JPS5938203A - アモルフアスセルロ−スの製造方法 - Google Patents
アモルフアスセルロ−スの製造方法Info
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- JPS5938203A JPS5938203A JP14722982A JP14722982A JPS5938203A JP S5938203 A JPS5938203 A JP S5938203A JP 14722982 A JP14722982 A JP 14722982A JP 14722982 A JP14722982 A JP 14722982A JP S5938203 A JPS5938203 A JP S5938203A
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Landscapes
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は天然セルロースおよび再生セルロースカラ完全
なアモルファスセルロースを得る方法に関するものであ
る。更に詳しく言えば、本発明はセルロースの結晶領域
を全く持た外いアモルファスセルロースに変換する方法
である。
なアモルファスセルロースを得る方法に関するものであ
る。更に詳しく言えば、本発明はセルロースの結晶領域
を全く持た外いアモルファスセルロースに変換する方法
である。
セル四−スはアンヒドログルコース単位から成る固体の
天、然炭化水素化物重合体であって実、験式C6H1o
O9を有する。セルロースの物理的構造は結晶領域と非
晶領域との混合物である。化学的試薬が反応したり浸透
したシする場合、結晶領域よりも非晶領域の方がはるか
に容易である。
天、然炭化水素化物重合体であって実、験式C6H1o
O9を有する。セルロースの物理的構造は結晶領域と非
晶領域との混合物である。化学的試薬が反応したり浸透
したシする場合、結晶領域よりも非晶領域の方がはるか
に容易である。
しかしこれまで完全ガアモルファスセルロースを得る好
ましい方法はなかった。というのはセルロースは本来結
晶構造をとることによシ安定化するからである。ボール
ミル粉砕または酢酸セルロースの鹸化によシアモルファ
スセルロースが得られるとされているが、ボールミル粉
砕では完全にアモルファスになるまでには到らない。寸
た酢酸セルロースの鹸化は平衡反応のため100%行な
うことが困難であること、さらに乾燥工程でミクロブラ
ウン運動によシセルロース■に再結晶化するため実用と
しては困難である。さらに酢酸セルロースを製造してか
ら鹸化するという工程をとるため非常にコスト高である
。
ましい方法はなかった。というのはセルロースは本来結
晶構造をとることによシ安定化するからである。ボール
ミル粉砕または酢酸セルロースの鹸化によシアモルファ
スセルロースが得られるとされているが、ボールミル粉
砕では完全にアモルファスになるまでには到らない。寸
た酢酸セルロースの鹸化は平衡反応のため100%行な
うことが困難であること、さらに乾燥工程でミクロブラ
ウン運動によシセルロース■に再結晶化するため実用と
しては困難である。さらに酢酸セルロースを製造してか
ら鹸化するという工程をとるため非常にコスト高である
。
セルロースをアモルファス化する簡便fx 方法が開発
されればその用途は広い。
されればその用途は広い。
セルロースは酸又は酵素によって生成されるグルコース
の供給源としてデンプンに匹敵し得る。それはまた抗生
物質2代謝物質、単細胞タンパク質および工業用アルコ
ールの微生物による生産のだめの基質としてもデンプン
および可溶性糖に匹敵し得る。
の供給源としてデンプンに匹敵し得る。それはまた抗生
物質2代謝物質、単細胞タンパク質および工業用アルコ
ールの微生物による生産のだめの基質としてもデンプン
および可溶性糖に匹敵し得る。
本発明者うはかかるアモルファスセルロースの簡便な製
造方法を見い出すべく鋭意研究の結果セルロースを特別
の方法で再生することによす完全にアモルファス化する
、即ちセルロースの結晶部分をX線的にゼロ優にするこ
とができることを見い出し本発明に到達した。
造方法を見い出すべく鋭意研究の結果セルロースを特別
の方法で再生することによす完全にアモルファス化する
、即ちセルロースの結晶部分をX線的にゼロ優にするこ
とができることを見い出し本発明に到達した。
即ち、本発明は活性化されたセルロースにN、N−ジメ
チルアセトアミド、1−メチル−2−ピロリディノン、
1.5−ジメチル−2−イミダゾリジノン、1−メチル
−2−ピペリディノンおよびその混合物からなる群から
選ばれたアミド及び全量に対し5〜20重量%の塩化リ
チウムを加えて溶解させたセルロース溶液を大量のセル
ロースの非溶媒であって前記アミドと相溶性のある溶媒
中に混合しセルロースを沈澱再生させることを特徴とす
るアモルファスセルモースの製造方法を提供するもので
ある。
チルアセトアミド、1−メチル−2−ピロリディノン、
1.5−ジメチル−2−イミダゾリジノン、1−メチル
−2−ピペリディノンおよびその混合物からなる群から
選ばれたアミド及び全量に対し5〜20重量%の塩化リ
チウムを加えて溶解させたセルロース溶液を大量のセル
ロースの非溶媒であって前記アミドと相溶性のある溶媒
中に混合しセルロースを沈澱再生させることを特徴とす
るアモルファスセルモースの製造方法を提供するもので
ある。
溶解状態のセルロースを再生する場合、溶液中でセルロ
ース分子が分子分散していなければ理論的にアモルファ
スセルロースは得られない。
ース分子が分子分散していなければ理論的にアモルファ
スセルロースは得られない。
本発明に用いた溶媒組成(N、N−ジメチルアセトアミ
ド/Li0t、 1−メチル−2−ピロリディノン/
LiO2,1,5−ジメチル−2−イミダゾリジノン/
Li0ts 1−メチル−2−ピペリディノン/r
、taz )においてはセルロースを充分分子分散させ
た状態で溶解させることができる。但しそのような溶解
状態を得るにはセルロースを活性化する必要がある。本
発明においてセルロースを活性化する方法としては水、
アセトン等で 、還流させる方法、或いはN、N−ジメ
チルアセトアミド、1−メチル−2−ピロリディノン、
1,3−ジメチル−2−イミダゾリジノンまたは1−メ
チル−2−ピペリディノンおよびそれらの混合物によシ
沸騰還流させる方法などが挙げられる。この活性化され
たセルロースにLi Olを全量に対して5720重−
1ts添加し一昼夜放置することによりセル四−スを溶
解することができる。ここでLi0tの量は5%未満で
はセルロースの溶解性が充分ではなく良好なアモルファ
スセルロースが得られない。また水、アセトン等で活性
化した場合は上記アミド溶媒で置換してからI、10t
を添加せねばならない。この均一に溶解したセルロース
の溶液を、セルロースの非溶媒であって前記アミドと相
溶性のある溶媒例えば水またはメタノール、エタノール
、アセトン。
ド/Li0t、 1−メチル−2−ピロリディノン/
LiO2,1,5−ジメチル−2−イミダゾリジノン/
Li0ts 1−メチル−2−ピペリディノン/r
、taz )においてはセルロースを充分分子分散させ
た状態で溶解させることができる。但しそのような溶解
状態を得るにはセルロースを活性化する必要がある。本
発明においてセルロースを活性化する方法としては水、
アセトン等で 、還流させる方法、或いはN、N−ジメ
チルアセトアミド、1−メチル−2−ピロリディノン、
1,3−ジメチル−2−イミダゾリジノンまたは1−メ
チル−2−ピペリディノンおよびそれらの混合物によシ
沸騰還流させる方法などが挙げられる。この活性化され
たセルロースにLi Olを全量に対して5720重−
1ts添加し一昼夜放置することによりセル四−スを溶
解することができる。ここでLi0tの量は5%未満で
はセルロースの溶解性が充分ではなく良好なアモルファ
スセルロースが得られない。また水、アセトン等で活性
化した場合は上記アミド溶媒で置換してからI、10t
を添加せねばならない。この均一に溶解したセルロース
の溶液を、セルロースの非溶媒であって前記アミドと相
溶性のある溶媒例えば水またはメタノール、エタノール
、アセトン。
イソプロパツール、アセトニトリル等の有機溶剤で再生
することにより完全なアモルファスセルモースを得るこ
とができる。再生溶媒には必ずしもI、10tが溶解す
るものを用いる必要はないっそれは再生されたセルロー
ス中にLi0tが存在してもセルロース系材料に対して
有害な作用は持たないからである。
することにより完全なアモルファスセルモースを得るこ
とができる。再生溶媒には必ずしもI、10tが溶解す
るものを用いる必要はないっそれは再生されたセルロー
ス中にLi0tが存在してもセルロース系材料に対して
有害な作用は持たないからである。
かかる本発明の方法によるとX線回折から求めた結晶化
度が10係以下であり、平衡水分量が80チ以上、セル
ラーゼによる糖転化率がqo%以上のアモルファスセル
ロースを容易に得ることができる。
度が10係以下であり、平衡水分量が80チ以上、セル
ラーゼによる糖転化率がqo%以上のアモルファスセル
ロースを容易に得ることができる。
本発明を以下の実施例および比較例により更[Lil[
lに説明する。なお再生;−たセルロースの性状(1)
結晶化度、(2)平衡水分量、(3)糖転化率の測定方
法及び評価方法は次の通りである。
lに説明する。なお再生;−たセルロースの性状(1)
結晶化度、(2)平衡水分量、(3)糖転化率の測定方
法及び評価方法は次の通りである。
(1) 結晶化度(至)
微粉砕したセルロースまたは再生セルロース0.21を
アルミホルダーに押しつけXi回折の回折角度を5〜3
0°まで操作して測定する。第1図に示すように結晶性
セルロースはA1.A2の結晶性散乱ピークがある。こ
れに対し非晶部分はバックグラウンド散乱となpBの部
分となる。
アルミホルダーに押しつけXi回折の回折角度を5〜3
0°まで操作して測定する。第1図に示すように結晶性
セルロースはA1.A2の結晶性散乱ピークがある。こ
れに対し非晶部分はバックグラウンド散乱となpBの部
分となる。
従って結晶化度は次式
%式%
A1.A、、、Bの面積の求め方は5°および30゜の
点1と2を直線で結び更に18.5°での散乱点3と1
−3.2−3のように結んで求める。
点1と2を直線で結び更に18.5°での散乱点3と1
−3.2−3のように結んで求める。
(2)平衡水分量
リンター、MOO等のセルロース1’ Ofをシャーレ
に入れ恒温25℃、恒湿70%室に放置し、経時的に水
分量を測定したところ、20日以上で一定となったため
、これを平衡水分量とよぶ。水分の測定方法は100℃
。
に入れ恒温25℃、恒湿70%室に放置し、経時的に水
分量を測定したところ、20日以上で一定となったため
、これを平衡水分量とよぶ。水分の測定方法は100℃
。
6時間での重量減少から以下の式で計算する。
(3)糖転化率
1oaml三角フラスコにpH==5でイオン強度μ=
0.14モル/lの酢酸緩衝液30階ノと0.3Fのセ
ルロースおよび0.32のセルラーゼを入れ40℃に保
ち経時的にゲルコールの生成量を測定する。糖転化率は
次式から求める。
0.14モル/lの酢酸緩衝液30階ノと0.3Fのセ
ルロースおよび0.32のセルラーゼを入れ40℃に保
ち経時的にゲルコールの生成量を測定する。糖転化率は
次式から求める。
ここでグルコース生成量はサンプル2 mlとグルコー
スオキシダーゼと発色試薬(フェノール+4−アミンア
ンチピリン)1 : 1混合物を6 ml加え505℃
mでの吸光度を測定し予じめ濃度既知の標準液で得られ
た検量線から求める。
スオキシダーゼと発色試薬(フェノール+4−アミンア
ンチピリン)1 : 1混合物を6 ml加え505℃
mでの吸光度を測定し予じめ濃度既知の標準液で得られ
た検量線から求める。
実施例 1
非結晶性部分が予じめ加水分解で除かれた結晶性の高い
ミクロクリスタリンセルロース(M O0)201を丸
底フラスコの中に入れ200fのN、N−ジメチルアセ
トアミドを加えた。この混合物を還流温度(165℃)
で30分間攪拌しながら加熱活性化した。活性化した後
自然冷却で100℃になった時下記による量のLie/
=を添加し10時間放置溶解させた。この均質に溶解し
たセルロースを5tの水浴中(50℃)に攪拌温合した
。再生したファイバー状のセルロースを洗浄しプレス脱
液後X線回折を測定したところ第2図のようであった。
ミクロクリスタリンセルロース(M O0)201を丸
底フラスコの中に入れ200fのN、N−ジメチルアセ
トアミドを加えた。この混合物を還流温度(165℃)
で30分間攪拌しながら加熱活性化した。活性化した後
自然冷却で100℃になった時下記による量のLie/
=を添加し10時間放置溶解させた。この均質に溶解し
たセルロースを5tの水浴中(50℃)に攪拌温合した
。再生したファイバー状のセルロースを洗浄しプレス脱
液後X線回折を測定したところ第2図のようであった。
但しLiOノは重量で0eI)、2%、3%、4%、8
g6.15%添加した。Li0tの貝が8%、15%の
もので完全にセルロースIのピークが消失し結晶化度0
チのアモルファスセルロースが得られた。
g6.15%添加した。Li0tの貝が8%、15%の
もので完全にセルロースIのピークが消失し結晶化度0
チのアモルファスセルロースが得られた。
実施例 2
実施例1で溶解1−たMOOのI、10t8チのものを
5tの水浴中(50℃)に混合したが、ここでは再生濃
度を変えた。濃度調節社溶解時セルロース濃度が8.4
係のものを順次N、N−ジメチルアセトアミドで5チ、
3%、 1 % 、 0.2%に希釈して行なった。第
3図で明らかなように再生濃度によらずアモルファスセ
ルロースが得うれた。このアモルファスセルロース中L
i04の残存液を原子吸光分析で調べたところ、 Li
が1500 ppmであった。
5tの水浴中(50℃)に混合したが、ここでは再生濃
度を変えた。濃度調節社溶解時セルロース濃度が8.4
係のものを順次N、N−ジメチルアセトアミドで5チ、
3%、 1 % 、 0.2%に希釈して行なった。第
3図で明らかなように再生濃度によらずアモルファスセ
ルロースが得うれた。このアモルファスセルロース中L
i04の残存液を原子吸光分析で調べたところ、 Li
が1500 ppmであった。
集 施 例 3
ここでは水を再生溶媒とし温度を変化させた。
実施例1で溶解したMOOのLi048チ%のものを1
0tの水浴に攪拌混合し、再生温度を0゜20.50,
100℃に変化させた。再生後プレス脱液しX線回折を
測定したところ、第4図に見られるようにこの温度範囲
でアモルファスセルロースが得られた。
0tの水浴に攪拌混合し、再生温度を0゜20.50,
100℃に変化させた。再生後プレス脱液しX線回折を
測定したところ、第4図に見られるようにこの温度範囲
でアモルファスセルロースが得られた。
実 施 例 4
この実験では、再生溶媒として有機溶媒を用いた。実施
例1で溶解したMOOのLi048チのもの全6425
℃メタノール、イソプロパツール、アセトン、アセトニ
トリル中に攪拌混合した。加熱乾燥後X線回折を測定し
たところ、第5図に示すように上記溶媒のすべてにおい
てアモルファスセルロースが得られた。結晶化度はメタ
ノールが最高8係で他は0チであった。
例1で溶解したMOOのLi048チのもの全6425
℃メタノール、イソプロパツール、アセトン、アセトニ
トリル中に攪拌混合した。加熱乾燥後X線回折を測定し
たところ、第5図に示すように上記溶媒のすべてにおい
てアモルファスセルロースが得られた。結晶化度はメタ
ノールが最高8係で他は0チであった。
実施例 5
この実験では本発明方法と他のアモルファスセルロース
の生成方法とを比較した。実施例1と同様の手法でパル
プを溶解しくLidt 61.50℃水浴に攪拌混合し
た。これと同じパルプ102をジメチルスルホキシド2
0口fに0.5係のパラホルムアルデヒドを含む溶剤に
分散させ95℃に加熱溶解させた。この均質に溶解した
溶液を50℃水浴に攪拌混合した。さらにこれと同様の
パルプ200Fを振動ボールミルで5時間粉砕した。上
記再生セルロースおよびボールミルにより粉砕したセル
ロースのX線回折を測定1−た。第6図にその結果を示
す。図中、1は本発明の方法によるセルロース、2はジ
メチルスルホキシド/バラホルムアルデヒド系からM生
L*セルロース、3は粉砕セルロースである。第6図か
られかるように、ジメチルスルホキシド/パラホルムア
ルデヒドから再生【またセルロースは、セルロース■の
結晶構造をもっていた。また、ボールミルによる粉砕は
完全なセルロース■の構造破壊に到っておらず、本発明
の方法のみによシアモルファスセルロース力1得られた
。
の生成方法とを比較した。実施例1と同様の手法でパル
プを溶解しくLidt 61.50℃水浴に攪拌混合し
た。これと同じパルプ102をジメチルスルホキシド2
0口fに0.5係のパラホルムアルデヒドを含む溶剤に
分散させ95℃に加熱溶解させた。この均質に溶解した
溶液を50℃水浴に攪拌混合した。さらにこれと同様の
パルプ200Fを振動ボールミルで5時間粉砕した。上
記再生セルロースおよびボールミルにより粉砕したセル
ロースのX線回折を測定1−た。第6図にその結果を示
す。図中、1は本発明の方法によるセルロース、2はジ
メチルスルホキシド/バラホルムアルデヒド系からM生
L*セルロース、3は粉砕セルロースである。第6図か
られかるように、ジメチルスルホキシド/パラホルムア
ルデヒドから再生【またセルロースは、セルロース■の
結晶構造をもっていた。また、ボールミルによる粉砕は
完全なセルロース■の構造破壊に到っておらず、本発明
の方法のみによシアモルファスセルロース力1得られた
。
実施例 に
こでは実施例5の本発明方法により生成されたアモルフ
ァスセルロース及び比較のためにMCOとリンターとを
用い、これらの平衡水分量を測定し、た。温度25℃、
湿度70%の室に90日間放置したととる、第7図に示
すようにM OO、IJンターではわずかに10係程度
の平衡水分量であった。これに対しアモルファスセルロ
ースはヒドロキシル基(−0H)がフリーなため水を非
常に保持しやすく、平衡水分量は96チのまオであった
。とれによシ木発明によるアモルファスセルロースを得
る方法がいかに優れているかわかる。
ァスセルロース及び比較のためにMCOとリンターとを
用い、これらの平衡水分量を測定し、た。温度25℃、
湿度70%の室に90日間放置したととる、第7図に示
すようにM OO、IJンターではわずかに10係程度
の平衡水分量であった。これに対しアモルファスセルロ
ースはヒドロキシル基(−0H)がフリーなため水を非
常に保持しやすく、平衡水分量は96チのまオであった
。とれによシ木発明によるアモルファスセルロースを得
る方法がいかに優れているかわかる。
実施例 7
ここでは実施例5の本発明方法により生成したアモルフ
ァスセルロース及び比較のだ26 KMOOとリンター
とを用い、これらのセルラーゼ分解による糖転化率を比
較した。第8図に示すようにMOOやリンターに比べ本
発明で得られたアモルファスセルロースは糖転化率が2
倍大きくしかも数時間で95チ以上が分解されるほど活
性が高いことから、完全なアモルファスセルロースが得
られている仁とがわかる。
ァスセルロース及び比較のだ26 KMOOとリンター
とを用い、これらのセルラーゼ分解による糖転化率を比
較した。第8図に示すようにMOOやリンターに比べ本
発明で得られたアモルファスセルロースは糖転化率が2
倍大きくしかも数時間で95チ以上が分解されるほど活
性が高いことから、完全なアモルファスセルロースが得
られている仁とがわかる。
第1図はセルロースのX線回折図形、第2図はセルロー
スの結晶構造に及ぼすLi Olの影響を示すX線回折
図、第3図はセルロースの結晶構造に及ばずセルロース
の再生濃度の影響を示すX線回折図、第4図はセルロー
スの結晶構造に及はす再生温度の影響を示すX線回折図
、第5図はセルロースの結晶構造に及ぼす再生溶剤の影
響を示すX線回折図、第6図は本発明方法及び比較方法
にょル得られたセルロースのX線回折図、第7図は各種
セルロースの平衡水分量、を示すグラフ、第8図は各種
セルロースの糖転化率を示すグラフである。 出願人代理人 古 谷 馨 第 1 図 ←−20(度) 第2図 2θ (度) 第 3 図 2θ (度) 第 4 図 30 25 20 15
10 52θ (度) 第 5 図 30 25 20 15
10 52θ (度)
スの結晶構造に及ぼすLi Olの影響を示すX線回折
図、第3図はセルロースの結晶構造に及ばずセルロース
の再生濃度の影響を示すX線回折図、第4図はセルロー
スの結晶構造に及はす再生温度の影響を示すX線回折図
、第5図はセルロースの結晶構造に及ぼす再生溶剤の影
響を示すX線回折図、第6図は本発明方法及び比較方法
にょル得られたセルロースのX線回折図、第7図は各種
セルロースの平衡水分量、を示すグラフ、第8図は各種
セルロースの糖転化率を示すグラフである。 出願人代理人 古 谷 馨 第 1 図 ←−20(度) 第2図 2θ (度) 第 3 図 2θ (度) 第 4 図 30 25 20 15
10 52θ (度) 第 5 図 30 25 20 15
10 52θ (度)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 活性化されたセルロースにN、N−ジメチルアセ
トアミド、1−メチル−2−ピロリディノン、1.3−
ジメチル−2−イミダゾリジノン、1−メチル−2−ピ
ペリディノンおよびその混合物からなる群から選ばれた
アミド及び全殴に対し5〜20重量%の塩化リヂウムを
加えて溶解させたセルロース溶液を大量のセルロースの
非溶媒であって前記アミドと相溶性のある溶媒中に混合
しセルロースを沈澱再生させることを特徴とするアモル
ファスセルロースの製造方法。 2、 セルロースの非情II!Aが、水、メタノール。 エタノール、アセトニトリル、インプロパツール又はア
セトン又はそれらの混合物である特許請求の範囲第1項
記載のアモルファスセルロースの製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14722982A JPS5938203A (ja) | 1982-08-25 | 1982-08-25 | アモルフアスセルロ−スの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14722982A JPS5938203A (ja) | 1982-08-25 | 1982-08-25 | アモルフアスセルロ−スの製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS5938203A true JPS5938203A (ja) | 1984-03-02 |
JPH0139443B2 JPH0139443B2 (ja) | 1989-08-21 |
Family
ID=15425485
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP14722982A Granted JPS5938203A (ja) | 1982-08-25 | 1982-08-25 | アモルフアスセルロ−スの製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS5938203A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998017692A1 (en) * | 1996-10-19 | 1998-04-30 | University Of Wales, Bangor | Preparation of chemically reactive polysaccharides |
WO2014061411A1 (ja) | 2012-10-18 | 2014-04-24 | Jnc株式会社 | 抗体精製用陽イオン交換クロマトグラフィー担体および抗体医薬の製造過程で生産される抗体単量体とその重合体の分離方法 |
JP2015508109A (ja) * | 2012-10-10 | 2015-03-16 | 湖北天思科技股▲ふん▼有限公司 | セルロースの溶解方法 |
JP2015093906A (ja) * | 2013-11-11 | 2015-05-18 | 国立大学法人北見工業大学 | 無定形セルロースの製造方法 |
-
1982
- 1982-08-25 JP JP14722982A patent/JPS5938203A/ja active Granted
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998017692A1 (en) * | 1996-10-19 | 1998-04-30 | University Of Wales, Bangor | Preparation of chemically reactive polysaccharides |
US6455691B1 (en) | 1996-10-19 | 2002-09-24 | University Of Wales, Bangor | Preparation of chemically reactive polysaccharides |
JP2015508109A (ja) * | 2012-10-10 | 2015-03-16 | 湖北天思科技股▲ふん▼有限公司 | セルロースの溶解方法 |
WO2014061411A1 (ja) | 2012-10-18 | 2014-04-24 | Jnc株式会社 | 抗体精製用陽イオン交換クロマトグラフィー担体および抗体医薬の製造過程で生産される抗体単量体とその重合体の分離方法 |
JP2015093906A (ja) * | 2013-11-11 | 2015-05-18 | 国立大学法人北見工業大学 | 無定形セルロースの製造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0139443B2 (ja) | 1989-08-21 |
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