JPS58211646A - 膜状酵素電極の製造法 - Google Patents
膜状酵素電極の製造法Info
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- JPS58211646A JPS58211646A JP57095315A JP9531582A JPS58211646A JP S58211646 A JPS58211646 A JP S58211646A JP 57095315 A JP57095315 A JP 57095315A JP 9531582 A JP9531582 A JP 9531582A JP S58211646 A JPS58211646 A JP S58211646A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- electrode
- enzyme
- immobilized
- glucose
- membrane
- Prior art date
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- Pending
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/001—Enzyme electrodes
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- Chemical & Material Sciences (AREA)
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- General Health & Medical Sciences (AREA)
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- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、簡単にかつ性能のすぐれた膜状の固定化酵素
電極を製造する方法に関するものである。
電極を製造する方法に関するものである。
最近、酵素の固定化技術が進歩し、酵素の性質を維持し
たまま簡単に固定化できるようになり、食品工業や医療
分野に広く利用されている。特に基質特異性1反応特異
性が高いという酵素の性質はセ/す分野において重要で
あり、グルコースセンサをはじめとしているいろなセン
サに応用されている。
たまま簡単に固定化できるようになり、食品工業や医療
分野に広く利用されている。特に基質特異性1反応特異
性が高いという酵素の性質はセ/す分野において重要で
あり、グルコースセンサをはじめとしているいろなセン
サに応用されている。
従来の固定化酵素1jLlfllは、感度を高めるため
酵素を固定化する膜全薄膜化する傾向にあり、そのため
に取り扱いが不便であった。又、性能の面においても、
膜の装着状態によりばらつきがみられた〇 本発明は、上記の欠点を克服するために、膜状電極を枠
体に装着し、たるみのない均一な電極を製造する方法に
係るもので、応答性能にすぐ庇、かつ取り扱いも簡単な
膜状の固定化酵素電極を提供すること全目的とする。
酵素を固定化する膜全薄膜化する傾向にあり、そのため
に取り扱いが不便であった。又、性能の面においても、
膜の装着状態によりばらつきがみられた〇 本発明は、上記の欠点を克服するために、膜状電極を枠
体に装着し、たるみのない均一な電極を製造する方法に
係るもので、応答性能にすぐ庇、かつ取り扱いも簡単な
膜状の固定化酵素電極を提供すること全目的とする。
すなわち本発明は、担体膜に酵素を固定化した膜状の酵
素電極を枠体に装着し、これを前記担体膜を膨潤させる
溶媒に浸漬した後溶媒を除去することを特徴とする。
素電極を枠体に装着し、これを前記担体膜を膨潤させる
溶媒に浸漬した後溶媒を除去することを特徴とする。
ここで、酵素を固定化する担体膜としてゆポリカーボネ
ート多孔質膜が邊しており、こn−1r膨潤 ・させる
溶媒としてはエステル類、芳香族炭化水素類、ケトン類
、エーテル類を用いることができる。
ート多孔質膜が邊しており、こn−1r膨潤 ・させる
溶媒としてはエステル類、芳香族炭化水素類、ケトン類
、エーテル類を用いることができる。
酵素を同定化したポリカーボネート多孔質膜を枠体に装
着させる時、迅速な応答を得るためには、膜?たるみな
く装着する必要があるが、薄膜のため装着が困難であり
、しかも、性能がばらつくという欠点がある。しかし、
本発明に従って溶媒に浸漬し一度膜を膨潤させた後、溶
媒を除去する方法をとれば、膜をたるみなく装着するこ
とができる。従って簡単に高性能の同定化酵素電極を製
造できるようになる。
着させる時、迅速な応答を得るためには、膜?たるみな
く装着する必要があるが、薄膜のため装着が困難であり
、しかも、性能がばらつくという欠点がある。しかし、
本発明に従って溶媒に浸漬し一度膜を膨潤させた後、溶
媒を除去する方法をとれば、膜をたるみなく装着するこ
とができる。従って簡単に高性能の同定化酵素電極を製
造できるようになる。
以下、本発明の詳細について、その一実施例としてグル
コースセンサをあげ説明する。
コースセンサをあげ説明する。
実施例1
グルコ−7センサにおける反応を以下の(1)、I2)
弐K 示す。グルコースオキシダーゼの作用により基質
であるグルコースが酸化されてH2O2が生成し、次に
このH2O2f白金電極により酸化して得られた酸化電
流値によりグルコースの濃度を検知する。
弐K 示す。グルコースオキシダーゼの作用により基質
であるグルコースが酸化されてH2O2が生成し、次に
このH2O2f白金電極により酸化して得られた酸化電
流値によりグルコースの濃度を検知する。
グルコース
グルコース+02−−→グルーコノラクトン+H2O2
(1)オキシダーゼ グルコースオキシダーゼ同定化電極の担体として、直径
10mL 孔径2000に、膜厚10 μlL孔密度3
X 10’ 個/afのポリカーボネート多孔質膜を
用い、この膜の片面にスパッタリング法により、厚さ数
百〜数千オングストロームの白金層を形成し電極とした
。電極にグルコースオキシダーゼ(100mg/cc
) 2展開し、り# l /l/ 7 /l/デヒド蒸
気中で固定化した。
(1)オキシダーゼ グルコースオキシダーゼ同定化電極の担体として、直径
10mL 孔径2000に、膜厚10 μlL孔密度3
X 10’ 個/afのポリカーボネート多孔質膜を
用い、この膜の片面にスパッタリング法により、厚さ数
百〜数千オングストロームの白金層を形成し電極とした
。電極にグルコースオキシダーゼ(100mg/cc
) 2展開し、り# l /l/ 7 /l/デヒド蒸
気中で固定化した。
上記の電極の拡大断面模式図を第1図に示した1がグル
コースオキシダーゼ固定化電極で、電極内部側に白金層
2を有しており、担体膜3の孔及ヒ被検液側の膜表面に
グルコースオキシダーゼ4が固定化さnている。
コースオキシダーゼ固定化電極で、電極内部側に白金層
2を有しており、担体膜3の孔及ヒ被検液側の膜表面に
グルコースオキシダーゼ4が固定化さnている。
上記の電極を円筒形の電極ホルダーに装着した電極系に
ついて第2図に模式図で示した。図中1は上記の酵素電
極であり、白金層2がホルダーの内側になるように外と
う管5で本体6に装着さnている。白金層2は白金リー
ド7に接していて、グルコースオキシダーゼ固定化電極
に対するムg/ムgc1参照極8と対極9を電極ホルダ
ー内部に配して電極系全構成している。又、電極ホルダ
ー内は電解液10で満たされている 上記のグルコースセンサで溶液中のグルコース濃度を測
定する場合、迅速な応答を得るには、ホルダーに装着さ
fした電極がたるんでいない事が必要である。たるみが
あると、その部分でH2O2の拡散に時間がかかり応答
速度が遅くなる。そこでホルダーに装着した電極をアセ
トンに浸漬して風乾したところ、電極は一度膨潤した後
、たるみがなくなった。
ついて第2図に模式図で示した。図中1は上記の酵素電
極であり、白金層2がホルダーの内側になるように外と
う管5で本体6に装着さnている。白金層2は白金リー
ド7に接していて、グルコースオキシダーゼ固定化電極
に対するムg/ムgc1参照極8と対極9を電極ホルダ
ー内部に配して電極系全構成している。又、電極ホルダ
ー内は電解液10で満たされている 上記のグルコースセンサで溶液中のグルコース濃度を測
定する場合、迅速な応答を得るには、ホルダーに装着さ
fした電極がたるんでいない事が必要である。たるみが
あると、その部分でH2O2の拡散に時間がかかり応答
速度が遅くなる。そこでホルダーに装着した電極をアセ
トンに浸漬して風乾したところ、電極は一度膨潤した後
、たるみがなくなった。
性能を比較するため、アセトンで処理した電極ムと処理
していない電giAB i PH5,6の緩衝液中に浸
漬し、そnぞfL + 0.6 V vsAf/Agc
l K設定し、グルコースの10 モル/E水溶液を3
0μl添加して、感度と応答速度を比較した。第3肉は
横軸にグルコースを添加してからの時間(sec)を表
し、縦軸にグルコースに対する電流増加(μ人)を表し
ている。人はわずか6秒で定常値に達し、電流増加(感
度)においてもBに比べて良好であった。応答速度が約
2倍も速くなったのは、電極面がアセトン蒸気によりた
るみがなくなり反応がスムーズにおこなわれるようにな
ったためと考えられる。アセトンに浸漬するかわりに、
アセトン蒸気に電極を接触させてもたるみがなくなり性
能も向上した。アセトンのかわりにメチルエチルケトン
を用いて同様な実験を行なったところ、処理した方が応
答速度や感度も良好であった。
していない電giAB i PH5,6の緩衝液中に浸
漬し、そnぞfL + 0.6 V vsAf/Agc
l K設定し、グルコースの10 モル/E水溶液を3
0μl添加して、感度と応答速度を比較した。第3肉は
横軸にグルコースを添加してからの時間(sec)を表
し、縦軸にグルコースに対する電流増加(μ人)を表し
ている。人はわずか6秒で定常値に達し、電流増加(感
度)においてもBに比べて良好であった。応答速度が約
2倍も速くなったのは、電極面がアセトン蒸気によりた
るみがなくなり反応がスムーズにおこなわれるようにな
ったためと考えられる。アセトンに浸漬するかわりに、
アセトン蒸気に電極を接触させてもたるみがなくなり性
能も向上した。アセトンのかわりにメチルエチルケトン
を用いて同様な実験を行なったところ、処理した方が応
答速度や感度も良好であった。
実施例2
実施例1と同じ電極を用い、アセトンやメチルエチルケ
ントのかわりに、ベンゼンに浸漬後減圧乾燥をおこなっ
た。ベンゼンが蒸発した後−電極はたるみがなくなり、
実施例1と同様に比較実験を行なったところ、応答速度
の点でも感度の点でも未処理の電極より良くなった。ベ
ンゼンのかわりにトルエンやエチルエーテルを用いても
同様の結果が得られた。
ントのかわりに、ベンゼンに浸漬後減圧乾燥をおこなっ
た。ベンゼンが蒸発した後−電極はたるみがなくなり、
実施例1と同様に比較実験を行なったところ、応答速度
の点でも感度の点でも未処理の電極より良くなった。ベ
ンゼンのかわりにトルエンやエチルエーテルを用いても
同様の結果が得られた。
実施例3
実施例1と同じ電極を用い、上記の溶媒のかわりに酢酸
に浸漬抜水に溶解して除去させたところ、上記と同様に
電極のたるみがなくなり性能が改善された。酢酸のかわ
りに酢酸メチルでも同様の結果が得られた。
に浸漬抜水に溶解して除去させたところ、上記と同様に
電極のたるみがなくなり性能が改善された。酢酸のかわ
りに酢酸メチルでも同様の結果が得られた。
実施例4
グルコースセンサで血中や尿中のグルコース濃度全測定
する際、被検物中に含まれ白金電極−Fで直接電気化学
的に酸化される尿酸やアスコルビン酸が妨害物質となる
。これらの妨害物質を除去するために、同定化酵素電極
の被検液側に白金層を有する多孔質性の膜を装着して、
電解除去する方法がある。この場合薄膜電極を2枚重ね
て装着する必要があり、ホルダーの本体と薄膜電極との
間又は2枚の薄膜電極の間にたるみが生じゃすら。
する際、被検物中に含まれ白金電極−Fで直接電気化学
的に酸化される尿酸やアスコルビン酸が妨害物質となる
。これらの妨害物質を除去するために、同定化酵素電極
の被検液側に白金層を有する多孔質性の膜を装着して、
電解除去する方法がある。この場合薄膜電極を2枚重ね
て装着する必要があり、ホルダーの本体と薄膜電極との
間又は2枚の薄膜電極の間にたるみが生じゃすら。
そのため、妨害物質は除去できるが応答速度が遅くなる
という欠点が生じる。そこで、グルコースオキシダーゼ
同定化電極と妨害物質除去のための電極を重ねてホルダ
ーに装着した後、アセトン処理を行なっ7′i:oアセ
トンが蒸発後、2枚の電極はたるみがなくなった。
という欠点が生じる。そこで、グルコースオキシダーゼ
同定化電極と妨害物質除去のための電極を重ねてホルダ
ーに装着した後、アセトン処理を行なっ7′i:oアセ
トンが蒸発後、2枚の電極はたるみがなくなった。
第4図に電極ホルダーに装着した電極の拡大断た。白金
層2.固定化グルコースセンダーゼ4に有するグルコー
スオキシダーゼ固定化電極1の被検液側に白金層12を
有するポリカーボネート多孔質膜からなる妨害物質除去
のための電極11を装着している。上記の酵素電極13
と外とう管6によって本体6に装着し、白金層2は白金
リード7に、白金層12は白金リード14にそれぞれ接
している。グルコースオキシダーゼ固定化電極に対する
ムg/ムgC1参照極8と対極9全電極ホルダ一内部に
、妨害物質除去のための電極に対するムg/ムgC1参
照極15と対極16は電極ホルダーの外側に配してit
電極系構成している。又電極ホルダー内は電解液10で
満ださrしている。
層2.固定化グルコースセンダーゼ4に有するグルコー
スオキシダーゼ固定化電極1の被検液側に白金層12を
有するポリカーボネート多孔質膜からなる妨害物質除去
のための電極11を装着している。上記の酵素電極13
と外とう管6によって本体6に装着し、白金層2は白金
リード7に、白金層12は白金リード14にそれぞれ接
している。グルコースオキシダーゼ固定化電極に対する
ムg/ムgC1参照極8と対極9全電極ホルダ一内部に
、妨害物質除去のための電極に対するムg/ムgC1参
照極15と対極16は電極ホルダーの外側に配してit
電極系構成している。又電極ホルダー内は電解液10で
満ださrしている。
上記の電極をアセトンに浸漬した後乾燥したものと、ア
セトン処理全しない電極とを実施例1と同様にPH5,
6の緩衝液中に浸漬し、グルコースを添加して性能を比
較した。アセトン処理をした電極は2枚の薄膜電極がた
るみなく装着されているため、応答速度がアセトン処理
をしでいない電極の約2倍も速く、はとんど1枚の薄膜
電極の応答速度とかわらなかった。アセトン処理により
、妨害物質も簡単に除去でき応答速度のすぐれたグルコ
ースセンサの製造が可能になった。
セトン処理全しない電極とを実施例1と同様にPH5,
6の緩衝液中に浸漬し、グルコースを添加して性能を比
較した。アセトン処理をした電極は2枚の薄膜電極がた
るみなく装着されているため、応答速度がアセトン処理
をしでいない電極の約2倍も速く、はとんど1枚の薄膜
電極の応答速度とかわらなかった。アセトン処理により
、妨害物質も簡単に除去でき応答速度のすぐれたグルコ
ースセンサの製造が可能になった。
以上のように、本発明によ几ば、酵素電極の応答速度や
感度を非常に良くすることができる。実施例ではグルコ
ースセンサについて述べたが、これに限らず、固定化酵
素電極を利用した他のセ/すにも応用できる。又担体膜
としてポリカーボネート多孔質膜に限定して効果を述べ
たが、他の材質の担体膜についても応用できる。
感度を非常に良くすることができる。実施例ではグルコ
ースセンサについて述べたが、これに限らず、固定化酵
素電極を利用した他のセ/すにも応用できる。又担体膜
としてポリカーボネート多孔質膜に限定して効果を述べ
たが、他の材質の担体膜についても応用できる。
【図面の簡単な説明】
第1図は本発明の一実施例であるグルコースセンサの酵
素電極拡大断面模式図、第2図はグルコースセンサの′
@I極系を示す模式図、第3図はグルコースに対するダ
ルコースセ/すの応答を示す図、第4図に妨害物質除去
のための電極を有するグルコースセ/すの酵素電極拡大
断面模式図、第6図は第4図のグルコースセンサの電極
系を示す模式1・・・・・・グルコースオキシダーゼ固
定化電極、2・・・・・・白金層、3・・・・・・担体
膜、4・・・・・・固定化グルコースオキシダーゼ。 代理人の氏名 弁理士 中 尾 敏 男 ほか1名61
1図 第3図 刀し゛(トで11蜆 C4eC)
素電極拡大断面模式図、第2図はグルコースセンサの′
@I極系を示す模式図、第3図はグルコースに対するダ
ルコースセ/すの応答を示す図、第4図に妨害物質除去
のための電極を有するグルコースセ/すの酵素電極拡大
断面模式図、第6図は第4図のグルコースセンサの電極
系を示す模式1・・・・・・グルコースオキシダーゼ固
定化電極、2・・・・・・白金層、3・・・・・・担体
膜、4・・・・・・固定化グルコースオキシダーゼ。 代理人の氏名 弁理士 中 尾 敏 男 ほか1名61
1図 第3図 刀し゛(トで11蜆 C4eC)
Claims (1)
- (1)酵素を固定化した膜を枠体に装着し、溶媒により
膨潤させた後、前記溶媒を除去することを特徴とする膜
状酵素′rIL極の製造法0(2)酵素を固定化する担
体膜がポリカーボネート多孔質膜であり、前記溶媒がエ
ステル類、芳香族 炭化水素類、ケトン類またはエーテ
ル類である特許請求の範囲第1項記載の膜状酵素電極の
製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57095315A JPS58211646A (ja) | 1982-06-02 | 1982-06-02 | 膜状酵素電極の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP57095315A JPS58211646A (ja) | 1982-06-02 | 1982-06-02 | 膜状酵素電極の製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58211646A true JPS58211646A (ja) | 1983-12-09 |
Family
ID=14134316
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP57095315A Pending JPS58211646A (ja) | 1982-06-02 | 1982-06-02 | 膜状酵素電極の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58211646A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9234863B2 (en) | 1998-10-08 | 2016-01-12 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9234864B2 (en) | 1997-02-06 | 2016-01-12 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
-
1982
- 1982-06-02 JP JP57095315A patent/JPS58211646A/ja active Pending
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US9234864B2 (en) | 1997-02-06 | 2016-01-12 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9234863B2 (en) | 1998-10-08 | 2016-01-12 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9291592B2 (en) | 1998-10-08 | 2016-03-22 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9316609B2 (en) | 1998-10-08 | 2016-04-19 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9341591B2 (en) | 1998-10-08 | 2016-05-17 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
US9891185B2 (en) | 1998-10-08 | 2018-02-13 | Abbott Diabetes Care Inc. | Small volume in vitro analyte sensor |
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