JPS6262158B2 - - Google Patents

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JPS6262158B2
JPS6262158B2 JP7194984A JP7194984A JPS6262158B2 JP S6262158 B2 JPS6262158 B2 JP S6262158B2 JP 7194984 A JP7194984 A JP 7194984A JP 7194984 A JP7194984 A JP 7194984A JP S6262158 B2 JPS6262158 B2 JP S6262158B2
Authority
JP
Japan
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epoxide
organic solvent
carbon atoms
reaction
olefin
Prior art date
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Expired
Application number
JP7194984A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS60214893A (en
Inventor
Keizo Furuhashi
Kifuku Takagi
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Eneos Corp
Original Assignee
Nippon Mining Co Ltd
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Filing date
Publication date
Application filed by Nippon Mining Co Ltd filed Critical Nippon Mining Co Ltd
Priority to JP7194984A priority Critical patent/JPS60214893A/en
Publication of JPS60214893A publication Critical patent/JPS60214893A/en
Publication of JPS6262158B2 publication Critical patent/JPS6262158B2/ja
Granted legal-status Critical Current

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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

産業上の利用分野 本発明は微生物を利用して芳香環を有するオレ
フインから相当する芳香環を有するエポキシドを
製造する方法に関するものである。 因に、エポキシド化合物は合成樹脂、界面活性
剤、医薬、農薬をはじめとする種々の有機化学製
品の製造原料或いは中間体として広範囲に利用さ
れている。 従来技術 微生物を利用してエポキシドを製造する方法と
しては、Nocardia属、Mycobacterium属、
Methylococcus属、Methylosinus属、
Pseudomonas属、Corynebacterium属、
Methylobacterium属、もしくはCandida属、に属
する微生物による直鎖状オレフインからのエポキ
シドの生成が知られているが、芳香環を有するエ
ポキシドの生産についてはPseudomonas属及び
Brevibacterium属に属する微生物を利用する方
法が知られているのみである。 発明の目的 本発明は、上掲の微生物のうち、ノカルデイア
属に属するエポキシド生産菌が芳香環を有するオ
レフインからも芳香環を有するエポキシドを生産
し得ることの知見に基づきなされたものであつ
て、ノカルデイア属に属するエポキシド生産能を
有する微生物を利用して芳香環を有するオレフイ
ンから相当する芳香環を有するエポキシドを製造
する方法を提供することを目的とする。 以下本発明を詳しく説明する。 発明の構成 本発明の構成上の特徴は、ノカルデイア属に属
するエポキシド生産能を有する微生物を、水不溶
性有機溶剤の存在下に、芳香環を有するオレフイ
ンに好気的条件下で作用させて芳香環を有するエ
ポキシドを産生し、得られたエポキシドを分離、
採取することにある。 本発明で利用される微生物はノカルデイア属に
属するものであつて、Nocardia corallinaを例示
し得る。此の菌は工業技術院微生物工業技術研究
所にFERM―P―4094号の受理番号で、昭和52
年6月15日付けで受託保管されており、其の菌学
的性質については特公昭56−40号公報に詳記され
ている。 本発明において上記微生物を利用してエポキシ
ド生産するための反応基質として用いられる芳香
環を有するオレフイン(以下原料オレフインと称
する)は、フエニル基やナフチル基のような芳香
環を有する直鎖状又は分岐状オレフイン(ただ
し、二重結合の位置はいずれかの末端炭素原子か
らα、β又はγ位にあるオレフイン)を包含する
ものであつて、このようなオレフインとしてはス
チレン、α―メチルスチレン、β―メチルスチレ
ン、アリルベンゼン、4―フエニル―1―ブテ
ン、1―フエニル―2―ブテン、2―ビニルナフ
タレンを例示し得、更には上記芳香環に置換基を
有するオレフイン、例えばp―メチルスチレン、
o―クロロスチレン、m―クロロスチレン、p―
クロロスチレン、p―メトキシスチレン等を包含
する。 これらの原料オレフインは単独又は2種以上の
混合物として反応基質に用いられる。 本発明において、上記原料オレフインに前記微
生物を作用させてエポキシ化を行なうに際して存
在させる水不溶性有機溶剤(以下単に有機溶剤と
称する)は、炭素数9乃至17を有するパラフイ
ン、炭素数10乃至18を有するオレフイン、炭素数
9乃至16を有するハロゲン化パラフイン、および
鎖長が6乃至15の側鎖を有するアルキルベンゼン
から成る群から選択される有機溶剤であつて、こ
れらは単独もしくは2種以上の混合物としても使
用し得る。 これらの有機溶剤について詳しく説明すると、
炭素数9〜17を有するパラフインのうちノルマル
パラフインは石油の灯油および軽油留分中に約20
〜25%含有されているものである。すなわち、沸
点約160℃〜350℃の留分を水素化脱硫した後、ゼ
オライト(モレキユラーシーブ)等を用いて分
離、回収し得るものであつて、一般にソフト洗剤
の原料として使用されている。上記パラフインの
うちでも炭素数の多いものの方がエポキシ化の促
進作用が高く、特に炭素数12〜16のものが好まし
い。因に、炭素数が9より少ないとエポキシ化の
促進作用がみられず、一方17より多くなつても該
促進作用が低下し、加うるに室温で固化するよう
になるので実用的でない。また、上記パラフイン
のうちイソパラフインは、上述した留分中にノル
マルパラフインと共存しているものであつて、精
密蒸留によりノルマルパラフインと分離し得る
が、実際にはノルマルパラフインとの混合物とし
て用いるのが便利である。なお、側鎖がメチルや
エチルのような短い鎖長のものが一般的である
が、炭素数が12〜16を有するイソパラフインがエ
ポキシ化促進上好ましい。 次に、有機溶剤として使用される炭素数10〜18
を有するオレフインはプロピレンやブチレンの低
重合体又はオリゴマーであつてもよく、また試薬
として市販されているものも適用し得る。一般に
は直鎖状又は低分岐状モノオレフインである。 なお、炭素数が8より少ないオレフインではエ
ポキシ化の促進効果はみられず、一方18より多い
ものでは該効果も低く、加うるに粘性が高くなる
ので実用的でない。 有機溶剤としての炭素数9〜16を有するハロゲ
ン化パラフインは、塩素化並びに臭素化パラフイ
ンであつて、塩化デシル、塩化ウンデシル、塩化
ドデシル、塩化トリデシル、塩化テトラデシル、
臭化デシル、臭化ウンデシル、臭化ドデシル、臭
化テトラデシル、臭化ヘキサデシル等を包含す
る。なお、炭素数が9より少くても又16より多く
てもエポキシ化促進効果がみられなくなる。 次に、鎖長が6〜16の側鎖を有するアルキルベ
ンゼンは通常ハード又はソフト洗剤の中間体とし
て利用されているものであつて、炭素数6〜16の
直鎖もしくは分岐アルキル基を側鎖に有するもの
である。 なお、上記鎖長が6〜16の範囲外のものでは、
エポキシ化促進効果はみられないか、又は低くて
実用的でない。 本発明では上述したような各有機溶剤を系内に
存在させることにより、後記実施例に示したとお
り、エポキシドの収量を著しく向上し得るように
なる。 本発明において、上記有機溶剤の存在下に、ノ
カルデイア属に属するエポキシド生産菌を原料オ
レフインに作用させるには、例えば(イ)該菌を予め
培養し増殖して得られる菌体に原料オレフインを
有機溶剤の存在下に好気的に接触させて反応させ
る方法、(ロ)上記菌を原料オレフインと有機溶剤、
および場合によつてはその他の炭素源に窒素源、
無機塩類、更には必要に応じて生長促進物質を添
加して成る栄養培地中で好気的条件下で培養させ
る方法を適用するとよい。 上記(イ)の増殖させた菌体に原料オレフインを有
機溶剤の存在下に好気的に接触させて反応させる
方法では、まず炭素源として糖質、例えばグルコ
ース、シユクロース、糖蜜、澱粉加水分解物、セ
ルロース加水分解物、炭化水素、例えばプロパ
ン、ブタン、ドデカン、テトラデカン及びそのほ
か酢酸の如き菌体増殖作用の高いものを用い、こ
れに塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、燐酸
アンモニウム、硝酸アンモニウム、尿素、アンモ
ニア水、アミノ酸及びその他の資化性有機窒素化
合物のような窒素源、燐酸カリウム、燐酸ナトリ
ウム、硫酸マグネシウム、硫酸マンガン、硫酸第
一鉄、塩化第二鉄、塩化カルシウム、塩化マンガ
ンのごとき無機塩類、更に必要に応じてビタミン
類、酵母エキス、コーンステイープリカーのごと
き生長促進物質を添加した培地に、ノカルデイア
属に属するエポキシド生産菌の種菌を接触し、好
気的条件下で培養して菌体を増殖させる。 ついで、このようにして得られた菌体培養物、
又は該培養物から分離した菌体の懸濁液もしくは
菌体を固定化したものに、原料オレフインおよび
有機溶剤を添加し、空気、酸素、酸素富化ガスの
ような酸素含有ガスを供給して反応させる。 原料オレフインおよび有機溶剤の上記菌体培養
液もしくは菌体懸濁液等の菌体含有水性液に対す
る使用割合は、有機溶剤の種類により異なること
もあるが、通常原料オレフインでは0.1〜25vol/
vol%、好ましくは0.5〜5vol/vol%であり、有機
溶剤では1〜200vol/vol%、好ましくは10〜
100vol/vol%である。 反応はPH5〜9、好ましくは6〜8のPH領域
で、20〜50℃、好ましくは25〜45℃の温度下で1
〜6日間行う。反応は通常常圧下で行われるが、
加圧下で行うことによりエポキシドの生産性を向
上させることもできる。なお、反応中に菌体増殖
に用いた炭素源、窒素源、更にはその他の成分を
適宜添加することにより、菌体のエポキシド生産
活性を維持し或いは高めることが出来る。 反応は、回分方式又は連続方式のいずれでも実
施し得る。原料オレフインの供給は回分反応方式
の場合、全量を反応開始時に添加するほか、反応
中に連続的に又は間歇的に供給することも可能で
ある。 上記反応により生成したエポキシドは主として
有機溶剤相に存在するので、相分離、蒸留、抽出
等の公知の手法を適用して分離採取し得る。 次に、前記(ロ)の培養による方法は、上記(イ)の方
法における菌体増殖時に原料オレフイン及び有機
溶剤を添加し、一段階でエポキシドの生産を図る
ものである。培養条件(PH、温度、圧力等)、培
養方式及び生成したエポキシドの分離、採取は前
記(イ)の反応条件、反応方式及び分離、採取方法が
同様に用い得る。 本発明により得られるエポキシドはさきに言及
した如き従来知られている種々の広範囲な用途に
供することができる。 以下実施例により本発明を更に具体的に説明す
る。 実施例 1 菌体懸濁液の調製 Nocardia corallina B―276(工業技術院微生
物技術研究所FERM―P―4094)の3白金耳
を、NBG培地(オキソイド社製“ラブレンコ”
パウダー10g、バクテリオロジカルペプトン10
g、グルコース10g、塩化ナトリウム5gに水道
水を加えて1000mlとし、1N―苛然ソーダ水溶液
でPH7.5とした後、オートクレーブ中で120℃、15
分間加熱殺菌した液体培地)100mlを収容した500
ml容坂口フラスコに接種し、30℃で48時間振盪培
養(150回/分)した。この培養により生成した
菌体を0.01モル濃度の燐酸緩衝液(PH7.5)で1
回洗浄し、次いで下記に示す反応培地で洗浄した
のち、乾燥菌体濃度として3.8mg/mlとなる様
に、下記の反応培地に再懸濁して菌体懸濁液とし
た。 反応培地 K2HPO4 1.74g MgSO4・7H2O 1.50g FeSO4・7H2O 50mg 脱イオン水 1 (PHは2―N硫酸水溶液で8.0に調整した) 反応と生成物の分析 上述のようにして調製した菌懸濁液20mlと、第
1表に示される各原料オレフイン0.1ml及びn―
ヘキサデカン2mlをそれぞれ500ml容の坂口フラ
スコに入れて密栓した。次いで30℃、150回/分
で往復振盪して24時間後、フラスコ中の反応液を
50mlのエーテルで抽出して分析した。分析には
DEGS(ジエチレングリコールサクシネート)を
液相とし、ユニポートB(ガスクロス工業社製)
80〜100メツシユを担体とする充填剤を充填した
内径3mm、長さ2mのガラスカラムを備えた島津
GC―7A型イオン化炎ガスクロマトグラフを使用
した。反応により生成した生成物はガスクロマト
グラフで測定し、保持時間及びガスクロマトグラ
フに連結した質量分析計で測定した質量スペクト
ルを、標準試料の保持時間及び質量スペクトルと
比較し、更に生成物が塩酸酸性下で加水分解され
ることを調べて相当するエポキシドであることを
確認した。 上記分析の結果は第1表に示すとおりである。
なお、エポキシドの生成量はガスクロマトグラフ
イーにより定量したものである。また、比較例と
して、n―ヘキサデカンを添加せずに、原料オレ
フインを0.1mlの代りに1mlを用いることを除い
ては上記と同様にして反応を行なつた結果も併わ
せて第1表に示した。
INDUSTRIAL APPLICATION FIELD The present invention relates to a method for producing an epoxide having a corresponding aromatic ring from an olefin having an aromatic ring using microorganisms. Incidentally, epoxide compounds are widely used as raw materials or intermediates for the production of various organic chemical products including synthetic resins, surfactants, medicines, and agricultural chemicals. Prior Art Methods for producing epoxide using microorganisms include Nocardia genus, Mycobacterium genus,
Genus Methylococcus, Genus Methylosinus,
Pseudomonas spp., Corynebacterium spp.
It is known that epoxides are produced from linear olefins by microorganisms belonging to the genus Methylobacterium or Candida, but the production of epoxides with aromatic rings by microorganisms belonging to the genus Pseudomonas and
The only known method is to utilize microorganisms belonging to the genus Brevibacterium. Purpose of the Invention The present invention was made based on the knowledge that among the above-mentioned microorganisms, epoxide-producing bacteria belonging to the genus Nocardia can also produce epoxides having an aromatic ring from olefins having an aromatic ring. An object of the present invention is to provide a method for producing an epoxide having a corresponding aromatic ring from an olefin having an aromatic ring using a microorganism having an epoxide-producing ability belonging to the genus Nocardia. The present invention will be explained in detail below. Composition of the Invention The compositional feature of the present invention is that a microorganism having an epoxide-producing ability belonging to the genus Nocardia is allowed to act on an olefin having an aromatic ring under aerobic conditions in the presence of a water-insoluble organic solvent to produce an aromatic ring. to produce an epoxide with and separate the obtained epoxide,
It is about collecting. The microorganism used in the present invention belongs to the genus Nocardia, and can be exemplified by Nocardia corallina. This bacterium was submitted to the Institute of Microbial Technology of the Agency of Industrial Science and Technology with the receipt number FERM-P-4094 in 1972.
It has been entrusted to storage as of June 15, 2013, and its mycological properties are detailed in the Japanese Patent Publication No. 1983-40. In the present invention, the olefin having an aromatic ring (hereinafter referred to as raw material olefin) used as a reaction substrate for producing epoxide using the above-mentioned microorganisms is a linear or branched olefin having an aromatic ring such as a phenyl group or a naphthyl group. olefins (wherein the double bond is located at the α, β or γ position from any terminal carbon atom); such olefins include styrene, α-methylstyrene, β-methylstyrene, Examples include methylstyrene, allylbenzene, 4-phenyl-1-butene, 1-phenyl-2-butene, and 2-vinylnaphthalene, and further olefins having substituents on the aromatic ring, such as p-methylstyrene,
o-chlorostyrene, m-chlorostyrene, p-
Includes chlorostyrene, p-methoxystyrene, etc. These raw material olefins are used alone or as a mixture of two or more as a reaction substrate. In the present invention, the water-insoluble organic solvent (hereinafter simply referred to as organic solvent) that is present when epoxidizing the raw material olefin by the action of the microorganism is paraffin having 9 to 17 carbon atoms, paraffin having 10 to 18 carbon atoms, and the like. an organic solvent selected from the group consisting of olefins having a carbon number of 9 to 16, halogenated paraffins having a carbon number of 9 to 16, and alkylbenzenes having a side chain having a chain length of 6 to 15, which may be used alone or as a mixture of two or more. can also be used. A detailed explanation of these organic solvents is as follows:
Among the paraffins with carbon numbers 9 to 17, normal paraffins are present in approximately 20% of the kerosene and gas oil fractions of petroleum.
It contains ~25%. In other words, it can be separated and recovered using zeolite (molecular sieve) after hydrodesulfurizing the fraction with a boiling point of about 160°C to 350°C, and is generally used as a raw material for soft detergents. . Among the above paraffins, those with a large number of carbon atoms have a higher effect of promoting epoxidation, and paraffins with 12 to 16 carbon atoms are particularly preferred. Incidentally, if the number of carbon atoms is less than 9, no promoting effect on epoxidation will be observed, while if the number of carbon atoms is greater than 17, the promoting effect will decrease and, in addition, it will solidify at room temperature, which is not practical. Among the above paraffins, isoparaffin coexists with normal paraffin in the above-mentioned fraction, and can be separated from normal paraffin by precision distillation, but in reality, isoparaffin is used as a mixture with normal paraffin. is convenient. Although those with short side chains such as methyl and ethyl are generally used, isoparaffins having 12 to 16 carbon atoms are preferred in terms of promoting epoxidation. Next, carbon number 10-18 used as an organic solvent
The olefin having the above may be a low polymer or oligomer of propylene or butylene, and those commercially available as reagents may also be used. Generally, it is a linear or less branched monoolefin. It should be noted that olefins having less than 8 carbon atoms do not have the effect of promoting epoxidation, while those having more than 18 carbon atoms have a low effect and are not practical because of their high viscosity. Halogenated paraffins having 9 to 16 carbon atoms as organic solvents include chlorinated and brominated paraffins, such as decyl chloride, undecyl chloride, dodecyl chloride, tridecyl chloride, tetradecyl chloride,
Includes decyl bromide, undecyl bromide, dodecyl bromide, tetradecyl bromide, hexadecyl bromide, and the like. Incidentally, even if the number of carbon atoms is less than 9 or more than 16, the effect of promoting epoxidation is not observed. Next, alkylbenzene having a side chain with a chain length of 6 to 16 is usually used as an intermediate for hard or soft detergents, and has a straight chain or branched alkyl group having 6 to 16 carbon atoms in the side chain. It is something that you have. In addition, for those whose chain length is outside the range of 6 to 16,
The epoxidation promoting effect is not observed or is so low that it is not practical. In the present invention, by allowing each of the above-mentioned organic solvents to exist in the system, the yield of epoxide can be significantly improved, as shown in Examples below. In the present invention, in order to cause an epoxide-producing bacterium belonging to the genus Nocardia to act on the raw material olefin in the presence of the above-mentioned organic solvent, for example, (a) the bacterium is cultured in advance and grown, and then the raw material olefin is added to the resulting bacterial body. A method of reacting by aerobic contact in the presence of a solvent, (b) the above bacteria is mixed with a raw material olefin and an organic solvent,
and possibly other carbon sources as well as nitrogen sources,
It is preferable to apply a method of culturing under aerobic conditions in a nutrient medium containing inorganic salts and, if necessary, growth-promoting substances. In the method of (a) above, in which the grown bacterial cells are brought into contact with the raw material olefin in an aerobic manner in the presence of an organic solvent, carbohydrates are first used as the carbon source, such as glucose, sucrose, molasses, and starch hydrolyzate. , cellulose hydrolyzate, hydrocarbons such as propane, butane, dodecane, tetradecane, and other substances with high bacterial growth effects such as acetic acid, and ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium phosphate, ammonium nitrate, urea, aqueous ammonia, and amino acids. and other assimilated organic nitrogen compounds, inorganic salts such as potassium phosphate, sodium phosphate, magnesium sulfate, manganese sulfate, ferrous sulfate, ferric chloride, calcium chloride, manganese chloride, and as necessary. Inoculum of epoxide-producing bacteria belonging to the genus Nocardia is brought into contact with a medium supplemented with growth-promoting substances such as vitamins, yeast extract, and corn staple liquor, and cultured under aerobic conditions to multiply the bacterial cells. . Then, the bacterial cell culture obtained in this way,
Alternatively, the raw material olefin and an organic solvent are added to a suspension of bacterial cells isolated from the culture or to an immobilized bacterial cell, and an oxygen-containing gas such as air, oxygen, or oxygen-enriched gas is supplied. Make it react. The ratio of the raw material olefin and the organic solvent to the bacterial cell-containing aqueous solution such as the bacterial cell culture solution or bacterial cell suspension may vary depending on the type of organic solvent, but the raw material olefin is usually 0.1 to 25 vol/
vol%, preferably 0.5 to 5 vol/vol%, and 1 to 200 vol/vol%, preferably 10 to 5 vol% for organic solvents.
It is 100vol/vol%. The reaction is carried out at a pH range of 5 to 9, preferably 6 to 8, at a temperature of 20 to 50°C, preferably 25 to 45°C.
Do this for ~6 days. The reaction is usually carried out under normal pressure,
Epoxide productivity can also be improved by carrying out the process under pressure. In addition, the epoxide production activity of the bacterial cells can be maintained or increased by appropriately adding the carbon source, nitrogen source, and other components used for bacterial cell proliferation during the reaction. The reaction can be carried out either batchwise or continuously. In the case of a batch reaction method, the raw material olefin can be supplied in its entirety at the start of the reaction, or can be supplied continuously or intermittently during the reaction. Since the epoxide produced by the above reaction mainly exists in the organic solvent phase, it can be separated and collected by applying known techniques such as phase separation, distillation, and extraction. Next, in the culture method (b) above, the raw material olefin and an organic solvent are added during bacterial growth in the method (b) above, and epoxide is produced in one step. Regarding the culture conditions (PH, temperature, pressure, etc.), culture method, and separation and collection of the produced epoxide, the reaction conditions, reaction method, separation, and collection method described in (a) above can be similarly used. The epoxide obtained according to the present invention can be used in a wide variety of conventionally known applications as mentioned above. The present invention will be explained in more detail with reference to Examples below. Example 1 Preparation of bacterial cell suspension Three platinum loops of Nocardia corallina B-276 (FERM-P-4094, Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology) were mixed with NBG medium (“Lavrenko” manufactured by Oxoid).
Powder 10g, Bacteriological Peptone 10
g, glucose 10g, and sodium chloride 5g, add tap water to make 1000ml, adjust the pH to 7.5 with 1N caustic soda aqueous solution, and then in an autoclave at 120℃ for 15 minutes.
500ml containing 100ml of liquid culture medium (heat sterilized for minutes)
ml Sakaguchi flask was inoculated and cultured with shaking (150 times/min) at 30°C for 48 hours. The bacterial cells produced by this culture were dissolved in 0.01 molar phosphate buffer (PH7.5).
The cells were washed twice, and then washed with the reaction medium shown below, and then resuspended in the reaction medium shown below at a dry cell concentration of 3.8 mg/ml to obtain a cell suspension. Reaction medium K 2 HPO 4 1.74g MgSO 4・7H 2 O 1.50g FeSO 4・7H 2 O 50mg Deionized water 1 (PH was adjusted to 8.0 with 2-N sulfuric acid aqueous solution) Reaction and product analysis As described above 20ml of the bacterial suspension prepared in the above manner, and 0.1ml of each raw material olefin and n-
2 ml of hexadecane was placed in each 500 ml Sakaguchi flask and the flasks were sealed tightly. Then, after 24 hours of reciprocating shaking at 30°C and 150 times/min, the reaction solution in the flask was
It was extracted with 50 ml of ether and analyzed. For analysis
DEGS (diethylene glycol succinate) is used as the liquid phase, Uniport B (manufactured by Gas Cross Kogyo Co., Ltd.)
Shimadzu equipped with a glass column with an inner diameter of 3 mm and a length of 2 m filled with a packing material containing 80 to 100 mesh.
A GC-7A ionization flame gas chromatograph was used. The product produced by the reaction was measured using a gas chromatograph, and the retention time and mass spectrum measured using a mass spectrometer connected to the gas chromatograph were compared with the retention time and mass spectrum of a standard sample. It was confirmed that it was a corresponding epoxide. The results of the above analysis are shown in Table 1.
Note that the amount of epoxide produced was determined by gas chromatography. In addition, as a comparative example, the results of a reaction carried out in the same manner as above except that 1 ml of raw material olefin was used instead of 0.1 ml without adding n-hexadecane are also shown in Table 1. Indicated.

【表】【table】

【表】 第1表にみられるように、有機溶剤としてのn
―ヘキサデカンを系内に存在させることにより原
料オレフインからのエポキシドの生成量が著しく
向上する。 実施例 2 実施例1に記載と同様の手順で菌懸濁液を調製
した。 反応と生成物の分析 菌懸濁液20mlと、原料オレフインとしてのスチ
レン0.5mlおよび第2表に示された各種有機溶剤
10mlづつを500ml容坂口フラスコに入れ、実施例
1に記載と同様の手順で反応させ、反応後得られ
た有機溶剤層をガスクロマトグラフイーで分析し
定量した。 結果は第2表に示すとおりである。なお、比較
例として有機溶剤を添加しない場合及び他の種類
の有機溶剤を添加した場合についても同様にして
分析を行なつた結果を併わせて第2表に示した。
[Table] As seen in Table 1, n as an organic solvent
- The presence of hexadecane in the system significantly improves the amount of epoxide produced from the raw material olefin. Example 2 A bacterial suspension was prepared in the same manner as described in Example 1. Analysis of reaction and products: 20 ml of bacterial suspension, 0.5 ml of styrene as raw material olefin, and various organic solvents shown in Table 2.
10 ml of each was placed in a 500 ml Sakaguchi flask and reacted in the same manner as described in Example 1. The organic solvent layer obtained after the reaction was analyzed and quantified by gas chromatography. The results are shown in Table 2. As a comparative example, the results of the same analysis conducted in the case where no organic solvent was added and the case where other types of organic solvents were added are also shown in Table 2.

【表】【table】

【表】 合物。
実施例 3 菌懸濁液の調製 実施例1に記載と同様の手順で菌懸濁液を調製
した。 反応と生成物の分析 菌懸濁液20mlと、原料オレフインとしてのスチ
レンおよび有機溶剤としてのn―ヘキサデカンの
第3表に示された各量とをそれぞれ500ml容坂口
フラスコに入れ、実施例1に記載したと同様の手
順で反応させ、反応後得られた生成物中のスチレ
ンオキサイドを50mlのエーテルで抽出し、ガスク
ロマトグラフイで定量した。 結果は第3表に示すとおりである。なお、比較
として有機溶剤(n―ヘキサデカン)を添加しな
い場合についても同様にして分折した結果を併わ
せて第3表に示した。
[Table] Compound.
Example 3 Preparation of bacterial suspension A bacterial suspension was prepared in the same manner as described in Example 1. Reaction and Product Analysis 20 ml of the bacterial suspension and each amount of styrene as the raw material olefin and n-hexadecane as the organic solvent shown in Table 3 were placed in a 500 ml Sakaguchi flask, and the same amount as in Example 1 was added. The reaction was carried out in the same manner as described above, and styrene oxide in the product obtained after the reaction was extracted with 50 ml of ether and quantified by gas chromatography. The results are shown in Table 3. For comparison, Table 3 also shows the results of the same analysis in the case where no organic solvent (n-hexadecane) was added.

【表】【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 ノカルデイア属に属するエポキシド生産能を
有する微生物を、水不溶性有機溶剤の存在下に、
芳香環を有するオレフインに好気的条件下で作用
させて、芳香環を有するエポキシドを産生し、得
られたエポキシドを分離、採取することを特徴と
するエポキシドの製造方法。 2 水不溶性有機溶剤は、炭素数9乃至17を有す
るパラフイン、炭素数10乃至18を有するオレフイ
ン、炭素数9乃至16を有するハロゲン化パラフイ
ン及び鎖長が6乃至16の側鎖を有するアルキルベ
ンゼンから成る群から選択される1種又は2種以
上の混合物である特許請求の範囲第1項記載の製
造方法。 3 ノカルデイア属に属するエポキシド生産能を
有する微生物がノカルデイア・コラリナ
(Nocardia corallina)である特許請求の範囲第1
項記載の製造方法。
[Claims] 1. Microorganisms belonging to the genus Nocardia that have epoxide-producing ability are treated in the presence of a water-insoluble organic solvent,
A method for producing an epoxide, which comprises reacting an olefin having an aromatic ring under aerobic conditions to produce an epoxide having an aromatic ring, and separating and collecting the obtained epoxide. 2. The water-insoluble organic solvent consists of paraffin having 9 to 17 carbon atoms, olefin having 10 to 18 carbon atoms, halogenated paraffin having 9 to 16 carbon atoms, and alkylbenzene having a side chain having a chain length of 6 to 16. The manufacturing method according to claim 1, which is one type or a mixture of two or more types selected from the group. 3. Claim 1 in which the microorganism having epoxide-producing ability belonging to the genus Nocardia is Nocardia corallina.
Manufacturing method described in section.
JP7194984A 1984-04-11 1984-04-11 Method of epoxide production from olefin utilizing microorganism Granted JPS60214893A (en)

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