JPWO2007080977A1 - 免疫疾患の予防ないし治療剤および方法 - Google Patents
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Abstract
Description
特許文献1には、α−GalCer(α-galactosylceramide)を包含するリポソーム内腔にOVA(卵白アルブミン)タンパク質を封入する方法と上記リポソームによるマウスの抗体産生抑制作用が記載されている。
非特許文献1には、マウス骨髄細胞をIL−10存在下に試験管内で培養するとCD45RBhighCD11clow細胞が増殖すること、また脾臓中にはCD45RBhighCD11clow細胞が存在し、試験管内とin vivo(マウス)でナイーブCD4+T細胞から制御性T細胞を分化・増殖させることができることが記載されている。
非特許文献2には、マウス骨髄細胞から制御性樹状細胞を人工的に作製する方法が記載されている。
非特許文献3には、マウス脾臓中の低比重B220陽性B細胞がバクテリア刺激でIL−10を産生する能力があることが記載されている。
非特許文献4には、α−GalCerを投与したマウスの脾臓中の低比重B細胞はNKT細胞のIL−4産生能を高められないことと、DCで活性化するNKT細胞のIFN−γとIL−4産生機能を抑制することが記載されている。
しかしながら、NKT細胞の多彩な機能の中から選択的に免疫抑制機能を増強させる方法、及び生体内で抗原特異的免疫抑制を効率よく誘導する方法は、未だ開発されていない。
〔1〕CD1dリガンド及び標的抗原を含む、内腔を有する薬物送達媒体を含有してなる、該標的抗原に起因する免疫疾患の予防又は治療剤。
〔2〕標的抗原がアレルゲンであり、免疫疾患が該アレルゲンに起因するアレルギー疾患である上記〔1〕の剤。
〔3〕薬物送達媒体がリポソームである、上記〔1〕の剤。
〔4〕CD1dリガンドがα−GalCerである、上記〔1〕の剤。
〔5〕アレルゲンがスギ花粉抗原である、上記〔2〕の剤。
〔6〕アレルゲンがCryj1成熟タンパク質及びCryj2成熟タンパク質の融合タンパク質である、上記〔2〕の剤。
〔7〕融合タンパク質において、Cryj1成熟タンパク質がCryj2成熟タンパク質よりもN末端側に存在する、上記〔5〕の剤。
〔8〕CD1dリガンドがリポソーム膜内に包埋され、かつアレルゲンがリポソーム内腔に封入されている、上記〔2〕の剤。
〔9〕標的抗原が自己抗原である、上記〔1〕の剤。
〔10〕スギ花粉抗原Cryj1タンパク質とCryj2タンパク質を含む融合タンパク質。
〔11〕前記Cryj1タンパク質がCryj1成熟タンパク質であり、Cryj2タンパク質がCryj2成熟タンパク質である上記〔10〕の融合タンパク質。
〔12〕Cryj1タンパク質とCryj2タンパク質が、直接又はペプチドリンカーを介して連結されている、上記〔10〕の融合タンパク質。
〔13〕Cryj1タンパク質がN末端側に、Cryj2成熟タンパク質がC末端側に存在する、上記〔10〕の融合タンパク質。
〔14〕上記〔1〕〜〔9〕のいずれかの免疫疾患の予防又は治療剤の薬学的有効量をその治療を必要とする被験体に投与する工程を含む、免疫疾患の予防又は治療方法。
〔15〕前記被験体がヒト免疫疾患患者である、上記〔14〕の免疫疾患の予防又は治療方法。
アレルゲンは、生体が曝されるか、生体が摂取するか、または生体に適用される、アレルギーの原因となり得る因子である限り特に限定されない。このようなアレルゲンとしては、例えば、花粉(例、スギ、ヒノキ、ブタクサ、イネ、シラカンバ、カモガヤ、ヨモギ)、食品(例、牛乳、そば、卵、ピーナッツ、小麦、大豆、魚介類、果物またはそれらの加工品)、ヒト以外の生物またはその由来物(例、ダニ、カビ、動物・鳥類の体毛、ハチ毒)、薬物(例、ペニシリン系抗生物質、サルファ剤、バルビツール酸誘導体)、医療用品(例、天然ゴム手袋)、生活用品(例、装飾用具の金属)、その他の物質または組成物(例、ラテックス)などに含まれる、アレルギーの原因となり得る因子が挙げられる。
自己抗原は、自己免疫疾患において免疫細胞の標的となり得る抗原である限り特に限定されない。自己抗原としては、例えば、コラーゲン、核酸(関節性リウマチ、全身性エリテマトーデス)、ミエリン塩基性蛋白質(MBP)(多発性硬化症)、サイログロブリン(甲状腺自己免疫疾患)、移植片アロ抗原(移植片対宿主病)が挙げられる。
L-α-Phosphatidylglycerol, dipalmitoyl (DPPG;和光純薬) 1.12 mgと1,2-Distearoyl-sn-Glycero-3-Phosphoethanolamine-N-[Methoxy(Polyethyleneglycol)-2000](Ammonium Salt) (PEG-PE; Avanti Polar Lipids) 0.029 mgをクロロホルム/メタノール(1:1)溶媒250μlに溶解した。また、α-ガラクトシルセラミド(独立行政法人理化学研究所免疫・アレルギー科学総合研究センターにて作製)0.16 mgは別にクロロホルム/メタノール(1:1)溶媒250μlに溶解した。次に、両者を混合しエバポレーターで乾固させた後、真空下のデシケーター内で一晩乾燥させた。次に天然スギ花粉から精製されたCry j1蛋白質(生化学工業)濃度が0.4mg/mlである水溶液を200μl添加し、超音波破砕装置にて10分間処理した後、ポアサイズ0.22μmの滅菌用メンブランを通過させた。次に、ポアサイズ100 nmのポリカーボネート膜を装着したLiposoFast-Basic extruder(Avestin Inc,)を、25回通過させることにより整粒した。Amicon Ultra-4 遠心フィルター(PL-100)(Millipore)を用いてCry j1を封入したリポソームの濃縮と精製水での洗浄によりリポソーム未封入Cry j1タンパク質の除去を行ない、最終的に精製水で800μl水溶液に調整した。この天然型Cry j1封入リポソーム(αGC-天然型Cry j1リポソーム)を含む水溶液をSDS電気泳動で解析した結果、Cry j1タンパク質濃度は50 μg/mlであることが確認された。またα-GalCerが全てリポソーム膜に取り込まれたと想定し、Lipo-αGC+Cry j1溶液中のα-GalCer最終濃度を200μg/mlとした。
BDF1マウスにaqueous α-GalCer またはαGC-リポソーム(国際公開WO2005/120574号公報)を2μg α-GalCer/マウスで腹腔内に投与し、24時間後に脾臓を摘出した。スライドガラスで脾臓をすり潰し、細胞を調製した後、抗CD11c 抗体磁性マイクロビーズ (Miltenyi) を添加し、マグネットを用いてCD11c+細胞 (DC) を調製した。マグネットに結合しなかった残りの細胞から抗B220 mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) でB220+細胞 (B細胞) を調製した。96ウエルU底培養プレートの1ウエル内に、200μlの培養液に懸濁した2.5 x 105個の正常BDF1マウスの全脾臓細胞とaqueous α-GalCer またはαGC-リポソーム 投与BDF1マウス脾臓細胞由来の1 x 105個のDCまたは3 x 105個のB細胞を加え、37℃の5% C02含有インキュベータ内で培養した。24、48、72時間後の培養上清中のサイトカインIFN-γ、IL-4、IL-10をELISAで測定した(図1)。
その結果、αGC-リポソーム投与BDF1マウス脾臓由来のCD11c+細胞の添加群は、aqueousα-GalCer投与BDF1マウス脾臓由来のCD11c+細胞の添加群に比べてIFN-γ産生量が高かったが、IL-4とIL-10産生量は同等であった。αGC-リポソーム 投与BDF1マウス脾臓由来のB220+細胞を全脾臓細胞に添加すると、IL-10は産生されるが、IL-4とIFN-γは産生されなかった。aqueous α-GalCer投与BDF1マウス脾臓由来のB220+細胞を全脾臓細胞に添加した場合には、IL-4、IL-10、IFN-γ産生は検出されなかった。
BDF1マウスにαGC-リポソームを2μg α-GalCer/マウスで腹腔内に投与し、24時間後に脾臓を摘出した。脾臓中に1 mg/mlのコラゲナーゼD (Roche) を注入し、CO2インキュベータ内で45分間インキュベートした。次に、脾臓から細胞を抽出し3 mlのHistoDenz (14.1%, Sigma-aldrich) に懸濁した後、50μMの2-メルカプトエタノール (2ME) 含有X-VIVO 15培地 (CAMBREX Bio Science Walkerville, Inc.) を重層した。1500 rpmで5分間遠心後、中間層の低密度 (LD) 細胞と沈殿の高密度 (HD) 細胞を回収した。50 μM 2ME, 10 % FCSを含有する X-VIVO 15培地で細胞を洗浄後、0.5% FCS含有リン酸緩衝液 (PBS) に懸濁した。LD細胞に抗CD11c mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) を添加し、マグネットを用いてCD11c+樹状細胞を調製した後、残りの細胞から抗B220 mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) でLD-B細胞を調製した。また、HD細胞から抗B220 mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi)で HD-B細胞を調製した。LD-B細胞とHD-B細胞をそれぞれFITC標識抗IgM抗体とPE標識抗CD21抗体で染色後、フローサイトメーターで解析した(図2A)。96ウエルU底培養プレートの1ウエル内に、200μlの培養液に懸濁した2.5 x 105個の正常BDF1マウスの全脾臓細胞と1 x 105個のLD-B細胞またはHD-B細胞を入れ、37℃の5% C02含有インキュベータ内で培養した。
その結果、LD-B細胞を全脾臓細胞に添加した群のみ、培養上清中にIL-10産生が検出された(図2B)。LD-B細胞は辺縁帯B細胞であることから、αGC-リポソームの生体内投与(インビボ)により得られる辺縁帯B細胞が、全脾臓細胞との相互作用により、IL-10産生を誘導することが示された。
BDF1マウスから摘出した脾臓中に1 mg/mlのコラゲナーゼD (Roche) を注入し、CO2インキュベータ内で45分間インキュベートした。次に、脾臓から細胞を抽出し3 mlのHistoDenz (14.1%, Sigma-aldrich) に懸濁した後、50 μMの2-メルカプトエタノール (2ME) 含有X-VIVO 15培地(CAMBREX Bio Science Walkerville, Inc.) を重層した。1500 rpmで5分間遠心後、中間層の低密度 (LD) 細胞を回収した。50μM 2ME, 10% FCSを含有する X-VIVO 15培地で細胞を洗浄後、0.5% FCS含有リン酸緩衝液 (PBS) に懸濁した。LD細胞に抗CD11c mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) を添加し、マグネットを用いてCD11c+樹状細胞を調製した後、残りの細胞から抗B220 mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) でLD-B細胞を調製した。3 x 106個のLD-B細胞を3 mlの培養液の入った6穴 (ウエル) 培養プレートに添加し、さらにαGC-リポソームを培養液に最終濃度100 ng/mlで添加したウエルと添加しないウエルを用意した。18時間、37℃の5% C02含有インキュベータ内で培養した後、それぞれのウエルから細胞を回収した。BDF1マウスから摘出した全脾臓細胞に抗B220 mAb磁性マイクロビーズ (Miltenyi) を添加し、マグネットを用いてB220+細胞を除去した全脾臓細胞 (-B220陽性細胞) を調製した。96ウエルU底培養プレートの1ウエル内に、200μlの培養液に懸濁した2.5 x 105個の正常BDF1マウスの全脾臓細胞 (-B220陽性細胞) と1 x 105個のLD-B細胞を入れ、37℃の5% C02含有インキュベータ内で2日または3日間培養した。
その結果、αGC-リポソームを添加して培養したLD-B細胞を全脾臓細胞 (-B220陽性細胞) に添加した群のみ、培養上清中にIL-10産生が検出された(図3)。LD-B細胞は辺縁帯B細胞であることから、αGC-リポソームでパルスされた辺縁帯B細胞(インビボ)が、全脾臓細胞との相互作用により、IL-10産生を誘導することが示された。
天然型Cry j1 (5μg/マウス, 生化学工業) と水酸化アルミニュウムゲル (2 mg/マウス) で2回感作したBDF1マウスに、αGC−天然型Cry j1−リポソーム(αGC: 2μg, Cryj1: 0.5μg/マウス)、αGC−リポソーム(αGC: 2μg/マウス)又はリポソーム単体を感作から28日、35日、42日目の3回静脈内に投与し、49日目に天然型Cry j1 (1μg/マウス) で追加免疫した。追加免疫前後に採血し、血清中の抗Cry j1-IgE抗体をELISAで測定した。その結果、αGC−天然型Cryj1−リポソームを投与した群では、追加免疫後の二次的IgE抗体産生が有意に抑制されていた(図4)。
Cry j1/2融合遺伝子は、Cry j1遺伝子(GenBankアクセッション番号:BAA07020)のN末端シグナル領域を含まない63位(Ser)から1122位(Cys)までのヌクレオチド(成熟Cryj1)とCry j2遺伝子(GenBankアクセッション番号:P43212)のN末端シグナル及びプロ領域を含まない138位(Arg)から1299位(Ser)までのヌクレオチド(成熟Cry j2)を以下の方法で結合することにより作製した。成熟Cry j2遺伝子領域には、XbaI切断配列が868-874位(Ser-Arg)のヌクレオチド配列(TCTAGA)として存在し、種々ベクターとの組換え操作に不都合であるため、TCTAGA→TCAAGAのコドン置換によりXbaI切断配列を喪失させることとした。まず、Cryj2遺伝子全長が挿入されたプラスミドDNA((独)森林総合研究所)をテンプレートにし、プライマー1、2又はプライマー3、4によるPCRをDNA合成の正確度が高いDNAポリメラーゼ(例、宝酒造のPrimeStar、東洋紡のKOD)存在下で20サイクル行った。その結果、成熟Cryj2のN末端領域断片とC末端領域断片をそれぞれ増幅することができた。次に、これら2つのDNA断片を混合し、プライマー1、4を用いたPCRを20サイクル行うことにより、成熟Cry j2遺伝子全長を増幅させた。このDNA断片をベクターpMAT324のXbaI-EcoRI部位にサブクローニングした後、DNAシークエンシングを行い、成熟Cryj2遺伝子のXbaI切断配列の喪失とその他全配列にPCRによる変異が生じていないことを確認した(pMAT324-Cry j2ΔXbaI)。Cryj1/j2融合遺伝子を作製するため、pMAT324-Cry j2ΔXbaIをテンプレートにプライマー4、5を用いたPCRを行い、成熟Cry j2遺伝子断片を増幅した。次にCryj1遺伝子全長が挿入されたプラスミドDNA((独)森林総合研究所)をテンプレートにプライマー6、7を用いたPCRを行い、成熟Cry j1遺伝子断片を増幅した。最後に、成熟Cry j1遺伝子領域DNA断片と成熟Cryj2遺伝子領域DNA断片を混合し、プライマー4、6を用いたPCRを20サイクル行うことにより、Cry j1/2融合遺伝子DNA断片を増幅した。Cry j1/2融合遺伝子をEcoRI消化後、SmaIとEcoRIで切断されたpET47b(Novagen)ベクターとライゲーションを行い、大腸菌DH10B株に形質転換した(pET47b-Cryj1/2)。DNAシークエンシングによりCry j1/2融合遺伝子の全配列と、ヒスチジン(His)タグ配列がCryj1/2遺伝子の5’末端に付加されていることを確認した(図5、6)。
以下、必要に応じて、本実施例で作製された構築物をrecCryj1/2と省略する。
プライマー2(アンチセンス):CCTCTGCTCTTGAGTTTTCCC(配列番号2)
プライマー3(センス):GGGAAAACTCAAGAGCAGAGG(配列番号3)
プライマー4(アンチセンス):CCGGAATTCCTATCAACTTGGACTTAAATTC(配列番号4)
プライマー5(センス):AGAAAAGTTGAGCATTC(配列番号5)
プライマー6(センス):TCTGATAATCCCATAGAC(配列番号6)
プライマー7(アンチセンス):GAATGCTCAACTTTTCTACAACGTTTAGAGAGAGAGC(配列番号7)
pET47b-Cryj1/2プラスミドDNAを、大腸菌BL21株(インビトロジェン)に形質転換した。カナマイシン(最終濃度20μg/ml)を添加したLB培地100 mlに形質転換株を植菌した。37℃で一昼夜培養した後、100 mlの菌体培養液全てを1 Lのカナマイシン含有LB培地に移し、さらに37℃で2時間培養した。次に、IPTGを最終濃度0.1 mMになるように添加した後、30℃で3時間培養した。菌体を回収し、超音波破砕した後、高速遠心機で沈殿を分離した。沈殿を水に懸濁後、遠心後の上清とともにSDSポリアクリルアミド電気泳動とHRP標識抗Cryj2モノクローナル抗体(林原研究所)を用いたウエスタンブロッティングで解析した。その結果、菌体破砕後の沈殿画分で、クマシーブリリアントブルー(CBB)タンパク染色で陽性でかつ、抗Cryj2モノクローナル抗体陽性の分子量約70 kDaのタンパク質がrecCryj1/2タンパク質であることが予想された。次に、ウエスタンブロッティングでPVDF膜にトランスファーした上記75 kDa付近のバンドをCBB染色後に切り出し、エンドプロテアーゼAsp-N(タカラバイオ)酵素消化後、質量分析を行った結果、Cry j1とCry j2内のペプチド配列を多数検出できた。
以上の結果から、菌体破砕沈殿にある約75 kDaのタンパク質はrecCryj1/2タンパク質であることが確認された。
pET47b-Cryj1/2発現菌体1 g(湿重量)をBugbuster(Novagen)5 mlとBenzonase(Novagen)1μlで溶解後、16000 g、20分間遠心し不溶性画分を回収した。次にBugbuster(Novagen)5 mlを添加し、ボルテックスで十分に攪拌した後、Lysonase(Novagen)2μlを添加し、さらにボルテックスで攪拌した。室温に5分間静置後、10倍希釈したBugbuster(Novagen)溶液30 mlを添加し、16000 g、15分間遠心し不溶性画分を回収した。次に35 mlの10 mMイミダゾール/8 M尿素/リン酸緩衝液(PBS)に懸濁後、磁気スターラーにて攪拌し、不溶性タンパク質を溶解した。高速遠心機で18000 rpm、15分間遠心した後、上清を回収した。次に、0.1 M NiSO4を充填し、50 mMイミダゾール/8 M尿素/PBSで平衡化したChelating Sepharose FF(GLヘルスケアバイオサイエンス)カラムに、遠心上清を高速液体クロマトグラフィーでアプライした。50 mMイミダゾール/8 M尿素/PBSで洗浄後、500 mMイミダゾール/8 M尿素/PBSでrecCryj1/2融合タンパク質を溶出した。溶出液にアルギニンを最終濃度0.4 Mになるように添加後、透析チューブに入れ、0.4 Mアルギニン/PBS溶液内で24時間透析することによって、可溶化recCryj1/2タンパク質を回収した。SDSポリアクリルアミド電気泳動と抗ヒスチジンタグモノクローナル抗体(GEヘルスバイオサイエンス)、又はHRP標識抗Cryj2モノクローナル抗体(林原研究所)を用いたウエスタンブロッティングでrecCryj1/2タンパク質であることを確認した。
BALB/c x DBA2 F1(BDF1)マウス1群5匹(雌、8週齢、チャールズリバー)に、水酸化アルミニュウムゲル・アジュバント(理化学研究所)2 mgに混合したスギ花粉由来精製Cryj1(天然型Cryj1;林原研究所)10μgあるいはrecCryj1/2タンパク質5又は10μgを実験開始時(0日目)と14日目に腹腔内免疫し、41日目にそれぞれのマウスに天然型Cryj1を1μgあるいはrecCryj1/2タンパク質を5又は10μg追加免疫した。さらに、81日目には、全てのマウスに水酸化アルミニュウムゲル2 mgに混合した天然型Cryj1 1μgを追加免疫した。眼窩採血を13、28、55、76、95日目に実施し、血清中の天然型Cryj1特異的抗体価とrecCryj1/2特異的IgE抗体価を測定した。その結果、28、55、76日目の天然型Cryj1特異的IgE抗体価は、天然型Cryj1免疫マウスでは上昇したが、recCryj1/2タンパク質を免疫したマウスでは全く上昇せず、さらに81日目の水酸化アルミニュウムゲル・アジュバントと天然型Cryj1の免疫に対しても、天然型Cryj1特異的IgE抗体の上昇は94日目でほとんど認められなかった(図7)。しかしながら、76日目のrecCryj1/2特異的IgE抗体価は、recCryj1/2融合タンパク質を免疫したマウスで上昇していた(図8)。一方、28、55日目の天然型Cryj1特異的IgG1やIgG2a抗体価の上昇は、天然型Cryj1免疫マウスとrecCryj1/2免疫マウスの両方で認められた(図9)。
以上の結果から、recCryj1/2タンパク質は、天然型Cryj1特異的IgE抗体の産生を誘導しない、安全な減感作抗原になり得ることが示唆された。
BDF1マウス(雌、8週齢、チャールズリバー)に、水酸化アルミニュウムゲル・アジュバント(理化学研究所)2 mgに混合したスギ花粉由来精製Cryj1(天然型Cryj1;林原研究所)5μgを実験開始時(0日目)と14日目に腹腔内免疫した後、50日目に天然型Cryj1を1μg追加免疫した。この間、眼窩採血を14、29、57日目に実施し、血清中天然型Cryj1特異的IgE抗体を測定した。その後99日目に全マウスの天然型Cryj1特異的IgE抗体を測定し、抗体価の平均値が等しくなるようにマウスを3群(5匹1群)に分けた。106、113、120日目には各群のマウスの腹腔内に、recCryj1/2タンパク質(0.2μg)、recCryj1/2タンパク質(2μg)又は生理食塩水を3回投与し、さらに133日目に天然型Cryj1を1μg追加免疫した。眼窩採血を140、160日目に実施し、天然型Cryj1特異的IgE抗体価を測定した。その結果、recCryj1/2投与群では、投与後の天然型Cryj1特異的IgE抗体価(127日目)は生理食塩水投与群よりも上昇したが、その後の天然型Cryj1の追加免疫(133日目)後の天然型Cryj1特異的IgE抗体価(160日目)は、生理食塩水投与群で上昇したがrecCryj1/2投与群では逆に低下した(図10)。
以上の結果から、recCryj1/2タンパク質は、天然型Cryj1特異的IgE抗体価の上昇を抑制できる減感作抗原として利用できることが示唆された。
L-α-Phosphatidylcholine,dioleoyl (DOPC;和光純薬) 0.77 mgとCholesteryl 3β-N-(dimethylaminoethyl)carbonate hydrochloride(DC-Chol;Sigama-aldrich)0.83 mgと1,2-Distearoyl-sn-Glycero-3-Phosphoethanolamine-N- [Methoxy(Polyethylene glycol)-2000](Ammonium Salt) (PEG-PE; Avanti Polar Lipids) 0.029 mgをクロロホルム/メタノール(1:1)溶媒250μlに溶解した。また、α-ガラクトシルセラミド(独立行政法人理化学研究所免疫・アレルギー科学総合研究センターにて作製)0.16 mgは別にクロロホルム/メタノール(1:1)溶媒250μlに溶解した。次に、両者を混合しエバポレーターで乾固させた後、真空下のデシケーター内で一晩乾燥させた。次にrecCryj1/2タンパク質(実施例7)濃度が0.4mg/mlである水溶液を200μl添加し、超音波破砕装置にて10分間処理した後、ポアサイズ0.22μmの滅菌用メンブランを通過させた。次に、ポアサイズ100 nmのポリカーボネート膜を装着したLiposoFast-Basic extruder(Avestin Inc,)を、25回通過させることにより整粒した。Amicon Ultra-4 遠心フィルター(PL-100)(Millipore)を用いてrecCryj1/2を封入したリポソームの濃縮と精製水での洗浄によりリポソーム未封入recCryj1/2タンパク質の除去を行ない、最終的に精製水で800μl水溶液に調整した。このrecCryj1/2封入リポソーム(αGC-recCryj1/2リポソーム)を含む水溶液をSDS電気泳動で解析した結果、recCryj1/2タンパク質濃度は25 μg/mlであることが確認された。またα-GalCerが全てリポソーム膜に取り込まれたと想定し、Lipo-αGC+Cry j1溶液中のα-GalCer最終濃度を200μg/mlとした。
天然型Cryj1 (5μg/マウス, 生化学工業) と水酸化アルミニュウムゲル (2 mg/マウス) で2回感作したBDF1マウスに、天然型Cryj1 (1μg/マウス, 生化学工業)を追加免疫した後、αGC−recCry j1/2−リポソーム(αGC: 2μg,recCry j1/2: 0.5μg/マウス)、αGC−リポソーム(αGC: 2μg/マウス)又はリポソーム単体を、感作から105日、112日、119日目の3回腹腔内に投与し、126日目に天然型Cryj1 (1μg/マウス) で二回目の追加免疫を行った。感作前、感作後14日、28日、56日、98日、126日、140日、160日目に採血し、血清中の抗Cryj1-IgE抗体をELISAで測定した。その結果、αGC−リポソームまたはαGC−recCryj1/2−リポソームを投与した群では、リポソーム単体を投与した陰性対照に比べて投与後の血中IgE抗体価の減少が顕著でかつ、二回目の追加免疫後の三次的IgE抗体産生の上昇も抑制されていた(αGC−recCryj1/2−リポソーム投与群の抑制効果は統計学的に有意)(図11)。以上の結果より、αGC−リポソームにはアレルギー発症後の高IgE抗体価を下げる治療効果が期待でき、さらにリポソーム内にアレルゲン性がない抗原を封入することによって、その効果をさらに増強できることが示唆された。
本発明の剤はまたスギ花粉抗原の融合タンパク質を含み得る。本発明の剤に含まれ得る融合タンパク質は、アナフィラキシー反応を生じ得ない安全なアレルゲンとなり得る、スギ花粉に起因するアナフィラキシー反応の程度を抑制し得る、スギ花粉抗原に特異的な免疫を十分に誘導し得る、全てのスギ花粉症患者におけるT細胞エピトープをカバーし得るという優れた効果を奏する。従って、本発明の剤は、スギ花粉症の新規減感作療法において、並びに/あるいは治療用ワクチン等の医薬として有用であり得る。
本出願は、2006年1月13日に日本で提出された特願2006−005658を基礎としており、その内容は本参照により本明細書中に援用される。
Claims (15)
- CD1dリガンド及び標的抗原を含む、内腔を有する薬物送達媒体を含有してなる、該標的抗原に起因する免疫疾患の予防又は治療剤。
- 標的抗原がアレルゲンであり、免疫疾患が該アレルゲンに起因するアレルギー疾患である請求項1記載の剤。
- 薬物送達媒体がリポソームである、請求項1記載の剤。
- CD1dリガンドがα−GalCerである、請求項1記載の剤。
- アレルゲンがスギ花粉抗原である、請求項2記載の剤。
- アレルゲンがCryj1成熟タンパク質及びCryj2成熟タンパク質の融合タンパク質である、請求項2記載の剤。
- 融合タンパク質において、Cryj1成熟タンパク質がCryj2成熟タンパク質よりもN末端側に存在する、請求項5記載の剤。
- CD1dリガンドがリポソーム膜内に包埋され、かつアレルゲンがリポソーム内腔に封入されている、請求項2記載の剤。
- 標的抗原が自己抗原である、請求項1記載の剤。
- スギ花粉抗原Cryj1タンパク質とCryj2タンパク質を含む融合タンパク質。
- 前記Cryj1タンパク質がCryj1成熟タンパク質であり、Cryj2タンパク質がCryj2成熟タンパク質である請求項10記載の融合タンパク質。
- Cryj1タンパク質とCryj2タンパク質が、直接又はペプチドリンカーを介して連結されている、請求項10記載の融合タンパク質。
- Cryj1タンパク質がN末端側に、Cryj2成熟タンパク質がC末端側に存在する、請求項10記載の融合タンパク質。
- 請求項1〜9のいずれかに記載の免疫疾患の予防又は治療剤の薬学的有効量をその治療を必要とする被験体に投与する工程を含む、免疫疾患の予防又は治療方法。
- 前記被験体がヒト免疫疾患患者である、請求項14記載の免疫疾患の予防又は治療方法。
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