JPS6314951B2 - - Google Patents

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Publication number
JPS6314951B2
JPS6314951B2 JP7195184A JP7195184A JPS6314951B2 JP S6314951 B2 JPS6314951 B2 JP S6314951B2 JP 7195184 A JP7195184 A JP 7195184A JP 7195184 A JP7195184 A JP 7195184A JP S6314951 B2 JPS6314951 B2 JP S6314951B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
epoxide
olefin
aromatic ring
producing
reaction
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP7195184A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS60214895A (en
Inventor
Keizo Furuhashi
Kifuku Takagi
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Eneos Corp
Original Assignee
Nippon Mining Co Ltd
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Filing date
Publication date
Application filed by Nippon Mining Co Ltd filed Critical Nippon Mining Co Ltd
Priority to JP7195184A priority Critical patent/JPS60214895A/en
Publication of JPS60214895A publication Critical patent/JPS60214895A/en
Publication of JPS6314951B2 publication Critical patent/JPS6314951B2/ja
Granted legal-status Critical Current

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Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は微生物を利用して芳香環を有するオレ
フインから相当する芳香環を有するエポキシドを
製造する方法に関する。 エポキシド化合物は合成樹脂、界面活性剤、医
薬、農薬をはじめとする種々の有機化学製品の製
造原料或いは中間体として広範囲に利用されてい
る。 従来技術 従来、エポキシドを相当するオレフインから製
造する方法としては、過酸化水素や有機過酸など
の過酸化物を酸化剤とする化学的方法と微生物を
用いて酸素酸化する生化学的方法とが知られてい
る。又、微生物を利用してエポキシドを製造する
方法ではノカルデイア属、シユードモナス属、ブ
レビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、マ
イコバクテリウム属、アルスロバクター属、アシ
ネトバクター属、アルカリゲネス属、メチロバク
テリウム属、メチロコツカス属、メチロシナス属
などに属する微生物による直鎖状オレフインから
のエポキシドの生産が知られている。 しかしながら、芳香環を有するオレフインから
微生物を利用して相当するエポキシドを生産する
方法としてはシユードモナス属並びにブレビバク
テリウム属に属する微生物を利用する方法のみが
知られている。 すなわち、芳香環を有するオレフインからエポ
キシド生産能を有する微生物としては上記属に属
する微生物が知られているのみである。 本発明者は、種々の属に属する微生物について
芳香環を有するオレフインからエポキシドの生産
能を有するものを検索した結果、アルスロバクタ
ー属、コリネバクテリウム属又はロドコツカス属
に属するエポキシド生産菌が芳香環を有するオレ
フインからも芳香環を有するエポキシドを生産し
得ることを見い出し、本発明をなすに至つた。 発明の目的 したがつて、本発明の目的は、芳香環を有する
オレフインから上記各属に属するエポキシド生産
菌を利用して相当する芳香環を有するエポキシド
を製造する方法を提供することにある。 以下本発明を詳しく説明する。 発明の構成 本発明の構成上の特徴は、アルスロバクター
属、コリネバクテリウム属又はロドコツカス属に
属するエポキシド生産能を有する微生物を、芳香
環を有するオレフインに好気的条件下で作用させ
て、相当する芳香環を有するエポキシドを産生
し、得られたエポキシドを分離、採取することに
ある。また、本発明は、上記微生物を、水不溶性
有機溶剤の存在下で作用させることにより、上記
エポキシドを更に有利に産生させることも特徴と
する。 本発明で用いられる微生物はアルスロバクター
属、コリネバクテリウム属又はロドコツカス属に
属するものであつて下記の菌株を例示し得る。こ
れらの菌株はアメリカンタイプカルチユアコレク
シヨン(American Type Culture Collection)
に下記番号で寄託されていて容易に入手が可能で
ある。 Arthrobacter rubellus ATCC 21495 Arthrobacter simplex ATCC 21032 Arthrobacter sp. ATCC 27778 Corynebacterium fujiokense ATCC 21496 Corynebacterium hydrocarboclastus ATCC
15108 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29670 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29672 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29675 Rhodococcus sp. ATCC 21499 Rhodococcus sp. ATCC 29673 本発明において、上記微生物を利用してエポキ
シドを生産するための反応基質に用いられる芳香
環を有するオレフイン(以下原料オレフインと称
する)としてはフエニル基やナフチル基のような
芳香環を有する直鎖状又は分岐状オレフイン(た
だし、二重結合の位置がいずれかの末端炭素原子
からα、β又はγ位にあるオレフイン)、例えば
スチレン、α−メチルスチレン、β−メチルスチ
レン、アリルベンゼン、4−フエニル−1−ブテ
ン、1−フエニル−2−ブテン、2−ビニルナフ
タレン等、更には上記芳香環に置換基を有するオ
レフイン、例えばp−メチルスチレン、o−クロ
ロスチレン、m−クロロスチレン、p−クロロス
チレンなどが含まれる。 本発明ではこれらの原料オレフインは、単独ま
たは二種以上の混合物として反応基質に用いられ
る。 本発明においては、上記原料オレフインに前記
の微生物を作用させてエポキシ化を行なうには、
例えば(a)該微生物を予め培養増殖して得られる菌
体に原料オレフインを好気的条件下で接触させて
反応させる方法、(b)上記微生物を原料オレフイン
を含む培養培地中で好気的条件下で培養する方法
を適用し得る。 上記(a)の増殖菌体に原料オレフインを接触させ
て反応させる方法では、まず炭素源として糖質例
えばグルコース、シユークロース、糖蜜、澱粉加
水分解物、炭化水素例えばプロパン、ブタン、ド
デカン、テトラデカン及びそのほか酢酸、エタノ
ールの如き菌体増殖作用の高いものを用い、これ
に塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、燐酸ア
ンモニウム、硝酸アンモニウム、尿素、アンモニ
ア水、アミノ酸及びその他の資化性有機窒素化合
物のような窒素源、燐酸カリウム、燐酸ナトリウ
ム、硫酸マグネシウム、硫酸マンガン、硫酸第1
鉄、塩化第2鉄、塩化カルシウム、塩化マンガン
のごとき無機塩類、更には必要に応じてビタミン
類、酵母エキス、コーンステイープリカーのごと
き生長促進物質を添加した培地に、上記微生物の
種菌を接種し、好気的条件下で培養して菌体を増
殖させる。このようにして得られた菌体培養物、
又は該培養物から分離した菌体の懸濁液もしくは
菌体を固定化したものに原料オレフイン及び空
気、酸素、酸素富化ガスのような酸素含有ガスを
供給して反応させる。 反応はPH5〜9、20〜50℃の範囲で用いる微生
物及び原料オレフインの種類により適宜定め、半
日〜6日間行う。反応は通常常圧下で行われる
が、加圧下で行うことによりエポキシドの生産性
を向上させることも出来る。なお、反応中に菌体
増殖に用いた炭素源、窒素源、更にはその他の成
分を適宜添加することにより、菌体濃度や菌体の
エポキシド生産活性を維持し或いは高めることが
出来る。 反応に用いる原料オレフインの菌体含有水性液
に対する割合は通常0.1〜50vol/vol%、好まし
くは0.5〜20vol/vol%である。 反応は回分式又は連続式さらには原料オレフイ
ン或いはその他の成分を反応中に連続的に又は間
歇的に補給する半回分式のいずれでも実施し得
る。 上記反応により生成したエポキシドは相分離、
抽出、蒸留等の公知の手法を適用して分離、採取
する。 つぎに、前記(b)の培養による方法は、上記(a)の
方法における菌体増殖時に原料オレフインを添加
し一段階でエポキシドの生産を図るものである。
培養条件(PH、温度、圧力及び原料オレフインの
添加量等)、培養方式及び生成したエポキシドの
分離採取は前記(a)の反応条件、反応方式及び分
離、採取方法が同様に適用し得る。 本発明は、前述したように、上記微生物による
原料オレフインのエポキシ化反応を水不溶性有機
溶剤の存在下で行なう態様を包含するものであ
り、以下この態様について説明する。 本発明において、上記原料オレフインに前記微
生物を作用させてエポキシ化を行なうに際して存
在させる水不溶性有機溶剤(以下単に有機溶剤と
称する)は、炭素数9乃至17を有するパラフイ
ン、炭素数10乃至18を有するオレフイン、炭素数
9乃至16を有するハロゲン化パラフイン、および
鎖長が6乃至15の側鎖を有するアルキルベンゼン
から成る群から選択される有機溶剤であつて、こ
れらは単独もしくは2種以上の混合物としても使
用し得る。 これらの有機溶剤について詳しく説明すると、
炭素数9〜17を有するパラフインのうちノルマル
パラフインは石油の灯油および軽油留分中に約20
〜25%含有されているものである。すなわち、沸
点約160℃〜350℃の留分を水素化脱硫した後、ゼ
オライト(モレキユラーシーブ)等を用いて分
離、回収し得るものであつて、一般にソフト洗剤
の原料として使用されている。 上記パラフインのうちでも炭素数の多いものの
方がエポキシ化の促進作用が高く、特に炭素数12
〜16のものが好ましい。因に、炭素数が9より少
ないとエポキシ化の促進作用がみられず、一方17
より多くなつても該促進作用が低下し、加うるに
室温で固化するようになるので実用的でない。ま
た、上記パラフインのうちイソパラフインは、上
述した留分中にノルマルパラフインと共存してい
るものであつて、精密蒸留によりノルマルパラフ
インと分離し得るが、実際にはノルマルパラフイ
ンとの混合物として用いるのが便利である。な
お、側鎖がメチルやエチルのような短い鎖長のも
のが一般的であるが、炭素数が12〜16を有するイ
ソパラフインがエポキシ化促進上好ましい。 次に、炭素数10〜18を有するオレフインはプロ
ピレンやブチレンの低重合体又はオリゴマーであ
つてもよく、また試薬として市販されているもの
も適用し得る。一般には直鎖状又は低分岐状モノ
オレフインである。 なお、炭素数が9より少ないオレフインではエ
ポキシ化の促進効果はみられず、一方18より多い
ものでは該効果も低く、加うるに粘性が高くなる
ので実用的でない。 有機溶剤としての炭素数9〜16を有するハロゲ
ン化パラフインは、塩素化並びに臭素化パラフイ
ンであつて、塩化デシル、塩化ウンデシル、塩化
ドデシル、塩化トリデシル、塩化テトラデシル、
臭化デシル、臭化ウンデシル、臭化ドデシル、臭
化テトラデシル、臭化ヘキサデシル等を包含す
る。なお、炭素数が9より少くても又16より多く
てもエポキシ化促進効果がみられなくなる。 次に、鎖長が6〜15の側鎖を有するアルキルベ
ンゼンは通常ハード又はソフト洗剤の中間体とし
て利用されているものであつて、炭素数6〜15の
直鎖もしくは分岐アルキル基を側鎖に有するもの
である。 なお、上記鎖長が6〜15の範囲外のものではエ
ポキシ化促進効果はみられないか、又は低くて実
用的でない。 上記有機溶剤の菌体培養液もしくは菌体懸濁液
などの菌体含有水性液に対する使用割合は、有機
溶剤の種類により異なることもあるが通常1〜
200vol/vol%、好ましくは10〜100vol/vol%で
ある。 なお、有機溶剤を存在させる場合の反応条件、
反応方式および生成エポキシドの分離、採取方法
は前述したと同様に適用することができ、この有
機溶剤の存在下での反応により、目的とするエポ
キシドの生産性を一そう顕著に高めることができ
る。 本発明により得られるエポキシドはさきに言及
した如き従来知られている種々の広範囲な用途に
供することが出来る。 以下実施例により本発明を更に具体的に説明す
る。 実施例 1 本例は種々の菌株によるスチレンからスチレン
オキサイドを生産する方法を例示したものであ
る。 菌懸濁液の調製 第1表に記載した10種の菌株の3白金耳を
NBG培地(オキソイド社製ラブレンコパウダー
10g、バクテリオロジカルペプトン10g、グルコ
ース10g及び塩化ナトリウム5gに水道水を加え
て1とし、1N−苛性ソーダ水溶液でPH7.5に調
整した後オートクレーブ中で120℃15分加熱殺菌
した液体培地)100mlを収容した500ml容の坂口フ
ラスコに接種し、30℃で48時間振盪培養した。こ
の培養により生成した菌体を0.01M−燐酸緩衝液
(PH7.5)で1回洗浄し、ついで下記に示す反応培
地で1回洗浄後、同反応培地中に再懸濁すること
により10種の菌株についてそれぞれ菌懸濁液を調
製した。なお菌懸濁液中の菌濃度は乾燥菌体濃度
として3.5〜4.0g/の範囲となる様にした。 反応培地 K2HPO4 1.74g MgSO4・7H2O 1.50g FeSO4・7H2O 0.05g 脱イオン水 1 PHは2N−H2SO4で8.0に調整 反応と生成物の分析 前記菌懸濁液20mlとスチレン0.1ml、n−ヘキ
サデカン2mlとを500ml容坂口フラスコに入れて
密栓し、30℃で24時間振盪培養したのち50mlのエ
ーテルで抽出して生成したスチレンオキサイド量
を定量した。 定量はジエチレングリコールサクシネートをユ
ニポートB(ガスクロ工業社製)80〜100メツシユ
に担持したカラムとイオン化炎検出器を有するガ
スクロマトグラフを用いて行なつた。 結 果 第1表に用いた菌株の種類とそれぞれの場合の
スチレンオキサイド生成量とを示した。
The present invention relates to a method for producing an epoxide having a corresponding aromatic ring from an olefin having an aromatic ring using microorganisms. Epoxide compounds are widely used as raw materials or intermediates for the production of various organic chemical products including synthetic resins, surfactants, medicines, and agricultural chemicals. Prior Art Conventionally, methods for producing epoxides from corresponding olefins include chemical methods using peroxides such as hydrogen peroxide and organic peracids as oxidizing agents, and biochemical methods using oxygen oxidation using microorganisms. Are known. In addition, in the method of producing epoxide using microorganisms, the genus Nocardia, Pseudomonas, Brevibacterium, Corynebacterium, Mycobacterium, Arthrobacter, Acinetobacter, Alcaligenes, and Methylobacterium are used. It is known that epoxides are produced from linear olefins by microorganisms belonging to the genus Methylococcus, Methylocinus, and others. However, as a method for producing the corresponding epoxide from an olefin having an aromatic ring using microorganisms, only methods using microorganisms belonging to the genus Pseudomonas and Brevibacterium are known. That is, the only microorganisms that belong to the above-mentioned genus are known as microorganisms that have the ability to produce epoxides from olefins having aromatic rings. As a result of searching for microorganisms belonging to various genera that have the ability to produce epoxides from olefins having aromatic rings, the present inventor discovered that epoxide-producing bacteria belonging to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, or Rhodococcus have aromatic rings. It was discovered that an epoxide having an aromatic ring can also be produced from an olefin having the following, and the present invention was completed. OBJECT OF THE INVENTION Therefore, an object of the present invention is to provide a method for producing an epoxide having a corresponding aromatic ring from an olefin having an aromatic ring using epoxide-producing bacteria belonging to each of the above genera. The present invention will be explained in detail below. Structure of the Invention The structural feature of the present invention is that a microorganism having an epoxide-producing ability belonging to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, or Rhodocotcus is allowed to act on an olefin having an aromatic ring under aerobic conditions. The purpose is to produce an epoxide having a corresponding aromatic ring, and to separate and collect the resulting epoxide. The present invention is also characterized in that the epoxide is produced more advantageously by allowing the microorganism to act in the presence of a water-insoluble organic solvent. The microorganisms used in the present invention belong to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, or Rhodocotcus, and include the following strains. These strains are from the American Type Culture Collection.
It has been deposited with the following number and is easily available. Arthrobacter rubellus ATCC 21495 Arthrobacter simplex ATCC 21032 Arthrobacter sp. ATCC 27778 Corynebacterium fujiokense ATCC 21496 Corynebacterium hydrocarboclastus ATCC
15108 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29670 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29672 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29675 Rhodococcus sp. ATCC 21499 Rhodococcus sp. ATCC 29673 In the present invention, an olefin having an aromatic ring ( The raw material olefin (hereinafter referred to as raw material olefin) is a linear or branched olefin having an aromatic ring such as a phenyl group or a naphthyl group (however, the double bond is located at the α, β or γ position from any terminal carbon atom). certain olefins), such as styrene, α-methylstyrene, β-methylstyrene, allylbenzene, 4-phenyl-1-butene, 1-phenyl-2-butene, 2-vinylnaphthalene, etc., and further substituents on the aromatic ring. Examples include p-methylstyrene, o-chlorostyrene, m-chlorostyrene, p-chlorostyrene, and the like. In the present invention, these raw material olefins are used alone or as a mixture of two or more as a reaction substrate. In the present invention, in order to perform epoxidation by causing the above-mentioned microorganism to act on the above-mentioned raw material olefin,
For example, (a) a method in which the microorganisms obtained by culturing and propagating the microorganism in advance are brought into contact with the raw material olefin under aerobic conditions to react; (b) the above microorganism is grown aerobically in a culture medium containing the raw material olefin. A method of culturing under certain conditions can be applied. In the above method (a) in which the raw material olefin is brought into contact with the growing bacterial cells and reacted, carbohydrates such as glucose, sucrose, molasses, starch hydrolyzate, hydrocarbons such as propane, butane, dodecane, tetradecane, etc. are used as carbon sources. Use a substance with a high bacterial growth effect such as acetic acid and ethanol, and add nitrogen sources such as ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium phosphate, ammonium nitrate, urea, aqueous ammonia, amino acids and other assimilable organic nitrogen compounds, and potassium phosphate. , sodium phosphate, magnesium sulfate, manganese sulfate, primary sulfate
The inoculum of the above-mentioned microorganisms is inoculated into a medium to which inorganic salts such as iron, ferric chloride, calcium chloride, and manganese chloride are added, and if necessary, growth-promoting substances such as vitamins, yeast extract, and corn staple liquor. Then, the cells are grown under aerobic conditions. The bacterial cell culture obtained in this way,
Alternatively, the raw material olefin and an oxygen-containing gas such as air, oxygen, or oxygen-enriched gas are supplied to a suspension of bacterial cells or immobilized bacterial cells separated from the culture to cause a reaction. The reaction is carried out for half a day to six days at a pH of 5 to 9 and a temperature of 20 to 50°C, which is appropriately determined depending on the type of microorganism and raw material olefin. Although the reaction is usually carried out under normal pressure, it is also possible to improve the productivity of epoxide by carrying out the reaction under increased pressure. In addition, by appropriately adding the carbon source, nitrogen source, and other components used for bacterial cell proliferation during the reaction, the bacterial cell concentration and the epoxide production activity of the bacterial cells can be maintained or increased. The ratio of the raw material olefin used in the reaction to the bacterial cell-containing aqueous solution is usually 0.1 to 50 vol/vol%, preferably 0.5 to 20 vol/vol%. The reaction can be carried out either batchwise or continuously, or semi-batchwise in which the raw material olefin or other components are continuously or intermittently replenished during the reaction. The epoxide produced by the above reaction undergoes phase separation.
Separate and collect by applying known methods such as extraction and distillation. Next, in the method (b) using culture, a raw material olefin is added during bacterial growth in the method (a) above to produce epoxide in one step.
Regarding the culture conditions (PH, temperature, pressure, amount of raw material olefin added, etc.), culture method, and separation and collection of the produced epoxide, the reaction conditions, reaction method, and separation and collection method described in (a) above can be similarly applied. As mentioned above, the present invention includes an embodiment in which the epoxidation reaction of the raw material olefin by the microorganism is carried out in the presence of a water-insoluble organic solvent, and this embodiment will be explained below. In the present invention, the water-insoluble organic solvent (hereinafter simply referred to as organic solvent) that is present when epoxidizing the raw material olefin by the action of the microorganism is paraffin having 9 to 17 carbon atoms, paraffin having 10 to 18 carbon atoms, and the like. an organic solvent selected from the group consisting of olefins having a carbon number of 9 to 16, halogenated paraffins having a carbon number of 9 to 16, and alkylbenzenes having a side chain having a chain length of 6 to 15, which may be used alone or as a mixture of two or more. may also be used. A detailed explanation of these organic solvents is as follows:
Among the paraffins with carbon numbers 9 to 17, normal paraffins are present in approximately 20% of the kerosene and gas oil fractions of petroleum.
It contains ~25%. That is, it can be separated and recovered using zeolite (molecular sieve) after hydrodesulfurizing the fraction with a boiling point of about 160°C to 350°C, and is generally used as a raw material for soft detergents. . Among the above paraffins, those with a large number of carbon atoms have a higher effect on promoting epoxidation, especially those with a carbon number of 12
~16 are preferred. Incidentally, when the number of carbon atoms is less than 9, no promoting effect on epoxidation is observed;
Even if the amount is larger, the accelerating effect will be reduced and, in addition, it will solidify at room temperature, which is not practical. Among the above paraffins, isoparaffin coexists with normal paraffin in the above-mentioned fraction, and can be separated from normal paraffin by precision distillation, but in reality, isoparaffin is used as a mixture with normal paraffin. is convenient. Although those with short side chains such as methyl and ethyl are generally used, isoparaffins having 12 to 16 carbon atoms are preferred in terms of promoting epoxidation. Next, the olefin having 10 to 18 carbon atoms may be a low polymer or oligomer of propylene or butylene, and those commercially available as reagents may also be used. Generally, it is a linear or less branched monoolefin. It should be noted that olefins having less than 9 carbon atoms do not have the effect of accelerating epoxidation, while those having more than 18 carbon atoms have a low effect and are not practical because of their high viscosity. Halogenated paraffins having 9 to 16 carbon atoms as organic solvents include chlorinated and brominated paraffins, such as decyl chloride, undecyl chloride, dodecyl chloride, tridecyl chloride, tetradecyl chloride,
Includes decyl bromide, undecyl bromide, dodecyl bromide, tetradecyl bromide, hexadecyl bromide, and the like. Incidentally, even if the number of carbon atoms is less than 9 or more than 16, the effect of promoting epoxidation is not observed. Next, alkylbenzene having a side chain with a chain length of 6 to 15 is usually used as an intermediate for hard or soft detergents, and has a straight or branched alkyl group with a carbon number of 6 to 15 in the side chain. It is something that you have. If the chain length is outside the above range of 6 to 15, the effect of promoting epoxidation is not observed or is so low that it is not practical. The ratio of the above-mentioned organic solvent to a bacterial cell-containing aqueous liquid such as a bacterial cell culture solution or a bacterial cell suspension may vary depending on the type of organic solvent, but it is usually 1 to 1.
200vol/vol%, preferably 10-100vol/vol%. In addition, the reaction conditions when an organic solvent is present,
The reaction method and method for separating and collecting the produced epoxide can be applied in the same manner as described above, and the productivity of the desired epoxide can be further significantly increased by the reaction in the presence of this organic solvent. The epoxide obtained by the present invention can be used in a wide variety of conventionally known applications as mentioned above. The present invention will be explained in more detail with reference to Examples below. Example 1 This example illustrates a method for producing styrene oxide from styrene using various bacterial strains. Preparation of bacterial suspension Three platinum loops of the ten bacterial strains listed in Table 1 were
NBG medium (Lavrenko powder manufactured by Oxoid)
10g of bacteriological peptone, 10g of glucose, and 5g of sodium chloride were added with tap water to make 1, adjusted to pH 7.5 with 1N caustic soda aqueous solution, and then heated and sterilized in an autoclave at 120°C for 15 minutes.Contains 100ml of liquid medium. The mixture was inoculated into a 500 ml Sakaguchi flask, and cultured with shaking at 30°C for 48 hours. The bacterial cells produced by this culture were washed once with 0.01M phosphate buffer (PH7.5), then washed once with the reaction medium shown below, and then resuspended in the same reaction medium. Bacterial suspensions were prepared for each of the following bacterial strains. The bacterial concentration in the bacterial suspension was adjusted to be in the range of 3.5 to 4.0 g/dry bacterial cell concentration. Reaction medium K 2 HPO 4 1.74g MgSO 4・7H 2 O 1.50g FeSO 4・7H 2 O 0.05g Deionized water 1 PH adjusted to 8.0 with 2N−H 2 SO 4 Reaction and analysis of products Analysis of the above bacteria suspension 20 ml of the solution, 0.1 ml of styrene, and 2 ml of n-hexadecane were placed in a 500 ml Sakaguchi flask, the flask was tightly stoppered, and the flask was cultured with shaking at 30°C for 24 hours, followed by extraction with 50 ml of ether to quantify the amount of styrene oxide produced. Quantification was carried out using a gas chromatograph equipped with a column carrying diethylene glycol succinate on a Uniport B (manufactured by Gascro Kogyo Co., Ltd.) 80-100 mesh and an ionization flame detector. Results Table 1 shows the types of bacterial strains used and the amount of styrene oxide produced in each case.

【表】【table】

【表】 実施例 2 本例は種々の原料オレフインに同一の微生物を
作用させてエポキシ化を行なつた例である。 Rhodococcus rhodochrous ATCC 29670を実
施例1に記載の方法で培養し菌懸濁液を調製し
た。この菌懸濁液20mlに第2表記載の原料オレフ
イン0.1ml、n−テトラデカン2mlとを添加し密
栓した500ml容坂口フラスコ内で実施例1の記載
と同様の方法で反応させ、生成したエポキシドを
分析した。結果を第2表に示す。
[Table] Example 2 This example is an example in which various raw material olefins were subjected to epoxidation by allowing the same microorganism to act on them. Rhodococcus rhodochrous ATCC 29670 was cultured by the method described in Example 1 to prepare a bacterial suspension. To 20 ml of this bacterial suspension, 0.1 ml of the raw material olefin and 2 ml of n-tetradecane listed in Table 2 were added, and the reaction was carried out in a tightly stoppered 500 ml Sakaguchi flask in the same manner as described in Example 1. analyzed. The results are shown in Table 2.

【表】 実施例 3 本例は反応を種々の有機溶剤の存在下で行なつ
た例を示したものである。 菌懸濁液の調製 菌株Arthrobacter sp.ATCC 27778を用いて実
施例1と同様の方法で菌懸濁液を調製した。 反応と生成物の分析 前記菌懸濁液20ml、原料オレフインとしてp−
クロロスチレン0.5ml、第3表に示されている有
機溶剤10mlを500ml容坂口フラスコに入れ実施例
1に記載の方法で反応させ、反応後有機溶剤層を
ガスクロマトグラフで分析し、生成したp−クロ
ロスチレンオキサイドを定量した。 結 果 用いた有機溶剤の種類と生成したp−クロロス
チレンオキサイド量を第3表に示す。 なお、対照として有機溶剤を存在させない場合
についても同様にして第3表に示した。
[Table] Example 3 This example shows an example in which the reaction was carried out in the presence of various organic solvents. Preparation of bacterial suspension A bacterial suspension was prepared in the same manner as in Example 1 using the bacterial strain Arthrobacter sp. ATCC 27778. Reaction and product analysis 20 ml of the above bacterial suspension, p-
0.5 ml of chlorostyrene and 10 ml of the organic solvent shown in Table 3 were placed in a 500 ml Sakaguchi flask and reacted in the manner described in Example 1. After the reaction, the organic solvent layer was analyzed by gas chromatography to determine the produced p- Chlorostyrene oxide was quantified. Results Table 3 shows the type of organic solvent used and the amount of p-chlorostyrene oxide produced. Note that Table 3 also shows the case where no organic solvent was present as a control.

【表】 合物
[Table] Compound

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 アルスロバクター属、コリネバクテリウム
属、又はロドコツカス属に属するエポキシド生産
能を有する微生物を、芳香環を有するオレフイン
に好気的条件下で作用させて相当する芳香環を有
するエポキシドを産生し、得られたエポキシドを
分離、採取することを特徴とするエポキシドの製
造方法。 2 アルスロバクター属、コリネバクテリウム
属、又はロドコツカス属に属するエポキシド生産
能を有する微生物を、水不溶性有機溶剤の存在下
に、芳香環を有するオレフインに好気的条件下で
作用させて相当する芳香環を有するエポキシドを
産生し、得られたエポキシドを分離、採取するこ
とを特徴とするエポキシドの製造方法。 3 水不溶性有機溶剤は、炭素数9乃至17を有す
るパラフイン、炭素数10乃至18を有するオレフイ
ン、炭素数9乃至16を有するハロゲン化パラフイ
ン及び鎖長が6乃至15の側鎖を有するアルキルベ
ンゼンから成る群から選択される1種又は2種以
上の混合物である特許請求の範囲第2項記載の製
造方法。
[Claims] 1. A microorganism having epoxide-producing ability belonging to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, or Rhodocotcus is allowed to act on an olefin having an aromatic ring under aerobic conditions to produce the corresponding aromatic ring. 1. A method for producing an epoxide, which comprises producing an epoxide containing the epoxide, and separating and collecting the obtained epoxide. 2 A microorganism having epoxide-producing ability belonging to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, or Rhodocotcus is allowed to act on an olefin having an aromatic ring under aerobic conditions in the presence of a water-insoluble organic solvent. A method for producing an epoxide, which comprises producing an epoxide having an aromatic ring, and separating and collecting the obtained epoxide. 3. The water-insoluble organic solvent consists of paraffin having 9 to 17 carbon atoms, olefin having 10 to 18 carbon atoms, halogenated paraffin having 9 to 16 carbon atoms, and alkylbenzene having a side chain having a chain length of 6 to 15. The manufacturing method according to claim 2, which is one type or a mixture of two or more types selected from the group.
JP7195184A 1984-04-11 1984-04-11 Method of epoxide production utilizing microorganism Granted JPS60214895A (en)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH026961U (en) * 1988-06-28 1990-01-17

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