JPS58161862A - 免疫検定法 - Google Patents
免疫検定法Info
- Publication number
- JPS58161862A JPS58161862A JP58021356A JP2135683A JPS58161862A JP S58161862 A JPS58161862 A JP S58161862A JP 58021356 A JP58021356 A JP 58021356A JP 2135683 A JP2135683 A JP 2135683A JP S58161862 A JPS58161862 A JP S58161862A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- antibody
- molecule
- antigen
- ligand
- glucuronide
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54306—Solid-phase reaction mechanisms
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/531—Production of immunochemical test materials
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/74—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving hormones or other non-cytokine intercellular protein regulatory factors such as growth factors, including receptors to hormones and growth factors
- G01N33/743—Steroid hormones
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/961—Chemistry: molecular biology and microbiology including a step of forming, releasing, or exposing the antigen or forming the hapten-immunogenic carrier complex or the antigen per se
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/973—Simultaneous determination of more than one analyte
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/975—Kit
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/807—Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
- Y10S436/808—Automated or kit
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/807—Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
- Y10S436/809—Multifield plates or multicontainer arrays
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/811—Test for named disease, body condition or organ function
- Y10S436/814—Pregnancy
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/815—Test for named compound or class of compounds
- Y10S436/817—Steroids or hormones
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
本発明は免疫嘴定法KIJIL、時に2橿の抗原解質の
相対#度を決定するための検定に関する0本検定の使用
具体例として、試料中の3−ヒドロキン−エストラ−1
、3、5(1(1)−トリエン−17−オン−3−β−
D−グルクピラノシジュロニ酸(3−hydroxy
−oestra −1+ 3 + 5 (10) −t
rl*n* −17−one−3−β−D −glue
u −pyranoslduronle aeld )
(以下エストロン−3−グルクロニドまたはE13Gと
いう)および5β−プレグナン−3a、′ji1a−ジ
オール3a−β−D−グルクピラノシジュロン酸(5β
−pr*gnan* −36、2Lla −dlol
3 a−β−D −glueupyranoaidur
onla acid ) (以下プレグナンジオール−
3−グルクロニドまたはP03Gという)の相対atを
検出するために本検定を使用することが挙げられる。 月sm期中の妊!可能期間(すなわち生育力のを示す簡
単でgi積性のある技*に対する必要性が長い間説かれ
て来た。多くの女性は医療上または帯宗教的の理由によ
り埃在入手可能な様々な避妊器具や婢妊薬を用いること
ができないでいる。月経周期中の妊娠0T能期関を#a
値できる技術であれば、女性は自己の妊&’ i’Ji
<V期間中性交渉を避けることによって避妊を行うこと
ができる。また妊娠可能期間を示す同一の技術は妊娠を
希望する場合にも役立つものである。 月経周期は下自体腺W6(下一体の前葉)と卵巣からの
リズオカルなホルモン放出によって支配される。各月経
周期中これらのホルモンおよび卵巣、下蟲体脈部および
脳のある部分中の物足の細胞との藺の儂鑵な相互作用の
結果、卵子が卵巣から鱗宮 放され、子音内膜は妊娠の準備な螢える。卵巣は卵子を
形成する多数の卵@を有する*維岨繊ストロマを有する
。下者体腺部からの卵胞調激ホルモン(FBI )の放
出により卵巣中の卵胞をとり囲んでいる卵巣ストロマの
細胞は増殖し空胴を形成する。卵胞の発達の間一群のス
テロイドホルモン群であるエストロゲンが量中される。 排卵はFff1体腺部からの黄体形成ホルモン(LH)
の放出により卵胞の破裂が1iIII家される時に生じ
る。 卵子がいったん腹腔内に放出され$lII卵管を下り始
めると、卵胞の残余の細胞は黄体を形成する。黄体は第
2のステロイドホルモン群であるプロゲスチンを作り出
す。 月経周期は概念的に卵胞期(排卵まで)および黄体J&
Q(排卵凌)K分けることができる。卵胞期においては
成熟中の卵巣卵胞は前周期において子宮内膜が失った部
分を再生させるエストロゲンを排せつする。排卵がある
と黄体によるプロゲスチンの排せつKより子宮内膜の粘
膜の形成が刺激され、予電は卵子の輸卵管下降中に受精
が行われれば卵子を着床させる準備をする。愛情があく
卵子が千′ぎに着床しない場合は黄体は変性しプロゲス
チンのし4ルが下る結果子宮内膜は変性し出血が起る。 全周期が完WIする罠は約あ日を要する。 卵巣は3つのエストロゲン化合物すなわちエストラジオ
ール、エストリオールおよびエストロンを作り出す。エ
ストラジオールはもつとも傾力なエストロゲンであり人
体により容易に酸化されてエストロンを生成する。エス
トロンはヒトミキモル化されてエストリオールを生成す
る。これら3つのステロイドはすべてグルクロニド誘導
体として女性の尿中に存在する。 天然に生じるプロゲスチンはプロゲステロンである。血
液中のプロゲステロンのレベルは排卵後28以&に最大
値に達する。プロゲステロンはすみやかにプレグナンジ
オールに変性する。プレグナンジオールはグルクロニド
誘導体として尿中に排せつされる。 エストロゲン中間代藺物およびプロゲスチン中間代−物
の尿中のレベルを月II!kJI11期の進展vm知す
るために利用することがaTw@である。%にエストロ
ン−3−グルクロニドのプレクナン、ジオールー3−グ
ルクロニドに対する比率は月経周期の歳初の週には低い
が、排卵−数日前(たとえば2日ないし5日#1)に増
加し始め、排卵wIl頃(排卵周辺期)ピーク櫃に達す
る。この比率は次いで急激に減小し排卵時の2日後まで
に低い1iK下る。この比率が上昇する月経周期中のJ
911i4は月経周期中の妊1h用吐期間に対応するか
ら、この比率が上昇した憾を示す検定は明らかに極めて
高い価値を有するものである。 もしこの検定が安価で簡単なものであれば、それは受精
′ci]能か否かを検知するための極めて有益なテスト
の2&礎となることができる。 本出願人の実画特許GB第2029011B号明細14
Fにおいて、本出願人は試薬系と前記比率を決定する方
法を記載している。同明細書には、2つの方柱周期中の
妊娠aJ北期間を検知する免疫化学的方法が目己載され
ている。この方法は、上記2つの中間代d物の存在によ
り兜&複合体が解離する度付いを決定することに依存す
る。 本出願人の前記CI4#書に記載した免役豪合体は。 プレグナンジオール−3−グルクロニドに対する抗体な
固相に不可逆的に付着させた固相と、ウシ血清アルブミ
ンに不可逆的に何層したエストロン−3−グルクロニド
部分(m・lItl・I)およびプレグナンジオール−
3−グルクロニド部分とを含む21dfi配位子と、エ
ストロン−3−グルクロニr<対する抗体とを有する。 この配位子は、免疫化学的結合により、前記同相支持体
に何着したプレグナンジオール−3−ダルクロニド抗体
に対しり逆円に結合し、エストロン−3−グルクロニド
抗体は免役化学的結合により該配位子に対し可逆的に結
合する。 前記方法においては、免疫複合体を尿でインキュベート
する。尿中の谷中間代−物は抗体を@指して競う結果兜
&複合体は部分的Kps離する0次いで固相を洗浄する
。同相に何着して残っている、照射されたエストロン−
3−グルクロニド部分の数は、尿中のエストロン−3−
ダルタロニドのプレグナンジオール−3−グルクロニド
に対する比率に@!存する。照射されたエストロン−3
−グルクロニド部分の数はエストロン−3−グルクロニ
ドに対する酵1c憚繊抗体により決定することができる
。 上記英1特許第20290118号明細書記載の試薬系
および方法は有効ではあるが、ある檎の限界がある。 すなわち、エストロン−3−グルクロニドおよびグレダ
ナンジオールー3−グルクロニドは概念的に21111
の配位子を形成するため支持たん白(実施例ではウシ血
清アルブミン)に結合させられる。 この配位子と同相に結合した抗プレグナンジオールー3
−グルクロニドとの闇に形成された結合およびこの配位
子と抗エストロンー3−グルクロニドとの蘭に1V3成
された結合はり逆円であることが必漠東往である。しか
し現在これらの結合は部分的にのみ可逆的であり、その
結来兜投複合体は、エストロン−3−グルクロニドおよ
びプレグナンジオール−3−グルクロニドを含む浴液で
インキュベートした時、光分な解囁を示さないことが判
った。これはq!r部分の2つ以上が支持たん白に何層
するため配位子が多愉反応を起すことに帰因するとも考
えられる。 また、ウシ血清アルプンン自身の上の非ステロイド決定
基と固相に付着した抗体との閣の免役反応が起ることに
帰因することも考えられる。 さらに、女性の尿中に存在するエストロン−3−グルク
ロニドとプレグナンジオール−3−グルクロニドのal
l!度がはなはだしく異るために生じる間呟がある0適
音プレグナンジオールー3−グルクロニドの濃度はエス
トロン−3−グルクロニドの濃度の1()〜5o偕であ
る。前記時許QB第2029011B号明細書紀載の試
薬系および方法は、エストロン−3−グルクロニドおよ
びプレグナンジオール−3−グルクロニドの双方に対し
て四槽の感度を示す。これは誤った試験結果に導くおそ
れがある。 前記物許GB第202−9011B号配幀の方法は、2
つの微分4Fl物を同時に検定する方法であるから。 本明細書では以下二重値分irr物検定(dual &
鵬tyt・−「る。しかしながら相対濃度の決定は2つ
の部分1mのa度比の複雑な関数であり、したがって二
重分析検定は1111度比がしきい(iij K :l
I したかまたはこれを超えた時を示すために使用する
ことが望ましい。 本発明の目的は、光分な競争的平角の確立を許拝しかつ
嘱2の抗慮溶寅よりも看るしく低い一度で存在する抗庫
装置に対する感度を高めた二重微分町物横定を提供する
ことな目的とする。 本発明によれば、次の検定が提供される。 構成W素として、 a)第1の抗原浴貞と第2の抗原静置とを含む試料浴液 b)前記第1の抗原静置の決定基に可逆的に結合しうる
第1の抗体であって、浴液中にある抗体C)前記第2の
抗原静置の決定基に可逆的に結合し5る@2の抗体であ
って、固相支持体に可逆的に結合している抗体 d)罰Hピ第1の抗体がi」逆円に結合し5る第1の抗
原と、前記#!2の抗体が可逆的に結合し5る第2の抗
原とを含み、該第1の抗原と該第2の抗原は架rmf持
分子を介して相互KGiT逆的に結合している配位子分
子であって、浴液中にある配位子分子 ・)抗体に対し可逆的に結合し5る標識を何した抗体 を儂え、次の工程を含む検定 a)前記11!1の抗体、前記第2の抗体および前記配
位子分子のすべてが前配賦科との混合#に相互に混合し
ていない場合に、前配賦科溶液、前記第1の抗体、II
J記第2の抗体および前記配位子分子の混合物を形成す
る工程 b) d混合物をインキュベートするととによって。 剖紀配位子分子と前記第1の抗原溶質との関にAll紀
第1の抗体と会合すべく填合V詐容し、かつ前記配位子
分子と前記第2の抗家厳買との蘭に前記第2の抗体と会
合すべく一合を許容する工程 e)前記同相支持体を前記標識を何した抗体に接触させ
るととKより、該標識を何した抗体と禾結合第1抗原と
の閣の会合’i’WfWする工程d)前記配位子分子お
よび前記第2の抗体を介して前記固相支持体Km合した
標線を付した抗体の瞳を決定する1機。 配位子分子は1櫨拳の第1の抗原と1檀拳の第2の抗原
を含み、2つの抗ノ京は架!IIA支持分子を介して不
ロ1逆的に相互に結合していることが望ましい。配位子
分子中にただ1檀のtalの抗原とただl檀の第2の抗
原が存在することは有効な競争反応を嗜沫する。 不明allIFにおいて、「不可逆的結合」という用語
は、@合のw4+111定数が免疫化学的結合の解離定
数よりも低い結合を意味する。特に固定相と第2の抗体
との闇の結合は1mlの抗体および第2の抗体を配位子
分子に結合させる免疫化学的結合のP!4Illl定数
よりも低いS*定数を有する。 検定の成分の混合およびインキュベーションのIk序と
組合せは検定の感匿および検定を実行する猷の容易さに
影響を与える。混合物は別々の成分1に:1工程で混合
することにより形成することが城ましい。こうすること
Kより別々の成分がそれぞれ同時に競争性KrIItか
れ、その結果有効なII!苧反応が生じる。実用旧兇庵
からはこの技術はある制限を有している。他の望ましい
方法においては、混合物は、試料浴液と配位子分子との
混合物を形成し、この混合物をさらに第1の抗体と第2
の抗体との混合物と混合することによつ′f:形成され
る轟こうすることKよって、検定の抗原成分(試料およ
び配位子分子)をtA整することができるが相互に反応
することはなく、また検定の抗体成分(第1および第2
の抗体)を調書することができるが相互に反応すること
はない6反応は抗原と抗体とが混合される時にのみ生じ
る。 同相は検電の適当な段階で洗浄し、固相に結合していな
い橿を除去する。 第1.第2および標識を何した抗体の1または2以上は
関連する抗原に対する抗血清の純化免役グロブリンで強
化した分−または関連抗体に対するモノクローナル抗体
を用いることができる。 *練を付した抗体は適当な基質を有しまたはこのような
Al[なしに6■祝信号を発生しうるものであることが
望ましい6%に標識を付した抗体は酵素、螢光または化
学発光基で標識することが望ましい。たとえば西洋ワサ
ビのペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β
−ガラタトシダーゼまたはグルコースオキシダーゼを用
いることができる。もつとも好ましいものは西洋ワすピ
ノ臂ルオキシダーゼで標識した抗体である。 固相支持体はマイクロテストプレート(m1er@t・
atplate )のような砿量―定板(m1erot
rtratlon plato)、マイクロタイタブレ
ート(m1erotltr@plate )、プラスチ
ック管またはガラス!1球またはビード。 乳清脂粒子、′a倣−スライ・ド、粒状セルローズ望ま
しくは徴晶賞のセルローズ、アガロース、セファロース
、セファクリル、ボリアクリルアミド粒状ゲル、シリカ
ゲル、アルンナ、ゼオライト、またはたとえばP紙等の
形状のセルローズ等の繊維状物賞を用いることができる
。 ++617F@文神体は倣普簡定板な用いることが望ま
しい1 i@2の抗体の面相に対する結合は、たとえば化学的に
または抗免役グロブリン抗体等のポリペプチド、プロテ
ィンA (prot@in A )または殺しもしくは
固定したスタフイロコックス オーレウス(8taph
ylocoeaus Aurs+us )等の公知の手
段によって行うことができる。 本検定は月経周期中の妊娠可能期間を決定する1方法に
おいて使用することができる。この場合本検定は、尿中
のエストロン−3−グルクロニドおよびプレグナンジオ
ール−3−グルクロニドの相対濃度を検知するために使
用される。この好ましい本検定の利用にKい
相対#度を決定するための検定に関する0本検定の使用
具体例として、試料中の3−ヒドロキン−エストラ−1
、3、5(1(1)−トリエン−17−オン−3−β−
D−グルクピラノシジュロニ酸(3−hydroxy
−oestra −1+ 3 + 5 (10) −t
rl*n* −17−one−3−β−D −glue
u −pyranoslduronle aeld )
(以下エストロン−3−グルクロニドまたはE13Gと
いう)および5β−プレグナン−3a、′ji1a−ジ
オール3a−β−D−グルクピラノシジュロン酸(5β
−pr*gnan* −36、2Lla −dlol
3 a−β−D −glueupyranoaidur
onla acid ) (以下プレグナンジオール−
3−グルクロニドまたはP03Gという)の相対atを
検出するために本検定を使用することが挙げられる。 月sm期中の妊!可能期間(すなわち生育力のを示す簡
単でgi積性のある技*に対する必要性が長い間説かれ
て来た。多くの女性は医療上または帯宗教的の理由によ
り埃在入手可能な様々な避妊器具や婢妊薬を用いること
ができないでいる。月経周期中の妊娠0T能期関を#a
値できる技術であれば、女性は自己の妊&’ i’Ji
<V期間中性交渉を避けることによって避妊を行うこと
ができる。また妊娠可能期間を示す同一の技術は妊娠を
希望する場合にも役立つものである。 月経周期は下自体腺W6(下一体の前葉)と卵巣からの
リズオカルなホルモン放出によって支配される。各月経
周期中これらのホルモンおよび卵巣、下蟲体脈部および
脳のある部分中の物足の細胞との藺の儂鑵な相互作用の
結果、卵子が卵巣から鱗宮 放され、子音内膜は妊娠の準備な螢える。卵巣は卵子を
形成する多数の卵@を有する*維岨繊ストロマを有する
。下者体腺部からの卵胞調激ホルモン(FBI )の放
出により卵巣中の卵胞をとり囲んでいる卵巣ストロマの
細胞は増殖し空胴を形成する。卵胞の発達の間一群のス
テロイドホルモン群であるエストロゲンが量中される。 排卵はFff1体腺部からの黄体形成ホルモン(LH)
の放出により卵胞の破裂が1iIII家される時に生じ
る。 卵子がいったん腹腔内に放出され$lII卵管を下り始
めると、卵胞の残余の細胞は黄体を形成する。黄体は第
2のステロイドホルモン群であるプロゲスチンを作り出
す。 月経周期は概念的に卵胞期(排卵まで)および黄体J&
Q(排卵凌)K分けることができる。卵胞期においては
成熟中の卵巣卵胞は前周期において子宮内膜が失った部
分を再生させるエストロゲンを排せつする。排卵がある
と黄体によるプロゲスチンの排せつKより子宮内膜の粘
膜の形成が刺激され、予電は卵子の輸卵管下降中に受精
が行われれば卵子を着床させる準備をする。愛情があく
卵子が千′ぎに着床しない場合は黄体は変性しプロゲス
チンのし4ルが下る結果子宮内膜は変性し出血が起る。 全周期が完WIする罠は約あ日を要する。 卵巣は3つのエストロゲン化合物すなわちエストラジオ
ール、エストリオールおよびエストロンを作り出す。エ
ストラジオールはもつとも傾力なエストロゲンであり人
体により容易に酸化されてエストロンを生成する。エス
トロンはヒトミキモル化されてエストリオールを生成す
る。これら3つのステロイドはすべてグルクロニド誘導
体として女性の尿中に存在する。 天然に生じるプロゲスチンはプロゲステロンである。血
液中のプロゲステロンのレベルは排卵後28以&に最大
値に達する。プロゲステロンはすみやかにプレグナンジ
オールに変性する。プレグナンジオールはグルクロニド
誘導体として尿中に排せつされる。 エストロゲン中間代藺物およびプロゲスチン中間代−物
の尿中のレベルを月II!kJI11期の進展vm知す
るために利用することがaTw@である。%にエストロ
ン−3−グルクロニドのプレクナン、ジオールー3−グ
ルクロニドに対する比率は月経周期の歳初の週には低い
が、排卵−数日前(たとえば2日ないし5日#1)に増
加し始め、排卵wIl頃(排卵周辺期)ピーク櫃に達す
る。この比率は次いで急激に減小し排卵時の2日後まで
に低い1iK下る。この比率が上昇する月経周期中のJ
911i4は月経周期中の妊1h用吐期間に対応するか
ら、この比率が上昇した憾を示す検定は明らかに極めて
高い価値を有するものである。 もしこの検定が安価で簡単なものであれば、それは受精
′ci]能か否かを検知するための極めて有益なテスト
の2&礎となることができる。 本出願人の実画特許GB第2029011B号明細14
Fにおいて、本出願人は試薬系と前記比率を決定する方
法を記載している。同明細書には、2つの方柱周期中の
妊娠aJ北期間を検知する免疫化学的方法が目己載され
ている。この方法は、上記2つの中間代d物の存在によ
り兜&複合体が解離する度付いを決定することに依存す
る。 本出願人の前記CI4#書に記載した免役豪合体は。 プレグナンジオール−3−グルクロニドに対する抗体な
固相に不可逆的に付着させた固相と、ウシ血清アルブミ
ンに不可逆的に何層したエストロン−3−グルクロニド
部分(m・lItl・I)およびプレグナンジオール−
3−グルクロニド部分とを含む21dfi配位子と、エ
ストロン−3−グルクロニr<対する抗体とを有する。 この配位子は、免疫化学的結合により、前記同相支持体
に何着したプレグナンジオール−3−ダルクロニド抗体
に対しり逆円に結合し、エストロン−3−グルクロニド
抗体は免役化学的結合により該配位子に対し可逆的に結
合する。 前記方法においては、免疫複合体を尿でインキュベート
する。尿中の谷中間代−物は抗体を@指して競う結果兜
&複合体は部分的Kps離する0次いで固相を洗浄する
。同相に何着して残っている、照射されたエストロン−
3−グルクロニド部分の数は、尿中のエストロン−3−
ダルタロニドのプレグナンジオール−3−グルクロニド
に対する比率に@!存する。照射されたエストロン−3
−グルクロニド部分の数はエストロン−3−グルクロニ
ドに対する酵1c憚繊抗体により決定することができる
。 上記英1特許第20290118号明細書記載の試薬系
および方法は有効ではあるが、ある檎の限界がある。 すなわち、エストロン−3−グルクロニドおよびグレダ
ナンジオールー3−グルクロニドは概念的に21111
の配位子を形成するため支持たん白(実施例ではウシ血
清アルブミン)に結合させられる。 この配位子と同相に結合した抗プレグナンジオールー3
−グルクロニドとの闇に形成された結合およびこの配位
子と抗エストロンー3−グルクロニドとの蘭に1V3成
された結合はり逆円であることが必漠東往である。しか
し現在これらの結合は部分的にのみ可逆的であり、その
結来兜投複合体は、エストロン−3−グルクロニドおよ
びプレグナンジオール−3−グルクロニドを含む浴液で
インキュベートした時、光分な解囁を示さないことが判
った。これはq!r部分の2つ以上が支持たん白に何層
するため配位子が多愉反応を起すことに帰因するとも考
えられる。 また、ウシ血清アルプンン自身の上の非ステロイド決定
基と固相に付着した抗体との閣の免役反応が起ることに
帰因することも考えられる。 さらに、女性の尿中に存在するエストロン−3−グルク
ロニドとプレグナンジオール−3−グルクロニドのal
l!度がはなはだしく異るために生じる間呟がある0適
音プレグナンジオールー3−グルクロニドの濃度はエス
トロン−3−グルクロニドの濃度の1()〜5o偕であ
る。前記時許QB第2029011B号明細書紀載の試
薬系および方法は、エストロン−3−グルクロニドおよ
びプレグナンジオール−3−グルクロニドの双方に対し
て四槽の感度を示す。これは誤った試験結果に導くおそ
れがある。 前記物許GB第202−9011B号配幀の方法は、2
つの微分4Fl物を同時に検定する方法であるから。 本明細書では以下二重値分irr物検定(dual &
鵬tyt・−「る。しかしながら相対濃度の決定は2つ
の部分1mのa度比の複雑な関数であり、したがって二
重分析検定は1111度比がしきい(iij K :l
I したかまたはこれを超えた時を示すために使用する
ことが望ましい。 本発明の目的は、光分な競争的平角の確立を許拝しかつ
嘱2の抗慮溶寅よりも看るしく低い一度で存在する抗庫
装置に対する感度を高めた二重微分町物横定を提供する
ことな目的とする。 本発明によれば、次の検定が提供される。 構成W素として、 a)第1の抗原浴貞と第2の抗原静置とを含む試料浴液 b)前記第1の抗原静置の決定基に可逆的に結合しうる
第1の抗体であって、浴液中にある抗体C)前記第2の
抗原静置の決定基に可逆的に結合し5る@2の抗体であ
って、固相支持体に可逆的に結合している抗体 d)罰Hピ第1の抗体がi」逆円に結合し5る第1の抗
原と、前記#!2の抗体が可逆的に結合し5る第2の抗
原とを含み、該第1の抗原と該第2の抗原は架rmf持
分子を介して相互KGiT逆的に結合している配位子分
子であって、浴液中にある配位子分子 ・)抗体に対し可逆的に結合し5る標識を何した抗体 を儂え、次の工程を含む検定 a)前記11!1の抗体、前記第2の抗体および前記配
位子分子のすべてが前配賦科との混合#に相互に混合し
ていない場合に、前配賦科溶液、前記第1の抗体、II
J記第2の抗体および前記配位子分子の混合物を形成す
る工程 b) d混合物をインキュベートするととによって。 剖紀配位子分子と前記第1の抗原溶質との関にAll紀
第1の抗体と会合すべく填合V詐容し、かつ前記配位子
分子と前記第2の抗家厳買との蘭に前記第2の抗体と会
合すべく一合を許容する工程 e)前記同相支持体を前記標識を何した抗体に接触させ
るととKより、該標識を何した抗体と禾結合第1抗原と
の閣の会合’i’WfWする工程d)前記配位子分子お
よび前記第2の抗体を介して前記固相支持体Km合した
標線を付した抗体の瞳を決定する1機。 配位子分子は1櫨拳の第1の抗原と1檀拳の第2の抗原
を含み、2つの抗ノ京は架!IIA支持分子を介して不
ロ1逆的に相互に結合していることが望ましい。配位子
分子中にただ1檀のtalの抗原とただl檀の第2の抗
原が存在することは有効な競争反応を嗜沫する。 不明allIFにおいて、「不可逆的結合」という用語
は、@合のw4+111定数が免疫化学的結合の解離定
数よりも低い結合を意味する。特に固定相と第2の抗体
との闇の結合は1mlの抗体および第2の抗体を配位子
分子に結合させる免疫化学的結合のP!4Illl定数
よりも低いS*定数を有する。 検定の成分の混合およびインキュベーションのIk序と
組合せは検定の感匿および検定を実行する猷の容易さに
影響を与える。混合物は別々の成分1に:1工程で混合
することにより形成することが城ましい。こうすること
Kより別々の成分がそれぞれ同時に競争性KrIItか
れ、その結果有効なII!苧反応が生じる。実用旧兇庵
からはこの技術はある制限を有している。他の望ましい
方法においては、混合物は、試料浴液と配位子分子との
混合物を形成し、この混合物をさらに第1の抗体と第2
の抗体との混合物と混合することによつ′f:形成され
る轟こうすることKよって、検定の抗原成分(試料およ
び配位子分子)をtA整することができるが相互に反応
することはなく、また検定の抗体成分(第1および第2
の抗体)を調書することができるが相互に反応すること
はない6反応は抗原と抗体とが混合される時にのみ生じ
る。 同相は検電の適当な段階で洗浄し、固相に結合していな
い橿を除去する。 第1.第2および標識を何した抗体の1または2以上は
関連する抗原に対する抗血清の純化免役グロブリンで強
化した分−または関連抗体に対するモノクローナル抗体
を用いることができる。 *練を付した抗体は適当な基質を有しまたはこのような
Al[なしに6■祝信号を発生しうるものであることが
望ましい6%に標識を付した抗体は酵素、螢光または化
学発光基で標識することが望ましい。たとえば西洋ワサ
ビのペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、β
−ガラタトシダーゼまたはグルコースオキシダーゼを用
いることができる。もつとも好ましいものは西洋ワすピ
ノ臂ルオキシダーゼで標識した抗体である。 固相支持体はマイクロテストプレート(m1er@t・
atplate )のような砿量―定板(m1erot
rtratlon plato)、マイクロタイタブレ
ート(m1erotltr@plate )、プラスチ
ック管またはガラス!1球またはビード。 乳清脂粒子、′a倣−スライ・ド、粒状セルローズ望ま
しくは徴晶賞のセルローズ、アガロース、セファロース
、セファクリル、ボリアクリルアミド粒状ゲル、シリカ
ゲル、アルンナ、ゼオライト、またはたとえばP紙等の
形状のセルローズ等の繊維状物賞を用いることができる
。 ++617F@文神体は倣普簡定板な用いることが望ま
しい1 i@2の抗体の面相に対する結合は、たとえば化学的に
または抗免役グロブリン抗体等のポリペプチド、プロテ
ィンA (prot@in A )または殺しもしくは
固定したスタフイロコックス オーレウス(8taph
ylocoeaus Aurs+us )等の公知の手
段によって行うことができる。 本検定は月経周期中の妊娠可能期間を決定する1方法に
おいて使用することができる。この場合本検定は、尿中
のエストロン−3−グルクロニドおよびプレグナンジオ
ール−3−グルクロニドの相対濃度を検知するために使
用される。この好ましい本検定の利用にKい
【は、配位
子分子は架WI4支持分子1に片して不ciJ逆的に結
合した少くとも1分子のエストロン−3−グルクロニド
と少くと41分子のプレグナンジオール−3−グルクロ
ニドをよむ。 配位子分子は好ましくは次の式のものである。 HOH また本発明は本発明の倹定または上記の方法を実施する
ための試薬キットを提供する。このため。 第1の抗体と、第2の抗体と配位子分子とを別々に備え
る試薬キットが提供される。また第1の抗体と第2の抗
体との混合物とそれとは別個の配位子分子とを備える試
薬キットが提供される。 本発明は、さらに、架横支愕分子を介して不可逆的に結
合した2つの異る抗原響を含み、との架慟−f:待分子
は2つの反応性1”能基を自する有機化合物から優られ
る21曲の基である。この21曲の1としては炭素原子
2−10v有するアルキル、炭素原子2−1Oを有する
アルケン、炭素原子2−1Oを有するアルキンまたはフ
エニールジアルキルヲ用いることができる。好ましくは
2i0tiの基は一般式%式%) (ただしRは−NH,、ハロゲンまたは−O−CO−ア
ルキル、hは2〜10 )の化合物から優られる。Rは
一洲、であることが・好ましく、1は6であることが好
ましい、最も好ましい配位子分子は次式のものである。 本発明の試薬系は、2価の配位子の一部を含むたん1實
性の支持分子のかわりに2つの反応性官舵基v有する有
機化合物から優られる簡単な条横ゲ待シナ子を用いるこ
とにより、英1籍許G藤第2029011B号に記載さ
れた試薬系に内在する限界を克服することができる。1
井連するステロイド中間代l!llt物(実馬例におい
てはエストロン−3−グルクロニドおよびプレグナンジ
オール−3−グルクロニド)は化学的にこのような架4
9119分子に何着させて、以涜[混合ステロイド抗原
]または「M8AJと称する配位子分子を形成させるこ
とができる。過当な架4111叉侍分子の1例はたとえ
ば1.6−ジアンノヘキサン等のアルキルジアミンであ
る。このような合成支持分子を用いる混合ステロイド抗
原は多価免疫複合体を形成する#I@ −がより少く、
系中に不純物として存在する抗体KR−fる兇役学的ア
フィニティーは無視しうる′ljA度のものである。 本発明の方法は複数の抗yA装置の中で一般により低い
レベルのものを考[K入れる(実施例ではエストロン−
3−プルクロニドフ。低m度の抗原m電に対する本方法
の感度を比例的に増大する必要があることが判明した。 これは問題の抗jllL浴質に対する抗体と複合しよう
とするM8ムと当該抗原との真に−や的な反応を考慮す
ることKよって達成された。英1f1i特許GB第20
29011B号記載の方法においては、真の競争が開始
しうる以前に抗体とM8Aとの間に杉成された免役複合
体を解畷することが必要である。 いずれかの抗体KW1合するためKM8ムが試料と競争
しなければならないように試薬系の成分な添加すると、
より感度の良い検定を行えることが判った。 以下に記載の実施例においては、上記の試薬系と方法は
、月経周期中で尿中のプレグナンジオール−3−/ル3
y o二)’に’Rf6エストロンー3−グルクロニド
の一度比が上昇する1日または豪数日を決定するために
用いられるニジたがって月経周期中毎日尿を横置すれば
、妊娠aT能期閣の開始。 継続期間および終fを示すことができる。さらK。 この−腋比は排卵日頃にビーク櫨に達するので。 ピークtllケ測定することにより受精町乾性が最大の
時を示すことができる。 以Fm何図面を参照して本発明の試薬系および二III
破分析vI検定を砕細に説明する。 第1図は本発明の試薬系および二重鎖分析物検定の1実
施例を模式的に示す、なお図中以下の記号な用いる。 \\、 ステロイド中間代謝物(エストロン−3−グル
クロニド) \ ステロイド中間代−物(プレグナンジオール−3−
グルクロニド) 一〇−混合ステロイド抗原 第1図には2つの抗原浴寅の#gの4つの檎限例が示さ
れている。 1)エストロン−3−グルクロニド(1:/3G)df
l&、プレグナンジオール−3−グルクロニド(PD3
G)一度低・ これは月経周期の中排卵周辺期関の状−を表しており、
したがって%に関心のある吠轢である。 尿の試料をとり、必要に応じ希釈した瞳、エストロン−
3−グルクロニドとプレグナンジオール−3−グルクロ
ニドの双方の抗原決定基を有する混合ステロイド抗原を
含む緩備浴8に添加する。次いでこの抗原混合物を溶液
中のエストロン−3−抗原上に存在する複数の抗原は各
自の対応する抗体に結合すべく抗原被分析物と競争する
。この場合試料中のエストロン−3−グルクロニドは比
較的高い濃度であるためエストロン−3−グルクロニド
に対する抗体の大部分は被分析物KM合し、混合ステロ
イド抗原はエストロン−3−グルクロニドに対応する自
由な抗原なMしたまへ同相に何増する。 緩責液による洗伊(必漠ではない)およびエストロン−
3−グルクロニドに対する標識を何した抗体を加えてイ
ンキュベーションを行うと、標識を何した抗体は同相に
会合し固相において検知することができる。 鹸) エストロン−3−グルクロニl’(E13G)
Ill廣低、グレダナンジオールー3−グルクロニド(
1’03G ) ti11度低・ この場合は月経周期中の初期卵抱期を表す。テストエ楊
は上記l)と同一であるが、821図に示すように、尿
中のエストロン−3−グルクロニドの駿は混合ステロイ
ド抗原と有意な程度に競争するには不光分であるため、
なんらの信号も発生しない。その#東、*終的に固相に
結合する混合ステロイド抗原上のエストロン−3−グル
クロニドの会合を妨げられ、信号は発生しない。 111)エストロン−3−グルクロニド(gMG)ll
llfi& グレダナンジオールー3−グルクロニド(
PD3G)my高。 この場合は月経周期中の黄体中期の状轢を表す。 テスト工程は上記と同一であるが、図示のように、混合
ステロイド抗原は、尿中のスy″ロイド中間代−物の製
置が高いためにプレグチンジオール−3−グルクロニド
抗捧およびエストロン−3−グルクロニド抗体のいずれ
とも有意な程fに会合することができす、信号は発生し
ない。その結果混合スデロイド抗原分子の大部分は固相
KW1合することなく1liI#IRを付した抗体との
インキユベーシヨンの#に洗い流されてしまう。 〜)エストロン−3−グルクロニド(E13G)lII
屓低、プレグナンジオール−3−グルクロニド(PD3
G)Ilf高。 シ この場合プレグナンヂ峠オールー3−グルクロニドの*
iは1甑な程度に比較的高いので混合ステロイド抗原の
同相との会合は妨げられ、したがって信号は発生しない
。 次に試薬系の檀々の成分の1I4IIkと特性について
説明する。 他に%配しない限り、1と学品と浴媒はすべて英1th
lドーセット、ツールのビー、ディー、エイチ、ケミカ
ルズ、リミテッド(8D HCh*ml@als Li
d、)から入手したものである。緩衝液はすべ【蒸溜水
中でPJ4整した。 づAヱ! パルビトンナトリウA (8odlam 1larbl
ton@)を0.1%(豐/ν)アジ化ナトリウムとと
4KtM!a m 0.07 M K調整した。最終容
積にvI4帯する前にこの溶液の−を濃塩酸で8.4に
調節した。 週断緩備液 迩1ily緩債液は0.1M塩化ナトリウムおよび0.
1MリンIL塩(11,53P/を無水リン酸水素第2
ナトリウムおよび2.25f/を無水リン酸第2水素ナ
トリウムから調整したもの)を含む。ウシ血清アルブミ
ン(グレードV、英国ドーセットプール、ファンシーロ
ードのシグマ、ケミカル、カンノ臂ニー(S igrn
* Chsmleal Co、 )をこの#液に浴かし
製繊5憾(*/VJとした。 洗浄緩衝液 0.1M塩化ナトリウム、0.01 M EDTAおよ
び0.01Mリン酸塩(1,1537/4無水リン酸水
素第2ナトIJウムおよび0.225 jIP/ を無
水リン酸第2水素ナトリウムからなる)を含む浴液ヲu
411シた。この浴液1tごとにa−シタノールlQd
および7v@aa−加(簡@)0.2MJを添加した。 こうしてできた況浄緩lll1液をよく躯って、濃塩酸
でpH7,5に調節したー Trls −HCI緩曽液 0.02M trla (Trismm ペース、英
国ビーセット。 プール、ファンシーロード、シグマ、ケミカル、カンパ
ニー)および0.5M堰化ナトリウム1含む浴液’I!
f 4441しall tag 峡でpH7,4にal
lllした。 g a p gygk液 LIO1IM塩化ナトリウム、0.01M EDTA
および0.1Mリン酸埴(11,53jl/j無水リン
酸水率、第2ナト17ウムおよび2.25?/jりン酸
第2水素ナトリウム)を含む浴液を調整し、−塩酸で肯
を7.0に調節した。浴液1tごとに無水エタノール(
A。 R,グレード)/751dおよびTw@n −′d5J
O,2Mを重加した。 1次緩負液 ウシ血清アルブミン(グレードV、英1ドーセット、プ
ール、ファンシーロードのシグマ、ケ1typb、f)
yノそニー)VE8PE綾僑液に浴かして24(w/マ
)浴液にすることによって1次緩衝液をA幣した。 2次緩衝液 1”j−グレードのウシ血清アルブミンをに8P)4備
漱に浴かすことKよってf#度0.2%(v/マ)とす
ることによって2次緩衝液を調整した。 −J!i電浴液A 蟇両浴液Aは0.01Mジメチルアンノ安息香酸(梃1
ドーセット、ギリンガム、ニューロード、ジ、オールド
、ブリックヤードのアルドリッチ、ケンカル、カンノ”
二= (Aldrleh Chsmleal Co、)
)。 0.1M硫酸アンモニウム、0.01M EDTAお
よび2水木ナトリウム)からなる。この$118の一ヲ
2M水酸化ナトリウムで6.0に調節した。最喰に溶g
1tにつきn−ブタノール10 d ’l’ l1ti
加した。 基j[浴液B 3に電解液Bは0.02M 3−メチル−2−ペンゾ
チアゾリニンヒドラゾンヒドロクロリド(3−raat
hyl −2−bsnmothlazollnlne
hydramon@ hydr*ehlorlds
(アルドリッチ、ケンカル、カンパニー、り建テッド#
]の水浴喉からなるものであった。 1實#lC 1實浴液Cは(資)憾過酸化水素を水で希釈して】プロ
ティンA (prot@in A )脱着緩衝液は0.
15M堪化す) 17ウムおよび0.58鳴(マ/マ)
酢酸からなるものであった。 Con −A脱漕緩自液 Cow −A脱層酸備液は〒rls/HCj緩憾液中の
カンパニー#)からなるものであった。 酢酸塩緩備液 これは0.1M酢酸す) IJウムおよび0.1M堪化
す) IJウムからなり、塩酸で1.1H4,5に調整
した。 去乙菫皇臘勇スll リンm堪緩伽食塩水は0.1 M塩化ナト17ウムおよ
び0,1Mリン酸堪(11,53jf/を無水リン酸水
素) 第2ナトリウムおよび2.2Sf/を無水リン酸
水素第2ナトリウムl含むもので、pH7,5に調節し
た。 櫨々の混合ステロイド抗原(MSA)化合物の1ill
整次に各M8Aをg4!Iシた。 1−〔プレグナンジオール−3−グルクロンアミド〕、
4−〔エストロン−3−グルクロンアミドローフタン(
PD3G−1,4(DAB)−1i:13G)1−〔プ
レグナンジオール−3−グルクロンアミド〕。 6−[エストロン−3−グルクロンアミド]−ヘクサン
(PD3G−1,6(DAH)−E13G)】−〔プレ
グナンジオール−3−グルクロンアミド〕、8−〔エス
トロン−3−/ルクロンアミド〕−オクタン(Pi)3
G−] 、8(DAO)−ffi13G)l−〔プレグ
ナンジオール−3−グルクロンアミド〕。 XO−[エストロン−3−グルクロンアミド]−デカン
(PD3G−1,10(DAD)−E13G)(以下そ
れぞれMSA、 、 MSA、 、 MSA、 、 M
SAIoと略称する) 次のアルキルジアミン%: 8amaraj・@w@P
、およびに*111* A、 E、 (1975年81
oeh*m、 J 151369−576)に記載され
た混合無水物法を用いてE 13 Gで率*換(mon
omubstltut* ) L、た。 1.4−ジアミノブタン 】、6−ジアミツヘキサン 】、8−ジアミノオクタン 】、10−ジアミノデカン 逆相−sp −pak C18カートリッジ(英国デエ
シア、ノーリッジ、ハート7オード、チェスターロード
324のクオータース、リミテッド(Waters L
td、)製)を使用することにより単純なd齋工程が開
発された。 以下に1滅する方法は率首僕スゲロイドダルクロニルア
ルキルジアミンの一般的な一螢方法である。 E 13G (10μmol) +H”E13G (1
0’dpm)乾塘ジメチルフォルムアiド(DMF’)
(400μt)乾礫t−N−ブチルアZン(7,5μt
)インブチルクロロフォルメート(iaobutyle
hlorofarmat@)(4,5pL) 4
青拌、 30分、−10℃L)MF 600μを中のア
ルキルジアミン150μmolK:#加攪拌、 10分
、0℃、 18時闇静置、4 ℃ 水Δ1−冷卯、18時闇靜装、4℃ 水加−添加、CI8カートリッジに充填:幻鴫メタノー
ル水浴tioazで洗浄水ii1+Llで洗浄 1鳴酢嘴を含む(資)噛M・0H1Oa/で洗浄1%酢
酸を含む(資)%M・0H50dでカートリッジを俗離 心4液を水で100−に希釈、倉しいC18カートIJ
ツジに充積 t)、1M炭酸ナトリウムlO−で0c沙水10−で洸
伊 M・OHりOdで浴蟻、乾燥 カートリッジを異る憔性および肯の教壇のメタノール#
!液で況締することKよって不純物は大部分取り除かれ
た。最終残基をT、L、C,Kかけたところ各々の場合
においてかなり純粋な生成物が帰られることが判った。 収率は31嘔〜43鳴であった。 これらの中間生成物はそれ以上精製することなく次段の
王権に移した。 P03Gを混合無水物反応により次の1c13G単置換
アルキルシアiン誘導体に結合させた。 E13G−1,4(DAB) E13G−1,6(DAH) E13G−1,8(DAO) 113G −1、10(DAC) 生成物の分*vg易にするためl叩−pak C18カ
ートリツジを書度用いた。 次に示す方法は第2のステロイドグルクロニド−イ ′4を奉11僕ス101トグルタロニルアルキルシアイ
ンに結合する一般的方法である。 乾燥DMF(200Pt) t−N−ブチルア建ン(4μt) イソブチルクロロフォルメート(3μt)攪拌、:切分
、−10℃ 乾%llDMF500*を中のE13G−アルキルシア
イン4μmolK范加 攪拌、1時間、θ℃
、18時閣靜置、4℃ 水加d添加 18時闇靜装、4℃C18カートリ
ッジに充填 水1(1111jで洗浄 0.1M炭盾ナトリウム中の50憾メタノール1011
7で洗浄 1鴫酢#を含む加傷メタノールxodで洗浄水1(l
mで洗浄 メタノール10 a/で解離 ttL謙 HPLCKより精製 酸素のメタノール俗離液中の生成物の収率は44t6〜
814であった。 T、L、C,はごく漁小の不$1物
を示した。Rf値は予懇した範囲のものであり極性は架
橋の長さく brldg@l@ngth )が減小する
Kつれて増大した。4檎のMSAを高圧液体クロマトグ
ラフィーによりさらに精製した。 C@に@nおよびG−omes (Anal、 L@t
ts、 12 、 pp。 589−602 (1979) )は、放射性配位子の
化学的純度は比活性についての肖該放射性配位子のクロ
マトグラムの連続的分画を横歪すること罠より#j定で
きると報告している。ピークi付近の各分画) の存在を示す。 )IPLcクロマトダラムにおいて、ピーク分画(p@
吐むaetlon )およびピーク分−の両側の2つの
分−についてMSA6の比活性を測定した。各号1dl
lKおける放射能はlOμlを2圓カウントすることに
より決だした。各号−のMSAの買置は、E13GRI
A系およびPD3G R1ム系により、RIA(放射−
兜役債定法)によって決定した。R1ム糸においては僚
分析物と懺単−買との併存は純皺を示す他の漬水方法で
あるので、一連の分画希釈液についてIり足を行った。 各号l1klを5つの(2倍]希釈液について模建し、
各検定を2回行った。 本嘴だの結果を第1表に示す、各号−についての5つの
結果の平均値からの谷標準偏差は1分画+2を除いて、
分画希釈度とは無関係Kがなり一致した結果を示してい
る0分m−2,−1,0゜+1の比活性は計算された誤
差範囲内で一定であった。分画+2は自首な程度に毀る
比活性を示し、そのため調剤から外した。 上d己の結果に@t、て顧著なことは、2橿の異るRI
Aによって計算した比活性が非富に一致していたという
ことである。分画−2,−1,0,+1の平均比活性(
両方のRIAにより決定したもの)i!21.5±3.
9 epm/pmolであった。これKよって以煉の免
疫化学的作業に用いるM8Aは純粋であるとの失調和達
した。 抗Pl)3G固相(8PAP )の、1m幣ウサギ抗血
清はロンドン、ダブリュ1、クリーブランドストリート
のコートールド、インスチチュート、オブ、バイオケン
ストリ(βourtauldInatltut* of
Bioeh*m1stry)Kよって供給された(−
削PGO] /200、採血VI I I ) a コ
(’)抗血清は8dmaranjsswa、Cool@
yおよびに@Ill@の1載(1979年)([プレグ
ナンジオール−5a−グルクロニドの放射−免役検定J
Journal of 8ter@ld Bloch
@m1stry11 1165−1171 )に従い、
ウシ血清アルブミンのアミノ−リシルfiAK対するP
D3Gのカルボキシル基の共有結合を弁してD4幣され
た免疫原に対して作られたものであった。 この抗血清のIgG分画は次のようKFJ411I!、
シた。 担体に対し時異的な抗体な取除くため、抗PD3G抗血
嘴1(111jK対しa断緩鴫液0.4dを鑑別した。 混合物yIl″n℃で3時間インキュベートした恢4℃
で]晩靜直した。生成した沈殿物を遠心分層により取除
きリン#2塩緩備食塩水10117で2回洗浄した。 混合物の上澄み(30,5allj )を4℃まで冷却
し、す/?ノーk (rlvanol ) (tkg−
シアイノ−2−エトキシ乳酸アクリジン0.16N/1
9.5117)の冷却した溶液を攪拌しながらゆっくり
添加した。混合11!Jv2M水酸化ナトリウムでpH
8,4KIi111節した。4℃で屓)分間攪拌を続け
、その間粉末木炭(Norロム)25ayを加えた。 懸濁液を遠心分離Kかけて得た上澄みを0.2μ翼。 使い捨てフィルターカートリッジ(西独ダッセル郵l私
書−4D−5354のシュライヒヤー、ウント、シェル
、グゼルシャフト、Zット、ペシュレ( ンクター、ハフラング(8ehl@ieh@r & 8
ehtll GMIIM)#)を通過させた。さらにプ
ロティンAセファロースアフィニティークロマトグラフ
ィーにより精aを行った。 プロティンAセファロース(シグマ、ケイカル、カンノ
ぐニー、リミテッドlliりを入れた小カラムをリンI
IR虐11嚢賞壌水中で尤鷹し直径15Xjmのベッド
専横とした。抗PD3Gを含む上記濾過液をカラムの上
部に11により絵加し、仄いでりン績塩緩111g賞塩
水200−を加えて納会していないたん白をゲルから取
除いた。 次にプロティンA脱看緩備液7に:逆方向からカラムに
加え、浴11液な合計7Qm収果した。この溶喝したた
ん自分−の−を2M水嘴化す) 17ウムで7、OK調
節した。この浴液についての吸光度測定は純化IgG6
2雫が11!されたことを示した。この抗PD3G浴液
は必要があるまで一70℃で貯蔵した。 5PAP’kaJ!I督するための固相として1イクロ
テストプレート(英18ヘイズリ−、ワシントンロード
、@IJl!私書−あのジブコ、ニーロープ、リミテッ
ド(Glbeo Europ@Ltd、 )製のNu
ne −ImmunoplatsI)’Y便川用た。プ
レートのウェル中の抗体浴液をインキュベートすること
により抗P03Gをウェルに吸増させた。 #震約3μf /at のたん白を得るよ5に抗PD3
G浴液をパルビトン緩備液中でrA!1した。この−震
は、ウェル表面にたん白が高い吸N率で1&看する一万
グチ浴漱として比較的経済的であるように実−によって
決定した。 抗PD3G浴液2ooptを12チャンネルピペ71(
英国アイアンア、アービン、セカンドアベニュー、郵便
部IIF函17のフロー、ラボラトリーズ、リミテッド
(Flow Laboratori@s Ltd、 )
製Tlt*rt@k)を使ってウェル中にピペットで加
えることKよってマイクロテストプレートを抗体でll
[aシた。プラスチックフィルムでウェルv密封し室温
で241#闇靜瞳し1こ、この時間が経過したQ9エル
の内容書をアスピレートし、ウェルを遮断緩衝液で溢れ
させた1次いでウェルなもう一度密封し室温で18時間
靜装した。 I&優に、ウェルの内容書をアスピレートし、ウェルな
蒸溜水で4f洗浄した。谷プレートなll返し、デイシ
ュペーノR−で横ったベンチ向上で数回軽くたたいた。 ウェルに残った水の薄膜は室温で2時間かけてA発させ
た6次いでウェルなプラスチックフィルムでff1lt
し必1!になるまで−18℃で貯蔵した。 抗E13G抗体の梢 ウサギ抗gt3aa渭はロンドン、ダゾリュ1、クリー
ブランドストリートのコートールド、インスチチュート
、オノ、)9イオケミストリによって供給され・ 8a
maraj・ff&およびに・ll量・によって記載さ
れた方法(1975年) (8amaraje*wa
P、およびに@ll量・A、E、(1975)rステロ
イドグルクロニドの放射巌免疫検定、ハプテンとしての
エストロゲンC−3グルクoニドJ Blochsml
eal Journa1月は 369−376 )
によってIJIIEされた。二mm分析物検定の第1次
反応は希釈抗E 13 Gを必要とし、これはさらKm
liiを行うことなく用いられた。 しかし、ペルオキシダーゼ樟陳抗E 13 Gを調整す
るため、抗P03G固相の調整について説明した方法と
同一の方法で、ウシ血清アルジミンおよびリノ々ノール
との処理およびプロティンAセファロースを用いるアフ
ィニティークロマトグラフィーにより、1(lajの抗
血清を分画した。この方法により、抗g 13 Gの純
化IgG分画70ツを優ることができた。 西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP )の梢製西洋ワ
サビベルオキシグーゼ(シグマ、ケミカル、カンフ9ニ
ー、リミテッド1lTypeW、E、C,A1、11.
]、 7.)をコンカナノ9リンA−セファロース(
Concanavalln A −m*phar@a*
バシダマ、ケイカル。 カンパニー、リミテッド製)を用いたアフィニティー、
クロマトグラフィーによって梢羨した。ゲルをtr1s
/HC4II働液で平向し、直径ご×1儂のベッドを作
るようにカラムに充填した。このペルオキシダーゼ8o
僧をtrlm −HC4緩衝液5−に浴かしカラムに加
えた。カラムをtrss/acz25*を用いて1東に
より俗離させた。浴喝図を分光光度計により280 n
mおよび403nmで測定した。 Con −A脱増緩衝液を使用して静−を継続し、さら
[511jが#艦した#A 403/A 2801m+
3.1〜3.5の分−が優られた。これらの分ll1i
を収集しプールして合計18114とした。この中には
推定6411Fのペルオキシダーゼが含まれていた。こ
のペルオキ・ シダーぜをセファクリル8−200 (
(s@phaary18−200)英iミドックス、バ
ウンスロー、プリンス、リージエント、ロードのファー
マシア、リミテッド(Pharmaela Lid、
) #! ) t’用いてゲル1通にさらKnt製した
。セファクリルのゲルk trls/act毅4に液中
で平傭させ、直径72X3.2傷のペッドを作るために
カラムに光種した。ペルオキシダーゼ浴液をカラムに〃
口え、カラムvtrls /HC6を便ってヘッド1.
211で#!離した。カラムを波長280鵡および40
3m111で測定し、11!!喝物240dを収集した
瞳、各号−を約3.3のA 403 /A 2801曲
でm ff1ll L、た、これらの分−をプールし合
計63aljとし1こ。コレはペルオキシダーゼ約57
Infに相嶺する。 この浴液の中55 a(1にとり最終容積511jK濃
縮し。 fa瞳限外濾過エニット(m1eroultra fi
ltrationunit ) (’Am /ロスター
、ストーンハウス、アッパーミルのアミコン、すZテッ
ド(Al11lll!@no LtdJ製Med@l
8MC)によりリン酸堪緩當食塩水に対して透析した。 抗E13G−ペルオキシダーゼ(AEP )の1119
1へテロ21曲拭薬(h@t@robifunctlo
nal reag*nt )としてN−スクシンイミジ
ル3−(2−ピリジルジチオ)フロVオン酸(N −s
uaeinlmidyl 3− (2−pyrldyl
dithlo ) propl@mat@) (8PD
P、ファーマシア、リミテッド製)を使用して、m1l
llしたペルオキシダーゼを梢製した抗me 13 G
に対し共有結合的に付着させた。この試薬を用いる利点
は酵素と酵素および抗体と抗体との間のrw+*複合物
複合酸を防止し5ることである。この賦4I&による反
応機構については詳細に記載した文献がある(ファー1
シア、りンテツドの製品説明書「5pop ヘテロ2
1曲賦礪」 、 またCarlsson J、、Dr*
v1m H,、ムxenK、(1978) Bloch
am、 J、 173723−737 )。 酵素と抗体の双方が8PDPとの別個の反応の結果活性
化した。次いで】つの成分(この場合誘導体トナったベ
ルオキシダーゼ)をジチオトレイトールで還元した0次
いで自由なチオ基v!にするベルオキシダーぜ#s4体
vts導体となった抗体と反工6させ、その結果抗体と
酵素量にジチオール架構(dムthlol brldg
*)を形成させた。*僕の鍵合いを分元光度針で測定す
るため、いずれかの中間生成物を還元することによって
ピリジン−2−チオンの解放を行った。 (資)僧のたん白を含む精製した抗E13G(JL+s
J)の浴液をリンi!12塩緩備負堪水に対して透析し
た。 エタノール0.5d中の50惜モka11度の過剰の8
P口Pを攪拌した抗体浴液にゆっくり〃口えた。この浴
液ン2;1℃で加分間維持した。混合物を合計16のセ
ファデックス(s@phad*x 3 G −25PD
HJ v予め充填したカラム(ファー1シア、リミテ
ッド1ull)K2.5mアリコツトずつ加えることに
より、混合物をゲル濾過した。これらのカラムはリン酸
堪緩衛曳塙水中で予め平向させておいた。fs4体とし
た抗W13Gを同じ緩衝液3.5dを使用して各カラム
から府:心し合ti浦Wllを慢Tこ、抗113Gの置
換はIgG1分子あ1こり2−ピリジル24a化物基1
1個と測定された。 上記と平行して、エタノール0.8d中の5pop(3
2μnaol)溶液を攪拌したペルオキシダーゼ(51
rnfI15d)に)JEIえることによって精製した
ペルオキシダーゼを活性化し、久℃で加分間維持した。 その醗反応混合物′4を砿普限外p通ユニット中でリン
#I堪緩4kjI−塩水に対して邊析した。 −擲体としたペルオキシダーゼを、酢酸塩蝦僑液中で+
関したセファデックスGZ5PDlOの5本のカラム(
谷カラムあたり2.5d)を用いてゲル濾過した。!r
カラムあたり3.5−の緩伽液でたん白をm−し合ii
17.5−を侵た。このペルオキシダーゼ浴液をジチ
オトレイトール135.雫で処理することによって自由
なチオール基を作り、混合1111vX℃で本)分間攪
拌した。 リン酸塩緩備賞を証本で平向させた7個のセファデック
スGδPD 10カートリツジを使って反応混ン 合物をゲル濾過した6各カラムを緩負液j、5aJでて
ll1k終容横5.6dに濃縮し、リン酸塩緩衝食塩水
25114に対して透析した。ペルオキシダーゼ1分子
当りの解放されたピリジン−2−チオンの基数は1.7
と測定され1こ。 この修正したペルオキシダーゼ浴液(5,61aJ )
1kfs導体とした抗E13G浴液(4d)と混合し。 る℃で24時間攪拌した。上記反応の閣KIgG1分子
あたりピリジン−2−チオン1.6す子が解放されたも
のと測定され1こ。 生成複合体を以下に述べるように二車アフィニティーク
ロマトグラフィーにより非腹合ペルオキシダーゼおよび
非煩合抗E13Gから純化した。反応混合′4Ij′4
r:再生コンカナツマリンA−セファロースのカラムに
加えtrls/HC4緩備液136−でf#喝した1次
に書生プロティンA−セファロースカラムを前のカラム
の出口にそれぞれ11列接続し、Co11−A呪看緩備
液を使用してm11Mを継続し、さらに60atを収集
した。 aKコンカナノ々リンA−セファロースのカラムを取外
し、tri・/HC1#備液を使用してプロティンmA
−セファロースのカラムを介して#4雌を続け、さらK
]00d1に侵た。次にこのカラムを通る湧tnを逆に
し、浴喘剤をプロティンA脱着緩衝液Kfえた。頷合物
の溶離は50ILlを収集した後終了しTこ。約0.6
のA 403 /A 280価を有するAEP含有分I
[iII′Jkプールし水酸化ナトリウム希釈液で中性
化し、51JalJKall[j贅した。最elk K
kEP 浴液を0.5dの部分に分け、液化窒素で冷
凍し、−70℃で貯蔵し1こ。 ANP中に含まれる抗体の収率はb8%であり、抗E1
3Gに対するベルオキシダーぜのモル含有率はA 40
2 /A 280蜘で1.6であった。 AEPの最適
作業希釈度は実−により決定した。上記の1lIlI智
は1000倍〜5000i希釈というM益な爽I11範
囲を有している。二m板分析物慣定にとって、複合体を
約2 nM 、すなわちマイクロテストウェルあたり0
.4pmol の作業a度を得るためK AEP調整
物を1500W!に希釈することが好ましい。 次に本発明の二卓僚分析@慣定を実施するための工程に
ついて拌細に説明する。この工程は月経周期尿中のPD
3GIl!1度に対するE13G一度の変化を決定する
1こめの最適の方法に関するものである。 A、第1次反応 1、抗P03Gで被覆したマイクロテストプレートを一
18℃の貯戚から取出し、保護プラスチックフィルムを
外す前に室温で平情させた0%のつ工01する各プレー
ト上で4つのウェルなコントロールウェルt〔指定し、
他の4つのウェルな非番異同結合ウェルに指定した。 2、抗E13G抗血清1kg1次緩衝欲中で3750v
4横とじγこ。コントロールウェルを除くプレート上の
もウェルに対し、この杭E13G浴液の100μtアリ
コツトをピペットで注入した。コントロールウェルには
第1矢緩嚢液の100μtアリコツトをピペットで注入
した。 3、 ml初の尿希釈液または標準試料を試験管また
は12チヤンネル貯R器(英国サセックス、ビリンゲス
バースト、トークスロードのグイナテツク、ラボラトリ
ーズ(Dynat@eh Laboratorl*s
)製)で調整し1こ。f&者を12チヤンネルピペツト
とともに使用した結東試薬と試料をマイクロテストプレ
ートに迅速に移すことがで?!!た。 希釈漱は第1矢緩嚢液中で調整した。希釈度の卸、囲を
ま千申々実験したが、通冨(資)ptの尿または樟4!
浴液を500μtVC希釈した。希釈し1こ試料に対し
4.8 nM MSAaおよび40nM PD3G v
i 1次緩衝液中に含む浴液500 ptを添加した。 この混合物をfi舎ぎ試験管によるかまたは試薬溜めを
少くともJtgl憬り動かすことKJl、つて完全に混
合した。 4、第1次反応は、抗E13G浴液を収容した8PAP
ウエル中にMSAと試料との混合切の100μtアリコ
ツトを卯えることにより開始した。この添加は非を異的
結合ウェルV除く全ウェルに対し行われ1こ、非番異同
結合ウェルにはM1次緩lI液100μtv加えた。試
料およびコントロールウェル中のMSAの*終濃度は1
.2nMであった。試料および非%異的結合つェル中の
抗E 13 Gの最終希釈度は7500倍であった。添
加は好ましくは1分間以内に行われ1こ。ウェルはプラ
スチックフィルムまたはプラスチックの儲で覆い、十床
軌遭シェーカー(flat b@d orbltal
5hak@r )上で室温で1時閣奈とうした。伽とう
速度は1分間240回転、軌道は1.51径が好ましい
。 5、f@1次反16の終りにシェーカーからプレートを
取外し、好ましくは12チヤンネルNune −Imm
uovaah 憤It(フロー、ラボラトリーズ、リミ
テッド製)を用いてfc浄毅備液で洗浄した。この#c
ltによれば、1列121itのウェル1kIWI 1
ili? [洗伊することができる。欠いで合判tアス
ピレートしkf&況#緩貢液で溢れさせた。最後の列を
処理した埃この抗浄工柵をさらに3回(り返した。jl
t畿にウェルの内容物をアスピレートし、プレート全体
を躾返し、ティシュ−ペーパーの束で覆ったペンチ土で
(”1回か強くたたいた。 B、第2次反応 抗E13Gペルオキシダーゼ(AEP ) 複合体の貯
戚浴故を−かし、第2矢緩嚢液で1500倍(2nM)
に希釈した。この浴液の200ptアリコクトvllJ
工mtm、iにマイクロタイタブレート中にピペットで
江人した。プレートをIWJ様に撞い前記と同様KV娘
で1時間損と5した。 第1仄反応のときと同様の方法でウェルを洗浄した。1
こだし4度目の洗浄工種においては、アスピレートおよ
び軽打転線前に合計10分間洸捗液をウェル中に残して
おいた。 C0第3次反応 使用した各プレートにつき第3次反応の開始前加分以内
に次の容積のJ!に實浴液を混合した。 基實浴液A 2(lj 基繊浴gB 200517 i貞浴液C20117 この混合物2u01Jt’l:ピペットで全ウェルに注
入し、プレートを前と同じように再び〜い振と5し1こ
。ただし反16時間はわずか15分間であった。 上記時111経過時にマイクロエリザ・オートリーダー
(Mlero@lima auto read@r )
(ダイナチック、ラボラトリーズ、リミテッド#)ヲ
使用して各ウェルにおける色の変化を測定し1こ。%の
ウェル全部を約100秒間内に読み取れるので酵素反応
を停止りする必要はなかつ1こ。この装置のテストビー
ムノ波長フィルターは570t+mKセットし、基準ビ
ームのe長は405nm にセットした。また未処理の
マイクロテストプレート中にピペット注入してあった基
貞混合@ 200μtに対しこの装置を使用するlII
mrtcvit直をゼロにセットしておいた。 上記反応の41!を来は狽製された試料に対する平均吸
光度(A 570 nm)の示度として表わされ一通富
コントロールウエルの十X4 A 570 nm の自
分単にf懐された。 月 年経周期尿においてE13bは1(1〜400 nMで
あり、排卵前のE 13 Gの変動を償却するための臨
界範囲は加〜1100nである。P03Gは月経周期尿
中で遡$100〜50.000 nM の範囲であり、
妊娠aJ舵期闇の終了を+IN知するための臨界濃度は
1000〜4000 nMである。 本慣定系は、画ステロイドの相対1111fK大きな走
があるKもかかわらず、月経周期尿中に検出される両ス
テロイドの各#度に同時に応答しうるように岐通化され
ている。また上記の臨界範囲内において、4:dIN出
系は、所定の尿希釈度(または希釈範囲)において実施
された場合は、0602〜0.1のE13G/PD3G
モル比変化に敢大@に応答し5るように設計されている
。 これは二lL被分IIT物検定の投与量一応答時性を横
置することによって達成された。E13GおよびP03
Gの標準浴液を生壇学的範囲に対応して第1(′に械債
漱中でalt4幣し、P03G標準浴液を除いては慣電
工橿にしたかい試験した。P03G標準酒液は第1次緩
fi+液中で抗E13Gの存在しない状態で試験した1
次の事項に対するこれら標準浴液の影響を決定するため
多数の変数を調査した。 ta+ ゼロ・ステロイド標準と最高ステロイドII
IIi度との閣の信号強震(吸光度)の変化 lbl Lb答の8/N比 (・)各投与量一応答開−の相対的傾斜(吸光匿対10
f投与量としてプロットしたもの)ldl 10
f投与賃軸に対するPD3G投与量一応答曲、tMの位
置と比較したE13G投与電一応答1−のioy投与量
軸に対する位置 調査したfaのい(つかは次のとおりである。 1 ) d : E 13 G s分とPO3Gm分と
の間の異なる架#4長さの影響 二電被分析物慣定の工程に従い(抗E13Gの不存在を
除() M8A4、M8A6、M8A8、M8Aわを濃
度範囲0.2〜l(J 11Mにおいてテストした。M
8A@は8PAPに対するAEPの最高の結合を示した
(第2図)、M8A4は結合が28〜46鳴低く、まy
、−M8A。 とMSム1゜は廊A、が示した結合のlO暢以下であつ
た。M8Aの2つのステロイド基の闇の乗積の長さは明
らかに決定的であった。メチレン炭素611i11より
も短い条横の長さはM8AK対する5PAPとAEP収
万の1ffJ時Wi台を市11限する。−万メチレン炭
素611alより侵い乗積の擾さは架慣がそれ自身を折
りたたむのに元号であり、これまた8PAPとAEPの
同時結合を立体的に妨げる。したがってへキサメチレン
装備を有するMsA、は二W4jk分析物検定にとって
好ましい試薬として選択された。 2) Ml嬶0)mt M8A、all範囲0.2〜加nM についてP03
G投与敏一応答特性を―べ1こ、、すべての1庫がPD
3GII#度と信号強震との間には反比例関係があるこ
とをホした。それらはすべてPD3Gの/a度がθ〜l
OnMにおいてAEP結台が少し下降する高原吠標であ
り、PD3G濃震がlO〜11000nの閣で直線的に
(10)直線プロットにおいて)下降する時性を有して
いる。2 nM以下のM8A一度はもつとも狗、な勾配
、すなわちより応答性の高い系であることをボし1こ。 しかし1 nM以下のM8111mにおいては信号Il
i!1度は全体に諷少することが観測された。 まy:同様のMs*Il#[#囲についてK13G投与
量一応答時性を調べた。この場合はI 13 G II
I嵐と吸光度示度との闇に直接の関係が示された。この
場合も谷曲巌の位置は&118AIJIFjLにはとん
ど影響されない、もつとも急峻なしたがってもつとも応
答性の良い曲ms囲は1〜10 wsM E 13 G
にあった。しかしI mM未満のMSAall嵐におい
ては、勾配はよりゆるやかKなつf、ニー、 1.2y
sMv碩えるM8ム111fにおいては曲−のS/N比
が感化した。したがってM8A、 a度]、2nM が
この試薬の好ましい濃度である。 3)筑」Jム[化九良 E13G抗血清については、それが第1次反応における
試薬として添加される#に、最適の希釈度V実験的に決
足しなければならない、第1次反応における[終希釈度
として抗113 Gは5,000倍〜25.000 %
の範囲で希釈した。K13G投与量一応答時性を多くの
抗E13G希釈液について調べた。 抗E13Gの希釈液が増加するにつれて、K13G投与
量−16答曲巌の位置は丘へ移動した。すなわちより低
いE130m度に対し応答性が増大した。 しかし、この効果は18130#IJj変化に対する信
号傾板の変化が減小すること罠より打消された。また8
/N比も感化した。最適のK13G投与量一応答t#性
四−は抗E 13 Gの7500 %希釈液において優
られた。 二][被分析物検定の工程に従いある範囲のE13Gお
よびPD3G樟準浴液をテストした。その結果潜られた
投与量一応答曲線を+@3図に示す、各自−のもつとも
急峻な領域は、生理学的にxl!なE13G/PD3G
比範囲に対し良い応答を許容し5る程度に光分啜れてい
る。 たとえば1月経周期尿を5倍希釈尿でテストしたとする
と、初期卵胞期のE 130 ml Qj (al n
M )はE13G[11−の下層で0.8 nM付近に
ある。しかし醗期卵胞期の上昇するE 13 G +1
111鍵は、K13G曲−のもつとも急峻な領域におい
て約4 nM Kあるので容易に検出しうるであろう。 逆に卵胞期の闇1000 nM* タハソtL以下0)
PD3Gill&&’!m k 約40憾Jf!4I
fLの1N号強賞減小を生じるにすぎない、しかし月−
周期の政体中期までK PD3Galfは信号を約70
鴫減小させ、初期卵胞期に@側された吸光度のtjJK
近ずく。 月経周期中のE13G/PDaG比の変化を反映する二
慮被分析物横定の投与量一応答特性をシはユレートする
ため、E13G襟単浴液およびPD3GIII準浴液の
マトリックスを作り標準工種でテストした。 第4図は、低PDBGIl共(40aM)の存在下にお
けるE13G投与1一応答−mを示す、このvK聾はた
とえば25倍希釈尿試料について卵胞期において光分存
在しうるものである。生理学的ベースラインV表す0.
02以下の些12G/PD3G置はすべて曲−の底のお
?−むね、平坦な領域にある。典型的な排卵前のエスト
ロゲン変化の関に@側される0、Q3以上の11はすべ
てE 13 G投与量一応答画一のもつとも、甑峻な韻
域にあり、しTこがって容易に検出しうる。 第2の曲−は^E 13 Ci 61度の存在下におい
てP03G棲度が増加する場合を示す、この[1は月経
周期中の黄体期において存在しうるものである。 PO2(4[が10倍増加すると4F!r号はほとんど
初期卵胞期の埴Kまで減小する。 rsIIt比を決定すること罠よって優られる利点は。 Wi果が容積の大小に無関係であること、すなわち結果
が試料の希釈度に無関係であることである。 二市被分析物恢定の場合は、投与量一応答画一の応答範
囲はほとんど1桁の大きさ以上のものではないので、結
果は試料の希釈度にまったく無関係ではない。しかし、
ある限界を超えると二重11分析物検定は試料の希釈度
に対しては相当に寛容である。E13GとP03Gの各
標準溶液は月経周期尿の典嘲的なa健を表す0.02と
0.2の間の4つの比率を与えるようにfJ#幣した。 これらの標準浴液な5%、10倍、5倍および33WI
の各希釈度について二事破分析物慣定によってテストし
た。その結果を次にボす。 Q、L12 22.2 ±2.
20.04 28.5±1.10.
12 36.2±3.4 0.2 43.9±6.0 検定の試料希釈度九対する許容度は尿容積を作る際の1
こいていのバラツキに対処しうるだけの幅を光分に有し
ている。 本二重被分析物検定は多数周期にわたる月経周期にわた
るE 13 G / PDSG比における相対変化な観
測するために1史用された。この期間中尿試料は毎日テ
ストした。典型的な周期中の結果を第5図に示す。この
グラフはコントロールウェル吸″yt、fに対する吸光
度対周期の各月についてプロットしたものである。この
慣査対凌は排卵時を決定するためウルトラソノグラフィ
(altramonography ) Kよっても観
測し1こ。ウルトラソノグラフィは1日1度行われたの
で、この場合は24時間の不確実さがあり、これはグラ
フ土岐の破−で示した。 周期を通じての吸光駿の形状は、排卵時直噴の4日間に
わたり明確な急上昇をボしている。それは排卵の1日前
にピークに遅している。吸光度は落ち込んでいる。初期
卵W&期疋おいては小さなピークがあるが、これは普通
のことであり卵胞活動を表すものである。しかし、大き
なピークは一期を支配し、妊娠町11期間の決定と排卵
時の接近の予想よ#J確な指憚を提供する。 第6I3v、lは本二l[被分析物検定を用いて合計1
7の月経周期の闇毎日w、試料を測定した結果を示す。 第6区1において −横出灯壕の月経周期の開始を示す。 〉 構出対象の月経S期の終了を示す。 ○ 構出対象のJk#体温の上昇が観測された日を示
す。 U 排卵時がウルトラソノグラフィーにヨリ測定され
た周期を示す。2本の縦の平行な破線によって下″を瀕
時間の期間中卵胞破裂が起った。 8 ;!(42体銀が上昇した日により排卵時が測
定された周期を示す。これは贅の点線によって示す日に
起った。 吸光度の上昇した櫃が11!醐された日を強−するため
に相対吸光度の任意のしきい厘が選ばれた(コントロー
ルウェルに対シ35鴫)。 17人の債出対象全織について排卵日またはその数日1
!II(8日前まで)K吸光麗はこのしきい11を超え
た。またほとんどの構出対象について排卵後2日醗迄忙
しきい種以上の1婦が曖陶された。黄体期または初期卵
胞期の閣はしきいtilt’超えることはなかった。 これらの結果は、本二1被分析物横定により作られる9
1号のしきい値はすべての月経周期尿に普遍的な*KI
4ぶことができることを示している。 したがって不二東仮分析物検定は、女性が月経周期中の
妊娠OTD勘開にあるか否かを示すイ看ス・ノー型テス
トの基礎を形成するものである。
子分子は架WI4支持分子1に片して不ciJ逆的に結
合した少くとも1分子のエストロン−3−グルクロニド
と少くと41分子のプレグナンジオール−3−グルクロ
ニドをよむ。 配位子分子は好ましくは次の式のものである。 HOH また本発明は本発明の倹定または上記の方法を実施する
ための試薬キットを提供する。このため。 第1の抗体と、第2の抗体と配位子分子とを別々に備え
る試薬キットが提供される。また第1の抗体と第2の抗
体との混合物とそれとは別個の配位子分子とを備える試
薬キットが提供される。 本発明は、さらに、架横支愕分子を介して不可逆的に結
合した2つの異る抗原響を含み、との架慟−f:待分子
は2つの反応性1”能基を自する有機化合物から優られ
る21曲の基である。この21曲の1としては炭素原子
2−10v有するアルキル、炭素原子2−1Oを有する
アルケン、炭素原子2−1Oを有するアルキンまたはフ
エニールジアルキルヲ用いることができる。好ましくは
2i0tiの基は一般式%式%) (ただしRは−NH,、ハロゲンまたは−O−CO−ア
ルキル、hは2〜10 )の化合物から優られる。Rは
一洲、であることが・好ましく、1は6であることが好
ましい、最も好ましい配位子分子は次式のものである。 本発明の試薬系は、2価の配位子の一部を含むたん1實
性の支持分子のかわりに2つの反応性官舵基v有する有
機化合物から優られる簡単な条横ゲ待シナ子を用いるこ
とにより、英1籍許G藤第2029011B号に記載さ
れた試薬系に内在する限界を克服することができる。1
井連するステロイド中間代l!llt物(実馬例におい
てはエストロン−3−グルクロニドおよびプレグナンジ
オール−3−グルクロニド)は化学的にこのような架4
9119分子に何着させて、以涜[混合ステロイド抗原
]または「M8AJと称する配位子分子を形成させるこ
とができる。過当な架4111叉侍分子の1例はたとえ
ば1.6−ジアンノヘキサン等のアルキルジアミンであ
る。このような合成支持分子を用いる混合ステロイド抗
原は多価免疫複合体を形成する#I@ −がより少く、
系中に不純物として存在する抗体KR−fる兇役学的ア
フィニティーは無視しうる′ljA度のものである。 本発明の方法は複数の抗yA装置の中で一般により低い
レベルのものを考[K入れる(実施例ではエストロン−
3−プルクロニドフ。低m度の抗原m電に対する本方法
の感度を比例的に増大する必要があることが判明した。 これは問題の抗jllL浴質に対する抗体と複合しよう
とするM8ムと当該抗原との真に−や的な反応を考慮す
ることKよって達成された。英1f1i特許GB第20
29011B号記載の方法においては、真の競争が開始
しうる以前に抗体とM8Aとの間に杉成された免役複合
体を解畷することが必要である。 いずれかの抗体KW1合するためKM8ムが試料と競争
しなければならないように試薬系の成分な添加すると、
より感度の良い検定を行えることが判った。 以下に記載の実施例においては、上記の試薬系と方法は
、月経周期中で尿中のプレグナンジオール−3−/ル3
y o二)’に’Rf6エストロンー3−グルクロニド
の一度比が上昇する1日または豪数日を決定するために
用いられるニジたがって月経周期中毎日尿を横置すれば
、妊娠aT能期閣の開始。 継続期間および終fを示すことができる。さらK。 この−腋比は排卵日頃にビーク櫨に達するので。 ピークtllケ測定することにより受精町乾性が最大の
時を示すことができる。 以Fm何図面を参照して本発明の試薬系および二III
破分析vI検定を砕細に説明する。 第1図は本発明の試薬系および二重鎖分析物検定の1実
施例を模式的に示す、なお図中以下の記号な用いる。 \\、 ステロイド中間代謝物(エストロン−3−グル
クロニド) \ ステロイド中間代−物(プレグナンジオール−3−
グルクロニド) 一〇−混合ステロイド抗原 第1図には2つの抗原浴寅の#gの4つの檎限例が示さ
れている。 1)エストロン−3−グルクロニド(1:/3G)df
l&、プレグナンジオール−3−グルクロニド(PD3
G)一度低・ これは月経周期の中排卵周辺期関の状−を表しており、
したがって%に関心のある吠轢である。 尿の試料をとり、必要に応じ希釈した瞳、エストロン−
3−グルクロニドとプレグナンジオール−3−グルクロ
ニドの双方の抗原決定基を有する混合ステロイド抗原を
含む緩備浴8に添加する。次いでこの抗原混合物を溶液
中のエストロン−3−抗原上に存在する複数の抗原は各
自の対応する抗体に結合すべく抗原被分析物と競争する
。この場合試料中のエストロン−3−グルクロニドは比
較的高い濃度であるためエストロン−3−グルクロニド
に対する抗体の大部分は被分析物KM合し、混合ステロ
イド抗原はエストロン−3−グルクロニドに対応する自
由な抗原なMしたまへ同相に何増する。 緩責液による洗伊(必漠ではない)およびエストロン−
3−グルクロニドに対する標識を何した抗体を加えてイ
ンキュベーションを行うと、標識を何した抗体は同相に
会合し固相において検知することができる。 鹸) エストロン−3−グルクロニl’(E13G)
Ill廣低、グレダナンジオールー3−グルクロニド(
1’03G ) ti11度低・ この場合は月経周期中の初期卵抱期を表す。テストエ楊
は上記l)と同一であるが、821図に示すように、尿
中のエストロン−3−グルクロニドの駿は混合ステロイ
ド抗原と有意な程度に競争するには不光分であるため、
なんらの信号も発生しない。その#東、*終的に固相に
結合する混合ステロイド抗原上のエストロン−3−グル
クロニドの会合を妨げられ、信号は発生しない。 111)エストロン−3−グルクロニド(gMG)ll
llfi& グレダナンジオールー3−グルクロニド(
PD3G)my高。 この場合は月経周期中の黄体中期の状轢を表す。 テスト工程は上記と同一であるが、図示のように、混合
ステロイド抗原は、尿中のスy″ロイド中間代−物の製
置が高いためにプレグチンジオール−3−グルクロニド
抗捧およびエストロン−3−グルクロニド抗体のいずれ
とも有意な程fに会合することができす、信号は発生し
ない。その結果混合スデロイド抗原分子の大部分は固相
KW1合することなく1liI#IRを付した抗体との
インキユベーシヨンの#に洗い流されてしまう。 〜)エストロン−3−グルクロニド(E13G)lII
屓低、プレグナンジオール−3−グルクロニド(PD3
G)Ilf高。 シ この場合プレグナンヂ峠オールー3−グルクロニドの*
iは1甑な程度に比較的高いので混合ステロイド抗原の
同相との会合は妨げられ、したがって信号は発生しない
。 次に試薬系の檀々の成分の1I4IIkと特性について
説明する。 他に%配しない限り、1と学品と浴媒はすべて英1th
lドーセット、ツールのビー、ディー、エイチ、ケミカ
ルズ、リミテッド(8D HCh*ml@als Li
d、)から入手したものである。緩衝液はすべ【蒸溜水
中でPJ4整した。 づAヱ! パルビトンナトリウA (8odlam 1larbl
ton@)を0.1%(豐/ν)アジ化ナトリウムとと
4KtM!a m 0.07 M K調整した。最終容
積にvI4帯する前にこの溶液の−を濃塩酸で8.4に
調節した。 週断緩備液 迩1ily緩債液は0.1M塩化ナトリウムおよび0.
1MリンIL塩(11,53P/を無水リン酸水素第2
ナトリウムおよび2.25f/を無水リン酸第2水素ナ
トリウムから調整したもの)を含む。ウシ血清アルブミ
ン(グレードV、英国ドーセットプール、ファンシーロ
ードのシグマ、ケミカル、カンノ臂ニー(S igrn
* Chsmleal Co、 )をこの#液に浴かし
製繊5憾(*/VJとした。 洗浄緩衝液 0.1M塩化ナトリウム、0.01 M EDTAおよ
び0.01Mリン酸塩(1,1537/4無水リン酸水
素第2ナトIJウムおよび0.225 jIP/ を無
水リン酸第2水素ナトリウムからなる)を含む浴液ヲu
411シた。この浴液1tごとにa−シタノールlQd
および7v@aa−加(簡@)0.2MJを添加した。 こうしてできた況浄緩lll1液をよく躯って、濃塩酸
でpH7,5に調節したー Trls −HCI緩曽液 0.02M trla (Trismm ペース、英
国ビーセット。 プール、ファンシーロード、シグマ、ケミカル、カンパ
ニー)および0.5M堰化ナトリウム1含む浴液’I!
f 4441しall tag 峡でpH7,4にal
lllした。 g a p gygk液 LIO1IM塩化ナトリウム、0.01M EDTA
および0.1Mリン酸埴(11,53jl/j無水リン
酸水率、第2ナト17ウムおよび2.25?/jりン酸
第2水素ナトリウム)を含む浴液を調整し、−塩酸で肯
を7.0に調節した。浴液1tごとに無水エタノール(
A。 R,グレード)/751dおよびTw@n −′d5J
O,2Mを重加した。 1次緩負液 ウシ血清アルブミン(グレードV、英1ドーセット、プ
ール、ファンシーロードのシグマ、ケ1typb、f)
yノそニー)VE8PE綾僑液に浴かして24(w/マ
)浴液にすることによって1次緩衝液をA幣した。 2次緩衝液 1”j−グレードのウシ血清アルブミンをに8P)4備
漱に浴かすことKよってf#度0.2%(v/マ)とす
ることによって2次緩衝液を調整した。 −J!i電浴液A 蟇両浴液Aは0.01Mジメチルアンノ安息香酸(梃1
ドーセット、ギリンガム、ニューロード、ジ、オールド
、ブリックヤードのアルドリッチ、ケンカル、カンノ”
二= (Aldrleh Chsmleal Co、)
)。 0.1M硫酸アンモニウム、0.01M EDTAお
よび2水木ナトリウム)からなる。この$118の一ヲ
2M水酸化ナトリウムで6.0に調節した。最喰に溶g
1tにつきn−ブタノール10 d ’l’ l1ti
加した。 基j[浴液B 3に電解液Bは0.02M 3−メチル−2−ペンゾ
チアゾリニンヒドラゾンヒドロクロリド(3−raat
hyl −2−bsnmothlazollnlne
hydramon@ hydr*ehlorlds
(アルドリッチ、ケンカル、カンパニー、り建テッド#
]の水浴喉からなるものであった。 1實#lC 1實浴液Cは(資)憾過酸化水素を水で希釈して】プロ
ティンA (prot@in A )脱着緩衝液は0.
15M堪化す) 17ウムおよび0.58鳴(マ/マ)
酢酸からなるものであった。 Con −A脱漕緩自液 Cow −A脱層酸備液は〒rls/HCj緩憾液中の
カンパニー#)からなるものであった。 酢酸塩緩備液 これは0.1M酢酸す) IJウムおよび0.1M堪化
す) IJウムからなり、塩酸で1.1H4,5に調整
した。 去乙菫皇臘勇スll リンm堪緩伽食塩水は0.1 M塩化ナト17ウムおよ
び0,1Mリン酸堪(11,53jf/を無水リン酸水
素) 第2ナトリウムおよび2.2Sf/を無水リン酸
水素第2ナトリウムl含むもので、pH7,5に調節し
た。 櫨々の混合ステロイド抗原(MSA)化合物の1ill
整次に各M8Aをg4!Iシた。 1−〔プレグナンジオール−3−グルクロンアミド〕、
4−〔エストロン−3−グルクロンアミドローフタン(
PD3G−1,4(DAB)−1i:13G)1−〔プ
レグナンジオール−3−グルクロンアミド〕。 6−[エストロン−3−グルクロンアミド]−ヘクサン
(PD3G−1,6(DAH)−E13G)】−〔プレ
グナンジオール−3−グルクロンアミド〕、8−〔エス
トロン−3−/ルクロンアミド〕−オクタン(Pi)3
G−] 、8(DAO)−ffi13G)l−〔プレグ
ナンジオール−3−グルクロンアミド〕。 XO−[エストロン−3−グルクロンアミド]−デカン
(PD3G−1,10(DAD)−E13G)(以下そ
れぞれMSA、 、 MSA、 、 MSA、 、 M
SAIoと略称する) 次のアルキルジアミン%: 8amaraj・@w@P
、およびに*111* A、 E、 (1975年81
oeh*m、 J 151369−576)に記載され
た混合無水物法を用いてE 13 Gで率*換(mon
omubstltut* ) L、た。 1.4−ジアミノブタン 】、6−ジアミツヘキサン 】、8−ジアミノオクタン 】、10−ジアミノデカン 逆相−sp −pak C18カートリッジ(英国デエ
シア、ノーリッジ、ハート7オード、チェスターロード
324のクオータース、リミテッド(Waters L
td、)製)を使用することにより単純なd齋工程が開
発された。 以下に1滅する方法は率首僕スゲロイドダルクロニルア
ルキルジアミンの一般的な一螢方法である。 E 13G (10μmol) +H”E13G (1
0’dpm)乾塘ジメチルフォルムアiド(DMF’)
(400μt)乾礫t−N−ブチルアZン(7,5μt
)インブチルクロロフォルメート(iaobutyle
hlorofarmat@)(4,5pL) 4
青拌、 30分、−10℃L)MF 600μを中のア
ルキルジアミン150μmolK:#加攪拌、 10分
、0℃、 18時闇静置、4 ℃ 水Δ1−冷卯、18時闇靜装、4℃ 水加−添加、CI8カートリッジに充填:幻鴫メタノー
ル水浴tioazで洗浄水ii1+Llで洗浄 1鳴酢嘴を含む(資)噛M・0H1Oa/で洗浄1%酢
酸を含む(資)%M・0H50dでカートリッジを俗離 心4液を水で100−に希釈、倉しいC18カートIJ
ツジに充積 t)、1M炭酸ナトリウムlO−で0c沙水10−で洸
伊 M・OHりOdで浴蟻、乾燥 カートリッジを異る憔性および肯の教壇のメタノール#
!液で況締することKよって不純物は大部分取り除かれ
た。最終残基をT、L、C,Kかけたところ各々の場合
においてかなり純粋な生成物が帰られることが判った。 収率は31嘔〜43鳴であった。 これらの中間生成物はそれ以上精製することなく次段の
王権に移した。 P03Gを混合無水物反応により次の1c13G単置換
アルキルシアiン誘導体に結合させた。 E13G−1,4(DAB) E13G−1,6(DAH) E13G−1,8(DAO) 113G −1、10(DAC) 生成物の分*vg易にするためl叩−pak C18カ
ートリツジを書度用いた。 次に示す方法は第2のステロイドグルクロニド−イ ′4を奉11僕ス101トグルタロニルアルキルシアイ
ンに結合する一般的方法である。 乾燥DMF(200Pt) t−N−ブチルア建ン(4μt) イソブチルクロロフォルメート(3μt)攪拌、:切分
、−10℃ 乾%llDMF500*を中のE13G−アルキルシア
イン4μmolK范加 攪拌、1時間、θ℃
、18時閣靜置、4℃ 水加d添加 18時闇靜装、4℃C18カートリ
ッジに充填 水1(1111jで洗浄 0.1M炭盾ナトリウム中の50憾メタノール1011
7で洗浄 1鴫酢#を含む加傷メタノールxodで洗浄水1(l
mで洗浄 メタノール10 a/で解離 ttL謙 HPLCKより精製 酸素のメタノール俗離液中の生成物の収率は44t6〜
814であった。 T、L、C,はごく漁小の不$1物
を示した。Rf値は予懇した範囲のものであり極性は架
橋の長さく brldg@l@ngth )が減小する
Kつれて増大した。4檎のMSAを高圧液体クロマトグ
ラフィーによりさらに精製した。 C@に@nおよびG−omes (Anal、 L@t
ts、 12 、 pp。 589−602 (1979) )は、放射性配位子の
化学的純度は比活性についての肖該放射性配位子のクロ
マトグラムの連続的分画を横歪すること罠より#j定で
きると報告している。ピークi付近の各分画) の存在を示す。 )IPLcクロマトダラムにおいて、ピーク分画(p@
吐むaetlon )およびピーク分−の両側の2つの
分−についてMSA6の比活性を測定した。各号1dl
lKおける放射能はlOμlを2圓カウントすることに
より決だした。各号−のMSAの買置は、E13GRI
A系およびPD3G R1ム系により、RIA(放射−
兜役債定法)によって決定した。R1ム糸においては僚
分析物と懺単−買との併存は純皺を示す他の漬水方法で
あるので、一連の分画希釈液についてIり足を行った。 各号l1klを5つの(2倍]希釈液について模建し、
各検定を2回行った。 本嘴だの結果を第1表に示す、各号−についての5つの
結果の平均値からの谷標準偏差は1分画+2を除いて、
分画希釈度とは無関係Kがなり一致した結果を示してい
る0分m−2,−1,0゜+1の比活性は計算された誤
差範囲内で一定であった。分画+2は自首な程度に毀る
比活性を示し、そのため調剤から外した。 上d己の結果に@t、て顧著なことは、2橿の異るRI
Aによって計算した比活性が非富に一致していたという
ことである。分画−2,−1,0,+1の平均比活性(
両方のRIAにより決定したもの)i!21.5±3.
9 epm/pmolであった。これKよって以煉の免
疫化学的作業に用いるM8Aは純粋であるとの失調和達
した。 抗Pl)3G固相(8PAP )の、1m幣ウサギ抗血
清はロンドン、ダブリュ1、クリーブランドストリート
のコートールド、インスチチュート、オブ、バイオケン
ストリ(βourtauldInatltut* of
Bioeh*m1stry)Kよって供給された(−
削PGO] /200、採血VI I I ) a コ
(’)抗血清は8dmaranjsswa、Cool@
yおよびに@Ill@の1載(1979年)([プレグ
ナンジオール−5a−グルクロニドの放射−免役検定J
Journal of 8ter@ld Bloch
@m1stry11 1165−1171 )に従い、
ウシ血清アルブミンのアミノ−リシルfiAK対するP
D3Gのカルボキシル基の共有結合を弁してD4幣され
た免疫原に対して作られたものであった。 この抗血清のIgG分画は次のようKFJ411I!、
シた。 担体に対し時異的な抗体な取除くため、抗PD3G抗血
嘴1(111jK対しa断緩鴫液0.4dを鑑別した。 混合物yIl″n℃で3時間インキュベートした恢4℃
で]晩靜直した。生成した沈殿物を遠心分層により取除
きリン#2塩緩備食塩水10117で2回洗浄した。 混合物の上澄み(30,5allj )を4℃まで冷却
し、す/?ノーk (rlvanol ) (tkg−
シアイノ−2−エトキシ乳酸アクリジン0.16N/1
9.5117)の冷却した溶液を攪拌しながらゆっくり
添加した。混合11!Jv2M水酸化ナトリウムでpH
8,4KIi111節した。4℃で屓)分間攪拌を続け
、その間粉末木炭(Norロム)25ayを加えた。 懸濁液を遠心分離Kかけて得た上澄みを0.2μ翼。 使い捨てフィルターカートリッジ(西独ダッセル郵l私
書−4D−5354のシュライヒヤー、ウント、シェル
、グゼルシャフト、Zット、ペシュレ( ンクター、ハフラング(8ehl@ieh@r & 8
ehtll GMIIM)#)を通過させた。さらにプ
ロティンAセファロースアフィニティークロマトグラフ
ィーにより精aを行った。 プロティンAセファロース(シグマ、ケイカル、カンノ
ぐニー、リミテッドlliりを入れた小カラムをリンI
IR虐11嚢賞壌水中で尤鷹し直径15Xjmのベッド
専横とした。抗PD3Gを含む上記濾過液をカラムの上
部に11により絵加し、仄いでりン績塩緩111g賞塩
水200−を加えて納会していないたん白をゲルから取
除いた。 次にプロティンA脱看緩備液7に:逆方向からカラムに
加え、浴11液な合計7Qm収果した。この溶喝したた
ん自分−の−を2M水嘴化す) 17ウムで7、OK調
節した。この浴液についての吸光度測定は純化IgG6
2雫が11!されたことを示した。この抗PD3G浴液
は必要があるまで一70℃で貯蔵した。 5PAP’kaJ!I督するための固相として1イクロ
テストプレート(英18ヘイズリ−、ワシントンロード
、@IJl!私書−あのジブコ、ニーロープ、リミテッ
ド(Glbeo Europ@Ltd、 )製のNu
ne −ImmunoplatsI)’Y便川用た。プ
レートのウェル中の抗体浴液をインキュベートすること
により抗P03Gをウェルに吸増させた。 #震約3μf /at のたん白を得るよ5に抗PD3
G浴液をパルビトン緩備液中でrA!1した。この−震
は、ウェル表面にたん白が高い吸N率で1&看する一万
グチ浴漱として比較的経済的であるように実−によって
決定した。 抗PD3G浴液2ooptを12チャンネルピペ71(
英国アイアンア、アービン、セカンドアベニュー、郵便
部IIF函17のフロー、ラボラトリーズ、リミテッド
(Flow Laboratori@s Ltd、 )
製Tlt*rt@k)を使ってウェル中にピペットで加
えることKよってマイクロテストプレートを抗体でll
[aシた。プラスチックフィルムでウェルv密封し室温
で241#闇靜瞳し1こ、この時間が経過したQ9エル
の内容書をアスピレートし、ウェルを遮断緩衝液で溢れ
させた1次いでウェルなもう一度密封し室温で18時間
靜装した。 I&優に、ウェルの内容書をアスピレートし、ウェルな
蒸溜水で4f洗浄した。谷プレートなll返し、デイシ
ュペーノR−で横ったベンチ向上で数回軽くたたいた。 ウェルに残った水の薄膜は室温で2時間かけてA発させ
た6次いでウェルなプラスチックフィルムでff1lt
し必1!になるまで−18℃で貯蔵した。 抗E13G抗体の梢 ウサギ抗gt3aa渭はロンドン、ダゾリュ1、クリー
ブランドストリートのコートールド、インスチチュート
、オノ、)9イオケミストリによって供給され・ 8a
maraj・ff&およびに・ll量・によって記載さ
れた方法(1975年) (8amaraje*wa
P、およびに@ll量・A、E、(1975)rステロ
イドグルクロニドの放射巌免疫検定、ハプテンとしての
エストロゲンC−3グルクoニドJ Blochsml
eal Journa1月は 369−376 )
によってIJIIEされた。二mm分析物検定の第1次
反応は希釈抗E 13 Gを必要とし、これはさらKm
liiを行うことなく用いられた。 しかし、ペルオキシダーゼ樟陳抗E 13 Gを調整す
るため、抗P03G固相の調整について説明した方法と
同一の方法で、ウシ血清アルジミンおよびリノ々ノール
との処理およびプロティンAセファロースを用いるアフ
ィニティークロマトグラフィーにより、1(lajの抗
血清を分画した。この方法により、抗g 13 Gの純
化IgG分画70ツを優ることができた。 西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP )の梢製西洋ワ
サビベルオキシグーゼ(シグマ、ケミカル、カンフ9ニ
ー、リミテッド1lTypeW、E、C,A1、11.
]、 7.)をコンカナノ9リンA−セファロース(
Concanavalln A −m*phar@a*
バシダマ、ケイカル。 カンパニー、リミテッド製)を用いたアフィニティー、
クロマトグラフィーによって梢羨した。ゲルをtr1s
/HC4II働液で平向し、直径ご×1儂のベッドを作
るようにカラムに充填した。このペルオキシダーゼ8o
僧をtrlm −HC4緩衝液5−に浴かしカラムに加
えた。カラムをtrss/acz25*を用いて1東に
より俗離させた。浴喝図を分光光度計により280 n
mおよび403nmで測定した。 Con −A脱増緩衝液を使用して静−を継続し、さら
[511jが#艦した#A 403/A 2801m+
3.1〜3.5の分−が優られた。これらの分ll1i
を収集しプールして合計18114とした。この中には
推定6411Fのペルオキシダーゼが含まれていた。こ
のペルオキ・ シダーぜをセファクリル8−200 (
(s@phaary18−200)英iミドックス、バ
ウンスロー、プリンス、リージエント、ロードのファー
マシア、リミテッド(Pharmaela Lid、
) #! ) t’用いてゲル1通にさらKnt製した
。セファクリルのゲルk trls/act毅4に液中
で平傭させ、直径72X3.2傷のペッドを作るために
カラムに光種した。ペルオキシダーゼ浴液をカラムに〃
口え、カラムvtrls /HC6を便ってヘッド1.
211で#!離した。カラムを波長280鵡および40
3m111で測定し、11!!喝物240dを収集した
瞳、各号−を約3.3のA 403 /A 2801曲
でm ff1ll L、た、これらの分−をプールし合
計63aljとし1こ。コレはペルオキシダーゼ約57
Infに相嶺する。 この浴液の中55 a(1にとり最終容積511jK濃
縮し。 fa瞳限外濾過エニット(m1eroultra fi
ltrationunit ) (’Am /ロスター
、ストーンハウス、アッパーミルのアミコン、すZテッ
ド(Al11lll!@no LtdJ製Med@l
8MC)によりリン酸堪緩當食塩水に対して透析した。 抗E13G−ペルオキシダーゼ(AEP )の1119
1へテロ21曲拭薬(h@t@robifunctlo
nal reag*nt )としてN−スクシンイミジ
ル3−(2−ピリジルジチオ)フロVオン酸(N −s
uaeinlmidyl 3− (2−pyrldyl
dithlo ) propl@mat@) (8PD
P、ファーマシア、リミテッド製)を使用して、m1l
llしたペルオキシダーゼを梢製した抗me 13 G
に対し共有結合的に付着させた。この試薬を用いる利点
は酵素と酵素および抗体と抗体との間のrw+*複合物
複合酸を防止し5ることである。この賦4I&による反
応機構については詳細に記載した文献がある(ファー1
シア、りンテツドの製品説明書「5pop ヘテロ2
1曲賦礪」 、 またCarlsson J、、Dr*
v1m H,、ムxenK、(1978) Bloch
am、 J、 173723−737 )。 酵素と抗体の双方が8PDPとの別個の反応の結果活性
化した。次いで】つの成分(この場合誘導体トナったベ
ルオキシダーゼ)をジチオトレイトールで還元した0次
いで自由なチオ基v!にするベルオキシダーぜ#s4体
vts導体となった抗体と反工6させ、その結果抗体と
酵素量にジチオール架構(dムthlol brldg
*)を形成させた。*僕の鍵合いを分元光度針で測定す
るため、いずれかの中間生成物を還元することによって
ピリジン−2−チオンの解放を行った。 (資)僧のたん白を含む精製した抗E13G(JL+s
J)の浴液をリンi!12塩緩備負堪水に対して透析し
た。 エタノール0.5d中の50惜モka11度の過剰の8
P口Pを攪拌した抗体浴液にゆっくり〃口えた。この浴
液ン2;1℃で加分間維持した。混合物を合計16のセ
ファデックス(s@phad*x 3 G −25PD
HJ v予め充填したカラム(ファー1シア、リミテ
ッド1ull)K2.5mアリコツトずつ加えることに
より、混合物をゲル濾過した。これらのカラムはリン酸
堪緩衛曳塙水中で予め平向させておいた。fs4体とし
た抗W13Gを同じ緩衝液3.5dを使用して各カラム
から府:心し合ti浦Wllを慢Tこ、抗113Gの置
換はIgG1分子あ1こり2−ピリジル24a化物基1
1個と測定された。 上記と平行して、エタノール0.8d中の5pop(3
2μnaol)溶液を攪拌したペルオキシダーゼ(51
rnfI15d)に)JEIえることによって精製した
ペルオキシダーゼを活性化し、久℃で加分間維持した。 その醗反応混合物′4を砿普限外p通ユニット中でリン
#I堪緩4kjI−塩水に対して邊析した。 −擲体としたペルオキシダーゼを、酢酸塩蝦僑液中で+
関したセファデックスGZ5PDlOの5本のカラム(
谷カラムあたり2.5d)を用いてゲル濾過した。!r
カラムあたり3.5−の緩伽液でたん白をm−し合ii
17.5−を侵た。このペルオキシダーゼ浴液をジチ
オトレイトール135.雫で処理することによって自由
なチオール基を作り、混合1111vX℃で本)分間攪
拌した。 リン酸塩緩備賞を証本で平向させた7個のセファデック
スGδPD 10カートリツジを使って反応混ン 合物をゲル濾過した6各カラムを緩負液j、5aJでて
ll1k終容横5.6dに濃縮し、リン酸塩緩衝食塩水
25114に対して透析した。ペルオキシダーゼ1分子
当りの解放されたピリジン−2−チオンの基数は1.7
と測定され1こ。 この修正したペルオキシダーゼ浴液(5,61aJ )
1kfs導体とした抗E13G浴液(4d)と混合し。 る℃で24時間攪拌した。上記反応の閣KIgG1分子
あたりピリジン−2−チオン1.6す子が解放されたも
のと測定され1こ。 生成複合体を以下に述べるように二車アフィニティーク
ロマトグラフィーにより非腹合ペルオキシダーゼおよび
非煩合抗E13Gから純化した。反応混合′4Ij′4
r:再生コンカナツマリンA−セファロースのカラムに
加えtrls/HC4緩備液136−でf#喝した1次
に書生プロティンA−セファロースカラムを前のカラム
の出口にそれぞれ11列接続し、Co11−A呪看緩備
液を使用してm11Mを継続し、さらに60atを収集
した。 aKコンカナノ々リンA−セファロースのカラムを取外
し、tri・/HC1#備液を使用してプロティンmA
−セファロースのカラムを介して#4雌を続け、さらK
]00d1に侵た。次にこのカラムを通る湧tnを逆に
し、浴喘剤をプロティンA脱着緩衝液Kfえた。頷合物
の溶離は50ILlを収集した後終了しTこ。約0.6
のA 403 /A 280価を有するAEP含有分I
[iII′Jkプールし水酸化ナトリウム希釈液で中性
化し、51JalJKall[j贅した。最elk K
kEP 浴液を0.5dの部分に分け、液化窒素で冷
凍し、−70℃で貯蔵し1こ。 ANP中に含まれる抗体の収率はb8%であり、抗E1
3Gに対するベルオキシダーぜのモル含有率はA 40
2 /A 280蜘で1.6であった。 AEPの最適
作業希釈度は実−により決定した。上記の1lIlI智
は1000倍〜5000i希釈というM益な爽I11範
囲を有している。二m板分析物慣定にとって、複合体を
約2 nM 、すなわちマイクロテストウェルあたり0
.4pmol の作業a度を得るためK AEP調整
物を1500W!に希釈することが好ましい。 次に本発明の二卓僚分析@慣定を実施するための工程に
ついて拌細に説明する。この工程は月経周期尿中のPD
3GIl!1度に対するE13G一度の変化を決定する
1こめの最適の方法に関するものである。 A、第1次反応 1、抗P03Gで被覆したマイクロテストプレートを一
18℃の貯戚から取出し、保護プラスチックフィルムを
外す前に室温で平情させた0%のつ工01する各プレー
ト上で4つのウェルなコントロールウェルt〔指定し、
他の4つのウェルな非番異同結合ウェルに指定した。 2、抗E13G抗血清1kg1次緩衝欲中で3750v
4横とじγこ。コントロールウェルを除くプレート上の
もウェルに対し、この杭E13G浴液の100μtアリ
コツトをピペットで注入した。コントロールウェルには
第1矢緩嚢液の100μtアリコツトをピペットで注入
した。 3、 ml初の尿希釈液または標準試料を試験管また
は12チヤンネル貯R器(英国サセックス、ビリンゲス
バースト、トークスロードのグイナテツク、ラボラトリ
ーズ(Dynat@eh Laboratorl*s
)製)で調整し1こ。f&者を12チヤンネルピペツト
とともに使用した結東試薬と試料をマイクロテストプレ
ートに迅速に移すことがで?!!た。 希釈漱は第1矢緩嚢液中で調整した。希釈度の卸、囲を
ま千申々実験したが、通冨(資)ptの尿または樟4!
浴液を500μtVC希釈した。希釈し1こ試料に対し
4.8 nM MSAaおよび40nM PD3G v
i 1次緩衝液中に含む浴液500 ptを添加した。 この混合物をfi舎ぎ試験管によるかまたは試薬溜めを
少くともJtgl憬り動かすことKJl、つて完全に混
合した。 4、第1次反応は、抗E13G浴液を収容した8PAP
ウエル中にMSAと試料との混合切の100μtアリコ
ツトを卯えることにより開始した。この添加は非を異的
結合ウェルV除く全ウェルに対し行われ1こ、非番異同
結合ウェルにはM1次緩lI液100μtv加えた。試
料およびコントロールウェル中のMSAの*終濃度は1
.2nMであった。試料および非%異的結合つェル中の
抗E 13 Gの最終希釈度は7500倍であった。添
加は好ましくは1分間以内に行われ1こ。ウェルはプラ
スチックフィルムまたはプラスチックの儲で覆い、十床
軌遭シェーカー(flat b@d orbltal
5hak@r )上で室温で1時閣奈とうした。伽とう
速度は1分間240回転、軌道は1.51径が好ましい
。 5、f@1次反16の終りにシェーカーからプレートを
取外し、好ましくは12チヤンネルNune −Imm
uovaah 憤It(フロー、ラボラトリーズ、リミ
テッド製)を用いてfc浄毅備液で洗浄した。この#c
ltによれば、1列121itのウェル1kIWI 1
ili? [洗伊することができる。欠いで合判tアス
ピレートしkf&況#緩貢液で溢れさせた。最後の列を
処理した埃この抗浄工柵をさらに3回(り返した。jl
t畿にウェルの内容物をアスピレートし、プレート全体
を躾返し、ティシュ−ペーパーの束で覆ったペンチ土で
(”1回か強くたたいた。 B、第2次反応 抗E13Gペルオキシダーゼ(AEP ) 複合体の貯
戚浴故を−かし、第2矢緩嚢液で1500倍(2nM)
に希釈した。この浴液の200ptアリコクトvllJ
工mtm、iにマイクロタイタブレート中にピペットで
江人した。プレートをIWJ様に撞い前記と同様KV娘
で1時間損と5した。 第1仄反応のときと同様の方法でウェルを洗浄した。1
こだし4度目の洗浄工種においては、アスピレートおよ
び軽打転線前に合計10分間洸捗液をウェル中に残して
おいた。 C0第3次反応 使用した各プレートにつき第3次反応の開始前加分以内
に次の容積のJ!に實浴液を混合した。 基實浴液A 2(lj 基繊浴gB 200517 i貞浴液C20117 この混合物2u01Jt’l:ピペットで全ウェルに注
入し、プレートを前と同じように再び〜い振と5し1こ
。ただし反16時間はわずか15分間であった。 上記時111経過時にマイクロエリザ・オートリーダー
(Mlero@lima auto read@r )
(ダイナチック、ラボラトリーズ、リミテッド#)ヲ
使用して各ウェルにおける色の変化を測定し1こ。%の
ウェル全部を約100秒間内に読み取れるので酵素反応
を停止りする必要はなかつ1こ。この装置のテストビー
ムノ波長フィルターは570t+mKセットし、基準ビ
ームのe長は405nm にセットした。また未処理の
マイクロテストプレート中にピペット注入してあった基
貞混合@ 200μtに対しこの装置を使用するlII
mrtcvit直をゼロにセットしておいた。 上記反応の41!を来は狽製された試料に対する平均吸
光度(A 570 nm)の示度として表わされ一通富
コントロールウエルの十X4 A 570 nm の自
分単にf懐された。 月 年経周期尿においてE13bは1(1〜400 nMで
あり、排卵前のE 13 Gの変動を償却するための臨
界範囲は加〜1100nである。P03Gは月経周期尿
中で遡$100〜50.000 nM の範囲であり、
妊娠aJ舵期闇の終了を+IN知するための臨界濃度は
1000〜4000 nMである。 本慣定系は、画ステロイドの相対1111fK大きな走
があるKもかかわらず、月経周期尿中に検出される両ス
テロイドの各#度に同時に応答しうるように岐通化され
ている。また上記の臨界範囲内において、4:dIN出
系は、所定の尿希釈度(または希釈範囲)において実施
された場合は、0602〜0.1のE13G/PD3G
モル比変化に敢大@に応答し5るように設計されている
。 これは二lL被分IIT物検定の投与量一応答時性を横
置することによって達成された。E13GおよびP03
Gの標準浴液を生壇学的範囲に対応して第1(′に械債
漱中でalt4幣し、P03G標準浴液を除いては慣電
工橿にしたかい試験した。P03G標準酒液は第1次緩
fi+液中で抗E13Gの存在しない状態で試験した1
次の事項に対するこれら標準浴液の影響を決定するため
多数の変数を調査した。 ta+ ゼロ・ステロイド標準と最高ステロイドII
IIi度との閣の信号強震(吸光度)の変化 lbl Lb答の8/N比 (・)各投与量一応答開−の相対的傾斜(吸光匿対10
f投与量としてプロットしたもの)ldl 10
f投与賃軸に対するPD3G投与量一応答曲、tMの位
置と比較したE13G投与電一応答1−のioy投与量
軸に対する位置 調査したfaのい(つかは次のとおりである。 1 ) d : E 13 G s分とPO3Gm分と
の間の異なる架#4長さの影響 二電被分析物慣定の工程に従い(抗E13Gの不存在を
除() M8A4、M8A6、M8A8、M8Aわを濃
度範囲0.2〜l(J 11Mにおいてテストした。M
8A@は8PAPに対するAEPの最高の結合を示した
(第2図)、M8A4は結合が28〜46鳴低く、まy
、−M8A。 とMSム1゜は廊A、が示した結合のlO暢以下であつ
た。M8Aの2つのステロイド基の闇の乗積の長さは明
らかに決定的であった。メチレン炭素611i11より
も短い条横の長さはM8AK対する5PAPとAEP収
万の1ffJ時Wi台を市11限する。−万メチレン炭
素611alより侵い乗積の擾さは架慣がそれ自身を折
りたたむのに元号であり、これまた8PAPとAEPの
同時結合を立体的に妨げる。したがってへキサメチレン
装備を有するMsA、は二W4jk分析物検定にとって
好ましい試薬として選択された。 2) Ml嬶0)mt M8A、all範囲0.2〜加nM についてP03
G投与敏一応答特性を―べ1こ、、すべての1庫がPD
3GII#度と信号強震との間には反比例関係があるこ
とをホした。それらはすべてPD3Gの/a度がθ〜l
OnMにおいてAEP結台が少し下降する高原吠標であ
り、PD3G濃震がlO〜11000nの閣で直線的に
(10)直線プロットにおいて)下降する時性を有して
いる。2 nM以下のM8A一度はもつとも狗、な勾配
、すなわちより応答性の高い系であることをボし1こ。 しかし1 nM以下のM8111mにおいては信号Il
i!1度は全体に諷少することが観測された。 まy:同様のMs*Il#[#囲についてK13G投与
量一応答時性を調べた。この場合はI 13 G II
I嵐と吸光度示度との闇に直接の関係が示された。この
場合も谷曲巌の位置は&118AIJIFjLにはとん
ど影響されない、もつとも急峻なしたがってもつとも応
答性の良い曲ms囲は1〜10 wsM E 13 G
にあった。しかしI mM未満のMSAall嵐におい
ては、勾配はよりゆるやかKなつf、ニー、 1.2y
sMv碩えるM8ム111fにおいては曲−のS/N比
が感化した。したがってM8A、 a度]、2nM が
この試薬の好ましい濃度である。 3)筑」Jム[化九良 E13G抗血清については、それが第1次反応における
試薬として添加される#に、最適の希釈度V実験的に決
足しなければならない、第1次反応における[終希釈度
として抗113 Gは5,000倍〜25.000 %
の範囲で希釈した。K13G投与量一応答時性を多くの
抗E13G希釈液について調べた。 抗E13Gの希釈液が増加するにつれて、K13G投与
量−16答曲巌の位置は丘へ移動した。すなわちより低
いE130m度に対し応答性が増大した。 しかし、この効果は18130#IJj変化に対する信
号傾板の変化が減小すること罠より打消された。また8
/N比も感化した。最適のK13G投与量一応答t#性
四−は抗E 13 Gの7500 %希釈液において優
られた。 二][被分析物検定の工程に従いある範囲のE13Gお
よびPD3G樟準浴液をテストした。その結果潜られた
投与量一応答曲線を+@3図に示す、各自−のもつとも
急峻な領域は、生理学的にxl!なE13G/PD3G
比範囲に対し良い応答を許容し5る程度に光分啜れてい
る。 たとえば1月経周期尿を5倍希釈尿でテストしたとする
と、初期卵胞期のE 130 ml Qj (al n
M )はE13G[11−の下層で0.8 nM付近に
ある。しかし醗期卵胞期の上昇するE 13 G +1
111鍵は、K13G曲−のもつとも急峻な領域におい
て約4 nM Kあるので容易に検出しうるであろう。 逆に卵胞期の闇1000 nM* タハソtL以下0)
PD3Gill&&’!m k 約40憾Jf!4I
fLの1N号強賞減小を生じるにすぎない、しかし月−
周期の政体中期までK PD3Galfは信号を約70
鴫減小させ、初期卵胞期に@側された吸光度のtjJK
近ずく。 月経周期中のE13G/PDaG比の変化を反映する二
慮被分析物横定の投与量一応答特性をシはユレートする
ため、E13G襟単浴液およびPD3GIII準浴液の
マトリックスを作り標準工種でテストした。 第4図は、低PDBGIl共(40aM)の存在下にお
けるE13G投与1一応答−mを示す、このvK聾はた
とえば25倍希釈尿試料について卵胞期において光分存
在しうるものである。生理学的ベースラインV表す0.
02以下の些12G/PD3G置はすべて曲−の底のお
?−むね、平坦な領域にある。典型的な排卵前のエスト
ロゲン変化の関に@側される0、Q3以上の11はすべ
てE 13 G投与量一応答画一のもつとも、甑峻な韻
域にあり、しTこがって容易に検出しうる。 第2の曲−は^E 13 Ci 61度の存在下におい
てP03G棲度が増加する場合を示す、この[1は月経
周期中の黄体期において存在しうるものである。 PO2(4[が10倍増加すると4F!r号はほとんど
初期卵胞期の埴Kまで減小する。 rsIIt比を決定すること罠よって優られる利点は。 Wi果が容積の大小に無関係であること、すなわち結果
が試料の希釈度に無関係であることである。 二市被分析物恢定の場合は、投与量一応答画一の応答範
囲はほとんど1桁の大きさ以上のものではないので、結
果は試料の希釈度にまったく無関係ではない。しかし、
ある限界を超えると二重11分析物検定は試料の希釈度
に対しては相当に寛容である。E13GとP03Gの各
標準溶液は月経周期尿の典嘲的なa健を表す0.02と
0.2の間の4つの比率を与えるようにfJ#幣した。 これらの標準浴液な5%、10倍、5倍および33WI
の各希釈度について二事破分析物慣定によってテストし
た。その結果を次にボす。 Q、L12 22.2 ±2.
20.04 28.5±1.10.
12 36.2±3.4 0.2 43.9±6.0 検定の試料希釈度九対する許容度は尿容積を作る際の1
こいていのバラツキに対処しうるだけの幅を光分に有し
ている。 本二重被分析物検定は多数周期にわたる月経周期にわた
るE 13 G / PDSG比における相対変化な観
測するために1史用された。この期間中尿試料は毎日テ
ストした。典型的な周期中の結果を第5図に示す。この
グラフはコントロールウェル吸″yt、fに対する吸光
度対周期の各月についてプロットしたものである。この
慣査対凌は排卵時を決定するためウルトラソノグラフィ
(altramonography ) Kよっても観
測し1こ。ウルトラソノグラフィは1日1度行われたの
で、この場合は24時間の不確実さがあり、これはグラ
フ土岐の破−で示した。 周期を通じての吸光駿の形状は、排卵時直噴の4日間に
わたり明確な急上昇をボしている。それは排卵の1日前
にピークに遅している。吸光度は落ち込んでいる。初期
卵W&期疋おいては小さなピークがあるが、これは普通
のことであり卵胞活動を表すものである。しかし、大き
なピークは一期を支配し、妊娠町11期間の決定と排卵
時の接近の予想よ#J確な指憚を提供する。 第6I3v、lは本二l[被分析物検定を用いて合計1
7の月経周期の闇毎日w、試料を測定した結果を示す。 第6区1において −横出灯壕の月経周期の開始を示す。 〉 構出対象の月経S期の終了を示す。 ○ 構出対象のJk#体温の上昇が観測された日を示
す。 U 排卵時がウルトラソノグラフィーにヨリ測定され
た周期を示す。2本の縦の平行な破線によって下″を瀕
時間の期間中卵胞破裂が起った。 8 ;!(42体銀が上昇した日により排卵時が測
定された周期を示す。これは贅の点線によって示す日に
起った。 吸光度の上昇した櫃が11!醐された日を強−するため
に相対吸光度の任意のしきい厘が選ばれた(コントロー
ルウェルに対シ35鴫)。 17人の債出対象全織について排卵日またはその数日1
!II(8日前まで)K吸光麗はこのしきい11を超え
た。またほとんどの構出対象について排卵後2日醗迄忙
しきい種以上の1婦が曖陶された。黄体期または初期卵
胞期の閣はしきいtilt’超えることはなかった。 これらの結果は、本二1被分析物横定により作られる9
1号のしきい値はすべての月経周期尿に普遍的な*KI
4ぶことができることを示している。 したがって不二東仮分析物検定は、女性が月経周期中の
妊娠OTD勘開にあるか否かを示すイ看ス・ノー型テス
トの基礎を形成するものである。
第1図は2つの被分析物であるE 13 GとP03G
の檀々の惚磯状寒鐘莢における二重被分析1横定の1実
施例の作用を下す凶、第2−は配位子の乗積i′持分子
の長さを変化させることKよるmt繊抗%([g13G
ベルオキシダーぜ、AEP)の固相抗体(固相抗P03
G 、 8PAP )への結合に対する影響をホす図、
第3図はg 13 GとP03GKついての投与電一応
答曲IIIIllv示す図、#&4図はシイユレートし
た月経周期条件下における内被分析物の投与電一応答曲
巌を示す園、WJ5図は典型的な月経周期についての二
jLML分釘物慣足の結果を示す図、第6図は17人の
f;c性から各人の全月経周期にわたって毎日採取した
尿試料を二118分析物検定を使って測定した結果を示
す棒グラフである。 手 続 補 正 書 昭和−年4月/2E1 特許庁長官 着 杉 和 失敗 1 事件の表示 昭和s8年特許願第 213511 “す 2 発明の名称 免役横定法 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 テレンス、シーワード、ペイカー
の檀々の惚磯状寒鐘莢における二重被分析1横定の1実
施例の作用を下す凶、第2−は配位子の乗積i′持分子
の長さを変化させることKよるmt繊抗%([g13G
ベルオキシダーぜ、AEP)の固相抗体(固相抗P03
G 、 8PAP )への結合に対する影響をホす図、
第3図はg 13 GとP03GKついての投与電一応
答曲IIIIllv示す図、#&4図はシイユレートし
た月経周期条件下における内被分析物の投与電一応答曲
巌を示す園、WJ5図は典型的な月経周期についての二
jLML分釘物慣足の結果を示す図、第6図は17人の
f;c性から各人の全月経周期にわたって毎日採取した
尿試料を二118分析物検定を使って測定した結果を示
す棒グラフである。 手 続 補 正 書 昭和−年4月/2E1 特許庁長官 着 杉 和 失敗 1 事件の表示 昭和s8年特許願第 213511 “す 2 発明の名称 免役横定法 3 補正をする者 事件との関係 特許出願人 テレンス、シーワード、ペイカー
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 構成要素として、 a)第1の抗原m*と@2の抗原潜員とを含む試料層液 b) IIF記第1の抗m浴實の決定基に可逆的に結合
し5る第1の抗体であって、#l液中にある抗体 6)前記@2の抗原溶質の決定基に可逆的に結合し5る
第2の抗体であって、同相支持体に不可逆的に結合して
いる抗体 d)#記第1の抗体が可逆的KM合し5る第1の抗原と
、前記第2の抗体が可逆的Km會しうる襖2の抗原とを
含み、該第1の抗原と該#I2の抗原は架橋支持分子を
介して相互に小町MEFJKM合している配位子分子で
あって、浴液中にある配位子分子 働)抗原に対し可逆的に結曾しうる4m+誠を付した抗
体 を備え1次の工程を含む検定法 a)前記第1の抗体、m記第2の抗体および前記配位子
分子のすべてが前記試料との混合前に相互KA合してい
ない場合に、前記試料層液、#記第1の抗体、前記第2
の抗体および前記配位子分子の混合物を形成する工程b
) ff混合物をインキュベートすることによって%f
eI記紀位子分子と前記第1の抗原溶質との間に前記第
1の抗体と会合すべく競合を許容し、かつ前記配位子分
子と前記[2の抗腺沼貞との関に#記第2の抗体と会合
すべく刺合を許容する工程 e)前記同相支持体を前記標識を何した抗体に接触させ
ることにより、該標識を付した抗体と未結合第1抗原と
の閣の会合を許容する工程 d)繭紀配位子分子およびstr記第2の抗体な介して
前記固相支持体KN合した4WIRv何した抗体の童を
決だする工程。 2、前記配位子分子は1つの第1の抗原と1つの第2の
抗原とを含み、該2つの抗原は条横支持分子を介して相
互に不可逆的に結合している特許請求の範囲第】項記載
の横定法。 3、 nu紀混合物は前記各構成要承をl工程で混合
することにより形成する特許1s)ICの範囲第1項ま
たは第2填配械の横定法・ 4、 m記混合物は、前記試料溶液および前記配位子
分子の混合物を形成し、この混合物v#i記第1の抗体
と^■記第2の抗体との関に形成した温金物と混合する
ととくよって形成されるe詐情求の範囲第1墳〜第3項
のいずれかに記載の検定法。 5、尿中のエストロン−3−グルクロニドとプレグナン
ジオールー3−グルクロニドの相対amを測定するため
%粁情求の範囲第1項〜第4項のいずれかに記載の横定
法を用いる月経周期中の吐1kR川−じ期間を決定する
方法。 6、前記横定法に使用する前記配位子分子は、架膚叉待
分子を介して不可逆的Kt1合した少くとも1分子のエ
ストロン−3−グルクロニトト少くとも1分子のプレグ
ナンジオール−3−グルクロニドを含む特許1fiI求
の範囲第5墳紀賊り方法。 7、 前記配位子分子は次式のものである特許請求の範
囲第5JA記載の方法。 8、%fff曙求の範囲第1項〜第4虜のいずれかに記
載の慣一定法または%奸晴求の範囲第5項〜第7JJ1
のいずれかに記載の方法を実施するための試薬キット。 9、#I記第1の抗体と、前記第2の抗体と、前記配位
子分子とを別1iiIK含む%特許請求のlAs第1項
〜#!3Ji4のいずれかに紀械の検定法を実施するた
めの試薬キット。 10、前記第1の抗体、前記第2の抗体および、これら
と削個に、前記配位子分子を含む、特許請求の範囲第1
墳、第2項または第4項記載の横定法を実施するための
試薬キット。 11、 架橋支持分子に不可逆的に結合した2つの異
る抗原基を含み、該架構支持分子は2つの反応性′1能
基を有する有機化合物から得た2−の基である配位子分
子。 12、 @記2@Jの基は次の一般式の化合豐から得
られる特fF#11求の範囲第1】項記載の一配位子分
子R−(CH2)!l−R ただし、Rは−NH2、ハロゲン、または−0−CO−
アルキルであり亀は2〜io。 13、 Rバー NO3である’ft#’Fl111
累の範囲第11項または第12項配賊の配位子分子。 14、nは6である特許請求のIIi!囲第11墳〜第
13項のいずれかに記載の配位子分子。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8203906 | 1982-02-10 | ||
GB8203906 | 1982-02-10 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58161862A true JPS58161862A (ja) | 1983-09-26 |
JPH0314140B2 JPH0314140B2 (ja) | 1991-02-26 |
Family
ID=10528234
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58021356A Granted JPS58161862A (ja) | 1982-02-10 | 1983-02-10 | 免疫検定法 |
Country Status (13)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4508830A (ja) |
EP (1) | EP0086095B1 (ja) |
JP (1) | JPS58161862A (ja) |
AR (1) | AR231477A1 (ja) |
AT (1) | ATE29595T1 (ja) |
BR (1) | BR8300656A (ja) |
DE (1) | DE3373543D1 (ja) |
DK (1) | DK52483A (ja) |
ES (1) | ES519667A0 (ja) |
GB (1) | GB2116318B (ja) |
HK (1) | HK11987A (ja) |
IE (1) | IE54109B1 (ja) |
SG (1) | SG75486G (ja) |
Families Citing this family (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4690890A (en) * | 1984-04-04 | 1987-09-01 | Cetus Corporation | Process for simultaneously detecting multiple antigens using dual sandwich immunometric assay |
ATE78100T1 (de) * | 1984-11-27 | 1992-07-15 | Behringwerke Ag | Bifunktionelle haptene, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung. |
US5500350A (en) * | 1985-10-30 | 1996-03-19 | Celltech Limited | Binding assay device |
US5912136A (en) * | 1985-11-19 | 1999-06-15 | Schering Corporation | Monoclonal antibodies against human interleukin-4 and hybridomas producing the same |
US5700915A (en) * | 1985-11-19 | 1997-12-23 | Schering Corporations | Human interleukin immunopurification processes |
US4778751A (en) * | 1986-05-12 | 1988-10-18 | Diagnostic Products Corporation | Method for measuring antigens or antibodies in biological fluids using ligand labeled antigens or ligand labeled antibodies |
US4952517A (en) * | 1988-02-08 | 1990-08-28 | Hygeia Sciences, Inc. | Positive step immunoassay |
US6287793B1 (en) | 1988-08-19 | 2001-09-11 | Elan Pharmaceuticals, Inc. | Diagnostic methods for alzheimer's disease |
US5118630A (en) * | 1988-11-04 | 1992-06-02 | Quidel Corporation | Method for determining periodic infertility in females |
ES2088427T3 (es) * | 1989-03-21 | 1996-08-16 | Hygeia Sciences Ltd | Ensayo simultaneo de dos analitos. |
CA2096495C (en) * | 1992-06-16 | 2002-07-09 | Kathy Palmer Ordonez | Dual analyte immunoassay |
GB9217865D0 (en) | 1992-08-21 | 1992-10-07 | Unilever Plc | Monitoring method |
GB9217808D0 (en) | 1992-08-21 | 1992-10-07 | Unilever Plc | Advisory method |
GB9217864D0 (en) * | 1992-08-21 | 1992-10-07 | Unilever Plc | Monitoring method |
US7141212B2 (en) | 1993-11-12 | 2006-11-28 | Inverness Medical Switzerland Gmbh | Reading devices and assay devices for use therewith |
WO1995013543A1 (en) * | 1993-11-12 | 1995-05-18 | Unipath Limited | Assay methods and devices therefor |
AU1402295A (en) * | 1993-12-16 | 1995-07-03 | Abbott Laboratories | Methods and means for determining the female fertile period |
US6451619B1 (en) | 1994-06-29 | 2002-09-17 | Inverness Medical Switzerland Gmbh | Monitoring methods and devices for use therein |
JP2000503773A (ja) * | 1996-05-23 | 2000-03-28 | ユニリーバー・ナームローゼ・ベンノートシヤープ | 特異的結合アッセイの改良 |
AU2002319613A1 (en) * | 2001-07-19 | 2003-03-03 | Signet Laboratories, Inc. | Human tissue specific drug screening procedure |
WO2014083668A1 (ja) * | 2012-11-29 | 2014-06-05 | ミライアル株式会社 | サンドイッチ法による抗原抗体反応測定方法 |
CN113219167A (zh) * | 2021-01-13 | 2021-08-06 | 广东菲鹏生物有限公司 | 双重竞争检测方法及产品 |
CN113267624A (zh) * | 2021-01-13 | 2021-08-17 | 广东菲鹏生物有限公司 | 一种检测rbd和ntd中和抗体的方法及产品 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS53148521A (en) * | 1977-05-27 | 1978-12-25 | Sanyo Chem Ind Ltd | Hapten-antibody complex and its preparation |
JPS54104931A (en) * | 1978-02-03 | 1979-08-17 | Pentel Kk | Aqueous ink |
JPS55136261A (en) * | 1979-04-12 | 1980-10-23 | Toyo Jozo Co Ltd | Novel compound and kit comprising it |
Family Cites Families (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4048298A (en) * | 1975-02-25 | 1977-09-13 | Rohm And Haas Company | Solid phase double-antibody radioimmunoassay procedure |
GB2029011B (en) * | 1978-09-01 | 1983-02-02 | Coulson W | Use of a synthetic bifunctional ligand for the immunimetric determination of the concentration ratio of two solutes |
IL55816A (en) * | 1978-10-30 | 1982-04-30 | Ames Yissum Ltd | Method for simultaneous immunoassay of several different antibodies and a kit therefor |
CA1148859A (en) * | 1979-06-14 | 1983-06-28 | Lacy R. Overby | Simultaneous assay of two hepatitis viruses using a solid phase |
GB2078953B (en) * | 1980-06-30 | 1984-06-13 | Int Immunoassay Lab Inc | Two site cross-reaction immunometric sandwich assay method |
-
1983
- 1983-02-03 IE IE209/83A patent/IE54109B1/en not_active IP Right Cessation
- 1983-02-04 GB GB08303162A patent/GB2116318B/en not_active Expired
- 1983-02-04 EP EP83300569A patent/EP0086095B1/en not_active Expired
- 1983-02-04 DE DE8383300569T patent/DE3373543D1/de not_active Expired
- 1983-02-04 AT AT83300569T patent/ATE29595T1/de active
- 1983-02-07 US US06/464,143 patent/US4508830A/en not_active Expired - Lifetime
- 1983-02-08 DK DK52483A patent/DK52483A/da not_active Application Discontinuation
- 1983-02-09 BR BR8300656A patent/BR8300656A/pt unknown
- 1983-02-09 AR AR292067A patent/AR231477A1/es active
- 1983-02-09 ES ES519667A patent/ES519667A0/es active Granted
- 1983-02-10 JP JP58021356A patent/JPS58161862A/ja active Granted
-
1986
- 1986-09-18 SG SG754/86A patent/SG75486G/en unknown
-
1987
- 1987-02-05 HK HK119/87A patent/HK11987A/xx not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS53148521A (en) * | 1977-05-27 | 1978-12-25 | Sanyo Chem Ind Ltd | Hapten-antibody complex and its preparation |
JPS54104931A (en) * | 1978-02-03 | 1979-08-17 | Pentel Kk | Aqueous ink |
JPS55136261A (en) * | 1979-04-12 | 1980-10-23 | Toyo Jozo Co Ltd | Novel compound and kit comprising it |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES8405949A1 (es) | 1984-06-16 |
HK11987A (en) | 1987-02-13 |
GB2116318B (en) | 1986-05-14 |
EP0086095B1 (en) | 1987-09-09 |
DE3373543D1 (en) | 1987-10-15 |
DK52483D0 (da) | 1983-02-08 |
DK52483A (da) | 1983-08-11 |
GB2116318A (en) | 1983-09-21 |
AR231477A1 (es) | 1984-11-30 |
EP0086095A2 (en) | 1983-08-17 |
US4508830A (en) | 1985-04-02 |
IE830209L (en) | 1983-08-10 |
IE54109B1 (en) | 1989-06-21 |
SG75486G (en) | 1987-02-27 |
BR8300656A (pt) | 1983-11-08 |
GB8303162D0 (en) | 1983-03-09 |
EP0086095A3 (en) | 1984-03-21 |
ATE29595T1 (de) | 1987-09-15 |
JPH0314140B2 (ja) | 1991-02-26 |
ES519667A0 (es) | 1984-06-16 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JPS58161862A (ja) | 免疫検定法 | |
US6699722B2 (en) | Positive detection lateral-flow apparatus and method for small and large analytes | |
EP0104527B1 (en) | Digoxigenin immunogens, antibodies, labeled conjugates, and related derivatives | |
DE2744835C3 (de) | Immunchemisches Meßverfahren | |
JPS58117456A (ja) | 特定の結合活性を持つ蛋白質とこれに対応して結合する物質との反応の一つの成分を検出及び定量する試薬セツト | |
US5674700A (en) | Method for the detection and/or assay of hormones, and antibodies which can be used in the said detection method | |
US7030210B2 (en) | Materials and methods for detection and quantitation of an analyte | |
EP0291086B1 (de) | Verfahren zur Bestimmung eines Antikörpers in menschlichen Körperflüssigkeiten | |
DE69636013T2 (de) | Verfahren zum erlangen von rezeptor-freigabeligand (reland)-komplexen und testansätze | |
US5120660A (en) | Method for canine fertility detection | |
EP0088974A2 (en) | Homogeneous immunoassay with labelled monoclonal anti-analyte | |
US5310656A (en) | Vitamin B12 assay | |
JPS58214856A (ja) | 免疫分析 | |
US5506109A (en) | Vitamin B12 assay | |
EP0479929A1 (en) | ANALYSIS OF VITAMIN B12. | |
JPS604423B2 (ja) | ペプチドホルモンの定量方法 | |
EP0308242A2 (en) | Agglutination assay | |
Lindner et al. | Novel assay procedure for assessing ovarian function in women | |
Jagiello et al. | Preliminary evidence for the intracellular localization of luteinizing hormones in mammalian oocytes | |
JPS5960260A (ja) | 酵素免疫測定法 | |
CN105440128A (zh) | 用于检测和测定连翘苷的抗体、方法和试剂盒 | |
JPS6353511B2 (ja) | ||
Allen et al. | Progesterone radioimmunoassay | |
JPH06201695A (ja) | リジルピリジノリン、2’−ヒドロキシリジルピリジノリン若しくはこれらの置換体又はこれらの残基を有するコラーゲン断片の測定方法 |