JPS5836400A - Determining method of l-cysteine - Google Patents
Determining method of l-cysteineInfo
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- JPS5836400A JPS5836400A JP13311081A JP13311081A JPS5836400A JP S5836400 A JPS5836400 A JP S5836400A JP 13311081 A JP13311081 A JP 13311081A JP 13311081 A JP13311081 A JP 13311081A JP S5836400 A JPS5836400 A JP S5836400A
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
〔1〕 発明の背景
本発明は、L−システィン(以下L −Cysと略称す
る。)を新規酵素であるグルタチオン・スルフィドリル
・オキシダーゼ(以下GSOと略称する。)を用いて定
量する方法に関するものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [1] Background of the Invention The present invention is directed to converting L-cysteine (hereinafter abbreviated as L-Cys) into a new enzyme, glutathione sulfhydryl oxidase (hereinafter abbreviated as GSO). It relates to a method for quantitative determination using
従来、L −(:ysの定量法としては酸性ニンヒドリ
ン法または5.5′−ジチオビス−(2−ニトロ安息香
酸)、0−フタルアルデヒドなどのSH(チオール)基
と反応する試薬を用いる化学的方法などが知られている
が、特異性、簡便性、感度あるいは夾雑物質の影響など
の点て必ずしも満足すべき方法は確立されていなかった
。Conventionally, methods for quantifying L-(:ys include the acidic ninhydrin method or chemical methods using reagents that react with SH (thiol) groups such as 5,5'-dithiobis-(2-nitrobenzoic acid) and 0-phthalaldehyde. Although methods are known, no method has been established that is necessarily satisfactory in terms of specificity, simplicity, sensitivity, or influence of contaminants.
本発明者は、先にグルタチオン(以下GSHと略称する
。)に対して特異性の高い新規なスルフイドリル・オキ
シダーゼ、すなわちGSOが微生物によって生産される
ことを発見し、本酵素の酵素学的性質を明らかにした(
特願昭56−16998号参照)。The present inventors previously discovered that a new sulfhydryl oxidase, GSO, which is highly specific for glutathione (hereinafter abbreviated as GSH), is produced by microorganisms, and investigated the enzymatic properties of this enzyme. revealed (
(See Japanese Patent Application No. 16998/1982).
本発甥者は、さらに本酵素をL 、−Cysの定量に応
用すべく研究を重ねた結果、GsHなどの他のSH化合
物が共存する試料であっても試料中のL−CysをGS
OのI)Hによる特異性の変化を利用することによって
特異的ζこかっ高感度に、しがも簡便に定量できること
を知見し、本発明を完成するに至った。As a result of further research to apply this enzyme to the quantification of L,-Cys, the present inventor discovered that L-Cys in the sample can be quantified by GS even if other SH compounds such as GsH coexist.
The present inventors have discovered that by utilizing the change in specificity of O due to I)H, it is possible to easily quantify specific ζ with high sensitivity, and have completed the present invention.
(II) 発明の概要
!j
本発明は、試料中のL −Cysを定量するに際し、酸
素存在下、GSOを試料に作用させ、反応にともなう酸
素消費量または反応物生成量を測定することを特徴とす
るL −Cysの定量法を提供するものである。特にG
SHを含む試料中のL −Cysを定量するに際し、G
SOによる酵素反応を、I)H7,0〜8.0およびp
H4,5〜55において行い、pH7,0〜80におけ
る反応液中の酸素消費量(Alまたは反応物生成量(A
つと、pH4,5〜5.5における反応液中の酸素消費
量fBlまたは反応物生成量(囮とを測定し、それらの
差(A−Bまたは△′−■)からL −Cys含量を求
める方法を提供するものである。(II) Summary of the invention! j The present invention is characterized in that when quantifying L-Cys in a sample, GSO is applied to the sample in the presence of oxygen, and the amount of oxygen consumed or the amount of reactant produced accompanying the reaction is measured. It provides a quantitative method. Especially G
When quantifying L-Cys in a sample containing SH, G
The enzymatic reaction with SO was performed using I) H7,0-8.0 and p
Oxygen consumption (Al or reactant production amount (A
Then, measure the oxygen consumption fBl or the amount of reactant produced (decoy) in the reaction solution at pH 4.5 to 5.5, and calculate the L -Cys content from the difference (A-B or △'-■). The present invention provides a method.
t
本発明において使用するGSOはpH4,5〜55にお
いてはGSHに対する特異性が高く、至適酵素量を用い
れば試料中に存在するS ’H化合物のうち、GSHだ
けをほぼ特異的に酸化するが、1)H7,0〜80にお
いては充分量の酵素が存在する場合、GSHとともにL
−Cysをも完全に酸化することができる。したがっ
て生体試料などのように、存在するSH化合物のほとん
どがGSHとL−Cysによって占められている試料の
場合は、pH7,0〜8,0における酸素消費量(Al
または反応物生成量(XlからI)H4,5〜5.5に
おける酸素消費量(B)または反応物生成量(囮を差し
引くことによって試料中のL −Cysの量だけを簡単
かつ正確に定量することがてきる。なお、試料中にL
−Cys以外のSH化合物、特にGSHが実質的に存在
しない場合には、pH7,0〜80における測定だけで
L −Cysを定量できることは言うまでもない。t The GSO used in the present invention has high specificity for GSH at pH 4.5 to 55, and if the optimal enzyme amount is used, it almost specifically oxidizes only GSH among the S'H compounds present in the sample. However, 1) In H7,0-80, if a sufficient amount of enzyme is present, L together with GSH
-Cys can also be completely oxidized. Therefore, in the case of a sample such as a biological sample where most of the existing SH compounds are occupied by GSH and L-Cys, the oxygen consumption (Al
Or the amount of reactant produced (Xl to I), the amount of oxygen consumed in H4,5-5.5 (B) or the amount of reactant produced (by subtracting the decoy, only the amount of L-Cys in the sample can be easily and accurately quantified) In addition, L in the sample can be
It goes without saying that when SH compounds other than -Cys, particularly GSH, are substantially absent, L -Cys can be quantified by simply measuring at pH 7.0 to 80.
本発明におけるGSOの精製酵素標品の酵素化学的およ
び理化学的性質は下記のとおりである。The enzymatic chemical and physicochemical properties of the purified enzyme preparation of GSO in the present invention are as follows.
(1) 作用
GSOは公知のラット精嚢分泌物からのスルフィドリル
・オキシダ−ゼ(バイオケミストリー(Biochem
istry)19. 2689−2645(1980)
参照)と同様に酵素の存在下においてSH化合物を酸化
的に2分子縮合して対応するジスルフィド化合物を生成
するが、特にGSHに強い親和性と高い基質特異性を示
し、かつ蛋白質中のSH基に対しては微弱な活性しか示
さないという特徴を有する新規なスルフィドリル・オキ
シダーゼである。(1) Action GSO is a known sulfhydryl oxidase from rat seminal vesicle secretion (Biochem
istry)19. 2689-2645 (1980)
(Reference), two molecules of SH compound are oxidatively condensed in the presence of an enzyme to produce the corresponding disulfide compound, but it shows particularly strong affinity for GSH and high substrate specificity, and also has a high affinity for SH groups in proteins. It is a novel sulfhydryl oxidase that exhibits only weak activity against.
GSOは、GSHを基質とした場合、下記反応式のごと
(、G S H2molにつき、1 mol (7)酸
素を要求し、l molの酸化型グルタチオンとl m
olの過酸化水素とを生成する。When GSH is used as a substrate, GSO requires 1 mol of oxygen per 2 mol of G S H, and 1 mol of oxidized glutathione and 1 m
ol and hydrogen peroxide.
また、L−CySを基質としたときも、GSHの場合と
同様にl、 −Cys 2molにつき、1m01ノ酸
素を要求し、l molのシスチンとl molの過酸
化水素とを生成する。Furthermore, when L-CyS is used as a substrate, as in the case of GSH, 1 mol of oxygen is required per 2 mol of l, -Cys, and 1 mol of cystine and 1 mol of hydrogen peroxide are produced.
2R5H+02→R55R+H2O2
(式中、R5HはGSHまたはL −Cysを、R35
Rは酸化型グルタチオンまたはシスチンを示す。)(2
)基質特異性
種々のSH化合物に対して精製されたGSOを酸性(p
H5,0;0.2M酢酸緩衝液)、中性(pH7,4;
0.2Mりん酸緩衝液)およびアルカリ性(pH9,8
; 0.2M )リス緩衝液)の各pHで作用させた結
果が第1表である。第1表において各基質の濃度は5
mMである。また、酵素活性は、後記する酸素電極法に
より測定し、各pHにおけるGSHに対する活性の相対
値として表わした。2R5H+02→R55R+H2O2 (wherein, R5H is GSH or L-Cys, R35
R represents oxidized glutathione or cystine. )(2
) Substrate specificity Purified GSO for various SH compounds was acidified (p
H5,0; 0.2M acetate buffer), neutral (pH7,4;
0.2M phosphate buffer) and alkaline (pH 9,8
Table 1 shows the results of the reaction at various pH values of 0.2M) Squirrel buffer. In Table 1, the concentration of each substrate is 5
It is mM. Further, the enzyme activity was measured by the oxygen electrode method described later, and expressed as a relative value of the activity against GSH at each pH.
第1表
第1表から明らかなようにGSOはpH5,(iにおい
てGSHに高い基質特異性を示した。pH7,4におい
てはGSHの他にもL −Cysおよびジチオスレイト
ールに効率良く作用したが、生体試料に作用させる場合
、ジチオスレイトールは実質的1こは存在しないので、
充分量の酵素を使用すればGSHとともにL−Cysも
完全に酸化することができる。pH7,4におけるKm
値を測定した結果、’G S Hニ対してはKm値が6
.8 X−40”” M テあり、L −Cys ニ対
してはKm値が8.7 ’X 10−8 M テあった
。As is clear from Table 1, GSO showed high substrate specificity for GSH at pH 5, (i). At pH 7.4, it efficiently acted on L -Cys and dithiothreitol in addition to GSH. However, when acting on biological samples, there is virtually no dithiothreitol, so
If a sufficient amount of enzyme is used, L-Cys as well as GSH can be completely oxidized. Km at pH 7.4
As a result of measuring the value, the Km value for 'G S H was 6.
.. The Km value for L-Cys was 8.7'X-10-8M.
なお、GSOは、ジチオスレイトール−に対して高い基
質特異性と強い親和性を示す公知のラット精嚢分泌物か
らのスルフィドリル・オキシダーゼとは明確に区別され
る。Note that GSO is clearly distinguished from the known sulfhydryl oxidase from rat seminal vesicle secretion, which exhibits high substrate specificity and strong affinity for dithiothreitol.
また、GSOは蛋白質のSI(基にはほとんど作用せず
、この点でも既知酵素と区別できた。たとえば、8M尿
素存在下、2−メルカプトエタノール中で還元したりボ
ヌクレアーゼA (RNase A ;分子量1870
0)のSH基にGSOを作用させたところ、GSOを充
分量(5Uy’vil )添加した場合Iこおいてさえ
、RNa8e A 1分子当りのSH基(8個)の減少
速度は4時間に1.5個程度であり、自然酸化によるs
H基の減少速度(1,0個/4時間)を若干上まわる程
度であった。これに対して、公知のラット精嚢分泌物の
スルフィドリル・オキシダーゼは、0.5 U/gl添
加した場合、4時間に7,5個/mo1以上の減少を示
しく前出13iochemistry19、 2689
(1980)のFig7参照)、RNaSeAに対し顕
著な活性を示す酵素である。In addition, GSO has almost no effect on the SI group of proteins, and could be distinguished from known enzymes in this respect.For example, GSO was reduced in 2-mercaptoethanol in the presence of 8M urea, 1870
When GSO was allowed to act on the SH groups of 0), even when a sufficient amount (5 Uy'vil) of GSO was added, the rate of decrease in SH groups (8 pieces) per molecule of RNa8e A was within 4 hours. The number of s due to natural oxidation is about 1.5.
This rate was slightly higher than the rate of decrease in H groups (1.0 units/4 hours). On the other hand, when 0.5 U/gl of known sulfhydryl oxidase in rat seminal vesicle secretion is added, it shows a decrease of more than 7.5 cells/mol in 4 hours.
(1980), Fig. 7), is an enzyme that exhibits significant activity against RNASeA.
すなわち、本発明のGSOは酸性および中性側でGSH
に強い親和性を示し、特異的に作用する新規なフラボプ
ロティン・スルフィドリル・オキシダーゼである。That is, the GSO of the present invention has GSH on the acidic and neutral sides.
It is a novel flavoprotein sulfhydryl oxidase that exhibits strong affinity for and specifically acts on flavoprotein sulfhydryl oxidase.
(8)力価の測定 GSOの力価の測定は、酸素電極法で行った。(8) Measurement of titer The titer of GSO was measured using an oxygen electrode method.
すなわち、10mMのGSHを含む0.IMりん酸カリ
ウム緩衝液(pH7,4) 1g/を酸素電極セルに入
れ、107z5の酵素液を添加して酸素消費速度を測定
した。80℃で1分間に1μmo+の酸素を消費する酵
素量を1単位(Unit H本明細書において、Uと略
称する。)とした。That is, 0.0000 mg containing 10 mM GSH. 1 g of IM potassium phosphate buffer (pH 7,4) was placed in an oxygen electrode cell, 107z5 enzyme solution was added, and the oxygen consumption rate was measured. The amount of enzyme that consumed 1 μmo+ oxygen per minute at 80° C. was defined as 1 unit (Unit H, herein abbreviated as U).
(4)至適pH
至適1)HはpH6,5〜77付近、特にpH7,1〜
7.8付近である。(4) Optimal pH Optimum 1) H is around pH 6.5 to 77, especially pH 7.1 to
It is around 7.8.
なお、至適pHの測定は、0.15M酢酸ナトリウム−
塩酸緩衝液、0.15モル酢酸ナトリウム−酢酸緩衝液
、0.15Mりん酸カリウム緩衝液、0.15M)リス
−塩酸緩衝液および0.15Mグリシン−塩化ナトリウ
ム−水酸化ナトリウム緩衝液の各緩衝液を使用し、pH
2,4〜10.8の範囲で行った。The optimum pH is measured using 0.15M sodium acetate.
Hydrochloric acid buffer, 0.15M sodium acetate-acetate buffer, 0.15M potassium phosphate buffer, 0.15M) Lis-HCl buffer, and 0.15M glycine-sodium chloride-sodium hydroxide buffer. pH
It was carried out in the range of 2.4 to 10.8.
f51 pH安定性および熱安定性
pH安定性は、前記各緩衝液中、pH8,0〜 、10
.8において、45°C115分間保持した後、酵素活
性を測定したところ、pH5〜9の範囲で安定であった
。f51 pH stability and thermal stability The pH stability was determined at pH 8.0 to 10 in each of the above buffer solutions.
.. 8, the enzyme activity was measured after holding at 45°C for 115 minutes, and it was found to be stable in the pH range of 5 to 9.
また、熱安定性は、0.1Mりん酸カリウム緩衝液(p
H7,4)中、40〜80°Cにおいて15分間保持し
、酵素活性を測定した。結果は、55°Cまては完全に
活性を維持していたが、800Cでは完全に失活した。In addition, thermal stability was determined using 0.1M potassium phosphate buffer (p
The enzyme activity was measured by holding at 40 to 80°C for 15 minutes in H7,4). The results showed that the activity was completely maintained up to 55°C, but completely inactivated at 800°C.
(6)作用適温の範囲
GSOの酵素活性の測定に使用する酸素電極法において
は、温度によって反応液の溶存酸素量か異るので正確な
範囲は特定できないか、過酸化水素の生成を公知の方法
で測定したところ、およそ30〜50°Cの範囲が好適
であった。(6) Range of suitable temperature for action In the oxygen electrode method used to measure the enzyme activity of GSO, the amount of dissolved oxygen in the reaction solution varies depending on the temperature, so it is difficult to determine the exact range, or the generation of hydrogen peroxide is As measured by the method, a range of approximately 30 to 50°C was suitable.
(7) 阻害、活性化および安定化
シアン化カリウム、塩化カルシウム、塩化カリウム、塩
化ニッケル、塩化アルミニウム、塩化ストロンチウム、
塩化バリウム、塩化第二鉄、硫酸マグネシウム、硫酸亜
鉛、硫酸マンガン、硫酸銅、硫酸リチウム、ヨウ化カリ
ウムなど種々功金属塩およびエチレンジアミン四酢酸(
EDTA)などの阻害剤1 mMを含む0.1 Mりん
酸カリウム緩衝液(+)H7,4)中で酵素反応を行い
、各物質による阻害の有無を検討した。その結果、GS
Oの活性は硫酸亜鉛、すなわち亜鉛イオンによって完全
に阻害され、硫酸マンガンによって20%程度阻害され
たが、他の阻害剤にはほとんど阻害されなかった。(7) Inhibition, activation and stabilization potassium cyanide, calcium chloride, potassium chloride, nickel chloride, aluminum chloride, strontium chloride,
Various metal salts such as barium chloride, ferric chloride, magnesium sulfate, zinc sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, lithium sulfate, potassium iodide, and ethylenediaminetetraacetic acid (
Enzyme reactions were performed in 0.1 M potassium phosphate buffer (+)H7,4) containing 1 mM of an inhibitor such as EDTA), and the presence or absence of inhibition by each substance was examined. As a result, G.S.
The activity of O was completely inhibited by zinc sulfate, that is, zinc ions, and about 20% by manganese sulfate, but hardly inhibited by other inhibitors.
(8)紫外線吸収スペクトル
λmax 272nm 、 365nm 、
443nmE280nm14.78
1%
(9)補酵素
GSOを熱処理またはトリクロロ酢酸(TCA)処理し
、遠沈して得られた上清は、その吸収スペクトルがフラ
ビンアデニンジヌクレオチド(FAD)と一致し、D−
アミノ酸オキシダーゼのアポ酵素を活性化したので、本
酵素の補酵素がFAI)であることが判明した。また、
FA’Dは、G501m01あたり2m01存在してい
る。(8) Ultraviolet absorption spectrum λmax 272nm, 365nm,
443nmE280nm14.78 1% (9) The supernatant obtained by heat treatment or trichloroacetic acid (TCA) treatment of coenzyme GSO and centrifugation has an absorption spectrum that matches that of flavin adenine dinucleotide (FAD), and D-
Since the apoenzyme of amino acid oxidase was activated, the coenzyme of this enzyme was found to be FAI). Also,
FA'D exists in 2m01 per G501m01.
+IQ ポリアクリルアミドゲル電気泳動および5D
S−ポリアクリルアミドゲル電気泳動
精製酵素はいずれの方法でも単一バンドを示した。+IQ polyacrylamide gel electrophoresis and 5D
S-polyacrylamide gel electrophoresis Purified enzyme showed a single band by both methods.
(Lll 等電点
アンフオライン(スウェーデン国、LKB社製)を用い
た等電点電気泳動法により測定したところ、pI は
4,21であった。The pI was measured by isoelectric focusing using ampholine (manufactured by LKB, Sweden), and the pI was 4.21.
(19分子量
GSOの分子量は、セファデックスG−200(ファル
マシア・ファインケミカルズ社製)によるゲル濾過法で
は94000±5000と測定された。また、5DS−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動法により、GSOは分
子量47000±3000のサブユニット2個から構成
される二量体酵素であることが示された。(The molecular weight of 19 molecular weight GSO was determined to be 94000±5000 by gel filtration using Sephadex G-200 (manufactured by Pharmacia Fine Chemicals).
Polyacrylamide gel electrophoresis showed that GSO is a dimeric enzyme composed of two subunits with a molecular weight of 47,000±3,000.
(13)結晶構造および元素分析
GSOは結晶化されていないので測定していない。゛
(]4)精製方法
’ GSOの精製は塩析法、等電点沈澱法、有機溶媒
による沈澱法、けいそう土、活性炭などによる吸着法、
各種クロマトグラフ法等を適宜に組合せて行うことがで
きる。精製方法の具体例は参考例に示すとおりである。(13) Crystal structure and elemental analysis GSO was not measured because it was not crystallized.゛(4) Purification method' GSO can be purified by salting out method, isoelectric precipitation method, precipitation method using organic solvent, adsorption method using diatomaceous earth, activated carbon, etc.
Various chromatographic methods can be used in combination as appropriate. Specific examples of the purification method are as shown in Reference Examples.
2)G S Oの製造
本発明において使用するGSOは、前記の性質を有する
ものであればその起源、由来は問わず、その製法によっ
ても限定されない。製造法の一例として微生物によるG
SOの製造法を参考例として、具体的に示す。2) Production of GSO The GSO used in the present invention is not limited by its origin or production method, as long as it has the above-mentioned properties. As an example of a manufacturing method, G by microorganisms
A method for producing SO will be specifically shown as a reference example.
参考例
800vtl容三角フラスコにフスマ89 、水5 m
lおよびもみがら1gを入れ、120℃、80分間加圧
滅菌して調製した積用フスマ培地にペニシリウム・アク
レアタム IFO5729を植菌し、28℃、7日間培
養して種菌を調製した。Reference example 89 bran and 5 m water in an 800vtl Erlenmeyer flask
Penicillium acreatum IFO5729 was inoculated into a bran culture medium prepared by adding 1 g of rice husks and 1 g of rice husk and autoclaving at 120°C for 80 minutes, and culturing at 28°C for 7 days to prepare a seed culture.
51容三角フラスコ20本にそれぞれフスマ200りお
よび水140露lを入れ、120℃、30分間加圧滅菌
した後、前記の種菌を無菌的に接種し、28°C,7日
間培養した。得られた培養物を8011の水に1時間浸
漬した後、濾過し、さらにけいそう土を通過させて粗酵
素成約274を得た。Twenty 51-volume Erlenmeyer flasks were each filled with 200 liters of wheat bran and 140 liters of water, sterilized under pressure at 120°C for 30 minutes, and then aseptically inoculated with the above-mentioned inoculum and cultured at 28°C for 7 days. The obtained culture was immersed in 8011 water for 1 hour, filtered, and further passed through diatomaceous earth to obtain crude enzyme 274.
この粗酵素液に硫酸アンモニウムを65%まで加え、生
成した不溶物を遠沈除去した。上清液にさらに硫酸アン
モニウムを添加して95%飽和濃閲とし、生成した沈澱
を遠\沈採取して0.02 Mりん酸緩衝液(+)H7
,4)11に溶解し、同一緩衝液で一夜透析した。透析
中に生成した沈澱を遠沈除去し、上清液を同一緩衝液で
平衡化したDEAE(ジエチルアミノエチル)−セルロ
ースカラム(5X70α)に通し、吸着した酵素を食塩
0.2Mを含む同一緩衝液を用いて溶出した。溶出され
た活性区分を集め、透析濃縮後、セファデックスG〜1
00(ファルマシア・ファインケミカルズ社製)カラム
(8,,5×100z)を用イテ’fルm過を行い、活
性区分を集めて濃縮後、Q、02Mりん酸カリウム緩衝
液(pH7,4)で透析した。この透析内液を遠沈し、
上滑液を精密濾過した後、凍結乾燥してGSOの精製標
品(収率41%、比活性540 U/my蛋白)49〜
を得た。Ammonium sulfate was added to this crude enzyme solution up to 65%, and the produced insoluble matter was removed by centrifugation. Ammonium sulfate was further added to the supernatant to achieve 95% saturation concentration, and the resulting precipitate was collected by centrifugation and added to 0.02 M phosphate buffer (+) H7.
, 4) 11 and dialyzed overnight against the same buffer. The precipitate generated during dialysis was removed by centrifugation, and the supernatant was passed through a DEAE (diethylaminoethyl)-cellulose column (5X70α) equilibrated with the same buffer, and the adsorbed enzyme was purified with the same buffer containing 0.2 M of sodium chloride. It was eluted using The eluted active fraction was collected, and after dialysis and concentration, Sephadex G~1
00 (manufactured by Pharmacia Fine Chemicals) column (8,5 x 100z) was used for repeated filtration, and the active fraction was collected and concentrated. Dialyzed. This dialysis fluid is centrifuged,
After microfiltration of the supernatant synovial fluid, it was freeze-dried to obtain a purified sample of GSO (yield 41%, specific activity 540 U/my protein) 49~
I got it.
使用微生物
本発明のGSOの製造に使用される微生物は、アスヘル
ギ/l/ x (Aspergillus ;以下、A
と略称する。〕属、ペニシリウム(penicilli
um ;以下、P。Microorganism used The microorganism used in the production of GSO of the present invention is Aspergillus/l/x (hereinafter referred to as A
It is abbreviated as. ] Genus, Penicilli
um ;hereinafter referred to as P.
と略称する。)属、フザリウム(pusarium
; 以下、Fと略称する。)属、トリーy チル7 (
Trichoderma ;以下、Tと略称する。)属
、バエシロミセス(paecilomyces ; p
aeと略称する。)属またはグリオクラディウム(Ql
iocladium ;以下、G、ト略称する。)属
に属し、GSO生産能を有する微生物である。これらの
属胃属するGSO生産菌の具体例としてはアスペルギル
ス・アワモリ(A、 awamori)IAM 22
99.アスペルギルス・バタタエ(A、 batata
e ) I A M 2098、アスペルギルス・イ
ヌイ(A、inuii)IAM 2255、アスペル
ギルス・オクラセウx (A、 ochraceus
) I F 04345、アスヘルギJLt7.−オリ
ゼー(A、 oryzae )IFO4188,ペニシ
リウム・アクレアタム(p、 aculeatum )
I F 0 5 ? 29、ペニシリウム・ヤンセニ
(P、 jenseni ) I AM 7197、
へ二シリウム・シトリナム・トム 1181(Pcit
rinum Thom 1181 )微工研菌寄第1
868号、゛フザリウム・ソラニ(F、 5olani
) I F 05282、フザリウム・サムブシナム
(F。It is abbreviated as. ), genus Fusarium
; Hereinafter, it will be abbreviated as F. ) genus, Tory y Chill 7 (
Trichoderma; hereinafter abbreviated as T. ), genus paecilomyces; p
It is abbreviated as ae. ) or Gliocladium (Ql
iocladium; hereinafter abbreviated as G. ) and is a microorganism that has GSO-producing ability. Specific examples of GSO-producing bacteria belonging to the genus Stomach include Aspergillus awamori (A, awamori) IAM 22
99. Aspergillus batatae (A, batata)
e) IAM 2098, Aspergillus inui (A, inui) IAM 2255, Aspergillus ochraceus x (A, ochraceus
) IF 04345, Ashergi JLt7. - Penicillium aculeatum (A, oryzae) IFO4188, Penicillium aculeatum (p, aculeatum)
I F 0 5? 29, Penicillium jenseni (P, jenseni) I AM 7197,
Henicillium citrinum tom 1181 (Pcit
rinum Thom 1181)
No. 868, Fusarium solani (F, 5olani)
) I F 05282, Fusarium sambusinum (F.
sambucinum) OU T 4020、グリ
オクラディウム・テリクエセンス(G、dellque
CenS)OUT4616、バエシロミセス・バリオチ
(paevarioti) I F O4855、トリ
コデルマ・ビリデ(T、viride)ATCC205
86txどが挙げられる。ただし、本発明の使用微生物
はこれらの菌株に限定されるものではない。また、これ
らGSO生産菌を通常の微生物突然変異誘導法、たとえ
ば紫外線、X線、r線照射などの物理的処理、ニトロソ
グアニジンなどの薬剤による化学的処理などの処理法に
よって変異させて得られたGSO高生産性突然変異株の
いずれをも好適に使用できる。sambucinum) OU T 4020, Gliocladium teriquescens (G, dellque
CenS) OUT4616, Baecilomyces paevarioti I F O4855, Trichoderma viride (T, viride) ATCC205
86tx etc. However, the microorganisms used in the present invention are not limited to these strains. In addition, these GSO-producing bacteria were mutated by conventional microbial mutation induction methods, such as physical treatments such as ultraviolet rays, X-rays, and R-ray irradiation, and chemical treatments with drugs such as nitrosoguanidine. Any GSO high-producing mutant strain can be suitably used.
GSOの調製
GSOの調製形態および精製度合は、本酵素による酸化
反応と、それに続く示標物質の検出系の種類に応じて適
宜に選択される。すなわち本酵素による酸化反応ならび
に示標物質の検出系における諸反応および/または検出
に対して妨害的に作用する物質を含まないかぎり、GS
Oの酵素剤中に夾雑物質が存在しても問題1こならない
。また、採用される定量システムの実施態様にしたがっ
て、可溶性酵素として、あるいは適、宜な担体に吸着も
しくは不溶化したものとして使用することができる。Preparation of GSO The preparation form and degree of purification of GSO are appropriately selected depending on the oxidation reaction by the present enzyme and the type of subsequent detection system for the indicator substance. In other words, GS
Even if there are contaminants in the O enzyme preparation, problem 1 cannot be solved. Furthermore, depending on the embodiment of the quantitative system employed, the enzyme can be used as a soluble enzyme, or as an enzyme adsorbed or insolubilized on a suitable carrier.
3)L−cysの定量
本発明におけるL −Cysの定量法は、試料中のL
−(::ysのGSOによる酸化反応、特にGSH共存
試料を対象とする場合にはpH4,5〜5.5およびp
H7,0〜8.0の二点における特異的酸化反応と、こ
れにともなう酸素の消費量の測定もしくは反応物の生成
量の測定を行う示標物質の検出系とからなる。3) Quantification of L-cys The method for quantifying L-Cys in the present invention is to quantify L-cys in a sample.
-(::ys oxidation reaction by GSO, especially when targeting GSH coexisting samples, pH 4.5 to 5.5 and p
It consists of a specific oxidation reaction at two points, H7.0 to H8.0, and a detection system for an indicator substance that measures the amount of oxygen consumed or the amount of reactant produced.
GSOによる酵素反応
L −CY8の定量におけるGSOの酵素反応条件は次
のとおりである。すなわち、反応pHは、GSO安定p
H範囲内であり、かつL −Cysに作用するpH範囲
であればよいが、特にGSH共存試料中のL −Cys
を測定する際にはpH4,5〜5.5およびpH7,0
〜8.0の1)H範囲でなければならす、両pH範囲で
反応を行うことによってはじめてGSOのpHによる基
質特異性の変化を利用することができる。上記の場合、
参考例に示すバニシリウム属糸状菌のGSOは、特にp
H5,0付近およびpH7,4付近で反応を行うことに
よりpHによる基質特異性の変化を好適に利用できる。Enzyme reaction using GSO The conditions for the GSO enzyme reaction in the determination of L-CY8 are as follows. That is, the reaction pH is GSO stable p
The pH range may be within the H range and act on L -Cys, but especially when L -Cys in the GSH coexisting sample is
When measuring pH 4.5 to 5.5 and pH 7.0
1) Must be in the H range of ~8.0. The change in substrate specificity due to pH of GSO can only be utilized by carrying out the reaction in both pH ranges. In the above case,
The GSO of the Vanicillium filamentous fungus shown in the reference example is particularly p.
By conducting the reaction at around H5.0 and pH around 7.4, changes in substrate specificity due to pH can be suitably utilized.
なお、GSHの共存する試料を対象とする場合、基質に
対する酵素の使用量は、pH,7,0〜8.0における
反応では、L −CysおよびGSHが完全に反応する
程度の過剰量であり、pH4,5〜5.5における反応
では、GSHのみ化作用する程度の量が好ましい。また
、酵素反応のpHを維持する目的で、酵素反応媒質とし
て各種の緩衝液を使用することが好ましい。緩衝液とし
ては、前記のpH範囲を維持でき、かつ本酵素反応を阻
害しないものであ液などのilF!−緩衝液が好適であ
る。In addition, when targeting a sample in which GSH coexists, the amount of enzyme used relative to the substrate is such an excess amount that L-Cys and GSH completely react in a reaction at pH 7.0 to 8.0. In the reaction at pH 4.5 to 5.5, it is preferable to use an amount sufficient to oxidize GSH. Further, in order to maintain the pH of the enzyme reaction, it is preferable to use various buffer solutions as the enzyme reaction medium. The buffer solution should be one that can maintain the above pH range and does not inhibit the enzyme reaction, such as ilF! - Buffers are preferred.
反応温度は、GSOの安定温度範囲である限り特に限定
されない。The reaction temperature is not particularly limited as long as it is within the stable temperature range of GSO.
示標物質の検出
本発明における示標物質は、酸素および酵素反一応にお
ける反応物(反応生成物)である。GSOの反応におけ
る反応物とは、過酸化水素および基質のS H化合物に
対応するジスルフイドニ量体であるが、本発明の示標物
質としては過酸化水素が好適である。Detection of Indicator Substance The indicator substance in the present invention is oxygen and a reactant (reaction product) in an enzyme reaction. The reactants in the GSO reaction are hydrogen peroxide and a disulfide dimer corresponding to the substrate S 2 H compound, and hydrogen peroxide is suitable as the indicator substance of the present invention.
L、−Cysの定量は、酵素反応にともなう示標物質の
量の変化を測定すること1ンよって行なわれる。Quantification of L, -Cys is carried out by measuring the change in the amount of the indicator substance accompanying the enzymatic reaction.
具体的には、試料中のGSHの有無にかかわらす適用で
きる方法として、pH7,0〜8.0における酵素反応
にともなう酸素の消費量(Alまたは反応物の一つ、た
とえば過酸化水素の生成量fAjと、pH4,5〜5.
5における酵素反応にともなう酸素の生成量fBlまた
は前記と同じ反応物の一つの生成量(角を検出測定し、
両側定値の差(A−BまたはA’ −B’ )を求める
ことによりL −Cysを定量する方法が挙げられる。Specifically, as a method that can be applied regardless of the presence or absence of GSH in the sample, the amount of oxygen consumed (Al or the production of one of the reactants, such as hydrogen peroxide) accompanying the enzymatic reaction at pH 7.0 to 8.0 is amount fAj and pH 4.5 to 5.
The amount fBl of oxygen produced due to the enzymatic reaction in step 5 or the amount produced of one of the same reactants as described above (by detecting and measuring the angle,
A method for quantifying L-Cys is by determining the difference between constant values on both sides (A-B or A'-B').
もちろん、明らかにGSHを実質的に含まない試料を対
象とする場合にはL−cysが充分に反応するpH,た
とえばI)H7,0〜8.0において酵素反応を行い、
酸素消費量またはヌ応物生成量を測定することによりL
−C’ysを簡単に定量することができる。Of course, when targeting a sample that clearly does not substantially contain GSH, the enzymatic reaction is performed at a pH at which L-cys reacts sufficiently, for example, I) H7.0 to 8.0;
L by measuring the amount of oxygen consumed or the amount of reactants produced
-C'ys can be easily quantified.
示標物質の検出系の選択は任意であり、これらの物質の
測定に通常採用される方法を適用できる。The detection system for the indicator substance can be selected arbitrarily, and methods commonly used for measuring these substances can be applied.
また、示標物質の検出のための具体的方法にも特に限定
されない。Furthermore, there is no particular limitation on the specific method for detecting the indicator substance.
以下、それぞれの示標物質の検出測定法についてその代
表的な方法を例示するが、これらの示標物質の検出系は
公知方法に限定されず、今後さら夢(開発されるべき種
々の方法をも採用可能と考えられる。Representative methods for detecting and measuring each indicator substance will be illustrated below, but the detection systems for these indicator substances are not limited to known methods, and will continue to be developed in the future. It is also considered possible to adopt
酸素の消費量を測定する方法としては、ワールブルグの
検圧法、酸素電極法が知られている(生化学実験講座5
酵素研究法(上) 第35〜52頁、東京化学同人、
1975年8月20日発行)。Warburg's pressure detection method and oxygen electrode method are known methods for measuring oxygen consumption (Biochemistry Experiment Course 5).
Enzyme research methods (1) pp. 35-52, Tokyo Kagaku Doujin,
(Published August 20, 1975).
さらに、酸素電極の先端部にGSOを固定化した酵素電
極法も採用できる。Furthermore, an enzyme electrode method in which GSO is immobilized on the tip of an oxygen electrode can also be adopted.
過酸化水素を検出測定する方法には、大別して分光学的
測定法、けい光測定法、電気化学的測定法の三種の方法
がある。There are three main methods for detecting and measuring hydrogen peroxide: spectroscopic measurement, fluorescence measurement, and electrochemical measurement.
過酸化水素の分光学的測定法としては、過酸化水素の活
性化物質と指示薬の組み合せによる方法が挙げられる。Spectroscopic methods for measuring hydrogen peroxide include methods using a combination of a hydrogen peroxide activator and an indicator.
過酸化水素の活性化物質と、しては、たとえば西洋わさ
びもしくはさつまいもなどのパーオキシダーゼのほかに
ヨウ化物、モリブデン酸塩などのいずれか一種あるいは
その混合物が有効に用いられる。指示薬としては、0−
ジアニシジン、0−トリジン、0−トルイジン、2.6
−ジクロロインドフェノール、ベンジジン、 8.8’
−5,5’−テトラアルキルベンジジン(8,8’〜ジ
メチル−5,5′−ジエチルベンジジンなど)、4−メ
トキシ−1−ナフトールなどのほか組合わせ指示薬を用
いることができる。組合わせ指示薬の例としては、4−
アミノアンチピリンとフェノールの組合わせが挙げられ
るが、特にこれ番こ限定されるものではない。た吉えば
、フェノールの代りに2,4−ジクロロフェノール、カ
テコール、レゾルシン、ヒドロキノン、クレゾール、グ
アイアコール、ピロガロール、オルシノールのような多
価アルコールもしくはフェノール誘導体、さらにアニリ
ン、ジメチルアニリン、ジエチルアニリンのようなアニ
リン誘導体を用いることができる。一方、4−アミノア
ンチピリンの代りとしては、4−アミノフェナジン、各
種4−アミノピラゾロン誘導体ならびに3−メチルベン
ゾチアゾリノン−ヒドラゾン(MBTH)およびそのス
ルホン酸誘導体などが例挙される。なお指示薬としては
、前記のほかに定量条件において定量的に酸化されて色
調変化を示しうるものである限り、いずれも使用可能で
ある。他の過酸化水素の分光学的測定法には、メタノー
ルとカタラーゼの存在下で過酸化水素からホルムアルデ
ヒドを生成させ、これを酸化剤(たとえばカリウムシア
ノフエラート、塩化第二鉄など)の存在下でヒドラゾン
(たとえば3−メチル−2−(スルホニル)−ベンゾチ
アゾロンヒドラゾンなど)と反応させる方法がある。さ
らに、カタラーゼ−アセチルアセトン法、アルデヒドデ
ヒドロゲナーゼを用いるアルコールの酸化による方法、
銅イオン−ヒスタミン系でインジゴカルミンを酸化脱色
し、その色度の減量から定量する方法などが知られてい
る。As the hydrogen peroxide activator, in addition to peroxidase such as horseradish or sweet potato, any one of iodide, molybdate, etc. or a mixture thereof can be effectively used. As an indicator, 0-
Dianisidine, 0-tolidine, 0-toluidine, 2.6
-dichloroindophenol, benzidine, 8.8'
In addition to -5,5'-tetraalkylbenzidine (such as 8,8'-dimethyl-5,5'-diethylbenzidine) and 4-methoxy-1-naphthol, combination indicators can be used. Examples of combination indicators include 4-
A combination of aminoantipyrine and phenol may be mentioned, but is not particularly limited to this. For example, instead of phenol, polyhydric alcohols or phenol derivatives such as 2,4-dichlorophenol, catechol, resorcinol, hydroquinone, cresol, guaiacol, pyrogallol, orcinol, and also aniline such as aniline, dimethylaniline, diethylaniline, etc. Derivatives can be used. On the other hand, examples of substitutes for 4-aminoantipyrine include 4-aminophenazine, various 4-aminopyrazolone derivatives, 3-methylbenzothiazolinone-hydrazone (MBTH) and its sulfonic acid derivatives. In addition to the above-mentioned indicators, any indicator can be used as long as it can be quantitatively oxidized under quantitative conditions and exhibit a change in color tone. Other spectroscopic methods for measuring hydrogen peroxide include forming formaldehyde from hydrogen peroxide in the presence of methanol and catalase, which is then combined in the presence of an oxidizing agent (e.g., potassium cyanophelate, ferric chloride, etc.). There is a method of reacting with hydrazone (for example, 3-methyl-2-(sulfonyl)-benzothiazolone hydrazone). Furthermore, the catalase-acetylacetone method, the method by oxidation of alcohol using aldehyde dehydrogenase,
A method is known in which indigo carmine is oxidized and decolorized using a copper ion-histamine system and quantitatively determined from the decrease in chromaticity.
過酸化水素の電気化学的測定法としては、白金電極を用
いるポーラログラフ法などが知られている。また、カタ
ラーゼを共用した酵素電極を用いて酸素生成にともなう
酸素レベルの上昇幅および速度を測定し、過酸化水素を
定量する方法もある。A polarographic method using a platinum electrode is known as an electrochemical method for measuring hydrogen peroxide. There is also a method of quantifying hydrogen peroxide by measuring the rise and rate of oxygen levels associated with oxygen production using an enzyme electrode that also uses catalase.
このほかヨウ素アニオンをモリブデン酸塩の触媒存在下
で過酸化水素によりヨウ素に酸化し、その生成速度を電
位差計もしくは電流計により検出して定量する方法など
もある。In addition, there is a method in which iodine anion is oxidized to iodine with hydrogen peroxide in the presence of a molybdate catalyst, and the production rate is detected and quantified with a potentiometer or an ammeter.
過酸化水素のけい先決による定量法として、ホモバニリ
ン酸を過酸化水素とパーオキシダーゼにより2,2′−
ジヒドロキシ−8,8′−ジメトキシ−ジフェニル−5
,5′−ジアセチル酸のけい光体に変換して測定する方
法が知られている。ホモバニリン酸のほかに過酸化水素
とパーオキシダーゼによりけい光物質に変換されるもの
としてはp−ハイドロキシフェニル酢酸、ジアセチル−
区7′−ジクロロフルオレセインなどが挙げられる。ま
た6−メドキンー7−ハイドロキシー1,2−ベンゾピ
ロン、3.5−ジアセチル−1,4−ジノ1イドロルチ
ジンなどのけい光物質を過酸化水素−、<−オキシダー
ゼにより酸化して非けい光物質に変換し、そのけ(1光
の減少を測定する方法がある。As a quantitative determination method for hydrogen peroxide, homovanillic acid was 2,2'-
Dihydroxy-8,8'-dimethoxy-diphenyl-5
, 5'-diacetylic acid is converted into a phosphor and measured. In addition to homovanillic acid, substances that are converted into fluorescent substances by hydrogen peroxide and peroxidase include p-hydroxyphenylacetic acid and diacetyl-
Examples include 7'-dichlorofluorescein. In addition, fluorescent substances such as 6-medquine-7-hydroxy-1,2-benzopyrone and 3,5-diacetyl-1,4-dino-1-hydroltidine are oxidized to non-fluorescent substances by hydrogen peroxide-,<-oxidase. There is a method of converting the light and measuring the decrease of one light.
妨害物質の影響の除去
前記のような示標物質の検出系にお−いて、定量目的物
中の示標物質以外の物質が検出を妨害する場合がある。Removal of the influence of interfering substances In the indicator substance detection system as described above, substances other than the indicator substance in the object of quantification may interfere with detection.
このような場合には妨害物質の影響を除去する必要があ
る。In such cases, it is necessary to eliminate the influence of interfering substances.
たとえば、pH7,0〜8.0における酵素反応では、
定量目的物中のGSHおよびL −Cys以外のSH化
合物あるいはpH4,5〜5,5における酵素反応では
GSH以外のSH化合物は、GSOを作用させた後もそ
のまま残存するが、SH化合物カヂ存在すると前記の発
色試薬による発色が阻害され、L −Cys測定を妨害
する。このような場合SH基封鎖剤によってSH化合物
を封鎖する必要がある。For example, in an enzymatic reaction at pH 7.0 to 8.0,
SH compounds other than GSH and L-Cys in the quantitative target substance or in enzymatic reactions at pH 4.5 to 5.5, SH compounds other than GSH remain as they are even after GSO is applied, but if SH compounds are present, Color development by the color reagent described above is inhibited, interfering with L-Cys measurement. In such cases, it is necessary to block the SH compound with an SH group blocking agent.
SH基封鎖剤としては、N−エチルマレイミド(以下、
NEMと略称する。)が好ましし)。As the SH group blocking agent, N-ethylmaleimide (hereinafter referred to as
It is abbreviated as NEM. ) is preferred).
以下、本発明方法の実施の一例を示して具体的な説明を
加える。しかしながら、これらI!単なる例示であって
、本発明方法を何ら限定するものではない。なお、各実
施例で使用したG S 01!前言己の参考例の方法に
準じて#≠曇噛ペニシ1ノウム・アクレアタム IFO
5729の培養物より調製したものである。Hereinafter, an example of implementation of the method of the present invention will be shown and a specific explanation will be given. However, these I! This is merely an example and is not intended to limit the method of the present invention. In addition, G S 01! used in each example. According to the method of the previous example for reference #≠ Cloud chewing penis 1 noum acreatum IFO
It was prepared from a culture of No. 5729.
実施例
発色試薬:フェノール20117,4−アミノアンチピ
リン12■および西洋わさび、<−オキシダーゼ(東洋
紡績■製、グレードl)2.5■(100tJ/mη)
をSomeの0.2Mりん酸カリウム緩衝液(pH7,
4)に溶解した。Example coloring reagent: Phenol 20117, 4-aminoantipyrine 12■ and horseradish, <-oxidase (manufactured by Toyobo ■, grade l) 2.5■ (100tJ/mη)
Some's 0.2M potassium phosphate buffer (pH 7,
4).
GSO溶液1:精製酵素(540U/W)50μqを5
4N/の0.02 M酢酸緩衝液(+)H5,O)lこ
溶解した(’ 0.5 U/gl )。GSO solution 1: 50μq of purified enzyme (540U/W)
4N/0.02M acetate buffer (+)H5,O) was dissolved ('0.5 U/gl).
GSO溶液2:精製酵素(540U/+y) 50Mg
を5.4 mlの0.02Mりん酸カリウム緩衝液(1
)H7,4)に溶解した( 5.0 U/ml )。GSO solution 2: Purified enzyme (540U/+y) 50Mg
of 5.4 ml of 0.02M potassium phosphate buffer (1
) H7,4) (5.0 U/ml).
NEM溶液: NEM200 μmol を101!
llの0.5Mりん酸カリウム緩衝液(1)H7,4)
に溶解した。NEM solution: 101 µmol of NEM 200 μmol!
1 ml of 0.5M potassium phosphate buffer (1)H7,4)
dissolved in
操作法:試験管(イ)に0.1 mlの0.5 M酢酸
緩衝液(pH5,0)および0.1譚tのG5−0溶液
1を入れ、試験管(切に0.1 mlの0.5Mりん酸
カリウム緩衝液(+)H7,4)および0. i ml
のGSO溶液2を入れ、それぞれ37°Cの恒温槽に入
れた。試験管(イ)および(ロ)ノ各k lc L −
cys (0〜0.8 μmol/*/ ) 単独も
しくはL 7 CysとともにG S H(0,471
mol/*/)を含む標準液0.5 #l/を加えて反
応を開始し、20分間好気的に振盪しながらインキュベ
ートした後、それぞれの試験管にNEM溶液0.1 t
elを加え、さらに0.2 mlの発色試薬を加えた。Procedure: Put 0.1 ml of 0.5 M acetate buffer (pH 5,0) and 0.1 ml of G5-0 solution 1 into a test tube (A), of 0.5M potassium phosphate buffer (+)H7,4) and 0.5M potassium phosphate buffer (+)H7,4). i ml
of GSO solution 2 and placed in a constant temperature bath at 37°C. Test tubes (a) and (b) each k lc L −
cys (0-0.8 μmol/*/) GSH (0,471
The reaction was started by adding 0.5 #l/ of a standard solution containing mol/*/), and after incubation with aerobic shaking for 20 minutes, 0.1 t of NEM solution was added to each test tube.
el was added, followed by 0.2 ml of coloring reagent.
試料無添加を対照として試験管(イ)および(ロ)各々
の500 nm ての吸光度(B’#よびA’ ;過酸
化水素生成量に比例する量)を測定し、両側定値の差t
x−g)を求め、検量線を作成した(第1図)。Measure the absorbance at 500 nm (B'# and A'; amounts proportional to the amount of hydrogen peroxide produced) of each of the test tubes (a) and (b) with no sample added as a control, and calculate the difference t between the constant values on both sides.
xg) and created a calibration curve (Figure 1).
第1図は実施例における検量線を示す。
図において、たて軸はpH7,4におけるOD。
500 nm での吸光度(粕との差(A’−B’)を
示し、よこ軸はL −Cys量(μmol/チューブ)
を示す。FIG. 1 shows a calibration curve in Examples. In the figure, the vertical axis is the OD at pH 7.4. Absorbance at 500 nm (difference from lees (A'-B') is shown, and the horizontal axis shows the amount of L-Cys (μmol/tube)
shows.
Claims (1)
在下、グルタチオン・スルフィドリル・オキシダ一ゼを
試料に作用させ、反応にともなう酸素消費量または反応
物生成量を測定することを特徴とするし一システィンの
定量法。 2)グルタチオン・スルフィドリル・オキシダーゼによ
る酵素反応を、pH7,0〜80およびpH4,5〜5
.5において行い、pH7,0〜8.0における反応液
中の酸素消費量+A+または反応物生成量+A+と、p
H4,5〜55における反応液中の酸素消費量(Blま
たは反応物生成量1B′)とを測定し、それらの差(A
−BまたはR−B:)からL−システィン含量を求める
特許請求の範囲第1項記載のL−システィンの定量法。 3)試料がグルタチオンを実質的に含まない試料である
特許請求の範囲第1項記載のし一システィンの定量法。 4)測定する反応物生成量として過酸化水素生成量を用
いる特許請求の範囲第1〜3項のいずれかに記載のし一
システィンの定量法。[Claims] 1) When quantifying cysteine in a sample, glutathione sulfhydryl oxidase is applied to the sample in the presence of oxygen, and the amount of oxygen consumed or the amount of reactant produced accompanying the reaction is measured. A method for quantifying cysteine, which is characterized by: 2) Enzyme reaction by glutathione sulfhydryl oxidase at pH 7.0-80 and pH 4.5-5.
.. 5, and the oxygen consumption amount +A+ or the amount of reactant production +A+ in the reaction solution at pH 7.0 to 8.0, and p
The amount of oxygen consumed in the reaction solution (Bl or amount of reactant produced 1B') in H4,5-55 was measured, and the difference between them (A
The method for quantifying L-cysteine according to claim 1, in which the L-cysteine content is determined from -B or R-B:). 3) The method for quantifying cysteine according to claim 1, wherein the sample is a sample substantially free of glutathione. 4) The method for quantifying cysteine according to any one of claims 1 to 3, in which the amount of produced hydrogen peroxide is used as the amount of produced reactant to be measured.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13311081A JPS5836400A (en) | 1981-08-24 | 1981-08-24 | Determining method of l-cysteine |
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JP13311081A JPS5836400A (en) | 1981-08-24 | 1981-08-24 | Determining method of l-cysteine |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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JPS5836400A true JPS5836400A (en) | 1983-03-03 |
JPH0218839B2 JPH0218839B2 (en) | 1990-04-26 |
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ID=15097038
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JP13311081A Granted JPS5836400A (en) | 1981-08-24 | 1981-08-24 | Determining method of l-cysteine |
Country Status (1)
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JP (1) | JPS5836400A (en) |
Cited By (2)
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JP2010088429A (en) * | 2008-10-06 | 2010-04-22 | Sony Deutsche Gmbh | Sensor for thiol analyte, sensor array and detection method of thiol analyte |
CN112630179A (en) * | 2020-12-09 | 2021-04-09 | 安徽师范大学 | Prussian blue quantum dot with oxide mimic enzyme property, preparation method thereof and method for detecting L-cysteine |
-
1981
- 1981-08-24 JP JP13311081A patent/JPS5836400A/en active Granted
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CN112630179A (en) * | 2020-12-09 | 2021-04-09 | 安徽师范大学 | Prussian blue quantum dot with oxide mimic enzyme property, preparation method thereof and method for detecting L-cysteine |
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JPH0218839B2 (en) | 1990-04-26 |
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