

Claims (8)

1. 生理活性物質を担持した生分解性物質からなる内層と、当該内層とは異なる生分解性物質からなる外層とからなる生理活性物質徐放制御組成物。
2. 前記生理活性物質はタンパク質であることを特徴とする請求項１記載の生理活性物質徐放制御組成物。
3. 前記担持手段が生理活性物質と内層の生分解性物質との分子間相互作用によるものであることを特徴とする請求項１又は２記載の生理活性物質徐放制御組成物。
4. 前記外層は内層の生分解に伴い、内層に担持された生理活性物質が外部に透過するものであることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の生理活性物質徐放制御組成物。
5. 前記内層は略球状のコアであり、前記外層がコアの被覆層である粒子形状になっていることを特徴とする請求項１〜４のいずれかに記載の生理活性物質徐放制御組成物。
6. 前記粒子の大きさが平均で５〜６０μｍの範囲であることを特徴とする請求項５記載の生理活性物質徐放制御組成物。
7. 前記内層の生分解性物質が生体由来天然高分子であり、前記外層の生分解性物質が非晶質性の生分解性高分子であることを特徴とする請求項１〜６のいずれかに記載の生理活性物質徐放制御組成物。
8. 前記生体由来天然高分子がコラーゲン又はヒアルロン酸のいずれかであり、前記非晶質性の生分解性高分子が乳酸−グリコール酸共重合体（ＰＬＧＡ），ポリ乳酸（ＰＬＡ），ポリヒドロキシアルカン酸（ＰＨＡ）のいずれかである請求項７記載の生理活性物質徐放制御組成物。

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