JPS589680B2 - アミノカゴウブツノ セイホウ - Google Patents

アミノカゴウブツノ セイホウ

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JPS589680B2
JPS589680B2 JP49145790A JP14579074A JPS589680B2 JP S589680 B2 JPS589680 B2 JP S589680B2 JP 49145790 A JP49145790 A JP 49145790A JP 14579074 A JP14579074 A JP 14579074A JP S589680 B2 JPS589680 B2 JP S589680B2
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acylase
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amino
acid
general formula
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マンフレツト・リエルシユ
ヤコブ・ネーシユ
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Ciba Geigy AG
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Publication date
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P35/00Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin
    • C12P35/02Preparation of compounds having a 5-thia-1-azabicyclo [4.2.0] octane ring system, e.g. cephalosporin by desacylation of the substituent in the 7 position
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/822Microorganisms using bacteria or actinomycetales
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    • Y10S435/849Escherichia coli

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  • Cephalosporin Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は一般式 (この式においてRは低級アルキル基、例えばエチル基
、イソプロビル基、n−プロピル基、第3ブチル基、ま
たは特にメチル基である)で表わされるアミン化合物の
製法に関する。
この化合物は治療に使用できる化合物、特に例えば南ア
特許第4 0 5 0/7 3号に記載されているよう
な相当するN−アシル誘導体、例えば7−(D−α−ア
ミノーα−フエニルアセトアミド)−3−メトキシセフ
−3−エムー4−カルボン酸の製造にとって価値のある
原料である。
本発明方法は、アシラーゼ活性のある微生物またはアシ
ラーゼ含有抽出物またはアシラーゼ自体を、水溶液中に
おいて、一般式 (この式においてRは前記の意味を持ち、R1はフエニ
ルアセチル基又はフエノキシアセチル基である) で表わされる化合物に作用させ、この溶液から一般式(
1)で表わされる化合物を単離することを特徴とするも
のである。
一般式(II)で表わされる化合物において、R1は脂
肪族性の1価または2価カルボン酸のアシル基、例えば
脂肪族、脂環式、芳香脂肪族または複素環式脂肪族カル
ボン酸のアシル基、特にアルキル基またはアルケニル基
が酸素またはいおうで中断されていることのあるような
低級アルカン酸または低級アルケン酸のアシル基、アリ
ールー、アリールオキシーまたはアリールチオー低級ア
ルカン酸(ここでアリール基は特にフエニル基または例
えばヒドロキシ基、低級アルキル基または低級アルコキ
シ基によって置換されているフエニル基であり、低級ア
ルカン酸は特に酢酸である)のアシル基、主に天然に産
出するペニシリンのアシル基、例えばヘプクンー、ヘキ
サンーまたはペンクンカルボン酸、ペンテン−2−カル
ボン酸、プチルチオ酢酸、アリルチオ酢酸、フエニルチ
オ酢酸、P−ヒドロキシフエニル酢酸、特にフエニル酢
酸およびフエニルオキシ酢酸のアシル基である。
従って一般式(II)においてRがメチル基であり、R
1がフエニルアセチル基またはフエノキシアセチル基で
あるような化合物から出発するのが好ましい。
アシラーゼ活性のある微生物、またはこれから得られる
抽出物または多少とも精製されたアシラーゼ、およびア
シラーゼ活性の測定法およびアシラーゼの取得法は公知
である。
これらは例えばE1H − Flynn著’ Ceph
alosparin and Penicillins
“、アカデミック・プレス、ニューヨークおよびロンド
ン、1972、29〜37および421〜22頁、また
はM − Coleの出版物’ Process Bi
ochemi−stry”、1967、35〜46頁お
よびNffiesch等によるPathol、Micr
obiol.3 0, 8 8 0 ( 1 9 6
7 )に記載されている。
周知のとおり、2つの型のアシラーゼ、すなわち、ペニ
シリンGを極めて迅速に脱アシル化するがペニシリン■
はそれほど迅速には脱アシル化しない細菌起源(バクテ
リア及びノカルディア)のアシラーゼ、ならびにペニシ
リンGよりもペニシリンVを迅速に脱アシル化する真菌
類、たとえば、ペニシリウムもしくはセファロスポリウ
ム(酵母及び連鎖球菌を含む)から得られるアシラーゼ
がある。
同様にしてこのアシラーゼは相当するアシル基R1を持
つ一般式(II)で表わされる化合物の脱アシル化に使
用することができる。
ペニシリンGのアシル基、すなわちフエニルアセチル基
を持った化合物の脱アシル化に特に適しているアシラー
ゼ含有微生物としては大腸菌( Escherichi
a coli )、バチルス・サブチリス( Bac−
i11us subtillis )、バチルス・メガ
テリウム( Bacill−ue megatheri
um )、更にミクロコクス・ロゼウス( Micro
coccus roseus )、ミクロコクス゜リソ
デイクチクス( Micrococcus lysod
eikticus )、アルカリゲネス・フエカリス(
Alcaligenes faecalis)、エア
0/<クテル0クロアセ( Aerobacter c
loacae )およびノカルジア( Nocardi
a )、またペニシリンVのアシル基すなわちフエニル
オキシアセチル基を持った化合物の脱アシル化にはフサ
リウム(Fu−3arium )、例えばフサリウム・
アベナセウム( Fusa−rium avenace
um )、フサリウム・セミテクトム(F+rsari
um semitectum )、エメリセロプシス・
ミニマ( Emericellopsis minim
a )、ペニシリウム゜クリソゲヌム( Penici
llium chrysogenum )、アスペルギ
゛ルス・オクラセウス(Aspergillus oc
hraceus )、セファロスポリウム( Ceph
alosporium ) sp .CM I4913
7、トリコフイトン例えばトリコフイトン・メンクグロ
フイテス( Trichophyton mentag
−rophytes ) 、エビテルモフイトン・フロ
コスム(Ep−idermophyton flocc
osum )、ストレプトミセス例えばストレプトミセ
ス・ラベンデュラ( Strepto−myces l
avendulae )が挙げられる。
微生物の沈殿物(常法により培養することによって得た
もの)または細胞物質から得られるアシラーゼ抽出物ま
たは精製アシラーゼと一般式(I)で表わされる化合物
とを水溶液中で互いに作用させる。
この際にアシラーゼは固体担体、例えばけいそう土、シ
リカゲル、バン士、酸化アルミニウム、カオリン、りん
酸カルシウム、カルボキシメチルセルロース、DEAE
−セルロース、TEAE−セルロース、カルボキシメチ
ルデキストランまたはポリスチレン上に存在させること
ができる。
所望により、固体担体上での反応を連続的に行うことが
できる。
溶液のpHおよび反応温度は使用するアシラーゼの種類
によってきまる。
これらの反応条件は例えばFlynnの書物の第34〜
35頁の表から知ることができる。
脱アシル化が終了した後(96時間まで)、場合により
細胞物質を分離し、一般式(I)で表わされる化合物を
それ自体公知の方法により、例えば沈降、蒸発(凍結乾
燥)またはクロマトグラフイーにより溶液から単離する
ことができる。
所望により、一般式(1)で表わされる化合物を含有し
ている溶液は、例えば適当なアシル化剤で処理すること
により所望の治療に有効な製品の製造に直接用いること
ができる。
このアシル化は微生物学的方法により、例えばベルギー
特許第787793号明細書に記載されているのと同様
にして行うことができる。
以下の実施例によって本発明を更に詳しく説明する。
例1 ペプトン4g、肉エキス4gおよび塩化ナトリウム4g
を水道水で200mlにして得た殺菌培養溶液(殺菌後
のpHは6.5〜7)に大腸菌ATCC9637を接種
し、この懸濁物を500mlエルレンマイヤーフラスコ
に入れて毎分250回の速度で振動機により26℃で1
8時間振動する。
次にこの懸濁物1rrLlを、上記培養溶液200ml
とフエニル酢酸20■を含有している別の容量500m
Aのエルレンマイヤーフラスコに移し、この懸濁物を再
び26℃で振動機により250回/分で振動し、24時
間これを行う。
次に9 0 0 O rpmおよび0℃で15分間遠心
分離し、上澄み液を捨て、沈殿物をpH7の0.1Mり
ん酸塩緩衝液に懸濁させ、9000rpmで0℃で更に
15分間遠心分離し、上澄み液を再び捨て、沈殿物をり
ん酸塩緩衝液に懸濁させ、次に遠心分離する。
湿った細胞物質5 0 0m9をりん酸塩緩衝液( p
H7 )1 0mlおよび7−フエニルアセトアミド−
3−メトキシセフ−3−エムー4−カルボン酸5m9と
共に容量500mlのエルレンマイヤーフラスコ中で懸
濁させ、30℃の水溶で15分間振動する。
次に9 0 0 0 rpmで15分間遠心分離する。
この水溶液は7−アミノー3−メトキシセフ−3−エム
ー4−カルボン酸を含有している。
この物質はセルロース上薄層クロマトグラムで次のRf
値を示す:(系:nブタノールー酢酸一水;11:3:
7)Rf=0.51;(系二イソフ0ロパノーノレーぎ
酸一水;74:4二19)Rf=0.33。
これらのRf値は、それぞれ、標準物質7−アミノー3
−メトキシセフ−3−エムー4−カルボン酸のRf値と
同一であり、この結果から、この例における反応生成物
が7−アミノー3−メトキシセフー3−エムー4−カル
ボン酸であることが確認された。
さらに、7−アミノー3−メトキシセフ−3−エムー4
−カルボン酸は抗菌活性を有しないのに対してこの化合
物のフエニルアセチル誘導体は抗菌活性を有するという
事実及び、この例により得られた抗菌活性を有しない化
合物をフエニルアセチル誘導体に変えることによって抗
菌活性を有するに至るという事実からも、この例の生成
物が7−アミノー3−メトキシセフ−3−エムー4−カ
ルボン酸であることが確認できる。
すなわち、ホワツトマンNo1円形ろ紙(径6mm)を
標準溶液(7−フエニルアセトアミドセフ−3−エムー
4−カルボン酸0.5■/りん酸塩緩衝液1mlを含有
している)または上記試験溶液中に浸せきし、次に針に
刺し、次の液を順次噴霧する。
すなわち1.アセトン中ピリジン10%溶液、2.アセ
トン中フエニルアセチルクロライド2%溶液、3.アセ
トン中ピリジン10%溶液。
次に、バチルス・サブチリスATCC6633を接種し
た平板に置く。
37℃で一晩培養する。
標準溶液中には径22關の阻止区域ができ、フエニルア
セチル化した試験溶液では径12mmの阻止区域ができ
る。
フエニルアセチル化してない試験溶液では阻止区域がで
きない。
例2 ペプトン50g、肉エキス50g、塩化ナトリウム50
gから成り水道水で5 0 0mlにした殺菌培養溶液
で大腸菌ATCC9637を26℃および180回/分
で振動しながら約39時間培養する。
660mmで約2.0の光学濃度(希釈度10%で測定
)で細胞を遠心分離し、pH7の0.06−Mりん酸塩
緩衝液100mlで2回洗浄し、次にX=プレス( B
iox A B社、Nacka−スエーデン)によりほ
ぐす。
破砕した細胞をりん酸塩緩衝液pH7で抽出し、次に不
透明残さ(粗抽出物)から細胞屑を遠心分離する。
こうして得た粗抽出物を固体硫酸アンモニウムで分別沈
殿する。
45〜65%の硫酸アンモニウム溶液でアシラーゼ活性
を含むフラクションが沈殿し、これを遠心分離により分
離する。
固体残さをpH7の0.06−Mりん酸塩緩衝液150
mlに溶解し、この溶液を超遠心分離機で4℃でで15
時間遠心分離する(110000g)。
こうしてアシラーゼが沈殿中に濃縮される。
これをりん酸塩緩衝液( pH7 ) 1 5 0ml
に溶解し、セファデツクス( SephadeP) G
− 2 0 0 (分子量5000〜soooooの
たん白質用分別範囲を持つ架橋ポリデキストランゲル、
ファルマシア・ファイン・ケミカル社製、ウプラサ)で
ろ過する。
2. 5 ml宛を捕集する。
フラクション22(アシラーゼの価17、OU/mA)
は大部分のアシラーゼを含有している。
このフラクション20mlを7−フエニルアセトアミド
ー3−メトキシセフ−3−エムー4−カルボン酸100
mlIの水3077il中の溶液と混合し、30℃の水
浴中で15時間振動する。
次にこの溶液を凍結乾燥し、この凍結乾燥物を水−メタ
ノール混合物4:1混合物に溶解し、20%りん酸でp
Hを約4.5にする。
沈殿をろ過し、メタノールおよび次にアセトンで洗浄し
、高度の真空中で乾燥する。
7−アミノー3−メトキシー3−セフー4一エムカルボ
ン酸が分子内塩の形で得られる。
この化合物はシリカゲルの薄層クロマトグラムにおいて
n−ブタノールー酢酸一水67:10:23の系で0.
16のRf値を示す。
このRf値は、標準物質7−アミノー3−メトキシー3
−セフー4−エムカルボン酸の同一条件におけるRf値
と同一であり、この例の反応生成物が7−アミノー3−
メトキシ−3−セフー4−エムカルボン酸であることを
確認した。
例3 例1に記載した方法と同様の方法により得たエツセリシ
ア・コリ( Escherichia coli )A
TCC9637の湿菌体500mpを、10mlのリン
酸緩衝液pH7及び5mI?の7−フエノキシーアセト
アミドー3−メトキシーセフ−3−エムー4−カルボン
酸を収容した50ml容量のエルレンマイヤーフラスコ
に入れて懸濁し、そしてこの懸濁液を入れたフラスコを
30℃の水浴中で15時間振とうし、次に、この懸濁液
を9 0 0 O rpmにて15分間遠心分離した。
この水性液は7−アミノー3−メトキシーセフ−3−エ
ムー4−カルボン酸を含んでいた。
この物質のセルロース薄層クロマトクラム上でのRf値
は、n−ブタノール/氷酢酸/水11:3:7系でRf
=0.51でありイソプロパノール/蟻酸/水74:4
:19系でRf=0.33であった。
既知物質7−アミノー3−メトキシーセフ−3ーエムー
4−カルボン酸のRf値も上記と同一であり、これによ
りこの例の反応生成物が7−アミノー3−メトキシーセ
フ−3−エムー4−カルボン酸であることが確認された
例1の場合と同様に、この例の反応生成物をフエノキシ
アセチル誘導体に転化し、この誘導体のパシルス・ズフ
゛チリス( Bacillus subtilis )
ATCC6633に対する抗菌活性を、標準物質7−フ
エノキシアセトアミドーセフー3−エムーカルボン酸及
びフエノキシアセチル化されていないこの例の生成物の
抗菌活性と比較した。
例1の場合と同様の結果が得られ、これによっても、こ
の例の生成物が7−アミノー3−メトキシーセフ−3−
エムー4−カルボン酸であることが確認された。
例4 20mlの例2に記載した方法によって調製したエツシ
エリシア・コリATCC9637からのアシラーゼを含
有するフラクション22を、30mA’の水に100m
gの7−フエノキシアセトアミドー3−メトキシーセフ
−3−エムー4−カルボン酸を溶解した溶液と混合し、
この混合物を30℃の水浴中で15分間振とうした。
次にこの溶液を凍結乾燥した。
この凍結乾燥物を40mlの水・メタノール4:1混液
に入れ、そして、20%リン酸によりpHを約4.5に
調製した。
沈殿をろ取し、メタノール及びアセトンで順次洗浄し、
そして高真空で乾燥した。
7−アミノー3−メトキシー3一セフー4−エムーカル
ボン酸を内塩として得た。
シリカゲル薄層クロマトグラム上で、n−ブタノール/
酢酸/水67:10:23系において、この例において
得られた化合物のRfは0.16であり、この値は標準
物質7−アミノー3−メトキシ−3−セフー4−エムー
カルボン酸のRf値と同一であった、、 なお、例2及び4におけるアシラーゼ活性の測定は次に
記載する公知方法によって行った。
各フラクションのアリコート0.2mlを、50mMリ
ン酸ナトリウム緩衝液( pH 7.5 ) 1.8
m.l及びNIPAB溶液〔50mMリン酸ナトリウム
緩衝液pH7.5に6mM6−ニトロ−3−フエニルア
セトアミドー安息香酸を溶解し、そして、これに水酸化
ナトリウム溶液を加えてpHを7.5に調整したもの)
と、1cmのキュベット中で25℃にて混合した。
この液の光学濃度の増加を、酵素溶液を含まず緩衝液と
NIPAB基質とからなるブランクと比較して記録した
この測定は、6−ニトロ−3−フエニルアセトアミドー
安息香酸〔θ=114l/mole・cm,50mMリ
ン酸緩衝液(pH7.5)、4 0 5 nm )の酵
素分解により脱アシル生成物3−アミノー6ー二トロ安
息香酸(θ= 9 0 9 0 l/mole・cm、
前記と同条件)が生成することに基礎を置いており、後
者の増加を比色法により測定する。
3mlの被験溶液中で1μmoleの基質が加水分解し
た場合吸光の差は2.99である。
従って、活性Aはとなる。
ここで、E1一被験溶液の吸光 Eo=ブランク溶液の吸光 t一反応時間(min) V一被験溶液の容積(ml) U−アシラーセ゛のユニット 以上本発明を詳細に説明したが本発明の態様を具体的に
要約すると次の通りである。
(1)一般式(■)においてRがメチル基であるような
化合物から出発する特許請求の範囲に記載の方法。
(2)一般式(■)においてR1がフエニルアセチル基
であるような化合物から出発する特許請求の範囲に記載
の方法。
(3)大腸菌のアシラーゼを使用する前項(2)に記載
の方法。

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1 一般式(I): 〔式中、Rは低級アルキル基を表わす〕 のアミン化合物の製造方法であって、一般式(n) :
    〔式中、Rは前述と同一の意味を有し、そしてR,はフ
    エニルアセチル基又はフエノキシアセチル基を表わす〕 の化合物を、それ自体公知の方法によって水性媒体中で
    、アシラーゼ活性のある微生物、アシラーゼ含有抽出物
    またはアシラーゼ自体で処理し、そして溶液からそれ自
    体公知の方法によって一般式(I)の化合物を単離する
    ことを特徴とする製造方法。
JP49145790A 1973-12-20 1974-12-20 アミノカゴウブツノ セイホウ Expired JPS589680B2 (ja)

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CH1790273A CH590292A5 (ja) 1973-12-20 1973-12-20

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CH (1) CH590292A5 (ja)
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GB (1) GB1488130A (ja)
NL (1) NL7415820A (ja)

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