JPS60222773A - ラテツクス試薬の製造方法 - Google Patents
ラテツクス試薬の製造方法Info
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- JPS60222773A JPS60222773A JP7989984A JP7989984A JPS60222773A JP S60222773 A JPS60222773 A JP S60222773A JP 7989984 A JP7989984 A JP 7989984A JP 7989984 A JP7989984 A JP 7989984A JP S60222773 A JPS60222773 A JP S60222773A
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- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54313—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being characterised by its particulate form
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
（技術分野）
本発明は免疫血清学的診断に用いられるラテックス試薬
の製造方法、特に、自己凝集のない高精度のラテックス
試薬の製造方法に関する。
の製造方法、特に、自己凝集のない高精度のラテックス
試薬の製造方法に関する。
（従来技術）
抗血清から得られたＴ−グロブリンをラテックス粒子に
吸着させ、抗原抗体反応を利用して各種の診断を行うた
めの、ラテックス試薬は数多く製造されている。このよ
うなラテックス試薬に抗原を含む試料溶液を接触させる
と凝集反応が起こるため、試料溶液中の抗原の有無が簡
単に確認される。しかし、このようなラテックス試薬は
経時変化を起こしやすく、非特異的な凝集反応を示す場
合がある。これはラテックス粒子に吸着しているγ−グ
ロブリンの９０％以上を占めるイムノグロブリンＧ （
ＩｇＧ ）に多量体が存在し、これがラテックス粒子の
凝集を促進させるためである。ＩｇＧは会合しやすい性
質を有し、２量体や３量体などの多量体を形成する。こ
の多量体の含量の高いＩｇＧをラテックスに吸着させて
得られるラテックス試薬は、ラテックス試薬同志が凝集
し見かけの粒径が大きくなる。そのため、凝集反応が検
出されうる下限の濃度付近では凝集反応が陽性になりゃ
すく、正確な判定がなされにくい。ラテックス粒子に吸
着されているＩｇＧ ｉ量体もＩｇＧ多量体の含量が高
い場合には、長期間の保存により吸着されているＩｇＧ
同志の会合が起こりゃすく、その結果。
吸着させ、抗原抗体反応を利用して各種の診断を行うた
めの、ラテックス試薬は数多く製造されている。このよ
うなラテックス試薬に抗原を含む試料溶液を接触させる
と凝集反応が起こるため、試料溶液中の抗原の有無が簡
単に確認される。しかし、このようなラテックス試薬は
経時変化を起こしやすく、非特異的な凝集反応を示す場
合がある。これはラテックス粒子に吸着しているγ−グ
ロブリンの９０％以上を占めるイムノグロブリンＧ （
ＩｇＧ ）に多量体が存在し、これがラテックス粒子の
凝集を促進させるためである。ＩｇＧは会合しやすい性
質を有し、２量体や３量体などの多量体を形成する。こ
の多量体の含量の高いＩｇＧをラテックスに吸着させて
得られるラテックス試薬は、ラテックス試薬同志が凝集
し見かけの粒径が大きくなる。そのため、凝集反応が検
出されうる下限の濃度付近では凝集反応が陽性になりゃ
すく、正確な判定がなされにくい。ラテックス粒子に吸
着されているＩｇＧ ｉ量体もＩｇＧ多量体の含量が高
い場合には、長期間の保存により吸着されているＩｇＧ
同志の会合が起こりゃすく、その結果。
同じく上記現象が生じる。特開昭５４−２６３２７号公
報では、 ＩｇＧ多量体やＩｇＧによるラテックス粒子
の凝集を抑制するために塩化コリンとショ糖とを添加し
たラテックス試薬が開示されている。特開昭５２−１２
３２９５には同様の目的でソジウムボリアネトールスル
ホネートの添加されたラテックス試薬が開示されている
。ペニシラミンが添加されたラテックス試薬もラテック
スの凝集が抑制されることが発明者らの研究により明ら
かにされている。
報では、 ＩｇＧ多量体やＩｇＧによるラテックス粒子
の凝集を抑制するために塩化コリンとショ糖とを添加し
たラテックス試薬が開示されている。特開昭５２−１２
３２９５には同様の目的でソジウムボリアネトールスル
ホネートの添加されたラテックス試薬が開示されている
。ペニシラミンが添加されたラテックス試薬もラテック
スの凝集が抑制されることが発明者らの研究により明ら
かにされている。
ラテックス試薬を調製するときには■ｇＧ多量体の含量
の少ないγ−グロブリンを使用することが望ましい。Ｔ
−グロブリン中のＩｇＧ多量体を除去し精製γ−グロブ
リンを得るには液体クロマトグラフィーによる方法がも
っばら利用されている。
の少ないγ−グロブリンを使用することが望ましい。Ｔ
−グロブリン中のＩｇＧ多量体を除去し精製γ−グロブ
リンを得るには液体クロマトグラフィーによる方法がも
っばら利用されている。
しかし、液体クロマトグラフィー法では使用するカラム
の大きさに限度があるため、γ−グロブリンを大量に精
製することが困難である。
の大きさに限度があるため、γ−グロブリンを大量に精
製することが困難である。
（発明の目的）
本発明の目的は、抗血清から得られたＴ−グロブリンか
らＩｇＧ多量体を効率よく除去し、得られた精製Ｔ−グ
ロブリンを用いて精度の高いラテックス試薬を製造する
方法を提供することにある。
らＩｇＧ多量体を効率よく除去し、得られた精製Ｔ−グ
ロブリンを用いて精度の高いラテックス試薬を製造する
方法を提供することにある。
本発明の他の目的は、長期間保存しても非特異的凝集反
応の起こらないラテックス試薬の製造方法を提供するこ
とにある。
応の起こらないラテックス試薬の製造方法を提供するこ
とにある。
（発明の構成）
本発明は、γ−グロブリン含有溶液にポリエチレングリ
コールを添加し含有されるＩｇＧ多量体を析出・除去し
た精製Ｔ−グ貰プリンがＩｇＧ多量体を含まないラテッ
クス試薬を供給しうる。との発明者の知見にもとづいて
完成された。それゆえ。
コールを添加し含有されるＩｇＧ多量体を析出・除去し
た精製Ｔ−グ貰プリンがＩｇＧ多量体を含まないラテッ
クス試薬を供給しうる。との発明者の知見にもとづいて
完成された。それゆえ。
本発明のラテックス試薬の製造方法は（１１１−グロブ
リンを含有する溶液にポリエチレングリコールを加えて
該γ−グロブリン中に存在するイムノグロブリンＧ多量
体を析出・除去し、精製Ｔ−グロブリンを得る工程、お
よび（２）該精製γ−グロブリンを合成樹脂ラテックス
に吸着させる工程、を包含し、そのことにより上記目的
が達成される。
リンを含有する溶液にポリエチレングリコールを加えて
該γ−グロブリン中に存在するイムノグロブリンＧ多量
体を析出・除去し、精製Ｔ−グロブリンを得る工程、お
よび（２）該精製γ−グロブリンを合成樹脂ラテックス
に吸着させる工程、を包含し、そのことにより上記目的
が達成される。
本発明のγ−グロブリンは抗血清の含まれる溶液に飽和
硫酸アンモニウムを加えて塩析し、析出物を常法により
イオン交換クロマトグラフィーにかけて得られる。 得
られたγ−グロブリンをｐｉ＋５．５〜７．０のリン酸
緩衝液に溶解させ、これにポリエチレングリコール（Ｐ
ＥＧ ）を添加するとＩｇＧ多量体が析出する。析出し
たＩｇＧ多量体を遠心分離などの手段により除去すると
精製Ｔ−グロブリンが得られる。リン酸緩衝液がｐｉ（
５，５〜６．３であると、得られる精製γ−グロブリン
の純度はさらに向上する。ＰＥＧは溶液の４〜８％とな
るよう１こ加えられる。その分子量は２０００〜８００
０であり、好ましくは２０００〜６０００である。分子
量が２０００を下まわるとＩｇＧ多量体が析出しにくく
なる。分子量が８０００を上まわるとＰＥＧの加えられ
た溶液全体の粘度が高くなりＩｇＧ多量体の除去操作が
行われにくくなる。このようにして得られた精製Ｔ−グ
ロブリンはＩｇＧ多量体をほとんど含有しない。
硫酸アンモニウムを加えて塩析し、析出物を常法により
イオン交換クロマトグラフィーにかけて得られる。 得
られたγ−グロブリンをｐｉ＋５．５〜７．０のリン酸
緩衝液に溶解させ、これにポリエチレングリコール（Ｐ
ＥＧ ）を添加するとＩｇＧ多量体が析出する。析出し
たＩｇＧ多量体を遠心分離などの手段により除去すると
精製Ｔ−グロブリンが得られる。リン酸緩衝液がｐｉ（
５，５〜６．３であると、得られる精製γ−グロブリン
の純度はさらに向上する。ＰＥＧは溶液の４〜８％とな
るよう１こ加えられる。その分子量は２０００〜８００
０であり、好ましくは２０００〜６０００である。分子
量が２０００を下まわるとＩｇＧ多量体が析出しにくく
なる。分子量が８０００を上まわるとＰＥＧの加えられ
た溶液全体の粘度が高くなりＩｇＧ多量体の除去操作が
行われにくくなる。このようにして得られた精製Ｔ−グ
ロブリンはＩｇＧ多量体をほとんど含有しない。
精製Ｔ−グロブリンは既知の方法で合成樹脂ラテックス
の表面に吸着される。合成樹脂ラテックスにはポリスチ
レン、ポリビニルトルエン、スチレン成分を含む共重合
体、ビニルトルエンを含む共重合体などが用いられるが
、これに限定されないことはいうまでもない。その粒径
は、好ましくは、 ０．０３〜１．５０μｍである。こ
のようにして得られたラテックス試薬はγ−グロブリン
多量体をほとんど含有しないため、ラテックス試薬の経
時安定性を得るために従来方法のように特別の試薬を添
加しなくても自己凝集による非特異的凝集反応は起こら
ない。ラテックスに吸着したＩｇＧ単量体同志の凝集も
ほとんど起こらない。
の表面に吸着される。合成樹脂ラテックスにはポリスチ
レン、ポリビニルトルエン、スチレン成分を含む共重合
体、ビニルトルエンを含む共重合体などが用いられるが
、これに限定されないことはいうまでもない。その粒径
は、好ましくは、 ０．０３〜１．５０μｍである。こ
のようにして得られたラテックス試薬はγ−グロブリン
多量体をほとんど含有しないため、ラテックス試薬の経
時安定性を得るために従来方法のように特別の試薬を添
加しなくても自己凝集による非特異的凝集反応は起こら
ない。ラテックスに吸着したＩｇＧ単量体同志の凝集も
ほとんど起こらない。
（実施例）
以下に本発明を実施例により説明する。
去隻但土
（Ａ）ｒ−グロブリンの精製：ヤギ産抗ヒトＣＲＰ抗血
清を硫酸アンモニウムにより塩析し、さらにＤＥＡＥイ
オン交換クロマトグラフィーで精製し。
清を硫酸アンモニウムにより塩析し、さらにＤＥＡＥイ
オン交換クロマトグラフィーで精製し。
これを粗Ｔ−グロブリン分画とした。粗Ｔ−グロブリン
分画が２％の濃度となるようにｐＨ６，０リン酸緩衝液
に溶解させた。 攪拌しながら、これにＰＥＧ （分子
量４０００）をその含量が５％となるように加えた。析
出した沈澱物を除去し、その上澄を硫酸アンモニウム溶
液で塩析し、精製γ−グロブリンを得た。精製γ−グロ
ブリンはＰＥＧを含有しないことを確認した。
分画が２％の濃度となるようにｐＨ６，０リン酸緩衝液
に溶解させた。 攪拌しながら、これにＰＥＧ （分子
量４０００）をその含量が５％となるように加えた。析
出した沈澱物を除去し、その上澄を硫酸アンモニウム溶
液で塩析し、精製γ−グロブリンを得た。精製γ−グロ
ブリンはＰＥＧを含有しないことを確認した。
（Ｂ）ラテックス試薬の調製： （Ａ）項で得られた精
製γ−グロブリンをｐＨ６，５のリン酸緩衝液にその蛋
白濃度が５μｇ／ｍｊ！となるように溶解させた。精製
γ−グロブリンのリン酸緩衝液１容量部に粒径０．３１
μｍのスチレン−スチレンスルホン酸ナトリウム共重合
ラテックス（ソープフリータイプ）を２％含有するラテ
ックス液ｌ容量部を加えて３７℃で６０分間攪拌を行っ
た。これを１０．００Ｏｒｐｍで６０分間遠心分離した
。沈渣をＢＳＡ １％塩化コリン０．５Ｍ、アジ化ナト
リウム０．１％を含有するリン酸緩衝液４容量部に分散
させてラテックス試薬を得た。
製γ−グロブリンをｐＨ６，５のリン酸緩衝液にその蛋
白濃度が５μｇ／ｍｊ！となるように溶解させた。精製
γ−グロブリンのリン酸緩衝液１容量部に粒径０．３１
μｍのスチレン−スチレンスルホン酸ナトリウム共重合
ラテックス（ソープフリータイプ）を２％含有するラテ
ックス液ｌ容量部を加えて３７℃で６０分間攪拌を行っ
た。これを１０．００Ｏｒｐｍで６０分間遠心分離した
。沈渣をＢＳＡ １％塩化コリン０．５Ｍ、アジ化ナト
リウム０．１％を含有するリン酸緩衝液４容量部に分散
させてラテックス試薬を得た。
（Ｃ）ラテックス試薬の評価： （Ｂ）項で得られたラ
テックス試薬５０μｌと表１に示す各濃度のヒトＣＲＰ
５０μｌとをそれぞれプレート上で混合し凝集反応を
観察しラテックス試薬の感度を調べた。
テックス試薬５０μｌと表１に示す各濃度のヒトＣＲＰ
５０μｌとをそれぞれプレート上で混合し凝集反応を
観察しラテックス試薬の感度を調べた。
ラテックス試薬を４℃で保存し、６ケ月後および１２ケ
月後に同様の試験を行い、その感度を調べた。
月後に同様の試験を行い、その感度を調べた。
その結果を表１に示す。表１において、−は凝集の全く
認められない状態１士は混合液にかすかに濁りが認めら
れる状態、＋は凝集の認められる状態、そして＋は強い
凝集の認められる状態を示す。
認められない状態１士は混合液にかすかに濁りが認めら
れる状態、＋は凝集の認められる状態、そして＋は強い
凝集の認められる状態を示す。
表１からラテックス試薬は高感度で特異的に凝集反応を
示し、かつその精度は経時的に変化しないことが確認さ
れた。
示し、かつその精度は経時的に変化しないことが確認さ
れた。
表１
此１ｕ机１
（Ａ）ラテックス試薬の調製：実施例１ （Ａ）項で得
られる粗γ−グロブリン分画を実施例１（Ｂ）項の方法
に準じてラテックスに吸着させてラテックス試薬を得た
。
られる粗γ−グロブリン分画を実施例１（Ｂ）項の方法
に準じてラテックスに吸着させてラテックス試薬を得た
。
（Ｂ）ラテックス試薬の評価：実施例１ （Ｃ）項の方
法に従って（Ａ）項で得られたラテックス試薬の感度と
経時変化を調べた。その結果を表２に示す。
法に従って（Ａ）項で得られたラテックス試薬の感度と
経時変化を調べた。その結果を表２に示す。
表２から粗Ｔ−グロブリンを用いたラテックス試薬は経
時的に変化して凝集が促進されることが明らかである。
時的に変化して凝集が促進されることが明らかである。
表２
夫ｍ影
（Ａ）ｒ−グロブリンの精製：１ＩＢｓ抗原をＣＮＢｒ
活性化セファロースにカップリングし、これをカラムに
充填した。このカラムに家兎１１Ｂｓ抗血清を流してＴ
−グロブリンを吸着させた。さらにこのカラムに４．５
Ｍ塩化マグネシウム溶液を流して吸着されているγ−グ
ロブリンを溶出させ、粗Ｔ−グロブリン分画を得た。
粗Ｔ−グロブリン分画をｐＨ６，２リン酸緩衝液に１％
の濃度となるように溶解させた。攪拌しながら、これに
ＰＥＧ （分子量６０００）をその含量が４％となるよ
うに加えた。析出した沈澱物を除去し、その上澄を硫酸
アンモニウム溶液で塩析し、精製Ｔ−グロブリンを得た
。
活性化セファロースにカップリングし、これをカラムに
充填した。このカラムに家兎１１Ｂｓ抗血清を流してＴ
−グロブリンを吸着させた。さらにこのカラムに４．５
Ｍ塩化マグネシウム溶液を流して吸着されているγ−グ
ロブリンを溶出させ、粗Ｔ−グロブリン分画を得た。
粗Ｔ−グロブリン分画をｐＨ６，２リン酸緩衝液に１％
の濃度となるように溶解させた。攪拌しながら、これに
ＰＥＧ （分子量６０００）をその含量が４％となるよ
うに加えた。析出した沈澱物を除去し、その上澄を硫酸
アンモニウム溶液で塩析し、精製Ｔ−グロブリンを得た
。
精製Ｔ−グロブリンはＰＥＧを含有しないことを確認し
た。 ・ （Ｂ）ラテックス試薬の調製： （Ａ）項で得ら □れ
た精製Ｔ−グロブリンを０．１Ｍグリシン−水酸化ナト
リウム溶液（ｐＨ８，６）にその蛋白濃度が１２■／ｍ
ｌｔとなるように溶解させた。精製Ｔ−グロブリンの上
記溶液１容量部に粒径０．２１μｍのスチレンースチレ
ンスルホン酸ナトリウム共重合ラテックス（ソープフリ
ータイプ）を４％含有するラテックス液１容量部を加え
て３７℃で１２０分間攪拌を行った。これを１８．００
Ｏｒｐｍで６０分間遠心分離した。沈渣をＢＳＡ １％
、蔗糖２％、アジ化ナトリウム０．１％を含有する０、
１Ｍグリシン−水酸化ナトリウム溶液２容量部に分散さ
せてラテックス試薬を得た。
た。 ・ （Ｂ）ラテックス試薬の調製： （Ａ）項で得ら □れ
た精製Ｔ−グロブリンを０．１Ｍグリシン−水酸化ナト
リウム溶液（ｐＨ８，６）にその蛋白濃度が１２■／ｍ
ｌｔとなるように溶解させた。精製Ｔ−グロブリンの上
記溶液１容量部に粒径０．２１μｍのスチレンースチレ
ンスルホン酸ナトリウム共重合ラテックス（ソープフリ
ータイプ）を４％含有するラテックス液１容量部を加え
て３７℃で１２０分間攪拌を行った。これを１８．００
Ｏｒｐｍで６０分間遠心分離した。沈渣をＢＳＡ １％
、蔗糖２％、アジ化ナトリウム０．１％を含有する０、
１Ｍグリシン−水酸化ナトリウム溶液２容量部に分散さ
せてラテックス試薬を得た。
（Ｃ）ラテックス試薬の評価二表３に示す各濃度のＨＢ
ｓ抗原溶液１容量部を５％のＢＳＡを含有するリン酸緩
衝液（ｐＨ６，５） ５容量部でそれぞれ希釈した。各
希釈液に（Ｂ）項で得られたラテックス試薬０．５容量
部をそれぞれ加えて５分間の濁度の変化を観察した。こ
れを１分間あたりの濁度の変化値に換算した。その値を
表３に示す。ラテックス試薬を４℃で保存し、６ケ月お
よび１２ケ月後に同様の試験を行った。その結果を表３
に示す。
ｓ抗原溶液１容量部を５％のＢＳＡを含有するリン酸緩
衝液（ｐＨ６，５） ５容量部でそれぞれ希釈した。各
希釈液に（Ｂ）項で得られたラテックス試薬０．５容量
部をそれぞれ加えて５分間の濁度の変化を観察した。こ
れを１分間あたりの濁度の変化値に換算した。その値を
表３に示す。ラテックス試薬を４℃で保存し、６ケ月お
よび１２ケ月後に同様の試験を行った。その結果を表３
に示す。
濁度は上記被検混合液を５龍長のセルに入れ、波長８５
０ ｎｍにおけるＯＤを測定して得た。表３には（１分
間あたりのＯＤの平均変化値Ｘ １０００）の値を示す
。
０ ｎｍにおけるＯＤを測定して得た。表３には（１分
間あたりのＯＤの平均変化値Ｘ １０００）の値を示す
。
表３
表３からラテックス試薬を長期間保存しても非特異的凝
集反応が起こらないことが確認された。
集反応が起こらないことが確認された。
ル較開裟 ・
（Ａ）ラテックス試薬の調製：実施例２（Ａ）項で得ら
れる粗Ｔ−グロブリン分画を実施例２（Ｂ）項の方法に
準じてラテックスに吸着させてラテックス試薬を得た。
れる粗Ｔ−グロブリン分画を実施例２（Ｂ）項の方法に
準じてラテックスに吸着させてラテックス試薬を得た。
（Ｂ）ラテックス試薬の評価： （Ａ）項で得られたラ
テックス試薬を用い実施例２（Ｃ）項の方法に従ってラ
テックス試薬の凝集性と経時変化についての試験を行っ
た。その結果を表４に示す。
テックス試薬を用い実施例２（Ｃ）項の方法に従ってラ
テックス試薬の凝集性と経時変化についての試験を行っ
た。その結果を表４に示す。
表４
表４から明らかなように粗γ−グロブリンを吸着させた
ラテックス試薬は経時的に変化し、自己凝集反応が起こ
ることが理解できる。
ラテックス試薬は経時的に変化し、自己凝集反応が起こ
ることが理解できる。
（発明の効果）
本発明では、このように、ラテックス試薬に吸着される
Ｔ−グロブリンが高度に精製されＩｇＧ多量体が除去さ
れているので、得られるラテックス試薬は自己凝集を起
こさない。そのためラテックス試薬の精度は高（、正確
な判定がなされ得る。
Ｔ−グロブリンが高度に精製されＩｇＧ多量体が除去さ
れているので、得られるラテックス試薬は自己凝集を起
こさない。そのためラテックス試薬の精度は高（、正確
な判定がなされ得る。
長期間試薬を保存してもラテックス粒子表面に吸着され
たＩｇＧ単量体同志による凝集もなく、、そのために、
特異的凝集反応の正確な判定がなされ得る。Ｔ−グロブ
リンの精製にはカラムを必要とせずに、γ−グロブリン
溶液にＰＥＧを加えるハ・７チ法により簡単に得られる
ため、一度に大量にラテックス試薬を製造することも可
能である。
たＩｇＧ単量体同志による凝集もなく、、そのために、
特異的凝集反応の正確な判定がなされ得る。Ｔ−グロブ
リンの精製にはカラムを必要とせずに、γ−グロブリン
溶液にＰＥＧを加えるハ・７チ法により簡単に得られる
ため、一度に大量にラテックス試薬を製造することも可
能である。
以上
出願人 積水化学工業株式会社
手沼にネ市正戎二 （自発）
昭和６０年 ７月 ５０
特許庁長官殿
１、事件の表示
昭和５９年特許願第７９８９９号
２、発 明 の 名 称
ラテックス試薬の製造方法
３、補正をする者
事件との関係 特許出願人
郵便番号 ５３０
住 所 大阪市北区西天満二丁目４番４号特許部東京駐
在Ｔ１ミＬ （０３） ４３４−９５５２５、 補正の
内容 ｆｌ 明細書＠７７頁第１行に、 「５μｙ／ｒｎｌ」とあるのを ｒｓｍｙ／ｄＪと訂正する。
在Ｔ１ミＬ （０３） ４３４−９５５２５、 補正の
内容 ｆｌ 明細書＠７７頁第１行に、 「５μｙ／ｒｎｌ」とあるのを ｒｓｍｙ／ｄＪと訂正する。
（２）第１１頁第７行に、
「２容量部」とあるのを
「４容量部」と訂正する。
以 上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １、（ｌｌγ−グロブリンを含有する溶液にポリエチレ
ングリコールを加えて該γ−グロブリン中に存在するイ
ムノグロブリンＧ多量体を析出・除去し、精製Ｔ−グロ
ブリンを得る工程、および（２）該精製γ−グロブリン
を合成樹脂ラテックスに吸着させる工程。 を包含するラテックス試薬の製造方法。 ２、前記合成樹脂ラテックスの平均粒径が０．０３〜１
．５０μｍである特許請求の範囲第１項に記載の製造方
法。 ３、前記ポリエチレングリコールの平均分子量が２００
０〜８０００である特許請求の範囲第１項に記載の製造
方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7989984A JPS60222773A (ja) | 1984-04-19 | 1984-04-19 | ラテツクス試薬の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP7989984A JPS60222773A (ja) | 1984-04-19 | 1984-04-19 | ラテツクス試薬の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60222773A true JPS60222773A (ja) | 1985-11-07 |
Family
ID=13703122
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP7989984A Pending JPS60222773A (ja) | 1984-04-19 | 1984-04-19 | ラテツクス試薬の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60222773A (ja) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5046814A (ja) * | 1973-01-15 | 1975-04-25 | ||
| JPS52117414A (en) * | 1976-02-07 | 1977-10-01 | Plasmesco Ag | Methoa of improving compatibility of gammaglobulin |
| JPS5320415A (en) * | 1976-08-06 | 1978-02-24 | Coval M L | Production of gammaa globlin capaple of administering into vein and gammaagloblin produced by said method |
-
1984
- 1984-04-19 JP JP7989984A patent/JPS60222773A/ja active Pending
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5046814A (ja) * | 1973-01-15 | 1975-04-25 | ||
| JPS52117414A (en) * | 1976-02-07 | 1977-10-01 | Plasmesco Ag | Methoa of improving compatibility of gammaglobulin |
| JPS5320415A (en) * | 1976-08-06 | 1978-02-24 | Coval M L | Production of gammaa globlin capaple of administering into vein and gammaagloblin produced by said method |
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