JPWO2011093187A1 - 酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法 - Google Patents

酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法 Download PDF

Info

Publication number
JPWO2011093187A1
JPWO2011093187A1 JP2011551817A JP2011551817A JPWO2011093187A1 JP WO2011093187 A1 JPWO2011093187 A1 JP WO2011093187A1 JP 2011551817 A JP2011551817 A JP 2011551817A JP 2011551817 A JP2011551817 A JP 2011551817A JP WO2011093187 A1 JPWO2011093187 A1 JP WO2011093187A1
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
nucleotide sequence
seq
formula
plasmid
polynucleotide
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Withdrawn
Application number
JP2011551817A
Other languages
English (en)
Inventor
憲太朗 山本
憲太朗 山本
麻里子 土田
麻里子 土田
和彦 尾山
和彦 尾山
公彦 後藤
公彦 後藤
正明 三冨
正明 三冨
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Meiji Seika Kaisha Ltd
Original Assignee
Meiji Seika Kaisha Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Meiji Seika Kaisha Ltd filed Critical Meiji Seika Kaisha Ltd
Publication of JPWO2011093187A1 publication Critical patent/JPWO2011093187A1/ja
Withdrawn legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/18—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D403/00—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00
    • C07D403/02—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings
    • C07D403/04—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings directly linked by a ring-member-to-ring-member bond
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D403/00—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00
    • C07D403/02—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings
    • C07D403/08—Heterocyclic compounds containing two or more hetero rings, having nitrogen atoms as the only ring hetero atoms, not provided for by group C07D401/00 containing two hetero rings linked by a carbon chain containing alicyclic rings
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07D—HETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D493/00—Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system
    • C07D493/02—Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring hetero atoms in the condensed system in which the condensed system contains two hetero rings
    • C07D493/04—Ortho-condensed systems
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/18—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms containing at least two hetero rings condensed among themselves or condensed with a common carbocyclic ring system, e.g. rifamycin
    • C12P17/181—Heterocyclic compounds containing oxygen atoms as the only ring heteroatoms in the condensed system, e.g. Salinomycin, Septamycin

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Heterocyclic Carbon Compounds Containing A Hetero Ring Having Oxygen Or Sulfur (AREA)

Abstract

酵素法を用いた下記式Ａで表されるピリピロペン誘導体の製造方法が提供される。本発明の製造方法により、簡便な条件で、かつ短工程でピリピロペン誘導体を製造することができる。【化１】［式中、Ｒは、直鎖、分岐鎖または環状のＣ２−６アルキルカルボニル基(この基のアルキル部分が分岐鎖または環状であるときは、Ｃ３−６アルキルカルボニル基)を表す］。

Description

関連出願の参照
本特許出願は、２０１０年１月２６日に出願された日本出願特願２０１０−１４７２７号および２０１０年１月２６日に出願された日本出願特願２０１０−１４３３６号に基づく優先権の主張を伴うものであり、この日本出願の全開示内容は、引用することにより本願の開示の一部とされる。
発明の背景
技術分野
本発明は、害虫防除剤として有用なピリピロペン誘導体の製造法に関するものであり、より詳細には、1位および11位にアシルオキシ基を有し、7位に水酸基を有するピリピロペン誘導体の製造法に関するものである。
背景技術
1位および11位にアシルオキシ基を有し、7位が水酸基であるピリピロペン誘導体は、WO2006/129714号公報(特許文献１)、WO2008/066153号公報(特許文献２)に記載されるように、害虫に対して防除効果を示す化合物である。
1位および11位にアシルオキシ基を有し、7位が水酸基であるピリピロペン誘導体の製造法としては、WO2006/129714号公報および特開平8-259569号公報(特許文献３)に、1,7,11-トリアシルオキシ体を原料とした非選択的なアシルオキシ基の加水分解によって生じる複数の生成物から精製または単離する方法が開示されている。
また、特開平8-259569号公報には、ピリピロペン誘導体の合成に保護基を組み合わせて用いることが記載されており、Journal of Antibiotics 49巻11号1149頁1996年(非特許文献１)、Bioorganic Medicinal Chemistry Letter 5巻22号2683頁1995年(非特許文献２)、特開平8-269065号公報(特許文献４)には、保護基を利用して7位にアシル基を導入した合成例が開示されている。
WO2009/022702号公報（特許文献５）には、保護基を利用して1,7,11-トリデアセチルピリピロペンＡから1,11-ジアシル-1,7,11-トリデアセチルピリピロペンＡを製造する方法が開示されている。
しかしながら、これまでに知られている、1、11位にアシルオキシ基を有し、7位が水酸基であるピリピロペン誘導体の製造は、1,7,11位トリアシルオキシ体の非選択的な加水分解や、保護基を用いて多工程で製造する方法であることから、工業的製造においては製造コストの低減、収率の向上、精製・単離の簡便化、または工程数の短縮等の製造効率を向上させることが未だ希求されているといえる。
ＷＯ２００６／１２９７１４号公報 ＷＯ２００８／０６６１５３号公報 特開平８−２５９５６９号公報 特開平８−２６９０６５号公報 ＷＯ２００９／０２２７０２号公報
Journal of Antibiotics 49巻11号1149頁1996年 Bioorganic Medicinal Chemistry Letter 5巻22号2683頁1995年
本発明者らは、今般、天然物として得られるピリピロペン類縁体(Journal of Antibiotics(1996)49(3),292-298, Pure Appl. Chem., vol.71, No6, pp.1059-1064, 1999.、ＷＯ９４／０９１４７号公報、特開平８−２３９３８５号公報、特開平８−２５９５６９号公報（特許文献３）、Bioorganic Medicinal Chemistry Letter 5巻22号2683頁1995年（非特許文献２）、ＷＯ２００４／０６００６５号公報) を合成原料に用い、微生物による酵素法を用いることにより、または酵素法と化学的な変換とを組み合わせることにより、簡便な条件で、かつ短工程により目的とする1、11位ジアシルオキシ体を得る方法を見出した。
従って、本発明の目的は、微生物による酵素法を用いた1、11位ジアシルオキシ体の製造方法を提供することにある。
そして、本発明の一つの態様によれば、下記式Ａで表される化合物の製造方法であって、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、下記式Ｂで表される化合物とともに培養して式Ａで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される：
［式中、Ｒは、直鎖、分岐鎖または環状のＣ２−６アルキルカルボニル基(この基のアルキル部が分岐鎖または環状であるときは、Ｃ３−６アルキルカルボニル基）を表す］、
［式中、Ｒは、前記と同じ意味を表す］、
（Ｉ）下記の（ａ）〜（ｄ）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
（ａ）配列番号２６６のヌクレオチド配列、
（ｂ）配列番号２６６のヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつ配列番号２６６のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（ｃ）配列番号２６６のヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（ｄ）配列番号２６６のヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつ配列番号２６６のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（ＩＩ）配列番号２６９および２７０から選択される少なくとも一つのアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
（ＩＩＩ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
（１）下記（ａ）および（ｂ）に記載されたヌクレオチド配列：
（ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
（ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１６２２０番から１８０１８番までのヌクレオチド配列、
（２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
また、本発明の別の態様によれば、プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１、プラスミドｐＰＰ２、またはプラスミドｐＰＰ３、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択されるベクターを一種またはそれ以上含む微生物を上記式Ｂで表される化合物とともに培養して、上記式Ａで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される。
さらに、本発明の好ましい態様によれば、下記（ＩＶ）〜（Ｖ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、上記式Ｂで表される化合物とともに培養して上記式Ａで表される化合物を単離する工程を含む、上記式Ａで表される化合物の製造方法が提供される：
（ＩＶ）配列番号２７０のアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
（Ｖ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
（１）下記（ａ）に記載されたヌクレオチド配列：
（ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１６２２０番から１８０１８番までのヌクレオチド配列、
（２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
また、本発明の別の態様によれば、下記式Ｄ：
で表される化合物の１位および１１位の水酸基を、アシル化剤を用いてアシル化して、上記式Ｂで表される化合物を単離する工程をさらに含む製造方法が提供される。
さらに、本発明の別の態様によれば、下記式Ｃ：
［式中、Ｒ’は、アセチル基または水素原子を表す］
で表される化合物の１位のアセチル基および、Ｒ’が、アセチル基である場合は１１位のアセチル基を加水分解して、上記式Ｄで表される化合物を単離する工程をさらに含む製造方法が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、下記（ＶＩ）〜（ＶＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物をピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離する工程をさらに含む製造方法が提供される：
（ＶＩ）配列番号２６９および２７５のアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
（ＶＩＩ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
（１）下記（ａ）および（ｂ）に記載されたヌクレオチド配列：
（ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
（ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２５８２４番から２７１７８番までのヌクレオチド配列、
（２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
さらに、本発明の別の態様によれば、プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含む微生物をピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、下記（ＶＩＩＩ）〜（ＩＸ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、デアセチルピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離する工程をさらに含む製造方法が提供される：
（ＶＩＩＩ）配列番号２６９、２７４、および２７５から選択される少なくとも一つのアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
（ＩＸ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
（１）下記（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）に記載されたヌクレオチド配列：
（ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
（ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２３２０５番から２４７７３番までのヌクレオチド配列、
（ｃ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２５８２４番から２７１７８番までのヌクレオチド配列、
（２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
（４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
また、本発明の別の態様によれば、プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含み、かつプラスミドｐＰＰ７を含む微生物をデアセチルピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、式Ａで表される化合物の製造のためのプラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１（プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１で形質転換された大腸菌（Escherichia coli ＥＰＩ３００ＴＭ−Ｔ１Ｒ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３３）、プラスミドｐＰＰ２（プラスミドｐＰＰ２で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３７）、プラスミドｐＰＰ３（プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１）、プラスミドｐＰＰ７（プラスミドｐＰＰ７で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２１９）、またはプラスミドｐＰＰ９（プラスミドｐＰＰ９で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２２０）、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択される一種またはそれ以上のベクターの使用が提供される。
本発明の好ましい態様によれば、式Ａで表される化合物の製造のためのプラスミドｐＰＰ３（プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１）、あるいはこのプラスミドを含むベクターの使用が提供される。
本発明の別の態様によれば、式Ａで表される化合物の製造のためのプラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１（プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１で形質転換された大腸菌（Escherichia coli ＥＰＩ３００ＴＭ−Ｔ１Ｒ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３３）、プラスミドｐＰＰ２（プラスミドｐＰＰ２で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３７）、プラスミドｐＰＰ３（プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１）、プラスミドｐＰＰ７（プラスミドｐＰＰ７で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２１９）、またはプラスミドｐＰＰ９（プラスミドｐＰＰ９で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２２０）、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択されるベクターを含む形質転換体の使用が提供される。
本発明の好ましい態様によれば、式Ａで表される化合物の製造のためのプラスミドｐＰＰ２（プラスミドｐＰＰ２で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３７）、プラスミドｐＰＰ３（プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１）、プラスミドｐＰＰ７（プラスミドｐＰＰ７で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２１９）、またはプラスミドｐＰＰ９（プラスミドｐＰＰ９で形質転換されたAspergillus oryzae（アスペルギルス・オリザエ）の受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２２０）、あるいはこのプラスミドを含むベクターを含む形質転換体の使用が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、下記式Ｂ１で表される化合物が提供される：
また、本発明の別の態様によれば、上記式Ｄで表される化合物が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、微生物に代えて配列番号２７０に記載したアミノ酸配列を含むタンパク質を用いる工程を含む前記式Ｂで表される化合物から前記式Ａで表される化合物を製造する方法が提供される。
本発明によれば、害虫防除剤として有用な１および１１位にアシルオキシ基を有し、７位が水酸基であるピリピロペン誘導体を簡便な条件で、かつ短工程で製造することができる。
は、ＰＣＲ産物のアガロースゲルによる電気泳動パターンを示す。電気泳動は、以下のプライマーを用いて増幅させたＰＣＲ産物を用いた。Ｍ：分子量マーカー(100bp ラダー)、レーン１：配列番号１および２のプライマー、レーン２：配列番号２３９および２４０のプライマー、レーン３：配列番号２３７および２３８のプライマー、レーン４：配列番号２４１および２４２のプライマー、レーン５：配列番号２４７および２４８のプライマー、レーン６：配列番号２５１および２５２のプライマー、レーン７：配列番号２４５および２４６のプライマー、レーン８：配列番号２４３および２４４のプライマー、レーン９：配列番号２４９および２５０のプライマー、レーン１０：配列番号２３５および２３６のプライマー、レーン１１：配列番号２３３および２３４のプライマー、レーン１２：配列番号２２７および２２８のプライマー、レーン１３：配列番号２２９および２３０のプライマー、レーン１４：配列番号２３１および２３２のプライマー。 は、図１と同様、ＰＣＲ産物のアガロースゲルによる電気泳動パターンを示す。電気泳動は、以下のプライマーを用いて増幅させたＰＣＲ産物を用いた。Ｍ：分子量マーカー(100bp ラダー)、レーン１：配列番号２５３および２５４のプライマー、レーン２：配列番号２５７および２５８のプライマー、レーン３：配列番号２５９および２６０のプライマー、レーン４：配列番号２５５および２５６のプライマー、レーン５：配列番号２６１および２６２のプライマー。 は、図１と同様、ＰＣＲ産物のアガロースゲルによる電気泳動パターンを示す。電気泳動は、以下のプライマーを用いて増幅させたＰＣＲ産物を用いた。レーン１：分子量マーカー(100bp ラダー)、レーン２：配列番号２６４および２６５のプライマー(400bp増幅断片)。 は、pUSAのプラスミドマップを表す。 は、ｐＰＰ２のプラスミドマップを表す。 は、P450-2 cDNA増幅のスキームを表す。 は、ｐＰＰ３のプラスミドマップを表す。 は、ピリピロペンＥの重アセトニトリル中での１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを表す。 は、プラスミドｐＰＰ２で形質転換されたAspergillus oryzaeの培養生成物の重アセトニトリル中での１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを表す。 は、ピリピロペンＯの重アセトニトリル中での１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを表す。 は、プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzaeの培養生成物の重アセトニトリル中での１Ｈ−ＮＭＲスペクトルを表す。 は、プラスミドｐＰＰ７およびｐＰＰ９のプラスミドマップを表す。
発明の具体的説明
微生物の寄託
プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１で形質転換された大腸菌（Escherichia coli ＥＰＩ３００ＴＭ−Ｔ１Ｒ）は、２００８年１０月９日（原寄託日）付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託 センター（〒３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３３（国内寄託ＦＥＲＭ Ｐ−２１７０４より移管）（寄託者が付した識別のための表示：Escherichia coli ＥＰＩ３００ＴＭ−Ｔ１Ｒ／ｐＣＣ１−ＰＰ１）として寄託されている。
プラスミドｐＰＰ２で形質転換されたAspergillus oryzaeは、２００９年６月２３日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託 センター（〒３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３７（寄託者が付した識別のための表示：Aspergillus oryzae PP2-1）として寄託されている。
プラスミドｐＰＰ３で形質転換されたAspergillus oryzaeは、２００９年７月３日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託 センター（〒３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１（寄託者が付した識別のための表示：Aspergillus oryzae PP3-2）として寄託されている。
プラスミドｐＰＰ７で形質転換されたAspergillus oryzaeは、２００９年１２月２１日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託 センター（〒３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１２１９（寄託者が付した識別のための表示：Aspergillus oryzae PP7）として寄託されている。
プラスミドｐＰＰ９で形質転換されたAspergillus oryzaeは、２００９年１２月２１日付で独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託 センター（〒３０５−８５６６ 日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６）に、受託番号がＦＥＲＭ ＢＰ−１１２２０（寄託者が付した識別のための表示：Aspergillus oryzae PP9）として寄託されている。
本発明で用いられる微生物は、下記組換えベクターを用いてポリヌクレオチドを導入してもよいが、例えば、エレクトロポレーション法、ポリエチレングリコール法、アグロバクテリウム法、リチウム法、または塩化カルシウム法等によってポリヌクレオチドを微生物に導入してもよい。
本発明で用いられる微生物はポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入できれば特に限定されないが、アスペルギルス属に属する微生物が好ましく、より好ましい微生物としては、Aspergillus oryzae（アスペルギルス オリゼ）が挙げられる。
本発明において、微生物の培養は、例えば、好気的条件での固体培養法、振とう培養法、通気撹拌培養法、または深部好気培養法により行うことができるが、特に深部好気培養法が好ましい。微生物の培養に用いられる培地としては、慣用の成分、例えば炭素源としてはグルコース、シュクロース、水飴、デキストリン、澱粉、グリセロール、糖蜜、動・植物油等が使用できる。また、窒素源としては大豆粉、小麦胚芽、コーン・スティープ・リカー、綿実粕、肉エキス、ポリペプトン、マルトエキス、イーストエキス、硫酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、尿素等が使用できる。その他必要に応じ、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、コバルト、塩素、リン酸(リン酸水素2カリウム等)、硫酸(硫酸マグネシウム等)、およびその他のイオンを生成することのできる無機塩類を添加することも有効である。また、必要に応じてチアミン(チアミン塩酸塩等)等の各種ビタミン、グルタミン酸(グルタミン酸ナトリウム等)、アスパラギン(DL-アスパラギン等)等のアミノ酸、ヌクレオチド等の微量栄養素、抗生物質等の選抜薬剤を添加することもできる。さらに、菌の発育を助け、上記式Ａで表される化合物の生産を促進するような有機物および無機物を適当に添加することができる。
培地のpHは、例えばpH 5.5〜pH 8程度である。培養に適当な温度は、15℃〜40℃であるが、多くの場合22℃〜30℃付近で生育する。上記式Ａで表される化合物の生産は、培地および培養条件、または使用した宿主により異なるが、何れの培養法においても通常2日〜10日でその蓄積が最高に達する。培養中の上記式Ａで表される化合物の量が最高になった時に培養を停止し、培養物から目的物質を単離、精製する。
培養物から上記式Ａで表される化合物を単離するためには、その性状を利用した通常の分離手段、例えば溶剤抽出法、イオン交換樹脂法、吸着または分配カラムクロマトグラフィー法、ゲル濾過法、透析法、沈殿法等を単独で、または適宜組み合わせて抽出精製することができるが、溶媒抽出法が好ましい。
本発明において「実質的に同等なアミノ酸配列」とは、一つ若しくは複数個のアミノ酸の置換、欠失、付加、または挿入による改変を有するが、ポリペプチドの活性に影響を受けないアミノ酸配列を意味する。アミノ酸の置換、欠失、付加、または挿入によって改変されたアミノ酸配列は、改変等される前のアミノ酸配列に対して、７０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらに一層好ましくは９８％以上の配列同一性を有することが好ましい。また、改変されるアミノ酸残基の数は、好ましくは1〜40個、より好ましくは1〜20個、さらに好ましくは1〜10個、さらに一層好ましくは1〜8個、最も好ましくは1〜4個である。
そして、活性に影響を与えない改変の例としては、保存的置換が挙げられる。「保存的置換」とは、ポリペプチドの活性を実質的に変化しないように、好ましくは1〜40個、より好ましくは1〜20個、さらに好ましくは1〜10個、さらに一層好ましくは1〜8個、最も好ましくは1〜4個のアミノ酸残基を、別の化学的に類似したアミノ酸残基によって置き換えることを意味する。例えば、ある疎水性アミノ酸残基を別の疎水性アミノ酸残基によって置換する場合、ある極性アミノ酸残基を同じ電荷を有する別の極性アミノ酸残基によって置換する場合などが挙げられる。このような置換を行うことができる機能的に類似したアミノ酸は、アミノ酸毎に当該技術分野において公知である。具体例を挙げると、非極性(疎水性)アミノ酸としては、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニン等が挙げられる。極性(中性)アミノ酸としては、グリシン、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システイン等が挙げられる。陽電荷をもつ(塩基性)アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジン等が挙げられる。また、負電荷をもつ(酸性)アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸等が挙げられる。
本発明において「厳密な条件」とは、ハイブリダイゼーション後のメンブレンの洗浄操作を、高温度低塩濃度溶液中で行うことを意味し、当業者であればその条件は適宜決定できるものであるが、例えば、２×ＳＳＣ濃度（１×ＳＳＣ：１５ｍＭクエン酸３ナトリウム、１５０ｍＭ塩化ナトリウム）、０．５％ＳＤＳ溶液中で、６０℃、２０分間の洗浄条件、または０．２×ＳＳＣ濃度（１×ＳＳＣ：１５ｍＭクエン酸３ナトリウム、１５０ｍＭ塩化ナトリウム）、０．１％ＳＤＳ溶液中で６０℃、１５分間の洗浄条件を意味する。
ハイブリダイゼーションは、公知の方法に従って行うことができる。また、市販のライブラリーを使用する場合、添付の使用説明書に記載の方法に従って行うことができる。
本願明細書において、ヌクレオチド配列についての「同一性」(相同性という場合もある)とは、比較される配列間において、各々の配列を構成する塩基の一致の程度の意味で用いられる。このとき、ギヤップの存在およびアミノ酸の性質が考慮される。本明細書において示した「同一性」の数値はいずれも、当業者に公知の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であればよく、例えばＦＡＳＴＡ，ＢＬＡＳＴ等においてデフォルト（初期設定)のパラメータを用いることにより、容易に算出することができる。
本願明細書において、ヌクレオチド配列についての「同一性」は９０％以上であり、好ましくは９５％以上、より好ましくは９８％以上、さらに好ましくは９９％以上である。
本願明細書において、「ポリヌクレオチドにおいて、 1もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加された」とは、部位特異的突然変異誘発法等の周知の方法により、または天然に生じ得る程度の複数個のスクレオチドの置換等により改変がなされたことを意味する。ヌクレオチドの改変の個数は、1個または複数個(例えば、1個ないし数個あるいは１、２、３、または４個)である。
「そ(れぞれ)のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列」とは、「そ(れぞれ)のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質」と同等な活性を有するタンパク質をコードするヌクレオチド配列を意味する。
配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質は、Cytochrome P450 monooxygenase（１）(P450-1)活性を有することが好ましい。
配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１６２２０番から１８０１８番までのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質は、Cytochrome P450 monooxygenase（２）(P450-2)活性を有することが好ましい。
配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２３２０５番から２４７７３番までのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質は、Acetyltransferase(AT)活性を有することが好ましい。
配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２５８２４番から２７１７８番までのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質は、Acetyltransferase-2(AT-2)活性を有することが好ましい。
単離ポリヌタレオチドの取得
本発明による単離ポリヌクレオチドの取得方法は、特に限定されないが、以下の方法によりペニシリウム コピロビウムPF1169株（公開技報２００８−５００９９７号）または糸状菌から単離することができる。本発明による単離ポリヌクレオチドの取得方法は、具体的に、例えば下記の実施例９の方法等で得られる相同配列を元に、ピリピロペンの生合成に関与する、ポリケチド合成酵素遺伝子、プレニルトランスフェラーゼ遺伝子、水酸化酵素遺伝子、アセチル化酵素遺伝子、またはアデニル酸合成酵素遺伝子等のいずれか一つまたはそれ以上の遺伝子を特異的に増幅することのできるプライマーを合成し、別途作成したペニシリウム コピロビウムPF1169株のフォスミドゲノムライブラリーに対してPCRを行い、さらにコロニーハイブリダイゼーションを行って、本発明において用いられる単離ポリヌクレオチドを取得する。
組換えベクター
本発明による組換えベクターは、上記(I)〜(III) に記載のポリヌクレオチドのいずれかに種またはそれ以上を、例えば、[サンプルーク(Sambrook, J.)ら著，「モレキュラー・クローニング(Molecular cloning)：ア・ラボラトリー・マニュアル（a laboratory mmual)」，(米国)，第2版，コールド・スプリング・ハーパー・ラボラトリー(Cold Spring Harbor Laboratory)，1989年）]に記載の遺伝子組換え技術の常法に従って目的に応じて適当な形態に修飾し、ベクターに連結することによって作製することができる。
本発明において使用される組換えベクターは、ウイルス、プラスミド、フォスミド、またはコスミドベクター等から適宜選択することができる。例えば、宿主細胞が大腸菌の場合はλファージ系のバクテリオファージ、pBR、pUC系のプラスミド、枯草菌の場合はpUB系のプラスミド、酵母の場合はYEp、TRp、YCp、YIp系のプラスミドベクターが挙げられる。
使用されるプラスミドの内の少なくとも一つは、形質転換体を選抜するための選択マーカーを含むのが好ましく、選択マーカーとしては薬剤耐性遺伝子、栄養要求性を相補する遺伝子を使用することができる。その好ましい具体例としては、使用する宿主が細菌の場合は、アンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子などであり、酵母の場合はトリプトファン生合成遺伝子(TRPl)、ウラシル生合成遺伝子(URA3)、ロイシン生合成遺伝子(LEU2)などであり、カピの場合はハイグロマイシン耐性遺伝子、ビアラホス耐性遺伝子、ブレオマイシン耐性遺伝子、オーレオバシジン耐性遺伝子などであり、植物の場合にはカナマイシ耐性遺伝子、ビアラホス耐性遺伝子などが挙げられる。
また、本発明において利用される発現ベクターとしてのDNA分子は、各遺伝子の発現に必要なDNA配列、例えばプロモーター、転写開始信号、リポソーム結合部位、翻訳停止シグナル、転写終結信号などの転写調節信号、翻訳調節信号を有しているのが好ましい。プロモーターとしては、大腸菌においてはラクトースオペロン、トリプトフアンオペロンなどのプロモーター、酵母ではアルコールデヒドログナーゼ遺伝子、酸性フォスファターゼ遺伝子、ガラクトース資化性遺伝子、グリセロアルデヒド3リン酸デヒドログナーゼ遺伝子などのプロモーター、カビではα―アミラーゼ遺伝子、グルコアミラーゼ遺伝子、セロビオハイドロラーゼ遺伝子、グリセロアルデヒド3リン酸デヒドロゲナーゼ適伝子、abpI遺伝子などのプロモーター、植物でCaMV 35S RNAプロモーター、 CaMV 19S RNAプロモーター、ノパリン合成酵索遺伝子プロモーターが好ましく用いることができるものとして挙げられる。
形質転換体
本発明による単離されたポリヌクレオチドを導入する宿主は、用いるベクターの種類に応じて、放線菌、大腸菌、枯草菌、酵母、糸状菌、植物細胞等の中から適宜選択されて良い。
組換えベクターの宿主への導入方法としては、接合伝達、ファージによる形質導入、さらにカルシウムイオン法、リチウムイオン法、エレクトロポレーション法、PEG法、アグロバクテリウム法、パーティクルガン法といった形質転換の方法の中から、供試する宿主細胞に応じて用いればよい。
本発明において複数の遺伝子を宿主細胞に導入する場合には、各遺伝子は同一または別々のＤＮＡ分子に含まれていても良い。さらに、宿主細胞が細菌である場合には、各遺伝子をポリシストロン性mRNAとして発現させるように設計し、一つのＤＮＡ分子とすることも可能である。
製造方法
本明細書において、置換基または置換基の一部としての「アルキル」という用語はそれぞれ、特に定義されていない限り、直鎖状、分岐鎖状、環状またはそれらの組み合わせのアルキルを意味する。
本明細書において、置換基に付される「Ｃａ−ｂ」との記号は、その置換基に含まれる炭素原子の数がａ個からｂ個までであることを意味する。また、「Ｃａ−ｂアルキルカルボニル」という場合の「Ｃａ−ｂ」とは、カルボニル部分の炭素原子を除いた、アルキル部分の炭素原子の数がａ個からｂ個までであることを意味する。
Ｒが表す、直鎖、分岐鎖、または環状のＣ２−６アルキルカルボニル基（この基のアルキル部分が分岐鎖または環状であるときは、Ｃ３−６アルキルカルボニル基)の具体例としては、シクロプロパンカルボニル基、プロピオニル基等が挙げられる。
ピリピロペンＥは、例えば、特開平８−２３９３８５号公報、ＷＯ９４／０９１４７号公報、または米国特許５５９７８３５号公報に記載される方法に準じた微生物培養法によるか、Tetrahedron Letters, vol. 37, No.36, 6461-6464, 1996に記載される全合成の方法によって製造することができる。
１．式Ｃで表される化合物の製造方法
上記式Ｃで表される化合物のうち、Ｒ’がアセチル基であるピリピロペンＯは、例えばJournal of Antibiotics(1996)49(3),292-298またはＷＯ９４／０９１４７号公報に記載される方法に準じた微生物培養法で得ることができる。
式Ｃで表される化合物のうち、Ｒ’が水素原子である11-デアセチルピリピロペンＯは、例えば下記参考例１に記載の方法により合成することができる。
本発明の好ましい態様によれば、上記式Ｃで表される化合物は、微生物を利用して製造することが好ましい。微生物を利用して実施する場合は、培養液自体を用いるか、あるいは培養液から菌体を分離、洗浄した生菌体を一定の濃度で水または生理食塩水または適当な緩衝液中に懸濁した菌体懸濁液を用いることもできる。使用微生物の培養液またはその菌体懸濁液に、デアセチルピリピロペンＥまたはピリピロペンＥを添加し、酵素の有する至適温度、pHにおいて、適当な時間反応させることにより得ることができる。微生物の培養方法は、前記に従って行うことができる。好ましい添加するデアセチルピリピロペンＥまたはピリピロペンＥの濃度としては1 μg/mLから50,000 μg/mLである。
ピリピロペンＥを添加して実施する場合には、微生物に代えて、水酸化機能を有するタンパク質（以下、水酸化酵素と表記する）を用いて実施することもできる。水酸化酵素を用いて実施する場合には、水酸化酵素を水または適当な緩衝液に溶かした酵素溶液に、ピリピロペンＥを溶解させ、酵素の有する至適温度、pHにおいて、適当な時間反応させることにより得ることができる。
デアセチルピリピロペンＥを添加して実施する場合には、微生物に代えて、アセチル化機能を有するタンパク質（以下、アセチル化酵素と表記する）および水酸化酵素を用いて実施することができる。アセチル化酵素および水酸化酵素を用いて実施する場合には、アセチル化酵素および水酸化酵素を水または適当な緩衝液に溶かした酵素溶液に、デアセチルピリピロペンＥを溶解させ、酵素の有する至適温度、pHにおいて、適当な時間反応させることにより得ることができる。
ピリピロペンＥを添加する場合も、デアセチルピリピロペンＥを添加する場合のいずれにおいても、好ましい反応条件としては、温度は10℃から40℃、pHはpH5からpH9、反応時間は30分から24時間である。より好ましい条件としては、温度は20℃から35℃、pHはpH6からpH8、反応時間は1時間から12時間である。
アセチル化酵素としては、精製したアセチル化酵素を用いてもよく、あるいはアセチル化酵素を含む細菌、放線菌、酵母またはカビを破砕して得られる粗酵素液を使用することができる。さらに、菌体の破砕液の形の粗酵素液を使用することもできる。アセチル化酵素としては、好ましくは、ピリピロペン生産能を有する微生物、例えば、アスペルギルス フミガタスFO-1289株（特開平４−３６０８９５号公報）、ユーペニシリウム レティキュロスポラムNRRL-3446株（Applied and Environmental Microbiology（1995），61（12），4429−35．）、ペニシリウム グリセオフルバムF1959株（ＷＯ２００４／０６００６５号公報）、およびペニシリウム コピロビウムPF1169株（公開技報２００８−５００９９７号）由来のアセチル化酵素を用いることができる。
水酸化酵素としては、精製した水酸化酵素を用いてもよく、あるいは水酸化酵素を含む細菌、放線菌、酵母またはカビを破砕して得られる粗酵素液を使用することができる。さらに、菌体の破砕液の形の粗酵素液を使用することもできる。水酸化酵素としては、好ましくは、ピリピロペン生産能を有する微生物、例えば、アスペルギルス フミガタスFO-1289株（特開平４−３６０８９５号公報）、ユーペニシリウム レティキュロスポラムNRRL-3446株（Applied and Environmental Microbiology（1995），61（12），4429−35．）、ペニシリウム グリセオフルバムF1959株（ＷＯ２００４／０６００６５号公報）、およびペニシリウム コピロビウムPF1169株（公開技報２００８−５００９９７号）由来の水酸化酵素を用いることができる。
変換によって生成した上記式Ｃで表される化合物は、前記に従って単離することができる。
本発明の好ましい態様によれば、上記（ＶＩ）〜（ＶＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物をピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離することができる。
本発明の別の好ましい態様によれば、プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含む微生物をピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離することができる。
プラスミドｐＰＰ２を含む微生物をピリピロペンＥとともに培養して、単離される上記式Ｃで表される化合物は、特に限定されないが、上記式Ｃ中、Ｒ’が水素原子である、１１位デアセチルピリピロペンＯであることが好ましい。また、プラスミドｐＰＰ９を含む微生物をピリピロペンＥとともに培養して、単離される上記式Ｃで表される化合物は、特に限定されないが、上記式Ｃ中、Ｒ’がアセチル基である化合物であることが好ましい。
本発明の別の好ましい態様によれば、上記（ＶＩＩＩ）〜（ＩＸ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、デアセチルピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離することができる。
本発明の別の好ましい態様によれば、プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含み、かつプラスミドｐＰＰ７を含む微生物をデアセチルピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離することができる。
プラスミドｐＰＰ２を含む微生物をデアセチルピリピロペンＥとともに培養して、単離される上記式Ｃで表される化合物は、特に限定されないが、上記式Ｃ中、Ｒ’が水素原子である、１１位デアセチルピリピロペンＯであることが好ましい。また、プラスミドｐＰＰ９を含む微生物をデアセチルピリピロペンＥとともに培養して、単離される上記式Ｃで表される化合物は、特に限定されないが、上記式Ｃ中、Ｒ’がアセチル基である化合物であることが好ましい。
本発明の別の好ましい態様によれば、上記（ＶＩＩＩ）〜（ＩＸ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、デアセチルピリピロペンＥとともに培養して、上記式Ｃで表される化合物を単離することができる。
２．式Ｃで表される化合物（以下、Ｒ’がアセチル基であるピリピロペンＯ、およびＲ’が水素原子である11-デアセチルピリピロペンＯを合わせて、以下、化合物Ｃと記載する場合もある）からの式Ｂで表される化合物（以下、化合物Ｂと記載する場合もある）の製造方法
化合物Ｂは、化合物Ｃを加水分解したのち、得られる上記式Ｄで表される化合物（以下、化合物Ｄと記載する場合もある）をアシル化することによって得られる。
化合物Ｃの加水分解は、酸または塩基を用いた条件で実施することができ、使用できる酸の具体的な例としては、塩酸、硫酸、ｐ−トルエンスルホン酸、ｐ−トルエンスルホン酸１水和物、ｐ−トルエンスルホン酸ピリジニウム塩、１０−カンファースルホン酸などが挙げられ、使用できる塩基の具体的な例としては、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水素化ナトリウム、水素化カリウム、シアン化ナトリウム、シアン化カリウム、水酸化マグネシウム、水酸化カルシウム、水酸化リチウム、水酸化バリウムなどの無機塩基、ナトリウムメトキシド、ナトリウムエトキシド、tert-ブトキシカリウムなどのアルカリ金属、アルカリ土類金属のアルコキシド、トリエチルアミン、ジイソプロピルエチルアミン、ピリジン、ヒドラジン、グアニジンなどの有機塩基が挙げられる。加水分解は、適当な溶媒中で実施することができ、具体的に使用できる溶媒としては、メタノールなどの炭素数１〜４のアルコール溶媒、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、テトラヒドロフラン、ジオキサンなどのエーテル系溶媒、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド、アセトニトリルなどの非プロトン性極性有機溶媒、ジクロロメタン、クロロホルムなどのハロゲン系溶媒、または、水、およびこれらの混合溶媒が挙げられる。
化合物Ｄ（1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ）をアシル化して化合物Ｂを得る方法において使用可能な溶媒としては、ジエチルエーテル、ジイソプロピルエーテル、テトラヒドロフラン、ジオキサンなどのエーテル系溶媒、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド、アセトニトリルなどの非プロトン性極性有機溶媒、ジクロロメタン、クロロホルムなどのハロゲン系溶媒、トルエンなどの芳香族炭化水素系溶媒、およびこれらの混合溶媒が挙げられる。
塩基を用いることなしに反応を実施することはできるが、塩基を用いる場合の使用可能な塩基としては、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、水素化ナトリウム、水素化カリウム、シアン化ナトリウム、シアン化カリウム、水酸化マグネシウム、水酸化カルシウム、水酸化リチウム、水酸化バリウムなどの無機塩基トリエチルアミン、ジイソプロピルエチルアミン、ピリジン、グアニジンなどの有機塩基が挙げられる。
目的とするＲに対応するアシル化剤としてはＲＯＨ、ＲＣｌ、（Ｒ）２Ｏ、または混合酸無水物、好ましくは、ＲＣｌ、（Ｒ）２Ｏを使用することができ、塩基の存在下または非存在下、またはジシクロヘキシルカルボジイミド、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩、カルボニルジイミダゾール、ジピリジルジスルフィド、ジイミダゾイルジスルフィド、１，３，５−トリクロロベンゾイルクロリド、１，３，５−トリクロロベンゾイル無水物、ＰｙＢｏｐ、ＰｙＢｒｏｐなどの縮合剤を用いることによって行うことができ、塩基存在下または非存在下にＲＣｌまたは、（Ｒ）２Ｏを使用して実施するのが好ましい。好ましいアシル化剤としては、シクロプロパンカルボニルクロライドが挙げられる。
塩基を使用する場合の使用量は、好ましくは化合物Ｄに対して２〜１０等量であり、より好ましくは３〜６等量である。
アシル化剤の使用量は、好ましくは化合物Ｄに対して２〜１０等量であり、より好ましくは２〜５等量である。反応温度は、-２０℃〜５０℃の範囲とすることが好ましい。また、反応時間は、０．１時間〜７日間の範囲とすることが好ましい。
３．化合物Ｂからの式Ａで表される化合物（以下、化合物Ａと記載する場合もある）の製造方法
微生物を利用して実施する場合は、培養液自体を用いるか、あるいは培養液から菌体を分離、洗浄した生菌体を一定の濃度で水または生理食塩水または適当な緩衝液中に懸濁した菌体懸濁液を用いることもできる。使用微生物の培養液またはその菌体懸濁液に、化合物Ｂを添加し、酵素の有する至適温度、pHにおいて、適当な時間反応させることにより得ることができる。微生物の培養方法は、前記に従って行うことができる。好ましい添加する化合物Ｂの濃度としては1 μg/mLから50,000 μg/mLである。
微生物に代えて水酸化機能を有するタンパク質（以下、水酸化酵素と表記する）により実施する場合は、水酸化酵素を水または適当な緩衝液に溶かした酵素溶液に、化合物Ｂを溶解させ、酵素の有する至適温度、pHにおいて、適当な時間反応させることにより得ることができる。
好ましい反応条件としては、温度は10℃から40℃、pHはpH5からpH9、反応時間は30分から24時間である。より好ましい条件としては、温度は20℃から35℃、pHはpH6からpH8、反応時間は1時間から12時間である。水酸化酵素としては、精製した水酸化酵素を用いてもよく、あるいは水酸化酵素を含む細菌、放線菌、酵母またはカビを破砕して得られる粗酵素液を使用することができる。さらに、菌体の破砕液の形の粗酵素液を使用することもできる。水酸化酵素としては、好ましくは、ピリピロペン生産能を有する微生物、アスペルギルス フミガタスFO-1289株（特開平4−360895号公報）には、ユーペニシリウム レティキュロスポラムNRRL-3446株（Applied and Environmental Microbiology（1995），61（12），4429−35．）、ペニシリウム グリセオフルバムF1959株（WO2004／060065号公報）には、およびペニシリウム コピロビウムPF1169株（公開技報2008-500997号）由来の水酸化酵素を用いることができる。変換によって生成した化合物Ａは、前記に従って単離することができる。
本発明によれば、上記式Ａで表される化合物の製造方法であって、上記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、上記式Ｂで表される化合物とともに培養して式Ａで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される。
本発明の好ましい態様によれば、上記式Ｂで表される化合物が、上記式Ｂ１で表される化合物である製造方法が提供される。
プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１、プラスミドｐＰＰ２、またはプラスミドｐＰＰ３、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択されるベクターを一種またはそれ以上含む微生物を上記式Ｂで表される化合物とともに培養して、上記式Ａで表される化合物を単離する工程を含む製造方法が提供される。
本発明のより好ましい態様によれば、上記（ＩＶ）〜（Ｖ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、上記式Ｂで表される化合物とともに培養して上記式Ａで表される化合物を単離する工程を含む、上記式Ａで表される化合物の製造方法が提供される。
本発明の好ましい態様によれば、上記式Ｄで表される化合物の１位および１１位の水酸基を、アシル化剤を用いてアシル化し、上記式Ｂ１で表される化合物を製造し、プラスミドｐＰＰ３を含む微生物を上記式Ｂ１で表される化合物（1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ）とともに培養して、1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,7,11-トリ-デアセチルピリピロペンＡを製造する方法が提供される。
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例１：ペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノムＤＮＡの調製
三角フラスコ（１L）に滅菌したNB培地 500mlを入れ、1/2CMMY寒天培地において、28℃で、4日間前培養していたペニシリウム コピロビウムPF1169株（公開技報2008-500997号）を上記の培地に加え、28℃で、4日間液体培養した。ミラクロスで濾過により、菌体５ｇを得た。この菌体よりゲノムＤＮＡ精製キット Genomic-tip 100/G（キアゲン株式会社製）を、添付のマニュアルに従い、30μgのゲノムＤＮＡを取得した。
実施例２：ポリケチド合成酵素(PKS)増幅用縮重プライマーとその増幅断片
種々の糸状菌ポリケチド合成酵素に保存されているアミノ酸配列より増幅用縮重プライマーとして 下記プライマーをデザインし、合成した：
ＬＣ１ ： ＧＡＹＣＣＩＭＧＩＴＴＹＴＴＹＡＡＹＡＴＧ（配列番号１）
ＬＣ２ｃ： ＧＴＩＣＣＩＧＴＩＣＣＲＴＧＣＡＴＹＴＣ（配列番号２）
（ただし、R=A/G、Y=C/T、M=A/C、I=イノシン）。
この縮重プライマーを使用して、実施例１において調製したゲノムＤＮＡと、ExTaqポリメラーゼ（タカラバイオ株式会社製）とを、添付のマニュアルに従い反応させ、約700bpの増幅断片を検出した（図１参照）。そして、前記増幅断片を解析し、その内部500bpの配列を特定した（配列番号３）。
実施例３：ゲノムＤＮＡの大量シークエンスとアミノ酸配列相同性検索
実施例１において得られたペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノムＤＮＡを大量シークエンスと、アミノ酸配列の相同性検索とに供した。具体的にはゲノムＤＮＡ 50μgの一部を前処理の後、Roche社４５４FLX ＤＮＡシークエンサーに供し、約250bp、10.3万本のフラグメント配列（総計49Mbの配列）を取得した。
この配列に対し、ポリケチド合成酵素およびプレニルトランスフェラーゼで既知である配列として、下記の五種の配列（ポリケチド合成酵素：Aspergillus(A.) fumigatus PKS 2146a.a.およびPenicillium(P.) griseofluvum 6-methylsalycilic acid synthase 1744a.a.、プレニルトランスフェラーゼ：Aspergillus (A.) fumigatus Prenyltransferase、Aspergillus(A.) fumigatus Prenyltransferase（4-hydroxybezoate octaprenyltransferase）、およびPenicillium(P.) marneffei Prenyltransferase由来の配列）を選定し、相同配列検索ソフトblastxによる検索を実施した。それぞれ８９本、８６本、２本、１本、および３本の相同配列を取得した（表１参照）。さらに、A. fumigatus PKS 2146a.a.およびP. griseofluvum 6-methylsalycilic acid synthase 1744a.a.の相同配列から、それぞれ１９本、２３本のコンティグ配列を取得した（A. fumigatus PKS 2146a.a.のコンティグ配列：配列番号１７９〜１９７、P. griseofluvum 6-methylsalycilic acid synthase 1744a.a.のコンティグ配列：配列番号１９８〜２２０）（表１参照）。
実施例４：ゲノムＤＮＡからのPCR増幅
実施例３において取得したblastxの検索結果より、ポリケチド合成酵素に対して、配列番号２２７〜２５２に示す１３種のプライマー対を合成した。同様に、プレニルトランスフェラーゼに対して、配列番号２５３〜２６２に示す５種のプライマー対を合成した。これらのプライマーを用いて、ゲノムＤＮＡに対するPCRを行ったところ、全プライマー対について期待される大きさの増幅断片を認めた（図１および図２参照）。
実施例５：ファージゲノムライブラリーの作製
ペニシリウム コピロビウムPF1169株のλファージゲノムライブラリーを、λBlueSTAR Xho I Half-site Arms Kit ( タカラバイオ株式会社製 Cat. No. 69242-3)を用いて、添付のマニュアルに従い、構築した。すなわち、ゲノムＤＮＡを、制限酵素Sau3A1を用いて部分分解し、約20kbのＤＮＡ断片0.5μgをキットに添付されたλBlueSTAR ＤＮＡ0.5μgに連結した。このライゲーション溶液をLambda INN Packaging kit(株式会社ニッポンジーン製)を用い、キットに添付のマニュアルに基づいてin vitroパッケージングを行い、1mlの溶液を取得した。このパッケージングされたファージ溶液１０μlを大腸菌ER1647株100μlに感染させ、プラーク形成培地において、37℃で、一晩培養後、約500クローンのプラークを得た。このように感染により10〜20kbのペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノム ＤＮＡ が導入されたファージ約50000クローンからなるゲノムライブラリーを作製した。
実施例６：ファージライブラリーからのスクリーニング
実施例５において調製したファージライブラリー10000クローンに対して、上記で調製したLC1−LC2cプライマー対により増幅させたPCR産物をプローブとして、プラークハイブリダイゼーションによる１次スクリーニングを行った。プローブの標識と検出にはAlkPhos Direct Labelling and Detection System with CDP-Star（GEヘルスケア株式会社製 Cat. No. RPN3690）を用いた。前記ハイブリダイゼーションは、添付のマニュアルに従い、実施した。
１次スクリーニングにより、６クローンが候補として残った。さらに、プラークハイブリダイゼーションによる２次スクリーニングの結果、４クローンを取得した。これらの陽性クローンは大腸菌BM25.8株に感染させ、添付のマニュアルに従いファージをプラスミドに変換させ、目的領域を含む４種のプラスミドを取得した。
実施例７：フォスミドゲノムライブラリーの作製
ペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノムライブラリーは、CopyControl Fosmid Library Production Kit（EPICENTRE社製、Cat. No.CCFOS110）を、添付のマニュアルに従い、構築した。すなわち、約40 kbのゲノムＤＮＡ0.25μgのＤＮＡ断片を末端の平滑化を行った後、フォスミドベクターpCCFOS（Epicentre社製）に組み込んだ。このライゲーション溶液を同キット添付のMaxPlaxLambda Packaging Extractを用い、キットに添付のマニュアルに基づいて、in vitroパッケージングを行った。このパッケージングされたウィルス溶液10μlを大腸菌EPI300TM-T1R株100μlに感染させ、クロラムフェニコール含有培地において、37℃で、一晩培養し選抜したところ、300クローンのコロニーを得た。このように感染により40kbのペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノムＤＮＡ が導入されたフォスミド約30000クローンを取得した。1wellあたり約50クローンとなるように96wellプレートに分注し、つまり、９６のプール、約4800クローンからなるゲノムライブラリーを作製した。
実施例８：フォスミドライブラリースクリーニング
フォスミド添付のマニュアルに従い、実施例７において作成したライブラリーの９６プールより各プラスミドＤＮＡを調製した。実施例２で合成したポリケチド合成酵素増幅用縮重プライマーを用いて、この９６プールのプラスミドＤＮＡサンプルに対して、PCRを行った。その結果、約700bpのＤＮＡ断片が、９プールより増幅した。さらにこのポジティブプールから、約３００クローン以上のコロニーを含むシャーレを作製し、コロニーハイブリダイゼーションにより再スクリーニングした。その結果、LC1-LC2cプライマー対を用いて、約4800クローンより９種のフォスミドを取得した。
実施例９：ゲノムＤＮＡの大量シークエンスとアミノ酸配列相同性検索
実施例１において得られたペニシリウム コピロビウムPF1169株のゲノムＤＮＡを大量シークエンスと、アミノ酸配列の相同性検索とに供した。具体的にはゲノムＤＮＡ 50μgの一部を前処理の後、Roche社４５４FLX ＤＮＡシークエンサーに供し、平均コンティグ長19.621kb、1405本のフラグメント配列（総塩基長27.568160Mbの配列）を取得した。
この配列に対し、ポリケチド合成酵素およびプレニルトランスフェラーゼで既知である配列として、下記の五種の配列（ポリケチド合成酵素： Penicillium(P.) griseofluvum 6-methylsalycilic acid synthase 1744a.a.(P22367) およびAspergillus(A.) fumigatus PKS 2146a.a.(Q4WZA8)、プレニルトランスフェラーゼ：Penicillium(P.) marneffei Prenyltransferase(Q0MRO8)、Aspergillus (A.) fumigatus Prenyltransferase(Q4WBI5)、およびAspergillus(A.) fumigatus Prenyltransferase（4-hydroxybezoate octaprenyltransferase）(Q4WLD0)由来の配列)を選定し、相同配列検索ソフトblastxによる検索を実施した。それぞれ２２本(P22367)、２１本(Q4WZA8)、２本(Q0MRO8)、３本(Q4WBI5)、および３本(Q4WLD0)の相同配列を取得した。
実施例１０：フォスミドライブラリースクリーニング及びクラスター遺伝子の配列解析
フォスミドキット（EPICENTRE社製 CopyControl Fosmid Library Production Kit）に添付されているマニュアルに従い、実施例７において作成したライブラリーの９６プールより各プラスミドDNAを調製した。Roche社４５４FLX ＤＮＡシークエンサーにより決定された塩基配列に基づいてアミノ酸配列の相同性検索を行い、ポリケチド合成酵素とプレニルトランスフェラーゼが近接する領域を検索した。得られた領域のプレニルトランスフェラーゼ塩基配列より400bpのDNA断片を増幅しうるプライマー対（No.27）を合成した。このプライマーを用いて、この４８プールのプラスミドDNAサンプルに対して、PCRを行った。その結果期待される約400bpのDNA断片（配列番号２６３）が、１１プールより増幅した（図３参照）。さらに、このポジティブプールのうち６プールから、約３００クローン以上のコロニーを含むシャーレを作製し、コロニーハイブリダイゼーションにより再スクリーニングした。その結果、27F + 27Rのプライマー対（27Fプライマー：配列番号２６４、27Rプライマー：配列番号２６５）を用いて、約4800クローンより４種のフォスミドを取得した。この内の一つをpCC1-PP1と命名し、挿入断片の全配列を決定した（配列番号２６６）。
得られたpCC1-PP1により大腸菌Escherichia coli EPI300TM-T1R株（フォスミドキットに付属）を形質転換することにより大腸菌Escherichia coli EPI300TM-T1R株／pCC1-PP1を得た。
なお、前記配列番２６６の配列とCoA ligase、LovB-like polyketide synthase(PKS)、水酸化酵素であるCytochrome P450 monooxygenase、Cyclase(IMP：Integral membrane protein)、FAD-dependent monooxygenase(FMO)、UbiA-like prenyltransferase(UbiAPT)、アセチル化酵素であるAcetyltransferase(AT)、Acetyltransferase-2(AT-2)、およびCation transporting ATPase（上記酵素は、いずれもAspergillus fumigatus Af293株由来）との、相同性検索をそれぞれ行ったところ、いずれも７０％以上の高い相同性を示した。
配列番号２６６のヌクレオチド３３４２−５１５８は、CoA ligaseをコードし、その対応するポリペプチドは、配列番号２６７に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド５３８２−１２７７７は、LovB-like polyketide synthase(PKS)をコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２６８に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド１３２６６−１５１４４（以下、このポリヌクレオチド配列（P450-1）によりコードされるタンパク質をCytochrome P450 monooxygenase（１）（P450-１）とする）および１６２２０−１８０１８（以下、このポリヌクレオチド配列（P450-2）によりコードされるタンパク質をCytochrome P450 monooxygenase（２）(P450-2)とする）は、Cytochrome P450 monooxygenaseをコードし、対応するポリペプチドは、それぞれ、配列番号２６９、２７０に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド１８５０６−１９２９６は、Cyclaseをコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７１に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド１９７７９−２１３８９は、FAD-dependent monooxygenase(FMO)をコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７２に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド２１７９３−２２８７７は、UbiA-like prenyltransferase(UbiAPT)をコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７３に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド２３２０５-２４７７３は、Acetyltransferase(AT)をコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７４に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド２５８２４−２７１７８は、Acetyltransferase-2(AT-2)をコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７５に記載したアミノ酸配列で示され、配列番号２６６のヌクレオチド２７７９８−３１８５５は、Cation transporting ATPaseをコードし、対応するポリペプチドは、配列番号２７６に記載したアミノ酸配列で示された。
実施例１１：Aspergillus Oryzaeの形質転換によるピリピロペンEまたはピリピロペンOの水酸化
以下で用いるピリピロペンＥは、特開平8−239385号公報、WO94／09147号公報、または米国特許5597835号公報に記載される方法に準じた微生物培養法によるか、Tetrahedron Letters, vol. 37, No.36, 6461-6464, 1996に記載される全合成の方法によって製造することができた。また、以下で用いるピリピロペンＯは、J. Antibiotics 49, 292-298, 1996またはWO94／09147号公報に記載される方法に準じた微生物培養法によって製造することができた。
（１）糸状菌導入用発現ベクターの作製
pUSA（図４）とpHSG399（タカラバイオ社）をそれぞれKpnＩ切断し、連結することにより、pUSA-HSGを取得した。このプラスミドをSmaＩ、KpnＩの順で切断し、ゲル精製することで、KpnＩの粘着末端とSmaＩの平滑末端を有す線状ベクターDNAを取得した。
（２）ｐＰＰ２のプラスミドの作製
Fosmid pCC1-PP1を鋳型として、プライマー対P450-1 with Kpn F（配列番号２７７）/P450-1 with Swa R（配列番号２７８）を用いて前記P450-1のポリヌクレオチドを増幅し、精製したDNA断片をpCR-Blunt（Invitorogen社 Cat.No.K2700-20）にクローン化した。得られたプラスミドをKpnＩとSwaＩで切断し、前記P450-1断片を上述したベクターpUSA-HSGにライゲーションし、図５に示すｐＰＰ２のプラスミドを取得した。
（３）ｐＰＰ３のプラスミドの作製
Fosmid pCC1-PP1を鋳型としてとして、図６に示す流れに従い、まず、プライマー対F1（配列番号２７９）/R1（配列番号２８０）、F2（配列番号２８１）/R2（配列番号２８２）、F3（配列番号２８３）/R3（配列番号２８４）、F4（配列番号２８５）/R4（配列番号２８６）、F5（配列番号２８７）/R5（配列番号２８８）、およびF6（配列番号２８９）/R6（配列番号２９０）を用い、エキソンのみを増幅し、六つの断片を取得した。次にこれらの断片を鋳型としてF1/R2、F3/R4、およびF5/R6のプライマー対により増幅し、より長い断片を取得した。さらに、F1/R4およびF1/R6のプライマー対により増幅を繰り返すことによって前記P450-2のポリヌクレオチドのイントロンを含まないcDNAを作製した。このｃDNA断片をpCR-Blunt（Invitorogen社 Cat.No.K2700-20）に導入し、得られたプラスミドを鋳型として、プライマー対infusion F of P450-2-cDNA（配列番号２９１）/infusion R of P450-2-cDNA（配列番号２９２）により増幅した。キットのマニュアルに基づいて、In-Fusion Advantage PCR Cloning Kit（Clontech社）を用い、図７に示すｐＰＰ３のプラスミドを取得した。
（４）ｐＰＰ７のプラスミドの作製（AT）
上記実施例１１（１）で取得した糸状菌形質転換用ベクターpUSA-HSGを使って、ｐＰＰ７プラスミドを取得した。
Fosmid pCC1-PP1を鋳型として、プライマー対AT F with Swa （配列番号２９３）とAT R with Kpn（配列番号２９４）を用いてATのポリヌクレオチドを各々増幅し、精製した断片をPCR断片用ベクターpCR-Blunt（Invitorogen社Cat.No.K2700-20）にクローン化した。得られたプラスミドをKpnＩとSwaＩで切断し、各断片を前記糸状菌ベクターpUSA-HSGのKpnIとSmaIにライゲーションし、図１２に示すｐＰＰ７のプラスミドを取得した。
（５）ｐＰＰ９のプラスミドの作製(AT-2)
Fosmid pCC1-PP1を鋳型として、プライマー対infusion F of Toxin（配列番号２９５）とinfusion R of Toxin（配列番号２９６）を用いてToxin断片を増幅、In-Fusion Advantage PCR Cloning Kit（Clontech社製 Cat.No.639619）をキットのマニュアルに基づいて前記糸状菌ベクターpUSA-HSGのKpnIと、SmaIとの間に挿入し、図１２に示すｐＰＰ９のプラスミドを取得した。
（６）Aspergillus Oryzae（A. oryzae）の形質転換
CD-Met（L-Methionine 40μg/ml含有）寒天培地でA. oryzae（HL-1105株）を30℃で1週間培養した。このシャーレから分生子（＞108）を回収し、500ml のフラスコに100mlのYPD液体培地に接種した。20時間培養（30℃、180rpm）後、毬藻状の菌体を取得した。菌体を３G-1 グラスフィルターで集め、0.8M NaClで洗浄し、よく脱水し、TF溶液Ｉ(プロトプラスト化溶液)で懸濁後、30℃、60rpmで2時間振盪した。なお、30分間ごとに顕微鏡で観察し、プロトプラストの存在を確認した。その後、培養液を濾過し、遠心（2000rpm、5分間）によりプロトプラストを回収後、TF溶液IIで洗浄した。洗浄後、0.8容量のTF溶液IIおよび0.2容量のTF溶液IIIを加え混和して、プロトプラスト懸濁液を取得した。
この懸濁液200μlにプラスミドDNA（ｐＰＰ２あるいはｐＰＰ３）10μgを加え、氷上で30分間静置し、TF溶液III（1mL）を加え穏やかに混和した。その後、室温で15分間静置して、前記プロトプラストにプラスミドDNAを導入した。これにTF溶液II(8mL)を加え、遠心（2000rpmで5分間）し、1〜2ml残してプロトプラストを回収した。再生培地（下層）に回収したプロトプラスト液を滴下し、再生培地（上層）を流し込み、シャーレを廻して混和後、30℃で4〜5日培養した。出てきたクローンを再生培地（下層）に単離し、植え継ぎ純化することにより形質転換体（Aspergillus oryzae PP2-1および Aspergillus oryzae PP3-2）を取得した。
上記実施例１１の（６）に記載される方法に準じて各プラスミドDNA（ｐＰＰ７およびｐＰＰ９）を導入した形質転換体（Aspergillus oryzae ＰＰ７およびAspergillus oryzae ＰＰ９）を取得した。
上記TF 溶液I(プロトプラスト化溶液)は下記組成を用いて調製した。
上記組成を調製後(pH5.5)、ろ過滅菌を行った。
上記TF溶液IIは下記組成を用いて調製した。
更に水を加えて全量を200mlとした。
上記組成を調製後、オートクレーブ滅菌を行った。
上記TF溶液III は下記組成を用いて調製した。
更に水を加えて全量を10mlとした。
上記組成を調製後、ろ過滅菌を行った。
上記再生培地は下記組成を用いて調製した。
更に水を加えて全量を1Lとした。
上記組成を調製後（pH 5.5）、オートクレーブ滅菌を行った。
また、上記で用いたTrace elements solutionは下記組成を用いて調製した。
更に水を加えて全量を1Lとした。
上記組成を調製後、オートクレーブ滅菌を行った。
（７）P450-1の機能解析および添加培養試験
1% (w/v)マルトースを含むYPD培地(1% (w/v) 酵母エキス（Yeast Extract）、2% (w/v) ペプトン（Peptone）、2% (w/v)デキストロース（Dextrose）)に、1/100容のピリピロペンＥの2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地Aとした。ツァペックドックス寒天培地に培養したAspergillus oryzae PP2-1の菌叢より分生子を採取し、滅菌水に懸濁した。この分生子懸濁液を104 spore/mLに調製し、この調製した分生子懸濁液のうち100 μLを10 mLの培地Aに添加し、25℃で96時間振盪培養した。この培養液に10 mLのアセトンを添加し、よく混合した後、遠心濃縮器を用いてアセトンを留去した。これに10 mLの酢酸エチルを添加し、よく混合した後、酢酸エチル層のみを分取した。遠心濃縮器を用いて酢酸エチルを留去して得られた乾固物を1000 μLのメタノールに溶解した。これをサンプルとして用い、LC-MS(ウォーターズ社、Micromass ZQ、2996PDA、2695 Separation module、Column：Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50 mm、5 μm))、およびLC-NMR (Burker Daltonik社製 Avance500)により分析した。
上記LC-MS測定の結果、得られた化合物はピリピロペンＥよりも16分子量増加した単一で表される化合物Ｅであることを確認した。また、LC-NMR測定の結果、この化合物EはピリピロペンＥの11位水酸化体であることを確認した。前記Cytochrome P450 monooxygenase（１）はピリピロペンＥを基質とし、ピリピロペンＥの11位を水酸化する酵素であることを確認した。
前記化合物Ｅの物理化学的性状を下に示す。
1．マススペクトラム：ES-MS 468M/Z(M+H)+
2．分子式：C27H33NO6
3．HPLC：カラムWaters XTerra Column C18 (5 μm、4.6mm×50mm）、40℃、移動相20％アセトニトリル水から10分間で100% アセトニトリル（リニアグラジエント）、流速0.8ml/分、検出：UV323nmで保持時間 6.696分
4．1H -NMRスペクトル (CD3CN, 2H：3.134、3.157 H-11)
ピリピロペンＥおよび上記4.に記載の1H -NMRスペクトルのチャートは、それぞれ、図８および図９に示される通りであった。
（８）P450-2の機能解析および添加培養試験
1% (w/v)マルトースを含むYPD培地(1% (w/v) 酵母エキス（Yeast Extract）、2%(w/v) ペプトン（Peptone）、2%(w/v) デキストロース（Dextrose）)に1/100容のピリピロペンＥの2mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地A、同じく1/100容のピリピロペンＯの2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地Bとした。ツァペックドックス寒天培地に培養したAspergillus oryzae PP3-2の菌叢より分生子を採取し、滅菌水に懸濁した。この分生子懸濁液を104spore/mLに調製し、このうち500μLを50 mLの培地Aまたは培地Bに添加し、25℃で96時間振盪培養した。この培養液に50 mLのアセトンを添加し、よく混合した後、遠心濃縮器を用いてアセトンを留去した。これに50mLの酢酸エチルを添加し、よく混合した後、酢酸エチル層のみを分取した。遠心濃縮器を用いて酢酸エチルを留去して得られた乾固物を1500μLのメタノールに溶解した。これをサンプルとし、LC-MS(ウォーターズ社製 Micromass ZQ、2996PDA、2695 Separation module、Column：Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50mm、5μm))およびLC-MNR(Burker Daltonik社製 Avance500)で分析した。LC-MS測定の結果、培地Aから得られたサンプルから、ピリピロペンＥより32分子量の増加した化合物Ｆを検出した。また、培地Bから得られたサンプルから、ピリピロペンＯより32分子量の増加した化合物Ｇを検出した。さらに、LC-NMR測定の結果、化合物ＧはピリピロペンＯの7位および13位水酸化体であることが確認された。前記Cytochrome P450 monooxygenase（２）は、ピリピロペンＥまたはピリピロペンＯのそれぞれ7位および13位を水酸化する酵素活性を有することが確認された。
化合物Ｆの物理化学的性状を下に示す。
1．マススペクトラム：ES-MS 484M/Z(M+H)+
2．分子式：C27H33NO7
3．HPLC：カラムWaters XTerra Column C18 (5 μm、4.6mm×50mm）、40℃、移動相20％アセトニトリル水から10分間で100% アセトニトリル（リニアグラジエント）、流速0.8ml/分、検出：UV323nmで保持時間 5.614 分
化合物Ｇの物理化学的性状を下に示す。
1．マススペクトラム：ES-MS 542M/Z(M+H)+、
2．分子式：C29H35NO9
3．HPLC：カラムWaters XTerra Column C18 (5 μm、4.6mm×50mm）、40℃、移動相20％アセトニトリル水から10分間で100% アセトニトリル（リニアグラジエント）、流速0.8ml/分、検出：UV323nmで保持時間 5.165 分
4．1H -NMRスペクトル (CD3CN, 1H 4.858 H-13)、(CD3CN, 1H 3.65 H-7)
ピリピロペンＯおよび上記化合物Ｇの1H -NMRスペクトルのチャートは、それぞれ、図１０および図１１に示される通りであった。
（９）Acetyltransferase-1(AT-1)の機能解析および添加培養試験
1% (w/v)マルトースを含むYPD培地(1% (w/v) 酵母エキス、2% (w/v) ペプトン、2% (w/v) デキストロース)に1/100容のデアセチルピリピロペンＥ(参考例２参照)の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地D、1/100容の11位デアセチルピリピロペンＯ（参考例１参照）の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地E、７位デアセチルピリピロペンＡ(参考例３参照)の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地Fとした。ツァペックドックス寒天培地に培養したAspergillus oryzae ＰＰ７の菌叢より分生子を採取し、滅菌水に懸濁した。この分生子懸濁液を104 spore/mLに調整し、このうち200 μLを20 mLの培地D、培地E、または培地Fに添加し、25°Cで96時間振盪培養した。この培養液に20 mLのアセトンを添加し、よく混合した後、遠心濃縮器を用いてアセトンを留去した。これに20 mLの酢酸エチルを添加し、よく混合した後、酢酸エチル層のみを分取した。遠心濃縮器を用いて酢酸エチルを留去して得られた乾固物を1,000 μLのメタノールに溶解した。これをサンプルとし、LC-MS (ウォーターズ社製 Micromass ZQ、2996PDA、2695 Separation module、Column; Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50 mm、5 μm))で分析した。
LC-MS測定の結果、培地DからデアセチルピリピロペンＥよりも４２分子量増加した単一化合物を検出し、ピリピロペンＥ(参考例４参照)と保持時間、分子イオンピーク、UV吸収が一致することを確認した。一方、培地Eおよび培地Fからは新たに生成した化合物を検出しなかった。このことから、Acetyltransferase-1はデアセチルピリピロペンＥの1位を特異的にアセチル化するアセチル化酵素活性を有することが確認された。
（１０）Acetyltransferase-2(AT-2)の機能解析および添加培養試験
1% (w/v)マルトースを含むYPD培地(1% (w/v) 酵母エキス、2% (w/v) ペプトン、2% (w/v) デキストロース)に1/100容のデアセチルピリピロペンＥ(参考例２参照)の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地D、1/100容の11位デアセチルピリピロペンＯ(参考例１参照)の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地E、7位デアセチルピリピロペンＡ(参考例３参照)の2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加した培地を培地Fとした。ツァペックドックス寒天培地に培養したAspergillus oryzae ＰＰ９の菌叢より分生子を採取し、滅菌水に懸濁した。この分生子懸濁液を104 spore/mLに調整し、このうち200 μLを20 mLの培地D、培地Eまたは培地Fに添加し、25°Cで96時間振盪培養した。この培養液に20 mLのアセトンを添加し、よく混合した後、遠心濃縮器を用いてアセトンを留去した。これに20 mLの酢酸エチルを添加し、よく混合した後、酢酸エチル層のみを分取した。遠心濃縮器を用いて酢酸エチルを留去して得られた乾固物を1,000 μLのメタノールに溶解した。これをサンプルとし、LC-MS (ウォーターズ社製 Micromass ZQ、2996PDA、2695 Separation module、Column; Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50 mm、5 μm))で分析した。
LC-MS測定の結果、培地Eから11位デアセチルピリピロペンＯよりも４２分子量増加した単一化合物を検出し、ピリピロペンＯ（参考例５参照）と保持時間、分子イオンピーク、UV吸収が一致することを確認した。また、培地Fから7位デアセチルピリピロペンＡよりも４２分子量増加した単一化合物を検出し、ピリピロペンＡ（参考例６参照）と保持時間、分子イオンピーク、UV吸収が一致することを確認した。一方、培地Dからは新たに生成した化合物を検出しなかった。このことから、Acetyltransferase-2は11位デアセチルピリピロペンＯの11位および7位デアセチルピリピロペンＡの7位を特異的にアセチル化するアセチル化酵素活性を有することが確認された。
実施例１２：化合物Ｄ（1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ）の合成および構造解析
ピリピロペンＯ(30 mg) をメタノール-水（19：1、2mL)に溶解して、炭酸カリウム(20 mg)を加えた。室温で22時間半撹拌した後、酢酸(0.1 mL)を加え、濃縮した。酢酸エチル、水を加えた後、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧下で溶媒を留去することで、1,11-ジデアセチルピリピロペンＯの粗生成物を得た。粗生成物を分取薄層クロマトグラフィー（Merck シリカゲル60F254 0.5mm、ヘキサン:アセトン=1:1）にて精製して、1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ（23 ｍｇ）を得た。
ESI-MS；426 m/z (M+H)+； 1H-NMR (CDCl3) δ 0.89 (3H, s), 0.97 (3H, s), 1.14 (1H, dt, J = 4.2, 12.8 Hz), 1.20-1.25 (1H, m), 1.28 (3H, s), 1.45-1.59 (3H, m), 1.64-1.75 (3H, m), 1.82 (1H, dt, J = 3.5, 9.6 Hz), 2.11-2.14 (1H, m), 2.25 (1H, dd, J = 12.8, 17.1 Hz), 2.54 (1H, dd, J = 4.6, 17.1 Hz), 3.45 (1H, d, J = 10.3 Hz), 3.68 (1H, dd, J = 5.0, 11.2 Hz), 3.75 (1H, d, J = 10.3 Hz), 6.42 (1H, s), 7.39 (1H, dd, J = 4.8, 8.0 Hz), 8.10 (1H, ddd, J = 1.6, 2.0, 8.0 Hz), 8.65 (1H, dd, J = 1.6, 4.8 Hz), 8.99 (1H, d, J = 2.0 Hz)
実施例１３：化合物Ｂ１（1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ）の合成および構造解析
1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ(22 mg) を酢酸エチル(1mL)に懸濁して、ピリジン(20 mg)、シクロプロパンカルボニルクロリド(22 mg)を加えた。室温で4時間撹拌した後、水を加え、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧下で溶媒を留去することで、1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル1,11-ジデアセチルピリピロペンＯの粗生成物を得た。粗生成物を分取薄層クロマトグラフィー（Merck シリカゲル60F254 0.5mm、クロロホルム:メタノール=10:1）にて精製して、1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,11-ジデアセチルピリピロペンＯ（17 ｍｇ）を得た。
ESI-MS；562 m/z (M+H)+； 1H-NMR (CDCl3) δ 0.88 (3H, s), 0.99 (3H, s), 0.84-1.08 (8H, m), 1.21 (1H, dt, J = 3.6, 13.4 Hz), 1.28 (3H, s), 1.43-1.48 (2H, m), 1.56-1.73 (6H, m), 1.81-1.85 (2H, m), 2.13-2.16 (1H, m), 2.26 (1H, dd, J = 12.8, 17.1 Hz), 2.55 (1H, dd, J = 4.6, 17.1 Hz), 3.71 (1H, d, J = 11.7 Hz), 3.93 (1H, d, J = 11.7 Hz), 4.82 (1H, dd, J = 4.7, 12.0 Hz), 6.44 (1H, s), 7.41 (1H, dd, J = 4.8, 8.0 Hz), 8.12 (1H, ddd, J = 1.4, 2.0, 8.0 Hz), 8.66 (1H, dd, J = 1.4, 4.8 Hz), 9.00 (1H, d, J = 2.0 Hz)
実施例１４：1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,7,11-トリ-デアセチルピリピロペンＡの合成
ツァペックドックス寒天培地に培養したAspergillus oryzae PP3-2 (FERM BP-11141)の菌叢より分生子を採取し、滅菌水に懸濁して104spore/mLの分生子懸濁液を得た。20 mLの1% (w/v)マルトースを含むYPD培地(1% (w/v) Yeast Extract、2% (w/v) Peptone、2% (w/v) Dextrose)に、200 μLの分生子懸濁液と200 μLの実施例１３で得られた1,11-ジ-O-シクロプロパンカルボニル-1,11-ジデアセチルピリピロペンＯの2 mg/mLジメチルスルホキシド溶液を添加し、25℃で96時間振盪培養した。この培養液に20 mLのアセトンを添加し、よく混合した後、遠心濃縮器を用いてアセトンを留去した。これに、20 mLの酢酸エチルを添加し、よく混合した後、酢酸エチル層を分取した。遠心濃縮器を用いて酢酸エチルを留去して、生成物を得た。以下の条件で分析し、WO2006/129714号公報に記載の標題化合物であることを確認した(変換率90％)。
LC-MS ；ウォーターズ社、Micromass ZQ、2996PDA、2695 Separation module、
カラム；Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50 mm、5 μm))、
移動相；20％アセトニトリル水から10分間で100% アセトニトリル（リニアグラジエント）
流速；0.8ml/分、
カラムオーブン；40℃
検出；UV330nm
参考例１：11位デアセチルピリピロペンＯの合成および構造解析
ピリピロペンＯ（30 mg）をメタノール-水（19:1、2 mL）に溶解して、炭酸カリウム（20 mg）を加えた。22時間撹拌した後、酢酸（0.1 ml）を加え、減圧下で溶媒を留去した。酢酸エチルと水を加え、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧下で溶媒を留去することで、1,11位デアセチルピリピロペンＯの粗生成物（30 ｍｇ）を得た。
1,11位デアセチルピリピロペンＯの粗生成物（23 ｍｇ）をN,N-ジメチルホルムアミド（0.4ｍL）に溶解してトリエチルアミン（8 mg）、無水酢酸(7 mg)を加えた。室温で23時間撹拌した後、水を加えて、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下で溶媒を留去することで、1-デアセチルピリピロペンＯの粗生成物（28 ｍｇ）を得た。
1-デアセチルピリピロペンＯの粗生成物（28 ｍｇ）をトルエンに溶解して、1,8-ジアザビシクロ[5.4.0]-7-ウンデセン(20 mg)を加えた。70℃で20時間撹拌した後、放冷し、酢酸エチルと水を加え、酢酸エチルで抽出した。酢酸エチル層を飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下で溶媒を留去することで、11位デアセチルピリピロペンＯの粗生成物（20 ｍｇ）を得た。
これをメタノールで溶解後サンプルとし、HPLC（SHIMADZU製LC−6AD,SPD-M20A PDA,CBM-20A, Column; Waters XTerra C18 (Φ4.5 x 50 mm、5 μm）で移動相30％ アセトニトリル水から25分で55％アセトニトリル水（リニアグラジエント）、流速1.0ml/分、保持時間18分から19分を繰り返し分取し、11位デアセチルピリピロペンＯ（4.0mg）を得た。
ESI-MS；m/z 468 (M+H) +
1H-NMR (CDCl3) δ(ppm); 0.68 (3H, s), 0.95 (3H, s), 1.21-2.21 (10H, m), 1.25 (3H, s), 2.05 (3H,s), 2.20 (1H, dd, J = 4.63, 17.3 Hz), 2.50 (1H, dd, J = 4.63, 17.3 Hz), 2.94 (1H, d, J = 12.5 Hz), 3.33 (1H, d, J = 12.5 Hz), 4.87 (1H, dd, J = 4.6, 12.2 Hz), 6.48 (1H, s), 7.57 (1H, dd, J = 5.1, 8.1 Hz), 8.29(1H, d, J = 8.3 Hz), 8.68 (1H, d, J = 4.6 Hz), 9.04 (1H, s)
参考例２：デアセチルピリピロペンＥの合成および構造解析
ピリピロペンＥ（29 mg）（特開平８−２３９３８５号公報に記載の方法で取得した）をメタノール-水（19:1、1 mL）に溶解して、炭酸カリウム（53 mg）を加えた。44時間撹拌した後、減圧下で溶媒を留去し、クロロホルム-メタノール（10:1）の混合溶媒を加えた。濾過により不溶物を取り除き、減圧下で溶媒を留去することで、粗生成物を得た。粗生成物を分取薄層クロマトグラフィー（Merck シリカゲル60F254 0.5mm、クロロホルム:メタノール=10:1）にて精製して、デアセチルピリピロペンＥ（18 ｍｇ）を得た。
ESI-MS；m/z 410 (M+H)+
1H-NMR (CDCL3) δ(ppm) 0.82 (3H, s), 0.92 (3H, s), 1.00-1.03 (1H, m), 1.04 (3H, s), 1.12 (1H, dt, J = 4.0, 13.2 Hz), 1.27 (3H, s), 1.41-1.53 (2H, m), 1.59-1.75 (3H, m), 1.80-1.84 (2H, m), 2.15 (1H, dt, J = 3.2, 12.4 Hz), 2.18-2.29 (1H, m), 2.54 (1H, dd, J = 3.2, 17.6 Hz), 3.25 (1H, dd, J = 4.4, 11.2 Hz), 6.43 (1H, s), 7.39 (1H, dd, J = 4.8, 8.0 Hz), 8.11 (1H, d, J = 8.0 Hz), 8.65 (1H, d, J = 4.8 Hz), 8.99 (1H, d, J = 1.6 Hz)
参考例３：７位デアセチルピリピロペンＡの合成
7位デアセチルピリピロペンＡは、特開平８−２５９５６９号公報に記載の方法で合成された。
参考例４：ピリピロペンＥの取得
ピリピロペンＥは、特開平８−２３９３８５号公報に記載の方法で取得した。
参考例５：ピリピロペンＯの取得
ピリピロペンＯ は、J. Antibiot. 1996, 49, 292に記載の方法で取得した。
参考例６：ピリピロペンＡの合成
ピリピロペンＡは、ＷＯ９４／０９１４７号公報に記載の方法で取得した。
ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３３
ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１３７
ＦＥＲＭ ＢＰ−１１１４１
ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２１９
ＦＥＲＭ ＢＰ−１１２２０

Claims (14)

  1. 下記式Ａで表される化合物の製造方法であって、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、下記式Ｂで表される化合物とともに培養して式Ａで表される化合物を単離する工程を含む、製造方法：
    ［式中、Ｒは、直鎖、分岐鎖、または環状のＣ２−６アルキルカルボニル基（この基のアルキル部分が分岐鎖または環状であるときは、Ｃ３−６アルキルカルボニル基）を表す］、
    ［式中、Ｒは、前記と同じ意味を表す］、
    （Ｉ）下記の（ａ）〜（ｄ）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
    （ａ）配列番号２６６のヌクレオチド配列、
    （ｂ）配列番号２６６のヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつ配列番号２６６のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （ｃ）配列番号２６６のヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （ｄ）配列番号２６６のヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつ配列番号２６６のヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （ＩＩ）配列番号２６９および２７０から選択される少なくとも一つのアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
    （ＩＩＩ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
    （１）下記（ａ）および（ｂ）に記載されたヌクレオチド配列：
    （ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
    （ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１６２２０番から１８０１８番までのヌクレオチド配列、
    （２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
  2. 請求項１に記載の式Ｂで表される化合物が、下記式Ｂ１で表される化合物である、請求項１に記載の製造方法：
  3. プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１、プラスミドｐＰＰ２、またはプラスミドｐＰＰ３、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択されるベクターを一種またはそれ以上を含む微生物を請求項１に記載の式Ｂで表される化合物とともに培養して、請求項１に記載の式Ａで表される化合物を単離する工程を含む、請求項１に記載の製造方法。
  4. 下記（ＩＶ）〜（Ｖ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、請求項１に記載の式Ｂで表される化合物とともに培養して、請求項１に記載の式Ａで表される化合物を単離する工程を含む、請求項１または２に記載の製造方法：
    （ＩＶ）配列番号２７０のアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
    （Ｖ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
    （１）下記（ａ）に記載されたヌクレオチド配列：
    （ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１６２２０番から１８０１８番までのヌクレオチド配列、
    （２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
  5. 下記式Ｄ：
    で表される化合物の１位および１１位の水酸基を、アシル化剤を用いてアシル化して、請求項１に記載の式Ｂで表される化合物を単離する工程をさらに含む、請求項１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
  6. 下記式Ｃ：
    ［式中、Ｒ’は、アセチル基または水素原子を表す］
    で表される化合物の１位のアセチル基および、Ｒ’が、アセチル基である場合は１１位のアセチル基を加水分解して、請求項５に記載の式Ｄで表される化合物を単離する工程をさらに含む、請求項５に記載の製造方法。
  7. 下記（ＶＩ）〜（ＶＩＩ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物をピリピロペンＥとともに培養して、請求項６に記載の式Ｃで表される化合物を単離する工程をさらに含む、請求項６に記載の製造方法：
    （ＶＩ）配列番号２６９および２７５から選択される少なくとも一つのアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
    （ＶＩＩ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
    （１）下記（ａ）および（ｂ）に記載されたヌクレオチド配列：
    （ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
    （ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２５８２４番から２７１７８番までのヌクレオチド配列、
    （２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
  8. プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含む微生物をピリピロペンＥとともに培養して、請求項６に記載の式Ｃで表される化合物を単離する工程を含む、請求項７に記載の製造方法。
  9. 下記（ＶＩＩＩ）〜（ＩＸ）に記載の少なくとも一種のポリヌクレオチドまたはそれを含んでなる組換えベクターを導入してなる微生物を、デアセチルピリピロペンＥとともに培養して、請求項７に記載の式Ｃで表される化合物を単離する工程をさらに含む、請求項６に記載の製造方法：
    （ＶＩＩＩ）配列番号２６９、２７４、および２７５から選択される少なくとも一つのアミノ酸配列またはそれと実質的に同等なアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド、
    （ＩＸ）下記の（１）〜（４）に記載されたヌクレオチド配列から選択された少なくとも１個のヌクレオチド配列を有する単離されたポリヌクレオチド：
    （１）下記（ａ）、（ｂ）、および（ｃ）に記載されたヌクレオチド配列：
    （ａ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の１３２６６番から１５１４４番までのヌクレオチド配列、
    （ｂ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２３２０５番から２４７７３番までのヌクレオチド配列、
    （ｃ）配列番号２６６で示されるヌクレオチド配列の２５８２４番から２７１７８番までのヌクレオチド配列、
    （２）（１）において記載されたヌクレオチド配列の相補配列と厳密な条件でハイブリダイズ可能なヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （３）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドにおいて、１もしくは複数個のヌクレオチドが欠失、置換、挿入もしくは付加されたヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列、
    （４）（１）において記載されたヌクレオチド配列からなるポリヌクレオチドと少なくとも９０％以上の同一性を有するヌクレオチド配列であり、かつそれぞれのヌクレオチド配列がコードするタンパク質と実質的に同等なタンパク質をコードするヌクレオチド配列。
  10. プラスミドｐＰＰ２またはプラスミドｐＰＰ９を含み、かつプラスミドｐＰＰ７を含む微生物をデアセチルピリピロペンＥとともに培養して、請求項６に記載の式Ｃで表される化合物を単離する工程を含む、請求項９に記載の製造方法。
  11. 式Ａで表される化合物の製造のための、プラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１、プラスミドｐＰＰ２、プラスミドｐＰＰ３、プラスミドｐＰＰ７、またはプラスミドｐＰＰ９、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択される一種またはそれ以上のベクターの使用。
  12. 式Ａで表される化合物の製造のためのプラスミドｐＣＣ１−ＰＰ１、プラスミドｐＰＰ２、プラスミドｐＰＰ３、プラスミドｐＰＰ７、またはプラスミドｐＰＰ９、あるいはこれらのプラスミドからなる群より選択されるベクターを一種またはそれ以上を含んでなる形質転換体の使用。
  13. 請求項２に記載の式Ｂ１で表される化合物。
  14. 請求項５に記載の式Ｄで表される化合物。
JP2011551817A 2010-01-26 2011-01-19 酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法 Withdrawn JPWO2011093187A1 (ja)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2010014336 2010-01-26
JP2010014727 2010-01-26
JP2010014336 2010-01-26
JP2010014727 2010-01-26
PCT/JP2011/050853 WO2011093187A1 (ja) 2010-01-26 2011-01-19 酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
JPWO2011093187A1 true JPWO2011093187A1 (ja) 2013-06-06

Family

ID=44319177

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2011551817A Withdrawn JPWO2011093187A1 (ja) 2010-01-26 2011-01-19 酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法

Country Status (11)

Country Link
US (1) US20120330022A1 (ja)
EP (1) EP2530165A4 (ja)
JP (1) JPWO2011093187A1 (ja)
KR (1) KR20120127617A (ja)
CN (1) CN102791871A (ja)
AU (1) AU2011210969A1 (ja)
BR (1) BR112012019457A2 (ja)
CA (1) CA2787829A1 (ja)
MX (1) MX2012008688A (ja)
RU (1) RU2012136447A (ja)
WO (1) WO2011093187A1 (ja)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2013073689A1 (ja) * 2011-11-17 2013-05-23 Ｍｅｉｊｉ Ｓｅｉｋａファルマ株式会社 ピリピロペン生合成遺伝子発現植物体
CN105102625A (zh) 2013-03-28 2015-11-25 巴斯夫欧洲公司 自干生物质制备啶南平

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2993767B2 (ja) 1991-06-06 1999-12-27 社団法人北里研究所 Ｆｏ−１２８９ａ物質およびその製造法
JP3233476B2 (ja) 1992-10-22 2001-11-26 社団法人北里研究所 Ｆｏ−１２８９物質およびその製造法
US5712146A (en) * 1993-09-20 1998-01-27 The Leland Stanford Junior University Recombinant combinatorial genetic library for the production of novel polyketides
KR0125129B1 (ko) 1993-10-08 1997-11-28 김은영 신규 아실-코에이 : 콜레스테롤 아실전이효소(acat) 활성 저해물질 및 이의 제조 방법
JPH08239385A (ja) 1995-03-03 1996-09-17 Kitasato Inst:The Ｆｏ−１２８９物質およびその製造法
JP3725198B2 (ja) * 1995-03-27 2005-12-07 社団法人北里研究所 ピリピロペン誘導体
JPH08269065A (ja) 1995-04-03 1996-10-15 Kitasato Inst:The ピリピロペン誘導体
KR100522446B1 (ko) 2003-01-07 2005-10-18 한국생명공학연구원 아실 코에이:콜레스테롤 아실 트란스퍼라제의 저해활성을갖는 화합물 또는 그 염을 유효성분으로 하는 살충제
TWI388282B (zh) * 2005-06-01 2013-03-11 Meiji Seika Pharma Co Ltd 害蟲控制劑
US20090011476A1 (en) * 2005-08-19 2009-01-08 Wisconsin Alumni Research Foundation Gene cluster and method for the biosynthesis of terrequinone a
US8202890B2 (en) * 2006-11-30 2012-06-19 Meiji Seika Pharma Co., Ltd. Pest control agent
EP2186815A4 (en) * 2007-08-13 2012-01-25 Meiji Seika Kaisha PROCESS FOR PREPARING A PYRIPYROPEN DERIVATIVE AND INTERMEDIATE PRODUCT
ES2453665T3 (es) * 2008-07-24 2014-04-08 Meiji Seika Pharma Co., Ltd. Genes biosintéticos de piripiropeno A
EP2426124B1 (en) * 2009-05-13 2013-08-07 Meiji Seika Pharma Co., Ltd. Process for producing pyripyropene derivative

Also Published As

Publication number Publication date
MX2012008688A (es) 2012-08-23
EP2530165A1 (en) 2012-12-05
US20120330022A1 (en) 2012-12-27
EP2530165A4 (en) 2013-12-25
WO2011093187A1 (ja) 2011-08-04
BR112012019457A2 (pt) 2015-09-15
CN102791871A (zh) 2012-11-21
RU2012136447A (ru) 2014-03-10
AU2011210969A1 (en) 2012-09-06
CA2787829A1 (en) 2011-08-04
KR20120127617A (ko) 2012-11-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4642922B2 (ja) ピリピロペンａ生合成遺伝子
JP5898960B2 (ja) ピリピロペンの製造法
WO2011093187A1 (ja) 酵素法によるピリピロペン誘導体の製造方法

Legal Events

Date Code Title Description
A300 Application deemed to be withdrawn because no request for examination was validly filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300

Effective date: 20140401