JPS60176581A - 生物学的変換能を有する新規微生物 - Google Patents

生物学的変換能を有する新規微生物

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JPS60176581A
JPS60176581A JP59221121A JP22112184A JPS60176581A JP S60176581 A JPS60176581 A JP S60176581A JP 59221121 A JP59221121 A JP 59221121A JP 22112184 A JP22112184 A JP 22112184A JP S60176581 A JPS60176581 A JP S60176581A
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JP
Japan
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none none
antibiotic
agar
strains
actinoplanes
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チヤールズ・リー・ハーシユバーガー
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Eli Lilly and Co
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、共同してC[JC/C,SVと称ケる新規な
グリコペプチド系抗生物質を共同合成することのできる
2種の新しいアクチノプラネス・ミソウリエンシス(A
ctinoplanes m1ssouriensis
)菌株を提供するものである。さらに、これらの各菌株
は、別々に、アクタプラニン因子Aを、1−記の新規な
抗生物質CUC/C8Vに、生物学的に変換するのに使
用することができる。
抗生物質CUC/CSVは、式(I):(式中、RはL
−リストザミニ°ル、R1は三糖類マンノンル−グルコ
ンルであり、R2およびR3はマノノノルを表わす) て示される。CUC/C8Vおよびその塩類、特にその
薬学的に許容し得ろ塩類は有用な新規抗生物質である。
本発明は、2種のアクチノプラネス・ミソウリエンシス
菌株類 になって新規なグリコペプチド抗生物質を共同合成(2
、また互いに独立して、ある種の生物学的変換反応に使
用することもてきる。更に詳しくは、本発明は、CUC
/C8Vと呼称される式(1)のグリコペプチド抗生物
質を共同合成する能力を持ったアクチノプラネス・ミソ
ウリエンシス菌株類に関するものである。
本発明の新規なアクチノプラネス・ミソウリエンシス菌
株は、それぞれ、便宜的にCUCOI4およびCS V
 558と命名された。CS V 558およびCI]
C014の培養物は、グリコペプチド系抗生物質アクタ
プラニンを産生ずるアクチノプラネス・ミソウリエンシ
スA l” CC31683の化学的変異誘発処理によ
って得られた菌株である。A ミソウリエンシスA T
 CC31683は、一連の突然変異によって野生型の
A ミソウリエンシスA TC023342菌株から導
かれたものである。
グリコペプヂト系抗生物質アクタプラニン(抗生物質A
4696としても知られている)お、及びΔ ミソウリ
エンシス菌株ΔT CC23342は、ハミル(11a
mi11)らによってアメリカ特許第3,952,09
5号おj;び第4.115,552号に記載されている
。また、アクタプラニン産生性のA ミソウリエンシス
菌株、A T CC32680、ATCC31682お
よびATCC31683は、 I)ehonoらによっ
て、アメリカ特許第4,322.406および第4,3
75,513号に記載されている。
本発明の新規なΔ ミソウリエンシス菌株C8■558
およびC[JCO14は測定可能な量のアクタプラニン
を産生じない。その代わり、CtJCOIIIはある中
間体を分泌し、この中間体を、CS V 558が式(
I)の化合物に変換する。
qSy国i熱砕並−(914賓秀物省時世新規なC8V
 558およびCUCOI4培養物の完全な評価を行う
ために、下記の分類学的研究を、母株ΔTCC3168
3閑株417びに野生株A T CC23342閑株と
同時に行った。
CS V 558およびC1,C0I4培養物はアクチ
ノプラネス・ミソウリエンシスの菌株としそ分類された
。これらの培養物をA ミソウリエンシス菌株として分
類4−ろに当たっては、インターナショナル・ストレブ
トマイノス・プロソエクト(I nterna[1nn
al 5[−rep4gmy、ces Project
、l5P)の推奨オろ、ストレプトマインス種の確認法
[E、 B)r−リング(1;:、11.Shirli
ng)およびり、ボッチリーブ(D 、Gottlie
h)、「メソッド・オシ・キャラクタリゼインヨン・オ
シ・ストレプトマイシス・スペノース(Methods
 orCharacterizationof St−
repLomyces 5pecies)Jインンター
ナショナル・ジャーナル・オシ・システマチック・ハタ
テリオロンー(T nt、 J 、 S ysL、 B
 acteriol、 l’6(3)、313−340
(1966))]並びにある種の補助的な試験法に従っ
た。
炭素利用性は、終濃度が10%となる様に、シ濾過滅菌
炭素源を加えた1sPNo9基礎培地を用いてめた3、
平板を30℃でインギコベートシ、1411目に読みと
った3、 メラニン色素の産生(色素生成)は、l5PNol(ト
リプトン−酵母エギスブロス)、I S P N(16
(ペプトン−酵母エキス鉄寒天)、l5PNo7(ヂ〔
l’7ン寒天) =+12びに改良ISr’1lo7(
チ〔1ンノを欠くらの)を用い−ご決定した。
硫化水讃の産生け、ISr”No6寒天斜而にテストス
トリップ ップ デンプンの加水分解は、ISPNo4(無機塩−デンプ
ン寒天)平板上のデンプンの存在をヨウ素を用いて試験
することで決定した(D.J ブランコウィック(D 
、 J 、 B lazeuic)およびG.Mニブレ
ール(G 、M.Ederer)、[プリンンンプルズ
・オシ・バイオケミカル・テスラ・イン・ダイアグシス
チック・マイクロバイオロジー(P rinciple
s of Biochemical Te5ts in
’Diagnostic Microbiology)
Jノヨーン・ウィリー・アンド・ソング(、John 
Wiley and 5ons)、 Inc、 N’e
w York。
1975、p、 136)。
温度域、NaC1およびシュクロース耐性、pH域、お
よび抗生物質感受性は、l5PNo2(酵母−麦芽エキ
ス寒天)平板を用いて決定した。平板を30°Cで14
日間インキュベートした。試験した温度は、5.10.
15.20.25.30,37.40.45.50およ
び55°Cであった。
NaCl耐性は、寒天にNaClを、0.2.4.6.
8.10および12%となる様に加えて測定した。ツユ
クロース耐性は、同じくンコクロースを01.2.4.
6.8、l0112.15および20%になる様に加え
て測定した。pH域は、下記の緩衝剤を0.05Mの濃
度で用いて決定したクエン酸、pH3,4および512
(N−モルホリノ)エタンスルポン酸(MES、 シグ
マ・ケミカルズ(Sigma Chenicals) 
Co、 )pH6; 3(N−モルホリノ)プロパンス
ルホン酸(MOPS、アルドリッチ・ケミカル(Ald
rich Chemical )C。
)、pH7:N−[トリス−(ヒドロキシメチル)メヂ
ル]グリシン(ツリンン、カルバイオケl、(Tric
ine、 CalBiochem))、pr−rs ;
 2−(ンクロへキンルアミノ)エタンスルホン酸(C
I−[ES、 Pl、バイオケミカルス(B ioch
emicals、) I nc、)、p H8、5,9
0および95.3−ンクロへキンルアミノ−1,1−プ
ロパンスルホン酸(CAPS)、pI−(1θ0および
105゜寒天平板の測定は、表面が平らな電極で行い、
接種面に測定したpH値を正しい値と(刃こ。
ある種の緩衝剤は、調節され/コpHを保ち得なかった
。緩衝剤を全てpH7,0に調節し、増殖を検査するこ
とにより、その毒性を試験した。全ての変異株かクエン
酸感受性であったが、野生型菌株はクエン酸に感受性を
示さなかった。
抗生物質感受性は、播挿し/j寒天(F板の表面に感受
性ディスクを押し付(Iて調へた。以−1・の抗生物質
を使用した。セファロチン(ナトリウム)30fLg、
エリス〔ノマインン(j、ストレート)1511g1 
り〔70マイセヂン30IB、ノボビオツノ3oμg1
ペニンジン(G)1071’f1“11リーフアノ、ピ
ン5/ILス)・レプトマイノン10μg1テトラサイ
タリン30μgおよびバンコマイシン30メtg。
酵素分析は、ブラゼヒック(B 1azevic)およ
びニブレール(Ederer)の方法に従って行った(
DJ、ブラゼビック(D 、 J 、 B 1azev
ic)およびG。
M、ニブレール(G、M、Ederer)[プリンシプ
ルズ・オブ・バイオケミカール・テスラ・イン・ダイア
グツチック・マイクロバイオ口’) (P rinci
plesof Biochmical Te5ts i
n Diagnotic Microbiology)
Jジョーン・ウィリー・アンド・ソング(John W
illy and 5ons)、Inc、 、New 
York、 1975) 色名は、TSCC−NBCセントロイド・カラー・チャ
ーブ(Centroid Co1or Charts 
)のスタンダードサンプルNo21(16を用いて定め
た(K。
L ケリー(K、L、Kelly)およびり、B ンヤ
ット(D、B、Judd)、米国商務省米国規格標準間
、Wa、shington D 、 C,20234,
1976)。
リゾチーム抵抗性、並びにカゼイン、ニスぞリン、ヒボ
キサンチン、チロノンおよびキザンチンの分解をB e
rgの方法に従って測定したデヒッド・バージ[ラホラ
トリー・アイデンティフィケーション・オブ・クリニッ
カリイ・インボータント・エーロビック・アクチノマイ
セテスJ([D avidBergrLaborato
ry I dentirication of C11
nically T mportanL Aerobi
c ActinomycetesJ)アプライド・マイ
クロバイオロノー(代理1四見crobi−。
し)閑:665−681(1973)]。
樟養特性 これらの4菌株の増殖および培養特性は類似していた。
基質性のまたは一次の菌糸体のみが生成された。二次菌
糸体または胞子のうのいずれも、本研究に係る14個の
寒天平板培地」二のいずれにも認められなかった。元の
単離体の胞子のうに関しては、Dr、ンヨーンN、コー
チ(ユニバージティー・オブ・ノース・カロライナXD
 r、 、1 o1+n NCouch([Jnive
rsity、 of North Carolina)
)により、以前に報告された。
これらの変異株(A T CC3!683、CS V 
558およびCUCOI4は黄灰色およびのコロニーを
形成するので、それを、培地に応じて中程度ないし帯温
色の橙色から強い橙色に至る、明瞭な橙色の色素を産生
ずる野性型菌株(A T CC23342)と区別する
ことは容易である。他方、これらの変異株群は、大多数
の寒天平板培地上では区別できない。
これら変異株相互の培養上の差異は次の通りであろ:C
UCO14はある種ゐ培地で、濃い赤褐色の可溶性色素
を産性する。このことは、酵母−麦芽エキス寒天(I 
S P No2)、グリセリン−アスパラギン寒天(l
sPNo5)およびチロノン寒天(ISPN。
7)で観察される。CS V 558はトマトペースト
−オートミル寒天(TPO)では増殖できないか、これ
に対してATcc3168およびCtJCO14は非常
に良く増殖する。上記の結果を表1にまとめた。
it:アクチノプラネス・ミソウリエノノス菌株の培養
特性ATCC23342A丁CC3188,’l CS
V 5511 ClIC014ISP 2 G 良好 
良好 良好 良好R53,m、o 90.gy、Y 9
0.gy、y 90.gyYAIIなし なし なし 
なし Spなし なし なし 赤褐色 IsP a G 不良 良好 まずまず まずまずR7
6,1,yllr 93.yGray 93.yGra
y 93.yGrayAmなし なし なし なし Spなし なし なし なし ISP 4 G 豊富 良好 まずまず まずまずR5
G、s、0 79.1.gy、yl(r 93.yGr
ay 93.yGrayAmなし なし なし なし spなし なし なし なし ISP 5 G まずまず まずまず(鈍い光)良好 
良好R6g、s、01’ 9[1,gyY90.gy、
Y 83.1.brGyAmなし なし なし なし Spなし なし なし 薄赤褐色 ISP 7 G 不良 まCまず 良好 良好R54,
brO80,gy、yBr 80.gy、yBr 80
.gy、yBrAmなし なし なし なし sp赤褐色 薄茶色 なし 深赤褐色 ベネット G !富 豊富 良好 良好R53I11.
0 93.yGray 93.yG+ay ii3.y
GrayAIなし なし なし なし Spなし なし なし 薄赤褐色 リンゴ酸 G 良好(光沢) 良好(光沢) まずまず
 まずまずカルシウム R50,s、0 93.yGr
ay 93.yGray 93.yQrayAmなし 
なし なし なし Spなし なし なし なし ツアペック G 良好 豊富 良好 良好R711I1
.OY 93.yGray 93.ygray 9g、
yGrayAmなし なし なし なし Spなし なし なし なし グルコース−G 良好 良好 なし なしアスパラギ:
/ R71,m、OY 93.yfiray なし な
し八mなし なし なし なし Spなし なし なし なし TPOG 良好 良好 なし 豊富 R55,s、Br 91.d、gy、Y なし 9+、
a、gyJh[−なし なし なし なし Spかすかな赤褐色なし なし なし アニn−G 不良 まずま「 まずまず まずまずI\
ノセ:/ 1 7G、1.OY 91.d、gy、Y 
93.yGray 93.yGrayAmなし なし 
なし なし Spなし なし なし なし 5311培地c) G まずまず 良好 まずまず ま
ずまずR54,bro 91.d、gy、Y 93.y
Gray 93.yGraVAmなし なし なし な
し Spなし なし なし 薄赤褐色 ツアペックの G 豊富 豊富 豊富 e富ベプト7 
R54Jr0 9o、gy、y 90.gy、Y 90
.gY、YAmなし なし なし なし spなし なし なし なし a)G−増殖、R−逆、Am−気中゛菌糸、Sp−可溶
性色素を表わす。
b)菌株を30°Cで14日間インキコヘートした。
C)培地5311は下記の組成を有する(p14は70
に調節されている)。
成−外 l 酵母エキス 2.0g CaC()3 3.0g Na2S、03・5H200,5g V−S ジュース 200.0J 脱イオン水 800.0m児 寒天 200g 形梨j!コな特徴 どの培養物も気中菌糸や胞子のうを産性しなかった。従
って、形独学上の比較は、基質性菌糸体に関してのみな
され、その−次菌糸の形聾は互いに区別できなかった。
生理学的特性 A T CC23342、ATCC31683、CS 
V 558およびCUCO14について、9種類の抗生
物質に対する感受性を試験した。そイ1らの感受性のパ
ターンは同一であった。即ち、ノホビオンンお、l;び
ペニシリンGに対して抵抗性であ−)た。また、セファ
ロチン、クロロマイセチン、エリスロマイシン、リファ
ムピン、ストレプトマイノン、テトラサイクリンお31
:びバンコマイシンには感受性を示した。
試験の結果を表■にまとぬた。
青−叶アクチノプラネス・ミソウリエンシス菌株の抗生
物質に対する感受性 ATCCATCCC8V CUC 抗生物質 濃度 2334231683558014セ
フアロヂン 30μg++++ クロロマイセチン 307zg + + + +エリス
ロマイシン 1571g+ + + +ノボヒオノン 
30μg −−−− ペニシリン0 10単位 −一一一一 すファムピン 5μg −1−十++ ストレプトマイノン10μg + 十++テトラザイク
リン 30μg 十十+ −+バンコマイシン 30μ
g 十 十 →−++感受性あり(阻止帯あり) −抵抗性(阻止帯なし) 炭素利用性は、CS V 558とCtJCO14で同
一であった。A T C023342はサリシン利用性
において異なり、A T CC31683はリボース利
用性において異なっていた。これらの試験の結果を表1
1にまとめた。
4−III−:アクチノプラネス・ミソウリエンシス菌
株の炭素利用性 炭素源 ATCCATCCCSV CtlC233+1
231683558 014炭素源なし −−−− りλレコース (+−11−++++ 1、−アラビノース →」−→−+」−I−−1−4−
セロピ゛オース ++ 士士++ 十→−D−フルクト
ース +→−++−2−→−」−〇−ガラクトース +
+ 十十十−1−+十i−イノシトール − −−− D−マンニトール ++ + ++ −1十メリピ“オ
ース 」−→−1−十十 ラフイノース −−−− D−ラムノース →−+ →−十+++D−リポース 
−(’十) −−− サリンン →−−−− ツユクロース ++ (+) +十++D−ギンロース
 −1−+ ++ ++ 十+(」−9≧グルコース対
照:炭素利用性は陽性→−、〈クルマース対照、〉炭素
源無しの対照、炭素利用性は陽性 (+)、増殖は疑わしい、炭素利用性は不明−増殖なし
 、炭素利用性は陰性 CS V 558とCUCO14との生理学的な差異は
以下の点に存する。即ち、ツユクロース耐性、温度域、
およびゼラチンの酸化度。即ち、CS V 558は−
1−眼が12%までのツユクロースに耐性を有し、5〜
30℃の温度域で増殖し、30℃で14日間インキユヘ
ーンヨンすれば約50%のゼラチンを液化する。
他方CUCO14は15%までのノコクロースに耐性を
有し、5〜37°Cの温度域で増殖し、30℃で14日
間インギコベーンヨンずろと約80%のゼラチンを液化
する。これらの差異を、4菌株全部に関するその他の生
理学的な特徴をも含めて表■に示した。
畦:アクチノプラネス・ミソウリエンシス菌株の生理学
的な特徴(前記以外のもの) ATCCATCCC8V CUC 特性(特徴) 23342 31683 558 01
4カゼインの分解 十 ++十 カタラーゼ反応 →−→−+ 」 エスクリンの分解 モ + 1−)− ゼラチンの液化 +(40%) +(100%) −1
−(50%1−(80%)H2Sの産生 tr、 tr
 tr trヒボキザンヂンの分解 −一一一 リゾチーム抵抗性 −−−−−−− メラノイト色素 −−−−−− NaCfL耐性 〈2% 〈2% 〈2% く2%硝硝
酸塩光 −− 生育pH域 6−7 6−8.4. .6−8 6−8
ホスフアターゼの産生 千 十 1 +スキムミルク 
−−−−− デンプン加水分解 →−−−−1−1 ノコクロース耐性15% 20% 12% 15%生育
温度域 15〜37°C5−40°C5−30°C53
7℃ヂロノンの分解 −十−− ウレアーゼの生成 +−−−+ + キザンチンの分解 一 本発明に係るアクチノプラネス・ミソウリエンシス菌株
CUCO14およびCS V 558は、ノーザン・レ
ジオナル・センター・アクリカルチコラル・リージョン
・1815ノース・二二ノく−シティー・スト IJ 
−1−、ヘオリア、イリノイス、61604(Nort
hern Regional Center、Agri
cultural Region、1815 Nort
h Universi’ty 5treeL、 Peo
ria、T 11inois、61604)に寄託され
、そのスト・ソクカルチャーコレンンヨノの一部となっ
ており、寄託番号Nr(RLI5647 (CUCO1
4)およびN RRL 15646(C5V 55g)
の下で、誰でも入手することができる。
他の微生物におけると同様、アクチノプラネス・ミソウ
リエンシスNRRL]5646およびNRRL1564
7菌株の性質は変動し得る。例えば、この菌株の組換え
株、突然変異株、あるいは人工的な変異株(」、該菌株
を様々な周知の物理的ないし化学的変異誘発素、例えば
紫外線、X−線、γ−線、およびN−メチル−N′−ニ
トロ−N−ニトロソクアニジン等で処理することにより
得ることができろ。A ミソウリエンシスN RRL 
15646お上びN RRL 15647菌株の天然ま
たは人工的な変異株、突然変異株および相換え株はオへ
て、それがCtJC/C5Vを共同合成する機能を有す
る限り、本発明で使用し得るものである。
抗生物質CIJ C/ CS Vの)(同合成は、分泌
型CU C014(N RRL 15647)培養物と
、転換型CSV 558(N RRL 15646)培
養物とを、液中好気条件下、適当な培地中て実質的な抗
生物質活性が産生されるまで一緒に発酵させることによ
り、達成されろ。これらを別々に発酵さUた場合には、
CIJC014培養物、CS V 558培養物のいず
れも抗生物質活性を産生じない。
当業者にとっては理解し得ることだが、共同合成を行う
A ミソウリエンシス菌株を増殖さ且るために用いる培
地は、数多の培地のうちのどれであってもよい(例えば
、アメリカ特許第4.322,406号参照。これには
、親株のA、ミソウリエンシスA ’[’ CC316
83菌株にとって有用な種々の培地か記載されている。
)。抗生物質CtlC/C8Vを共同合成するには、共
通の培地に2種の培養物を同時に接種して発酵させれば
よい。別法として、増殖中のA ミソウリエンシスCU
COI4培養物を調製し、次いでこの物を、増殖中のC
3V558菌株の培養物と一緒にしてもよい。
抗生物質の生産は、発酵期間を通して得られるブ「1ス
試月を、この抗生物質に対して感受性を有することか分
かっている微生物で試験することにより、追跡−4−ろ
ことかできる。有用な分析用微生物の1つはバヂラス・
ザブヂリス(枯草菌、BacillLIs 5ubti
lis)である。このバイオアッセイは寒天平板」二で
のペーパー・ディスク分析により、簡便に行うことかで
きる。更に、抗生物質の生産は、U■検出による高速液
体クロマトグラフィー(1−[P 1.、 C)てモニ
ターオろこともてきる。
液中好気発酵条件下て生産させた後、抗生物質C[JC
/C8Vを発酵培地から、当業者周知の方法、例えば、
吸着と抽出操作、により回収することかてきろ。
抗生物質CUC/C8Vは、CUCO14培養物ま)こ
i−4: CS V 558培養物のいずれかを用いて
アクタプラニン因子Δを生物学的に変換さHることによ
り、調製することもてきる。
介囮p匁果 抗生物質CII C70S Vは病原性を杓する細菌類
、特にクラム陽性菌の生長を阻市オろ。i;!Q KN
 11′コな寒天希釈法でめた、C[JC/C8Vの、
いくつかの微生物に関4〜ろ最少l111+l−濃度(
MIG)を表■にまとめた。
表V:CLIC/C3V(7’)イ:/ ヒ’ l−[
7活ヤ1微生物−Mlo(m旦/m0 スタフィ〔1コツカス・アウレウスN 171+ 1、
B513 8(Starlhyjococcus au
reu、5NRR1,8313)スタフィロコッカス・
アウレウスv418(S[、aphyl=、=cqs 
U町0!Sv’ll:)スタフィ[lコツカス・アウレ
ウスX400 16(S−LaplBy−joc、oc
c、uSa、u、re腎X400)スタフィ〔7コツカ
ス・アウレウス513E8(剣鴫P虹1oqqc、c期
1[リリ513E)スタフィロコッカス・エビデルミゾ
イスEP1116($趨R用9C−QCC!!旦e−p
i傾覗匝す1シP11)スタフィロコッカス・エビデル
ミゾイス2228(汁a帥しユ朋ccus epide
rm−idis 222)ストレプトコッカス・ニュー
モニアエParkl 0.5(5−treptocqc
c4+s pne明匹ハe Park I)ストレプト
コッカス・ファンムATCC97904(5L−rep
Lococcus jaecium ATCC9790
)ストレプトコッカスspグループD9960 4(針
rep−頃鮒竺朋迂、group D 9960)抗生
物質CIJ C70S Vは姫気性菌の成長をも阻市す
る。種々の嫌気性単離体のCU C70S Vに対する
感受性を表■にまとめた。
Δ■嫌気性菌単離体のCLJC/C3Vに対する感受性 蝉束判薗 財以tt1/m克)a) クロストリジウム・ディフィンール2994 1(C−
1ost−rj+lju; d…’1c−ilq 29
94)り[1ストリンウム・パーツリンケンス814(
C,4−Q谷σ−可jum pヅ↓■耶叩ジ81)り[
1ストリソウム・セプチカム +128 4ニーバクテ
リウム・エーロファノエシス+235 2(朋4眸(旦
亘り肘胎(基1卯ジ1235)ペプトコッカス・アザッ
カロリヂヵス+302 4jPeptoqocc、us
 asaccja、rojyLicus 1302)ペ
プトコッカス・プレホラティ 12PII 8(Pep
tococc見旦 pr一旦voLj、12g+)ペプ
トストレプトコッカス・アネ〔ノヒウス1428 2(
r亜ゆ廷朋p(、,9す99り旦邸鼾9埴り1428)
ペプトストレプトコツカス・インターミディγノ、+2
644(ppptosi−H6ptocpo:、cup
 int=me+Ij!1m 1264)プロピオニバ
クテリウ1、・アクネス79 1(PropioBib
acterium acnes 79)バタテロイズ・
フラギリスI11 >128(pacter9.jde
s fr、agilis l1l)バクテ〔フイズ・フ
ラギリス+877 >128(β基(e r、q +1
99uagす嶋1877)バクテロイズ・フラギリス1
936B >128(13基!、erqiφ9シ[−V
1鼾ljs 1936B)バタテロイズ・テタイオタオ
ミタ「!ン1438 >128(Bacjerojde
s tbe[aioLaOmjcron 1138)バ
クテロイズ・メラニノゲニカス185−6728〉12
8(13ag4cr9i4qs 1IVelaB、in
ogenicus ll!56/28)バタテ〔ノイズ
・メラニノゲニカス2736 16(l(acLero
ides mel+!n1no5enjcus 273
6)バクテロイズ・ブルガチス12+1 >128(膣
倶−eroj−d明些国ジ(膵1211)バクテ[ノイ
ズ・コロデンス1lt74 > 128(Bqcter
oides corrodens、 1874)フッバ
クテリウム・ンンピオザム1470 > 128(−放
ハ戟蜘3明ジ郷弁靭m 1470’)フッバクテリウム
・ネクロフオラム6054A 2(膿9甲旦■凹凹ザ亜
回艷6054A)a):MIC値は寒天希釈法でぬた。
終末点は、インギュヘーンヨンの24時間後に読み取っ
た。
また、CUC/C5Vは実験的感染症マウスに投与され
た、実験的感染症誘発性菌に対し、インヒポにおいて抗
微生物活性を示した。この観察された活性をED s 
o値[被検動物の50%を保護するのに有効な投与量(
mg/kg) :ワレン・ウィック(Warren W
ick)ら、ジャーナル・オブ・バクテリオロン−(、
!−川用c−ty−erio1.) 81.23323
5(1961’)参照コとして測定した。CtJ C/
 CS Vに関して観察されたED5o値を表■に示4
.。
表vl!:マウスにお(するCIjC/C9VのEI)
、。
値 隼トqと仰(少牛勿 」≧−(ンりく町名〆kg〆2)
岐スタフィ〔lコツカス・アウレウス 1.59q印I
)!! I−oq99−c明≦町!邦〕ストレプトコッ
カス・ピオネケス 1.09($(井町99砦型畦旦糾
凹5) ストレプトコブカス・ニコーモニアエ 084(針腑9
4(OCqC,C明P牲−9吋粍)a)感染の1および
4時間後に皮下投与した。
以下に実施例を挙げ、本発明の具体例を示−jl−。
1−上q t+−c Q旦境秀物(−9、違■翻づ峰璋
物革q腹則灸醪りφ蕪IWq−見V乙c’ 5. 、y
〜p)1;A 岳Wす…芋蒼吻+木碧CS V−5賭埼
遣葡Δ艮東ス57.J叩 アクチノプラネス・ミソウリエンノスのCtJ C01
4菌株(N r(RL 15647)、もしくはCS 
V 55g閑株(N RRL 15646)の凍結乾燥
ペレットを滅菌水I−釦兇に溶かす。この懸濁液を用い
て、次の組成の寒天斜面培地に接種する。
成分 量(%) 前調理したオートミール 6.0 酵母 025 に、l−lPO40,1 ツアペックのミネラルストックa) 0.5寒 天b)
25 脱イオン水 適mを加えて100% とする 未調節時のpH=6.2+5N Na0IIIこよりp
H=73に調節、滅菌後のp+−1=6.7a)ツアペ
ックのミネラルストックは以下の組成を有4−ろ 成−分、 鼾1 KC克 10.0 Mg5 O、・71−T 、0 10.0FeS O4
・71(2o O,2(2mR。
の濃塩酸に溶解) 脱イオン水 適mを加えて100% とする b)ディフコ・ラボラドリース(Dlfco Labo
rato−rise) 接種した斜面培地を30°Cで約8〜10日間インキ:
1ベートオろ。熟成した斜面培地を滅菌した白金耳(ル
ープ)の鋸歯状になった端縁て削−で菌糸体マットを浸
漬し、はくオ。はぐl刃こマットの約1/4を以下の組
成の増殖用培地50m lに接種4−るのに用いノこ。
成−分 量(%) グルご1−ス 2.0 トリプトンa)05 酵II) :r、ギス 05 水道水 適jへを加え−ご100% とケろ 滅菌前のpH=6.5、調節時のpll =7.2(5
N −Na011による)、滅菌後のpll−69a)
バクト・トリプトン、ディフコ(Bacto Tryp
−tono、Dirco) 接種した増殖用培地を250m flのエーレンマイヤ
ーフラスコ中、回転振盪器(動径2インチ、回転数25
Orpm)j:で振盪しながら30℃で約72時間イン
キュベートする。
増殖型培養は、寒天−斜面培養物、この培養物の71i
結乾燥ペレツト(250m lのフラスコ中、50m!
の培地について1個の凍結乾燥物を用いる)および液体
窒素中に保存した培養物(接種物08%)を用いて開始
することができる。
インキコヘートした増殖用培地(5%、V/V)を次の
組成の製造用培地50mflに接種する。
【」−乳(%) クルコース 25 コーン・スターチ 35 糖蜜を割ったラム混合酒 1.5 クリセリン 1.5 酵母 2.0 に211P0. 0..05 (Ni1.) 2SO,O,Q25 CaC0302 水道水 適量を加えて100%とする 滅菌前のpH=6.5、調節時のpl+=6.8、滅菌
後のpH−6,5゜ 接種した製造用培地を250mJlのエーレンマイヤー
フラスコ中、回転振盪器(動径2インチ、回転数25O
RPM)上で30℃において72時間インギコベート4
゛る。
13、@rl!%算qy−以4(ン旦−■9基回命盛C
1JCOIII培養物とCS V 558培養物とを別
個に72時間発酵させた後、夫々の発酵で得た全ブロス
から等容重をとり、無菌的に滅菌フラスコ中で一緒にす
る。このフラスコを、回転振盪器1.て30℃において
更に96時間インギコベート4ろ1゜C炸快+!1!質
1M−1メーq−蓄−yの分セテ全ソロス(1)+11
0.5に調節)を遠心する。上tl¥をpl−17、0
に調節ずろ。この様にし−ζ調製した試料をノ\チラス
・ザブヂリス平板分析、並びに、ノリカケルプレート(
メルク(Merck)のブレ・コー)・・プラスヂック
ンート、シリカゲル60、蛍光性指示薬を含よない)と
、アセトン;水:アンモニア(160:40:1)溶媒
系とを用いろ薄層クロマトグラフィーによって分析する
。検出は、最少増殖培地中で、B サブチリスを用いて
、平板を37℃で約18時間インキュベート4−ろこと
からなる、バイオオートグラフィー(生物学的自己描写
法)で行う。
寒廊、(Ml 2−仮f(シラ真視q乙qジyp単雛実
施例1と同様の方法で調製した30ツトの発酵全ブロス
を一緒にした(総ff1=45.9)。このブロスをC
epa遠心機で遠心した。菌糸体を、水酸化ナトリウム
でpT(10,5に調節した水で2回抽出した。抽出液
を合わせ(241)、塩酸でpT−17,0に調節し、
40!のノアイオン(Diaion) IIP20(三
菱化成株式会社、東京、日本)を充填したカラムに、流
速160m!/分で流し込んだ。このカラl、を、水8
!とメタノール水(1:3)]Leとで順次洗浄した後
、メタノール・水(l:1)8.M、メタノール水(3
:I)8jij、およびメタノール20!で溶離し4児
の分画を集めた。
各分画の生物学的な活性を分析した。このバイオアッセ
イは、バチラス・サブチリスを播種した寒天平板−1−
てのペーパーディスクθ、に、1、り行−・た。
所望の活性を含む分画を合わu、ii&圧濃縮j2、l
中結乾燥して100gの相生酸物を得た。
この物質の ・部(o 、 5g)をメタノール水(3
・2)10m!に溶かしてシ濾過I7た。このシ戸i&
を、2540ミクロンのりクロプレプ(1,1chro
prep) R1’ 18逆相シリカゲル(MC/Bマ
ニュファクチコアーリング・ケミストリー1インコーボ
レーテツト、ノンンナソティ、オハイオ(Manufa
cturing Chemist、Inc、、C1nc
inati、011.))590m、9を充填した5、
2−X4m−cmマイケル−ミラー(Michel−M
iller) 1IPLP1.cガラスカラムに適用し
た。このカラムを、配合比35:65のメタノール、り
ん酸二水素カリウム緩衝液(濃度005M、りん酸でp
l−13,5に調節されている)により、流速1011
1!/分で溶離し20m!の分画を集めた1、この溶出
液を、Type6オプテイカル・ユニットを備えたl5
co Model UA−5UVモニター(インストル
メンテーション・スペンヤリティーズ・カンパニー1 
リンカーン、ネバダ(tnstrumenLation
 5pec’1altics Co、、l、1ncoI
n、NE))を用いて、280nmにおいてモニクーし
た。ハヂラス・ザブチリスが播種されている最小培地を
含有する寒天平板にペーパーディスクを押し付ける方法
で全ての分画を分析した。所望の活性を有する分画を合
わせ、水酸化ナトリウ11てpl−1を70に調節し、
減圧濃縮した。この濃縮されたプール(100J)を、
Diaion IIP−20(90+++4)を充填し
たカラムに適用した。このカラムを水400m!て洗浄
し、次いでアセトニトリル水(4I)で溶離した。最初
の溶出液(29m l )を捨て、次の溶出液(15J
)を集めて減圧濃縮し、凍結乾燥することにより、純化
抗性物質CtJC/C8V27mgを得た。
CUO/C8■の特性値を次に示4゛。
陽炎分析(c、。HReN70−1・12+−1zO)
ij% イ11、 実〆1す(メ堕 C−90 49.46 49.28 ・ト98 5.63L35 N4 4.49 L55 (1,4+ 38.8 39.82(差による)CJl
 l 1.62 2.00 λmax 278nm、酸PL(ε−1’l、ooo)
入max 277++m、361nm、中性(ε〜18
.QO(1,9,OO[l’)λmax 295nm、
340nm、アルカリI’l(ε−21,000,11
1,500) 分子量の計詐値は1.200である。この化合物は23
0nmに線吸収を示す。
凄詑瞥 ノメチルスルホキシド、ノメチルホル11アミド、アセ
トニトリル水混合物およびアルコ1−ル水混合物に可溶
てある。
マス・スペクトロ少メトリー(1冒、速1京r・衝撃イ
オン化方式、I・’AI+ MS) FA1トMSに、1、ろ分子fTtは1968てあろ3
、実施(+り聯 CS V 558培芥物に、1、ろア
ノ7タブラ丹ン〜困子の変準にJ古つくにIJC/C8
Vの製造A イ4i物7的変換 アクタプラニンA因f’(loO+ng)を水に溶かし
2、シ濾過して滅菌し、511令の△ ミノウリエンシ
スC6V 55g(N RRl 15646)の変換型
培養物の発酵物1!に加える(終濃度o3mg/J)。
この発酵産物を更に48時間インキュベートオろ。全ブ
ロスのpHを水酸化ナトリウムで10.5に調節する。
このブロスを遠心し、遠心物(セントレー1−1(4で
中和ずろ。
T3. CUC/C8Vの単離 Aで述へた方法に従って生物学的変換を行った。
ブロスをシ濾過して除き、菌糸体を水(pi−110,
5)で抽出した。この抽出物(550mj2)を、実施
例2で述へたごと<loomzのHP−20を充填した
カラムで精製し、凍結乾燥して粗生成物(190m[り
を得た。この生成物の一部(loomg)を、pH3,
6の5mJlのCH3CN pyrOΔc(36:64
)に溶か17、リクロプレプ(Lichroprep)
 1tP−8樹脂(25−40μm)を充填した300
−m!のガラスカラムに適用した。このカラムを、pl
−13、6のCl13CN:0.05%pyrOAc(
1:4)で、流速8mi/分て溶離した生成物を、28
0nmにおけるtJV吸収、B ザブチリスによるバイ
オアッセイ、および分析的HP L Cで検出した。所
望の活性を有する分画を合わtt、N−NaOHで叶I
を65に調節し、次いで濃縮してCll3CNを除去し
た。得られた水溶液(50m、i)を、水中に入れたL
[’1−C1g樹脂12mjLを満たした40mJlの
カラムに適用した。カラムを水(100mりで洗浄して
塩を除き、活性物質をCIl、CN:11,0(7,3
)で溶離した。溶出液を濃縮して凍結乾燥するごとによ
り、純化抗生物質CIJ O/ CS V lomgを
得ノこ。
実tL剋−4−c−早」ン−9)−4填−答物に−杼ア
二2ノノラー丑Z肚へq牛胸、学的東を19皆シー仝−
ρ8−リーC/ C,5vol遣 CS V 551’l培養物の代わりニC[I C[1
14(N 111’(L15647)培養物を用いろこ
と以外は実施例3の方法に従い、アクタプラニンへ因子
を抗生物質0【JC/C8■に変換した。
実施例−ゆ 抗生物質〔2す(ン、/−CS−Vの〕→
めの・9@mlQ g L CイZ?ム カラム;4,5−X250−mmステンレス鋼製充填物
、ノヤントン(Shandon) ODS ハイパーノ
ル(Ilypersil)−5ミクロン溶媒:CH30
N:0.05MKH2PO,(1−13P04でpH3
,2に調節されている)の(21ニア9)混合物 流速:1.OJ/分 検出(J V (220nm) 作図速度(チャー1・・スピード)+20cm/時保持
時間、93分 特許出願人、イーライ・リリー・アンド・カンパニー 代 理 人、弁理士 前出 葆 (ほか1名)手続補正
書(ヵ、い 昭和に()年 3月27日 □□ 長 官 ウ 411 1 事件の表示 昭和59年特許願第 221121 号2発明の名称 生物学的変換能を有する新規微生物 3補正をする者 事件との関係 特許出願人 住所 アメリカ合衆国インディアナ州インディア方、ポ
リス市、住所 大阪府大阪市東区本町2−IO不可ビル
内6 補正(D対象:明細書の全文

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 lアクチノプラネス・ミソウリエンシスNRr(L15
    647と一緒に培養することにより、抗生物質CUC/
    C8Vを共同′合成することができるアクチノプラネス
    ・ミソウリエンシスN RRL 15646、その変異
    株、突然変異株および組換え株。 2、アクチノプラネス・ミソウリエンシスNRRL15
    ’646である第1項に記載の菌株。 3アクチノプラネス・ミソウリエンシスNRRLI56
    46と一緒に培養することにより、抗生物質CU C/
    CS Vを共同合成することができるアクチノプラネス
    ・ミソウリエンシスN RRL 15647、その変異
    株、突然変異株および組換え株。 4アクヂノブラネス・ミソウリエンシスNRRL)56
    47である第3項に記載の菌株。
JP59221121A 1983-10-21 1984-10-20 生物学的変換能を有する新規微生物 Pending JPS60176581A (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US544337 1983-10-21
US06/544,337 US4587218A (en) 1983-10-21 1983-10-21 Novel bioconverting microorganisms

Publications (1)

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JPS60176581A true JPS60176581A (ja) 1985-09-10

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ID=24171770

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Application Number Title Priority Date Filing Date
JP59221121A Pending JPS60176581A (ja) 1983-10-21 1984-10-20 生物学的変換能を有する新規微生物

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US (1) US4587218A (ja)
EP (1) EP0159436A3 (ja)
JP (1) JPS60176581A (ja)
KR (1) KR870000235B1 (ja)
CA (1) CA1219829A (ja)
DK (1) DK501884A (ja)
GB (1) GB2148307B (ja)
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