JPS62294080A - 殺虫蛋白質産生枯草菌及びその製造法 - Google Patents
殺虫蛋白質産生枯草菌及びその製造法Info
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- JPS62294080A JPS62294080A JP61136021A JP13602186A JPS62294080A JP S62294080 A JPS62294080 A JP S62294080A JP 61136021 A JP61136021 A JP 61136021A JP 13602186 A JP13602186 A JP 13602186A JP S62294080 A JPS62294080 A JP S62294080A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
3、発明の詳細な説明
本発明は遺伝子組換えの手法により造成された、病原性
および自然界での増殖能を有せず、高い殺虫活性を有す
る蛋白質を産生ずる枯草菌形質転換株とその菌体の製造
法に関する。
および自然界での増殖能を有せず、高い殺虫活性を有す
る蛋白質を産生ずる枯草菌形質転換株とその菌体の製造
法に関する。
バチルス チュリンゲンシス(Bacillus th
ur−暉す士すュ鰭−1以後BTと略す)の芽胞嚢中に
形成される結晶性殺虫蛍白質は鱗翅目昆虫に対して強力
な殺虫作用を有し、しかもヒトを含む動物および植物に
対して無害であることから、農園芸用殺虫剤として欧米
で広く用いられてきた。
ur−暉す士すュ鰭−1以後BTと略す)の芽胞嚢中に
形成される結晶性殺虫蛍白質は鱗翅目昆虫に対して強力
な殺虫作用を有し、しかもヒトを含む動物および植物に
対して無害であることから、農園芸用殺虫剤として欧米
で広く用いられてきた。
しかし、殺虫蛋白質を有効成分とする殺虫剤(以後、B
T剤と称す)は、BTの細胞や胞子を含むため、日本で
は殺虫剤の散布後にBT菌が増殖し、養蚕に大きな被害
を与えることが懸念された。
T剤と称す)は、BTの細胞や胞子を含むため、日本で
は殺虫剤の散布後にBT菌が増殖し、養蚕に大きな被害
を与えることが懸念された。
この被害を防止するため、熱処理、化学薬品処理等によ
り、BT剤中の生細胞、胞子の殺菌が行われてきたが、
激しい段面条件を用いる必要があり、殺虫蛋白質の変性
による殺虫活性の低下がさけられず、また殺虫活性を保
持させるためには、加熱処理と化学薬品処理等の組み合
わせが必要となり、工業的に煩雑な処理工程のために製
造コストの上昇をきたした。
り、BT剤中の生細胞、胞子の殺菌が行われてきたが、
激しい段面条件を用いる必要があり、殺虫蛋白質の変性
による殺虫活性の低下がさけられず、また殺虫活性を保
持させるためには、加熱処理と化学薬品処理等の組み合
わせが必要となり、工業的に煩雑な処理工程のために製
造コストの上昇をきたした。
さらにBT菌自身はヒトに対して病原性を有するバチル
ス セレウスと極めて近縁であるといわれている(蛋白
質・核酸/酵素 29巻444頁1984年)。
ス セレウスと極めて近縁であるといわれている(蛋白
質・核酸/酵素 29巻444頁1984年)。
このような事情かられが国においては、BT菌そのもの
又はその製剤を殺虫蛍白質として用いることは好ましい
こととは考えられない。
又はその製剤を殺虫蛍白質として用いることは好ましい
こととは考えられない。
しかるに近年、遺伝子組換の手法が発達し、所望の有用
な性質を有する微生物を育種することが可能となってき
た。
な性質を有する微生物を育種することが可能となってき
た。
本発明者等は、先に述べたBT殺虫蛋白質を含む殺虫剤
の種々の欠点を克服するために遺伝子組換えの手法によ
り殺虫蛋白質を産生ずる枯草菌菌株の造成を試み、後述
するように高い活性を有する殺虫性を有する枯草菌株を
造成し、本発明を完成した。
の種々の欠点を克服するために遺伝子組換えの手法によ
り殺虫蛋白質を産生ずる枯草菌菌株の造成を試み、後述
するように高い活性を有する殺虫性を有する枯草菌株を
造成し、本発明を完成した。
また、この形質転換株および親株であるBTソットー株
を培養して得た菌体を殺虫効果試験に供試した結果、該
形質転換株はBT菌に比し優れた殺虫効果を示し、本発
明の有効性を立証した。
を培養して得た菌体を殺虫効果試験に供試した結果、該
形質転換株はBT菌に比し優れた殺虫効果を示し、本発
明の有効性を立証した。
枯草菌は、古来、納豆の製造に用いられてきたことから
明らかなようにヒトに対する病原性がな(、アミノ酸、
核酸、酵素等の製造にも用いられてきたので工業用微生
物としての使用経験も長い。
明らかなようにヒトに対する病原性がな(、アミノ酸、
核酸、酵素等の製造にも用いられてきたので工業用微生
物としての使用経験も長い。
また枯草菌は大腸菌についでその遺伝的性質が明らかに
され、種々の変異株も造成されている。
され、種々の変異株も造成されている。
従って、BT調製剤問題とされた蚕に対する毒性や胞子
殺菌については、胞子欠損枯草菌や栄養要求性を有する
枯草菌を用いて殺虫蛋白質をつくらせることにより容易
に克服可能である。例えば、殺虫蛋白質を産生ずる胞子
欠損枯草菌は高熱で殺菌処理する必要がないので殺虫活
性の低下をまねくことはない。
殺菌については、胞子欠損枯草菌や栄養要求性を有する
枯草菌を用いて殺虫蛋白質をつくらせることにより容易
に克服可能である。例えば、殺虫蛋白質を産生ずる胞子
欠損枯草菌は高熱で殺菌処理する必要がないので殺虫活
性の低下をまねくことはない。
また殺虫蛋白質を産生ずる栄養要求性枯草菌は殺菌処理
をしなくても、自然界には要求する栄養源が枯草菌に利
用し得る形態ではほとんど存在し得ないので、自然界に
散布しても増殖することは出来ず、速やかに死滅する。
をしなくても、自然界には要求する栄養源が枯草菌に利
用し得る形態ではほとんど存在し得ないので、自然界に
散布しても増殖することは出来ず、速やかに死滅する。
従って本発明の成果は、今後の微生物殺虫剤の用途拡大
という面から極めて大きな意義を有する。
という面から極めて大きな意義を有する。
以下に本発明について詳細に説明する。
本発明で用いられるBT菌の菌体内殺虫蛋白質遺伝子と
は、BT凹が産生ずる菌体内殺虫蛋白質のアミノ酸配列
をコードする領域とプロモーター領域から成る遺伝子で
あり、BT菌の種々の亜種由来の遺伝子が使用可能であ
る。
は、BT凹が産生ずる菌体内殺虫蛋白質のアミノ酸配列
をコードする領域とプロモーター領域から成る遺伝子で
あり、BT菌の種々の亜種由来の遺伝子が使用可能であ
る。
例エバ、バチルス チュリンゲンシス クルスターキー
(アメリカン タイプカルチャーコレクション(ATC
Cと略す)保存番号33679) 、バチルス チュリ
ンゲンシス ソフト−(ATCC19270)、バチル
ス チュリンゲンシス アイザワイ(オハイオ大学 バ
チルス ジエネテソク ストックセンター(以後BGS
Cと略す)保存番号4J1)等の菌体内殺虫蛋白質遺伝
子が挙げられる。
(アメリカン タイプカルチャーコレクション(ATC
Cと略す)保存番号33679) 、バチルス チュリ
ンゲンシス ソフト−(ATCC19270)、バチル
ス チュリンゲンシス アイザワイ(オハイオ大学 バ
チルス ジエネテソク ストックセンター(以後BGS
Cと略す)保存番号4J1)等の菌体内殺虫蛋白質遺伝
子が挙げられる。
これらの菌体内殺虫蛋白質遺伝子を結合するベクターは
枯草菌で増殖可能なベクターであればいずれのものも使
用可能であるけれど、構造が良く知られ、広く用いられ
る等の理由によりプラスミドpUB110が使用に便利
である。
枯草菌で増殖可能なベクターであればいずれのものも使
用可能であるけれど、構造が良く知られ、広く用いられ
る等の理由によりプラスミドpUB110が使用に便利
である。
菌体内殺虫蛋白質遺伝子は適当な制限酵素で切断したベ
クターにDNA結合酵素を用いて結合される。この結合
方法は、通常の遺伝子組換えの方法で全く支障はない。
クターにDNA結合酵素を用いて結合される。この結合
方法は、通常の遺伝子組換えの方法で全く支障はない。
次に、得られた組換えDNA分子を枯草菌に導入して、
組換えプラスミドを含む枯草菌形質転換株を得る。
組換えプラスミドを含む枯草菌形質転換株を得る。
組換えDNA分子の枯草菌への導入は、通常、プロトプ
ラスト法(Chang、S、、and Cohen、S
、N、: Mol。
ラスト法(Chang、S、、and Cohen、S
、N、: Mol。
Gen、Genet、 168111(1978))
、あるいはコンピテント細胞法(Anagnostop
oulos、C,、and 5pizizen。
、あるいはコンピテント細胞法(Anagnostop
oulos、C,、and 5pizizen。
J、 :J、Bactriol、81.741 (19
61))により行われる。
61))により行われる。
形質転換株の選択は、ベクターに含まれるマーカー(例
えば、抗生物質耐性等)により容易に実施可能である。
えば、抗生物質耐性等)により容易に実施可能である。
このようにして得られた形質転換株を微生物の培養に用
いられる通常の培地で培養することにより、殺虫蛍白質
を産生ずる枯草菌が容易に得られる。
いられる通常の培地で培養することにより、殺虫蛍白質
を産生ずる枯草菌が容易に得られる。
組換えDNA分子を導入する枯草菌は使用目的に応じて
枯草菌の種々の変異株を選択することが出来る。例えば
自然界で増殖出来ず、速やかに死滅する枯草菌由来の殺
虫蛋白質から成る殺虫剤の製造には枯草菌の栄養要求性
変異株(ATCC33608)、または胞子欠損株(B
GSC151)または二つの性質を有する変異株(AT
CC35148)等が用いられる。
枯草菌の種々の変異株を選択することが出来る。例えば
自然界で増殖出来ず、速やかに死滅する枯草菌由来の殺
虫蛋白質から成る殺虫剤の製造には枯草菌の栄養要求性
変異株(ATCC33608)、または胞子欠損株(B
GSC151)または二つの性質を有する変異株(AT
CC35148)等が用いられる。
これらの枯草菌変異株を用いることによれば、殺虫蛋白
質を含む菌体を加熱処理、化学薬品処理する必要がない
ので高い活性と安全性を有し、しかもコストの低い微生
物殺虫剤が得られる。
質を含む菌体を加熱処理、化学薬品処理する必要がない
ので高い活性と安全性を有し、しかもコストの低い微生
物殺虫剤が得られる。
組換えDNA分子を含む形質転換株が殺虫蛋白質を産生
ずることは、後述するようにBT菌由来の菌体内殺虫蛋
白質に対する抗体を用いた免疫二重拡散試験法により、
また鱗翅目昆虫の幼虫を用いた殺虫活性試験により明確
に示される。
ずることは、後述するようにBT菌由来の菌体内殺虫蛋
白質に対する抗体を用いた免疫二重拡散試験法により、
また鱗翅目昆虫の幼虫を用いた殺虫活性試験により明確
に示される。
特に注目すべき点は、遺伝子組換えの手法により造成さ
れた殺虫蛋白質を産生ずる枯草菌が、殺虫蛋白質遺伝子
が由来した親株のBT菌よりも強い殺虫活性を示したこ
とである(第一〜三表)。
れた殺虫蛋白質を産生ずる枯草菌が、殺虫蛋白質遺伝子
が由来した親株のBT菌よりも強い殺虫活性を示したこ
とである(第一〜三表)。
このことは本発明によって得られた殺虫蛋白質を産生ず
る枯草菌が殺虫剤の有効成分として極めて有用であるこ
とを示すものである。
る枯草菌が殺虫剤の有効成分として極めて有用であるこ
とを示すものである。
以下に実施例と試験例を示す。
実施例1(バチルス・チュリンゲンシス・ソノトーの菌
体内殺虫蛋白質遺伝子を含む組換えDNA分子の調製) バチルス・チュリンゲンシス・ソフト−(ATCC19
270株)をペンアッセイブロス(Difco社製)2
01を用いて30℃で15時間培養した後、集面し、H
ansenの方法(J、Bacteriol、 135
.227(1978))に従いプラスミドを調製した。
体内殺虫蛋白質遺伝子を含む組換えDNA分子の調製) バチルス・チュリンゲンシス・ソフト−(ATCC19
270株)をペンアッセイブロス(Difco社製)2
01を用いて30℃で15時間培養した後、集面し、H
ansenの方法(J、Bacteriol、 135
.227(1978))に従いプラスミドを調製した。
このプラスミド50Kを制限酵素Pstl(宝酒造製)
50単位を用い37℃で2時間インキエベートすること
により切断した。反応系の組成は10mMトリス−塩酸
緩衝液(pH7,5)、10mM MgC1g、50m
M NaC1,1mMジチオスレイトールである。
50単位を用い37℃で2時間インキエベートすること
により切断した。反応系の組成は10mMトリス−塩酸
緩衝液(pH7,5)、10mM MgC1g、50m
M NaC1,1mMジチオスレイトールである。
本反応により切断されたDNA断片は、常法に従いフェ
ノール抽出およびエーテル抽出により精製し、エタノー
ル沈澱により回収した。
ノール抽出およびエーテル抽出により精製し、エタノー
ル沈澱により回収した。
得られたPst I切断DNA断片(供与DNA断片)
は、次ぎに制限酵素Pstlで完全に切断した後、大腸
菌アルカリ性ホスファターゼで末端リン酸エステルを加
水分解したプラスミドpBR322(ATCC3701
7)に結合した。
は、次ぎに制限酵素Pstlで完全に切断した後、大腸
菌アルカリ性ホスファターゼで末端リン酸エステルを加
水分解したプラスミドpBR322(ATCC3701
7)に結合した。
結合にはT4リガーゼを用い反応には供与DNA断片2
ON、pBR3221011gを使用した。反応系の組
成はT4リガーゼ(宝酒造製)10単位、6.6mM
トリス−塩酸緩衝液(pH7,6) 、6.6mM
MgC1z 、10mMジチオスレイトール、1mM
ATPである。反応は4℃で15時間行った。
ON、pBR3221011gを使用した。反応系の組
成はT4リガーゼ(宝酒造製)10単位、6.6mM
トリス−塩酸緩衝液(pH7,6) 、6.6mM
MgC1z 、10mMジチオスレイトール、1mM
ATPである。反応は4℃で15時間行った。
反応後、反応液から0.1pg DNAに相当する量を
抜き取り、0.7%アガロース電気泳動を行った結果、
ベクターであるpBR322と供与DNA断片が結合し
、組換体DNA分子となっていることが認められた。
抜き取り、0.7%アガロース電気泳動を行った結果、
ベクターであるpBR322と供与DNA断片が結合し
、組換体DNA分子となっていることが認められた。
このようにして得られた組換体DNA分子を大腸菌HB
101株(ATCC33694)にカルシウム処理コ
ンピテント細胞法(Mandel、M、+and Hi
ga+A+: J、Mol。
101株(ATCC33694)にカルシウム処理コ
ンピテント細胞法(Mandel、M、+and Hi
ga+A+: J、Mol。
Biol、 53159(1970))に従って導入し
た。
た。
得られた形質転換株は全て、バチルス・チュリンゲンシ
ス ソットーの殺虫蛋白質の抗体を用いたラジオイムノ
検定(Ehrlich et al、: Ce1l 1
3゜681 (1978) )により選別し陽性となっ
た株のうち1株(#801)を選び成書に記載される方
法(”Mo1ecu−1ar Cloning” p8
6. Co1d Spring Harbor L
abo−ra tory)に従いプラスミドを調製した
。
ス ソットーの殺虫蛋白質の抗体を用いたラジオイムノ
検定(Ehrlich et al、: Ce1l 1
3゜681 (1978) )により選別し陽性となっ
た株のうち1株(#801)を選び成書に記載される方
法(”Mo1ecu−1ar Cloning” p8
6. Co1d Spring Harbor L
abo−ra tory)に従いプラスミドを調製した
。
得られたプラスミドを制限酵素Pstlで切断した後、
0.7zアガロースゲル電気泳動で調べた結果、該プラ
スミド(ρ5P801と命名)はベクターであるpBR
322のPstIの切断部位にサイズ約6.6にbの供
与DNA断片が挿入された組換体DNA分子であること
が判明した。
0.7zアガロースゲル電気泳動で調べた結果、該プラ
スミド(ρ5P801と命名)はベクターであるpBR
322のPstIの切断部位にサイズ約6.6にbの供
与DNA断片が挿入された組換体DNA分子であること
が判明した。
プラスミドpsP801にはHpa l切断部位が2ケ
所ある。そこで、psP801 Hpa I分解物を得
た後、T4DNA リガーゼを用いる方法でこれを再結
合し、殺虫蓋白質遺伝子を含むさらに小型の組換プラス
ミドを構築した。
所ある。そこで、psP801 Hpa I分解物を得
た後、T4DNA リガーゼを用いる方法でこれを再結
合し、殺虫蓋白質遺伝子を含むさらに小型の組換プラス
ミドを構築した。
再結合して作成したプラスミドは前述のカルシウム処理
コンピテント細胞法で大腸菌88101株に導入し、得
られた形質転換株よりプラスミドを前述の常法により調
製したところpsP801由来のサイズ約5.6Kbの
断片が挿入されたプラスミドpHP 1を得た。
コンピテント細胞法で大腸菌88101株に導入し、得
られた形質転換株よりプラスミドを前述の常法により調
製したところpsP801由来のサイズ約5.6Kbの
断片が挿入されたプラスミドpHP 1を得た。
このプラスミドpHP 1 1100pを制限酵素Ps
tlを用いて前述の反応条件で切断した後、0.7χア
ガロースゲル電気泳動により40v5時間泳動した。
tlを用いて前述の反応条件で切断した後、0.7χア
ガロースゲル電気泳動により40v5時間泳動した。
泳動後、5.6Kb部分のゲルを切り出し、フェノール
抽出及びエーテル抽出により精製し、エタノール沈澱に
よりDNAを回収した。
抽出及びエーテル抽出により精製し、エタノール沈澱に
よりDNAを回収した。
該回収DNAをTE緩衝液(10mM )リス−塩酸
緩衝液(pH8,0,1mM EDTA) 100パに
溶解し、そのうちDNA0.1g相当量を抜き取り、0
.7χアガロース電気泳動により、該回収DNAがサイ
ズ約5.6Kbの断片として精製されたことを確認し、
供与DNA断片として、以下の実験に供した。
緩衝液(pH8,0,1mM EDTA) 100パに
溶解し、そのうちDNA0.1g相当量を抜き取り、0
.7χアガロース電気泳動により、該回収DNAがサイ
ズ約5.6Kbの断片として精製されたことを確認し、
供与DNA断片として、以下の実験に供した。
実施例2(ベクター プラスミドと供与DNA断片の結
合および枯草菌への形質転換による栄養要求性形質転換
株の取得) 実施例1で得られた供与DNA断片50メを大腸菌DN
AポリメラーゼIのクレノーフラグメント10単位を用
い、30℃30分の反応で平滑末端化した。
合および枯草菌への形質転換による栄養要求性形質転換
株の取得) 実施例1で得られた供与DNA断片50メを大腸菌DN
AポリメラーゼIのクレノーフラグメント10単位を用
い、30℃30分の反応で平滑末端化した。
反応系の組成は0.1nM dNTPs 、ニックトラ
ンスレーション緩衝液(50mM )リス−塩酸緩衝液
(pH7,2=)、10mM Mg5o4.0.1mM
ジチオスレイトール、5 H/ra 1 ウシ血清ア
ルブミン)である。
ンスレーション緩衝液(50mM )リス−塩酸緩衝液
(pH7,2=)、10mM Mg5o4.0.1mM
ジチオスレイトール、5 H/ra 1 ウシ血清ア
ルブミン)である。
上記反応による生成物は、フェノール抽出及びエーテル
抽出により精製し、エタノール沈澱により回収した。
抽出により精製し、エタノール沈澱により回収した。
該回収DNA断片は、次ぎに制限酵素Pvu IIで完
全に切断し、大腸面アルカリ性ホスファターゼで末端リ
ン酸エステルを加水分解したプラスミドpUB110(
ATCC37015)ニT* DNAリガーゼを用いて
結合した。反応には回収DNA (供与DNA断片)2
0超、pUBllo 10肩を使用した。
全に切断し、大腸面アルカリ性ホスファターゼで末端リ
ン酸エステルを加水分解したプラスミドpUB110(
ATCC37015)ニT* DNAリガーゼを用いて
結合した。反応には回収DNA (供与DNA断片)2
0超、pUBllo 10肩を使用した。
得られた組換え体DNA分子による形質転換は、Cha
ng等のプロトプラスト法(Chang、S、、and
Coh−en、S、N、: Mo1.Gen、Gen
et、 168111(1978))に従って実施し
た。プロトプラストの再生培地には、カナマイシンを最
終濃度150pg/mlとなるように加えた。クローニ
ングの宿主菌には栄養要求性枯草菌IA 510株(B
GSC保存株)を用いた。
ng等のプロトプラスト法(Chang、S、、and
Coh−en、S、N、: Mo1.Gen、Gen
et、 168111(1978))に従って実施し
た。プロトプラストの再生培地には、カナマイシンを最
終濃度150pg/mlとなるように加えた。クローニ
ングの宿主菌には栄養要求性枯草菌IA 510株(B
GSC保存株)を用いた。
形質転換により得られたカナマイシン耐性株の全てより
プラスミドを調製した。
プラスミドを調製した。
プラスミドの調製は、カナマイシン耐性株をペンアッセ
イ培地(Difco社製) 20m1を用いて37℃1
5時間培養後、集菌し、集菌菌体を50mM トリス−
塩酸緩衝?t¥(pl!7.5) 、5n+M EDT
A、 50mM NaC1で洗浄した後、アルカリ法(
Birnboim、H,C,、and Po1y。
イ培地(Difco社製) 20m1を用いて37℃1
5時間培養後、集菌し、集菌菌体を50mM トリス−
塩酸緩衝?t¥(pl!7.5) 、5n+M EDT
A、 50mM NaC1で洗浄した後、アルカリ法(
Birnboim、H,C,、and Po1y。
J、:Nucleic Ac1d Res、 7151
3(1979))に従って行った。
3(1979))に従って行った。
得られたプラスミドを制限酵素Bcl I、C1a I
、EcoRV、HindlI[、Kpn I 、 Pv
u I[、Sac IおよびXba Iをもちいて切
断し、供与DNA1!7r片の挿入の有無を調べた。
、EcoRV、HindlI[、Kpn I 、 Pv
u I[、Sac IおよびXba Iをもちいて切
断し、供与DNA1!7r片の挿入の有無を調べた。
次ぎに供与DNA断片が挿入されていることが確認され
たプラスミドを有する株の菌体内殺虫蛋白質の産生の有
無を免疫二重拡散試験法(Ouchterl−ony+
Oe、、and Ni1sson、L、A、”Hand
book of Exper−imental 1m
muno1cgy(ed、Weir、P、M、)pl(
1973))により調べた。
たプラスミドを有する株の菌体内殺虫蛋白質の産生の有
無を免疫二重拡散試験法(Ouchterl−ony+
Oe、、and Ni1sson、L、A、”Hand
book of Exper−imental 1m
muno1cgy(ed、Weir、P、M、)pl(
1973))により調べた。
対象としてpUBlloを存する宿主菌IA 510株
およびDNA供与株であるバチルス チュリンゲンシス
ソットーを用いた。
およびDNA供与株であるバチルス チュリンゲンシス
ソットーを用いた。
培養には、枯草菌宿主株および形質転換株は胞子形成培
地(0,8%ニュートリエンドブロス(Difc。
地(0,8%ニュートリエンドブロス(Difc。
社製) 、1mM MgSO4,13,4mM KCI
、 0.01mM MnC1z、10−bM Fe5O
a 、10−M Ca(NOz)z)を用い、バチルス
チュリンゲンシス ソフト−は GYS培地(0,2
χ(NH4)zsOt、0.2! Yeast ext
racts O,05%に!HPO,,0,1χ G
lucose 、 0.032 MgSO4,0,00
8ZCaCIz 、0.005χMnSO4,pH7,
3)を用い、30℃3日間の振とう培養を行った。
、 0.01mM MnC1z、10−bM Fe5O
a 、10−M Ca(NOz)z)を用い、バチルス
チュリンゲンシス ソフト−は GYS培地(0,2
χ(NH4)zsOt、0.2! Yeast ext
racts O,05%に!HPO,,0,1χ G
lucose 、 0.032 MgSO4,0,00
8ZCaCIz 、0.005χMnSO4,pH7,
3)を用い、30℃3日間の振とう培養を行った。
この時、枯草菌の胞子形成培地にはカナマイシンを最終
濃度5 pg / m 1となるよう加えた。培養後、
それぞれの株の胞子形成を確認した後、遠心により集菌
し、集菌菌体をリゾチームによる溶菌およびLM Na
C1による洗浄を行い遠心し沈澱物を回収した。得られ
た沈澱物は15mM NaOHに懸濁し、25℃、10
時間インキュベートした後、遠心し胞子を除いた上清を
回収した。
濃度5 pg / m 1となるよう加えた。培養後、
それぞれの株の胞子形成を確認した後、遠心により集菌
し、集菌菌体をリゾチームによる溶菌およびLM Na
C1による洗浄を行い遠心し沈澱物を回収した。得られ
た沈澱物は15mM NaOHに懸濁し、25℃、10
時間インキュベートした後、遠心し胞子を除いた上清を
回収した。
6゛ 得られた上清を供試サンプルとし、バチルスチュ
リンゲンシス ソントーの凹体内殺虫蛋白質に対する抗
血清を用いて前述した方法により免疫二重拡散試験を行
った。
リンゲンシス ソントーの凹体内殺虫蛋白質に対する抗
血清を用いて前述した方法により免疫二重拡散試験を行
った。
その結果、この枯草菌形質転換株はバチルスチュリンゲ
ンシス ソフト−型の殺虫蛋白質を産生じていることが
明らかとなった。
ンシス ソフト−型の殺虫蛋白質を産生じていることが
明らかとなった。
また、この形質転換株を位相差電子顕微鏡で観察するこ
とにより結晶性蛋白質の存在が認められた。
とにより結晶性蛋白質の存在が認められた。
以上の結果から栄養要求性枯草菌形質転換株はバチルス
チュリンゲンシス ソントーと同様の殺虫蛋白質を産
生ずることが認められた。そこでこの形質転換体をFI
BTIと命名した。
チュリンゲンシス ソントーと同様の殺虫蛋白質を産
生ずることが認められた。そこでこの形質転換体をFI
BTIと命名した。
実施例3(殺虫蛍白質産住枯草茫栄養要求性胞子欠損形
質転換株の取得) 実施例2で得られたHBT 1株よりプラスミド(pH
BTlと命名)を精製し枯草菌栄養要求性胞子欠損株M
T−SP 31株(FERM BP−1034)への導
入を行った。
質転換株の取得) 実施例2で得られたHBT 1株よりプラスミド(pH
BTlと命名)を精製し枯草菌栄養要求性胞子欠損株M
T−SP 31株(FERM BP−1034)への導
入を行った。
プラスミドpHB71 50μgを用いて枯草菌−T−
5P 31株の形質転換をコンピテント法(Anagn
os t−opoulos、C,+and 5pizi
zen、J、;J、Bactertol、 81+74
1 (1961)に従って行なった。
5P 31株の形質転換をコンピテント法(Anagn
os t−opoulos、C,+and 5pizi
zen、J、;J、Bactertol、 81+74
1 (1961)に従って行なった。
プラスミド取込み後の培養液(1m1)は5 pg /
m 1カナマイシン含有TBAB培地(Difco社
製)に100 piずつブレーティングした。
m 1カナマイシン含有TBAB培地(Difco社
製)に100 piずつブレーティングした。
得られたカナマイシン耐性株の全てよりプラスミドを調
製し、制限酵素Bcl I 、 C1a l 5Ec
oRV、旧ndlll、Kpn I、Pvu II、S
ac r 、、Xba Iを用いて切断し、電気泳動を
行い、同様に切断したプラスミドpHBT 1の切断パ
ターンと比較した。
製し、制限酵素Bcl I 、 C1a l 5Ec
oRV、旧ndlll、Kpn I、Pvu II、S
ac r 、、Xba Iを用いて切断し、電気泳動を
行い、同様に切断したプラスミドpHBT 1の切断パ
ターンと比較した。
その結果pHBT 1と切断パターンが一致したプラス
ミドを有する株が得られた。
ミドを有する株が得られた。
この形質転換株を前述の方法に従いバチルスチュリンゲ
ンシス ソフト−の菌体内殺虫蛋白質の抗血清を用いた
免疫二重拡散試験に供し、陽性となった本株を5PB7
1と命名した。
ンシス ソフト−の菌体内殺虫蛋白質の抗血清を用いた
免疫二重拡散試験に供し、陽性となった本株を5PB7
1と命名した。
この株を前述の胞子形成培地で培養し、得られた菌体を
実施例2、試験例1の方法により検定した結果、殺虫活
性を有する蛋白質を産生じているが、胞子形成能は欠損
していることを確認した。
実施例2、試験例1の方法により検定した結果、殺虫活
性を有する蛋白質を産生じているが、胞子形成能は欠損
していることを確認した。
試験例1(実施例2で得られた枯草菌形質転換株菌体の
殺虫活性) 実施例2と同様に枯草菌には胞子形成培地を、バチルス
チュリンゲンシス ソフト−にはGYS培地を用いて
バチルス ズブチリスHBT 1 、バ、チルス チ
ュリンゲンシス ソソトー、バチルス:゛ズブチリスl
A310(pUBIIO)を30℃3日間培養して遠心
により集菌し、得られた菌体を培地と同量の住理食塩水
に懸濁し洗浄後、再度遠心し、沈澱画分を凍結乾燥した
。
殺虫活性) 実施例2と同様に枯草菌には胞子形成培地を、バチルス
チュリンゲンシス ソフト−にはGYS培地を用いて
バチルス ズブチリスHBT 1 、バ、チルス チ
ュリンゲンシス ソソトー、バチルス:゛ズブチリスl
A310(pUBIIO)を30℃3日間培養して遠心
により集菌し、得られた菌体を培地と同量の住理食塩水
に懸濁し洗浄後、再度遠心し、沈澱画分を凍結乾燥した
。
この凍結乾燥標品を供試サンプルとして、コナガ幼虫、
アオムシ幼虫、クマナギンウワバ幼虫に対する殺虫効果
を試験した。試験法は土山の方法(日本応用動物昆虫学
会誌 第22巻第4号:234〜237頁(1978)
)によった。すなわち、供試サンプル200a+gを脱
イオン水100m1に浮遊させホモジナイズした後、脱
イオン水で希釈して所定濃度の菌液を調製した。この菌
液0゜4mlを人工試料4gと均一に混合した後、検定
昆虫の幼虫に摂食させ死亡率を澗ぺた。
アオムシ幼虫、クマナギンウワバ幼虫に対する殺虫効果
を試験した。試験法は土山の方法(日本応用動物昆虫学
会誌 第22巻第4号:234〜237頁(1978)
)によった。すなわち、供試サンプル200a+gを脱
イオン水100m1に浮遊させホモジナイズした後、脱
イオン水で希釈して所定濃度の菌液を調製した。この菌
液0゜4mlを人工試料4gと均一に混合した後、検定
昆虫の幼虫に摂食させ死亡率を澗ぺた。
致死率ば、サン7/l、(先爪4日弦の死王双に恭へ。
以上の結果から遺(!換えの手法によってえられた殺虫
蛋白質産生枯草菌は親株の バチルス チュリンゲンシ
ス ソフト−より高い殺虫・活性を示したこと番よ明ら
かである。
蛋白質産生枯草菌は親株の バチルス チュリンゲンシ
ス ソフト−より高い殺虫・活性を示したこと番よ明ら
かである。
図面は、実施例に示した枯草菌形質転換株を得る手順を
図示したものである。
図示したものである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、バチルス チュリンゲンシスの菌体内殺虫蛋白質遺
伝子を枯草菌で増殖可能なベクターに結合した後、枯草
菌に導入して得られる殺虫蛋白質を産生する枯草菌形質
転換株。 2、殺虫蛋白質遺伝子がバチルス チュリンゲンシス
ソットーの殺虫蛋白質遺伝子であることを特徴とする特
許請求の範囲第1項記載の枯草菌形質転換株。 3、枯草菌が胞子欠損株であることを特徴とする特許請
求の範囲第2項記載の枯草菌形質転換株。 4、枯草菌が栄養要求性株であることを特徴とする特許
請求の範囲第2項記載の枯草菌形質転換株。 5、枯草菌が栄養要求性胞子欠損株であることを特徴と
する特許請求の範囲第2項記載の枯草菌形質転換株。 6、殺虫蛋白質遺伝子を枯草菌で増殖可能なベクターに
結合した後、枯草菌に導入して得られた形質転換株を培
養することを特徴とする殺虫蛋白質を産生する枯草菌菌
体の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61136021A JPH074233B2 (ja) | 1986-06-13 | 1986-06-13 | 殺虫蛋白質産生枯草菌及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61136021A JPH074233B2 (ja) | 1986-06-13 | 1986-06-13 | 殺虫蛋白質産生枯草菌及びその製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS62294080A true JPS62294080A (ja) | 1987-12-21 |
JPH074233B2 JPH074233B2 (ja) | 1995-01-25 |
Family
ID=15165331
Family Applications (1)
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JP (1) | JPH074233B2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2019139108A1 (ja) * | 2018-01-12 | 2019-07-18 | 花王株式会社 | タンパク質の製造方法 |
Citations (1)
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---|---|---|---|---|
JPS615098A (ja) * | 1984-02-22 | 1986-01-10 | シントロ コ−ポレイシヨン | 殺虫性ポリペプチドをコードする遺伝子 |
-
1986
- 1986-06-13 JP JP61136021A patent/JPH074233B2/ja not_active Expired - Lifetime
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS615098A (ja) * | 1984-02-22 | 1986-01-10 | シントロ コ−ポレイシヨン | 殺虫性ポリペプチドをコードする遺伝子 |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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WO2019139108A1 (ja) * | 2018-01-12 | 2019-07-18 | 花王株式会社 | タンパク質の製造方法 |
JP2019122270A (ja) * | 2018-01-12 | 2019-07-25 | 花王株式会社 | タンパク質の製造方法 |
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Also Published As
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JPH074233B2 (ja) | 1995-01-25 |
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