JPS6349086A - ストレプトミセテスプラスミドでの色素マ−カ− - Google Patents
ストレプトミセテスプラスミドでの色素マ−カ−Info
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- JPS6349086A JPS6349086A JP62202585A JP20258587A JPS6349086A JP S6349086 A JPS6349086 A JP S6349086A JP 62202585 A JP62202585 A JP 62202585A JP 20258587 A JP20258587 A JP 20258587A JP S6349086 A JPS6349086 A JP S6349086A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/74—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora
- C12N15/76—Vectors or expression systems specially adapted for prokaryotic hosts other than E. coli, e.g. Lactobacillus, Micromonospora for Actinomyces; for Streptomyces
-
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- C12N15/65—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression using markers
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
遺伝子melは、チロシナーゼをコードし、したがって
中間産物を経て着色物質メラニン産生の要因となるので
、現在は、ストレプトミセスでのクローニングのための
色素(cofor)マーカーとして知られている(E、
KaLz eL al、、J、Gen。
中間産物を経て着色物質メラニン産生の要因となるので
、現在は、ストレプトミセスでのクローニングのための
色素(cofor)マーカーとして知られている(E、
KaLz eL al、、J、Gen。
Microbiol、I29:2703.1983 )
、この遺伝子は、例えばJohn Innes
Foundation(Norwich、Englan
d )から得られる市販のプラスミドplJ702に
も含まれており、それについての記載は例えば″Gen
etic Manipulation of 5tre
ptoa+yces −ALaboratory Ma
nual ’ (D、A、IIopwood et
al、、TheJohn 1anes Foundat
ion、1985)の292ページ以下にみられる。し
かしながら、このマーカーは、産生された着色物質が周
囲の培地に拡散してしまうという欠点がある。
、この遺伝子は、例えばJohn Innes
Foundation(Norwich、Englan
d )から得られる市販のプラスミドplJ702に
も含まれており、それについての記載は例えば″Gen
etic Manipulation of 5tre
ptoa+yces −ALaboratory Ma
nual ’ (D、A、IIopwood et
al、、TheJohn 1anes Foundat
ion、1985)の292ページ以下にみられる。し
かしながら、このマーカーは、産生された着色物質が周
囲の培地に拡散してしまうという欠点がある。
ストレブトミセテスで発現し、培地中に濃厚な深青色又
は黒色の着色を生じ、しかも固形培地に於ては殆んど拡
散しない色素マーカーか見出された。このマーカーをイ
ンアクチベーションマーカーとして使用すれば、きわめ
て低頻度で生じる事象についても検出が可能となる。
は黒色の着色を生じ、しかも固形培地に於ては殆んど拡
散しない色素マーカーか見出された。このマーカーをイ
ンアクチベーションマーカーとして使用すれば、きわめ
て低頻度で生じる事象についても検出が可能となる。
本発明は、ストレプトミセス・ケリカラー(Strep
toa+yces coel 1color) D S
M 3030の全DNAをBamHIで切断し、約5
.5kbの大きさのフラグメントを分離、着色物質産生
について選別して得られる、ストレブトミセテスの青色
着色物質をコードする遺伝子に関するものである。
toa+yces coel 1color) D S
M 3030の全DNAをBamHIで切断し、約5
.5kbの大きさのフラグメントを分離、着色物質産生
について選別して得られる、ストレブトミセテスの青色
着色物質をコードする遺伝子に関するものである。
この遺伝子は、第1図に示した制限地図により詳細に特
徴づけられている。出発株のストレプトミセス・ケリカ
ラーDSM3030は、ヨーロッパ特許出願公開第01
81562号明細書中にバクテリア溶解酵素産生菌とし
て述べられている。
徴づけられている。出発株のストレプトミセス・ケリカ
ラーDSM3030は、ヨーロッパ特許出願公開第01
81562号明細書中にバクテリア溶解酵素産生菌とし
て述べられている。
本発明は、さらに、ストレプトミセテスプラスミドのマ
ーカーとして、特にインアクチベーションマーカーとし
て、本発明に従ってこの遺伝子を使用することに関する
ものである。
ーカーとして、特にインアクチベーションマーカーとし
て、本発明に従ってこの遺伝子を使用することに関する
ものである。
本発明のさらに詳細な様相及び好ましい具体例は、以下
の記述及び本特許請求の範囲から明らかである。
の記述及び本特許請求の範囲から明らかである。
マーカー遺伝子を分離するために、ストレプトミセスφ
ケリカラーDSM3030の全DNAを制限酵素Bam
HIで切断して分離し、適切なベクターでショットガン
・クローニングを行ない、ストレブトミセテスの当該ベ
クター受容法を形質転換し、着色物質の産生について選
別を行なう。
ケリカラーDSM3030の全DNAを制限酵素Bam
HIで切断して分離し、適切なベクターでショットガン
・クローニングを行ない、ストレブトミセテスの当該ベ
クター受容法を形質転換し、着色物質の産生について選
別を行なう。
陽性クローンは、DSM3030からのおよそ5.5k
bの大きさのDNAフラグメントを含む。
bの大きさのDNAフラグメントを含む。
野性法でつくられる水溶性染色物質とくらべて、本発明
によってつくられる青色着色物質は水に不溶で、しかも
水中に容易に拡散しうる。第2図は、水性培養上清のU
V吸収スペクトラムを示す。最大吸収は660nmにあ
り最少吸収は460nmにある。コロニーは、着色物質
の濃度が高いので殆んど黒色にみえる。固形培地では大
部分の;色物質は菌糸体に結合したままであり、はんの
わずかが培地中に拡散する。顕微鏡下での様相は特徴的
である。すなわち、着色物質は菌糸体上のしっかりと包
みこまれた球状体に存在し、その結果コロニーは殆んど
黒色にみえる。液体培地では(トリプシン分解大豆ブロ
ース、“Lysis 、1edlu■A”、ヨーロッパ
特許出願公開第0158872号明細書、第6ページ)
、深青色の培養上清はおよそ3目後にえられる。固形培
地でも又、芒色物質の産生は使用培地にかかわりなく生
じる。(“R2YE”(ilopwood ct al
、、上掲書)、胞子形成培地(ドイツ公開公報第333
1860号明細書、例1、第3培地)、“Pcnass
ay” 、抗生物質添加” Pcn−assay”)。
によってつくられる青色着色物質は水に不溶で、しかも
水中に容易に拡散しうる。第2図は、水性培養上清のU
V吸収スペクトラムを示す。最大吸収は660nmにあ
り最少吸収は460nmにある。コロニーは、着色物質
の濃度が高いので殆んど黒色にみえる。固形培地では大
部分の;色物質は菌糸体に結合したままであり、はんの
わずかが培地中に拡散する。顕微鏡下での様相は特徴的
である。すなわち、着色物質は菌糸体上のしっかりと包
みこまれた球状体に存在し、その結果コロニーは殆んど
黒色にみえる。液体培地では(トリプシン分解大豆ブロ
ース、“Lysis 、1edlu■A”、ヨーロッパ
特許出願公開第0158872号明細書、第6ページ)
、深青色の培養上清はおよそ3目後にえられる。固形培
地でも又、芒色物質の産生は使用培地にかかわりなく生
じる。(“R2YE”(ilopwood ct al
、、上掲書)、胞子形成培地(ドイツ公開公報第333
1860号明細書、例1、第3培地)、“Pcnass
ay” 、抗生物質添加” Pcn−assay”)。
青色着色物質はコロニー発育の開始時点に於てすら形成
されるので、二次代謝産物でないことは明白である。
されるので、二次代謝産物でないことは明白である。
第1図に示されているこの5.5kbフラグメントは、
サブクローニングに適切な多くの切断部位をHする。こ
のフラグメントは、制限酵素Bcl’lSBglII、
Hindm、Hpal。
サブクローニングに適切な多くの切断部位をHする。こ
のフラグメントは、制限酵素Bcl’lSBglII、
Hindm、Hpal。
EcoRI、EcoRV及びC1alについては切断部
位をもたず、Ss tII及びPvuI[については4
ケ所より多い切断部位をもつ。
位をもたず、Ss tII及びPvuI[については4
ケ所より多い切断部位をもつ。
クローニング実験のための適切な宿主株は、すべてのこ
れまで検討されたストレブトミセテスの種のものである
。もっとも、産生される着色物質の量は種の違いによっ
てだけでなく、株の違いによっても変化する。しかしな
がら、着色が濃厚であることから、本発明によるこのマ
ーカー系は、発現のより少ない株に於ても非常に適して
いる。
れまで検討されたストレブトミセテスの種のものである
。もっとも、産生される着色物質の量は種の違いによっ
てだけでなく、株の違いによっても変化する。しかしな
がら、着色が濃厚であることから、本発明によるこのマ
ーカー系は、発現のより少ない株に於ても非常に適して
いる。
上に述べた利点により、本発明のマーカーは一般的にク
ローニング実験のためだけでなく、特にストレブトミセ
テス(これは、他の代謝産物と同様に抗生物質の重要な
産生菌であることが知られているものである)に於る代
謝経路を追跡するためにも適切である。
ローニング実験のためだけでなく、特にストレブトミセ
テス(これは、他の代謝産物と同様に抗生物質の重要な
産生菌であることが知られているものである)に於る代
謝経路を追跡するためにも適切である。
本発明は、下記の実験例に於て詳細に説明されている。
特に記載がなければ、これらの実験では、百分率及び割
合は重量によるものである。
合は重量によるものである。
図は、ポリリンカー領域をのぞいて実際の大きさを示し
ている。
ている。
例1:ベクターpGM4の調製
プラスミドpGM1(ヨーロッパ特許出願公開第015
8872号明細書中の第2図)をSst■で部分消化し
て、3.Okb大のフラグメントを得る。プラスミドp
sLE16 (ヨーロッパ特許出願公開第015820
1号明細書中の第18図)をSs tIIで切断して、
ネオマイシン耐性遺伝子aphlを含んでいるlkbの
フラグメントを得る。この2つのフラグメントの連結に
より、プラスミドpGM3 (第3図)ができる。
8872号明細書中の第2図)をSst■で部分消化し
て、3.Okb大のフラグメントを得る。プラスミドp
sLE16 (ヨーロッパ特許出願公開第015820
1号明細書中の第18図)をSs tIIで切断して、
ネオマイシン耐性遺伝子aphlを含んでいるlkbの
フラグメントを得る。この2つのフラグメントの連結に
より、プラスミドpGM3 (第3図)ができる。
さらに、psLE41 (、ヨーロッパ特許出願第A2
0158201号明細書の第20図)をBclIで切
断して、lkbフラグメントを分離する。このフラグメ
ントの突出末端は、クレノウボリメラーゼで埋填する。
0158201号明細書の第20図)をBclIで切
断して、lkbフラグメントを分離する。このフラグメ
ントの突出末端は、クレノウボリメラーゼで埋填する。
p G M 3を今度はpvuIIで切断して、0.3
kbフラグメントを除く。残存のプラスミドを、平滑末
端としておいたBcllフラグメントと連結して、プラ
スミドpGM4 (第4図)を生成させる。
kbフラグメントを除く。残存のプラスミドを、平滑末
端としておいたBcllフラグメントと連結して、プラ
スミドpGM4 (第4図)を生成させる。
例2:ジーンバンクの調製
ストレプトミセス・ケリカラーDSM3030を溶菌し
、既知方法でDNAを分離する。このDNAをBamH
Iで完全に消化する。プラスミドpGM4(第4図)を
BamHIで切断し、アルカリフォスファターゼで処理
し、上記のBamHIフラグメントと連結する。この方
法で得られるプラスミドの集団で受容菌株ストレプトミ
セスψリビダンスT K 2 B (Jotln In
nes Foundationより得ることができる)
を形質転換する。上記の連結混合物1μgを使用したと
き、およそ20000個のチオストレプトン耐性形質転
換細胞が得られる。そのうちの80%がネオマイシンに
感受性があり、従って挿入部を含んでいる。
、既知方法でDNAを分離する。このDNAをBamH
Iで完全に消化する。プラスミドpGM4(第4図)を
BamHIで切断し、アルカリフォスファターゼで処理
し、上記のBamHIフラグメントと連結する。この方
法で得られるプラスミドの集団で受容菌株ストレプトミ
セスψリビダンスT K 2 B (Jotln In
nes Foundationより得ることができる)
を形質転換する。上記の連結混合物1μgを使用したと
き、およそ20000個のチオストレプトン耐性形質転
換細胞が得られる。そのうちの80%がネオマイシンに
感受性があり、従って挿入部を含んでいる。
例3:マーカー遺伝子の分離
濃厚な青黒色の形質転換細胞コロニーを分離して、これ
らのクローンからプラスミドDNAを分離した。続いて
、ストレプトミセス−リビダンスTK23を再びこのD
NAで形質転換すると、青黒色のコロニーのみが生じた
。
らのクローンからプラスミドDNAを分離した。続いて
、ストレプトミセス−リビダンスTK23を再びこのD
NAで形質転換すると、青黒色のコロニーのみが生じた
。
このプラスミドDNAの特徴をしらべると、5.5kb
のBamHIフラグメント(この特徴は第1図に示され
ている)が、pGM4のaphI遺伝子中に挿入されて
いた。このプラスミドを、pGM98と呼んだ。
のBamHIフラグメント(この特徴は第1図に示され
ている)が、pGM4のaphI遺伝子中に挿入されて
いた。このプラスミドを、pGM98と呼んだ。
例4:他のストレプトミセス種の形質転換プラスミドp
GM98は、S、prasinus (D S M40
099 ) 、S、viridochromogcne
s (D S M40736−DSM4112)及び
S、ghanacnsis(DSM2932、ATCC
14672)の様々の株を形質転換した。着色物質の形
成は、すべての株でみとめられた。しかしこの石仏物質
形成は、s、pras+nusに於てS、 I 1vi
dansに於けるよりもいくタナなく 、S、ghan
acnsisよりもいく分強かった。
GM98は、S、prasinus (D S M40
099 ) 、S、viridochromogcne
s (D S M40736−DSM4112)及び
S、ghanacnsis(DSM2932、ATCC
14672)の様々の株を形質転換した。着色物質の形
成は、すべての株でみとめられた。しかしこの石仏物質
形成は、s、pras+nusに於てS、 I 1vi
dansに於けるよりもいくタナなく 、S、ghan
acnsisよりもいく分強かった。
いずれの場合に於ても、プラスミドの損失はみとめられ
なかった。
なかった。
プラスミドpGM98は又S、coel [color
D S M3030を形質転換した。この場合、着色物
質の形成は直ちに開始した。一方、最初の株(野性株)
に於ては、三日経過以前には着色物質の形成はみとめら
れない。さらに、着色物質の産生は培地上にも生じるが
、野性株では培地上には青色着色物質は生じない。
D S M3030を形質転換した。この場合、着色物
質の形成は直ちに開始した。一方、最初の株(野性株)
に於ては、三日経過以前には着色物質の形成はみとめら
れない。さらに、着色物質の産生は培地上にも生じるが
、野性株では培地上には青色着色物質は生じない。
第1図は、本発明による遺伝子の制限地図である。
第2図は、水性培養上清のUV吸収スペクトラムを示す
図である。 第3図は、プラスミドpGM3の制限地図である。 第4図は、プラスミドpGM4の制限地図である。
図である。 第3図は、プラスミドpGM3の制限地図である。 第4図は、プラスミドpGM4の制限地図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、ストレプトミセス・ケリカラー(Strep−to
mycescoelicolor)DSM3030の全
DNAをBamHIで切断し、約5.5kbの大きさの
フラグメントをクローニングし、着色物質産生について
選別を行なって得られる、ストレプトミセテスの青色着
色物質をコードする遺伝子。 2、第1図に示した制限地図であらわされる、特許請求
の範囲第1項に記載した遺伝子。 3、特許請求の範囲第1項または第2項に記載した遺伝
子のストレプトミセテスプラスミドのマーカーとしての
使用。 4、特許請求の範囲第1項または第2項に記載した遺伝
子のストレプトミセテスプラスミドのインアクチベーシ
ョンマーカーとしての使用。 5、特許請求の範囲第1項または第2項に記載した遺伝
子で得られる、青色着色物質。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3627405.4 | 1986-08-13 | ||
DE19863627405 DE3627405A1 (de) | 1986-08-13 | 1986-08-13 | Farbmarker in streptomyceten-plasmiden |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6349086A true JPS6349086A (ja) | 1988-03-01 |
Family
ID=6307275
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62202585A Pending JPS6349086A (ja) | 1986-08-13 | 1987-08-13 | ストレプトミセテスプラスミドでの色素マ−カ− |
Country Status (15)
Country | Link |
---|---|
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EP (1) | EP0257417B1 (ja) |
JP (1) | JPS6349086A (ja) |
AT (1) | ATE76101T1 (ja) |
AU (1) | AU595917B2 (ja) |
CA (1) | CA1288070C (ja) |
DE (2) | DE3627405A1 (ja) |
DK (1) | DK420787A (ja) |
ES (1) | ES2032411T3 (ja) |
FI (1) | FI873482A (ja) |
GR (1) | GR3005327T3 (ja) |
HU (1) | HU204304B (ja) |
IL (1) | IL83508A (ja) |
NO (1) | NO873386L (ja) |
PT (1) | PT85526B (ja) |
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CN1321119C (zh) * | 2003-01-17 | 2007-06-13 | 华东理工大学 | λ-放线紫素及其制备方法 |
Family Cites Families (2)
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DE3440735A1 (de) * | 1984-11-08 | 1986-05-15 | Hoechst Ag, 6230 Frankfurt | Bakterienlysierendes enzymprodukt aus streptomyceten, verfahren zu seiner herstellung und dafuer geeigneter stamm |
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- 1987-08-12 IL IL83508A patent/IL83508A/xx not_active IP Right Cessation
- 1987-08-12 HU HU873646A patent/HU204304B/hu unknown
- 1987-08-13 JP JP62202585A patent/JPS6349086A/ja active Pending
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ATE76101T1 (de) | 1992-05-15 |
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HU204304B (en) | 1991-12-30 |
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