JPS6385358A - 血中遊離型トリヨ−ドサイロニンの酵素免疫測定法 - Google Patents
血中遊離型トリヨ−ドサイロニンの酵素免疫測定法Info
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は血中遊離型トリヨードサイロニンの酵素免疫測
定法(EIA法)に関し、詳細には試料中に共存するサ
イロキシン結合グロブリン(TBG)及びアルブミン等
の影響を受けることなく血中f21IIff型トリヨー
ドサイロニンを特異的に且つ正確に測定する方法に関す
るものである。
定法(EIA法)に関し、詳細には試料中に共存するサ
イロキシン結合グロブリン(TBG)及びアルブミン等
の影響を受けることなく血中f21IIff型トリヨー
ドサイロニンを特異的に且つ正確に測定する方法に関す
るものである。
[従来の技術]
甲状腺ホルモンであるトリヨードサイロニン(以下、T
、と略称することがある)は血中に存在する場合、その
大部分はTBGあるいはアルブミンなどの甲状腺ホルモ
ン結合タンパクと結合し生理的に不活性な状態で存在し
、その状態での総T3の血中濃度は甲状腺機能が正常で
ありても(73分泌・生成量に変動がなくとも)、種々
の生理的・病的状態による甲状腺ホルモン結合タンパク
量の変動に伴なって変化する。従ってこのような影響を
受けずに生理活性のある遊離型T3濃度を正確に測定す
ることは甲状腺機能の現況を知る上で重要な意義がある
。
、と略称することがある)は血中に存在する場合、その
大部分はTBGあるいはアルブミンなどの甲状腺ホルモ
ン結合タンパクと結合し生理的に不活性な状態で存在し
、その状態での総T3の血中濃度は甲状腺機能が正常で
ありても(73分泌・生成量に変動がなくとも)、種々
の生理的・病的状態による甲状腺ホルモン結合タンパク
量の変動に伴なって変化する。従ってこのような影響を
受けずに生理活性のある遊離型T3濃度を正確に測定す
ることは甲状腺機能の現況を知る上で重要な意義がある
。
遊離型T、の測定法に関しては種々開発されており、夫
々一長一短を有している。従来法としては例えば平衡透
析法、限外濾過法、セファデックスゲル濾過法、ガスク
ロマトグラフィー法、カラム吸着クロマトグラフィー法
等が知られているが、いずれも技術的に複雑であり、ま
た臨床への適応性においても限られたものであった。
々一長一短を有している。従来法としては例えば平衡透
析法、限外濾過法、セファデックスゲル濾過法、ガスク
ロマトグラフィー法、カラム吸着クロマトグラフィー法
等が知られているが、いずれも技術的に複雑であり、ま
た臨床への適応性においても限られたものであった。
[発明が解決しようとする問題点]
この様な状況のもとで、近年、TBGと結合しない性質
を有する放射性TsM導体を用いて遊離型T、の測定を
行なうといった比較的簡単な放射免疫測定法(RIA法
)も開発されるに至った(Annales d’ En
docr:nologie 1982;43:41A)
。
を有する放射性TsM導体を用いて遊離型T、の測定を
行なうといった比較的簡単な放射免疫測定法(RIA法
)も開発されるに至った(Annales d’ En
docr:nologie 1982;43:41A)
。
しかしながらこの方法においても、試料中に共存するア
ルブミンの濃度によって遊離型T、測定値が影響を受け
るという欠点は解消しきれていない、また放射性物質を
用いなければならないという繁雑さもある。
ルブミンの濃度によって遊離型T、測定値が影響を受け
るという欠点は解消しきれていない、また放射性物質を
用いなければならないという繁雑さもある。
このように従来から使用されている遊離型T3測定法は
、操作上の簡便さ、あるいは特異性のいずれかにおいて
完全とはいいがたい面を有しているのが実情である。即
ち甲状腺機能異常の診断においては、理論的には血中の
総T、濃度を測定するよりも遊離型T、を測定する方が
臨床診断上の価値が高いといわれながらも血中遊離型T
、測測定血中総T、測定にとりで代るほど浸透しない原
因となっていた。
、操作上の簡便さ、あるいは特異性のいずれかにおいて
完全とはいいがたい面を有しているのが実情である。即
ち甲状腺機能異常の診断においては、理論的には血中の
総T、濃度を測定するよりも遊離型T、を測定する方が
臨床診断上の価値が高いといわれながらも血中遊離型T
、測測定血中総T、測定にとりで代るほど浸透しない原
因となっていた。
本発明者らはこのような現状を憂慮し、現在量も汎用さ
れている「放射性T、誘導体を標識抗原とする遊離型T
3の測定法」において、TBGにもアルブミンにも結合
しない非放射性T3誘導体を用いれば試料中に共存する
TBGやアルブミンの影響を受けることのない簡便な遊
離型T、測定法を確立できるのではないかと考え、多数
の基礎実験を繰り返し、ここに本発明を完成するに至っ
た。
れている「放射性T、誘導体を標識抗原とする遊離型T
3の測定法」において、TBGにもアルブミンにも結合
しない非放射性T3誘導体を用いれば試料中に共存する
TBGやアルブミンの影響を受けることのない簡便な遊
離型T、測定法を確立できるのではないかと考え、多数
の基礎実験を繰り返し、ここに本発明を完成するに至っ
た。
即ち本発明は上記従来方法における技術的課題点を解決
するためになされたものであり、その目的とするところ
は、簡便迅速で且つ特異性のある血中遊離型T、の測定
法を提供することにある。
するためになされたものであり、その目的とするところ
は、簡便迅速で且つ特異性のある血中遊離型T、の測定
法を提供することにある。
[問題点を解決する為の手段]
上記目的を達成し得た本発明方法とは、トリヨードサイ
ロニンとβ−D−ガラクトシダーゼ等の酵素との結合体
よりなり、血液中のサイロキシン結合グロブリン(TB
G)&びアルブミンに対して不活性な標識抗原を使用し
、血中に存在する遊離型トリヨードサイロニンを測定す
る点に要旨を有する血中遊離型トリヨードサイロニンの
酵素免疫測定法である。
ロニンとβ−D−ガラクトシダーゼ等の酵素との結合体
よりなり、血液中のサイロキシン結合グロブリン(TB
G)&びアルブミンに対して不活性な標識抗原を使用し
、血中に存在する遊離型トリヨードサイロニンを測定す
る点に要旨を有する血中遊離型トリヨードサイロニンの
酵素免疫測定法である。
[作用]
本発明は上述の如く構成されるが、要はトリヨードサイ
ロニン(T、)と大分子量タンパクとの結合体を作製し
、該結合体を、抗T、抗体とは結合反応するが試料中に
共存するTBG及びアルブミンとは結合反応を起こさな
い標識抗原として用いるものである。即ちT3を大分子
量の酵素と結合させれば、そのまま酵素標識抗原として
EIA法に用いることが可能である。例えばT3と大分
子量タンパクであるβ−D−ガラクトシダーゼをマレイ
ミド法で結合させたT3−β−D−ガラクトシダーゼ結
合体は、抗T、抗体との間に抗原抗体反応を起こすが、
TBG1びアルブミンとは結合反応を起こさず、しかも
それ自体が酵素で標識されていることから、該結合体を
標識抗原として用いることによって、TBG及びアルブ
ミンに影響されない遊離型T、のEIA法を確立するこ
とがで診る。
ロニン(T、)と大分子量タンパクとの結合体を作製し
、該結合体を、抗T、抗体とは結合反応するが試料中に
共存するTBG及びアルブミンとは結合反応を起こさな
い標識抗原として用いるものである。即ちT3を大分子
量の酵素と結合させれば、そのまま酵素標識抗原として
EIA法に用いることが可能である。例えばT3と大分
子量タンパクであるβ−D−ガラクトシダーゼをマレイ
ミド法で結合させたT3−β−D−ガラクトシダーゼ結
合体は、抗T、抗体との間に抗原抗体反応を起こすが、
TBG1びアルブミンとは結合反応を起こさず、しかも
それ自体が酵素で標識されていることから、該結合体を
標識抗原として用いることによって、TBG及びアルブ
ミンに影響されない遊離型T、のEIA法を確立するこ
とがで診る。
尚T3と結合させる酵素としては前記β−D−ガラクト
シダーゼに限らず、その他の酵素であってもグルタルア
ルデヒド等の架橋剤による結合に際し大分子量T3−酵
素結合体を形成するものであれば用いることができ、こ
れによりTBGにもアルブミンにも結合しない標識抗原
を作製することができる。
シダーゼに限らず、その他の酵素であってもグルタルア
ルデヒド等の架橋剤による結合に際し大分子量T3−酵
素結合体を形成するものであれば用いることができ、こ
れによりTBGにもアルブミンにも結合しない標識抗原
を作製することができる。
[実施例]
以下、本発明を実施例によって更に詳細に説明するが、
下記実施例は本発明を限定するものではなく、前後記の
趣旨に徴して変更を加えることは、いずれも本発明の技
術的範囲に含まれるものである。
下記実施例は本発明を限定するものではなく、前後記の
趣旨に徴して変更を加えることは、いずれも本発明の技
術的範囲に含まれるものである。
(I)T3−β−D−ガラクトシダーゼ結合体(T3−
ガラクトシダーゼ結合体)の作製50μgのT3を溶解
させたジメチルホルムアミド溶を夜50μmと、10μ
gの4−(マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カ
ルボン酸サクシンイミドエステルを溶解させたジメチル
ホルムアミド溶液50μmとを混合し、30℃で90分
間インキュベート(5分毎に攪拌)した。次に、1mo
Il/42のグリシン溶液10μ皿を加え、T3−マレ
イミドを生成した。
ガラクトシダーゼ結合体)の作製50μgのT3を溶解
させたジメチルホルムアミド溶を夜50μmと、10μ
gの4−(マレイミドメチル)シクロヘキサン−1−カ
ルボン酸サクシンイミドエステルを溶解させたジメチル
ホルムアミド溶液50μmとを混合し、30℃で90分
間インキュベート(5分毎に攪拌)した。次に、1mo
Il/42のグリシン溶液10μ皿を加え、T3−マレ
イミドを生成した。
一方、β−D−ガラクトシダーゼ溶液(0,2mg/4
0IL)を2000gで5分間遠心分離し、生じたベレ
ットを、1 m mol/i、のMgCl2を含む0.
1 mol/j!リン酸M街液(pH7,0) 0.8
alに溶解させた。この溶液に前記T3−マレイミド溶
液150μ立を加えた後、30℃で30分間インキュベ
ートし、更にその全量を、1 m mol/JZのM
g C12とメルカプトエタノールを含むリン酸緩衝液
で平衡化したS ephacryl S −300(
1,5x 45 cm)カラムに通し、次いで同一緩衝
液で溶出して溶出液を1 m℃ずつ分画した。各分画液
(水で150倍希釈)50μmに、抗T3抗血清溶液(
10m3./Qの家兎IgG1液にて8000倍に希釈
したもの)を加え、4℃で一夜放置した。そして抗家兎
γ−グロブリン山羊抗血清を加えることによって、結合
型と遊離型とに分け、生じた沈殿物における酵素活性を
後述する分析手順で測定した。ピークの酵素活性を含む
6つの分画を集めてアジ化ナトリウムを加えたく最終的
な濃度;Ig/j2)。この様にして得られたT、−ガ
ラクトシダーゼ結合体は、4℃の保存で少なくとも1年
間は使用可能であった。
0IL)を2000gで5分間遠心分離し、生じたベレ
ットを、1 m mol/i、のMgCl2を含む0.
1 mol/j!リン酸M街液(pH7,0) 0.8
alに溶解させた。この溶液に前記T3−マレイミド溶
液150μ立を加えた後、30℃で30分間インキュベ
ートし、更にその全量を、1 m mol/JZのM
g C12とメルカプトエタノールを含むリン酸緩衝液
で平衡化したS ephacryl S −300(
1,5x 45 cm)カラムに通し、次いで同一緩衝
液で溶出して溶出液を1 m℃ずつ分画した。各分画液
(水で150倍希釈)50μmに、抗T3抗血清溶液(
10m3./Qの家兎IgG1液にて8000倍に希釈
したもの)を加え、4℃で一夜放置した。そして抗家兎
γ−グロブリン山羊抗血清を加えることによって、結合
型と遊離型とに分け、生じた沈殿物における酵素活性を
後述する分析手順で測定した。ピークの酵素活性を含む
6つの分画を集めてアジ化ナトリウムを加えたく最終的
な濃度;Ig/j2)。この様にして得られたT、−ガ
ラクトシダーゼ結合体は、4℃の保存で少なくとも1年
間は使用可能であった。
(TI)遊離型T、標準液
正常なヒト血清を活性炭処理して遊離型T、を含まない
血清を作製しくAmerlax F T3 RI A
キットで確認)、この血清に異なった量のT3を溶かし
て遊離型T、標準液を作製した。尚遊離型T3濃度は平
衡透析法によって検定した。
血清を作製しくAmerlax F T3 RI A
キットで確認)、この血清に異なった量のT3を溶かし
て遊離型T、標準液を作製した。尚遊離型T3濃度は平
衡透析法によって検定した。
(III)測定手順
(1)血中遊離型T、の酵素免疫測定法試料は希釈液で
希釈した。用いた希釈液はリン酸緩衝液(0,1mol
/ A 、pH7,0)であり、この緩衝を夜には12
当たり各々1 m molのMgC1□とメルカプトエ
タノール及び1gのゼラチンを含んでいる。そして標準
又は試験用の血清10μλに、T3−ガラクトシダーゼ
結合体溶液(50倍に希釈したもの)50μm、固定化
抗T3抗体の懸濁液(抗T、抗血清をポリスチレン微粒
子に吸着させたもの)50μ℃及び希釈液50μmを混
合した。そして試料を室温(約15〜22℃程度)で1
6時間インキュベートした。更に洗浄液(リン酸緩衝液
にTween20 、 1 g/JZ含ませたもの)を
加え、混合物を1000gで15分間遠心分離した。沈
殿物中におけるβ−D−ガラクトシダーゼの活性はシフ
リン(S hifrin)等の方法(A rch、
B iochem、 B 1ophys、 1969)
とほぼ同じ方法によって決定した。
希釈した。用いた希釈液はリン酸緩衝液(0,1mol
/ A 、pH7,0)であり、この緩衝を夜には12
当たり各々1 m molのMgC1□とメルカプトエ
タノール及び1gのゼラチンを含んでいる。そして標準
又は試験用の血清10μλに、T3−ガラクトシダーゼ
結合体溶液(50倍に希釈したもの)50μm、固定化
抗T3抗体の懸濁液(抗T、抗血清をポリスチレン微粒
子に吸着させたもの)50μ℃及び希釈液50μmを混
合した。そして試料を室温(約15〜22℃程度)で1
6時間インキュベートした。更に洗浄液(リン酸緩衝液
にTween20 、 1 g/JZ含ませたもの)を
加え、混合物を1000gで15分間遠心分離した。沈
殿物中におけるβ−D−ガラクトシダーゼの活性はシフ
リン(S hifrin)等の方法(A rch、
B iochem、 B 1ophys、 1969)
とほぼ同じ方法によって決定した。
生じた沈殿物は洗浄液で2度洗浄した後、IJ:L当た
り50μλのメタノールを含んだ0−ニトロフェニル−
β−D−ガラクトピラノジッドの1g/!l溶液を1
mJ2加え、懸濁させた。37℃で2時間インキュベ
ートした後、1000gで15分間遠心分離し、上澄液
における405nmでの吸光度を測定した。
り50μλのメタノールを含んだ0−ニトロフェニル−
β−D−ガラクトピラノジッドの1g/!l溶液を1
mJ2加え、懸濁させた。37℃で2時間インキュベ
ートした後、1000gで15分間遠心分離し、上澄液
における405nmでの吸光度を測定した。
(2)T3−β−D−ガラクトシダーゼ結合体のTBG
及びアルブミンに対する結合能 正常なヒト血清20μkに標識T、(+2s工標識T3
又はT3−ガラクトシダーゼ結合体或は+’sIi識T
s 84体) lt 12+II 1m識T B cr
ヲ200μm添加し、室温で20時間インキュベートし
た。次に抗TBG抗血清(120倍に希釈したもの)を
200μm加えた。次いで第2抗体を加えることにより
結合型と遊離型に分け、沈殿物における酵素活性度及び
放射活性度を測定した。標識T3のTBGに対する結合
能(%)は、+2Ji識TBGの沈殿率(%)から明ら
かにされる沈殿比率(40/100)を補正して算定し
た。
及びアルブミンに対する結合能 正常なヒト血清20μkに標識T、(+2s工標識T3
又はT3−ガラクトシダーゼ結合体或は+’sIi識T
s 84体) lt 12+II 1m識T B cr
ヲ200μm添加し、室温で20時間インキュベートし
た。次に抗TBG抗血清(120倍に希釈したもの)を
200μm加えた。次いで第2抗体を加えることにより
結合型と遊離型に分け、沈殿物における酵素活性度及び
放射活性度を測定した。標識T3のTBGに対する結合
能(%)は、+2Ji識TBGの沈殿率(%)から明ら
かにされる沈殿比率(40/100)を補正して算定し
た。
T3−ガラクトシダーゼ結合体、 1′I標識T3又は
+241 工標識誘導体に種々な量のアルブミンを加
えた後、固定化T、抗体の懸濁液に混合し、沈殿物の酵
素活性又は放射活性を測定した。
+241 工標識誘導体に種々な量のアルブミンを加
えた後、固定化T、抗体の懸濁液に混合し、沈殿物の酵
素活性又は放射活性を測定した。
(3)放射免疫測定法
遊離型T3の放射免疫測定は、アマレックス(Amer
lex) F T3 RI Aキットによった。
lex) F T3 RI Aキットによった。
(4)平衡透析法
平衡透析法による遊離型T3分画液の測定は、ニューマ
ン等の方法(J 、 CHn、 I nvest、19
67 ;46 : 1346−55)及びイングバール
等の方法(J 、 CIin、 I nvest、1
965 ; 44 : 1679−89)に準じて行な
った。T、のRIAキットによって測定された総T3濃
度に、遊離型T3比率を乗じて遊離型T3濃度を測定し
た。
ン等の方法(J 、 CHn、 I nvest、19
67 ;46 : 1346−55)及びイングバール
等の方法(J 、 CIin、 I nvest、1
965 ; 44 : 1679−89)に準じて行な
った。T、のRIAキットによって測定された総T3濃
度に、遊離型T3比率を乗じて遊離型T3濃度を測定し
た。
(5)アルブミンの測定法
血清アルブミン濃度は、TBA−8O3分析装置(東芝
製)を用い、ブロモクレゾール緑色染色法によって測定
した。
製)を用い、ブロモクレゾール緑色染色法によって測定
した。
(TV)被験者
・47人の患者から静脈血を採取した。内訳は18人が
甲状腺機能先進症、17人が甲状腺機能低下症、9人が
先天性TBG減少症、3人が先天性TBG増加症であっ
た。試料は、その他30人の正常な妊婦(年齢23〜2
9才)と31人の健常人(年齢22〜52才)から集め
た。尚上記30人の妊婦の内訳は、妊娠初期(第−期)
、中期(第二期)及び後期(第三期)の夫々に各10人
ずつであった。
甲状腺機能先進症、17人が甲状腺機能低下症、9人が
先天性TBG減少症、3人が先天性TBG増加症であっ
た。試料は、その他30人の正常な妊婦(年齢23〜2
9才)と31人の健常人(年齢22〜52才)から集め
た。尚上記30人の妊婦の内訳は、妊娠初期(第−期)
、中期(第二期)及び後期(第三期)の夫々に各10人
ずつであった。
(V)測定結果
(1)T3−ガラクトシダーゼ結合体におけるTBG及
びアルブミンに対する結合能 12s!標識T3におけるTBGに対する結合能は15
.4±0.3(平均値上標準偏差)%と算定される。こ
れに対して 12SI標識T3誘導体及びT、−ガラク
トシダーゼ結合体のTBGに対する結合能は、夫々0.
1±0.1%及び0.2±0.1%にすぎなかった。
びアルブミンに対する結合能 12s!標識T3におけるTBGに対する結合能は15
.4±0.3(平均値上標準偏差)%と算定される。こ
れに対して 12SI標識T3誘導体及びT、−ガラク
トシダーゼ結合体のTBGに対する結合能は、夫々0.
1±0.1%及び0.2±0.1%にすぎなかった。
アルブミンの最終濃度が35〜Bog/j2(正常の範
囲、後記第1図中破線で示す)となる様に加えたときに
は、128 I標識T3及び12B 1標識T、誘導体
の抗T、抗体に対する結合能の相違はいずれも8.0%
であった。これとは対照的に、T、−ガラクトシダーゼ
結合体の抗T3抗体に対する結合能の相違は、上記と同
様のアルブミン濃度の範囲で、1.6%に過ぎないこと
が分かった。
囲、後記第1図中破線で示す)となる様に加えたときに
は、128 I標識T3及び12B 1標識T、誘導体
の抗T、抗体に対する結合能の相違はいずれも8.0%
であった。これとは対照的に、T、−ガラクトシダーゼ
結合体の抗T3抗体に対する結合能の相違は、上記と同
様のアルブミン濃度の範囲で、1.6%に過ぎないこと
が分かった。
この結果を第1図に示す、尚第1図中日はアルブミン各
濃度に対応する抗体結合率、Boはアルブミン乎濃度の
時の抗体結合率をあられし、縦軸はその比B / B
oをとっている。
濃度に対応する抗体結合率、Boはアルブミン乎濃度の
時の抗体結合率をあられし、縦軸はその比B / B
oをとっている。
(2)標準曲線
第2図に典型的な標準曲線を示す。即ち第2図は遊離型
TsvA度と吸光度(4osnm)との関係を表わすグ
ラフである。6回の測定を繰り返し、零における吸光度
が95%の信頼限界で標準曲線と交差する点から求めら
れる最小検出濃度は0.7ng/IL(チューブ当たり
7 fg)であると計算された。この標準曲線によって
、血清中の遊離型T3の測定が0.7〜26ng/λの
範囲で可能であった。
TsvA度と吸光度(4osnm)との関係を表わすグ
ラフである。6回の測定を繰り返し、零における吸光度
が95%の信頼限界で標準曲線と交差する点から求めら
れる最小検出濃度は0.7ng/IL(チューブ当たり
7 fg)であると計算された。この標準曲線によって
、血清中の遊離型T3の測定が0.7〜26ng/λの
範囲で可能であった。
(3) Pii度
下記第1表に示す様に、血中遊離型T、を末法で測定し
た時の測定内における変動係数(CV)は4.0〜9.
0(平均6.1)%であり、測定間におけるCVは7.
5〜11.5 (平均9.5)%であった。
た時の測定内における変動係数(CV)は4.0〜9.
0(平均6.1)%であり、測定間におけるCVは7.
5〜11.5 (平均9.5)%であった。
第 1 表
(4)他の方法との比較
本発明方法の酵素免疫測定法によフて測定される各種血
清中の遊離型T、濃度は、第3図(1)に示す様に平衡
透析法によって測定される遊離型T、濃度と良好な相間
々係が認められた。又本発明の酵素免疫測定と放射免疫
測定法(A merlexのT、測定キットによる)と
による遊離型T3濃度の相間々係においても、第3図(
2)に示す様に同様の傾向が認められた。
清中の遊離型T、濃度は、第3図(1)に示す様に平衡
透析法によって測定される遊離型T、濃度と良好な相間
々係が認められた。又本発明の酵素免疫測定と放射免疫
測定法(A merlexのT、測定キットによる)と
による遊離型T3濃度の相間々係においても、第3図(
2)に示す様に同様の傾向が認められた。
(5)各種被験者における遊離型T、濃度第4図は、各
種被験者における血清中の遊離型T3濃度を示すグラフ
である。31人の健常人から得られた血清中における、
酵素免疫測定法による平均遊離型T3濃度は5.4ng
/uであり、正常範囲は1.9〜8.9B/JZであっ
た。第4図から明らかであるが、18人の甲状腺機能先
進症患者における血清中の遊離型T3濃度は、11.5
〜26 ng/ 11以上と高い値を示している。また
17人の甲状腺機能低下症患者における血清中の遊離型
T3濃度は、0.7〜4.7ng/uを示し、正常値と
同じ程度かいくらか低い値を示していた。更に、9人の
先天性TBG減少症患者及び3人の先天性TBG増加症
患者における血清中の遊離T3t14度は、夫々2.4
〜7.6ng#l及び4.2〜[i、ting/fLの
値を示し、正常値の範囲内であった。一方30人の正常
な妊婦における遊離T、濃度は正常値の範囲内(3,2
〜7.2ng/u )であった。
種被験者における血清中の遊離型T3濃度を示すグラフ
である。31人の健常人から得られた血清中における、
酵素免疫測定法による平均遊離型T3濃度は5.4ng
/uであり、正常範囲は1.9〜8.9B/JZであっ
た。第4図から明らかであるが、18人の甲状腺機能先
進症患者における血清中の遊離型T3濃度は、11.5
〜26 ng/ 11以上と高い値を示している。また
17人の甲状腺機能低下症患者における血清中の遊離型
T3濃度は、0.7〜4.7ng/uを示し、正常値と
同じ程度かいくらか低い値を示していた。更に、9人の
先天性TBG減少症患者及び3人の先天性TBG増加症
患者における血清中の遊離T3t14度は、夫々2.4
〜7.6ng#l及び4.2〜[i、ting/fLの
値を示し、正常値の範囲内であった。一方30人の正常
な妊婦における遊離T、濃度は正常値の範囲内(3,2
〜7.2ng/u )であった。
(6)正常な妊婦における遊離型T、及びアルブミンの
濃度 下記第2表から明らかな様に、(表中の数値は平均値主
標準偏差を示す)、放射免疫測定法によって測定された
遊離型T、濃度は妊娠の進行につれて低くなっているの
がよく分かる。これに対し、酵素免疫測定法又は平衡透
析法によって測定した場合には、妊娠期間中を通して遊
離型Tsfa度に何らの変化は認められなかった。さて
血清アルブミン濃度をみると、妊娠の進行につれて低く
なってゆくのが明らかである。
濃度 下記第2表から明らかな様に、(表中の数値は平均値主
標準偏差を示す)、放射免疫測定法によって測定された
遊離型T、濃度は妊娠の進行につれて低くなっているの
がよく分かる。これに対し、酵素免疫測定法又は平衡透
析法によって測定した場合には、妊娠期間中を通して遊
離型Tsfa度に何らの変化は認められなかった。さて
血清アルブミン濃度をみると、妊娠の進行につれて低く
なってゆくのが明らかである。
放射免疫測定法によって測定された遊離型T3濃度は、
第5図(1)に示す様に血清アルブミン濃度と強い相間
々係があった。しかしながら、対照的に、酵素免疫測定
法や平衡透析法によって求められた遊離型T3濃度は、
夫々第5図(2) 、 (3)に示す様に、血清アルブ
ミン濃度とはほとんど関係がなかった。
第5図(1)に示す様に血清アルブミン濃度と強い相間
々係があった。しかしながら、対照的に、酵素免疫測定
法や平衡透析法によって求められた遊離型T3濃度は、
夫々第5図(2) 、 (3)に示す様に、血清アルブ
ミン濃度とはほとんど関係がなかった。
[発明の効果]
上述のように本発明の血中遊離型トリヨードサイロニン
の測定法は、トリヨードサイロニンとβ−D−ガラクト
シダーゼ等の酵素との結合体よりなり、血液中のサイロ
キシン結合グロブリンおよびアルブミンに結合しない標
識抗原を使用して酵素免疫法により血液中の遊離型トリ
ヨードサイロニンを測定する方法であるため、試料中の
共存成分の影響を受けることなく、また特別な熟練を必
要とせず、簡便迅速で且つ感度良く測定することができ
、甲状腺機能の正確な判定に効果がある。
の測定法は、トリヨードサイロニンとβ−D−ガラクト
シダーゼ等の酵素との結合体よりなり、血液中のサイロ
キシン結合グロブリンおよびアルブミンに結合しない標
識抗原を使用して酵素免疫法により血液中の遊離型トリ
ヨードサイロニンを測定する方法であるため、試料中の
共存成分の影響を受けることなく、また特別な熟練を必
要とせず、簡便迅速で且つ感度良く測定することができ
、甲状腺機能の正確な判定に効果がある。
第1図はアルブミン濃度と抗体結合T、との関係を従来
法及び本発明方法について示したグラフ、第2図は遊離
型T、濃度と吸光度との関係を示す標準曲線のグラフ、
第3図(1)は酵素免疫測定法と平衡透析法によって測
定される遊離型T3の相間々係を示すグラフ、第3図(
2)は酵素免疫測定法と放射免疫測定法の夫々によって
測定される遊離型T3濃度の相間々係を示すグラフ、第
4図は各種被験者の血中遊離型T3濃度を示すグラフ、
第5図は各種測定法によって測定された遊離型T3濃度
と血清中のアルブミン濃度との関係を示すグラフである
。 第1図 アルブミン濃度Cg/e)
法及び本発明方法について示したグラフ、第2図は遊離
型T、濃度と吸光度との関係を示す標準曲線のグラフ、
第3図(1)は酵素免疫測定法と平衡透析法によって測
定される遊離型T3の相間々係を示すグラフ、第3図(
2)は酵素免疫測定法と放射免疫測定法の夫々によって
測定される遊離型T3濃度の相間々係を示すグラフ、第
4図は各種被験者の血中遊離型T3濃度を示すグラフ、
第5図は各種測定法によって測定された遊離型T3濃度
と血清中のアルブミン濃度との関係を示すグラフである
。 第1図 アルブミン濃度Cg/e)
Claims (1)
- トリヨードサイロニンとβ−D−ガラクトシダーゼ等の
酵素との結合体よりなり、血液中のサイロキシン結合グ
ロブリン及びアルブミンに対して不活性な標識抗原を使
用し、血中に存在する遊離型トリヨードサイロニンを測
定することを特徴とする血中遊離型トリヨードサイロニ
ンの酵素免疫測定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23092586A JPS6385358A (ja) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | 血中遊離型トリヨ−ドサイロニンの酵素免疫測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23092586A JPS6385358A (ja) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | 血中遊離型トリヨ−ドサイロニンの酵素免疫測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6385358A true JPS6385358A (ja) | 1988-04-15 |
Family
ID=16915430
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP23092586A Pending JPS6385358A (ja) | 1986-09-29 | 1986-09-29 | 血中遊離型トリヨ−ドサイロニンの酵素免疫測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6385358A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6143575A (en) * | 1994-11-12 | 2000-11-07 | Dade Behring Marburg Gmbh | Heterogeneous immunoassay using a precipitable solid phase |
JP2007326144A (ja) * | 2006-06-09 | 2007-12-20 | Kurosaki Harima Corp | 浸漬ノズル |
US7641081B2 (en) | 2007-12-10 | 2010-01-05 | Krosakiharima Corporation | Immersion nozzle |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS53115813A (en) * | 1977-03-15 | 1978-10-09 | Snam Progetti | Quantitative determination of content of triiodo thironine |
-
1986
- 1986-09-29 JP JP23092586A patent/JPS6385358A/ja active Pending
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS53115813A (en) * | 1977-03-15 | 1978-10-09 | Snam Progetti | Quantitative determination of content of triiodo thironine |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6143575A (en) * | 1994-11-12 | 2000-11-07 | Dade Behring Marburg Gmbh | Heterogeneous immunoassay using a precipitable solid phase |
JP2007326144A (ja) * | 2006-06-09 | 2007-12-20 | Kurosaki Harima Corp | 浸漬ノズル |
US7641081B2 (en) | 2007-12-10 | 2010-01-05 | Krosakiharima Corporation | Immersion nozzle |
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