JPH11507642A

JPH11507642A - 局所使用のためのアシクロビル誘導体

Info

Publication number: JPH11507642A
Application number: JP9502194A
Authority: JP
Inventors: カールワイ．ホステットラー
Original assignee: カールワイ．ホステットラー
Priority date: 1995-06-07
Filing date: 1996-06-06
Publication date: 1999-07-06
Also published as: CN1192138A; AU6384296A; US5879700A; EP0831794A4; KR19990022471A; WO1996040088A1; EP0831794A1; CA2222154A1; MX9709782A

Abstract

(57)【要約】ヘルペスの天然株及び耐性株，特にチミジンキナーゼを欠いたウイルス株に対して強い活性を有するアシクロビルモノホスフェート，アシクロビルジホスフェート及びアシクロビルトリホスフェートといった抗-ヘルペスヌクレオシドアナローグホスフェートエステルを含む、ヘルペスウイルス感染に局所的に使用するための組成物。抗-ヘルペスヌクレオシドアナローグホスフェートエステルには、ホスホルアミデート及びホスホチオレート、並びにＣ及びＳ架橋原子を含むポリホスフェートが含まれる。

Description

【発明の詳細な説明】局所使用のためのアシクロビル誘導体アシクロビル(acyclovir)(ＡＣＶ)は、普通でない不完全な（非環式の）糖部分を含む、グアノシンのヌクレオシドアナローグである。ヌクレオシドアナローグは、細胞内でのＤＮＡ複製のプロセスを妨害し、それゆえに抗ウイルス剤及び抗腫瘍剤として有用である。ＡＣＶは、特にタイプＩ及びIIの単純ヘルペスウイルス（herpes simplex virus）感染の処置に有効である。ＡＣＶは、宿主細胞チミジンキナーゼではなく、ＨＳＶチミジンキナーゼによって選択的にリン酸化されるため、細胞中におけるＡＣＶの抗ヘルペスウイルス活性は低い毒性とともに現れる。その結果、ＨＳＶに感染した細胞のみがＡＣＶモノホスフェート（ＡＣＶ−ＭＰ）を形成できる。次いでＡＣＶ−ＭＰは、細胞酵素によって同化作用的に、ウイルスの複製を妨げる活性物質たるＡＣＶトリホスフェートに変換される〔フィフェ，ジェイ(Fyfe,J.)ら、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー、253:8721-8727(1978)；フルマン,ピー.(Furman,P.)ら、ジャーナル・オブ・バイロロジー、32:72-77(1979)〕。アシクロビルの抗-ヘルペスウイルス活性は、組織培養細胞中での単純ヘルペスウイルスの複製阻害で示されている〔オーブライアン，ダブリュ(O'Brien,W.) ら、Antimicrob.Agents and Chemother.34：1178-1182(1990)〕；また、臨床試験においてＨＳＶ感染患者がＡＣＶの経口投与で治療されたことが示されている〔ホワイトレイ，アール．(Whitley R.)、Immunobiol．and Prophylaxis of Hum an Herpesvirus Infections，シー.ロペズ(C.Lopez)ら（編者），プレナムプレス(Plenum Press)、ニューヨーク 1990；及びストラウス,エス.(Straus,S.)、Se xually Transmitted Diseases 16(2):107-113(1989)〕。アシクロビルは粘膜及び皮膚のＨＳＶ感染の治療に選択されているが、局所的なアシクロビル治療をうけた患者はいくらか症状が軽くなるものの、回復はゆっくりでかつ不完全である〔スプルアンス,エス.(Spruance,S.)ら、J.Infect.Dis. 146：85-90(1982)；及びスプルアンス,エス.ら、Antimicrob.Agents and Chemot her.25：553-555(1984)〕。ヘルペスウイルス感染培養細胞に対する、ＡＣＶとともにインターフェロンを用いたコンビネーション療法〔オーブライアン,ダブリュら、Antimicrob.Agents and Chemother.、34(6)：1178-1182(1990)〕〕、または無胸腺症マウスのヘルペス性角膜炎の局所治療として、ＡＣＶとともにＨＳＶ不活性化剤であるＡ１１１０Ｕの使用〔ロベ,デー.(Lobe,D.)ら、アンチヴァイラル・リサーチ(Antiviral Research)、15:87-100(1991)〕は、ＡＣＶ単独使用より優れた相乗的な抗ヘルペスウイルスＩ活性を示した。アシクロビルは、別のウイルス性疾患である水痘（チキンポックス：chickenp ox）を治療するための臨床試験において条件付きで用いられている〔ホワイトレイ，アール．,Immunobiology.and Prophylaxis of Human Herpesvirus Infectio ns，シー.ロペズら（編者），プレナムプレス、ニューヨーク（1990）pp.243-25 3〕。また、再生不良性貧血〔ゴメズ-アルマギュア,ディ.(Gomez-Almaguer,D.) ら、Amer.J．of Hematology 29:172-173(1988)〕及び十二指腸潰瘍〔ルネ,エス. ジェイ.(Rune,S.J.)ら、Gut 31:151-152(1990)〕といったウイルス病因説が唱えられている他の疾患の治療に実験的に使用されたが、成功はしていない。アシクロビルホスフェートは、ＨＳＶ−１感染培養細胞の野生型又は研究室単離物に対してインビトロで効果があるものの、同条件下でＨＳＶのチミジンキナーゼ欠損変異体に対しては殆ど若しくは全く効き目がないことが示された（図１及び２のデータ参照）。ＨＩＶ（ＡＩＤＳ）感染者または移植拒絶を予防するために免疫抑制剤が投与されている移植レシピエントといった免疫が抑制された患者には、ヘルペスの厄介な突然の発症を予防するためにＡＣＶが長期にわたって投与される。そのような治療は、ＤＮＡポリメラーゼ（１０％頻度）と同様にＨＳＶチミジンキナーゼ（９０％頻度）にＤＮＡ変異をもたらす選択圧を与え、その結果ＡＣＶ−耐性ウイルス株に変えてしまう。このようなアシクロビル耐性ヘルペスウイルス株に対しては、有効な局所治療法がない。本発明によれば、ヘルペスウイルス感染に起因する粘膜及び皮膚のヘルペス性の病変（lesion）の治療に有効である、アシクロビルホスフェートエステル、及び他の抗ヘルペス性，抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグホスフェートエステルが提供される。これらの物質は、驚くべきことに、チミジンキナーゼ欠損ヘルペスウイルスの感染に起因する病変に対しても抗ウイルス活性を示す。それらの物質は、これらの変異ウイルスに対して培養細胞中では比較的不活性であるにも関わらずである。本発明はまた、有効な抗ウイルス濃度のアシクロビル誘導体、例えばアシクロビルモノホスフェート，アシクロビルジホスフェート，アシクロビルトリホスフェート，アシクロビルモノホスフェートグリセロール，アシクロビルジホスフェートグリセロール，アシクロビルモノホスフェートモルホリデート，アシクロビルジホスフェートモルホリデート，アシクロビルモノホスフェートイソプロピリデングリセロール，アシクロビルジホスフェートイソプロピリデングリセロール，アシクロビルホスホメチレンホスホネート、またはこれらの混合物を、局所使用に適した薬学上の担体中に含有する薬学的製剤を提供する。ウイルスのチミジンキナーゼによるリン酸化に頼る他の抗単純ヘルペスヌクレオシドもまた、そのホスフェートエステルとして適切な局所用の剤形で感染患者の皮膚に適用されると、高い活性を示す。本発明の他の側面によれば、本発明のアシクロビルホスフェート誘導体のいずれか又はそれらの混合物を含有する製剤を、ヒト若しくは他の哺乳類を含むウイルス感染動物の粘膜又は皮膚の病変に適用することを含む、ウイルス感染の局所的治療方法が提供される。当該方法の好適な実施態様においては、動物はヘルペスウイルスに感染している。特に好適な実施態様においては、動物はアシクロビルに耐性のヘルペスウイルス株にに感染している。アシクロビル耐性ヘルペスウイルス株は、チミジンキナーゼ遺伝子が変化若しくは欠失していることにより、抗ウイルス剤に対して耐性となっているウイルス株であり得る。本発明の他の側面によれば、少なくとも一つの抗-ヘルペス性のヌクレオシドアナローグホスフェートが、粘膜又は皮膚のウイルス感染を治療するための薬剤の調製に使用される。好ましい実施態様において、ヌクレオシドホスフェートは水溶性の塩である。別の好ましい実施態様において、ウイルスの感染は単純ヘルペスウイルス、タイプ１又はタイプ２である。本発明の別の側面において、本発明の抗-ヘルペス性のヌクレオシドアナローグホスフェートエステルは、粘膜又は皮膚のウイルス感染の治療用薬剤の調製に、薬学的に許容される担体とともに使用される。好ましくは、薬学的に許容される担体は、水性クリーム及びポリエチレングリコールからなる群から選択されるものである。また、アシクロビルホスホルアミデート及びホスホチオレートといった抗-ヘルペス性のヌクレオシドホスフェートエステル、並びに硫黄とメチレンの架橋基を有する抗-ヘルペス性ヌクレオシドアナローグポリホスフェートエステルを提供する。図面の簡単な説明図１は、Wi38線維芽細胞中での、単純ヘルペスウイルスの複製に対するアシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートの比較効果を示す。図２は、インビトロでの、ＨＳＶ-ＤＭ．２１ＴＫ変異体の複製に対するアシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートの比較効果を示す。図３は、ＨＲＳ／Ｊマウスでの、ＴＫ-欠失型のアクシロビル-耐性ＨＳＶ-１感染に対する局所用アシクロビル及びアシクロビルホスフェートエステルの比較効果を示す。図４は、ＨＲＳ／Ｊマウスでの、ＴＫ-変性型のアクシロビル-耐性ＨＳＶ−１感染に対する局所用アシクロビル及びアシクロビルホスフェートエステルの比較効果を示す。図５は、ＨＲＳ／Ｊマウスでの、野生型のアクシロビル-耐性ＨＳＶ-１感染に対する局所用アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートの比較効果を示す。図６は、ＨＲＳ／Ｊマウスでの、ＴＫ-変性型のアクシロビル-耐性ＨＳＶ-１感染に対する局所用アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートの比較効果を示す。本発明は、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）の感染、特にＨＳＶのＡＣＶ-耐性変異体に対して、優れた局所活性を示すアシクロビルホスフェート誘導体を提供する。アシクロビルは、プリン塩基のアナローグ，すなわち９位に置換基を有し、共通の名称を派生する非環式の糖基を有するグアニンである。アシクロビルの化学名は、9-(2-ヒドロキシエトキシメチル)-グアニンであり、次の構造を有している：本発明のアシクロビルホスフェート誘導体は、下記に示すように、非環式の糖基末端のＯ-locantに、置換基Ｒを有している。〔式中、Ｒ置換基は次のものである：関連するトリホスフェート誘導体は、更にリン酸基を有した対応する構造を有している。本発明によれば、アシクロビルモノホスフェート（ＡＣＶ−ＭＰ），アシクロビルジホスフェート（ＡＣＶ−ＤＰ），アシクロビルトリホスフェート（ＡＣＶ −ＴＰ），アシクロビルモノホスフェートグリセロール（ＡＣＶ−ＭＰ−Ｇ），アシクロビルジホスフェートグリセロール（ＡＣＶ−ＤＰ−Ｇ），アシクロビルモノホスフェートモルホリデート（ＡＣＶ−ＭＰ−モルホリン），アシクロビルジホスフェートモルホリデート（ＡＣＶ−ＤＰ−モルホリン），アシクロビルジホスフェートモルホリデート（ＡＣＶ−ＤＰ−モルホリン），アシクロビルホスホメチレンジホスホネート（ＡＣＶ−ＰＭＤＰ），アシクロビルモノホスフェートイソプロピリデングリセロール（ＡＣＶ−ＭＰ−isoＰ−Ｇ），アシクロビルジホスフェートイソプロピリデングリセロール（ＡＣＶ−ＤＰ−isoＰ−Ｇ）は、単独または組合わせて、適切な局所用の薬学上の剤形に調製され、ＨＳＶ−感染個体の皮膚の病変患部に塗布される。記載された化合物ＡＣＶ−ＭＰ，ＡＣＶ −ＤＰ，ＡＣＶ−ＴＰ，ＡＣＶ−ＤＰ−Ｇ，ＡＣＶ−ＰＭＤＰ，アシクロビルのモルホリン誘導体，及びアシクロビルイソプロピリデングリセロール誘導体は、非-脂質で水溶性のホスフェートエステルであり、それ故に好適に水性基剤の局所用製剤の態様で提供される。驚くべきことに、我々はアシクロビルのホスフェートエステルが増強した局所抗−ＨＳＶ活性を示すことを見いだした。そして、他のヌクレオシドのモノホスフェート及びポリホスフェート誘導体もそうであろうと期待している。我々はまた、ヌクレオシドアナローグのモノホスフェート，ジホスフェート及びトリホスフェート，並びにホスホメチレンジホスホネート誘導体の塩が容易に調製できること、及び、そのような塩が、例えばクリーム，ゲル又はその他の水性分散体等の水性媒体中で高い溶解性を示すことを示した。更にそのような塩は、ユニークな粘膜又は皮膚の分散を与えるポリエチレングリコール媒質中に可溶である。本発明の方法に有用であるヌクレオシドアナローグの他のポリホスフェートエステルには、メチレン−及びチオ結合-ポリホスフェートヌクレオシドアナローグ、並びにモノ−及びポリホスホアミデート、及びモノ−及びポリホスホチオレートヌクレオシドアナローグが含まれる。同様に、他の抗単純ヘルペスヌクレオシドのモノホスフェート，ジホスフェート，及び他のホスフェートエステルは、上に記載されたもののように、増強された局所活性を示すであろう。次のヘルペス抗ウイルス性のヌクレオシドはホスフェートエステル類のように、増強した活性を示す： 1-ベータ-D-アラビノフラノシル-E-5-(2-ブロモビニル)ウラシル； 2'-フルオロカルボサイクリック-2'-デオキシグアノシン； 6'-フルオロカルボサイクリック-2'-デオキシグアノシン； 1-(ベータ-D-アラビノフラノシル)-5(E)-(2-ヨードビニル)ウラシル； (1r-1α,2β,3α)-2-アミノ-9-(2,3-ビス(ヒドロキシメチル)シクロブチル)-6 H-プリン-6-オン； 9H-プリン-2-アミン，9-((2-(1-メチルエトキシ)-1-((1-メチルエトキシ)メチル)エトキシ)メチル)-(9Cl)；トリフルオロチミジン； 9-[(1,3-ジヒドロキシ-2-プロポキシ)メチル]グアニン； 5-エチル-2'-デオキシウリジン； E-5-(2-ブロモビニル)-2'-デオキシウリジン； 5-(2-クロロエチル)-2'-デオキシウリジン； 1-(2-デオキシ-2-フルオロ-ベータ-D-アラビノフラノシル)-5-ヨードシトシン（ＦＩＡＣ）； 1-(2-デオキシ-2-フルオロ-ベータ-D-アラビノフラノシル)-5-ヨードウリジン（ＦＩＡＵ）；ブシクロビル（buciclovir）； 6-デオキシアシクロビル； 9-(4-ヒドロキシ-3-ヒドロキシメチル-1-ブチル)グアニン[9-(4-hydroxy-3-hy droxymethylbut-1-yl)guanine]； E-5-(2-ヨードビニル)-2'-デオキシウリジン； 5-ビニル-1-ベータ-D-アラビノフラノシルウラシル（Ｖ−araＵ）； 1-ベータ-D-アラビノフラノサルチミン[1-beta-D-arabinofuranosulthymine] （ara−Ｔ）； 2'-nor-2'デオキシグアノシン（２’ＮＤＧ）； 9-(4-ヒドロキシ-3-ヒドロキシメチル-1-ブチル)グアニン[9-(4-hydroxy-3-hy droxymethylbut-1-yl)guanine]〔ペンシクロビル(penciclovir)，ＢＲＬ３９１２〕； 1-ベータ-D-アラビノフラノシルアデニン〔ara−Ａ；ヴィダラビン（vidarabi ne）〕モノホスフェートエステル，ジホスフェートエステル及びトリホスフェートエステルは一般式（式中、Ｎは抗−単純ヘルペスウイルス性のヌクレオシドアナローグであり；ＺはＯ，Ｓ又はＮＨであり；及びｎは１又は２である。）を有するか、または代替的に下式：（式中、Ｎは抗−単純ヘルペスウイルス性のヌクレオシドアナローグであり；ＺはＯ，Ｓ又はＮＨであり；ＸはＯ，ＣＨ２又はＳであり；及びｎは１又は２である。）を有する。従って、ホスフェートエステルは、ホスフェート，ホスホチオレートまたはホスホルアミデートであり得、またジエステル及びトリエステルは、酸素以外の原子と架橋していてもよく、例えば２,３-μ-チオトリホスフェートエステル，又は２,３-μ-メチレンジホスホネートが挙げられる。意外にも、これらのヌクレオシドアナローグホスフェートは、ＨＳＶ-感染した皮膚細胞の細胞膜を通過し、ＨＳＶＤＮＡポリメラーゼを阻害することによってウイルスの複製速度を減少させる。本発明のモノ−及びジホスフェートヌクレオシドは、細胞の同化的なリン酸化によってそれらのトリホスフェートに変換され、トリホスフェートアナローグが、細胞ＤＮＡポリメラーゼ阻害を要することなく、直接的にＨＳＶＤＮＡポリメラーゼを阻害する。本発明はまた、感染皮膚細胞中のＨＳＶの増殖を効果的に減少するために局所的に適用できる濃度で、ヌクレオシドアナローグモノ−，ジ−及びトリホスフェートを含有する薬学的上の製剤を提供する。ＤＮＡ鎖-終結(DNA chain-terminating)ジデオキシヌクレオシドホスフェートを、適切な局所用の剤形で、皮膚に適用すると、同様にＨＳＶの複製を減少させる。これらには、アシクロビル，ガンシクロビル，ペンシクロビル，ＢＶaraＵ，ジデオキシシチジン，ジデオキシチミジン，ジデオキシグアノシン，ジデオキシアデノシン，ジデオキシイノシン，３’−アジドジデオキシチミジン，ジデオキシヒドロジデオキシチミジン（ｄ４Ｔ）、及び同時係属の米国特許出願（ＳＮ 07/373,088）中に記載しているもののようなその他のジデオキシヌクレオシドアナローグが含まれる。これらの化合物の塩は容易に調製でき、かつそのような塩は、例えばクリーム，ゲル又はその他の水性分散体等の水性媒体中で高い溶解性を示す。一般的に、これらの化合物の有用な塩には、ナトリウム塩，カリウム塩，リチウム塩，アンモニウム塩又は水素塩が含まれる。また、当業者に公知の生理学的に許容され得るカチオンを用いてもよい。さらに、そのような塩は粘膜若しくは皮膚への好適な分散を与えるポリエチレングリコールクリーム及びローションに使用でき、かつ有効である。これらの化合物の種々のホスフェートエステルは、本質的に、アシクロビルについて下に記載するようにして調製するごとができる。アシクロビルホスフェートエステル類の合成：本発明は、アシクロビルモノ及びジホスフェート、アシクロビルモノホスフェートモルホリデート、アシクロビルモノ及びジホスフェートグリセロール並びにアシクロビルモノ及びジホスフェート１，２−イソプロピリデングリセロールの合成法を提供する。アシクロビルモノホスフェートは、トールチェン，デー．（Toorchen，D.）及びトパル，エム．（Topal，M.）， Carcinogenesis 4:1591−1597（1983）の方法を用いて変更され、実施例１に示されたヨシカワ，エム．（Yoshikawa，M.）ら，Bull．Chem．Soc．Japan 42:350 5−3508(1969)の方法によりアシクロビルから製造できる。アシクロビルジホスフェートは、トリブチルアンモニウムホスフェート又はトリブチルアンモニウムピロホスフェートのいずれかをリン酸供与体として用いるオット，デー．ジー．（Ott，D.G.）ら，Anal．Biochem．21:469−472（1967）の方法により、他のヌクレオシドアナローグのように製造できる。アシクロビルジホスフェートグリセロールの製造法は、実施例２から４に示されている。一般に、ヌクレオシドホスフェートグリセロール類は、ホスファチジルヌクレオシド類の製造法と似た方法により製造される。実施例３に記載された手法において、アシクロビルホスフェートは、実施例２に従って、離脱基、例えばモルホリンを加えて活性化され、Ｎ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC）の存在下、グリセロール−３−ホスフェートジシクロヘキシルアンモニウム塩と縮合される。或いは、実施例４に記載されているように、イソプロピリデン部位により保護されている反応性ヒドロキシル基を有するグリセロールホスフェートを、モルホリデートの添加により活性化し、次いで実施例２に記載の条件下にアシクロビルモノホスフェートと縮合させる。種々のアシル鎖を含む多数のアシクロビル−ジホスフェート−ジグリセライド類（ACV-DP-DG）は、従来、適当なジアシルホスファチジン酸モルホリデート（P A−モルホリデート）とアシクロビルモノホスフェート（ACV−MP）との縮合により製造されて来た。該手順を行うことのできる方法は、アグラノフ，ビー．（Ag ranoff，B.）及びスオミ，ダブリュー．（Suomi，W.），Biochem．Prep．10:47- 51（1963）に記載されている。或いは、名称が“リポヌクレオチド合成”である米国特許出願番号07/706,873及びホング（Hong）らによる英国特許出願番号2,16 8,350に記載されているように、ヌクレオシドモノホスフェートのモルホリデートを製造し、ホスファチジン酸と縮合させる。上記の化学的方法は、本発明化合物の製造へのその一般的な応用に関して一般的に開示されている。時には、開示された範囲内に含まれる各々の化合物に対して記載されたようには該反応を適用できないかも知れない。このことが起こる化合物は、当業者には容易に見分けがつく。このような場合、当業者に知られている慣用されている変更、例えば、妨害基の適当な保護、慣用されている代替試薬に変えること、又は反応条件のありふれた変更により、該反応を上手く行うことができる。或いは、ここに開示された他の反応又はさもなければ従来の反応が、本発明の対応する化合物の製造に適用できる。全ての製造方法において、全ての出発物質が公知であるか、又は公知の出発物質から容易に製造できる。特に断らない限り、全ての部及びパーセンテージは、重量によるものである。ヌクレオシドモノホスフェート、ジホスフェート及びトリホスフェート並びにヌクレオシドホスフェートアナローグの合成ヌクレオシドをオキシ塩化リンと反応させることによりヌクレオシドモノホスフェートを合成する方法は、同時係属の米国特許出願番号07/373,088及び番号08 /060,258に記載されており、また、過去に記載されている（ヨシカワ（Yoshikaw a）ら，Bul1．Chem．Soc．Japan 42:3505-3508 1969；トールチェン，デー．（T oorchen，D.）及びトパル，エム．（Topal，M.），Carcinogenesis 4:1591-1597 ，1983）。ヌクレオシドジホスフェートは、オット，デー．ジー．（Ott，D.G. ）ら(Anal．Biochem．21:469-472 1967)の方法により製造される。ヌクレオシドトリホスフェートは、セーラ（Seela）及 992）の方法により又はモファット（Moffat）及びコラナ(Khorana)(J．Am．Chem ．Soc．83:663，1991)の方法を用いて若しくはホード（Hoard）及びオット（Ott ）(J．Am．Chem．Soc．87:1785-1788，1963)の方法を用いて、ヌクレオシドモノホスフェートから製造される。後記実施例は、ヌクレオシド及びヌクレオシドアナローグのホスフェートエステル類の製造に有用ないくつかの合成法の詳細を示す。ヌクレオシドホスホロチオエート、ヌクレオシドホスホルアミデート、ヌクレオシドホスホネート及びヌクレオシドホスホロフルオリデートを含む他のヌクレオシドホスフェートアナローグは、当業者に周知の方法を用いて合成でき、例えば、デー．ダブリュー．ハッチンソン(D．W．Hutchinson)（ホスホリル残基の変化を伴うヌクレオシドモノ、ジ、トリ及びテトラホスフェート並びにヌクレオチドの合成、反応及び性質。In Chemistry of Nucleotides and Nucleosides，L． Townsend編 1991、pp 81-146及びその参照文献）により要約されている。一般的な合成を、以下に要約する。（1）ヌクレオシドホスホロチオエートは、１又はそれ以上のホスホリル酸素原子が硫黄により置換されているヌクレオチドのアナローグである。初期の合成法は、保護されたヌクレオシドとトリス(1-イミダゾリル) ホスフェンサルファー（tris（1-imidazolyl）phosphane sulfur）を反応させていたが、より最近の合成は、後者の試薬を、塩化チオホスホリル(PSCl₃)と置き換えている。ヌクレオシドホスホルアニリデートは、水酸化ナトリウム及び二硫化炭素により処理することによりホスホロチオエートに転化することができる。ヌクレオシド5'-ホスホロチオエートは、ヌクレオシド5'-亜リン酸エステルの直接硫化により得られる。プリンヌクレオシド2'(3')-ホスホロチオエートは、その2',3'-O-ジ-n-ブチルスタンニレン（2',3'-O-di-n-butylstannylene）誘導体を塩化チオホスホリルと反応させ、次いでアルカリ加水分解を行うことにより合成できる。（2）ヌクレオシドホスホルアミデートは、１又は２以上のホスホリル酸素原子が窒素により置換され、穏やかな酸性条件下においてもヌクレオシドホスホロチオエート類のP-S結合よりかなり不安定であるP-N結合を形成している。これら化合物の合成は、アミノヌクレオシドのリン酸化及びヌクレオシドアジドのホスホン酸のトリエステルを用いた処理を含む。親油性ヌクレオシドホスホルアミデート類は、細胞により容易に吸収され、そこで生物学的に活性な物質へと加水分解されるというその能力のため、特に有用な抗ＨＳＶ化合物であろう。（3）ヌクレオシドホスホネートは、ホスホリル酸素が炭素により置換され、安定なP-C結合を形成しており、リン原子が酸素の代わりに電子供与性のアルキル基で置換されると、P-OH基の酸性度が減少する化合物である。ヌクレオシドホスホネートは、ヌクレオシドのハロゲン化物から、アルバソフ(Arbusov)又はミハエリス−ベッカー反応のいずれかを用いて当業者により容易に製造される。ヌクレオシド5'-ホスホネートは、当業者に周知の方法を用いて、2',3'-保護5'ヨード-5'-デオキシヌクレオシドから合成できる。5'-酸素がメチレン基により置換されている同配体のヌクレオシド5'-ホスホネートは、適当に保護されたヌクレオシド5'-アルデヒドを、ジフェニルトリフェニルホスホルアニリデンメチルホスホネートとカップリングさせ、α，β-不飽和ホスホネートジエステルを得、次いでそれを還元し、ホスホリル残基で脱保護してホスホネートを得ることにより合成される。同配体のヌクレオシド3'-ホスホネートは、プリン又はピリミジンの重金属塩とカップリングしている、ホスホニル化されたリボース−１クロライドから出発して合成される。ホスホネート類は、一般的にその対応するリン酸エステルより極性が弱く、従って、局所に適用された場合細胞によってより容易に吸収されるため、抗-HSV剤として有用である。（4）ヌクレオシドホスホロフルオリデートは、モノヌクレオチドのアナローグである。ヌクレオシド5'-リン酸を2,4-ジニトロフルオロベンゼンを用いて処理すると、ヌクレオチドの2,4-ジニトロフェニルエステルを経てヌクレオシド5' ホスホロフルオリデートが生成する。（5）他のヌクレオシドポリホスフェートアナローグは、ヌクレオシドのジ及びトリホスフェートのα,β−リン原子の間で又はヌクレオシドトリホスフェートのβ,γ−リン原子の間で酸素以外の原子が置換されているもの（In Chemistr y of Nucleotides and Nucleosides，L．Townsend編 1991 中、D.W．Hutchinson の、119頁の表IIIに挙げられたものを含む）を含む。一般的に、α,β−アナローグは、2',3'-O-保護されたヌクレオシドをDCCを用いてピロホスフェートアナローグと縮合させることにより又はメチレンビスホスホネートイオンを用いてトシルヌクレオシドの糖残基の5'-位からのトルエン−スルホニル（トシル）残基の置換を含む求核置換反応により製造できる。 ACV-MP、ACV-DPN、ACV-TP、ACV-MP-グリセロール、ACV-DP-グリセロール、ACV -MP-イソプロピリデングリセロール、ACV-DPイソプロピリデングリセロール及び ACV-P-メチレンジホスホネートを包含する本発明のアシクロビル誘導体は、アシクロビル耐性HSV-1感染のヘルペス病変の局所的治療において特に効力を有することが見出された。実施例７は、HSVの野生型分離株及びラボラトリーストレインによる培養細胞の感染がアシクロビル、アシクロビルモノホスフェートを用いて同等の成果をもって治療できることを示す。Wi38 線維芽細胞中におけるこれらウイルス感染に対して、アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートのいずれもが、約１又は２μＭの濃度の同じIC₅₀を有している。しかしながら、同じ培養細胞系を、アシクロビルをアシクロビルモノホスフェートに変換するのに必要なチミジンキナーゼを欠いた、ウイルスのアシクロビル耐性株であるHSV-DM.2 1に感染させた場合、アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートは、ウイルスプラークの数を減少させるのには効果的ではない（実施例７；図２）。アシクロビル耐性皮膚HSV-1 感染に関するアシクロビルホスフェートエステルの有効性は、上記の培養細胞のインビトロのデータを考慮すると驚くべきものである。アシクロビル耐性HSV-1 に感染したマウスのヘルペス性病変に水性クリーム形態で塗布されるアシクロビルリン酸エステルは、そのような病変の数を減少させることにおいてネイティブアシクロビルより実質的に効果的である（実施例９；図３及び４）。従って、これら結果を考慮すると、アシクロビル及びアシクロビルホスフェートのインビトロでの取り込みは、局所に塗布するローションとしてのインビボとは異なる作用モードにより行われると考えられる。ヌクレオシドアナローグホスホネート類の局所製剤：前記したような本発明のヌクレオシドアナローグ誘導体は、皮膚科学の用途に有用で好都合であるとして当業者に知られている種々の製剤に混ぜることにより局所用に調製できる。該ヌクレオシドアナローグ誘導体は水溶性であり、従って水溶液、ウォーターインオイル型エマルション又は水性クリームが非常に好ましい製剤である。アシクロビルおよび他のヌクレオシドモノホスフェートの水への溶解度は、ナトリウム、カリウム、アンモニウム又は水素のような塩の作成により高めることができる。特に好ましい製剤においては、有効成分は、ポリエチレングリコール（PEG）ビヒクル中で調製される。或いは、有効成分は、希釈剤又はキャリアーとしてデンプン又はタルクのような不溶性粉末を用いて乾燥粉末製剤として局所的に塗布できる。ビヒクルは、浸透を高め、活性の持続時間を長くし又は塗布の部位の要求に応じるように選択することができるので、一部の局所製剤の重要な成分である。例えば、手のひら又は足の裏のような体のべんち状の部分への塗布用の製剤は、ジメチルスルホキシドプロピレングリコール又はアゾーン（azone）^TMのような浸透促進剤を含有することができる；粉末状製剤は、股、肘の内側又は指の間又はつま先のような間擦ゾーン（intertriginous zones）への塗布用に選択できる。該製剤は、活性のある抗ウイルス性アシクロビル誘導体の持続的な放出を得られることが当業者に知られている種々の有機高分子又は他の組成物を含有するように調合することもできる。多数の適当な局所製剤は、全ての薬剤の化学者に公知の処方書：レミントンズファーマシューティカルサイエンシズ（Remington's Pharmaceutical Scien ces），第15版、1975．Mack Publishing Copmpany，イーストン、ペンシルヴェニア 18042．（第87章：Blaug，Seymour）に見出すことができる。これら製剤は、例えば、粉末、ペースト、軟膏、ゼリー、ろう、油、脂質、無水吸水性基剤、オイルインウォーター型又はウォーターインオイル型エマルション、エマルションカーボワックス（種々の分子量のポリエチレングリコール）、半固体ゲル及びカーボワックスを含有する半固体混合物を含む。本発明の局所製剤における有効成分の濃度は、約0.01 gm%〜100 gm%; 好ましくは約0.1 gm%〜50 gm%; 最も好ましくは約1 gm%〜約15 gm% である。該製剤は、さらに、上記で参照した処方書に記載され又当業者に周知の肌への浸透及び治癒を促進する他の物質を有効濃度にて含有することができる。本発明の活性のあるホスフェートエステルを含有する局所製剤の有効性は、当業者に公知の慣用されている試験手順を用いて評価することができる。例えば、特に手早い手順は、エリスエム．（Ellis，M．）ら，抗菌物質及び化学療法（ Antimicrobial Agents and Chemotherapy）33:304-310(1989)に記載されているようなネズミの“オロフェーシャルモデル（orofacial model）”である。この試験システムにおいては、鼻を乱切されそこに接種されたマウスのHSV病原は、免疫無防備状態の宿主の皮膚のHSV感染の疾病サイクルの妥当なモデルであることが示されている。該製剤は、侵された皮膚のヘルペス性病変に繰り返し；例えば、１日に１回、２回又は数回塗布でき、治療は、治癒するまで数日間延長することができる。毒性及び炎症の発生の危険は最小限である。実施例１アシクロビルヌクレオシド誘導体のリン酸化アシクロビルヌクレオシド誘導体を、以下の方法により製造した。本質的にはヨシカワ（Yoshikawa）ら，テトラヘドロンレターズ（Tetrahedron Letters） 50:5065-5068(1967);及びヨシカワエム．カトー（Yoshikawa，M．Kato）らBul l．Chem．Soc．Japan 42:3205−3208(1967)に記載されている様にして、保護されていないアシクロビルを、リン酸トリメチル（(CH₃O)₃PO）中でPOCl₃と反応させた。リン酸トリメチル300〜400 mL中の2 M POCl₃の冷却溶液（0℃）に、アシクロビル（1 M）を攪拌しながら滴下し、反応温度を０°〜５℃の間で一定に保った。反応の進行を、モノ Q HR 5/5（Mono Q HR 5/5）アニオン交換カラム（ファーマシア、ウプサラ、スウェーデン）を用いたHPLCによりモニターした。典型的には、反応混合物５μＬを水酸化ナトリウム水溶液を用いて中和（最終的にpH 7）し、カラムに注入した。溶出を以下のように行った：水による洗浄、アシクロビルモノホスフェートを溶出させる0.1 M炭酸アンモニウム、NH₄HCO₃を用いる溶出、次いでより高度にリン酸化した生成物を溶出する0.1〜0.6 MNH₄HCO₃のリニアグラジエント。反応は、この方法により測定されたように45〜75分間内にほとんど完了し、反応生成物を加水分解し、２倍量の水酸化ナトリウム水溶液を用いて中和し、最終的にpH 7とした。生成化合物の精製を、反応混合物の分析のために上記のように行った。この方法により、アシクロビルモノホスフェートが0.8モル製造され、同じ溶出条件によりQ セファロースファーストフローカラム（Q Sepharose fast flow column）を用いて精製された。収率は、水から繰り返し凍結乾燥した後、80%〜96%の範囲であった。 1-プロパノール/25% NH₃/H²O(20:20:3 容量による)の展開システムを使用する TLC分析（シリカ 60/F254 プレーツ（Silica 60/F254 Plates）、メルク）は、単一のU.V.及びPiポジティブスポット（Pi positive spot）を示した。実施例２アシクロビル-モノホスホモルホリデートの製造アシクロビル−モノホスフェート（5 mmol）及びモルホリン（20 mmol）を、t-ブタノール（50 mL）中に懸濁させ、穏やかな還流下に加熱しながら、t-ブタノール（50 mmol）中に溶解させたN,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC，20 mmol）を１時間かけて滴下した。混合物を12〜36時間還流下に攪拌し、蒸発乾固した。残渣を、エーテルと共に粉砕し、同じ溶媒を用いてデカンテーションにより洗浄した。該生成物を、メタノール−エーテル混合物から再結晶化させることにより精製した。実施例３アシクロビル-モノホスホモルホリデートからの sn- グリセロ-3-ジホスホ-アシクロビルの製造実施例２に記載されたようにして製造したアシクロビルモノホスホモルホリデート（2 mmol）を、乾燥ピリジン（20 mL）中に溶解させ、真空下に蒸発乾固した。ピリジン中への残渣の溶解及びエバポレーションの工程を、痕跡量の水を化合物から除去するためにさらに３回繰り返した。グリセロール-3-ホスフェートジモノシクロヘキシルアンモニウム塩（3 mmol）を、乾燥させた残渣に加え、混合物をピリジン20 mL に溶解させ、不活性雰囲気下において60℃にて12〜36時間攪拌した。溶媒を真空下に蒸発させ、残渣をエーテルを用いて滴定し、得られた固体をDEAE セファデックスカラム（DEAE sephadex column）（2.5 cm x 30 cm ）上にて、炭酸水素アンモニウムのリニアグラジエント（10 mmol〜300 mmol，各500 mL）を用いてイオン交換クロマトグラフィーにより精製した。純粋な生成物を含有する画分（TLC及び分析HPLCを用いて同定）をプールし、凍結乾燥して表題の化合物を得た。実施例４ 1,2- イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-モノホスホモルホリデートからのsn-グリセロ-3-ジホスホ- アシクロビルの製造Ａ． 1,2- イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-リン酸の製造オキシ塩化リン（25 mmol）を、1,2-イソプロピリデン-グリセロール（20 mmo l）（シグマ、セントルイス、ミズーリ）及びトリエチルアミン（100 mol）の混合物に30分かけて滴下し、それを０℃まで冷却した。混合物を０℃で10〜90分間攪拌した後。水(1 mL)を加えて反応を止めた。次いで、該混合物をクロロホルム（500 mL）に溶解し、水（3 x 100 mL）を用いて洗浄した。水洗浄溶液を合わせ、クロロホルム（50 mL）を用いて逆抽出し、凍結乾燥させた。生成物を、さらなる精製を行わずに続く反応に直ちに用いた。Ｂ． 1,2- イソプロピリデン-sn-グリセロ-3- モノホスホモルホリデートの製造実施例２のアシクロビルホスホモルホリデートの製造のために記載された手順に従って、(A)にて記載したようにして製造した1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-ホスフェートをモルホリンと縮合させて1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-モノホスホモルホリデートを製造した。 1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-モノホスホモルホリデートの中間化合物とアシクロビルモノホスフェートとの実施例２に記載された条件の下における反応により、1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-モノホスホモルホリデートを得た。 1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3-ジホスホ-アシクロビル（1 mmol）を50 〜90％の酢酸水溶液に溶解し、室温にて４〜12時間攪拌し、粗製のグリセロ-3- ジホスホ-アシクロビル生成物を上記のようにして精製した。実施例５ sn- グリセロ-3-ホスホ-アシクロビルの製造（実施例 4B のようにして製造した）1,2-イソプロピリデン-sn-グリセロ-3- ホスフェート1 mM 及びアシクロビル（1 mM）を、乾燥ピリジン（10 mL）及びDC C（4 mm ol）中に懸濁させた。溶解したピリジン（4 mL）を加え、混合物を25℃〜60℃にて12〜72時間攪拌した。溶媒を蒸発させ、残渣をエーテルを用いて滴定した。粗製の生成物を実施例３に記載したようにイオン交換クロマトグラフィーを用いて精製した。次いでイソプロピリデン保護基を酢酸水溶液を用いて処理することにより生成物から外して、表題の化合物を与えた。或いは、表題の化合物を、2,4,6-トリイソプロピルベンゼンスルホニルクロリド（TPS-Cl）を縮合剤として用いることによっても製造した。実施例６アシクロビルジホスフェートジパルミトイルグリセロールのアルカリ加水分解によるアシクロビルホスフェートエステル混合物の製造アシクロビル-ジホスフェート-ジパルミトイルグリセロール（1 mmol）をクロロホルム中に溶解させ、それにメタノール性水酸化ナトリウム（2.1 mmol）を加えた。反応を20〜90分間行い、進行をTLCを用いてモニターした。反応が完了すると、ドウェックス-50 X-2（Dowex-50 X-2）（H +）を反応混合物に加えてpHを７に調整した。樹脂を濾過により分離し、濾液を凍結乾燥し、粗製の生成物を実施例１に記載されたように精製した。実施例７モノヌクレオシドからのヌクレオシドトリホスフェートの製造デオキシリボヌクレオチド類、ジデオキシリボヌクレオチド類及びアナローグの5'トリホスフェートの製造は、すぐ下に概説されるような一連の反応を含む。ヌクレオチドアナローグモノホスフェートの合成は、1993年５月12日に出願された同時係属米国特許出願番号08/060,258及び実施例１に記載されている。さらなる方法は、以下の通りである：ヌクレオチド(Ｉ)及び過剰の1,1'-カルボニルジイミダゾール(II)を約１時間、室温にて反応させてイミダゾリデート(III)を得る。未反応の1,1'-カルボニルジイミダゾールを、過剰の無機性ピロホスフェート(IV)を加える前にメタノールを用いて分解する。これは、後に反応物質から除去しなけらばならないであろう無機性のポリホスフェートの形成を排除する。リン酸化を、無機性ピロホスフェート（IV）の添加後約24時間で完了するように進行させ、次にヌクレオシドトリホスフェート生成物（V）をDEAE- セルロース上でアニオン交換クロマトグラフィーにより精製し、続いてナトリウム塩のような塩への生成物の転化を行う。ヌクレオチド(Ｉ)及びイミダゾリデート(III)は、共に反応して対称ピロホスフェート副生成物を形成するので、DEAE- セルロース上でのアニオン交換クロマトグラフィーは低いpHで行い、所望の生成物(V)は望ましくない副生成物より低い電荷を有するので、２つの化合物の分離ができる。合成に使用する１つの試薬は、以下の手順により合成されるトリブチルアンモニウムピロホスフェートである。ピロリン酸４ナトリウム10水和物（446 mg，1 mmole）溶液をドウェックス 50W-X4^TM（ピリジニウム）樹脂(17 mL)を通過させることにより得られるピリジニウムピロホスフェートの水溶液に、トリブチルアミン（0.24 mL，1 mmole）を加える。該溶液を真空下に濃縮し、次に残渣を無水ピリジンの連続した添加及び蒸発、続いてN,N-ジメチルホルムアミド（DM F）10 mLの２回の添加及び蒸発により乾燥させる。ヌクレオシドトリホスフェートの合成を以下の方法により行う。DMF 1 mL 中の無水トリブチルアンモニウム塩形態にあるモノヌクレオチド（0.1 mmole）の溶液又はサスペンジョンに、DMF 1 mL 中の1,1'-カルボニルジイミダゾール（80 mg，0.5 mmole）を加える。該組合せを、30分間混合し、次いで、メタノール33 μL（0.8 mmole）を用いて処理してRTにて30分間反応させる前に、室温にて４〜 12時間デシケーターに入れた。DMF 5 mL中のトリブチルアンモニウムピロホスフェート（0.5 mmole）を加え、激しく混合し、次いで該混合物をデシケーターにR Tにて約24時間入れ、イミダゾリウムピロホスフェートを沈殿させた。沈殿物を除去し、DMF 1 mL を４回用いて遠心分離、及びDMF中への再懸濁洗浄し、約80〜 100％の純度を得た。上澄みを、同じ体積のメタノールを用いて処理し、真空下にて蒸発乾固した。残渣を、炭酸水素トリエチルアンモニウム塩のリニアグラジエント（pH 5 〜 7.5における約０〜0.4M の3 L グラジエント）を用いてDEAEセルロールの2 X 20 cmカラム上のクロマトグラフィーにかけ、画分を収集し、ヌクレオシドトリホスフェートを含有する画分を同定するために分光測光的にアッセイを行う。適当な画分を真空下にエバポレートし、トリエチルアンモニウムヌクレオシドトリホスフェートを濃度約0.05 M になるようにメタノールに溶解させ、５倍量（15等量）の過塩素酸ナトリウムのアセトン溶液を加えてヌクレオシドトリホスフェートのナトリウム塩の沈殿物を形成させる。当業者には、適当な沈殿反応によりヌクレオシドトリホスフェートの他の塩を形成し得ることが理解されるであろう。沈殿した塩を遠心分離により収集し、アセトン1 mL を４回用いて洗浄し、真空下にて５酸化リン上において乾燥させる。次の実施例に示される手順のようなヌクレオシドトリホスフェートの合成のためのさらなる手順が利用できる。実施例８ 2,2,2- リブロモエチルホスホロモルホリノクロリデートを用いたヌクレオシドモノ、ジ及びトリホスフェートの合成本質的にヴァンブーム（van Boom）ら（Tetrahedron Lett．32:2779-2782， 1975）の方法を用いて、リボヌクレオシドのモノ、ジ及びトリホスフェート並びにその誘導体を単一の中間体から製造する。一般に、反応は、リボヌクレオシドに結合した2,2,2-トリブロモエチル保護基を有するホスホトリエステル誘導体を合成するため（即ち、リボヌクレオシド5'-ホスホモルホリデート又はリボヌクレオシド5'-ホスホモルホリデート誘導体を製造するため）に、単官能試薬（2,2,2-トリブロモエチルホスホロモルホリノクロリデート）をリボヌクレオシド（又はその誘導体）と反応させることを含む。上記保護基を、酸性脱保護を用いてCu/Znカップリング反応及び中和により除き、脱保護工程において使用する酸及び中和工程において使用するアンモニウム塩に応じてモノ、ジ及びトリホスフェートを生成する。即ち、モノホスフェートリボヌクレオシドを得るためには、HCl及びアンモニアを使用し；ジホスフェートリボヌクレオシドを得るためにはリン酸のモノ（トリ-n-ブチルアンモニウム）塩を使用し；トリホスフェートリボヌクレオシドを得るためには、ビス（トリ-n-ブチルアンモニウム）ピロホスフェートを使用する。一般的反応を、以下に図示する：単官能性試薬(Ｉ)2,2,2-トリブロモエチルホスホロモルホリノクロリデートは、2,2,2-トリブロモエチルホスホロジクロリデートとモルホリンとを無水エーテル中にて反応させることにより製造され、それから、当業者に周知の方法を用いて反応生成物を除去し、シクロヘキサン/n-ペンタンにより再結晶させる。結晶性2,2,2-トリブロモエチルホスホロモルホリノクロリデートの融点は79℃である。単官能性試薬（2 mmole）を、無水ピリジン中20℃にて48時間ヌクレオシド又はその誘導体1 mmoleと混合する；次いで、反応混合物をクロマトグラフィーにより分画して（B.J.Hunt & W．Rigby，Chem．& Ind．1868，1967）無色の固体状のヌクレオチド(III)を得る。該ヌクレオチドを無水DMF中10分間20℃にてCu/Znカップルを用いて処理し、次いで濾過により過剰のCu/Znを除去し、ヌクレオシドホスホロモルホリデート類を得る。次いでヌクレオシドホスホロモルホリデートを異なる酸及びアンモニウム源を用いて処理し、モノ、ジ又はトリホスフェートのいずれかを得る。モノホスフェートのためには、ホスホロモルホリデートを0.01 N の HClを用いてpH 2 にて２時間20℃にて処理し、次いでアンモニア水（pH 9）を用いて中和し、セファデックスG-25^TMのカラム上で精製した。同様にして、ヌクレオシド5'-トリホスフェートを、無水DMF 2 mL 中のホスホロモルホリデート（0.1 mmole）と無水DMF 2 mL 中のビス（トリ-n-ブチルアンモニウム）ピロホスフェート 0.5 mmoleとを20℃にて３時間、水分を排除した条件下にて反応させる。反応生成物を、真空下にて濃縮し、ドウェックス 50^TMを用いて処理し（アンモニウムの形態）、0.0〜0.3M Et₃NH₂CO₃溶液の3 L リニアグラジエントを用いてDEAEセルロースの2 x 25 cmカラム上にて精製する。ヌクレオシド5'-ジホスフェートを、ホスホロモルホリデート（0.1 mmole）と無水ピリジン 4 mL 中のモノ（トリ-n-ブチルアンモニウム）ホスフェート0.6 mmoleとを、20℃にて３時間、水分を排除した条件下にて反応させ、反応生成物を同様に濃縮し、精製する。或いは、ホスホトリエステル誘導体(III)を、モノ（トリ-n-ブチルアンモニウム）ホスフェートを含有するピリジン溶液中においてZnダストを用いて処理することにより、対応するヌクレオシドジホスフェートに直接転化できる。即ち、試薬III 1 mmole を、微粉砕した Zn 0.1 g 及び12 mmoleのモノ（トリ-n-ブチルアンモニウム）ホスフェートを含有する無水ピリジン 15 mL の攪拌溶液中に水分を排除した条件下にて約48時間2 0℃にて加える。その後、反応混合物を遠心分離してZnをペレット化し、上澄みをDEAEセルロース上での精製の前の各々の段階において15 mL の水を用いて３回エバポレートする。実施例９アシクロビルトリホスフェートの合成（１）アシクロビル-5'-トリホスフェエート、トリエチルアンモニウム塩、合成。アシクロビル（25 mg，0.1 mmol）をリン酸トリメチル（250 μL，1.07 mmo l）に溶解させ、POCl₃（18.5 μL，0.2 mmol）を加える。該混合物を1.5時間０ ℃にて攪拌し、次いで無水DMF 1 mL 中のビス（トリ-n-ブチルアンモニウム）ピロホスフェート 0.5 M と、トリ-n-ブチルアミン 1 mL の混合物を激しく攪拌しながら１分間かけて添加する；該溶液を、1 M のEt₃NH₂CO₃水溶液を用いてpH 7 に中和し、真空下にて蒸発乾固する。Et₃NH₃ CO₃、pH 7（11 H₂O/11 0.7 M TBK）溶液のリニアグラジエントを用いてDEAEセファデックスの2.6 x 30 cm カラム上にて残渣を精製し、UV（H₂O）λ max 258 nm の無色の固体を得る。実施例10 アシクロビル-ホスホメチレンジホスホネートの合成合成は、マイヤー（Myers）ら（J．Am．Chem Soc．85:3292-3295，1963）の方法１に本質的に記載されている。ヌクレオシド5'-ホスホルアミデートをメチレンジホスホン酸と反応させて、ヌクレオシドポリホスフェートのホスホン酸アナローグを製造する。或いは、マイヤーら（id.）の方法２を用いて、ジシクロヘキシルカルボジイミド（DCC）を縮合剤として用いてヌクレオシドモノホスフェートをメチレンジホスホン酸と反応させる。方法１によれば、メチレンジホスホン酸は、濃縮HCl中において、ジヨードメタンと過剰の亜リン酸トリエチルとの反応により調製されるそのテトラエチルエステルの加水分解により得られる。1,3-ジシクロヘキシルグアニジニウムアシクロビル5'-ホスホルアミデート（3.6 mmole）とメチレンジホスホン酸（10.8 mmole）を、新たに蒸留したo-クロロフェノール54 mL を用いて処理する；該混合物を氷上にて冷却し、乾燥ピリジン36 mL を加える。この得られた溶液を、時々かき混ぜながらRTまで48時間放置し、氷中にて冷却しつつ水300 mL を加える。該溶液を、エーテルを用いて６回抽出する（全部で850 mL）。該水溶液を、1 N のHClを用いてpH 2 に調整し、次いで酸洗浄した（acid-washed）木炭（Norit A）30 g を用いて処理し、30分間攪拌する；次いで、濾過により木炭を収集し、水（全量5 L）を用いて徹底的に洗浄する。アシクロビル誘導体を、50％水性エタノール−5％濃縮水酸化アンモニウム（全部で 3 L）を用いて溶出し、溶出液を35℃におけるエバポレーションにより容量400 mL まで濃縮する。濃縮された溶出液を、ドウェックス-2^TM（塩化物；8%架橋）の2.7 cm x 31 cm カラムに適用し、0.003 N のHCl（混合容器中）2 L と0.003 N の HCl プラス0 .45 N のLiCl（貯蔵器中）2 L を混合してなるリニアグラジエントを用いて溶出する；10 mL の画分を収集し、アシクロビルメチレンジホスホネートを含有する画分を、当業者に周知の方法によりペーパークロマトグラフィー又は紫外線吸収度を用いて同定する。アシクロビルメチレンジホスホネート含有画分を、1 N LiOH を用いて中和し、30℃におけるエバポレーションにより濃縮する；濃縮された溶液を、アセトン-10%メタノール 250 mL を用いて処理して固体を沈殿させ、それを遠心分離により分離させ、アセトン-10%メタノール混合物を用いて洗液に塩化物が検出されなくなるまで洗浄する。アシクロビルメチレンジホスホネートのLi-塩は、LiOHを用いてpH 8 に調整した水100 mL 中に該塩を溶解させ、上記したようなドウェックス-2^TMカラムを通して、混合槽中0.003 N のHCl 1.5 L と貯蔵器中0.003 N の HCl プラス0.45 N の LiCl 1.5 L を混合してなるグラジエントを用いてクロマトグラフィーにかけ、上記のように溶出液を処理し、続いて沈殿物を水 6 mL に溶解させ、それをメタノール40 mL により沈殿させることによりさらに精製できる。最終的な沈殿物を、水 15 mL に溶解させ、凍結乾燥させてテトラリチウムアシクロビルメチレンジホスホネートの粉末を得る。方法２を用いて、メチレンジホスホン酸（11.4 mmole）とアシクロビルモノホスフェート(2.6 mmol)をピリジン（30 mL）と水（4 mL）に溶解し二相混合物を得、それにDCCを室温にて激しく攪拌しながら３分割して（反応の最初は29 mmol e；４時間後には48 mmole；12時間後には 19 mmole）加える。24時間後、該反応は完了し、沈殿したジシクロヘキシルウレアを濾過して取り除き、水にて洗浄する。濾液及び洗液を、水を用いて全量150 mLに調整し、エーテル（全部で 300 mL）を用いて５回抽出する。該溶液をpH 8 に調整し、2.5 cm x 17.5 cmカラムのドウェックス-1^TM（ホルメート；2%架橋）カラム上でクロマトグラフィーにかける；該カラムを水1.5 L を用いて洗浄し、ピリジンを除去する。カラムからの溶出を、500 mL の水を有する混合槽に次の溶液：4 N のギ酸（500 mL）、4 N のギ酸プラス0.1 M のギ酸アンモニウム（50 0 mL）及び4 N のギ酸プラス0.2 M のギ酸アンモニウム（1500 mL）を順次加えて作成したグラジエントを用いて行い、15 mL の画分を収集する。2CdATMDPを含有する画分（おおよそ試験管115〜134）を当業者に周知の方法を用いて紫外線吸収により同定する。2CdATMDPを含有する合わせられた画分を体積約200 mL になるまで凍結乾燥し、次いで酸洗浄した木炭（Norit A）7 g を用いて処理し、15 分間攪拌する；次いで、木炭を濾過により収集し、水により洗浄する（全部で80 0 mL）。生成物を50％水性エタノール−5%濃縮水酸化アンモニウム（全部で600 mL）を用いて溶出させ、溶出液を20℃でのエバポレーションにより体積200 mL に濃縮し、痕跡量の木炭を除去するために濾過し、凍結乾燥させて粉末にする。該粉末を、水 4 mL 中に溶解させ、該溶液を過剰の1 M の酢酸バリウムを用いて処理する；得られる沈殿物を遠心分離により収集し、水により洗浄して０℃にて0.1 N のHBr中に溶解させる。該溶液を1 N のNaOHを用いてpH 6.5 に調整し、得られる沈殿物を遠心分離により収集し、水、エタノール及びエーテルのそれぞれ2 x2 mL を用いて順次洗浄する。試料をRTにてP₂O₄上にて12時間かけて乾燥させ、ジバリウム2CdATMDP水和物を得る。本発明の他のヌクレオシドアナローグホスホメチレンジホスホネート類は、同様にして製造される。実施例11 HSV のアシクロビル耐性TK突然変異株（DM.21）におけるアシクロビルモノホスフェートの抗ウイルス効果の欠如単純ヘルペスウイルス（HSV）の野生型株又はHSVの突然変異株（DM.21）のいずれかで感染させたWi-38線維芽細胞の分離培養株を、個々にアシクロビル又はアシクロビルモノホスフェートで処理した。DM.21突然変異株は、ACVを通常ACV- MPへ変換するチミジンキナーゼ酵素を欠いており、従って、アシクロビルに対して耐性を有する。HSV-1についての結果を図１に示し、HSV-DM.21についての結果を図２に示す。IC₅₀は、ウイルスプラークの形成を50％阻害する抗ウイルス剤の濃度である。単純ヘルペスウイルス（HSV-1）の野生型分離株及び実験室的細胞株において、アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートは、0.1 μMのIC₅₀を有している（図１）。これに対して、アシクロビル及びアシクロビルモノホスフェートは、このアッセイにおいて、突然変異HSV株に対しては100μMより高いIC₅₀を有している（図２）。これらのインビトロでの結果に基づくと、アシクロビルモノホスフェートをHS Vのチミジンキナーゼの欠失株又はHSVの他の突然変異株に感染した動物に対して局所的に投与した場合に、有意な活性を示すとは予期されないであろう。実施例12 HSV のアシクロビル耐性細胞株に感染したマウスでのアシクロビルホスフェートエステルの抗ウイルス効果 HRS/Jタイプのマウスを、エリス，エム．（Ellis，M．）らによるAntimicrobi al Agent and Chemotherapy 33(3):304-310(1989)に記載されているような鼻乱切法を用いて皮膚に感染させた。簡単には、軽いエーテル麻酔の下、25-ゲージ針を用いて乱切し、続いて希釈ウイルスに浸漬した綿キャップを有するアプリケーターを用いて10秒間擦り込むことにより、10匹のマウスの群の鼻に接種した。感染に使用したウイルスは、エリス，エム.（Ellis，M．）らに言及されているT K-欠失細胞株（TK-deficient strain）（TK^D）であった。感染の３時間後、該動物を上記に引用したエリスの参照文献に従って、水性クリームの形態のアシクロビル又はアシクロビルモノホスフェートの製剤を用いて、１日３回、４日間局所的に処置した。結果を図３に示す。アシクロビル5 gm% を含有する製剤は活性を有していた。これに対して、80%のアシクロビルモノホスフェートと20%の他のアシクロビルホスフェートエステル（アシクロビルジホスフェート及びアシクロビルジホスフェートグリセロール）の混合物を5 gm% 含有する製剤は、ヘルペス病変を発症したマウスはほんのわずかであり、優れた活性を示した。全ての障害は全ての群において８日で治癒した。上記の手順を、より悪性の細胞株であるTK-変性HSV-1ウイルス（TK^A，エリス，上記）を用い、また５日間の連続的な処処理を行って、繰り返した。TK^Dウイルスと違い、TK^Aは未処置のマウスにとって致命的である。5 gm パーセントのアシクロビルを用いた処置は、病変スコア（lesion scores）を穏やかに減少させ、ほとんどの動物が生き残り、実質的に14日目までに良くなる。しかしながら、同じ濃度のホスフェートエステルを用いると、図４に示されるように、病変スコアに劇的な向上があり、全ての病変が９日後に消散し、すべての動物が生き残った。実施例13 アシクロビル耐性野生型型HSV-1に感染したマウスでのアシクロビルモノホスフェートの抗ウイルス効果実施例12の手順を、アシクロビル感受性野生型HSV-1、及びアシクロビル誘導体としてアシクロビルモノホスフェート（ACV-MP）のみを含む製剤を用いて繰り返した。２種のクリームを調剤した。１種はACV-MPを水性クリーム中に14.5 ミリモル/100 mL 含み、もう１種は、アシクロビルを22.2 ミリモル/100 mL 有するものである（いずれも5 gm% であるが、ホスフェート基の付加により、モノホスフェート中のアシクロビルのモル数は、アシクロビルそのものと比較して減少している）。処置は感染の24時間後に開始し、１日４回、４日間続けた。10匹の未処置マウスは、５日目までに第４期の病変を発症し、14日目までに全て死んだ（図５）。アシクロビルモノホスフェートによる処置動物は、病変を発症させず、10匹中10 匹の動物が生き残った（図５）。アシクロビルによる治療群は、数匹の動物が７〜９日目に軽い病変を生じたが、それは消散した；10匹中９匹の動物が生き残った。この研究は、低い投与量（14.5mmol/100 mL）におけるACV-MPは、野生型HSV-1 感染の病変を予防するのにアシクロビル（22.2mmol/100 mL）より効果的であったことを示す。実施例14 アシクロビル耐性HSV-1 に感染したマウスでのアシクロビルモノホスフェートの抗ウイルス効果実施例12の手順を、アシクロビル誘導体としてアシクロビルモノホスフェート（ACV-MP）のみを含む製剤を用いて繰り返した。治療は、感染後３時間で始め、感染の日には２回、その後は４日にわたりずっと１日３回処置した。ここで図６を参照すると、アシクロビル耐性（TK変性）HSV-1に感染した動物における病変スコアの減少において、14.5 mmol/100 mLにおけるACV-MPは、明らかに22.2 mmo l/100 mL におけるアシクロビルより効果的である。コントロール群及びアシクロビル処置群においては、14日の実験で生き残ったマウスは10匹中８匹であったのに対して、アシクロビルモノホスフェートによる処置によれば10匹中10匹が生き残った。実施例15 アシクロビル耐性HSV-2 に感染したモルモットでのアシクロビルモノホスフェートの抗ウイルス効果我々は、水性クリーム（AC）中のアシクロビルモノホスフェート（ACV-MP）を試験して、それが初期の生殖器ヘルペスの治療に対して、ポリエチレングリコール中5%のアシクロビル（ACV-PEG）よりも効果的かどうかを調べた。特に、我々は、ACV-耐性HSV-2によるモルモットの生殖器ヘルペス感染を調べた。更に我々は、２種の担体系：水性クリーム（AC）及びポリエチレングリコール（PEG）におけるアシクロビル処置を比較した。実験は、プラシーボ−コントロールを行い、未感染の動物を各ACV調製物で処置して、ヒフ及び膣の炎症を評価した。離乳したばかりのモルモットにHSV-2を膣内接種すると、膣道でのウイルスの初期の複製、それに続く外部の小胞性病変の発症によって特徴づけられる初期の生殖器感染を生じる。膣道中のウイルス力価は、１〜３日目にピークに達し、７〜10日目までに徐々に消える。外部生殖器の病変は、４日目に初めて現れ、激しいピーク病変が６〜８日目に起こり、該病変は大体15〜18日目までに治癒する。変性したチミジンキナーゼを有し、ACVでのインビトロ処置に耐性であるHSV-2 細胞株12247を動物に接種した。まず、重さ250〜300グラムの雌のハートリーモルモット（Hartley guinea pig）（チャールズリバー、キングストン、ニューヨーク）の膣を、膣分泌物を除去するために拭く。１時間後、該動物に2.4×10⁴プラーク形成単位（pfu）を膣内に接種した。接種は、膣道にウイルスを浸した綿棒を挿入し、約６回回転することによって行った。 10匹のモルモットの群を、膣内および外部の生殖器皮膚の両方にそれぞれの製剤0.1 mL（１匹の動物につき１回の処置につき全量0.2 mL）を用いて処置した。動物を、ウイルス接種の24時間後に始めて７日間、１日３回、処置した。３匹の未処置動物を同じスケジュールにより各々の製剤を用いて処置して、局所の毒性及び炎症を評価した。膣道でのHSV-2複製に対する種々の処置の有効性を調べるために、膣の分秘物を付けた綿棒を、初期感染の間である、HSV-2接種の後1，3，5，7及び10日目に得た。該綿棒を2.0 mLの培地を含有するチューブに入れ、攪拌し（vortexed）、 HSVの力価を測定するまで-70℃にて凍結した。全ての試料を収集した時に、それらを解凍し、連続的に希釈して、HSV-2の力価を微量定量CPEアッセイでウサギの肝細胞を用いて測定した。我々はまた、処置の有効性を調べるために、外部生殖器の病変の発生と重篤度も測定した。病変の重篤度は、０−５＋スコアの等級に分けた。病変の存在又は不存在及び重篤度をウイルス接種後の19日間記録した。PBSプラシーボ処置とPEG薬物処置の間又はACプラシーボ処置とAC薬物処置動物の間で、感染速度、ピーク病変スコア、ピークウイルス力価、ウイルス力価−日曲線下面積及び病変スコア日曲線下面積を、マン-ホイットニーU ランク合計試験（Mann-Whiteny U rank sum test ）を用いて比較した。0.05又はそれ未満のp値は、有意とみなされた。膣のウイルス複製に対するACV製剤を用いた局所処置の効果を表Ｉに示す。ACV -MP製剤（5% ACV-MP-PEG又は5%ACV-MP-AC）を用いた処置のみが、ウイルス力価一日曲線下面積（AUC）及びウイルス力価の平均ピークを有意に減少させた。Ａ．局所及び膣内の処置はウイルス接種の２４時間後に開始し、１日３回、７日間続けた。モルに基づくアシクロビルの含有量は、アシクロビルモノホスフェート（14.5 mmol/100 mL）を用いて行った試験の方が、アシクロビル（22.2mmol /100 mL）そのものを用いて行った試験のものより低かった。Ｂ． NS＝適当なプラシーボ処置群と比較して、統計学上の有意差がない。病変発生に対するACV製剤での局所処置の効果を表IIに示す。ACV及びACV-MP製剤のいずれもが、適当なプラシーボ処置群と比較した場合、有意に病変スコア− 日AUCが変わっていた。しかしながら、5％ACV-MP-PEGを用いた処置のみが、有意に病変スコアの平均ピークを減少させた。Ａ．局所及び膣内の処置をウイルス接種の24時間後に始め、１日３回、７日間続けた。モルに基づくアシクロビルの含有量は、アシクロビルモノホスフェート（14.5 mmol/100 mL）を用いて行った試験の方が、アシクロビル（22.2mmol/100 mL）そのものを用いて行った試験のものより低かった。Ｂ． NS＝適当なプラシーボ処置群と比較して、統計学上の有意差がない。 ACV耐性HSV-2生殖器ヘルペス感染のモルモットモデルにおいて、ACV-MPのみが膣のウイルス複製を有意に減少させた。さらに、ACV-MP-PEG処置群は、最も低いウイルス力価−日及び平均ピーク力価値を有していた。ACV-MP及びACVのいずれもが病変の発生を変化させたが、PEG中の薬剤はAC中のものより低いスコアであった。さらに、ACV-MP-PEG処理された動物は、最も低い病変スコア−日及び平均ピーク病変スコアを有していた。さらに、研究を通して、未感染ACV製剤処置動物において、生殖器の領域の炎症又は他の毒性の痕跡は全くなかった。これら結果は、HSV-2生殖器ヘルペスの治療における、アシクロビルモノホスフェートの強い活性を明示している。さらに、ポリエチレングリコールに分散させたアシクロビルモノホスフェートが、病変の治療において最も優れた有効性を示したことは興味深いことである。実施例16 アシクロビルジホスフェートの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルジホスフェート（ACV-DP）のみを含む製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例17 アシクロビルモノホスフェートグリセロールの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルモノホスフェートグリセロール（ACV- MP-G）のみを含む製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例18 アシクロビルジホスフェートグリセロールの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルジホスフェートグリセロール（ACV-DP -グリセロール）のみを含む製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例19 アシクロビルモノホスフェートモルホリデートの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルモノホスフェートモルホリデート（ACV-MP-モルホリデート）のみを含む製剤を用いて実施例1 2の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例20 アシクロビルモノホスフェートイソプロピリデングリセロールの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルモノホスフェートイソプロピリデングリセロール（ACV-MP-isoP-G）のみを含む製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例21 アシクロビルジホスフェートイソプロピリデングリセロールの活性アシクロビル誘導体としてアシクロビルジホスフェートイソプロピリデングリセロール（ACV-DP-isoP-G）のみを有する製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例22 アシクロビル−ホスホメチレンジホスホネート及びアシクロビルトリホスフェートの活性アシクロビル誘導体として、別々にACV-ホスホメチレンジホスホネートのみ、及びアシクロビルトリホスフェートのみを有する製剤を用いて実施例12の手順を繰り返す。ACVそのものより優れた有効性が認められる。実施例23 アシクロビルモノホスフェート及び塩の溶解度アシクロビルモノホスフェートの種々の塩について溶解度試験を以下のように行った：蒸留水2 mLを、マグネティックスターラーの入った各々３つの10 mLビーカーに入れた。各個々のフラスコ中に、カリウム、ナトリウム、ナトリウム/アンモニウム及びＨ⁺（遊離酸）から選ばれるアシクロビルモノホスフェート塩を飽和溶液になるまで加えた。各々の飽和塩溶液を重力濾過した。アシクロビルモノホスフェートナトリウム/アンモニウム溶液及び遊離酸塩溶液をワットマン（Whatm an）No．４濾紙を通して濾過し、透明な溶液を得た。カリウム塩溶液及びナトリウム塩溶液をワットマン（Whatman）No．１濾紙を通して濾過し、各々わずかに乳白色気味の溶液を得た。各々の飽和塩溶液 1 mLを、前もって計量しておいた丸底フラスコにピペットを用いて移し、該溶液を乾燥させた。全ての液体が蒸発した後、丸底フラスコを再計量して、ミリリットル当たりのアシクロビルモノホスフェート塩のミリグラム数を容易に得た。以下の表に、上記のようにして作成した種々の塩の溶解度をアシクロビルとの関係で示す。表IIIに示された結果から、アシクロビルモノホスフェートの塩の形成を通して、溶解度が劇的に向上し得ることが推察されるであろう。他のヌクレオシドモノホスフェートが同様に向上した溶解度を示すだろうと予測される。この意味において、塩の向上した溶解度のゆえに、多量のアシクロビルモノホスフェートを含有する局所用組成物を調剤することが可能である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号ＦＩＣ０７Ｆ 9/6527 Ｃ０７Ｆ 9/6527 Ｃ０７Ｈ 19/10 Ｃ０７Ｈ 19/10 19/20 19/20 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグホスホロチオエート，ヌクレオシドアナローグホスホアミデート及びヌクレオシドアナローグホスホフルオリデートからなる群から選択される抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグホスフェートエステル。２．１,２-μ-メチレン-ヌクレオシドアナローグジホスフェート；２,３-μ-メチレン-ヌクレオシドアナローグトリホスフェート；１,２-μ-チオ-ヌクレオシドアナローグジホスフェート；及び２,３-μ-チオ-ヌクレオシドアナローグトリホスフェートからなる群から選択される、抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグホスフェートエステル。３．抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグが、アシクロビル，９-(２-ヒドロキシエトキシメチル)-グアニンである請求項１又は２記載の化合物。４．請求項１乃至３のいずれかに記載の抗ヘルペス性ヌクレオシドアナローグホスフェートエステル若しくはその薬学的に許容される塩、またはそれらの混合物の有効な抗ウイルス量を、薬学的に許容される局所使用のための担体中に含有する薬学的組成物。５．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルが、ヌクレオシドアナローグホスホロチオエート，ヌクレオシドアナローグホスホアミデート及びヌクレオシドアナローグホスホフルオリデートからなる群から選択されるものである請求項４記載の組成物。６．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルが、１,２-μ-メチレン-ヌクレオシドアナローグジホスフェート；２,３-μ-メチレン-ヌクレオシドアナローグトリホスフェート；１,２-μ-チオ-ヌクレオシドアナローグジホスフェート；及び２,３-μ-チオ-ヌクレオシドアナローグトリホスフェートからなる群から選択されるものである請求項４記載の組成物。７．ヌクレオシドアナローグがアシクロビルである請求項４−６の組成物。８．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアシクロビルモノホスフェートである請求項４−６のいずれかに記載の組成物。９．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアシクロビルジホスフェートである請求項４−６のいずれかに記載の組成物。１０．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアシクロビルトリホスフェートである請求項４−６のいずれかに記載の組成物。１１．抗-ヘルペス性ヌクレオシドアナローグが、 1-ベータ-D-アラビノフラノシル-E-5-(2-ブロモビニル)ウラシル； 2'-フルオロカルボサイクリック-2'-デオキシグアノシン； 6'-フルオロカルボサイクリック-2'-デオキシグアノシン； 1-(ベータ-D-アラビノフラノシル)-5(E)-(2-ヨードビニル)ウラシル； (1r-1α,2β,3α)-2-アミノ-9-(2,3-ビス(ヒドロキシメチル)シクロブチル)-6 H-プリン-6-オン； 9H-プリン-2-アミン,9-((2-(1-メチルエトキシ)-1-((1-メチルエトキシ)メチル)エトキシ)メチル)-(9Cl)；トリフルオロチミジン； 9-[(1,3-ジヒドロキシ-2-プロポキシ)メチル]グアニン； 5-エチル-2'-デオキシウリジン； E-5-(2-ブロモビニル)-2'-デオキシウリジン； 5-(2-クロロエチル)-2'-デオキシウリジン； 1-(2-デオキシ-2-フルオロ-ベータ-D-アラビノフラノシル)-5-ヨードシト-シン（ＦＩＡＣ）； 1-(2-デオキシ-2-フルオロ-ベータ-D-アラビノフラノシル)-5-ヨードウリ-ジン（ＦＩＡＵ）；ブシクロビル； 6-デオキシアシクロビル； 9-(4-ヒドロキシ-3-ヒドロキシメチル-1-ブチル)グアニン； E-5-(2-ヨードビニル)-2'-デオキシウリジン； 5-ビニル-1-ベータ-D-アラビノフラノシルウラシル； 1-ベータ-D-アラビノフラノシルチミン； 2'-nor-2'デオキシグアノシン； 9-(4-ヒドロキシ-3-ヒドロキシメチル-1-ブチル)グアニン； 1-ベータ-D-アラビノフラノシルアデニンからなる群から選択されるものである、請求項４−６のいずれかに記載の組成物。１２．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルが薬学的に許容される塩の形態にある請求項４−６のいずれかに記載の組成物。１３．塩が、ナトリウム塩，カリウム塩，アンモニウム塩及び水素塩からなる群から選択されるものである請求項１１記載の組成物。１４．薬学上の担体が、水性クレーム及びポリエチレングリコールからなる群から選択されるものである請求項４−６のいずれかに記載の組成物。１５．請求項４−６のいずれかに記載の抗ウイルス性のヌクレオシドアナローグの有効量を含む組成物の有効量を、病変患部に適用することを含む、ヘルペスウイルス感染動物の皮膚又は粘膜の病変の局所的治療方法。１６．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアクシルビルモノホスフェートである請求項１５記載の方法。１７．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアクシルビルジホスフェートである請求項１５記載の方法。１８．ヌクレオシドアナローグホスフェートエステルがアクシルビルトリホスフェートである請求項１５記載の方法。１９．ヘルペスウイルスが、チミジンキナーゼをコードするウイルス遺伝子中の変化又は欠失に起因して一若しくはそれ以上の抗ウイルス性の化合物に対して耐性を獲得したものであるヘルペスウイルスによる感染を治療する方法であって、局所使用に適した薬学上の担体中に含まれる抗ヘルペスウイルス性ヌクレオシドアナローグホスフェートエステル、薬学的に許容される抗ヘルペスウイルス性ヌクレオシドアナローグホスフェートエステル塩、又はそれらの混合物の有効量を、動物のヘルペスウイルス-感染皮膚又は粘膜組織に塗布することを含む、ヘルペスウイルス感染を治療する方法。２０．動物がヒトである請求項１５記載の方法。２１．感染が、アクシルビル-耐性であるヘルペスウイルスの株によるものである、請求項１５記載の方法。２２．ウイルスのアクシルビル-耐性が、チミジンキナーゼをコードするウイルス遺伝子中の変化又は欠失に起因するものである請求項１５記載の方法。２３．アシクロビルトリホスフェートの有効な抗ウイルス量を含む組成物を、動物の皮膚又は粘膜の病変患部に局所的に適用することを含む、動物におけるヘルペスウイルス感染の治療方法。