JPS6314946B2 - - Google Patents
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- JPS6314946B2 JPS6314946B2 JP59248201A JP24820184A JPS6314946B2 JP S6314946 B2 JPS6314946 B2 JP S6314946B2 JP 59248201 A JP59248201 A JP 59248201A JP 24820184 A JP24820184 A JP 24820184A JP S6314946 B2 JPS6314946 B2 JP S6314946B2
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- csf
- medium
- cell
- culture
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、新規なヒト肺癌組織の細胞から株化
されたヒトコロニー形成刺激因子（Human
Colony−stimulating faotor；以下単に、ｈ−
CSFと略す）産生細胞株TLC−7Nに関する。更
に本発明においては細胞株TLC−7Nの大量培養
によるｈ−CSFの工業的量産法を確立し、それに
よつて得られたｈ−CSFを医薬ならびに疾病の診
断に応用することを目的とした有用な技術分野に
関するものである。
されたヒトコロニー形成刺激因子（Human
Colony−stimulating faotor；以下単に、ｈ−
CSFと略す）産生細胞株TLC−7Nに関する。更
に本発明においては細胞株TLC−7Nの大量培養
によるｈ−CSFの工業的量産法を確立し、それに
よつて得られたｈ−CSFを医薬ならびに疾病の診
断に応用することを目的とした有用な技術分野に
関するものである。
ｈ−CSFは、骨髄系幹細胞に由来する白血球に
分類される顆粒球やマクロフアージ系幹細胞に作
用して成熟した白血球に分化させる体液性因子と
して知られている〔Journal of Immuno−
logical Methods、42、253−284（1981）等〕。
分類される顆粒球やマクロフアージ系幹細胞に作
用して成熟した白血球に分化させる体液性因子と
して知られている〔Journal of Immuno−
logical Methods、42、253−284（1981）等〕。
またｈ−CSFは、骨髄系幹細胞を顆粒球やマク
ロフアージ等の白血球に分化誘導せしめる作用を
有することから、例えば癌患者等の白血球減少に
対する治療薬または種々の感染症の予防薬として
有用な生理活性物質である。さらにｈ−CSFは、
インビトロ生成量に起因するｈ−CSF増多症およ
び減少症の診断用試薬としても有用なものであ
る。
ロフアージ等の白血球に分化誘導せしめる作用を
有することから、例えば癌患者等の白血球減少に
対する治療薬または種々の感染症の予防薬として
有用な生理活性物質である。さらにｈ−CSFは、
インビトロ生成量に起因するｈ−CSF増多症およ
び減少症の診断用試薬としても有用なものであ
る。
そのため、従来ではヒトの尿またはヒト胎盤の
培養上清を原料として採取していたが、原料に制
限があり、また常に一定のｈ−CSF活性を有する
標品を得ることが困難であつた。それ故ｈ−CSF
の有用性が期待されているにもかかわらず、純度
の高いｈ−CSFを大量に製造することが困難であ
り、未だに医薬品ならびに診断薬として実用化さ
れていない状況である。
培養上清を原料として採取していたが、原料に制
限があり、また常に一定のｈ−CSF活性を有する
標品を得ることが困難であつた。それ故ｈ−CSF
の有用性が期待されているにもかかわらず、純度
の高いｈ−CSFを大量に製造することが困難であ
り、未だに医薬品ならびに診断薬として実用化さ
れていない状況である。
本発明において、白血球の一つである顆粒球の
減少症の治療薬またはｈ−CSFの増多症および減
少症の診断用試薬としてｈ−CSFを大量に製造す
るためにヒト由来のCSF産生細胞について長期間
鋭意研究した結果、ヒト肺癌組織由来の細胞から
ｈ−CSF産生能を有する細胞を新たに単離して継
代培養を継続し、遂に、無限に継代培養し得る株
化細胞の樹立に成功した。この株化細胞はTLC
−7Nと命名され、現在までに94回の継代培養を
行つたが、細胞形態、細胞増殖性、ｈ−CSF生産
性、ポピレイシヨン・ダブリング・タイム
（Population Doubling Time）等、継代培養間
において変動が少なく、かなり安定したTLC−
7Nの特徴的性質を維持する細胞株であることを
認めた。
減少症の治療薬またはｈ−CSFの増多症および減
少症の診断用試薬としてｈ−CSFを大量に製造す
るためにヒト由来のCSF産生細胞について長期間
鋭意研究した結果、ヒト肺癌組織由来の細胞から
ｈ−CSF産生能を有する細胞を新たに単離して継
代培養を継続し、遂に、無限に継代培養し得る株
化細胞の樹立に成功した。この株化細胞はTLC
−7Nと命名され、現在までに94回の継代培養を
行つたが、細胞形態、細胞増殖性、ｈ−CSF生産
性、ポピレイシヨン・ダブリング・タイム
（Population Doubling Time）等、継代培養間
において変動が少なく、かなり安定したTLC−
7Nの特徴的性質を維持する細胞株であることを
認めた。
本発明は、上記の知見に基づいて完成されたも
ので、下記の性質を有するヒト肺癌組織細胞由来
のヒト株化細胞TLC−7Nに関するものである。
ので、下記の性質を有するヒト肺癌組織細胞由来
のヒト株化細胞TLC−7Nに関するものである。
形態：上皮細胞様
染色体数：高２倍体域である染色体数66本の
モーダル・ナンバー（modalNo.）を示すことを
特徴とする染色体数の分布モード 継代培養：無限な継代培養 機能的特徴：コロニー形成刺激因子産生 細胞増殖性：細胞の増殖が進み飽和状態にな
ると重層状に増殖する傾向を示し、特にRPMI
−1640＋５〜20％牛胎児血清含有培地において
増殖性良く、ポピユレイシヨン・ダブリング・
タイムは17±10時間である。
モーダル・ナンバー（modalNo.）を示すことを
特徴とする染色体数の分布モード 継代培養：無限な継代培養 機能的特徴：コロニー形成刺激因子産生 細胞増殖性：細胞の増殖が進み飽和状態にな
ると重層状に増殖する傾向を示し、特にRPMI
−1640＋５〜20％牛胎児血清含有培地において
増殖性良く、ポピユレイシヨン・ダブリング・
タイムは17±10時間である。
まず本発明のｈ−CSF産生細胞株TLC−7Nを
得るに当つて、外科的に摘出された肺癌の腫瘍組
織の１〜２ｇを細切し、これを10〜100mlトリス
緩衝生理食塩水（Tris Buffer Saline
Solution；以下、TBSと略す）にて洗浄する。
次いでこれを細胞分散用酵素、例えば0.1〜0.25
％のトリプシン、0.05％程度のコラゲナーゼ、
500〜1000U／mlのデイスパーゼ（合同酒精社
製）、25U／ml程度のナガーゼ（長瀬産業社製）
のTBS溶液10〜50mlを加えて37℃にて60〜120分
間撹拌して組織を分散せしめる。その後、培地を
希釈して酵素活性を停止せしめた後細胞を回収す
る。このようにして分離した細胞は、通常培地１
ml当り104〜106個の細胞数になるように調整して
用いられる。またこの際用いられる培地として
は、公知の種々の培地、例えばMEM培地、199
培地、ハム（Ham）Ｆ−10培地、ハム（Ham）
Ｆ−12培地、RPMI−1640培地、マツコイ（Mc
Coy）5A培地、ウイリアムス（Willams）Ｅ培
地、ウエイマウスズ（Waymoth's）MB75 2/1
培地またはこれらの改変培地、例えばイーグル・
MEM（Ｅ−MEM）・アルフアーMEM、ダルベ
ツコMEMなどに、好ましくは牛胎児血清を10〜
20％、さらに抗菌性物質、例えばペニシリンＧ、
硫酸ジヒドロストレプトマイシンを添加して調整
したものが挙げられる。これらの抗菌性物質は、
同様に継代培養、増殖培養時培地に添加すること
が好ましい。このような培地を用いて細胞数を調
整した後、まず初代培養が行なわれるが、この培
養においては、簡便にはシヤーレまたはプラスチ
ツクボトルの培養容器を用いて、37℃、５％CO2
混合気相、湿度100％の条件下にて静置培養する。
次いでこれを継代培養するに当つて、まず初期培
養において細胞が増殖して飽和状態に達したこと
を確認後、洗浄して細胞を剥離し、回収する。こ
の際洗浄液としてはカルシウム、マグネシウムを
含まないリン酸緩衝生理食塩水（以下、PBS
（−）と略す〕を用いればよく、また細胞剥離の
際はトリプシンまたはナガーゼ酵素液を用いて剥
離すればよい。このようにして得られた細胞は、
さらに細胞数を調整して前述の培地に加え、これ
を37℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下
培養容器内で飽和増殖せしめる。次いでこの飽和
増殖時の３分の１量の細胞数を、新たな倍地に接
種し、同一条件下にてくり返し（継代培養回数50
回以上）培養した。
得るに当つて、外科的に摘出された肺癌の腫瘍組
織の１〜２ｇを細切し、これを10〜100mlトリス
緩衝生理食塩水（Tris Buffer Saline
Solution；以下、TBSと略す）にて洗浄する。
次いでこれを細胞分散用酵素、例えば0.1〜0.25
％のトリプシン、0.05％程度のコラゲナーゼ、
500〜1000U／mlのデイスパーゼ（合同酒精社
製）、25U／ml程度のナガーゼ（長瀬産業社製）
のTBS溶液10〜50mlを加えて37℃にて60〜120分
間撹拌して組織を分散せしめる。その後、培地を
希釈して酵素活性を停止せしめた後細胞を回収す
る。このようにして分離した細胞は、通常培地１
ml当り104〜106個の細胞数になるように調整して
用いられる。またこの際用いられる培地として
は、公知の種々の培地、例えばMEM培地、199
培地、ハム（Ham）Ｆ−10培地、ハム（Ham）
Ｆ−12培地、RPMI−1640培地、マツコイ（Mc
Coy）5A培地、ウイリアムス（Willams）Ｅ培
地、ウエイマウスズ（Waymoth's）MB75 2/1
培地またはこれらの改変培地、例えばイーグル・
MEM（Ｅ−MEM）・アルフアーMEM、ダルベ
ツコMEMなどに、好ましくは牛胎児血清を10〜
20％、さらに抗菌性物質、例えばペニシリンＧ、
硫酸ジヒドロストレプトマイシンを添加して調整
したものが挙げられる。これらの抗菌性物質は、
同様に継代培養、増殖培養時培地に添加すること
が好ましい。このような培地を用いて細胞数を調
整した後、まず初代培養が行なわれるが、この培
養においては、簡便にはシヤーレまたはプラスチ
ツクボトルの培養容器を用いて、37℃、５％CO2
混合気相、湿度100％の条件下にて静置培養する。
次いでこれを継代培養するに当つて、まず初期培
養において細胞が増殖して飽和状態に達したこと
を確認後、洗浄して細胞を剥離し、回収する。こ
の際洗浄液としてはカルシウム、マグネシウムを
含まないリン酸緩衝生理食塩水（以下、PBS
（−）と略す〕を用いればよく、また細胞剥離の
際はトリプシンまたはナガーゼ酵素液を用いて剥
離すればよい。このようにして得られた細胞は、
さらに細胞数を調整して前述の培地に加え、これ
を37℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下
培養容器内で飽和増殖せしめる。次いでこの飽和
増殖時の３分の１量の細胞数を、新たな倍地に接
種し、同一条件下にてくり返し（継代培養回数50
回以上）培養した。
このようにして継代培養を行なつた結果、限界
なく継代培養が可能な株化細胞が得られ、さらに
この細胞はｈ−CSFを産生する機能的特徴を有す
るもので、この細胞をｈ−CSF産生細胞株TLC
−7Nと命名した。
なく継代培養が可能な株化細胞が得られ、さらに
この細胞はｈ−CSFを産生する機能的特徴を有す
るもので、この細胞をｈ−CSF産生細胞株TLC
−7Nと命名した。
このｈ−CSF産生細胞として樹立したTLC−
7N株の細胞生物学的および機能的性質を挙げれ
ば、以下の通りである。
7N株の細胞生物学的および機能的性質を挙げれ
ば、以下の通りである。
形態：培養細胞は密に接した多角形の細胞が単
層シート状に増殖して敷石状を呈し、典型的な上
皮細胞様配列を示した。
層シート状に増殖して敷石状を呈し、典型的な上
皮細胞様配列を示した。
細胞増殖能：RPMI−1640＋10％牛胎児血清含
有培地を用い、35mmの口径からなるウエルを有す
る組織培養用プラスチツクデイツシユ（コーニン
グ社製）に、３×104生細胞／mlの細胞浮遊液を
２ml播種し、37℃培養温度、５％CO2混合気相、
100％湿度の条件下で培養を行なつて増殖曲線を
求め、この増殖曲線より求めたポピユレイシヨ
ン・ダブリング・タイムは17±10時間であつた。
この増殖において、細胞の増殖が進み飽和状態に
なると重層状に増殖する傾向がみられた。本株は
公知いずれの培地でも培養可能であるが、RPMI
−1640培地＋５〜20％牛胎児血清含有培地におい
ては、特に良好に増殖する。
有培地を用い、35mmの口径からなるウエルを有す
る組織培養用プラスチツクデイツシユ（コーニン
グ社製）に、３×104生細胞／mlの細胞浮遊液を
２ml播種し、37℃培養温度、５％CO2混合気相、
100％湿度の条件下で培養を行なつて増殖曲線を
求め、この増殖曲線より求めたポピユレイシヨ
ン・ダブリング・タイムは17±10時間であつた。
この増殖において、細胞の増殖が進み飽和状態に
なると重層状に増殖する傾向がみられた。本株は
公知いずれの培地でも培養可能であるが、RPMI
−1640培地＋５〜20％牛胎児血清含有培地におい
ては、特に良好に増殖する。
染色体数：染色体分析に基づく染色体数の分布
モードは、第１図に示す通りであつて、染色体数
の分布モードは、第１図に示す通りであつて、染
色体数66本をモーダル・ナンバーとする高２倍体
域にあり、さらに本株は個々の染色体の形態を観
察して解析した結果でも比較的安定した株化細胞
であることが判断された。
モードは、第１図に示す通りであつて、染色体数
の分布モードは、第１図に示す通りであつて、染
色体数66本をモーダル・ナンバーとする高２倍体
域にあり、さらに本株は個々の染色体の形態を観
察して解析した結果でも比較的安定した株化細胞
であることが判断された。
継代培養：無限な継代培養が可能である。
機能的特徴：ｈ−CSFを産生する。細胞株
TLC−7Nは、公知のどの培地に培養してもｈ−
CSFを産生するが、特に、10％牛胎児血清添加
RPMI−1640培地を用いて培養した場合において
は、細胞の増殖とｈ−CSFの産生が良好であつ
た。培養液中のｈ−CSF活性は細胞数とともに上
昇し、飽和増殖時に最大となり１ml当りのｈ−
CSF活性が約390単位に達した。
TLC−7Nは、公知のどの培地に培養してもｈ−
CSFを産生するが、特に、10％牛胎児血清添加
RPMI−1640培地を用いて培養した場合において
は、細胞の増殖とｈ−CSFの産生が良好であつ
た。培養液中のｈ−CSF活性は細胞数とともに上
昇し、飽和増殖時に最大となり１ml当りのｈ−
CSF活性が約390単位に達した。
なおｈ−CSFのアツセイ方法としては、(a)マウ
ス骨髄細胞を用いたコロニー形成法、(b)ヒト臍帯
血細胞を用いたコロニー形成法が行なわれている
が、そのいずれのアツセイ方法を用いてもよく、
本発明においては両アツセイ方法の結果において
同様な値を示した。またそのアツセイ方法は、以
下の通りである。
ス骨髄細胞を用いたコロニー形成法、(b)ヒト臍帯
血細胞を用いたコロニー形成法が行なわれている
が、そのいずれのアツセイ方法を用いてもよく、
本発明においては両アツセイ方法の結果において
同様な値を示した。またそのアツセイ方法は、以
下の通りである。
ａ マウス骨髄細胞を用いたコロニー形成法
仁保の方法（「免疫実験操作法」日本免疫学
会編、1974年、第927頁）に従いメチルセルロ
ーズを用いる下記の方法で行つた。
会編、1974年、第927頁）に従いメチルセルロ
ーズを用いる下記の方法で行つた。
2.2％メチルセルローズ／α−MEM 1.6ml
ウマ血清 0.8ml
マウス骨髄細胞懸濁液／α−MEM 0.8ml
被験サンプルまたはCSF標準液 0.8ml
メチルセルローズはDow社製、α−MEMは
Flow社製、ウマ血清はGIBCO社製
（＃28K8024）CSF標準液はGIBCO社製GCT−
CMを使用した。またマウス骨髄細胞は静岡実
験動物農業協同組合より購入した雄性７週令の
ICRを使用し、大腿骨骨髄の単核球を分離し、
α−MEMに懸濁して５×105／mlに調整した。
Flow社製、ウマ血清はGIBCO社製
（＃28K8024）CSF標準液はGIBCO社製GCT−
CMを使用した。またマウス骨髄細胞は静岡実
験動物農業協同組合より購入した雄性７週令の
ICRを使用し、大腿骨骨髄の単核球を分離し、
α−MEMに懸濁して５×105／mlに調整した。
上記混合液を３枚の35mmの口径からなるプラ
スチツクデツシユに１mlずつ分注し37℃、５％
CO2混合気相下で７日間培養した後、20個以上
の細胞からなる細胞集団を１コロニーとみなし
て算定し、上記条件で１コロニーを形成させる
ｈ−CSF活性を１単位（Ｕ）とした。
スチツクデツシユに１mlずつ分注し37℃、５％
CO2混合気相下で７日間培養した後、20個以上
の細胞からなる細胞集団を１コロニーとみなし
て算定し、上記条件で１コロニーを形成させる
ｈ−CSF活性を１単位（Ｕ）とした。
ｈ−CSFの活性はいずれも３枚のデツシユの
平均値で算出した。
平均値で算出した。
ｂ ヒト臍帯血細胞を用いたコロニー形成法
仁保のマウス骨髄細胞コロニー形成法を少し
変更して下記の方法で行つた。
変更して下記の方法で行つた。
2.2％メチルセルローズ／α−MEM 1.6ml
ウシ胎児血清（GIBCO社製） 0.8ml
ヒト臍帯血有核細胞／α−MEM 0.8ml
被験サンプルまたはCSF標準液 0.8ml
ヒト臍帯血は帝王切開により人工的出産した
新生児臍帯より採血した。臍帯血有核細胞の分
離は５〜６mlの臍帯血に等量のリン酸緩衝塩類
溶液（PBS（−））を添加して混和した後、そ
の液をフイコル−メトリゾエイト（Ficoll−
Metrizoate；δ：1.077Nyegaard＆Co.）を入
れたポリカーボネート製遠心管中に静かに重層
し、20℃、400×ｇにて20分間遠心分離するこ
とにより行つた。遠心分離により血漿層と
Ficoll−Metrizoate層との間に分離された有核
細胞をα−MEM培地に懸濁し90mm口径プラス
チツクデイツシユに入れて37℃、５％CO2混合
気相下で30分間静置して付着細胞を除去した
後、細胞濃度を１×106／mlに調整した。上記
混合液を３枚の35mm口径からなるプラスチツク
デイツシユに１mlずつ分注し37℃、５％CO2混
合気相下で８日間培養した後、20個以上の細胞
からなる細胞集団をコロニーとみなして算定
し、上記条件で１コロニーを形成させるｈ−
CSF活性を１単位（Ｕ）と定義した。
新生児臍帯より採血した。臍帯血有核細胞の分
離は５〜６mlの臍帯血に等量のリン酸緩衝塩類
溶液（PBS（−））を添加して混和した後、そ
の液をフイコル−メトリゾエイト（Ficoll−
Metrizoate；δ：1.077Nyegaard＆Co.）を入
れたポリカーボネート製遠心管中に静かに重層
し、20℃、400×ｇにて20分間遠心分離するこ
とにより行つた。遠心分離により血漿層と
Ficoll−Metrizoate層との間に分離された有核
細胞をα−MEM培地に懸濁し90mm口径プラス
チツクデイツシユに入れて37℃、５％CO2混合
気相下で30分間静置して付着細胞を除去した
後、細胞濃度を１×106／mlに調整した。上記
混合液を３枚の35mm口径からなるプラスチツク
デイツシユに１mlずつ分注し37℃、５％CO2混
合気相下で８日間培養した後、20個以上の細胞
からなる細胞集団をコロニーとみなして算定
し、上記条件で１コロニーを形成させるｈ−
CSF活性を１単位（Ｕ）と定義した。
さらに本発明における生細胞数の計測は、改
良型ノイバウエル（Neubauer）氏血球計算板
を用いて0.1％トリパンブルー染色により計算
した。
良型ノイバウエル（Neubauer）氏血球計算板
を用いて0.1％トリパンブルー染色により計算
した。
また本発明のTLC−7Nの保存は、そのTLC
−7N株の培養物より酵素的に細胞を剥離させ
た後10％ジメチルスルホキサイドまたは10％グ
リセリンを含有するRPMI−1640培地（10％牛
胎児血清含有）に懸濁して、−80〜−190℃にて
凍結保存すればよい。
−7N株の培養物より酵素的に細胞を剥離させ
た後10％ジメチルスルホキサイドまたは10％グ
リセリンを含有するRPMI−1640培地（10％牛
胎児血清含有）に懸濁して、−80〜−190℃にて
凍結保存すればよい。
以下に本発明の実施例を詳細に説明する。
実施例 １
外科的に滴出された患者腫瘍肺組織２ｇを、鋭
利な手術用メスで２〜３mm立方角に細切した。
利な手術用メスで２〜３mm立方角に細切した。
これを、20mlのTBSで２回洗浄した後、0.25％
トリプシン（DIFCO社製）TBS溶液20mlを加え
て37℃で90分間撹拌して組織を充分に分散せしめ
た。次いでこれに、牛胎児血清を含む培地で希釈
して酵素活性を停止せしめた後、150メツシユの
篩を通して過し、その液を1000rpm、５分間
遠心分離して細胞成分を集めた。次いで分離した
細胞をRPMI−1640培地＋15％牛胎児血清の培地
に懸濁させ単細胞浮遊液とした後、細胞数を計測
（改良型Neubauer氏血球計算板を用いる0.1％ト
リパンブルー染色による生細胞数を計測した）
し、培地１ml当り細胞数が２×105個になる様に
調整してこの懸濁液５mlを径６cmのシヤーレで37
℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下静置
培養した。培養した後、細胞が増殖して飽和状態
に達したことを検鏡により確認した。次いで培養
液を除去し、これをPBS（−）で洗浄後25U／ml
のナガーゼ（長瀬産業社製、100U／mg）のTBS
溶液（0.02％のEDTA・ジナトリウメ塩含有）５
mlを加えて37℃、15分間処理して細胞を剥離せし
めた。次いで酵素液を遠心除去しRPMI−1640培
地＋15％牛胎児血清の培地15mlを加えて充分に細
胞を分散させ、その５mlを新たな培養容器に入れ
て37℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下
培養した。培養後、飽和増殖時の３分の１量の細
胞数を新たな培地に接種し、同一条件下94回継代
培養した。
トリプシン（DIFCO社製）TBS溶液20mlを加え
て37℃で90分間撹拌して組織を充分に分散せしめ
た。次いでこれに、牛胎児血清を含む培地で希釈
して酵素活性を停止せしめた後、150メツシユの
篩を通して過し、その液を1000rpm、５分間
遠心分離して細胞成分を集めた。次いで分離した
細胞をRPMI−1640培地＋15％牛胎児血清の培地
に懸濁させ単細胞浮遊液とした後、細胞数を計測
（改良型Neubauer氏血球計算板を用いる0.1％ト
リパンブルー染色による生細胞数を計測した）
し、培地１ml当り細胞数が２×105個になる様に
調整してこの懸濁液５mlを径６cmのシヤーレで37
℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下静置
培養した。培養した後、細胞が増殖して飽和状態
に達したことを検鏡により確認した。次いで培養
液を除去し、これをPBS（−）で洗浄後25U／ml
のナガーゼ（長瀬産業社製、100U／mg）のTBS
溶液（0.02％のEDTA・ジナトリウメ塩含有）５
mlを加えて37℃、15分間処理して細胞を剥離せし
めた。次いで酵素液を遠心除去しRPMI−1640培
地＋15％牛胎児血清の培地15mlを加えて充分に細
胞を分散させ、その５mlを新たな培養容器に入れ
て37℃、５％CO2混合気相、湿度100％の条件下
培養した。培養後、飽和増殖時の３分の１量の細
胞数を新たな培地に接種し、同一条件下94回継代
培養した。
このようにして継代された細胞株TLC−7Nの
細胞生物学的性質ならびに本株化細胞の特徴的諸
性質に関する安定性は、前述した通りである。
細胞生物学的性質ならびに本株化細胞の特徴的諸
性質に関する安定性は、前述した通りである。
さらにこのヒト肺癌組織より株化樹立した
TLC−7N株の維持培養は、５〜20％好ましくは
10％牛胎児血清含有RPMI−1640培地を用い、１
×105個／mlの細胞密度でコーニング社製No.25100
組織培養用フラスコに５ml量播種して37℃、５％
CO2混合気相、湿度100％の培養条件で４〜５日
毎に継代を行なつた。
TLC−7N株の維持培養は、５〜20％好ましくは
10％牛胎児血清含有RPMI−1640培地を用い、１
×105個／mlの細胞密度でコーニング社製No.25100
組織培養用フラスコに５ml量播種して37℃、５％
CO2混合気相、湿度100％の培養条件で４〜５日
毎に継代を行なつた。
またTLC−7N株の増殖とｈ−CSF産生との相
関を求めるため、10％牛胎児血清含有RPMI−
1640培地を用いて35mmφの口径からなるプラスチ
ツクデイツシユに６×104個の細胞を播種し、37
℃、５％CO2混合気相、湿度100％のもとで培養
し、培養時、経時的に３枚のデイツシユをサンプ
リングして細胞数と培養液のｈ−CSF活性を測定
した。その結果、第２図に示す通り、細胞は１日
のラグ・タイムの後に増殖し、８日後にほぼ飽和
に近づき10日後には1.1×106個に達した（第２図
中●−●参照）。またその際の培養液のCSF活性は
細胞数の増大とともに上昇し、飽和増殖時に最大
となり１ml当りのｈ−CSF活性は約390Uに達す
る（第３図中棒グラフ参照）ことが明らかとなつ
た。
関を求めるため、10％牛胎児血清含有RPMI−
1640培地を用いて35mmφの口径からなるプラスチ
ツクデイツシユに６×104個の細胞を播種し、37
℃、５％CO2混合気相、湿度100％のもとで培養
し、培養時、経時的に３枚のデイツシユをサンプ
リングして細胞数と培養液のｈ−CSF活性を測定
した。その結果、第２図に示す通り、細胞は１日
のラグ・タイムの後に増殖し、８日後にほぼ飽和
に近づき10日後には1.1×106個に達した（第２図
中●−●参照）。またその際の培養液のCSF活性は
細胞数の増大とともに上昇し、飽和増殖時に最大
となり１ml当りのｈ−CSF活性は約390Uに達す
る（第３図中棒グラフ参照）ことが明らかとなつ
た。
なお牛胎児血清の代りに、仔牛血清、成牛血
清、ヒト血清や馬もしくはニワトリ由来の血清を
用いてもよい。
清、ヒト血清や馬もしくはニワトリ由来の血清を
用いてもよい。
発明の効果
本発明により、新規なｈ−CSF産生細胞株
TLC−7Nが得られたもので、株化細胞であるこ
とから均質なｈ−CSFの大量製造が可能となり、
白血球減少症の治療薬あるいはｈ−CSF増多症や
減少症の診断薬の分野に有用な物質を提供し得る
ものである。
TLC−7Nが得られたもので、株化細胞であるこ
とから均質なｈ−CSFの大量製造が可能となり、
白血球減少症の治療薬あるいはｈ−CSF増多症や
減少症の診断薬の分野に有用な物質を提供し得る
ものである。
第１図は本発明のｈ−CSF産生細胞株TLC−
7Nの染色体分析に基づく染色体数の分布モード
を示し、第２図は本発明のｈ−CSF産生細胞株
TLC−7Nの増殖曲線を示し、第３図は経時的増
殖におけるｈ−CSF活性を示す。
7Nの染色体分析に基づく染色体数の分布モード
を示し、第２図は本発明のｈ−CSF産生細胞株
TLC−7Nの増殖曲線を示し、第３図は経時的増
殖におけるｈ−CSF活性を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ 下記の性質を有するヒト肺癌組織細胞由来の
ヒト株化細胞TLC−7N 形態：上皮細胞様 染色体数：高２倍体域である染色体数66本の
モーダル・ナンバーを示すことを特徴とする染
色体数の分布モード 継代培養：無限な継代培養 機能的特徴：コロニー形成刺激因子産生 細胞増殖性：細胞の増殖が進み飽和状態にな
ると重層状に増殖する傾向を示し、特にRPMI
−1640＋５〜20％牛胎児血清含有培地において
増殖性よく、ポピユレイシヨン・ダブリング・
タイムは17±10時間である。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59248201A JPS61126028A (ja) | 1984-11-26 | 1984-11-26 | コロニ−形成刺激因子産生ヒト由来細胞株 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59248201A JPS61126028A (ja) | 1984-11-26 | 1984-11-26 | コロニ−形成刺激因子産生ヒト由来細胞株 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61126028A JPS61126028A (ja) | 1986-06-13 |
| JPS6314946B2 true JPS6314946B2 (ja) | 1988-04-02 |
Family
ID=17174697
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59248201A Granted JPS61126028A (ja) | 1984-11-26 | 1984-11-26 | コロニ−形成刺激因子産生ヒト由来細胞株 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61126028A (ja) |
-
1984
- 1984-11-26 JP JP59248201A patent/JPS61126028A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS61126028A (ja) | 1986-06-13 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |