JPH1057080A - L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド - Google Patents

L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド

Info

Publication number
JPH1057080A
JPH1057080A JP9160625A JP16062597A JPH1057080A JP H1057080 A JPH1057080 A JP H1057080A JP 9160625 A JP9160625 A JP 9160625A JP 16062597 A JP16062597 A JP 16062597A JP H1057080 A JPH1057080 A JP H1057080A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
leu
ala
gly
val
arg
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP9160625A
Other languages
English (en)
Other versions
JP3819540B2 (ja
Inventor
Takeshi Ario
武司 有尾
Madoka Taniai
まどか 谷合
Kozo Yamamoto
康三 山本
Masashi Kurimoto
雅司 栗本
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo KK
Original Assignee
Hayashibara Biochemical Laboratories Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hayashibara Biochemical Laboratories Co Ltd filed Critical Hayashibara Biochemical Laboratories Co Ltd
Priority to JP16062597A priority Critical patent/JP3819540B2/ja
Publication of JPH1057080A publication Critical patent/JPH1057080A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP3819540B2 publication Critical patent/JP3819540B2/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Abstract

(57)【要約】 【課題】 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由
来のポリペプチド、当該ポリペプチドをコードするDN
A、当該ポリペプチドをコードするDNAを含む組換え
DNA、当該ポリペプチドをコードするDNAを導入し
てなる形質転換体並びに、当該ポリペプチドの製造方法
及び、当該ポリペプチドを有効成分として含んでなる感
受性疾患剤を提供する。 【解決手段】 特定のアミノ酸配列を有するポリペプチ
ドと、当該ポリペプチドをコードするDNAと、当該ポ
リペプチドをコードするDNAと自律複製可能なベクタ
ーを含んでなる複製可能な組換えDNAと、当該ポリペ
プチドをコードするDNAを適宜宿主に導入してなる形
質転換体並びに、当該形質転換体を培地中で培養し、産
生したポリペプチドを培養物から採取することを特徴と
する当該ポリペプチドの製造方法及び、当該ポリペプチ
ドを有効成分として含んでなる感受性疾患剤により解決
する。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】この発明はL−アスパラギナ
ーゼ活性を有する新規なポリペプチド、詳細には、L−
アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチ
ドに関する。
【0002】
【従来の技術】L−アスパラギナーゼ(EC3.5.
1.1)は、L−アスパラギンを加水分解してL−アス
パラギン酸とアンモニアを生ずる反応を触媒する酵素で
ある。L−アスパラギナーゼの抗腫瘍剤としての研究
は、ジェー・ジー・キッズが『ジャーナル・オブ・エキ
スペリメンタル・メディスン』、第98巻、565乃至
582頁(1953年)において、モルモットの血清に
リンパ腫に対する抗腫瘍作用が認められることを報告し
たことに端を発する。その後、ジェー・ディー・ブルー
ムは『ネイチャー』、第191巻、1114乃至111
5頁(1961年)において、この抗腫瘍作用の実体が
L−アスパラギナーゼであることを明らかにした。現
在、その作用機作は次のように説明されている。即ち、
急性リンパ性白血病細胞等の腫瘍細胞は、L−アスパラ
ギンシンテターゼを欠損しているため、生体内のL−ア
スパラギンが必須栄養素となることから、生体内にL−
アスパラギンが不足するか存在しない条件下では増殖で
きないので、生き続けることができない。ところがL−
アスパラギンは正常細胞にとっては必須栄養素ではない
ので、悪性腫瘍患者においては、L−アスパラギナーゼ
により生体内のL−アスパラギンを加水分解すれば、腫
瘍細胞のみを選択的に死滅させ、悪性腫瘍を治療するこ
とができるというものである。以来、L−アスパラギナ
ーゼの抗腫瘍剤としての実用化を目指して精力的な研究
が続けられ、その結果、現在では、大腸菌由来のL−ア
スパラギナーゼは白血病及びリンパ腫の治療剤として用
いられるようになった。
【0003】しかしながら、大腸菌由来のL−アスパラ
ギナーゼは、人体からみれば、所詮、異種蛋白質であ
り、これを配合使用する従来の治療剤は、患者に投与す
ると、アナフィラキシーショック、蕁麻疹、浮腫、喘
鳴、呼吸困難などの過敏反応を始めとする深刻な副作用
を頻発させることとなった。斯くして、従来の治療剤は
用量及び投与頻度を大幅に制限せざるを得ない状況にあ
り、そのため、斯かる副作用を軽減乃至解消するための
提案が幾つかなされてきた。
【0004】その第一は、特開昭54−119082号
公報に見られるように、2−O−置換ポリエチレングリ
コール−4,6−ジクロロ−S−トリアジンにより大腸
菌由来のL−アスパラギナーゼにおけるアミノ基の65
%以上を封鎖し、L−アスパラギナーゼそのものを化学
的に修飾しようというものである。第二は、特開平4−
320684号公報又は特開昭55−19018号公報
に見られるように、ある種のヒト細胞株の培養物又は人
尿から、ヒトのL−アスパラギナーゼを採取しようとい
うものである。第一の提案には、大量に入手の容易な大
腸菌のL−アスパラギナーゼを利用できる利点はあるも
のの、修飾反応の制御が困難なうえに、副作用を完全に
解消するまでには到らないという問題がある。第二の提
案によるヒトのL−アスパラギナーゼは、大腸菌が産生
するものと違って、患者に投与しても抗体を産生し難い
利点はあるものの、特開平4−320684号公報に開
示されたヒト細胞はL−アスパラギナーゼ産生能が充分
高いとは言えず、L−アスパラギナーゼを量産しようと
すると、細胞を大量に培養しなければならない問題があ
り、また特開昭55−19018号公報で開示された方
法においても、工業的規模で継続して新鮮な人尿を得る
ことが困難であるという問題がある。
【0005】ところで、昨今の組換えDNA技術の進歩
には目覚しいものがある。今日では、目的とするポリペ
プチドをコードするDNAを単離することができれば、
そのDNAと自律複製可能なベクターから組換えDNA
を作製し、これを微生物や動植物の細胞に導入して得ら
れる形質転換体を培養することにより、所望量のポリペ
プチドが容易に取得できるようになった。しかしながら
今日に至るまで、L−アスパラギナーゼをコードする哺
乳類由来のDNAは未だ単離されておらず、当然のこと
ながら、組換えDNA技術により、哺乳類由来のL−ア
スパラギナーゼが製造されてもいない。
【0006】斯かる状況に鑑み、斯界においては、一刻
も早く活性なL−アスパラギナーゼをコードする哺乳類
由来のDNAが単離され、その単離されたDNAに組換
えDNA技術を適用することにより、L−アスパラギナ
ーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチドを大量生産
する技術の確立が待ち望まれている。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】この発明の第一の課題
は、L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポ
リペプチドを提供することにある。
【0008】この発明の第二の課題は、斯かるポリペプ
チドをコードするDNAを提供することにある。
【0009】この発明の第三の課題は、斯かるポリペプ
チドをコードするDNAと自律複製可能なベクターを含
んでなる組換えDNAを提供することにある。
【0010】この発明の第四の課題は、斯かる組換えD
NAを適宜宿主に導入してなる形質転換体を提供するこ
とにある。
【0011】この発明の第五の課題は、斯かる形質転換
体を用いる上記ポリペプチドの製造法を提供することに
ある。
【0012】この発明の第六の課題は、斯かるポリペプ
チドを有効成分として含んでなる感受性疾患剤を提供す
ることにある。
【0013】
【課題を解決するための手段】この発明は、上記第一の
課題をL−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来の
ポリペプチドにより解決するもである。
【0014】またこの発明は、上記第二の課題をL−ア
スパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド
をコードするDNAにより解決するものである。
【0015】またこの発明は、上記第三の課題をL−ア
スパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド
をコードするDNAと自律複製可能なベクターを含んで
なる組換えDNAにより解決するものである。
【0016】またこの発明は、上記第四の課題を、L−
アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチ
ドをコードするDNAを適宜宿主に導入してなる形質転
換体により解決するものである。
【0017】またこの発明は、上記第五の課題を、L−
アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチ
ドをコードするDNAを適宜宿主に導入してなる形質転
換体を培養し、産生したポリペプチドを培養物から採取
してなるポリペプチドの製造方法により解決するもので
ある。
【0018】またこの発明は、上記第六の課題を、L−
アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチ
ドを有効成分として含んでなる感受性疾患剤により解決
するものである。
【0019】
【作用】哺乳類由来のこの発明のポリペプチドは、L−
アスパラギンに作用し、L−アスパラギン酸とアンモニ
アを生成する。
【0020】この発明のDNAは、自律複製可能な適宜
ベクターに挿入して組換えDNAとし、この組換えDN
Aを、通常当該ポリペプチドを産生しないけれども、容
易に増殖させることのできる適宜宿主に導入して形質転
換体とすることにより、当該ポリペプチドの産生を発現
する。
【0021】この発明の複製可能な組換えDNAは、通
常、当該ポリペプチドを産生しないけれども、容易に増
殖させることのできる適宜宿主に導入して形質転換体と
することにより、当該ポリペプチドの産生を発現する。
【0022】この発明の形質転換体は、培養すると、当
該ポリペプチドの産生を発現する。
【0023】この発明の製造方法に従ってこの形質転換
体を培養すれば、所望量のポリペプチドが容易に得られ
る。
【0024】この発明の感受性疾患剤は、ヒトに投与す
ると重篤な副作用なく、顕著な治療・予防効果を発揮す
る。
【0025】本発明者は、L−アスパラギナーゼをコー
ドするモルモット及びヒト由来のDNAを世界で初めて
単離し、その塩基配列を解明するのに成功した。すなわ
ち、モルモット由来のDNAは、配列表における配列番
号15に示す塩基配列を、また、ヒト由来のDNAは、
配列表における配列番号16に示す塩基配列を有してい
ることを明らかにした。この知見は、同じ出願人による
特願平第7−42564号明細書(特開平8−2148
85号公報)に開示されている。本発明はこれら知見に
基づくものであって、L−アスパラギナーゼ活性を有す
る哺乳類由来のポリペプチドを世界で初めて提供するも
のである。
【0026】
【発明の実施の形態】この発明のポリペプチドは、それ
が哺乳類に由来するものであって、かつ、L−アスパラ
ギナーゼ活性を有する限りその出所・由来は問わない。
この発明のポリペプチドは哺乳類由来の遺伝子を発現さ
せることにより得ることができ、通常、配列表における
配列番号1、2及び3に示すアミノ酸配列を含んでい
る。ただし、その配列番号3に示すアミノ酸配列におい
て、符号「Xaa」を付して示したアミノ酸はグルタミ
ン又はアルギニンを表すものとする。個々のポリペプチ
ドとしては、例えば、配列表における配列番号4乃至9
に示すいずれかのアミノ酸配列のポリペプチドが挙げら
れる。ただし、斯界の技術水準に鑑み、その配列番号4
乃至9に示すアミノ酸配列に対して、L−アスパラギナ
ーゼ活性を実質的に喪失させることなく、そのアミノ酸
の1個又は2個以上を他のアミノ酸で置換することは比
較的容易である。一方、同じDNAに由来するポリペプ
チドであっても、それを導入する際に用いるベクターの
種類や、それを導入する宿主の種類又はそのDNAを含
む形質転換体の培養に使用する培地の成分・組成や培養
温度・pHなどによっては、宿主内酵素によるDNA発
現後の修飾や精製の過程で、所期の活性は保持している
ものの、N末端及び/又はC末端におけるアミノ酸が1
個又は2個以上欠失するか、N末端及び/又はC末端に
1個又は2個以上のアミノ酸が付加したり、産生したポ
リペプチドに糖鎖の付加が生じることがある。斯かる状
況に鑑み、配列表における配列番号4乃至9に示すいず
れかのアミノ酸配列をそっくりそのまま有するポリペプ
チドは言うに及ばず、L−アスパラギナーゼ活性を有す
る限り、それらの相同体も、当然この発明に包含され
る。なお、この発明のポリペプチドは、通常多量体の形
態、望ましくは、4量体の形態をとるときにL−アスパ
ラギナーゼ活性を有する。
【0027】この発明のポリペプチドは、通常、組換え
DNA技術により製造される。すなわち、この発明のポ
リペプチドは、通常、それをコードするDNAを含む形
質転換体を培養し、産生したポリペプチドを培養物から
採取することにより製造することができる。斯かる形質
転換体は、例えば、配列表における配列番号10乃至1
5に示すいずれかの塩基配列を含んでいる組換えDNA
を適宜宿主に宿主に導入することにより得ることができ
る。なお上記の塩基配列は、遺伝子コードの縮重を利用
して、コードするアミノ酸配列を変えることなく、塩基
の1個又は2個以上を他の塩基で置き換えても良い。ま
た、DNAの宿主中での当該ポリペプチドの産生を促す
ために、当該ポリペプチド又はその相同体をコードする
塩基配列における、塩基の1個又は2個以上を他の塩基
で適宜置換し得ることは云うまでもない。さらには、当
該ポリペプチド又はその相同体をコードする塩基配列に
おける塩基の5′末端及び/又は3′末端に1個又は2
個以上のアミノ酸をコードする配列及び/又はアミノ酸
をコードしない配列を付加し得ることも云うまでもな
い。
【0028】この発明のポリペプチドをコードするDN
Aは、その発現産物たるポリペプチドがL−アスパラギ
ナーゼ活性を有している限り、それが天然から得られた
ものであっても、人為的に合成されたものであってもか
まわないし、また天然から得られたものと配列の一致す
る野生型DNAであっても、野生型DNAに対するDN
A相同体であっても構わない。この発明のポリペプチド
をコードするDNAの天然の給源としては、例えば、モ
ルモットの肝臓が挙げられ、そこからは常法により、例
えば、配列番号15に示す塩基配列を含んでいる野生型
DNAが得られる。すなわち、同じ出願人による特願平
7−42564号明細書(特開平8−214885号公
報)に開示されているように、先ず、モルモット肝臓よ
り精製したポリ(A)付加RNAを材料として、常法に
よりcDNAライブラリーを作製する。ここに、モルモ
ット血清より精製したL−アスパラギナーゼの部分アミ
ノ酸配列に基づき化学合成したオリゴヌクレオチドをプ
ローブとして用いて、プラークハイブリダイゼーション
法を適用し、この発明のポリペプチドをコードするDN
Aを含むファージクローンを採取する。斯くして得られ
たファージクローンを通常一般の方法により処理すれ
ば、当該DNAが得られる。また、配列表における配列
番号15に基づいてDNAを化学合成することも可能で
ある。野生型DNAに対する相同体の例としては、例え
ば、配列表における配列番号10乃至14に示す塩基配
列を含む個々のDNAが挙げられる。配列表における配
列番号10に示す塩基配列を含むDNAは、配列表にお
ける配列番号15に示す、上述のようにして得られる野
生型DNAに、斯界において慣用の方法、例えば、PC
R法や点突然変異導入法を、配列表における配列番号1
0の塩基配列に基づいて適用することにより得ることが
できる。配列表における配列番号11乃至14に示す塩
基配列を含むDNAは、いずれも以下のようにして得る
ことができる。すなわち、先ず、同じ出願人による特願
平7−42564号明細書(特開平8−214885号
公報)に開示されたような、ヒト肝臓cDNAライブラ
リーのスクリーニング等により、配列表における配列番
号16に示す塩基配列を含む野生型DNAを得る。そし
て次に、この野生型DNAに、斯界において慣用のPC
R法や点突然変異導入法などを、配列表における配列番
号11乃至14の塩基配列に基づき適用すればよい。ま
た、配列表における配列番号10乃至14に示す塩基配
列に基づいてDNAを化学合成することも可能である。
【0029】斯かるDNAは、通常、組換えDNAの形
態で宿主に導入される。組換えDNAは、通常DNAと
自律複製可能なベクターを含んでなり、DNAが入手で
きれば、通常一般の組換えDNA技術により比較的容易
に調製することができる。斯かるベクターの例として
は、例えば、pKK223−3、pGEX−2T、pR
L−λ、pBTrp2 DNA、pUB110、YEp
13、Tiプラスミド、Riプラスミド、pBI12
1、pCDM8、pBPV、BCMGSneo等のプラ
スミドベクターが挙げられ、このうち、この発明のDN
Aを大腸菌、枯草菌等の原核細胞で発現させるにはpK
K223−3、pGEX−2T、pRL−λ、pBTr
p2 DNAおよびpUB110が、また酵母或いは動
植物由来の細胞すなわち、真核細胞で発現させるにはY
Ep13、Tiプラスミド、Riプラスミド、pBI1
21、pCDM8、pBPV及びBCMGSneoが好
適である。
【0030】斯かるベクターにこの発明のDNAを挿入
するには、斯界において通常一般の方法が採用される。
具体的には、例えば、先ず、自律複製可能なベクターを
制限酵素により切断する。次にPCR法を応用して、こ
の発明のDNAの5′末端及び3′末端に、先にベクタ
ーの切断に用いたのと同一の制限酵素切断部位を導入し
二本鎖とした後、同制限酵素で切断する。次に、該ベク
ターと該DNA断片の混合液に、DNAリガーゼを作用
させて連結する。斯くして得られた組換えDNAは、適
宜宿主に導入して形質転換体とし、これを培養すること
により無限に複製可能である。
【0031】この発明による組換えDNAは、大腸菌、
枯草菌、放線菌、酵母、植物細胞、動物細胞を始めとす
る適宜の宿主に導入することができる。宿主が大腸菌の
場合には、例えば、宿主を組換えDNAとカルシウムイ
オンの存在下で培養すればよく、一方宿主が枯草菌の場
合には、例えば、コンピテントセル法やプロトプラスト
法を適用すればよい。また宿主が動物細胞の場合には、
例えば、DEAE−デキストラン法やエレクトロポレー
ション法によればよい。形質転換体をクローニングする
には、ハイブリダイゼーション法を適用するか、培地で
培養し、L−アスパラギナーゼを産生するものを選択す
ればよい。
【0032】斯くして得られる形質転換体は、培地で培
養すると、菌体内外又は細胞内外に当該ポリペプチドを
産生する。培地には、通常、炭素源、窒素源、ミネラル
さらには必要に応じてアミノ酸やビタミンなどの微量栄
養素を補足した通常一般の液体培地が使用され、ここの
炭素源としては、澱粉、澱粉加水分解物、グルコース、
果糖、蔗糖などの糖質が、また窒素源としては、例えば
アンモニア乃至アンモニウム塩、尿素、硝酸塩、ペプト
ン、酵母エキス、脱脂大豆、コーンスティープリカー、
肉エキスなどの含窒素無機乃至有機物が挙げられる。形
質転換体を斯かる培地に接種し、栄養培地を温度25乃
至65℃、pH5乃至8に保ちつつ、通気攪拌などによ
る好気的条件下で約1乃至10日間培養すれば、当該ポ
リペプチドを含む培養物が得られる。この培養物は、感
受性疾患剤としてそのまま使用可能なこともあるが、通
常は、例えば、使用に先立ち必要に応じて、超音波や細
胞壁溶解酵素により菌体又は細胞を破砕した後、濾過、
遠心分離などにより当該ポリペプチドを菌体破砕物又は
細胞破砕物から分離し、精製する。又例えば、培養物か
ら菌体又は細胞を濾過、遠心分離などにより除去した培
養上清を回収し、精製する。精製には、菌体又は細胞破
砕物由来の不溶性成分を除去した上澄液や、培養上清
に、例えば、塩析、透析、濾過、濃縮、ゲル濾過クロマ
トグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、親和性
クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、等電点
電気泳動及びゲル電気泳動などの、蛋白質を精製するた
めの斯界における通常一般の方法が採用でき、必要に応
じて、これら方法を適宜組み合わせればよい。そして、
最終使用形態に応じて、精製したポリペプチドを濃縮・
凍結乾燥して液状又は固状にすればよい。
【0033】以下、実験例に基づき説明するが、ここで
用いられる方法は斯界において慣用のものであり、例え
ば、ジェイ・サムブルックら、『モレキュラー・クロー
ニング・ア・ラボラトリー・マニュアル』(1989
年)、コールド・スプリング・ハーバー発行や、松村正
実、『ラボマニュアル遺伝子工学』(1988年)、丸
善発行などにも詳述されている。
【0034】
【実験例1】 〈モルモット及びヒト由来の野生型DNAの発現〉
【0035】
【実験例1−1】 〈モルモット由来の野生型DNAの発現〉
【0036】
【実験例1−1(a)】 〈モルモット由来の野生型DNAの調製〉モルモット由
来のL−アスパラギナーゼをコードする野生型DNA
は、同じ出願人による特願平7−42564号明細書
(特開平8−214885号公報)に開示された方法に
準じて調製した。このDNAは、配列表における配列番
号15に示す塩基配列を有していた。以後、その配列番
号15に示す塩基配列において、ポリペプチドをコード
する領域すなわち、当該塩基配列における第20乃至第
1714の塩基よりなる配列を有するDNAを『GPA
/WT DNA』と呼ぶ。また、GPA/WT DNA
の発現産物たる、配列表における配列番号15に並記し
たアミノ酸配列を有するポリペプチドを、以後『モルモ
ット野生型L−アスパラギナーゼ』と呼ぶ。なお、配列
表における配列番号17には、GPA/WT DNAの
塩基配列とともに、そのコードするアミノ酸配列が併記
されている。
【0037】
【実験例1−1(b)】 〈組換えDNAの調製〉0.5ml容反応管に10×P
CR緩衝液を10μl、25mM dNTPミックスを
1μl、鋳型として、実験例1−1(a)で得たモルモ
ット由来のL−アスパラギナーゼをコードする野生型D
NAを1ngとり、配列表の配列番号15に並記したア
ミノ酸配列におけるN末端及びC末端付近の配列に基づ
き化学合成したオリゴヌクレオチドをセンスプライマー
及びアンチセンスプライマーとして適量加え、滅菌蒸留
水で99.5μlとした後、2.5単位/μlアンプリ
タックDNAポリメラーゼを0.5μl加えた。センス
プライマーは、配列が5′−AATCTCGAGCCA
CCATGGCGCGCGCATCA−3′であり、配
列表における配列番号15に併記したアミノ酸配列のN
末端をコードする部分の上流に、エム・コザックが『ニ
ュークレイック・アシッド・リサーチ』、第15巻、8
125乃至8148頁(1987年)に示した動物細胞
における共通配列を付加し、さらにその上流に制限酵素
Xho I切断部位を付加したものである。アンチセン
スプライマーは、配列が5′−CTGCGGCCGCT
TATCAGATGGCAGGCGGCAC−3′であ
り、配列表における配列番号15に併記したアミノ酸配
列のC末端をコードする部分の下流に2個の終始コドン
を付加し、さらにその下流に制限酵素Not I切断部
位を付加した配列に相補的な配列のものである。常法に
より、上記混合物を94℃で1分間、55℃で1分間、
72℃で3分間の順序でインキュベートするサイクルを
40回繰り返すことによりPCRを行いDNAを増幅さ
せ、GPA/WT DNAを含むDNAを得た。このD
NAを制限酵素Xho I及びNot Iで切断するこ
とにより得られる約1.7kbpのDNA断片を25n
gとり、これに予め制限酵素XhoI及びNot Iで
切断しておいたインビトロジェン社製プラスミドベクタ
ー『pCDM8』を10ngを加え、さらに宝酒造製ラ
イゲーション・キット・バージョン2の溶液Iを先のD
NA混合溶液と同容量加えた後、16℃で2時間インキ
ュベートして、複製可能な組換えDNA『pCGPA/
WT』を得た。
【0038】組換えDNA pCGPA/WTをコンピ
テントセル法によりインビトロジェン社製大腸菌MC1
061/P3株に導入し、得られた形質転換体を20μ
g/mlのアンピシリン及び10μg/mlのテトラサ
イクリンを含むLブロス培地(pH7.2)に接種し、
37℃で18時間振とう培養した。培養物を遠心分離し
て形質転換体を採取し、通常のアルカリ−SDS法を適
用して組換えDNApCGPA/WTを抽出した。蛍光
光度計を使用する自動シーケンサにより分析したところ
pCGPA/WTは、その3′末端に終止コドンが連結
されたGPA/WT DNAを含んでおり、またGPA
/WT DNAは、CMVプロモーター下流に5′末端
から3′末端方向に連結されていることが確認された。
【0039】実験例1乃び後述する実験例2でのDNA
の発現には、いずれもサル腎臓由来の細胞株であるCO
S−1細胞(ATCC CRL−1650)を宿主とし
た系を用いた。この系は一過性発現系であるため、形質
転換体内では導入されたDNAが安定して、すなわち数
日を超えて保持されず、形質転換体を用いて繰り返し目
的とするペプチドを産生できないという欠点がある。し
かし、該細胞に先述のプラスミドベクター『pCDM
8』のようなSV40ウイルス複製起点を有するベクタ
ーを導入した場合には、その細胞あたりのコピー数が一
次的に 105個程度に上昇することが知られており、こ
のために目的とするDNAの発現産物の解析が極めて容
易であるという利点がある。
【0040】
【実験例1−1(c)】 〈組換えDNAのCOS−1細胞への導入と発現〉実施
例1−1(b)で調製した組換えDNA pCGPA/
WTを、フレデリック・エム・オースベルらが『カレン
ト・プロトコール・イン・モレキュラー・バイオロジ
ー』(1987年)、ジョン・ワイリー・アンド・サン
ズ・インク発行、チャプター9.2.1乃至9.2.3
及び、チャプター9.2.5乃至9.2.6で紹介して
いるDEAE−デキストラン法に準じてCOS−1細胞
に導入し、発現させた。詳細には、先ず口径3.5cm
のベクトン・ディッキンソン・ラブウェア製6穴マルチ
ウエルプレート『3046』の1穴に2.5mlの10
%(v/v)牛胎児血清を含むDME培地を入れ、1.
8×105 個のCOS−1細胞を接種し、5%(v/
v)CO2 インキュベーター内で37℃で培養した。翌
日、培養上清をアスピレーターで除去し、50mMトリ
ス−塩酸(pH7.4)を含むDME培地で細胞を洗浄
後、2.8μg/mlのpCGPA/WT、50mMの
トリス−塩酸(pH7.4)、0.4mg/mlのDE
AE−デキストラン、0.1mMのクロロキンを含むD
ME培地を、1穴あたり2.5mlずつ加え、5%(v
/v)CO2 インキュベーター内で37℃で4時間静置
した。その後上清を除去し10(v/v)%DMSOを
含む10mMリン酸食塩緩衝液(以後PBSという)を
1穴当たり2.5ml添加して室温で2分間静置し、上
清を除去して50mMトリス−塩酸(pH7.4)を含
むDME培地で細胞を洗浄し、2.5mlのコスモバイ
オ社製COS培地を加え、5%(v/v)CO2インキ
ュベーター内で37℃で3日間培養し、目的DNAを発
現させた。なお、対照区としてプラスミドベクターpC
DM8を用いてこれと同一の実験をも行った。
【0041】3日間培養した後の、先述の培養器を−8
0℃で静置して凍結させた後、室温で融解させる操作を
3回繰り返して細胞を破砕させた。その後全培養物を遠
沈管に移し取り、遠心分離により不溶性成分を沈澱とし
て除去し、全可溶性画分を得た。そしてこれを膜濃縮
し、1穴由来の全可溶性画分を0.5mlに調整して、
以降の分析に用いた。
【0042】
【実験例1−1(d)】 〈L−アスパラギナーゼ活性の測定〉L−アスパラギナ
ーゼ活性は、次のようにして測定した活性値(単位)で
表示した。すなわち、1.5ml反応管に被検試料を5
0μlずつ分注する一方、L−アスパラギンを1.4m
g/mlになるように50mMリン酸緩衝液(pH7.
0)に溶解し、溶液を1反応管あたり200μlずつ加
え反応混合液とした。同反応管を37℃で0、1、2、
4、6及び16時間静置した後、反応混合液中のL−ア
スパラギン酸をアミノ酸分析機により測定した。これと
並行して、1.0、0.5又は0.25単位/mlに希
釈した大腸菌由来のL−アスパラギナーゼ標品を用いる
系を設け、37℃で0及び1時間静置した後、L−アス
パラギン酸測定結果から求めたL−アスパラギン酸の増
加量に基づき検量線を作成した。被検試料の系で測定さ
れたL−アスパラギン酸の増加量をこの検量線に内挿
し、被検試料の活性値を推定した。活性の低い被検試料
は反応時間を2時間以上にのばした系での測定結果から
活性値を推定した。なお、L−アスパラギナーゼ1単位
は、上記条件下で反応させたとき、1分間にL−アスパ
ラギンからアンモニアを1μmol遊離する量と定義し
た。
【0043】実験例1−1(c)で得た全可溶性画分そ
れぞれにこの処理を施し、3.6×105 個のCOS−
1細胞由来の全可溶性画分中に検出されたL−アスパラ
ギナーゼ活性の総量として表示した。その結果、モルモ
ット野生型L−アスパラギナーゼの活性は0.083単
位であった。対照区では、検出されなかった。
【0044】
【実験例1−1(e)】 〈ウエスタン・ブロッティング〉先ず以下の方法によ
り、抗L−アスパラギナーゼ抗体を調製した。すなわ
ち、常法に従って化学合成した、Gly−Ser−Gl
y−Asn−Gly−Pro−Thr−Lys−Pro
−Asp−Leu−Leu−Gln−Glu−Leu−
Arg−Cysにより表される配列のオリゴペプチドの
C末端にキーホール・リンペット・ヘモシアニンを結合
させ、精製した後、常法に従いウサギに免疫した。2週
間間隔で6回免疫した後、全採血し50%(w/v)硫
安塩析にて精製し、抗L−アスパラギナーゼ・ウサギ抗
血清を得た。次に、ユー・ケー・レムリが『ネイチャ
ー』、第227巻、680乃至685頁(1970年)
に報告した方法に準じて、実験例1−1(c)で得た、
全可溶性画分のうち0.2mlを、還元剤存在下で1
2.5%(w/v)SDS−ポリアクリルアミドゲル電
気泳動(以後SDS−PAGEという)に供し、泳動さ
れた全ポリペプチドをSDS−ポリアクリルアミドゲル
からニトロセルロース膜に転写した後、先の抗L−アス
パラギナーゼ・ウサギ抗血清を用いて、エイチ・トービ
ンが『プロシーディング・オブ・ザ・ナショナル・アカ
デミー・オブ・サイエンシズ・オブ・ザ・ユー・エス・
エー』、第76巻、4350乃至4354頁(1979
年)に報告した方法に準じてウエスタン・ブロッティン
グを行った。発色はアルカリフォスファターゼ発色系に
よった。対照と比較して、試料で特異的に染色されたバ
ンドを確認するとともに、染色されたバンドを分子量マ
ーカーと比較してL−アスパラギナーゼのサブユニット
あたりの分子量を求めた。用いた分子量マーカーは、ウ
シ血清アルブミン(67kDa)、オボアルブミン(4
5kDa)、大豆トリプシンインヒビター(20.1k
Da)及びα−ラクトアルブミン(14.4kDa)で
あり、これらはアミドブラックにて染色した。実験例1
−1(c)で得た全可溶性画分は明瞭なバンドは示さな
かった。
【0045】
【実験例1−1(f)】 〈ゲル濾過による分子量の測定〉次に実験例1−1
(c)で得た、COS−1細胞由来の全可溶性画分のう
ち2mlを、PBSで平衡化したファルマシア製『ハイ
ロード・スーパーデックス・200・カラム』(内径1
6mm×60cm)を用いてゲル濾過カラムクロマトグ
ラフィーに供し、溶出フラクションのL−アスパラギナ
ーゼ活性を調べることにより、モルモット野生型L−ア
スパラギナーゼのネイティブな分子量を調べた。分子量
マーカーとして、チログロブリン(669kDa)、フ
ェリチン(440kDa)、カタラーゼ(232kD
a)、アルドラーゼ(158kDa)、ウシ血清アルブ
ミン(67kDa)及びオボアルブミン(43kDa)
を用た。その結果、溶出画分のL−アスパラギナーゼ活
性のピークは分子量約300kDaに相当する位置に認
められた。
【0046】ウエスタン・ブロッティングでは明瞭なバ
ンドを示さなかったため、モルモット野生型L−アスパ
ラギナーゼの解離した状態での分子量は測定できなかっ
た。そのネイティブな状態での分子量は、ゲル濾過の結
果から、約300kDaと見積もられた。これに対し
て、モルモット血清L−アスパラギナーゼを精製し、ネ
イティブな状態での分子量をゲル濾過により分子量を求
めると、約190kDaと見積もられる。因みに、SD
S−PAGEにより解離した状態での分子量を求めると
約43kDaと見積もられる。一方、同じ出願人による
特願平7−42564号明細書(特開平8−21488
5号公報)に開示されたモルモット血清L−アスパラギ
ナーゼの3個の部分アミノ酸配列は、モルモット野生型
L−アスパラギナーゼのアミノ酸配列における、第10
乃至第236のアミノ酸残基よりなる領域内に認められ
る。また、イー・ハームズらが『フェブス・レター』、
第285巻、55乃至58頁(1991年)で大腸菌由
来のL−アスパラギナーゼ等を用いた実験結果から提唱
した、L−アスパラギナーゼ活性に必須な2つの共通配
列すなわち、配列表における配列番号1及び2に示すア
ミノ酸配列は、モルモット野生型L−アスパラギナーゼ
のアミノ酸配列上ではそれぞれ、第16乃至第19のア
ミノ酸残基及び第114乃至第118のアミノ酸残基よ
りなる配列と一致する。これらのことと実験例1−1に
示した結果から本発明者は、モルモット野生型L−アス
パラギナーゼにとって、当該アミノ酸配列における第1
乃至第400のアミノ酸残基又はその前後のアミノ酸残
基よりなる部分が、その活性発現に必須であろうと推測
した。そこで、実験例2−1ではモルモット由来のL−
アスパラギナーゼ相同体であるC末端欠失変異体の活性
を調べるべく、モルモット由来のDNA相同体の発現産
物の性質・性状について試験する。
【0047】
【実験例1−2】 〈ヒト由来の野生型DNAの発現〉ヒト由来のL−アス
パラギナーゼをコードする野生型DNAは、同じ出願人
による特願平7−42564号明細書(特開平8−21
4885号公報)に開示された方法に準じて調製した。
このDNAは配列表における配列番号16に示す塩基配
列を有していた。以後、その配列番号16に示す塩基配
列においてポリペプチドをコードする領域すなわち、当
該塩基配列における第93乃至第1811の塩基よりな
る配列を有するDNAを『HA/WT DNA』と呼
ぶ。また、HA/WT DNAの発現産物たる配列番号
16に並記したアミノ酸配列を有するポリペプチドを、
以後『ヒト野生型L−アスパラギナーゼ』と呼ぶことも
ある。なお、配列表における配列番号18には、HA/
WT DNAの塩基配列とともに、そのコードするアミ
ノ酸配列が併記されている。
【0048】鋳型、センスプライマー及びアンチセンス
プライマー以外は実験例1−1(b)と同一の条件でP
CRを行った。鋳型は、この実験例1−2で得たヒト由
来のL−アスパラギナーゼをコードする野生型DNA、
センスプライマーは配列が5′−AATCTCGAGC
CACCATGGCGCGCGCGGTG−3′である
オリゴヌクレオチド、アンチセンスプライマーは配列が
5′−CTGCGGCCGCTTATCAGACACC
AGGCAGCAC−3′であるオリゴヌクレオチドで
あった。この結果増幅されたDNAを引き続き実験例1
−1(b)と同じ方法で処理し、組換えDNA『pCH
A/WT』を調製した。同様に配列を確認した後、CO
S−1細胞に導入し、発現させて、実験例1−1と同様
に分析した。
【0049】モルモット野生型L−アスパラギナーゼと
は対照的に、ヒト野生型L−アスパラギナーゼは、本実
験系においては活性が検出できなかった。この原因のひ
とつとして、例えば、ヒト野生型L−アスパラギナーゼ
はモルモット野生型L−アスパラギナーゼに比べ、比活
性が低いことが考えられた。そこで、次の実験例2−2
においては、ヒト由来のDNA相同体の発現産物の性質
・性状について試験する。
【0050】
【実験例2】 〈モルモット及びヒト由来のDNA相同体の発現〉
【0051】
【実験例2−1】 〈モルモット由来のDNA相同体の発現〉モルモット由
来の野生型DNAの、特定の位置の塩基配列が終止コド
ンに置換されたDNA相同体を次のように調製した。す
なわち、配列表の配列番号17に示す塩基配列におけ
る、第1090乃至第1092の塩基よりなる配列を終
止コドンに置換したDNA、及び第1012乃至第10
14の塩基よりなる配列を終止コドンに置換したDNA
を、PCR法を適用して調製した。アンチセンスプライ
マーの配列以外は、全て実験例1−1(b)と同一の条
件でPCRを行った。それぞれのDNA調製のために使
用したアンチセンスプライマーの配列は、5′−CTG
CGGCCGCTTATCATGCCGTGGGCAG
TGT−3′及び5′−CTGCGGCCGCTTAT
CAGCCCAACACGTAGGA−3′であった。
この結果増幅されたDNAを引き続き実験例1−1
(b)と同様に処理し、組換えDNA『pCGPA/D
364stp』及び『pCGPA/L338stp』を
調製した。同様に配列を確認したところ、pCGPA/
D364stp及びpCGPA/L338stpは、そ
れぞれモルモット野生型L−アスパラギナーゼにおけ
る、第1乃至第363のアミノ酸残基及び第1乃至第3
37のアミノ酸残基よりなる配列をコードするDNA
と、それぞれの3′末端側に介在配列なく存在する終止
コドンを含むものでった。以後これらのポリペプチドを
コードする部分のDNAを、それぞれ『GPA/D36
4stp DNA』及び『GPA/L338stp D
NA』と呼ぶ。GPA/D364stp DNA及びG
PA/L338stp DNAはCMVプロモーター下
流に、5′末端から3′末端方向に連結されていた。以
後これらのDNAの発現産物を『モルモットL−アスパ
ラギナーゼ相同体』と呼ぶこともある。
【0052】これら組換えDNAを、実験例1−1に従
ってCOS−1細胞に導入した後、同様に試験した。対
照区として、実験例1−1(b)で調製した組換えDN
ApCGPA/WT及びpCDM8を同様に処理し試験
した。結果を表1に示す。
【0053】
【表1】
【0054】表1に示したように、上記のモルモットに
由来する野生型DNA及びその相同体のうち、GPA/
WT DNA及びGPA/D364stp DNAの発
現産物では活性が認められたが、GPA/L338st
p DNA発現産物では活性は検出されなかった。この
ことは、モルモット由来のL−アスパラギナーゼが十分
な活性を示すためには、野生型L−アスパラギナーゼの
アミノ酸配列上、第1乃至第363のアミノ酸残基より
なる領域があれば十分であることを示唆している。この
第1乃至第363のアミノ酸残基よりなる配列は、配列
表における配列番号4に示したものである。これをコー
ドするDNAの塩基配列は、配列表における配列番号1
0に示したものである。またモルモット野生型L−アス
パラギナーゼのアミノ酸配列は、配列表における配列番
号5に示されている。
【0055】
【実験例2−2】 〈ヒト由来のDNA相同体の発現〉ヒト由来の野生型D
NAの特定の位置の塩基配列を終止コドン又は他のアミ
ノ酸に対するコドンに置換したDNA相同体を調製し
た。先ず、配列表の配列番号18に示す塩基配列におけ
る第1096乃至第1098の塩基よりなる配列を終止
コドンに置換したDNA相同体を、PCR法を適用して
調製した。すなわち、鋳型、センスプライマー及びアン
チセンスプライマー以外は、全て実験例1−1(b)と
同一の条件でPCRを行った。鋳型は、実験例1−2で
得たヒト由来のL−アスパラギナーゼをコードする野生
型DNA、センスプライマーは配列が5′−AATCT
CGAGCCACCATGGCGCGCGCGGTG−
3′であるオリゴヌクレオチド、アンチセンスプライマ
ーは配列が、5′−CTGCGGCCGCTCATTA
CACCGAGGGTGGCGT−3′であるオリゴヌ
クレオチドであった。この結果増幅されたDNAを実験
例1−1に従って処理し、組換えDNA『pCHA/E
366stp』を調製し、配列を確認した。pCHA/
E366stpは、配列表の配列番号16に併記したア
ミノ酸配列における第1乃至第365のアミノ酸残基よ
りなる配列をコードするDNAと、その3′末端に介在
配列なく存在する終止コドンを含むものであった。以後
このコード部分のDNAを『HA/E366stp D
NA』と呼ぶ。HA/E366stpDNAは、CMV
プロモーターの下流に5′末端から3′末端方向に連結
されていた。
【0056】DNAの特定の位置のコドンを他のアミノ
酸に対するコドンへ置換するには、ロバート・エム・ホ
ートンらが『メソッズ・イン・エンザイモロジー』、ア
カデミック・プレス発行、第217巻、270乃至27
9頁(1993年)で紹介しているオーバーラップ・エ
クステンション法に従って行った。その概要を図1に示
すと共に以下に説明する。第1、変異を導入すべき位置
の塩基を、目的とする別の塩基に置換した互いに相補な
変異プライマーA及び変異プライマーSを調製する。こ
こで、変異プライマーAはアンチセンス鎖であり、変異
プライマーSはセンス鎖である。他方、目的とするDN
Aの全域を増幅し得るプライマーのセット、すなわち、
5′末端プライマー及び3′末端プライマーを調製す
る。ここで5′末端プライマーはセンス鎖であり、3′
末端プライマーはアンチセンス鎖である。第2、基の塩
基配列のDNAを鋳型として、先の5′末端プライマー
と変異プライマーAを用いて通常のPCRを行う。これ
と並行して、同じDNAを鋳型として、先の3′末端プ
ライマーと変異プライマーSを用いて通常のPCRを行
う(第1段PCR)。第3、第1段PCRにより増幅し
た2つのDNA、第1段PCRで使用した5′末端プラ
イマー及び3′末端プライマーを、同一の反応管で混合
し、PCRを行う(第2段PCR)。第1段PCRで増
幅された2つのDNA断片は、鋳型兼プライマーとして
変異が導入されたDNAの生成に用いられ、5′末端プ
ライマー及び3′末端プライマーは変異が導入されたD
NA増幅のためのプライマーとして用いられる。この方
法により、7とおりの塩基置換を導入したDNAすなわ
ち、7種のDNA相同体を調製した。7とおりの塩基置
換の内容と、それに伴うアミノ酸配列の変化の内容を表
2にまとめて示した。この7種のDNA相同体の調製に
用いた、鋳型DNAと変異プライマーA及び変異プライ
マーSの配列を表3にまとめて示した。一方、7個のD
NA相同体の調製に用いた、5′末端プライマー及び
3′末端プライマーはそれぞれ、この実験例2−2で先
に示したpCHA/E366stpの調製時に用いたセ
ンスプライマー及びアンチセンスプライマーと同一であ
る。
【0057】
【表2】
【0058】
【表3】
【0059】ここで得たヒト由来のDNA相同体を実験
例1−1に従って処理し、組換えDNA『pCHA/M
UT1』、『pCHA/MUT2』、『pCHA/MU
T3』、『pCHA/MUT4』、『pCHA/MUT
5』、『pCHA/MUT6』及び『pCHA/MUT
7』を得た。以後、この実験例2−2で得た、以上のD
NA相同体の発現産物を、『ヒトL−アスパラギナーゼ
相同体』と呼ぶこともある。同様に配列を確認した後、
COS−1細胞へ導入し発現させ、試験した。対照区と
して、実験例1−2で得たpCHA/WT及びpCDM
8を同様に処理・試験した。また、この実験例2−2で
は各発現産物の量的な比較のための参考としてウエスタ
ン・ブロッティングで検出されたバンドのシグナル強度
を、デンシトメトリーにより数値化した。以上の結果を
表4に示した。
【0060】
【表4】
【0061】表4の結果は、ヒト由来のL−アスパラギ
ナーゼは野生型でも、その相同体の一つであるC末端欠
失変異体(HA/E366stp DNA発現産物)で
もモルモット由来のそれらに比べ、比活性が低いことを
示唆している。また、これに対し、ヒト由来の野生型L
−アスパラギナーゼ本来のアミノ酸配列の内のいくつか
を他のアミノ酸に置換した点突然変異体の中には、検出
され得る程度に比活性が上昇するものがあることをも示
している。発現産物が少なくとも検出され得る程度の活
性を示すことが確認された、ヒト由来のDNA相同体
HA/MUT1DNA、HA/MUT2 DNA、HA
/MUT3 DNA及びHA/MUT5 DNAは、そ
れぞれ配列表における配列番号11、12、13及び1
4に示す塩基配列を有すものであり、そのコードするポ
リペプチドは、それぞれ配列表における配列番号6、
7、8及び9に示すアミノ酸配列を有すものである。
【0062】以上の実験結果から、哺乳類に由来するポ
リペプチドが、少なくとも実験例1及び2で用いた発現
系・活性測定系で検出され得る程度のL−アスパラギナ
ーゼ活性を示すためには、従来公知の、配列表における
配列番号1及び2に示すアミノ酸配列の他に、例えば、
同じく配列番号3に示すアミノ酸配列を有する必要があ
ることを見出した(ただし、符号「Xaa」を付して示
したアミノ酸はグルタミン又はアルギニンを表すものと
する)。因みに、モルモット野生型L−アスパラギナー
ゼは、そのアミノ酸配列上第298乃至第302の残基
よりなる部分ににこの配列を有している。配列表におけ
る配列番号1乃至3に示すアミノ酸配列を全て有するポ
リペプチドとしては、例えば、モルモットに由来する、
配列表における配列番号4乃び5に示すアミノ酸配列を
有するポリペプチドと、ヒトに由来する配列表における
配列番号6乃至9に示すアミノ酸配列を有するポリペプ
チドが挙げられる。
【0063】以上の知見に基づき、本発明者はL−アス
パラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチドを
発明するに至った。以下実施例に基づきこの発明を説明
するが、ここで選択した方法はいずれも斯界において慣
用のものである。当然ながら、この発明を実施するため
の方法は、これらに限定されるわけではない。
【0064】
【実施例A−1】 〈L−アスパラギナーゼ活性を有するモルモット由来の
野生型ポリペプチド〉
【0065】
【実施例A−1(a)】 〈形質転換体の調製〉0.5ml容反応管に10×PC
R緩衝液を10μl、25mM dNTPミックスを1
μl、鋳型として、実験例1−1で得た組換えDNA
pCGPA/WTを1ngとり、GPA/WT DNA
の5′末端及び3′末端の配列に基づき化学合成したオ
リゴヌクレオチドをセンスプライマー又はアンチセンス
プライマーとして適量加え、滅菌蒸留水で99.5μl
とした後、2.5単位/μlアンプリタックDNAポリ
メラーゼを0.5μl加えた。センスプライマーは、配
列が5′−GCGAATTCATGGCGCGCGCA
TCA−3′であり、GPA/WT DNAの5′末端
の上流に制限酵素Eco RI切断部位を付加したもの
である。アンチセンスプライマーは、配列が5′−GC
AAGCTTTCAGATGGCAGGCGGCAC−
3′であり、GPA/WT DNAの3′末端の下流に
終始コドンを付加し、さらにその下流に制限酵素Hin
dIII切断部位を付加した配列に相補的な配列のも
のである。常法により、上記混合物を94℃で1分間、
55℃で1分間、72℃で3分間の順序でインキュベー
トするサイクルを40回繰り返すことによりPCRを行
い、DNAを増幅させた。このDNAを制限酵素Eco
RI及びHin dIIIで切断することにより約
1.7kbpのEco RI−Hin dIII断片を
得た。このDNA断片を25ngとり、これに予め制限
酵素Eco RI及びHin dIIIで切断しておい
たファルマシア製プラスミドベクター『pKK223−
3』を10ngを加え、さらに宝酒造製ライゲーション
キット・バージョン2の溶液Iを先のDNA混合溶液と
同体積加えた後、16℃で2時間インキュベートするこ
とにより、複製可能な組換えDNA『pKGPA/W
T』を得た。
【0066】組換えDNA pKGPA/WTをコンピ
テントセル法によりファルマシア製大腸菌JM105株
に導入し、ここで得られる形質転換体『J−GPA/W
T』を50μg/mlのアンピシリンを含むLブロス培
地(pH7.2)に接種し、37℃で18時間振とう培
養した。培養物を遠心分離して形質転換体を採取し、通
常のアルカリ−SDS法を適用して組換えDNA pK
GPA/WTを抽出した。蛍光光度計を使用する自動シ
ーケンサで分析することにより、このpKGPA/WT
においては、図2に示すごとく配列表における配列番号
17に示す塩基配列のGPA/WT DNAがタックプ
ロモーターの下流に5′末端から3′末端方向に連結さ
れているのが確認された。また、GPA/WT DNA
の3′末端側には、介在配列なく終止コドンが存在して
いることも確認された。
【0067】
【実施例A−1(b)】 〈ポリペプチドの製造〉形質転換体J−GPA/WTを
50μg/mlのアンピシリンを含むLブロス培地(p
H7.2)に接種し、37℃で18時間振とう培養し
た。次に30l容ジャーファーメンタに新鮮なLブロス
培地を18lとり、先に培養しておいた種培養物を1%
(v/v)の割合で接種し、37℃で通気攪拌培養し
た。培養物の一部を厚さ1cmのキュベットにとり、波
長650nmにおける吸光度を測定しつつ培養し、吸光
度が約1.5に達した時点でIPTGを終濃度0.1m
Mとなるように添加し、さらに5時間培養した。その
後、遠心分離により培養物から回収される菌体を、13
9mM塩化ナトリウム、7mMリン酸水素二ナトリウム
及び3mMリン酸二水素ナトリウムを含む混液(pH
7.2)に懸濁し常法により超音波処理して菌体を破砕
し、菌体破砕物を遠心分離して上清を回収した。
【0068】この上清に氷冷下で硫酸アンモニウムを5
0%(w/v)まで加え、均一に溶解し、暫時静置し遠
心分離後、沈澱を採取した。この沈澱を20mMトリス
塩酸緩衝液(pH8.0)に溶解させ、同緩衝液に透析
後、同緩衝液で平衡化したファルマシア製『キュー・セ
ファロース・エフ・エフ・カラム』に負荷し、同緩衝液
で充分に洗浄後、0から0.5Mの塩化ナトリウムの濃
度勾配下、20mMトリス塩酸緩衝液(pH8.0)を
通液した。塩化ナトリウム濃度が0.1乃至0.3M付
近で溶出した画分を採取し、膜濃縮しながら10mMリ
ン酸ナトリウム緩衝液(pH7.5)に溶媒交換した。
同緩衝液で平衡化したシグマ製『L−アスパラギン・ア
ガロース』に負荷し、同緩衝液で洗浄後0.5M塩化ナ
トリウムを含む10mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.5)で溶出させた。溶出画分を膜濃縮し、10%
(v/v)グリセリンを含むトリス塩酸−塩緩衝液(p
H8.0)で平衡化したファルマシア製『ハイロード・
スーパーデックス・200・カラム』に負荷し、約30
0kDa付近の溶出画分を採取したところ、純度90%
以上の精製ポリペプチドが、培養液あたり約0.1mg
/mlの収量で得られた。
【0069】
【実施例A−1(c)】 〈理化学的性質〉精製ポリペプチドを次のように分析
し、その理化学的性質を明らかにした。精製ポリペプチ
ドのネイティブな分子量は、実験例1−1(e)に準じ
てゲル濾過により求めた。その結果、溶出画分のL−ア
スパラギナーゼ活性のピークは分子量約300kDaに
相当する位置に認められた。精製ポリペプチドの、解離
した状態での分子量は、実験例1−1(e)中に示した
SDS−PAGEにより求めた。その結果、分子量50
±10kDaの位置に、主たるバンドが認められた。こ
の結果は、精製ポリペプチドは、ネイティブな状態では
多量体を形成していることを示している。2種類の方法
の測定誤差及び、大腸菌を始めとする哺乳類以外の従来
公知のL−アスパラギナーゼのネイティブな状態での形
態が全て4量体であることを考慮に入れると、この結果
は精製ポリペプチドが4量体を形成していることを示し
ていると考えられる。またこの精製ポリペプチドを、実
験例1−1(d)に示した方法に供した結果、L−アス
パラギナーゼ活性を有していることが確認された。
【0070】
【実施例A−2】 〈L−アスパラギナーゼ活性を有するモルモット由来の
野生型ポリペプチド〉
【0071】
【実施例A−2(a)】 〈形質転換体の調製〉概要を図3に示す。先ず始めに、
センスプライマー及びアンチセンスプライマーの配列以
外は、全て実施例A−1(a)と同一の条件でPCRを
行った。センスプライマーの配列は、5′−GTGAA
TTCGGAGGTTCAGATGGCGCGCGCA
TCA−3′であり、アンチセンスプライマーの配列
は、5′−CTGCGGCCGCTCAGATGGCA
GGCGGCAC−3′であった。ここで増幅されたD
NAを制限酵素Eco RI及びNot Iで切断し、
約1.7kbpのEco RI−Not I断片を得
た。このDNA断片70ngと、予め制限酵素Xho
I及びNot Iで切断しておいたファルマシア製プラ
スミドベクター『pBPV』50ng及び、リンカーと
して次の塩基配列よりなる4種のオリゴヌクレオチド
を、それぞれ25ngずつ混合した。第1のオリゴヌク
レオチドの配列は、5′−TCGAGCCACCATG
AAGTGTTCGTGGGTTATT−3′、第2の
それは、5′−TTCTTCCTGATGGCCGTA
GTGACAGGAGTG−3′、第3のそれは、5′
−AATTCACTCCTGTCACTACGGCCA
TCAGGA−3′であり、第4のそれは、5′−AG
AAAATAACCCACGAACACTTCATGG
TGGC−3′である。なおリンカーとして用いたオリ
ゴヌクレオチドは、いずれも常法に従い合成後、ファル
マシア製T4ポリヌクレオチド・キナーゼを作用させた
後、エタノール沈澱により精製したものを用いた。この
DNA混合溶液に、等容の宝酒造製ライゲーション・キ
ット・バージョン2の溶液Iを加え、16℃で2時間保
持することにより複製可能な組換えDNA『pBIgG
PA/WT』を得た。
【0072】組換えDNA pBIgGPA/WTをコ
ンピテントセル法により大腸菌HB101株に導入し、
得られる形質転換体を50μg/mlのアンピシリンを
含むLブロス培地(pH7.2)に接種し、37℃で1
8時間振とう培養した。培養物を遠心分離して菌体を回
収し、通常のアルカリ−SDS法を適用して組換DNA
pBIgGPA/WTを抽出した。自動シーケンサで
配列を分析すると、このpBIgGPA/WTは図4に
示すような構造をしていることが確認された。すなわ
ち、モロニー・マウス肉腫ウイルスのロング・ターミナ
ル・リピート由来のエンハンサー(Emsv)とマウス
・メタロチオネインI遺伝子由来のプロモーター(Pm
ti)からなる転写調節域の下流に、ディー・エフ・ス
ターンが『サイエンス』、第235巻、321乃至32
4頁(1987年)で紹介しているイムノグロブリンの
分泌シグナル配列を含むペプチド部分をコードするDN
A、Ig sec DNA が連結されており、さらに
その下流に同じ読み枠で、GPA/WT DNAが5′
末端から3′末端方向に連結されていた。また、GPA
/WT DNAの3′末端には介在配列なく終止コドン
が存在していることも確認した。
【0073】この組換えDNA pBIgGPA/WT
を、ライフ・テクノロジーズ製リポフェクチン試薬を用
い、添付のプロトコールに従って、マウス由来細胞株C
127(ATCC CRL−1616)に導入した。該
組換えDNAが導入された形質転換体は、第一段階とし
て、増殖の制御能力の喪失すなわちフォーカス形成能に
よって選択した。第二段階として、フォーカスを含む近
傍の細胞を滅菌濾紙にて回収し、目的とする形質転換体
を通常の限界希釈法により、L−アスパラギナーゼ活性
の産生能に基づき単細胞化した。斯くして形質転換体
『C−GPA/WT』を得た。
【0074】
【実施例A−2(b)】 〈ポリペプチドの製造〉形質転換体C−GPA/WT
を、先ず種培養として2.5mlの10%(v/v)ウ
シ胎児血清を含むDME培地を添加した口径3.5cm
のベクトン・ディッキンソン・ラブウェア製6穴マルチ
ウエルプレート『3046』の1穴に接種し、コンフル
エントにまで培養した。ここから細胞をトリプシン処理
することにより剥離させ、その一部を種細胞として、同
培地を添加した別の新たな6穴プラスチックプレートの
6穴に接種し培養した。同様の操作を順次培養器を拡張
させながら繰り返し、細胞数を増加させて、150cm
2 培養フラスコ50本を用いて、該形質転換体を通常の
連続培養に供した。最終的に培養上清100lを回収
し、実施例A−1(b)の菌体破砕物の上清の処理方法
と同様に、硫酸アンモニウム沈澱、沈澱溶解液のキュー
・セファロース・エフエフ・カラムを用いたクロマトグ
ラフィー、その溶出画分のL−アスパラギン・アガロー
ス・を用いたクロマトグラフィー及びその溶出画分のハ
イロード・スーパーデックス・200・カラムを用いた
クロマトグラフィーの順で処理した。その結果、純度9
0%以上の精製ポリペプチドが、培養液あたり約1μg
/mlの収量で得られた。
【0075】
【実施例A−2(c)】 〈理化学的性質〉得られた精製ポリペプチドの理化学的
性質を、実施例A−1(c)と同様に調べると、実施例
A−1(b)で得た精製ポリペプチドと同等の性質を示
すものであることが確認された。
【0076】
【実施例A−3】 〈L−アスパラギナーゼ活性を有するヒト及びモルモッ
ト由来のポリペプチド相同体〉
【0077】
【実施例A−3(a)】 〈形質転換体の調製〉鋳型、センスプライマー及びアン
チセンスプライマー以外は実施例A−1(a)に示した
方法と同一条件でPCRを行い、得られたDNAを実施
例A−1(a)と同様に処理することにより組換えDN
A『pKGPA/D364stp』、『pKHA/MU
T1』、『pKHA/MUT2』、『pKHA/MUT
3』及び『pKHA/MUT5』を得た。それぞれの組
換えDNAの調製のために用いた鋳型DNAの名称、セ
ンスプライマー及びアンチセンスプライマーの塩基配列
を表5にまとめて示す。実施例A−1(a)と同様に塩
基配列を分析し、これらの組換えDNAの構造確認し
た。これらの組換えDNAの構造は、図5乃至9に示し
ている。
【0078】
【表5】
【0079】ここで得た、組換えDNAを同様に実施例
A−1(a)に従って処理し、形質転換体『J−GPA
/D364stp』、『J−HA/MUT1』、『J−
HA/MUT2』、『J−HA/MUT3』及び『J−
HA/MUT5』を得た。
【0080】
【実施例A−3(b)】 〈ポリペプチドの製造〉これら5種類の形質転換体を実
施例A−1(b)と同様に培養、菌体の破砕、菌体破砕
物の硫酸アンモニウム沈澱、沈澱溶解液のキュー・セフ
ァロース・エフエフ・カラムを用いたクロマトグラフィ
ー、及びその溶出画分のL−アスパラギン・アガロース
を用いたクロマトグラフィーの順で処理した。この結果
得られた溶出画分は実施例A−1(b)と同様に膜濃縮
した後、ハイロード・スーパーデックス・200・カラ
ムを用いたクロマトグラフィーに供し、約140kDa
付近の溶出画分を採取したところ、いずれも純度90%
以上の精製ポリペプチドが培養液あたり約0.1mg/
mlの収量で得られた。これらの精製ポリペプチドを実
施例A−1(c)の方法により分析し、理化学的性質を
明らかにした。実施例A−1で得た結果とあわせて表6
に示した。
【0081】
【表6】
【0082】表6に示す結果は、大腸菌を宿主として発
現させ精製された、それぞれの野生型ポリペプチド或い
はポリペプチド相同体は、いずれもL−アスパラギナー
ゼ活性を示すことが分かる。またこれらのポリペプチド
は4量体を形成していることが示されている。
【0083】
【実施例A−4】 〈L−アスパラギナーゼ活性を有するヒト及びモルモッ
ト由来のポリペプチド相同体〉
【0084】
【実施例A−4(a)】 〈形質転換体の調製〉鋳型、センスプライマー又はアン
チセンスプライマー以外は実施例A−1(a)に示した
方法と同一条件でPCRを行った。得られたDNAを実
施例A−2(a)で用いたのと同一のリンカーを用い、
同一の条件で連結することにより、組換えDNA『pB
IgGPA/D364stp』、『pBIgHA/MU
T1』、『pBIgHA/MUT2』、『pBIgHA
/MUT3』及び『pBIgHA/MUT5』を得た。
それぞれの組換えDNAの調製のためのPCRに用いた
鋳型DNAの名称、センスプライマー及びアンチセンス
プライマーの塩基配列を表7にまとめて示す。実施例A
−1(a)と同様に塩基配列を分析し、これらの組換え
DNAの構造を確認した。これらの組換えDNAの構造
は、図10乃至14に示している。
【0085】
【表7】
【0086】ここで得た、組換えDNAを同様に実施例
A−2(a)と同様に処理することにより、それぞれ形
質転換体『C−GPA/D364stp』、『C−HA
/MUT1』、『C−HA/MUT2』、『C−HA/
MUT3』及び『C−HA/MUT5』を得た。
【0087】
【実施例A−4(b)】 〈ポリペプチドの製造〉
【0088】これら5種類の形質転換体を実施例A−2
(b)と同様に培養し、培養上清を実施例A−1(b)
の菌体破砕の処理方法と同様に硫酸アンモニウム沈澱、
沈澱溶解液のキュー・セファロース・エフ・エフ・カラ
ムを用いたクロマトグラフィー及びその溶出画分のL−
アスパラギン・アガロース・ゲルを用いたクロマトグラ
フィーの順で処理した。この結果得られた溶出画分は実
施例A−1(b)と同様に膜濃縮した後、ハイロード・
スーパーデックス・200・カラムを用いたクロマトグ
ラフィーに供し、約140kDa付近の溶出画分を採取
したところ、純度90%以上の精製ポリペプチドが培養
液あたり約1μg/mlの収量で得られた。これらの精
製ポリペプチドを実施例A−1(c)の方法により分析
し、理化学的性質を明らかにした。実施例A−3で得た
結果とあわせて表8に示した。
【0089】
【表8】
【0090】表8に示す結果は、動物細胞を宿主として
発現させ精製された、それぞれの野生型ポリペプチド或
いは、ポリペプチド相同体は、いずれもL−アスパラギ
ナーゼ活性を示すことが分かる。またこれらのポリペプ
チドは4量体を形成していることが示される。
【0091】以上実施例Aに示すごとく、この発明のポ
リペプチドは、いずれもL−アスパラギナーゼ活性を示
す。したがって、この発明の感受性疾患剤は、ヒトに投
与すると、体内のL−アスパラギンを加水分解し、L−
アスパラギナーゼ感受性疾患の治療・予防に効果を発揮
する。この発明でいう感受性疾患とは、L−アスパラギ
ン依存性腫瘍細胞の存在に起因する疾患全般を意味する
ものとし、具体的には、例えば、急性白血病・急性転化
した慢性白血病・T細胞白血病等の白血病、非ホジキン
病・ホジキン病等の悪性リンパ腫を挙げることができ
る。斯くしてこの発明の感受性疾患剤は、上記のごとき
感受性疾患を治療・予防するための抗腫瘍剤としての用
途を有することとなる。剤型並びに感受性疾患の種類及
び性状にもよるが、この発明の感受性疾患剤は、通常、
液状、ペースト状又は固状に調製され、当該ポリペプチ
ドを0.000001乃至100%(w/w)、望まし
くは、0.0001乃至100%(w/w)含んでい
る。
【0092】この発明の感受性疾患剤は当該ポリペプチ
ド単独の形態はもとより、当該ポリペプチドとそれ以外
の生理的に許容される、例えば、基剤、賦形剤、可溶
剤、緩衝剤、安定剤、さらには必要に応じて、他の生理
活性物質乃至は他の薬剤のうちから選ばれる1種又は2
種以上との組成物としての形態をも包含する。基剤、賦
形剤、可溶剤、緩衝剤及び安定剤としては具体的には、
例えば、日本医薬品添加剤協会編集、『医薬品添加物辞
典』(1994年)、薬事日報社発行や、日本医薬品添
加剤協会編集、『医薬品添加物辞典追補 1995』
(1995年)、薬事日報社発行などに記載のものが挙
げられる。他の生理活性物質乃至他の薬剤としては具体
的には、例えば、インターフェロン−α、インターフェ
ロン−β、インターフェロン−γ、インターロイキン
1、インターロイキン2、インターロイキン3、TNF
−α、TNF−β、GM−CSF、カルボコン、シクロ
フォスファミド、アクラルビシン、チオテパ、ブスルフ
ァン、アンシタビン、シタラビン、フルオロウラシル、
テトラヒドロフリルフルオロウラシル、メトトレキサー
ト、アクチノマイシンD、クロモマイシンA3、ダウノ
ルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、メルカプ
トプリン、プレドニゾロン、マイトマイシンC、ビンク
リスチン、ビンブラスチン、金コロイド、クレスチン、
ピシバニール、レンチナン及び丸山ワクチンなどが挙げ
られる。
【0093】さらに、この発明の感受性疾患剤は、投薬
単位形態の薬剤をも包含し、その投薬単位形態の薬剤と
は、当該ポリペプチドを、例えば、1回当たりの用量又
はその正数倍(4倍まで)若しくはその約数(1/40
まで)に相当する量を含んでおり、投薬に適する物理的
に分離した一体の剤型にある薬剤を意味する。この様な
投薬形態の薬剤としては、注射剤、液剤、散剤、顆粒
剤、錠剤、カプセル剤、舌下剤、点眼剤、点鼻剤、座剤
などが挙げられる。
【0094】この発明の感受性疾患剤は経口的に投与し
ても非経口的に投与しても、いずれの場合にも、感受性
疾患の治療・予防に効果を発揮する。感受性疾患の種類
や症状にもよるが、具体的には、患者の症状や投与後の
経過を観察しながら、成人当たり約0.1μg乃至50
0mg/回、望ましくは約0.1乃至100mg/回の
ポリペプチドを1乃至4回/日又は1乃至7回/週の用
量で1日乃至1年間にわたって経口投与するか、皮内、
皮下、筋肉内又は静脈内に非経口投与すればよい。ま
た、この発明の感受性疾患剤のその他の一形態として
は、例えば、遺伝子治療を応用した形態が挙げられる。
つまり、この発明のポリペプチドをコードするDNAを
適宜宿主に導入してなる形質転換体を投与し、この発明
のポリペプチドを感受性疾患患者の生体内で産生させる
ことにより、上記の投与形態と同等の効果を発揮する。
なお、遺伝子治療を実施するための一般的手順は、例え
ば、島田隆、斎藤泉、小澤敬也編集、『実験医学別冊バ
イオマニュアルUPシリーズ遺伝子治療の基礎技術』
(1996年)、羊土社発行に詳述されている。
【0095】次に、実験例3に基づき、この発明のポリ
ペプチドの生物活性について、実験例4に基づき、この
発明のポリペプチドの安全性について説明する。
【0096】
【実験例3】 〈生物活性〉
【0097】
【実験例3−1】 〈イン・ビトロにおける抗腫瘍細胞効果〉
【0098】ヒト組織球リンパ腫細胞株U937(AT
CC No.CRL−1593)及びヒトリンパ芽球由
来細胞株Molt4(ATCC No.CRL−158
2)を、10%(v/v)ウシ胎児血清を含むRPMI
1640培地で予め経代培養しておいた。対数増殖期に
あるそれぞれの細胞培養系から、細胞を遠心分離により
回収し、同培地で2×105 個/mlの細胞濃度に調整
し、該細胞懸濁液をベクトン・ディッキンソン・ラブウ
ェア製24穴マルチウエルプレート『3047』プレー
トに、1穴あたり1mlで合計13穴に接種した。ここ
に実施例A−1乃至A−4で調製した12種類の精製ポ
リペプチドのPBSによる希釈液をそれぞれ添加し、5
%(v/v)CO2 インキュベーター内で、37℃で7
2時間培養した。各精製ポリペプチドの終濃度は、L−
アスパラギナーゼ活性として1単位/mlであった。対
照区として、PBSを等容添加して同じく培養する系を
設けた。培養後細胞を回収し、トリパン・ブルーにより
死細胞を染色して、精製ポリペプチド添加系の細胞生存
率を対照区と比較した。その結果、いずれの精製ポリペ
プチドを添加した系も、細胞生存率は対照区と比較して
有意に低い値を示した。このことは、実施例A−1乃至
A−4で得られた精製ポリペプチドは、いずれもU93
7及びMolt4に対する細胞障害性を有することを示
している。
【0099】
【実験例3−2】 〈イン・ビボにおける抗腫瘍細胞効果〉
【0100】東北大学加齢医学研究所医用細胞資源セン
ターに登録されているマウスリンパ腫細胞株6C3HE
Dを、常法により1×107 個/匹で8日ごとにその脇
腹に皮下注射することによって経代移植されているC3
Hマウスをモデルマウスとして用いた。該細胞の移植後
4日目から7日目までの毎日、該モデルマウスに実施例
A−1乃至A−4で得られた精製ポリペプチドを、40
0単位/匹で、静脈注射にて投与した。移植後4及び8
日目の腫瘍の大きさを肉眼で観察した。なお精製ポリペ
プチドは、0.15Mの塩化ナトリウム溶液で希釈した
後、ミリポア製の孔径0.45μmのメンブランフィル
ターで濾過した後に投与した。対照区として、0.15
M塩化ナトリウム溶液を同様に処理した系を設けた。そ
の結果、対照区では腫瘍の明らかな肥大が認められたの
に対し、精製ポリペプチドを投与した系では腫瘍の明ら
かな退縮又は消失が認められた。このことは、実施例A
−1乃至A−4で調製される精製ポリペプチドが、いず
れもモデルマウスの腫瘍を治癒する能力があることを示
している。
【0101】
【実験例4】 〈急性毒性試験〉実施例A−1乃至A−4で調製された
精製ポリペプチドをそれぞれ別個に、常法にしたがって
8週齢のマウスに経皮、経口あるいは腹腔内に注射投与
した。その結果、これらの精製ポリペプチドのLD50
は、いずれの投与経路による場合も約100mg/kg
以上であった。このことは、この発明のポリペプチドが
ヒトへの投与を前提とする医薬品として安全であること
を裏付けている。
【0102】以下、この発明の感受性疾患剤につき実施
例を挙げて説明する。
【0103】
【実施例B】
〈感受性疾患剤〉
【0104】
【実施例B−1】 〈液剤〉安定剤として1%(w/v)のヒト血清アルブ
ミンを含む生理食塩水に実施例A−1乃至A−4で得た
精製ポリペプチドをそれぞれ別個に0.1mg/mlと
なるように溶解させ、常法に従った精密濾過により滅菌
して液剤を得た。
【0105】いずれの製品も安定性に優れ、悪性腫瘍、
急性白血病、悪性リンパ腫、慢性白血病の急性転化、T
細胞白血病を含む感受性疾患を治療・予防するための注
射剤、点眼剤、及び点鼻剤として有用である。
【0106】
【実施例B−2】 〈液剤〉安定剤として1%(w/v)のグリセリンを含
む生理食塩水に実施例A−1乃至A−4で得た精製ポリ
ペプチドをそれぞれ別個に0.1mg/mlとなるよう
に溶解させ、常法に従った精密濾過により滅菌して液剤
を得た。
【0107】いずれの製品も安定性に優れた、悪性腫
瘍、急性白血病、悪性リンパ腫、慢性白血病の急性転
化、T細胞白血病を含む感受性疾患を治療・予防するた
めの注射剤、点眼剤、及び点鼻剤として有用である。
【0108】
【実施例B−3】 〈乾燥注射剤〉安定剤として、1%(w/v)の精製ゼ
ラチンを含む生理食塩水に実施例A−1乃至A−4で得
た精製ポリペプチドをそれぞれ別個に50mg/mlと
なるように溶解させ、常法に従った精密濾過により滅菌
して、バイアル瓶に1mlずつ分注し、凍結乾燥後密栓
した。
【0109】いずれの製品も安定性に優れ、悪性腫瘍、
急性白血病、悪性リンパ腫、慢性白血病の急性転化、T
細胞白血病を含む感受性疾患を治療・予防するための乾
燥注射剤として有用である。
【0110】
【実施例B−4】 〈軟膏剤〉滅菌蒸留水に和光純薬工業製カルボキシビニ
ルポリマー『ハイビスワコー104』と高純度トレハロ
ースをそれぞれ濃度1.4%(w/w)及び2.0%
(w/w)になるように溶解させ、実施例A−1乃至A
−4で得た精製ポリペプチドをそれぞれ別個に均一に混
合後、pH7.2に調整して1g当たり該ポリペプチド
を約10mg含むペースト状物を得た。
【0111】いずれの製品も延展性と安定性に優れ、悪
性腫瘍、急性白血病、悪性リンパ腫、慢性白血病の急性
転化、T細胞白血病を含む感受性疾患を治療・予防する
ための軟膏として有用である。
【0112】
【実施例B−5】 〈錠剤〉林原製無水結晶α−マルトース粉末『ファイン
トース』に実施例A−1乃至A−4で得た精製ポリペプ
チドと細胞賦活剤としてのルミンを均一に混合し、得ら
れる混合物を打錠機により打錠して製品1錠(約200
mg)当たり該ポリペプチド及びルミンをそれぞれ約5
mg含む錠剤を得た。
【0113】いずれの製品も摂取性と安定性に優れ、さ
らに細胞賦活作用も有し、悪性腫瘍、急性白血病、悪性
リンパ腫、慢性白血病の急性転化、T細胞白血病を含む
感受性疾患を治療・予防するための錠剤として有用であ
る。
【0114】
【発明の効果】この発明は、L−アスパラギナーゼ活性
を有する哺乳類由来のポリペプチドの発見に基づくもの
である。この発明のポリペプチドは、いずれもアミノ酸
配列まで解明されている物質であり、安定したL−アス
パラギンを加水分解する活性を有する。これにより、こ
の発明のポリペプチドは、L−アスパラギン依存性腫瘍
細胞に起因する各種の疾患に対する治療剤・予防剤とし
て威力を発揮する。
【0115】この発明のポリペプチドは哺乳類由来であ
ることから、ヒトに対する抗原性が低く、多量投与或い
は継続投与しても重篤な副作用を惹起することがない。
したがって、この発明のポリペプチドは、使用に際して
患者の感受性に関して厳密な管理をしなくとも、所望の
効果を発揮できる利点がある。
【0116】かくも有用なるこの発明のポリペプチド
は、これをコードするこの発明のDNAを利用すること
により、所望量を容易に製造することができる。
【0117】この発明は、斯くも顕著な作用効果を発揮
するものであり、斯界に貢献すること誠に多大な意義の
ある発明であるといえる。
【0118】
【配列表】
配列番号:1 配列の長さ:4 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0119】配列番号:2 配列の長さ:5 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0120】配列番号:3 配列の長さ:5 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド
【0121】配列番号:4 配列の長さ:363 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Pro Gly Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Lys 35 40 45 Glu Phe Ala Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp His Ala Leu Ala Leu Pro 50 55 60 Pro Ala Ser His Gly Pro Arg Val Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Leu Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Asp Asp Trp Ile Arg Ile 85 90 95 Ala Lys Ile Ile Glu Arg His Tyr Glu Gln Tyr Gln Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Gly Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Met 165 170 175 Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val Thr Lys Val Asp Ser Gln 180 185 190 Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Ser Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu Val Arg Lys Val Asn Trp 210 215 220 Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met Glu His Asp Val Ala Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Ala Ala Ala Gln 275 280 285 Arg Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln Cys Leu Arg Gly Ser Val 290 295 300 Thr Pro Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly Ala Asn Ile Val Ser Gly 305 310 315 320 Leu Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu 325 330 335 Gly Leu Pro Glu Leu Ser Leu Glu Arg Arg Gln Glu Leu Leu Ala Lys 340 345 350 Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Leu Pro Thr Ala 355 360 363
【0122】配列番号:5 配列の長さ:565 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Pro Gly Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Lys 35 40 45 Glu Phe Ala Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp His Ala Leu Ala Leu Pro 50 55 60 Pro Ala Ser His Gly Pro Arg Val Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Leu Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Asp Asp Trp Ile Arg Ile 85 90 95 Ala Lys Ile Ile Glu Arg His Tyr Glu Gln Tyr Gln Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Gly Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Met 165 170 175 Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val Thr Lys Val Asp Ser Gln 180 185 190 Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Ser Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu Val Arg Lys Val Asn Trp 210 215 220 Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met Glu His Asp Val Ala Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Ala Ala Ala Gln 275 280 285 Arg Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln Cys Leu Arg Gly Ser Val 290 295 300 Thr Pro Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly Ala Asn Ile Val Ser Gly 305 310 315 320 Leu Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu 325 330 335 Gly Leu Pro Glu Leu Ser Leu Glu Arg Arg Gln Glu Leu Leu Ala Lys 340 345 350 Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Leu Pro Thr Ala Asp Leu His Gln Ser 355 360 365 Ser Pro Pro Gly Ser Thr Leu Gly Gln Gly Val Ala Arg Leu Phe Ser 370 375 380 Leu Phe Gly Cys Gln Glu Glu Asp Ser Val Gln Asp Ala Val Met Pro 385 390 395 400 Ser Leu Ala Leu Ala Leu Ala His Ala Gly Glu Leu Glu Ala Leu Gln 405 410 415 Ala Leu Met Glu Leu Gly Ser Asp Leu Arg Leu Lys Asp Ser Asn Gly 420 425 430 Gln Thr Leu Leu His Val Ala Ala Arg Asn Gly Arg Asp Gly Val Val 435 440 445 Thr Met Leu Leu His Arg Gly Met Asp Val Asn Ala Arg Asp Arg Asp 450 455 460 Gly Leu Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Gln Gly Arg His Arg Glu Cys 465 470 475 480 Ile Arg Leu Leu Arg Lys Ala Gly Ala Cys Leu Ser Pro Gln Asp Leu 485 490 495 Lys Asp Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Ser Arg Ala Asp Met 500 505 510 Glu Gly Leu Gln Ala Trp Gly Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gln Gln Pro 515 520 525 Gly Tyr Asp Gly Arg Ser Ala Leu Cys Val Ala Glu Ala Ala Gly Asn 530 535 540 Gln Glu Val Leu Ala Leu Leu Arg Asn Leu Ala Leu Val Gly Pro Glu 545 550 555 560 Val Pro Pro Ala Ile 565
【0123】配列番号:6 配列の長さ:365 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr Gln Cys Leu Arg Gly Ala Val 290 295 300 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Asn Val Ile 305 310 315 320 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val 355 360 365
【0124】配列番号:7 配列の長さ:365 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr Gln Cys Leu Arg Gly Ala Val 290 295 300 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile 305 310 315 320 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val 355 360 365
【0125】配列番号:8 配列の長さ:365 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr Gln Cys Leu Gln Gly Ala Val 290 295 300 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Asn Val Ile 305 310 315 320 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val 355 360 365
【0126】配列番号:9 配列の長さ:365 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr Gln Cys Leu Gln Gly Ala Val 290 295 300 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile 305 310 315 320 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val 355 360 365
【0127】配列番号:10 配列の長さ:1089 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CATCAGGCTC CGAGAGGCAC CTGCTGCTCA TCTACACTGG CGGCACTTTG 60 GGCATGCAGA GCAAGGGCGG GGTGCTCGTC CCCGGCCCAG GCCTGGTCAC TCTGCTGCGG 120 ACCCTGCCCA TGTTCCATGA CAAGGAGTTC GCCCAGGCCC AGGGCCTCCC TGACCATGCT 180 CTGGCGCTGC CCCCTGCCAG CCACGGCCCC AGGGTCCTCT ACACGGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTGG ATTCCAGCGA CATGACCATC GATGATTGGA TTCGCATAGC CAAGATCATA 300 GAGAGGCACT ATGAGCAGTA CCAAGGCTTT GTGGTTATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGGGGCCT CCATGCTGTC CTTCATGCTG GAAAACCTGC ACAAACCAGT CATCCTCACT 420 GGCGCCCAGG TGCCAATCCG TGTGCTGTGG AATGACGCCC GGGAAAACCT GCTGGGGGCG 480 TTGCTTGTGG CCGGCCAATA CATCATCCCT GAGGTCTGCC TGTTTATGAA CAGTCAGCTG 540 TTTCGGGGAA ACCGGGTAAC CAAGGTGGAC TCCCAGAAGT TTGAGGCCTT CTGCTCCCCC 600 AATCTGTCCC CACTAGCCAC TGTGGGCGCG GATGTCACAA TTGCCTGGGA CCTGGTGCGC 660 AAGGTCAACT GGAAGGACCC GCTGGTGGTG CACAGCAACA TGGAGCACGA CGTGGCACTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGCAT CCCGGCCTCC CTGGTCCGGG CATTCCTGCA GCCCCCGCTC 780 AAGGGCGTGG TCCTGGAGAC CTTCGGCTCT GGCAACGGGC CGAGCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGTTGC GGGCCGCGGC CCAGCGCGGC CTCATCATGG TCAACTGCAG CCAGTGCCTG 900 CGGGGGTCTG TGACCCCGGG CTATGCCACG AGCTTGGCGG GCGCCAACAT CGTGTCCGGC 960 TTAGACATGA CCTCAGAGGC CGCGCTGGCT AAGCTGTCCT ACGTGTTGGG CCTGCCGGAG 1020 CTGAGCCTGG AGCGCAGGCA GGAGCTGCTG GCCAAGGATC TTCGCGGGGA AATGACACTG 1080 CCCACGGCA 1089
【0128】配列番号:11 配列の長さ:1095 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CGGTGGGGCC CGAGCGGAGG CTGCTGGCCG TCTACACCGG CGGCACCATT 60 GGCATGCGGA GTGAGCTCGG CGTGCTTGTG CCCGGGACGG GCCTGGCTGC CATCCTGAGG 120 ACACTGCCCA TGTTCCATGA CGAGGAGCAC GCCCGAGCCC GCGGCCTCTC TGAGGACACC 180 CTGGTGCTAC CCCCGGACAG CCGCAACCAG AGGATCCTCT ACACCGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTCG ACTCCAGTGA CATGACCATC GCTGAGTGGG TTCGCGTTGC CCAGACCATC 300 AAGAGGCACT ACGAGCAGTA CCACGGCTTT GTGGTCATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGCTGCCT CGATGCTGTC CTTCATGCTG GAGAACCTGC AGAAGACTGT CATCCTCACT 420 GGGGCCCAGG TGCCCATCCA TGCCCTGTGG AGCGACGGCC GTGAGAACCT GCTGGGGGCA 480 CTGCTCATGG CTGGCCAGTA TGTGATCCCA GAGGTCTGCC TTTTCTTCCA GAATCAGCTG 540 TTTCGGGGCA ACCGGGCAAC CAAGGTAGAC GCTCGGAGGT TCGCAGCTTT CTGCTCCCCG 600 AACCTGCTGC CTCTGGCCAC AGTGGGTGCT GACATCACAA TCAACAGGGA GCTGGTGCGG 660 AAGGTGGACG GGAAGGCTGG GCTGGTGGTG CACAGCAGCA TGGAGCAGGA CGTGGGCCTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGGAT CCCTGCCGCC CTGGTTCGGG CCTTCTTGCA GCCTCCCCTG 780 AAGGGCGTGG TCATGGAGAC CTTCGGTTCA GGGAACGGAC CCACCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGCTGC GGGTGGCCAC CGAGCGCGGC CTGGTCATCG TCAACTGTAC CCAGTGCCTC 900 CGGGGGGCTG TGACCACAGA CTATGCAGCT GGCATGGCCA TGGCGGGAGC CAACGTCATC 960 TCAGGCTTCG ACATGACATC GGAGGCCGCC CTGGCCAAGC TATCGTATGT GCTGGGCCAG 1020 CCAGGGCTGA GCCTGGATGT CAGGAAGGAG CTGCTGACCA AGGACCTTCG GGGGGAGATG 1080 ACGCCACCCT CGGTG 1095
【0129】配列番号:12 配列の長さ:1095 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CGGTGGGGCC CGAGCGGAGG CTGCTGGCCG TCTACACCGG CGGCACCATT 60 GGCATGCGGA GTGAGCTCGG CGTGCTTGTG CCCGGGACGG GCCTGGCTGC CATCCTGAGG 120 ACACTGCCCA TGTTCCATGA CGAGGAGCAC GCCCGAGCCC GCGGCCTCTC TGAGGACACC 180 CTGGTGCTAC CCCCGGACAG CCGCAACCAG AGGATCCTCT ACACCGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTCG ACTCCAGTGA CATGACCATC GCTGAGTGGG TTCGCGTTGC CCAGACCATC 300 AAGAGGCACT ACGAGCAGTA CCACGGCTTT GTGGTCATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGCTGCCT CGATGCTGTC CTTCATGCTG GAGAACCTGC AGAAGACTGT CATCCTCACT 420 GGGGCCCAGG TGCCCATCCA TGCCCTGTGG AGCGACGGCC GTGAGAACCT GCTGGGGGCA 480 CTGCTCATGG CTGGCCAGTA TGTGATCCCA GAGGTCTGCC TTTTCTTCCA GAATCAGCTG 540 TTTCGGGGCA ACCGGGCAAC CAAGGTAGAC GCTCGGAGGT TCGCAGCTTT CTGCTCCCCG 600 AACCTGCTGC CTCTGGCCAC AGTGGGTGCT GACATCACAA TCAACAGGGA GCTGGTGCGG 660 AAGGTGGACG GGAAGGCTGG GCTGGTGGTG CACAGCAGCA TGGAGCAGGA CGTGGGCCTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGGAT CCCTGCCGCC CTGGTTCGGG CCTTCTTGCA GCCTCCCCTG 780 AAGGGCGTGG TCATGGAGAC CTTCGGTTCA GGGAACGGAC CCACCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGCTGC GGGTGGCCAC CGAGCGCGGC CTGGTCATCG TCAACTGTAC CCAGTGCCTC 900 CGGGGGGCTG TGACCACAGA CTATGCAGCT GGCATGGCCA TGGCGGGAGC CGGCGTCATC 960 TCAGGCTTCG ACATGACATC GGAGGCCGCC CTGGCCAAGC TATCGTATGT GCTGGGCCAG 1020 CCAGGGCTGA GCCTGGATGT CAGGAAGGAG CTGCTGACCA AGGACCTTCG GGGGGAGATG 1080 ACGCCACCCT CGGTG 1095
【0130】配列番号:13 配列の長さ:1095 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CGGTGGGGCC CGAGCGGAGG CTGCTGGCCG TCTACACCGG CGGCACCATT 60 GGCATGCGGA GTGAGCTCGG CGTGCTTGTG CCCGGGACGG GCCTGGCTGC CATCCTGAGG 120 ACACTGCCCA TGTTCCATGA CGAGGAGCAC GCCCGAGCCC GCGGCCTCTC TGAGGACACC 180 CTGGTGCTAC CCCCGGACAG CCGCAACCAG AGGATCCTCT ACACCGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTCG ACTCCAGTGA CATGACCATC GCTGAGTGGG TTCGCGTTGC CCAGACCATC 300 AAGAGGCACT ACGAGCAGTA CCACGGCTTT GTGGTCATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGCTGCCT CGATGCTGTC CTTCATGCTG GAGAACCTGC AGAAGACTGT CATCCTCACT 420 GGGGCCCAGG TGCCCATCCA TGCCCTGTGG AGCGACGGCC GTGAGAACCT GCTGGGGGCA 480 CTGCTCATGG CTGGCCAGTA TGTGATCCCA GAGGTCTGCC TTTTCTTCCA GAATCAGCTG 540 TTTCGGGGCA ACCGGGCAAC CAAGGTAGAC GCTCGGAGGT TCGCAGCTTT CTGCTCCCCG 600 AACCTGCTGC CTCTGGCCAC AGTGGGTGCT GACATCACAA TCAACAGGGA GCTGGTGCGG 660 AAGGTGGACG GGAAGGCTGG GCTGGTGGTG CACAGCAGCA TGGAGCAGGA CGTGGGCCTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGGAT CCCTGCCGCC CTGGTTCGGG CCTTCTTGCA GCCTCCCCTG 780 AAGGGCGTGG TCATGGAGAC CTTCGGTTCA GGGAACGGAC CCACCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGCTGC GGGTGGCCAC CGAGCGCGGC CTGGTCATCG TCAACTGTAC CCAGTGCCTC 900 CAGGGGGCTG TGACCACAGA CTATGCAGCT GGCATGGCCA TGGCGGGAGC CAACGTCATC 960 TCAGGCTTCG ACATGACATC GGAGGCCGCC CTGGCCAAGC TATCGTATGT GCTGGGCCAG 1020 CCAGGGCTGA GCCTGGATGT CAGGAAGGAG CTGCTGACCA AGGACCTTCG GGGGGAGATG 1080 ACGCCACCCT CGGTG 1095
【0131】配列番号:14 配列の長さ:1095 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CGGTGGGGCC CGAGCGGAGG CTGCTGGCCG TCTACACCGG CGGCACCATT 60 GGCATGCGGA GTGAGCTCGG CGTGCTTGTG CCCGGGACGG GCCTGGCTGC CATCCTGAGG 120 ACACTGCCCA TGTTCCATGA CGAGGAGCAC GCCCGAGCCC GCGGCCTCTC TGAGGACACC 180 CTGGTGCTAC CCCCGGACAG CCGCAACCAG AGGATCCTCT ACACCGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTCG ACTCCAGTGA CATGACCATC GCTGAGTGGG TTCGCGTTGC CCAGACCATC 300 AAGAGGCACT ACGAGCAGTA CCACGGCTTT GTGGTCATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGCTGCCT CGATGCTGTC CTTCATGCTG GAGAACCTGC AGAAGACTGT CATCCTCACT 420 GGGGCCCAGG TGCCCATCCA TGCCCTGTGG AGCGACGGCC GTGAGAACCT GCTGGGGGCA 480 CTGCTCATGG CTGGCCAGTA TGTGATCCCA GAGGTCTGCC TTTTCTTCCA GAATCAGCTG 540 TTTCGGGGCA ACCGGGCAAC CAAGGTAGAC GCTCGGAGGT TCGCAGCTTT CTGCTCCCCG 600 AACCTGCTGC CTCTGGCCAC AGTGGGTGCT GACATCACAA TCAACAGGGA GCTGGTGCGG 660 AAGGTGGACG GGAAGGCTGG GCTGGTGGTG CACAGCAGCA TGGAGCAGGA CGTGGGCCTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGGAT CCCTGCCGCC CTGGTTCGGG CCTTCTTGCA GCCTCCCCTG 780 AAGGGCGTGG TCATGGAGAC CTTCGGTTCA GGGAACGGAC CCACCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGCTGC GGGTGGCCAC CGAGCGCGGC CTGGTCATCG TCAACTGTAC CCAGTGCCTC 900 CAGGGGGCTG TGACCACAGA CTATGCAGCT GGCATGGCCA TGGCGGGAGC CGGCGTCATC 960 TCAGGCTTCG ACATGACATC GGAGGCCGCC CTGGCCAAGC TATCGTATGT GCTGGGCCAG 1020 CCAGGGCTGA GCCTGGATGT CAGGAAGGAG CTGCTGACCA AGGACCTTCG GGGGGAGATG 1080 ACGCCACCCT CGGTG 1095
【0132】配列番号:15 配列の長さ:1928 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポセティカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:モルモット 組織の種類:肝臓 配列の特徴 特徴を表す記号:5′UTR 存在位置:1..19 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:20..1714 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3′UTR 存在位置:1715..1928 特徴を決定した方法:S 配列 GAGTGGCTTA GCCGCAGGC ATG GCG CGC GCA TCA GGC TCC GAG AGG CAC 49 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His 1 5 10 CTG CTG CTC ATC TAC ACT GGC GGC ACT TTG GGC ATG CAG AGC AAG GGC 97 Leu Leu Leu Ile Tyr Thr Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly 15 20 25 GGG GTG CTC GTC CCC GGC CCA GGC CTG GTC ACT CTG CTG CGG ACC CTG 145 Gly Val Leu Val Pro Gly Pro Gly Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu 30 35 40 CCC ATG TTC CAT GAC AAG GAG TTC GCC CAG GCC CAG GGC CTC CCT GAC 193 Pro Met Phe His Asp Lys Glu Phe Ala Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp 45 50 55 CAT GCT CTG GCG CTG CCC CCT GCC AGC CAC GGC CCC AGG GTC CTC TAC 241 His Ala Leu Ala Leu Pro Pro Ala Ser His Gly Pro Arg Val Leu Tyr 60 65 70 ACG GTG CTG GAG TGC CAG CCC CTC TTG GAT TCC AGC GAC ATG ACC ATC 289 Thr Val Leu Glu Cys Gln Pro Leu Leu Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile 75 80 85 90 GAT GAT TGG ATT CGC ATA GCC AAG ATC ATA GAG AGG CAC TAT GAG CAG 337 Asp Asp Trp Ile Arg Ile Ala Lys Ile Ile Glu Arg His Tyr Glu Gln 95 100 105 TAC CAA GGC TTT GTG GTT ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG GCC TTT GGG 385 Tyr Gln Gly Phe Val Val Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Gly 110 115 120 GCC TCC ATG CTG TCC TTC ATG CTG GAA AAC CTG CAC AAA CCA GTC ATC 433 Ala Ser Met Leu Ser Phe Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro Val Ile 125 130 135 CTC ACT GGC GCC CAG GTG CCA ATC CGT GTG CTG TGG AAT GAC GCC CGG 481 Leu Thr Gly Ala Gln Val Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala Arg 140 145 150 GAA AAC CTG CTG GGG GCG TTG CTT GTG GCC GGC CAA TAC ATC ATC CCT 529 Glu Asn Leu Leu Gly Ala Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro 155 160 165 170 GAG GTC TGC CTG TTT ATG AAC AGT CAG CTG TTT CGG GGA AAC CGG GTA 577 Glu Val Cys Leu Phe Met Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val 175 180 185 ACC AAG GTG GAC TCC CAG AAG TTT GAG GCC TTC TGC TCC CCC AAT CTG 625 Thr Lys Val Asp Ser Gln Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu 190 195 200 TCC CCA CTA GCC ACT GTG GGC GCG GAT GTC ACA ATT GCC TGG GAC CTG 673 Ser Pro Leu Ala Thr Val Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu 205 210 215 GTG CGC AAG GTC AAC TGG AAG GAC CCG CTG GTG GTG CAC AGC AAC ATG 721 Val Arg Lys Val Asn Trp Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met 220 225 230 GAG CAC GAC GTG GCA CTG CTG CGC CTC TAC CCT GGC ATC CCG GCC TCC 769 Glu His Asp Val Ala Leu Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser 235 240 245 250 CTG GTC CGG GCA TTC CTG CAG CCC CCG CTC AAG GGC GTG GTC CTG GAG 817 Leu Val Arg Ala Phe Leu Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu 255 260 265 ACC TTC GGC TCT GGC AAC GGG CCG AGC AAG CCC GAC CTG CTG CAG GAG 865 Thr Phe Gly Ser Gly Asn Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu 270 275 280 TTG CGG GCC GCG GCC CAG CGC GGC CTC ATC ATG GTC AAC TGC AGC CAG 913 Leu Arg Ala Ala Ala Gln Arg Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln 285 290 295 TGC CTG CGG GGG TCT GTG ACC CCG GGC TAT GCC ACG AGC TTG GCG GGC 961 Cys Leu Arg Gly Ser Val Thr Pro Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly 300 305 310 GCC AAC ATC GTG TCC GGC TTA GAC ATG ACC TCA GAG GCC GCG CTG GCT 1009 Ala Asn Ile Val Ser Gly Leu Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala 315 320 325 330 AAG CTG TCC TAC GTG TTG GGC CTG CCG GAG CTG AGC CTG GAG CGC AGG 1057 Lys Leu Ser Tyr Val Leu Gly Leu Pro Glu Leu Ser Leu Glu Arg Arg 335 340 345 CAG GAG CTG CTG GCC AAG GAT CTT CGC GGG GAA ATG ACA CTG CCC ACG 1105 Gln Glu Leu Leu Ala Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Leu Pro Thr 350 355 360 GCA GAC CTG CAC CAG TCC TCT CCG CCG GGC AGC ACA CTG GGG CAA GGT 1153 Ala Asp Leu His Gln Ser Ser Pro Pro Gly Ser Thr Leu Gly Gln Gly 365 370 375 GTC GCC CGG CTC TTT AGT CTG TTC GGT TGC CAG GAG GAA GAT TCG GTG 1201 Val Ala Arg Leu Phe Ser Leu Phe Gly Cys Gln Glu Glu Asp Ser Val 380 385 390 CAG GAC GCC GTG ATG CCC AGC CTG GCC CTG GCC TTG GCC CAT GCT GGT 1249 Gln Asp Ala Val Met Pro Ser Leu Ala Leu Ala Leu Ala His Ala Gly 395 400 405 410 GAA CTC GAG GCT CTG CAG GCA CTT ATG GAG CTG GGC AGT GAC CTG CGC 1297 Glu Leu Glu Ala Leu Gln Ala Leu Met Glu Leu Gly Ser Asp Leu Arg 415 420 425 CTA AAG GAC TCT AAT GGC CAA ACC CTG TTG CAT GTG GCT GCT CGG AAT 1345 Leu Lys Asp Ser Asn Gly Gln Thr Leu Leu His Val Ala Ala Arg Asn 430 435 440 GGG CGT GAT GGC GTG GTC ACC ATG CTG CTG CAC AGA GGC ATG GAT GTC 1393 Gly Arg Asp Gly Val Val Thr Met Leu Leu His Arg Gly Met Asp Val 445 450 455 AAT GCC CGA GAC CGA GAC GGC CTC AGC CCA CTG CTG TTG GCT GTA CAG 1441 Asn Ala Arg Asp Arg Asp Gly Leu Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Gln 460 465 470 GGC AGG CAT CGG GAA TGC ATC AGG CTG CTG CGG AAG GCT GGG GCC TGC 1489 Gly Arg His Arg Glu Cys Ile Arg Leu Leu Arg Lys Ala Gly Ala Cys 475 480 485 490 CTG TCC CCC CAG GAC CTG AAG GAT GCA GGG ACC GAG CTG TGC AGG CTG 1537 Leu Ser Pro Gln Asp Leu Lys Asp Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu 495 500 505 GCA TCC AGG GCT GAC ATG GAA GGC CTG CAG GCA TGG GGG CAG GCT GGG 1585 Ala Ser Arg Ala Asp Met Glu Gly Leu Gln Ala Trp Gly Gln Ala Gly 510 515 520 GCC GAC CTG CAG CAG CCG GGC TAT GAT GGG CGC AGC GCT CTG TGT GTC 1633 Ala Asp Leu Gln Gln Pro Gly Tyr Asp Gly Arg Ser Ala Leu Cys Val 525 530 535 GCA GAA GCA GCC GGG AAC CAG GAG GTG CTG GCC CTT CTG CGG AAC CTG 1681 Ala Glu Ala Ala Gly Asn Gln Glu Val Leu Ala Leu Leu Arg Asn Leu 540 545 550 GCA CTT GTA GGC CCG GAA GTG CCG CCT GCC ATC TGATCGCCAG CAATCCCGCT 1734 Ala Leu Val Gly Pro Glu Val Pro Pro Ala Ile 555 560 565 GTGGTGTGAG CCACTCCGCC ATCTGCTGCT TTGACCCACT CGAGGGACCC TAGCACACGA 1794 CCCCCCAGCA GGATGCACCC CACTACTTAG AGTATACCCC AGGCTGGCTC AGTGACAAGC 1854 TGCAAAGGTC TTTGTTGGCA GAACAGCAAT AAAGTAACTA CAGAGTGGCC AAAAAAAAAA 1914 AAAAAAAAAA AAAA 1928
【0133】配列番号:16 配列の長さ:2096 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポテセィカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:ヒト 組織の種類:肝臓 配列の特徴: 特徴を表す記号:5′UTR 存在位置:1..92 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:93..1811 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3′UTR 存在位置:1812..2096 特徴を決定した方法:S 配列 CGCCCCGGGC CTCCTCCGCG CAGTCCCTGA GTCCCGCAGG CCCTGCGTCC CCGCTGCACA 60 CCCCCGTCCA CTCCCGTGGT CCCCGGTCCG GC ATG GCG CGC GCG GTG GGG CCC 113 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro 1 5 GAG CGG AGG CTG CTG GCC GTC TAC ACC GGC GGC ACC ATT GGC ATG CGG 161 Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg 10 15 20 AGT GAG CTC GGC GTG CTT GTG CCC GGG ACG GGC CTG GCT GCC ATC CTG 209 Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu 25 30 35 AGG ACA CTG CCC ATG TTC CAT GAC GAG GAG CAC GCC CGA GCC CGC GGC 257 Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu Glu His Ala Arg Ala Arg Gly 40 45 50 55 CTC TCT GAG GAC ACC CTG GTG CTA CCC CCG GAC AGC CGC AAC CAG AGG 305 Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg 60 65 70 ATC CTC TAC ACC GTG CTG GAG TGC CAG CCC CTC TTC GAC TCC AGT GAC 353 Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp 75 80 85 ATG ACC ATC GCT GAG TGG GTT CGC GTT GCC CAG ACC ATC AAG AGG CAC 401 Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val Ala Gln Thr Ile Lys Arg His 90 95 100 TAC GAG CAG TAC CAC GGC TTT GTG GTC ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG 449 Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val Ile His Gly Thr Asp Thr Met 105 110 115 GCC TTT GCT GCC TCG ATG CTG TCC TTC ATG CTG GAG AAC CTG CAG AAG 497 Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys 120 125 130 135 ACT GTC ATC CTC ACT GGG GCC CAG GTG CCC ATC CAT GCC CTG TGG AGC 545 Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val Pro Ile His Ala Leu Trp Ser 140 145 150 GAC GGC CGT GAG AAC CTG CTG GGG GCA CTG CTC ATG GCT GGC CAG TAT 593 Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr 155 160 165 GTG ATC CCA GAG GTC TGC CTT TTC TTC CAG AAT CAG CTG TTT CGG GGC 641 Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly 170 175 180 AAC CGG GCA ACC AAG GTA GAC GCT CGG AGG TTC GCA GCT TTC TGC TCC 689 Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser 185 190 195 CCG AAC CTG CTG CCT CTG GCC ACA GTG GGT GCT GAC ATC ACA ATC AAC 737 Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn 200 205 210 215 AGG GAG CTG GTG CGG AAG GTG GAC GGG AAG GCT GGG CTG GTG GTG CAC 785 Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly Lys Ala Gly Leu Val Val His 220 225 230 AGC AGC ATG GAG CAG GAC GTG GGC CTG CTG CGC CTC TAC CCT GGG ATC 833 Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile 235 240 245 CCT GCC GCC CTG GTT CGG GCC TTC TTG CAG CCT CCC CTG AAG GGC GTG 881 Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val 250 255 260 GTC ATG GAG ACC TTC GGT TCA GGG AAC GGA CCC ACC AAG CCC GAC CTG 929 Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu 265 270 275 CTG CAG GAG CTG CGG GTG GCC ACC GAG CGC GGC CTG GTC ATC GTC AAC 977 Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu Arg Gly Leu Val Ile Val Asn 280 285 290 295 TGT ACC CAC TGC CTC CAG GGG GCT GTG ACC ACA GAC TAT GCA GCT GGC 1025 Cys Thr His Cys Leu Gln Gly Ala Val Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly 300 305 310 ATG GCC ATG GCG GGA GCC GGC GTC ATC TCA GGC TTC GAC ATG ACA TCG 1073 Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser 315 320 325 GAG GCC GCC CTG GCC AAG CTA TCG TAT GTG CTG GGC CAG CCA GGG CTG 1121 Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu 330 335 340 AGC CTG GAT GTC AGG AAG GAG CTG CTG ACC AAG GAC CTT CGG GGG GAG 1169 Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu 345 350 355 ATG ACG CCA CCC TCG GTG GAA GAG CGC CGG CCC TCA CTG CAG GGC AAC 1217 Met Thr Pro Pro Ser Val Glu Glu Arg Arg Pro Ser Leu Gln Gly Asn 360 365 370 375 ACG CTG GGC GGT GGG GTC TCC TGG CTC CTC AGT CTG AGC GGC AGC CAG 1265 Thr Leu Gly Gly Gly Val Ser Trp Leu Leu Ser Leu Ser Gly Ser Gln 380 385 390 GAG GCA GAT GCC CTG CGG AAT GCC CTG GTG CCC AGC CTG GCC TGT GCT 1313 Glu Ala Asp Ala Leu Arg Asn Ala Leu Val Pro Ser Leu Ala Cys Ala 395 400 405 GCT GCC CAC GCC GGT GAC GTG GAG GCG CTG CAG GCG CTT GTG GAG CTG 1361 Ala Ala His Ala Gly Asp Val Glu Ala Leu Gln Ala Leu Val Glu Leu 410 415 420 GGC AGT GAC CTG GGC CTG GTG GAC TTT AAC GGC CAA ACC CCA CTG CAC 1409 Gly Ser Asp Leu Gly Leu Val Asp Phe Asn Gly Gln Thr Pro Leu His 425 430 435 GCG GCC GCC CGG GGA GGC CAC ACA GAG GCA GTC ACC ATG CTG CTG CAG 1457 Ala Ala Ala Arg Gly Gly His Thr Glu Ala Val Thr Met Leu Leu Gln 440 445 450 455 AGA GGT GTG GAC GTG AAC ACC CGG GAC ACG GAT GGC TTC AGC CCG CTG 1505 Arg Gly Val Asp Val Asn Thr Arg Asp Thr Asp Gly Phe Ser Pro Leu 460 465 470 CTG CTG GCC GTG CGG GGC AGG CAT CCG GGT GTC ATT GGG TTG CTG CGG 1553 Leu Leu Ala Val Arg Gly Arg His Pro Gly Val Ile Gly Leu Leu Arg 475 480 485 GAA GCC GGG GCC TCC CTG TCC ACC CAG GAG CTG GAG GAA GCA GGG ACG 1601 Glu Ala Gly Ala Ser Leu Ser Thr Gln Glu Leu Glu Glu Ala Gly Thr 490 495 500 GAG CTG TGC AGG CTG GCA TAC AGG GCC GAC CTC GAA GGC CTG CAG GTG 1649 Glu Leu Cys Arg Leu Ala Tyr Arg Ala Asp Leu Glu Gly Leu Gln Val 505 510 515 TGG TGG CAG GCA GGG GCT GAC CTG GGG CAG CCG GGC TAT GAC GGG CAC 1697 Trp Trp Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gly Gln Pro Gly Tyr Asp Gly His 520 525 530 535 AGC GCC CTG CAC GTC GCA GAG GCA GCC GGG AAC CTG GCA GTG GTG GCC 1745 Ser Ala Leu His Val Ala Glu Ala Ala Gly Asn Leu Ala Val Val Ala 540 545 550 TTT CTA CAG AGC CTG GAG GGT GCG GTT GGT GCC CAG GCC CCA TGC CCA 1793 Phe Leu Gln Ser Leu Glu Gly Ala Val Gly Ala Gln Ala Pro Cys Pro 555 560 565 GAA GTG CTG CCT GGT GTC TAACCTGAAG GCGTCCTGCT GCAGTATAAG 1841 Glu Val Leu Pro Gly Val 570 CCATTCCTTC CTCCCATGAC CTGCTGGAGG GGTCTCAGGC ATGACCCCAC TGCTGGGGCT 1901 GCTTCCCAGC CTGCTCTCAT GTAAAGCCTG AAGGCCTTTG TTGGGCAGGA CGGCAATAAA 1961 GTCTCTGACA TCCCCTCACC AGGTCTGTAC AGCCTGGCTC TGAGAGGCTC TGTCTGGGTC 2021 CGGGACTGTG AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA 2081 AAAAAAAAAA AAAAA 2096
【0134】配列番号:17 配列の長さ:1695 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポセティカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:モルモット 組織の種類:肝臓 配列の特徴 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:1..1695 配列 ATG GCG CGC GCA TCA GGC TCC GAG AGG CAC CTG CTG CTC ATC TAC ACT 48 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr 1 5 10 15 GGC GGC ACT TTG GGC ATG CAG AGC AAG GGC GGG GTG CTC GTC CCC GGC 96 Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 CCA GGC CTG GTC ACT CTG CTG CGG ACC CTG CCC ATG TTC CAT GAC AAG 144 Pro Gly Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Lys 35 40 45 GAG TTC GCC CAG GCC CAG GGC CTC CCT GAC CAT GCT CTG GCG CTG CCC 192 Glu Phe Ala Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp His Ala Leu Ala Leu Pro 50 55 60 CCT GCC AGC CAC GGC CCC AGG GTC CTC TAC ACG GTG CTG GAG TGC CAG 240 Pro Ala Ser His Gly Pro Arg Val Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 CCC CTC TTG GAT TCC AGC GAC ATG ACC ATC GAT GAT TGG ATT CGC ATA 288 Pro Leu Leu Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Asp Asp Trp Ile Arg Ile 85 90 95 GCC AAG ATC ATA GAG AGG CAC TAT GAG CAG TAC CAA GGC TTT GTG GTT 336 Ala Lys Ile Ile Glu Arg His Tyr Glu Gln Tyr Gln Gly Phe Val Val 100 105 110 ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG GCC TTT GGG GCC TCC ATG CTG TCC TTC 384 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Gly Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 ATG CTG GAA AAC CTG CAC AAA CCA GTC ATC CTC ACT GGC GCC CAG GTG 432 Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 CCA ATC CGT GTG CTG TGG AAT GAC GCC CGG GAA AAC CTG CTG GGG GCG 480 Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 TTG CTT GTG GCC GGC CAA TAC ATC ATC CCT GAG GTC TGC CTG TTT ATG 528 Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Met 165 170 175 AAC AGT CAG CTG TTT CGG GGA AAC CGG GTA ACC AAG GTG GAC TCC CAG 576 Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val Thr Lys Val Asp Ser Gln 180 185 190 AAG TTT GAG GCC TTC TGC TCC CCC AAT CTG TCC CCA CTA GCC ACT GTG 624 Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Ser Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 GGC GCG GAT GTC ACA ATT GCC TGG GAC CTG GTG CGC AAG GTC AAC TGG 672 Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu Val Arg Lys Val Asn Trp 210 215 220 AAG GAC CCG CTG GTG GTG CAC AGC AAC ATG GAG CAC GAC GTG GCA CTG 720 Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met Glu His Asp Val Ala Leu 225 230 235 240 CTG CGC CTC TAC CCT GGC ATC CCG GCC TCC CTG GTC CGG GCA TTC CTG 768 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 CAG CCC CCG CTC AAG GGC GTG GTC CTG GAG ACC TTC GGC TCT GGC AAC 816 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 GGG CCG AGC AAG CCC GAC CTG CTG CAG GAG TTG CGG GCC GCG GCC CAG 864 Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Ala Ala Ala Gln 275 280 285 CGC GGC CTC ATC ATG GTC AAC TGC AGC CAG TGC CTG CGG GGG TCT GTG 912 Arg Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln Cys Leu Arg Gly Ser Val 290 295 300 ACC CCG GGC TAT GCC ACG AGC TTG GCG GGC GCC AAC ATC GTG TCC GGC 960 Thr Pro Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly Ala Asn Ile Val Ser Gly 305 310 315 320 TTA GAC ATG ACC TCA GAG GCC GCG CTG GCT AAG CTG TCC TAC GTG TTG 1008 Leu Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu 325 330 335 GGC CTG CCG GAG CTG AGC CTG GAG CGC AGG CAG GAG CTG CTG GCC AAG 1056 Gly Leu Pro Glu Leu Ser Leu Glu Arg Arg Gln Glu Leu Leu Ala Lys 340 345 350 GAT CTT CGC GGG GAA ATG ACA CTG CCC ACG GCA GAC CTG CAC CAG TCC 1104 Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Leu Pro Thr Ala Asp Leu His Gln Ser 355 360 365 TCT CCG CCG GGC AGC ACA CTG GGG CAA GGT GTC GCC CGG CTC TTT AGT 1152 Ser Pro Pro Gly Ser Thr Leu Gly Gln Gly Val Ala Arg Leu Phe Ser 370 375 380 CTG TTC GGT TGC CAG GAG GAA GAT TCG GTG CAG GAC GCC GTG ATG CCC 1200 Leu Phe Gly Cys Gln Glu Glu Asp Ser Val Gln Asp Ala Val Met Pro 385 390 395 400 AGC CTG GCC CTG GCC TTG GCC CAT GCT GGT GAA CTC GAG GCT CTG CAG 1248 Ser Leu Ala Leu Ala Leu Ala His Ala Gly Glu Leu Glu Ala Leu Gln 405 410 415 GCA CTT ATG GAG CTG GGC AGT GAC CTG CGC CTA AAG GAC TCT AAT GGC 1296 Ala Leu Met Glu Leu Gly Ser Asp Leu Arg Leu Lys Asp Ser Asn Gly 420 425 430 CAA ACC CTG TTG CAT GTG GCT GCT CGG AAT GGG CGT GAT GGC GTG GTC 1344 Gln Thr Leu Leu His Val Ala Ala Arg Asn Gly Arg Asp Gly Val Val 435 440 445 ACC ATG CTG CTG CAC AGA GGC ATG GAT GTC AAT GCC CGA GAC CGA GAC 1392 Thr Met Leu Leu His Arg Gly Met Asp Val Asn Ala Arg Asp Arg Asp 450 455 460 GGC CTC AGC CCA CTG CTG TTG GCT GTA CAG GGC AGG CAT CGG GAA TGC 1440 Gly Leu Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Gln Gly Arg His Arg Glu Cys 465 470 475 480 ATC AGG CTG CTG CGG AAG GCT GGG GCC TGC CTG TCC CCC CAG GAC CTG 1488 Ile Arg Leu Leu Arg Lys Ala Gly Ala Cys Leu Ser Pro Gln Asp Leu 485 490 495 AAG GAT GCA GGG ACC GAG CTG TGC AGG CTG GCA TCC AGG GCT GAC ATG 1536 Lys Asp Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Ser Arg Ala Asp Met 500 505 510 GAA GGC CTG CAG GCA TGG GGG CAG GCT GGG GCC GAC CTG CAG CAG CCG 1584 Glu Gly Leu Gln Ala Trp Gly Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gln Gln Pro 515 520 525 GGC TAT GAT GGG CGC AGC GCT CTG TGT GTC GCA GAA GCA GCC GGG AAC 1632 Gly Tyr Asp Gly Arg Ser Ala Leu Cys Val Ala Glu Ala Ala Gly Asn 530 535 540 CAG GAG GTG CTG GCC CTT CTG CGG AAC CTG GCA CTT GTA GGC CCG GAA 1680 Gln Glu Val Leu Ala Leu Leu Arg Asn Leu Ala Leu Val Gly Pro Glu 545 550 555 560 GTG CCG CCT GCC ATC 1695 Val Pro Pro Ala Ile 565
【0135】配列番号:18 配列の長さ:1719 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポテセィカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:ヒト 組織の種類:肝臓 配列の特徴: 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:1..1719 特徴を決定した方法:S 配列 ATG GCG CGC GCG GTG GGG CCC GAG CGG AGG CTG CTG GCC GTC TAC ACC 48 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 GGC GGC ACC ATT GGC ATG CGG AGT GAG CTC GGC GTG CTT GTG CCC GGG 96 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 ACG GGC CTG GCT GCC ATC CTG AGG ACA CTG CCC ATG TTC CAT GAC GAG 144 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 GAG CAC GCC CGA GCC CGC GGC CTC TCT GAG GAC ACC CTG GTG CTA CCC 192 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 CCG GAC AGC CGC AAC CAG AGG ATC CTC TAC ACC GTG CTG GAG TGC CAG 240 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 CCC CTC TTC GAC TCC AGT GAC ATG ACC ATC GCT GAG TGG GTT CGC GTT 288 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 GCC CAG ACC ATC AAG AGG CAC TAC GAG CAG TAC CAC GGC TTT GTG GTC 336 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG GCC TTT GCT GCC TCG ATG CTG TCC TTC 384 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 ATG CTG GAG AAC CTG CAG AAG ACT GTC ATC CTC ACT GGG GCC CAG GTG 432 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 CCC ATC CAT GCC CTG TGG AGC GAC GGC CGT GAG AAC CTG CTG GGG GCA 480 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 CTG CTC ATG GCT GGC CAG TAT GTG ATC CCA GAG GTC TGC CTT TTC TTC 528 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 CAG AAT CAG CTG TTT CGG GGC AAC CGG GCA ACC AAG GTA GAC GCT CGG 576 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 AGG TTC GCA GCT TTC TGC TCC CCG AAC CTG CTG CCT CTG GCC ACA GTG 624 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 GGT GCT GAC ATC ACA ATC AAC AGG GAG CTG GTG CGG AAG GTG GAC GGG 672 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 AAG GCT GGG CTG GTG GTG CAC AGC AGC ATG GAG CAG GAC GTG GGC CTG 720 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 CTG CGC CTC TAC CCT GGG ATC CCT GCC GCC CTG GTT CGG GCC TTC TTG 768 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 CAG CCT CCC CTG AAG GGC GTG GTC ATG GAG ACC TTC GGT TCA GGG AAC 816 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 GGA CCC ACC AAG CCC GAC CTG CTG CAG GAG CTG CGG GTG GCC ACC GAG 864 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 CGC GGC CTG GTC ATC GTC AAC TGT ACC CAC TGC CTC CAG GGG GCT GTG 912 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr His Cys Leu Gln Gly Ala Val 290 295 300 ACC ACA GAC TAT GCA GCT GGC ATG GCC ATG GCG GGA GCC GGC GTC ATC 960 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile 305 310 315 320 TCA GGC TTC GAC ATG ACA TCG GAG GCC GCC CTG GCC AAG CTA TCG TAT 1008 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 GTG CTG GGC CAG CCA GGG CTG AGC CTG GAT GTC AGG AAG GAG CTG CTG 1056 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 ACC AAG GAC CTT CGG GGG GAG ATG ACG CCA CCC TCG GTG GAA GAG CGC 1104 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val Glu Glu Arg 355 360 365 CGG CCC TCA CTG CAG GGC AAC ACG CTG GGC GGT GGG GTC TCC TGG CTC 1152 Arg Pro Ser Leu Gln Gly Asn Thr Leu Gly Gly Gly Val Ser Trp Leu 370 375 380 CTC AGT CTG AGC GGC AGC CAG GAG GCA GAT GCC CTG CGG AAT GCC CTG 1200 Leu Ser Leu Ser Gly Ser Gln Glu Ala Asp Ala Leu Arg Asn Ala Leu 385 390 395 400 GTG CCC AGC CTG GCC TGT GCT GCT GCC CAC GCC GGT GAC GTG GAG GCG 1248 Val Pro Ser Leu Ala Cys Ala Ala Ala His Ala Gly Asp Val Glu Ala 405 410 415 CTG CAG GCG CTT GTG GAG CTG GGC AGT GAC CTG GGC CTG GTG GAC TTT 1296 Leu Gln Ala Leu Val Glu Leu Gly Ser Asp Leu Gly Leu Val Asp Phe 420 425 430 AAC GGC CAA ACC CCA CTG CAC GCG GCC GCC CGG GGA GGC CAC ACA GAG 1344 Asn Gly Gln Thr Pro Leu His Ala Ala Ala Arg Gly Gly His Thr Glu 435 440 445 GCA GTC ACC ATG CTG CTG CAG AGA GGT GTG GAC GTG AAC ACC CGG GAC 1392 Ala Val Thr Met Leu Leu Gln Arg Gly Val Asp Val Asn Thr Arg Asp 450 455 460 ACG GAT GGC TTC AGC CCG CTG CTG CTG GCC GTG CGG GGC AGG CAT CCG 1440 Thr Asp Gly Phe Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Arg Gly Arg His Pro 465 470 475 480 GGT GTC ATT GGG TTG CTG CGG GAA GCC GGG GCC TCC CTG TCC ACC CAG 1488 Gly Val Ile Gly Leu Leu Arg Glu Ala Gly Ala Ser Leu Ser Thr Gln 485 490 495 GAG CTG GAG GAA GCA GGG ACG GAG CTG TGC AGG CTG GCA TAC AGG GCC 1536 Glu Leu Glu Glu Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Tyr Arg Ala 500 505 510 GAC CTC GAA GGC CTG CAG GTG TGG TGG CAG GCA GGG GCT GAC CTG GGG 1584 Asp Leu Glu Gly Leu Gln Val Trp Trp Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gly 515 520 525 CAG CCG GGC TAT GAC GGG CAC AGC GCC CTG CAC GTC GCA GAG GCA GCC 1632 Gln Pro Gly Tyr Asp Gly His Ser Ala Leu His Val Ala Glu Ala Ala 530 535 540 GGG AAC CTG GCA GTG GTG GCC TTT CTA CAG AGC CTG GAG GGT GCG GTT 1680 Gly Asn Leu Ala Val Val Ala Phe Leu Gln Ser Leu Glu Gly Ala Val 545 550 555 560 GGT GCC CAG GCC CCA TGC CCA GAA GTG CTG CCT GGT GTC 1716 Gly Ala Gln Ala Pro Cys Pro Glu Val Leu Pro Gly Val 565 570 573
【図面の簡単な説明】
【図1】オーバー・ラップ・エクステンション法の概要
を示す図である。
【図2】組換えDNA pKGPA/WTの制限酵素地
図を示す図である。
【図3】組換えDNA pBIgGPA/WTの調製法
の概要を示す図である。
【図4】組換えDNA pBIgGPA/WTの制限酵
素地図を示す図である。
【図5】組換えDNA pKGPA/D364stpの
制限酵素地図を示す図である。
【図6】組換えDNA pKHA/MUT1の制限酵素
地図を示す図である。
【図7】組換えDNA pKHA/MUT2の制限酵素
地図を示す図である。
【図8】組換えDNA pKHA/MUT3の制限酵素
地図を示す図である。
【図9】組換えDNA pKHA/MUT5の制限酵素
地図を示す図である。
【図10】組換えDNA pBIgGPA/D364s
tpの制限酵素地図を示す図である。
【図11】組換えDNA pBIgHA/MUT1の制
限酵素地図を示す図である。
【図12】組換えDNA pBIgHA/MUT2の制
限酵素地図を示す図である。
【図13】組換えDNA pBIgHA/MUT3の制
限酵素地図を示す図である。
【図14】組換えDNA pBIgHA/MUT5の制
限酵素地図を示す図である。
【符号の説明】
Eco RI Eco RI切断部位 Hin dIII Hin dIII切断
部位 Not I Not I切断部位 Xho I Xho I切断部位 GPA/WT モルモット野生型L−
アスパラギナーゼをコードするDNA(GPA/WT
DNA) D364stp モルモットL−アスパ
ラギナーゼ相同体をコードするDNA(GPA/D36
4stpDNA) HA/MUT1 ヒトL−アスパラギナ
ーゼ相同体をコードするDNA(HA/MUT1 DN
A) HA/MUT2 ヒトL−アスパラギナ
ーゼ相同体をコードするDNA(HA/MUT2 DN
A) HA/MUT3 ヒトL−アスパラギナ
ーゼ相同体をコードするDNA(HA/MUT3 DN
A) HA/MUT5 ヒトL−アスパラギナ
ーゼ相同体をコードするDNA(HA/MUT5 DN
A) Ptac tacプロモーター rrnBT1T2 リボゾームRNAオペ
ロンの転写終領域 5S 5SリボゾームRNA
遺伝子 AmpR アンピシリン耐性遺伝
子 pBR322ori 大腸菌における複製開
始点 Ig sec イムノグロブリンの分
泌シグナル配列を含むペプチド部分をコードするDNA
(Ig sec DNA) Emsv モロニー・マウス肉腫
ウイルスのロング・ターミナル・リピート由来のエンハ
ンサー Pmti マウス・メタロチオネ
インI遺伝子由来のプロモーター Poly(A) SV40由来のポリ
(A)付加シグナル BPVI ウシパピローマ・ウイ
ルスのゲノム
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C07H 21/04 C07K 14/47 C07K 14/47 C12N 1/21 C12N 1/21 9/82 5/10 A61K 9/08 F 9/82 35/12 // A61K 9/08 48/00 ADY 35/12 37/54 ADU 48/00 ADY C12N 5/00 B (C12N 1/21 C12R 1:19) (C12N 9/82 C12R 1:19)

Claims (31)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳
    類由来のポリペプチド。
  2. 【請求項2】 哺乳類由来の遺伝子を発現させて得るこ
    とのできる請求項1に記載のポリペプチド。
  3. 【請求項3】 配列表における配列番号1、2及び3
    (ただし、符号「Xaa」を付して示したアミノ酸はグ
    ルタミン又はアルギニンを表すものとする。)に示すア
    ミノ酸配列を含んでなる請求項1又は2に記載のポリペ
    プチド。
  4. 【請求項4】 配列表における配列番号4に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  5. 【請求項5】 配列表における配列番号5に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  6. 【請求項6】 配列表における配列番号6に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  7. 【請求項7】 配列表における配列番号7に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  8. 【請求項8】 配列表における配列番号8に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  9. 【請求項9】 配列表における配列番号9に示すアミノ
    酸配列又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    含んでなる請求項1、2又は3に記載のポリペプチド。
  10. 【請求項10】 モルモット又はヒトに由来する請求項
    1、2、3、4、5、6、7、8又は9に記載のポリペ
    プチド。
  11. 【請求項11】 多量体の形態で存在する請求項1、
    2、3、4、5、6、7、8、9又は10に記載のポリ
    ペプチド。
  12. 【請求項12】 請求項1乃至10に記載のポリペプチ
    ドをコードするDNA。
  13. 【請求項13】 配列表における配列番号10に示す塩
    基配列又はその塩基配列に相同的若しくは相補的な塩基
    配列を含んでなる請求項12に記載のDNA。
  14. 【請求項14】 配列表における配列番号11に示す塩
    基配列又はその塩基配列に相同的若しくは相補的な塩基
    配列を含んでなる請求項12に記載のDNA。
  15. 【請求項15】 配列表における配列番号12に示す塩
    基配列又はその塩基配列に相同的若しくは相補的な塩基
    配列を含んでなる請求項12に記載のDNA。
  16. 【請求項16】 配列表における配列番号13に示す塩
    基配列又はその塩基配列に相同的若しくは相補的な塩基
    配列を含んでなる請求項12に記載のDNA。
  17. 【請求項17】 配列表における配列番号14に示す塩
    基配列又はその塩基配列に相同的若しくは相補的な塩基
    配列を含んでなる請求項12に記載のDNA。
  18. 【請求項18】 モルモット又はヒトに由来する請求項
    12、13、14、15、16又は17に記載のDN
    A。
  19. 【請求項19】 自律複製可能なベクターをさらに含ん
    でなる請求項12、13、14、15、16、17又は
    18に記載のDNA。
  20. 【請求項20】 自律複製可能なベクターがプラスミド
    ベクターである請求項19に記載のDNA。
  21. 【請求項21】 自律複製可能なベクターがメタロチオ
    ネインプロモーター及び/又はタックプロモーターを含
    んでなる請求項19又は20に記載のDNA。
  22. 【請求項22】 請求項1乃至10に記載のポリペプチ
    ドをコードするDNAを宿主に導入してなる形質転換
    体。
  23. 【請求項23】 宿主が原核細胞又は真核細胞である請
    求項22に記載の形質転換体。
  24. 【請求項24】 宿主が大腸菌である請求項22又は2
    3に記載の形質転換体。
  25. 【請求項25】 宿主がマウス乳癌由来の細胞である請
    求項22又は23に記載の形質転換体。
  26. 【請求項26】 請求項1乃至10に記載のポリペプチ
    ドをコードするDNAを宿主に導入してなる形質転換体
    を培養し、産生したポリペプチドを培養物から採取して
    なるポリペプチドの製造方法。
  27. 【請求項27】 産生したポリペプチドを塩析、透析、
    濾過、濃縮、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換
    クロマトグラフィー、親和性クロマトグラフィー、疎水
    クロマトグラフィー、等電点電気泳動及び/又はゲル電
    気泳動により採取する請求項26に記載のポリペプチド
    の製造方法。
  28. 【請求項28】 請求項1乃至10に記載のポリペプチ
    ドを有効成分として含んでなる感受性疾患剤。
  29. 【請求項29】 悪性腫瘍治療剤としての請求項28に
    記載の感受性疾患剤。
  30. 【請求項30】 白血病又はリンパ腫治療剤としての請
    求項28又は29に記載の感受性疾患剤。
  31. 【請求項31】 安定剤として血清アルブミン、グリセ
    リン、ゼラチン、トレハロース及び/又はマルトースを
    含んでなる請求項28、29又は30に記載の感受性疾
    患剤。
JP16062597A 1996-06-07 1997-06-04 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド Expired - Fee Related JP3819540B2 (ja)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP16062597A JP3819540B2 (ja) 1996-06-07 1997-06-04 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP8-168172 1996-06-07
JP16817296 1996-06-07
JP16062597A JP3819540B2 (ja) 1996-06-07 1997-06-04 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH1057080A true JPH1057080A (ja) 1998-03-03
JP3819540B2 JP3819540B2 (ja) 2006-09-13

Family

ID=26487069

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP16062597A Expired - Fee Related JP3819540B2 (ja) 1996-06-07 1997-06-04 L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3819540B2 (ja)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010524447A (ja) * 2007-04-20 2010-07-22 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. アスパラギナーゼ酵素変異体およびその使用
JP2010524448A (ja) * 2007-04-20 2010-07-22 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. 新規のアスパラギナーゼおよびその使用
JP2013539358A (ja) * 2010-07-14 2013-10-24 ネステク ソシエテ アノニム 担子菌類由来のアスパラギナーゼ
WO2019032952A1 (en) * 2017-08-11 2019-02-14 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois TRUNCATED VARIANTS OF INDIA PIG ASPARAGINASE AND METHODS OF USE

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010524447A (ja) * 2007-04-20 2010-07-22 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. アスパラギナーゼ酵素変異体およびその使用
JP2010524448A (ja) * 2007-04-20 2010-07-22 ディーエスエム アイピー アセッツ ビー.ブイ. 新規のアスパラギナーゼおよびその使用
JP2013539358A (ja) * 2010-07-14 2013-10-24 ネステク ソシエテ アノニム 担子菌類由来のアスパラギナーゼ
US9410138B2 (en) 2010-07-14 2016-08-09 Nestec S.A. Asparaginase from basidiomycetes
WO2019032952A1 (en) * 2017-08-11 2019-02-14 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois TRUNCATED VARIANTS OF INDIA PIG ASPARAGINASE AND METHODS OF USE
CN111050784A (zh) * 2017-08-11 2020-04-21 伊利诺伊大学理事会 截短的豚鼠l-天冬酰胺酶变体及其使用方法
JP2020530300A (ja) * 2017-08-11 2020-10-22 ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ ユニヴァーシティ オブ イリノイThe Board Of Trustees Of The University Of Illinois 切断されたモルモットl−アスパラギナーゼバリアントおよび使用の方法
US11578315B2 (en) 2017-08-11 2023-02-14 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Truncated guinea pig L-asparaginase variants and methods of use
CN111050784B (zh) * 2017-08-11 2024-03-19 伊利诺伊大学理事会 截短的豚鼠l-天冬酰胺酶变体及其使用方法

Also Published As

Publication number Publication date
JP3819540B2 (ja) 2006-09-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7855269B2 (en) Method for treating inflammation
EP0308378B1 (en) Tumor necrosis factor (TNF)inhibitory protein and its purification
JPS6140221A (ja) 腫瘍壊死因子
JPH01501283A (ja) 新規な型のコロニー刺激因子―1
KR20020007365A (ko) 생물학적 활성분자의 제조
JPH10262686A (ja) ポリペプチド
JPH05503512A (ja) 白血球接着阻害因子としての[ala il―8]↓7↓7
JPS62174026A (ja) 白血球減少症治療剤
US6368845B1 (en) Polypeptides having L-asparaginase activity
JPH10500850A (ja) インターロイキン−6 スプライス変異体
JPH1057080A (ja) L−アスパラギナーゼ活性を有する哺乳類由来のポリペプチド
WO1990002183A1 (en) Production of a novel lymphokine exhibiting differentiation inhibitory activity
EP1111059B1 (en) A novel human lysozyme gene, its encoding polypeptide and the method preparing for them
US6664383B1 (en) Polypeptides, cDNA encoding the same and utilization thereof
EP1111054B1 (en) A new gene of human lysoenzyme, the encoding polypeptide and methods for preparing them
US6479632B1 (en) Tumor necrosis factor inhibitory protein and its purification
CN108727484A (zh) 人血清淀粉样蛋白a1功能性短肽及其制备方法和应用
KR19980701695A (ko) 미오신 중쇄 sm1 이소폼 단백질을 암호화하는 dna를 벡터 dna에 삽입시킨 재조합 dna, 전기 재조합 dna가 도입된 미생물 및 재조합 dna를 포함하는 동맥경화증 치료제
WO1999057147A1 (fr) Mutants de la thrombopoietine humaine
WO1995023861A1 (fr) MEGACARYOPOIETINE HUMAINE ET ISOLEMENT DE CELLE-CI, CLONAGE D'ADNc, ET PREPARATION DE LA PROTEINE RECOMBINEE
US5213977A (en) Serine protease from cytotoxic killer cells
JPH1014581A (ja) ウサギ型マクロファージ・コロニー刺激因子及びこれをコードするdna断片
JPH11240898A (ja) ポリペプチド
JPH08198899A (ja) 新規なポリペプチド、その製造方法、そのポリペプチドをコードするdna、そのdnaからなるベクター、そのベクターで形質転換された宿主細胞、そのポリペプチドの抗体、およびそのペプチドまたは抗体を含有する薬学的組成物
JP2007135606A (ja) 免疫担当細胞においてインターフェロン−γの産生を誘導するポリペプチドをコードする染色体DNA

Legal Events

Date Code Title Description
A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20060221

A521 Written amendment

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20060424

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20060606

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20060615

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090623

Year of fee payment: 3

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20100623

Year of fee payment: 4

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20110623

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (event date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120623

Year of fee payment: 6

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees