JPWO2009145238A1 - 免疫調節剤及びその利用 - Google Patents
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Abstract
Description
(CD8陽性CXCR3陽性T細胞)
本発明の免疫調節剤は、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を含有している。当該T細胞は、CD8陽性及びCXCR3陽性の表現型を有しており、CD8陽性CXCR3陽性細胞集団に属している。当該T細胞は、in vitro及びin vivoにて活性化されると、CD8陽性制御性T細胞として機能することができる。このため、本発明の免疫調節剤は、CD8陽性制御性T細胞の免疫抑制能に基づき、免疫調節剤、特に免疫抑制剤として利用できる。
本発明の活性化されたCD8陽性CXCR3陽性T細胞の製造方法は、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を準備する工程と、前記T細胞をT細胞受容体を介した刺激が可能な物質等の存在下、培養して活性化する工程と、を備えることができる。本発明の製造方法によれば、活性化したCD8陽性CXCR3陽性T細胞を得ることができ、この活性化したCD8陽性CXCR3陽性T細胞を投与することで、確実で速やかな効果が期待される。
本発明の免疫関連障害の予防又は治療剤は、本発明の免疫調節剤、すなわち、CD8陽性CXCR3陽性T細胞(活性化されたものを含む。以下同じ。)を有効成分として含有している。また、本発明の免疫関連障害の予防又は治療方法は、免疫関連障害の予防又は治療を要する個体に、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を投与する工程を備えることができる。
本発明のキットは、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を検出又は分離する試薬を含むことができる。本発明のキットによれば、適当な採取源からCD8陽性制御性T細胞を検出又は分離することができる。本発明のキットは、CD8陽性制御性T細胞を分離又は検出するためにCD8及びCXCR3の分子マーカーに対する標識抗体を含むことができる。さらに、活性化したCD8陽性CXCR3陽性T細胞を選抜するためのIL10に対する標識抗体を含むことができる。さらに、CD8陽性CXCR3陽性T細胞の活性化及び培養のための各種試薬(培地、IL2など)を含むことができる。このような検出又は分離用キットは、個体から採取した末梢血中等のCD8陽性CXCR3陽性T細胞を検出し、当該細胞の含有量や当該細胞の抗原特異性を評価するのに用いることで、個体の免疫系の状態や自己免疫疾患などの免疫関連障害の診断用キットとしても用いることができる。また、このような検出又は分離用キットは、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を免疫関連障害の予防又は治療剤として用いるためのキットとしても用いることができる。
本発明のスクリーニング方法は、CD8陽性CXCR3陽性T細胞に複数の被験条件を付与して各被験条件につき前記T細胞の免疫抑制活性を検出する工程、を備えることができる。このスクリーニング方法によればCD8陽性CXCR3陽性T細胞の免疫抑制活性を増強又は低下する被験条件を選択することができる。被験条件は、例えば、被験化合物をCD8陽性CXCR3陽性T細胞に接触させることであってもよいし、適当な遺伝子のノックアウト及び/又は発現を含む遺伝子改変を伴う遺伝子導入であってもよいし、温度等の環境条件であってもよい。
C57BL/6及びBALB/cマウスは、SLC、ジャパンより購入し、各種週令マウスを準備した。CB-17 SCIDマウスは、Cleaジャパンより購入した。
(ヒト単核球画分の調製)
ヒト単核球画分は健常人ボランティアから採取した末梢血をFicoll-Paque Plus(アマーシャムバイオサイエンス)で遠心分離しPBSにて十分に洗浄することにより回収した。
(抗体)
全ての抗体は、商業的に入手した。
(フローサイトメトリー)
分析用途にはFACSキャリバーフローサイトメーター(BDバイオサイエンス)を用い、セルソーティング用途にはFACSヴァンテージセルソーター(BDバイオサイエンス)を用いた。
(磁性ビーズによる細胞精製)
CD8陽性細胞は、磁性マイクロビーズに結合させた抗CD8抗体及びカラム(ミルテニイバイオテック)を用いてそのプロトコールに従い分離した。
(細胞培養)
マウス及びヒト由来のそれぞれの細胞につき、2×105個の細胞を96ウェルプレート上の平坦な底部を有する1ウェル内で、10ng/.mlのIL2を含有する200μlの完全培地(RPMI1640+10%FCS及び50μM 2-ME)中で培養した。
(ELISA)
マウス細胞の培養上清中のIL10濃度については、マウスIL10用のELISAキット(R&Dシステムズ)を用いた。ヒト細胞の培養上清中のIL10濃度については、SRLに依頼した。
(DNAマイクロアレイ)
それぞれ1×106個のCD8陽性CXCR3陽性T細胞及びCD8陽性CXCR3陰性T細胞は、C57BL/6マウスの脾臓細胞からEFACSヴァンテージセルソーターを用いて回収した。mRNAを回収した細胞から抽出し、DNAマイクロアレイ解析は北海道システムサイエンスに依頼した。
マウスにおけるCD8陽性CXCR3陽性T細胞とCD8陽性CD122陽性T細胞との発現プロファイルを比較するために、まず、DNAマイクロアレイを実施した。セルソーティングによりC57BL/6マウスの脾臓からCD8陽性CD122陽性T細胞及びCD8陽性CD122陰性T細胞のそれぞれをおおよそ100万個程度採取し、これらの細胞集団から抽出したmRNAにつきDNAマイクロアレイ解析を行った。
本実施例では、リンパ球欠損重症複合型免疫不全(SCID)マウスにCD8陽性CXCR3陽性T細胞を伴って又は伴わずにCD8陽性CXCR3陰性T細胞の移植実験を行った。最初に、CD8陽性CXCR3陽性T細胞及びCD8陽性CXCR3陰性T細胞をBALB/cマウスから抗CD8抗体マグネティックビーズ及びセルソーターを用いて回収した。ビーズ処理後であってセルソーティング前のフローサイトメトリー及びセルソーティング後のフローサイトメトリーによる分析結果を図2Aに示す。
本実施例では、試験管内におけるマウスのCD8陽性CXCR3陽性T細胞の制御性T細胞の作用を調べた。マウスの脾臓細胞をセルソーティングにかけて、CD8陽性CXCR3陽性T細胞及びCD8陽性CXCR3陰性T細胞をそれぞれ回収した。
Ficoll重層遠心分離によってヒト末梢血から単核球を分離し、抗ヒトCD8抗体、抗ヒトCXCR3抗体及び抗ヒトCD122抗体で染色し、フローサイトメトリーにより分析した。結果を図4A及び図4Bに示す。
実施例3においては、CD8陽性CXCR3陽性T細胞は、マウスにおいて制御性T細胞として機能した。本実施例では、CD8陽性CXCR3陽性T細胞がヒトにおいても制御性T細胞として機能するかどうかを確認した。
ヒトMSの動物モデルとしてマウスEAE(実験的自己免疫性脳脊髄炎)がある。本実施例では、以下のプロトコールに従い、EAEマウスに対してCD8陽性CD122陽性T細胞を投与してその症状の改善について評価した。
(1)抗マウスCD122抗体(クローンTM-b1)は、ハイブリドーマ細胞をヌードマウスの腹腔に植え付けて増殖させた後に、腹水を回収し、硫安沈殿をして精製したものを使用した。マウス1匹あたり25mgの抗体を尾静脈より注射した。
(2)EAEの誘導には、メスのB6マウスを使用し、200mgのMOG35-55ペプチドを4mg/mlの結核菌死菌を含んだ完全フロイントアジュバントとよく混合し、エマルジョン化したものを尾の付け根の皮内に注射(この時をday0とする)し、同日と2日後の2回にわたりPertussis Toxin 200ngを腹腔内に注射することで行った。
(3)EAE症状の評価は、スコア0:症状なし、スコア1:尾または片側の後肢の脱力、スコア2:尾と後肢の脱力、スコア3:後肢の不完全麻痺、スコア4:後肢の完全麻痺、スコア5:マウス死亡、として行った。
(4)CD8+CD122+細胞もしくはCD8+CD122-細胞の移入には、マウス脾細胞からCD8+細胞を抗CD8抗体の結合した磁気ビーズ(ミルテニー社製)を用いて分離回収し、さらにそれを蛍光標識抗CD8抗体と蛍光標識抗CD122抗体で染色したものをセルソーター(BD社製FACSVantage SE)を用いて99%以上の純度で回収し、その細胞をマウスの尾静脈から注射した。プロトコールの概要とB6マウスにMOGペプチドを免疫してEAEを誘導し、症状をスコア化して追跡した結果を図6に示す。
潰瘍性大腸炎とクローン病を総称して炎症性腸疾患(IBD)というが、これらも免疫応答が関わった自己免疫性疾患の一つである。IBDモデルマウスにもいくつかの種類があるが、よく使われるものとしてリンパ球を欠損するRAGノックアウトマウスにCD4+CD45RB+細胞を養子移入するという系がある。本実施例では、RAGノックアウトマウスに対してCD8+CD122+制御性T細胞を投与したときのIBDの症状の変化を観察した。なお、IBDの症状が体重変化に如実に反映されることは、これまでの多くの論文によって証明されている。
(1)リンパ球を持たないRAGノックアウトマウス(遺伝的背景はB6)に各種の細胞を移入した後、マウスの体重を暫時計測し、細胞移入前の体重に対する増減を百分率で記録した。
(2)CD4+CD45RB+細胞、CD4+CD45RB-細胞、CD8+CD122+細胞、CD8+CD122-細胞はすべてB6マウスの脾細胞から調製した。
(3)第一段階として、抗CD4もしくは抗CD8抗体を結合させた磁気ビーズ(ミルテニー社製)によってCD4+細胞もしくはCD8+細胞を分離回収し、その後蛍光標識した抗CD4、抗CD45RB、抗CD8、抗CD122抗体で染色して、目的の細胞をセルソーター(BD社製FACSVantage SE)を用いて高純度で分離回収した。
(4)CD4+CD45RB+細胞はいずれの組み合わせの細胞移入においても4x105個を用い、そこにCD8+CD122+細胞、CD8+CD122-細胞、CD4+CD45RB-細胞はそれぞれ2x105個を加える形で混ぜ合わせて経静脈的に移入した。
結果を図7に示す。
ヒト疾患に対する制御性T細胞の有用性を示すには、その制御性T細胞をin vitroで培養増殖させることが必要である。具体的方法としては、末梢血から採取した制御性T細胞を抗CD3抗体などで刺激して活性化状態にし、IL-2添加培地中で培養して増殖させる技術を確立する必要がある。本実施例では、培養増殖させることが簡単なマウスT細胞を用いて実験を行った。
Claims (20)
- CD8陽性CXCR3陽性T細胞を含有する、免疫調節剤。
- 前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞はインターロイキン10の産生活性を有する、請求項1に記載の免疫調節剤。
- 前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞は霊長類由来である、請求項1又は2に記載の免疫調節剤。
- 免疫抑制がその予防又は治療に有効である免疫関連障害の予防又は治療用である、請求項1〜3のいずれかに記載の免疫調節剤。
- 前記免疫関連障害は自己免疫疾患である、請求項4記載の免疫調節剤。
- 前記免疫関連障害は臓器移植後の拒絶反応である、請求項4に記載の免疫調節剤。
- 免疫関連障害の予防又は治療剤であって、
請求項1〜6のいずれかに記載の免疫調節剤と、
薬学的に許容される担体と、
を含有する、予防又は治療剤。 - 活性化されたCD8陽性制御性T細胞の製造方法であって、
CD8陽性CXCR3陽性T細胞を準備する工程と、
前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞を、当該細胞のT細胞受容体を介して刺激する物質の存在下培養する活性化工程と、
を備える、製造方法。 - 前記活性化工程は、前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞のインターロイキン10の産生活性を発現させる工程である、請求項8に記載の製造方法。
- 前記活性化工程は、前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞を特定の抗原の存在下で培養して当該抗原についての特異性を有するCD8陽性CXCR3陽性T細胞を活性化する工程である、請求項8又は9に記載の製造方法。
- 前記抗原は、自己免疫疾患の原因物質、アレルギー疾患の原因物質及び臓器移植時のドナー由来細胞又はその一部から選択される、請求項10に記載の製造方法。
- さらに、前記活性化したCD8陽性CXCR3陽性T細胞をIL10産生活性を指標として選抜する工程を備える、請求項8〜11のいずれかに記載の製造方法。
- さらに、活性化された前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞を培養して増殖させる工程を備える、請求項8〜12のいずれかに記載の製造方法。
- CD8陽性制御性T細胞の検出又は分離用キットであって、
CD8陽性CXCR3陽性T細胞を検出又は分離する試薬を含む、キット。 - 免疫関連障害の予防又は治療用剤の製造方法であって、
CD8陽性CXCR3陽性T細胞を準備する工程と、
前記CD8陽性CXCR3陽性T細胞と薬学的に許容される担体とを混合する工程と、
を備える、製造方法。 - 免疫関連障害の予防又は治療手段のスクリーニング方法であって、
CD8陽性CXCR3陽性T細胞に1種又は2種以上の被験条件を付与して前記T細胞の免疫抑制活性を検出する工程、
を備える、スクリーニング方法。 - さらに、前記1種又は2種以上の被験条件中、前記免疫抑制活性を増強する1種又は2種以上の被験条件を免疫抑制が有効な免疫関連障害の予防又は治療手段として選択する工程を備える、請求項16に記載のスクリーニング方法。
- さらに、前記1種又は2種以上の被験条件中、前記免疫抑制活性を低下させる1種又は2種以上の被験条件を免疫活性化が有効な免疫関連障害の予防又は治療手段として選択する工程、を備える、請求項16に記載のスクリーニング方法。
- 免疫関連障害の予防又は治療方法であって、
前記免疫関連障害の予防又は治療を要する個体に、CD8陽性CXCR3陽性T細胞を投与する工程、
を備える、方法。 - 免疫関連障害の予防又は治療方法であって、
前記免疫関連障害の予防又は治療を要する個体から、CD8陽性CXCR3陽性T細胞の少なくとも一部を除去する工程、
を備える、方法。
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