JPH09506858A

JPH09506858A - ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体

Info

Publication number: JPH09506858A
Application number: JP7509021A
Authority: JP
Inventors: モルコ，ディディエ; カデット，ジャン; シマズ，イサベル
Original assignee: コミッサリアタレネルジーアトミーク; センタナショナルデチュードスパティアレ
Priority date: 1993-09-13
Filing date: 1994-09-12
Publication date: 1997-07-08
Anticipated expiration: 2021-12-06
Also published as: FR2710068A1; EP0719265B1; FR2710068B1; EP0719265A1; DE69415030D1; JP3854632B2; US5721341A; WO1995007907A1; DE69415030T2

Abstract

(57)【要約】本発明は、ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体に関する。該ヌクレオシド誘導体は、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ²は、ヒドロキシル基、アルキル基、アリール基、フリーアミノ部位を取り込む蛋白質、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされる。

Description

【発明の詳細な説明】ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体本発明は、ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体に関する。巨大分子ＤＮＡ（デオキシリボ核酸）は、クロモソームの構成成分であり、該分子の異なったセグメントは、遺伝特性のサポートである遺伝子を形成する。ＤＮＡは、糖（デオキシリボース）とホスファートにより互い違いに形成された二重螺旋の形状であり、２つの鎖の螺旋は、プリンまたはピリミジンタイプの窒素核塩基の基により局部的につながっている。ＤＮＡをなすヌクレオチドは、ヌクレオシドのりん酸エステルである。個々（動物または植物）のＤＮＡの核塩基は、該個々が強度の太陽光線、宇宙線、光感作剤にさらされたり、たとえ偶然にまたは放射線治療のためであっても、電離放射線またはアスベストと接触した場合、修飾したりダメージを受ける可能性がある。ＤＮＡの核塩基の修飾は、問題の個々の遺伝要因に重要な変化をもたらす可能性がある。このような修飾がなされたか否かを検知し、起こった修飾の性質を定めることが最も重要である。したがって、ＤＮＡ修飾を受けた患者に使用可能な検定法を開発することが注目されている。サンプルにおける修飾ＤＮＡの存在を定めることの可能な種々の検定法のなかで、単離または加水分解されたＤＮＡを含有するサンプルと、特別なＤＮＡ修飾の特異的抗体を反応させることからなる免疫検定法がある。該抗体は一般的には、クローニングから製造される。ポリクローナルまたはモノクローナル抗体の製造には、まず、特異的抗原、すなわち、核塩基が検知したい修飾をうけ、大きい分子、たとえば蛋白質に結合したヌクレオチドまたはヌクレオシドを製造することが必要である。ヌクレオシドまたはヌクレオチドは単独では非常に小さすぎて免疫システムで見ることができない。ポリクローナル抗体が次いで、ヘプタンと結合した、問題の哺乳類と異質の蛋白質を含有する、前記抗原の注入を受けた哺乳類によって製造される。従来技術には、核酸の免疫検定法が開示されており、文献：Ｃhristopher Ｐ．ＷＩＬＤ：”Ａntibodies to ＤＮＡ alkylation adducts as analyt ical tools in chmical carcinogenesis”，Ｍut．Ｒes．，１９９０，２３３，pp２１９−２３３は、核塩基がアルキル化によって修飾された、ヌクレオチドの特異的抗体を開示している。特にアルキル化剤によるヒトガンおよび化学的発ガンの疫学的研究に使用される免疫検定法における抗体の機能を主張するものである。文献：ＢＤ．Ｓtollar：”Ｉmmunochemical analyses of nucleic acid s”，Ｐrogress in Ｎucleic Ａcid，Ｒesearch and Ｍolecular Ｂiolog y，１９９２，４２，pp３９−７５はまた、核酸の特異的抗体に関するものである。ＤＮＡのある酸化的欠落はまた、種々の公開文献に取り上げられている。文献：Ｇ．Ｊ．Ｗest et al：”Ｒadioimmunoassay of ８−hydroxyade nine”Ｉnt．Ｊ．Ｒad．Ｂiol．，１９８２，４２，pp４８１−４９０は、８− ヒドロキシアデニンの放射線免疫検定法を開示している。ＤＮＡ修飾は、光線照射によって起こる可能性がある。文献：Ｐ．Ｄegan et al：”Ｑuantitation of ８−hydroxy−２’−de oxyguanosine in ＤＮＡ by polyalonalantibodies”，Ｃarcinogenesis，１９９１，１２，pp８６５−８７１は、８−ヒドロキシ−２’−デオキシグアノシンおよび８−ヒドログアニンの特異的ポリクローナル抗体を開示している。該ポリクローナル抗体は、たとえば尿サンプルにおける修飾グアノシンの前記２つのタイプを早急に単離するために、免疫検定法において使用可能である。文献：Ｈ．Ｌ．Ｌewi et al：”Ｓerologic assay of ＤＮＡ base damege”，Ｒad．Ｒes．１９７８，７５，pp３０５−３１６は、チミジンのイオン化照射後に得られる５−ヒドロキシメチルデオキシウリジンの検定法およびポリクローナル抗体の調製を開示している。最後に、文献：Ｓ．Ａ．Ｌeadon and Ｐ．Ｃ．Ｈanawalt，”Ｍonoclonal antibody to ＤＮＡ containing thymine glycol”，Ｍut．Ｒes．，１９８３，１１２，pp１９１−２００は、ＤＮＡをイオン化またはＵＶ近辺の光線に照射した後に得られる５，６−ジヒドロキシ−５，６−ジヒドロチミン（チミングリコール）のモノクローナル抗体を開示している。これらのモノクローナル抗体は、ＢＡＬＢ−c株からのひ臓細胞を用いて、Ｏ_SＯ₄により酸化され、次いでメチル化ボビン血清アルブミンと複合化したポリ（ｄ−チミン）で免疫したマウスのミエローマ細胞を融合させることにより得られた。テストは、エリーザ法によって行われた。文献：Ｂ．Ｆ．Ｅrlanger and Ｓ．Ｍ．Ｂeiser：”Ａntibodies specif ic for ribonucleosides and ribonucleotides and their reaction wi th ＤＮＡ”，Ｐroc．Ｎ．Ａ．Ｓ．，ＵＳＡ，１９６４，５２，pp６８−７４は、ウサギ免疫プロトコールにおいて使用可能な抗原形成することのできるキャリア蛋白質を用いた核酸のカップリングプロトコールを開示している。該カップリングプロトコールを以下に示す。Ｒは、プリンまたはピリミジン塩基を示し、Ｒ’は、Ｈまたは−ＰＯ−（ＯＨ）₂を示し、Ｒ”は、蛋白質残基を示す。該方法は、過ヨウ素酸ナトリウムの作用によってリボヌクレオシドの単糖に作用することからなる。単糖サイクルは、炭素２’および３’の間でオープンであり、ジアルデヒドが形成される。該ジアルデヒドは次いで、９〜９．５に近い pＨで、蛋白質に結合する。ＮaＢＨ₄は、中間体としてえられたシッフベースを還元するのに使用される。しかしながら、該文献に開示された方法は、修飾していない核塩基に限定される。酸化／還元に感受性のある不安定な塩基を用いると、ヌクレオシドの該塩基を修飾し、次いで変異されたヌクレオシドを、過ヨウ素酸ナトリウムで酸化し、次いでホウ化水素ナトリウムを用いて還元することは不可能である。このような化学処理の後は、修飾ＤＮＡの研究はおこなえないことになる。さらに、該方法に記載された１連の反応は、中間体を単離することなく行われる。したがって、ある種の寄生的な生成物が、反応工程中に生成され、最終結合蛋白質に存在する傾向にある。各寄生的な生成物は、本来の免疫反応を誘発する可能性がある。これは、ターゲットの分子が、５−ヒドロキシメチルウラシルであり、得られた抗血清がＤＮＡの天然塩基であるチミンと認識された、前記文献：Ｈ．Ｌ．Ｌewis et alの場合である。文献：Ｔ．Ｏkabayashi et al：”Ａ radioimmunoassay for １−β− Ｄ−Ａrabinofuranosylcytosine”，Ｃancer Ｒes．，１９７７，１７，pp６１９−６２４は、塩基が修飾されたデオキシヌクレオシドとコハク酸の誘導体を反応させ、次いで蛋白質のフリーアミンを有するアミド官能基を製造することからなる方法を開示しており、該方法を以下に示す。Ｒは、プリンまたはピリミジン塩基であり、Ｒ’は、蛋白質残基である。該方法の主な欠点は、蛋白質とヌクレオシドを結合するために使用されるエステル基の安定性に欠けることにある。文献：Ｍ．Ｄ．Ｆriesen et al：”Ｉsolation of urinary ３−methy ladenine”，Ｃhem．Ｒes．Ｔoxicol．，１９９１，４，pp１０２−１０６は、広範囲に使用されるアルキル化核塩基の蛋白質への結合方法の１つを開示しており、該方法を以下に示す。Ｒは、蛋白質であり、ＥＤＣは、１−［（３−ジメチルアミノ）プロピル］ −３−エチル＝ジカルボジイミド塩酸塩である。該方法は、前記２つの方法とは、原料が、修飾形式のリボ−またはデオキシリボヌクレオシドではなく、塩基のアルキル化誘導体である点で、異なっている。使用されたハプテンは、蛋白質との結合直前に精製されるため、優れた質の抗体を形成可能である。しかしながら、該方法は、前記２つの方法よりも行うことがさらに困難である。本発明の目的は、前記欠点のない抗原の製造方法および抗原を開発することである。本発明は、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ²は、ヒドロキシル基、アルキル基、アリール基、アミノ部位を有する蛋白質、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体に関する。 ”ヌクレオシド誘導体”とは、ヌクレオシドから形成されたもので、該誘導体の中には、単糖がなく、モルホリンに置き換わったものがある。Ｒ²が、蛋白質である場合には、得られた抗原は、抗体生成用ベースとして機能可能である。Ｒ²が、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカである場合、たとえば得られた生成物は、ハプテンに結合した固体サポートである。このようなサポートは、エリーザタイプの検定方法に使用可能である。本発明はまた、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキル基、またはアリール基を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、以下の化学式：（式中、Ｒ¹およびＲ⁶は、前記と同様の意味を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と置換基を反応させることからなる、式（II ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法に関する。従来技術の方法とは異なり、本発明による方法は、修飾ヌクレオシドと蛋白質との間の不安定なエステル結合を含有しないものである。したがって、得られた結合は、より安定であり、長期間劣化することなく、溶液中に保存可能である。原料（III）は、デオキシリボースサイクルのかわりにモルホリンを有する。該生成物は、安定であり、該方法において使用する前に注意深く精製される。これによって、生成されたハプテン中において、寄生生成物または混入生成物は除去されるものである。原料（III）は既に、核塩基が本発明の方法において修飾される前に、単糖サイクルをモルホリンサイクルに変換することが行われている。これによって、モルホリンサイクルの合成が核塩基の修飾後に起こると、より困難になる、核塩基が酸化または還元された抗原の調製を行うことが可能となる。本発明はまた、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁵は、蛋白質、アルキルポリスチレン、またはアルキル鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、該方法は、ＮＨ₂−Ｒ⁵ タイプの化合物（式中、Ｒ⁵は、上記と同様の意味をしめす）を、以下の化学式：（式中、Ｒ¹およびＲ³は、前記と同様の意味を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と反応させることからなる、式（Ｖ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法に関する。ＮＨ₂−Ｒ⁵が蛋白質である場合、得られた生成物（Ｖ）は抗原である。ＮＨ₂ −Ｒ⁵がアミノアルキルポリスチレンまたはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカである場合、得られた生成物（Ｖ）は固体サポートである。エリーザ検定方法において、試験管の壁またはプレートのウエルが、グラフト化シリカで被覆されることが可能であり、これによって、ハプテンのサポートへの共有結合が可能となる。さらに、”Ｐharmacia”は、生物学的分子（”ＢiaＣore”の商標名としてしられているもの）間の相互作用を動的に研究するための装置を市販している。原理は、１分子を固体サポートに固定し、他の分子を含む溶液を循環させることからなる。本発明により得られた該固体サポートは、このような装置において使用可能である。さらに本発明はまた、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換核塩基を示し、Ｒ⁵は、哺乳類由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原を用いた適当な哺乳類の免疫化によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）ポリクローナル抗体に関する。本発明は、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換核塩基を示し、Ｒ⁵は、マウス由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原によって免疫化されたマウスのひ臓細胞を用いた哺乳類のミエローマ細胞の融合によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）モノクローナル抗体に関する。本発明を、以下の実施例を参照してより詳細に説明するが、本発明は、これら実施例に限定されるものではない。本発明によるヌクレオシド誘導体の調製方法の第１工程は、蛋白質に属するアミノ基に結合させるために、モルホリンの形成によって既に修飾したヌクレオチドまたはヌクレオシドを用いることからなる。原料（III）（以後、モルホリノヌクレオシドと称する）は、以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキル基、またはアリール基を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された核塩基を示す）で表わされる。原料（III）は、たとえば、文献：Ｒ．Ｒayford et al，”Ｒeductive a lkylation with oxydized nucleotides”Ｊ．Ｂiol．Ｃhem．，１９８５，２６０，pp１５７０８−１５７１３に記載された方法により得られ、以下に該方法を示す。Ｒ⁴は、上記と同様の意味を示す。該方法は、２’および３’炭素の間の結合を開裂するために、過ヨウ素酸ナトリウムをヌクレオシドと反応させることからなる。これによって、ジアルデヒドが得られ、これが、ダブルシッフベースを形成するために、グリシンと反応する。該ダブルベースは、ＮaＣＮＢＨ₃によって、モルホリノヌクレオシドを得るために、還元される。上記文献において使用されたヌクレオシドは、アデノシンであった。しかしながら、同様の方法で、この処理は、他のプリンまたはピリミジン塩基で行うことも可能である。同様にして、該ヌクレオシドは、リン酸が５位にあるヌクレオシドクレオチドに変換される。Ｒ⁶がアルキルまたはアリール基である場合、生成物（III）は、エステルである。これは、グリシンをグリシナート、たとえばt−ブチルまたはエチル＝グリシナートに置換することによって、上記方法から得ることができる。さらに、該誘導体は、アミン官能基に縮合するための活性エステルに変換可能である。本発明による方法の原料（III）は、他の方法によっても得ることが可能である。プリンまたはピリミジン塩基に置換基を導入可能な置換基は、一般的には、該塩基の酸化修飾を導く薬剤であり、物理的または化学的薬剤である。化学薬剤は、たとえば、オゾン、過酸化水素、コリジン結合のブロミン、ブロミンおよび酸化銀、過マンガン酸カリウム、４酸化オスミウム、メタナールまたはＡlＬiＨ₄ から選択される。同様の結果が、酸素の存在下または非存在下、イオン化光線の作用によって、光化学的に（紫外線および次いで光感受性剤）、接触水素化によって、または、ブロミンおよび水、これに次ぐ水素化分解によって、得ることが可能である。置換基および異なったプリンまたはピリミジン塩基において得られた置換化合物を、表１に示す。本発明による方法の最後に、以下の式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキル基、またはアリール基を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示し、好ましくは、表１の修飾または置換塩基の１つを示す）で表わされるヘプタンが得られる。生成物（II）は、生成物（Ｉ）の可能な変換体である。以後、該ヘプタンの１つの調製例を記載する。実施例１：２−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−（ヒドロキシメチル）−モルホリン１００mgの１−（シトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチル＝モルホリンを、５mlの水に溶解する。次いで、黄色くなるまでブロミンを滴下する。常温で１５分間撹拌したのち、過剰のブロミンを、空気を該溶液にふきこむことによって除去する。次いで、２００μlのコリジンを加え、常温で２時間撹拌する。水を減圧下、除去し、フリーのコリジンを、５mlのエタノールで共沸して除去する。得られた残さを高速液体クロマトグラフィー（Ｎuc leosil１０−Ｃ１８カラム、６Ｘ３００mm、移動相５０mＭトリエチルアンモニウムアセタートおよびメタノール）で分析する。分析結果から、主生成物（６０％）が原料ではないことが判明した。ＮＭＲ分析から、所望の化合物であることが判明した。該生成物は、５７００モル．l^-1cm^-1のモル吸光係数で、２９０．４nmの最大ＵＶ吸収により特徴づけられるものである。本発明の第２の工程は、第１工程で得られたハプテン（VI）を、たとえば抗原または固体相（フィルム、ゲル）を形成するために、処理することからなる。ここで、ハプテン（VI）は、サポートに、共有結合している。該方法を以下に示す。Ｒ¹およびＲ³は、上記と同様の意味を示し、Ｒ⁵は、蛋白質残基、アルキル＝ポリスチレンまたはアルキル鎖でグラフト化したシリカを示す。原料のハプテン（ＶＩ）は、ＮＨ₂−Ｒ⁵と結合する前に、高圧液体クロマトグラフィーによって精製する。基Ｒ⁵は、蛋白質であってもよく、たとえば、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質で、特に、ＫＬＨまたはキーホールリンペット（ keyhole limpet）ヘロシアニン、すなわち、リンペットの蛋白質であってもよい。これは、抗体の製造において使用可能である抗原を与えるものである。ポリクローナル抗体の製造中、蛋白質は、抗体製造用に使用される動物のものとは異なる性質にするように選択される。前記蛋白質は、ウサギを免疫化する場合に適当である。ＮＨ₂−Ｒ⁵基はまた、アミノアルキルポリスチレンまたはアルキルアミノ鎖でグラフト化されたシルカであってもよい。これは、ハプテンがサポートに共有結合したフィルムまたはゲルを提供するものである。該方法の実施方法を以下に示す。実施例２：ハプテン−蛋白質結合体（抗原）の合成３０mg（９０μモル）の１−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４− カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリンを２mlの水に溶解する。水に溶解した該化合物を、３５mg（１８０μモル）のＥ．Ｄ．Ｃ．（Ｎ’−（３− ジメチルアミノプロピル）−Ｎ−エチルカルボジイミド（塩酸塩）と８０mgのボビン血清アルブミンとを含有する溶液、５mlに３時間かけて滴下する。常温で一昼夜撹拌した後、水を減圧下、除去し、残さを２mlの水に溶解して、クロマトグラフィー（メルク社の”Ｆractogel ＴＳＫ−ＨＷ４０カラム”、２０Ｘ４０mm 、移動相０．１５ＭＮaＣl）で分析する。第１溶出生成物を集めて、水で透析し、得られた溶液を凍結乾燥する。生成物のハプテン量を測定する。該測定は、オリジナルの蛋白質のＵＶ吸収を、修飾ヌクレオシドにグラフトした蛋白質のそれと比較することにより行われる。２７０nmと３００nmの吸収比較によって、７．８モルの１−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリンが、蛋白質の１モルあたりにグラフトされていることが確認される。本発明は最後に、Ｒ⁵が蛋白質残基を示す、前記方法によって得られる抗原の特異的抗体に関する。ポリクローナル抗体は、以下に記載するように、ウサギに注射することによる従来法で得られる。しかしながら、得られた抗体は、新規な先に調製された抗原に特異的であるため、新規である。以下、該ポリクローナル抗体の調製の例を挙げる。実施例３：実施例２の抗原に特異的なポリクローナル抗体の調製免疫プロトコールは、以下に記載するような方法で処理された、２Ｋgの株ＮＺ”Ｓ．Ｓ．Ｃ．”の２匹の雌のウサギをベースにした。エマルションが、実施例２で調製されたハプテン−蛋白質結合体、１mg／リットルを完全フロイントアジュバント、１mlと混合することによって調製された。各雌のウサギは、首と背中に、前記エマルション、１００μlを注射された。最初の注射から４週間後、ウサギは、同一条件下で第１ブースターを受けた。さらに４週間後、さらなるブースターを受けた。後者は、１mlのと完全フロイントアジュバントと、１mg／mlのハプテン−蛋白質結合体から形成されたエマルション、０．５mlを、臀部に筋肉内注射することにより行われた。２週間後、２〜５mlの血液がウサギの耳から採取された。収集された血清によって、第１テストをすることができた。最後に、第２ブースターから４週間後、第３ブースターが、第２ブースターと同様の原理を用いて筋肉内注射することにより行われた。２週間後、ウサギは殺され、その血液のほとんどを収集された。血清は、前記抗原の特異的抗体を含有するものである。モノクローナル抗体が、マウスなどの哺乳類のミエローマ細胞をたとえばＢＡＬＢ／cマウス株からのひ臓細胞と融合させることによって、従来の方法で得られる。該マウスは、キャリア蛋白質（Ｒ⁵が蛋白質）に結合した修飾モルホリノヌクレオシドからなる抗原（Ｖ）で免疫化されたものである。該抗体は、本発明による方法によって得られた新規な抗原に特異的である。以後、該モノクローナル抗体の調製例を示す。実施例４：実施例２（１−（５−ヒドロキシキシトシン−１−イル）−４− カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリン）の抗原に特異的なモノクローナル抗体の調製免疫化：実施例２の抗原の懸濁液を、完全フロイントアジュバントと同一容量で乳化した。該エマルションを、６〜８週令の、株ＢＡＬＢ／cの雌のマウスに、０．１mlの投与量で、腹腔内ブースター注射した。該ブースターの２週間後、最後の免疫化が、マウスの尾の静脈に注射することにより行われた。なお、該注射は、０．１５ＭＮaclに溶解された抗原を組み入れたものである。細胞融合およびクローン化最終ブースター注射の３日後、ひ臓がマウスから除去され、粉砕された。ひ臓細胞は、血清を含有しない修飾Ｄulbecco媒体（ＤＭＥＭ）中で洗浄された。１０８ひ臓細胞が、１０７ミエローマ細胞と混合され、次いで常温で７分間５００xgで遠心分離された。次いで、媒体を除去して、遠心分離したものを回収し、これに５０％ＰＥＧ４０００（メルク社）を０．８ml、３７℃で静かに撹拌しながら１分間かけて添加した。次いで、修飾Ｄulbecco媒体を１分間に１mlの割合で添加し、次いで５分間２０mlを添加した。該細胞を１０分間２００xgで遠心分離し、次いで、遠心分離されたものを１５mlのＤＭＥＭおよび１０％ＦＢＳ（胎児ボビン血清）中に再懸濁した。この０．０５mlずつを、マクロフアージで被覆された培養ウエルが設けられたプレートに分配した。該プレートを、ＤＭＥＭ（ＨＡＴ媒体）中における、ハイポキサンチン（１．１０^-4Ｍ）、アメソプテリン（４．１０^-7Ｍ）およびチミシン（１．６１０^-5Ｍ）に添加する前に、３７℃ で２４時間培養した。融合してから７時間後、各ウエルに０．０２５mlのＨＡＴ媒体が添加され、次いで媒体は３〜４日毎に補充された。該コロニーは、実施例２の抗原に対する各活性エリーザテストによってテストされた。該テストでポジティブな結果の細胞のみがクローン化されたものである。

【手続補正書】特許法第１８４条の８【提出日】１９９５年１０月４日【補正内容】ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体本発明は、ヌクレオシド誘導体、該ヌクレオシド誘導体の製造方法、および該誘導体の特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体に関する。巨大分子ＤＮＡ（デオキシリボ核酸）は、クロモソームの構成成分であり、該分子の異なったセグメントは、遺伝特性のサポートである遺伝子を形成する。ＤＮＡは、糖（デオキシリボース）とホスフアートにより互い違いに形成された二重螺旋の形状であり、２つの鎖の螺旋は、プリンまたはピリミジンタイプの窒素核塩基の基により局部的につながっている。ＤＮＡをなすヌクレオチドは、ヌクレオシドのりん酸エステルである。個々（動物または植物）のＤＮＡの核塩基は、該個々が強度の太陽光線、宇宙線、光感作剤にさらされたり、たとえ偶然にまたは放射線治療のためであっても、電離放射線またはアスベストと接触した場合、修飾したりダメージを受ける可能性がある。ＤＮＡの核塩基の修飾は、問題の個々の遺伝要因に重要な変化をもたらす可能性がある。このような修飾がなされたか否かを検知し、起こった修飾の性質を定めることが最も重要である。したがって、ＤＮＡ修飾を受けた患者に使用可能な検定法を開発することが注目されている。サンプルにおける修飾ＤＮＡの存在を定めることの可能な種々の検定法のなかで、単離または加水分解されたＤＮＡを含有するサンプルと、特別なＤＮＡ修飾の特異的抗体を反応させることからなる免疫検定法がある。該抗体は一般的には、クローニングから製造される。ポリクローナルまたはモノクローナル抗体の製造には、まず、特異的抗原、すなわち、核塩基が検知したい修飾をうけ、大きい分子、たとえば蛋白質に結合したヌクレオチドまたはヌクレオシドを製造することが必要である。ヌクレオシドまたはヌクレオチドは単独では非常に小さすぎて免疫システムで見ることができない。ポリクローナル抗体が次いで、ヘプタンと結合した、問題の哺乳類と異質の蛋白質を含有する、前記抗原の注入を受けた哺乳類によって製造される。従来技術には、核酸の免疫検定法が開示されており、文献：Ｃhristopher Ｐ．ＷＩＬＤ：”Ａntibodies to ＤＮＡ alkylation adducts as analyt ical tools in chemical carcinogenesis”，Ｍut．Ｒes．，１９９０，２３３，pp２１９−２３３は、核塩基がアルキル化によって修飾された、ヌクレオチドの特異的抗体を開示している。特にアルキル化剤によるヒトガンおよび化学的発ガンの疫学的研究に使用される免疫検定法における抗体の機能を主張するものである。文献：ＢＤ．Ｓtollar：”Ｉmmunochemical analyses of nucleic acid s”，Ｐrogress in Ｎucleic Ａcid，Ｒesearch and Ｍolecular Ｂiolog y，１９９２，４２，pp３９−７５はまた、核酸の特異的抗体に関するものである。ＤＮＡのある酸化的欠落はまた、種々の公開文献に取り上げられている。文献：Ｇ．Ｊ．Ｗest et al：”Ｒadioimmunoassay of ８−hydroxyade nine”Ｉnt．Ｊ．Ｒad．Ｂiol．，１９８２，４２，pp４８１−４９０は、８− ヒドロキシアデニンの放射線免疫検定法を開示している。ＤＮＡ修飾は、光線照射によって起こる可能性がある。文献：Ｐ．Ｄegan et al：”Ｑuantitation of ８−hydroxy−２’−de oxyguanosine in ＤＮＡ by polyalonalantibodies”，Ｃarcinogenesis，１９９１，１２，pp８６５−８７１は、８−ヒドロキシ−２’−デオキシグアノシンおよび８−ヒドログアニンの特異的ポリクローナル抗体を開示している。該ポリクローナル抗体は、たとえば尿サンプルにおける修飾グアノシンの前記２つのタイプを早急に単離するために、免疫検定法において使用可能である。文献：Ｈ．Ｌ．Ｌewis et al：”Serologic assay of ＤＮＡ base damege”，Ｒad．Ｒes．１９７８，７５，pp３０５−３１６は、チミジンのイオン化照射後に得られる５−ヒドロキシメチルデオキシウリジンの検定法およびポリクローナル抗体の調製を開示している。最後に、文献：Ｓ．Ａ．Ｌeadon and Ｐ．Ｃ．Ｈanawalt，”Ｍonoclonal antibody to ＤＮＡ containing thymine glycol”，Ｍut．Ｒes．，１９８３，１１２，pp１９１−２００は、ＤＮＡをイオン化またはＵＶ近辺の光線に照射した後に得られる５，６−ジヒドロキシ−５，６−ジヒドロチミン（チミングリコール）のモノクローナル抗体を開示している。これらのモノクローナル抗体は、ＢＡＬＢ−c株からのひ臓細胞を用いて、Ｏ_SＯ₄により酸化され、次いでメチル化ボビン血清アルブミンと複合化したポリ（ｄ−チミン）で免疫したマウスのミエローマ細胞を融合させることにより得られた。テストは、エリーザ法によって行われた。文献：Ｂ．Ｆ．Ｅrlanger and Ｓ．Ｍ．Ｂeiser：”Ａntibodies specif ic for riboncleosides and ribonucleotides and their reaction wit h ＤＮＡ”，Ｐroc．Ｎ．Ａ．Ｓ．，ＵＳＡ，１９６４，５２，pp６８−７４は、ウサギ免疫プロトコールにおいて使用可能な抗原形成することのできるキャリア蛋白質を用いた核酸のカップリングプロトコールを開示している。該カップリングプロトコールを以下に示す。Ｒは、プリンまたはピリミジン塩基を示し、Ｒ’は、Ｈまたは−ＰＯ−（ＯＨ）₂を示し、Ｒ”は、蛋白質残基を示す。該方法は、過ヨウ素酸ナトリウムの作用によってリボヌクレオシドの単糖に作用することからなる。単糖サイクルは、炭素２’および３’の間でオープンであり、ジアルデヒドが形成される。該ジアルデヒドは次いで、９〜９．５に近い pＨで、蛋白質に結合する。ＮaＢＨ₄は、中間体としてえられたシッフベースを還元するのに使用される。しかしながら、該文献に開示された方法は、修飾していない核塩基に限定される。酸化／還元に感受性のある不安定な塩基を用いると、ヌクレオシドの該塩基を修飾し、次いで変異されたヌクレオシドを、過ヨウ素酸ナトリウムで酸化し、次いでホウ化水素ナトリウムを用いて還元することは不可能である。このような化学処理の後は、修飾ＤＮＡの研究はおこなえないことになる。さらに、該方法に記載された１連の反応は、中間体を単離することなく行われる。したがって、ある種の寄生的な生成物が、反応工程中に生成され、最終結合蛋白質に存在する傾向にある。各寄生的な生成物は、本来の免疫反応を誘発する可能性がある。これは、ターゲットの分子が、５−ヒドロキシメチルウラシルであり、得られた抗血清がＤＮＡの天然塩基であるチミンと認識された、前記文献：Ｈ．Ｌ．Ｌewis et alの場合である。文献：Ｔ．Ｏkabayashi et al：”Ａ radioimmunoassay for １−β− Ｄ−Ａrabinofuranosylcytosine”，Ｃancer Ｒes．，１９７７，１７，pp６１９−６２４は、塩基が修飾されたデオキシヌクレオシドとコハク酸の誘導体を反応させ、次いで蛋白質のフリーアミンを有するアミド官能基を製造することからなる方法を開示しており、該方法を以下に示す。Ｒは、プリンまたはピリミジン塩基であり、Ｒ’は、蛋白質残基である。該方法の主な欠点は、蛋白質とヌクレオシドを結合するために使用されるエステル基の安定性に欠けることにある。文献：Ｍ．Ｄ．Ｆriesen et al：”Ｉsolation of urinary ３−methy ladenine”，Ｃhem．Ｒes．Ｔoxicol．，１９９１，４，pp１０２−１０６は、広範囲に使用されるアルキル化核塩基の蛋白質への結合方法の１つを開示しており、該方法を以下に示す。Ｒは、蛋白質であり、ＥＤＣは、１−［（３−ジメチルアミノ）プロピル］ −３−エチル＝ジカルボジイミド塩酸塩である。該方法は、前記２つの方法とは、原料が、修飾形式のリボ−またはデオキシリボヌクレオシドではなく、塩基のアルキル化誘導体である点で、異なっている。使用されたハプテンは、蛋白質との結合直前に精製されるため、優れた質の抗体を形成可能である。しかしながら、該方法は、前記２つの方法よりも行うことがさらに困難である。本発明の目的は、前記欠点のない抗原の製造方法および抗原を開発することである。本発明は、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ²は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、アリールオキシ基、アミノ部位を有する蛋白質、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体に関する。 ”ヌクレオシド誘導体”とは、ヌクレオシドから形成されたもので、該誘導体の中には、単糖がなく、モルホリンに置き換わったものがある。Ｒ²が、蛋白質である場合には、得られた抗原は、抗体生成用ベースとして機能可能である。Ｒ²が、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカである場合、たとえば得られた生成物は、ハプテンに結合した固体サポートである。このようなサポートは、エリーザタイプの検定方法に使用可能である。本発明はまた、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹およびＲ⁶は、前記と同様の意味を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と置換基を反応させることからなる、式（II ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法に関する。従来技術の方法とは異なり、本発明による方法は、修飾ヌクレオシドと蛋白質との間の不安定なエステル結合を含有しないものである。したがって、得られた結合は、より安定であり、長期間劣化することなく、溶液中に保存可能である。原料（III）は、デオキシリボースサイクルのかわりにモルホリンを有する。該生成物は、安定であり、該方法において使用する前に注意深く精製される。これによって、生成されたハプテン中において、寄生生成物または混入生成物は除去されるものである。原料（III）は既に、核塩基が本発明の方法において修飾される前に、単糖サイクルをモルホリンサイクルに変換することが行われている。これによって、モルホリンサイクルの合成が核塩基の修飾後に起こると、より困難になる、核塩基が酸化または還元された抗原の調製を行うことが可能となる。本発明はまた、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁵は、蛋白質、アルキルポリスチレン、またはアルキル鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、該方法は、ＮＨ₂−Ｒ⁵ タイプの化合物（式中、Ｒ⁵は、上記と同様の意味をしめす）を、以下の化学式：（式中、n、Ｒ¹およびＲ³は、前記と同様の意味を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と反応させることからなる、式（Ｖ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法に関する。ＮＨ₂−Ｒ⁵が蛋白質である場合、得られた生成物（Ｖ）は抗原である。ＮＨ₂ −Ｒ⁵がアミノアルキルポリスチレンまたはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカである場合、得られた生成物（Ｖ）は固体サポートである。エリーザ検定方法において、試験管の壁またはプレートのウエルが、グラフト化シリカで被覆されることが可能であり、これによって、ハプテンのサポートへの共有結合が可能となる。さらに、”Ｐharmacia”は、生物学的分子（”ＢiaＣore”の商標名としてしられているもの）間の相互作用を動的に研究するための装置を市販している。原理は、１分子を固体サポートに固定し、他の分子を含む溶液を循環させることからなる。本発明により得られた該固体サポートは、このような装置において使用可能である。さらに本発明はまた、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換核塩基を示し、Ｒ⁵は、哺乳類由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原を用いた適当な哺乳類の免疫化によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）ポリクローナル抗体に関する。本発明は、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示し、Ｒ⁵は、マウス由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原によって免疫化されたマウスのひ臓細胞を用いた哺乳類のミエローマ細胞の融合によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）モノクローナル抗体に関する。本発明を、以下の実施例を参照してより詳細に説明するが、本発明は、これら実施例に限定されるものではない。本発明によるヌクレオシド誘導体の調製方法の第１工程は、蛋白質に属するアミノ基に結合させるために、モルホリンの形成によって既に修飾したヌクレオチドまたはヌクレオシドを用いることからなる。原料（III）（以後、モルホリノヌクレオシドと称する）は、以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された核塩基を示す）で表わされる。原料（III）は、たとえば、文献：Ｒ．Ｒayford et al，”Ｒeductive a lkylation with oxydized nucleotides”Ｊ．Ｂiol．Ｃhem．，１９８５，２６０，pp１５７０８−１５７１３に記載された方法により得られ、以下に該方法を示す。Ｒ⁴は、上記と同様の意味を示す。該方法は、２’および３’炭素の間の結合を開裂するために、過ヨウ素酸ナトリウムをヌクレオシドと反応させることからなる。これによって、ジアルデヒドが得られ、これが、ダブルシッフベースを形成するために、グリシンと反応する。該ダブルベースは、ＮaＣＮＢＨ₃によって、モルホリノヌクレオシドを得るために、還元される。上記文献において使用されたヌクレオシドは、アデノシンであった。しかしながら、同様の方法で、この処理は、他のプリンまたはピリミジン塩基で行うことも可能である。同様にして、該ヌクレオシドは、リン酸が５位にあるヌクレオシドクレオチドに変換される。Ｒ⁶がアルキルまたはアリール基である場合、生成物（III）は、エステルである。これは、グリシンをグリシナート、たとえばt−ブチルまたはエチル＝グリシナートに置換することによって、上記方法から得ることができる。さらに、該誘導体は、アミン官能基に縮合するための活性エステルに変換可能である。本発明による方法の原料（III）は、他の方法によっても得ることが可能である。プリンまたはピリミジン塩基に置換基を導入可能な置換基は、一般的には、該塩基の酸化修飾を導く薬剤であり、物理的または化学的薬剤である。化学薬剤は、たとえば、オゾン、過酸化水素、コリジン結合のブロミン、ブロミンおよび酸化銀、過マンガン酸カリウム、４酸化オスミウム、メタナールまたはＡlＬiＨ₄ から選択される。同様の結果が、酸素の存在下または非存在下、イオン化光線の作用によって、光化学的に（紫外線および次いで光感受性剤）、接触水素化によって、または、ブロミンおよび水、これに次ぐ水素化分解によって、得ることが可能である。置換基および異なったプリンまたはピリミジン塩基において得られた置換化合物を、表１に示す。本発明による方法の最後に、以下の式：（式中、nは任意の正の整数であり、イオン化光線Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ −、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された核塩基を示し、好ましくは、表１の修飾または置換塩基の１つを示す）で表わされるヘプタンが得られる。生成物（II）は、生成物（I）の可能な変換体である。以後、該ヘプタンの１つの調製例を記載する。実施例１：２−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−（ヒドロキシメチル）−モルホリン１００mgの２−（シトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチル＝モルホリンを、５mlの水に溶解する。次いで、黄色くなるまでブロミンを滴下する。常温で１５分間撹拌したのち、過剰のブロミンを、空気を該溶液にふきこむことによって除去する。次いで、２００μlのコリジンを加え、常温で２時間撹拌する。水を減圧下、除去し、フリーのコリジンを、５mlのエタノールで共沸して除去する。得られた残さを高速液体クロマトグラフィー（Ｍac herey Ｎagel（登録商標）のＮucleosil１０−Ｃ１８カラム、６Ｘ３００mm、移動相５０mＭトリエチルアンモニウムアセタートおよびメタノール）で分析する。分析結果から、主生成物（６０％）が原料ではないことが判明した。ＮＭＲ分析から、所望の化合物であることが判明した。該生成物は、５７００モル／l^- ¹ cm^-1のモル吸光係数で、２９０．４nmの最大ＵＶ吸収により特徴づけられるものである。本発明の第２の工程は、第１工程で得られたハプテン（VI）を、たとえば抗原または固体相（フイルム、ゲル）を形成するために、処理することからなる。ここで、ハプテン（VI）は、サポートに、共有結合している。該方法を以下に示す。 n、Ｒ¹およびＲ³は、上記と同様の意味を示し、Ｒ⁵は、蛋白質残基、アルキル＝ポリスチレンまたはアルキル鎖でグラフト化したシリカを示す。原料のハプテン（VI）は、ＮＨ₂−Ｒ⁵と結合する前に、高圧液体クロマトグラフィーによって精製する。基Ｒ⁵は、蛋白質であってもよく、たとえば、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質で、特に、ＫＬＨまたはキーホールリンペット（ keyhole limpet）ヘロシアニン、すなわち、リンペットの蛋白質であってもよい。これは、抗体の製造において使用可能である抗原を与えるものである。ポリクローナル抗体の製造中、蛋白質は、抗体製造用に使用される動物のものとは異なる性質にするように選択される。前記蛋白質は、ウサギを免疫化する場合に適当である。ＮＨ₂−Ｒ⁵基はまた、アミノアルキルポリスチレンまたはアルキルアミノ鎖でグラフト化されたシルカであってもよい。これは、ハプテンがサポートに共有結合したフィルムまたはゲルを提供するものである。該方法の実施方法を以下に示す。実施例２：ハプテン−蛋白質結合体（抗原）の合成３０mg（９０μモル）の２−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４− カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリンを２mlの水に溶解する。水に溶解した該化合物を、３５mg（１８０μモル）のＥ．Ｄ．Ｃ．（Ｎ’−（３− ジメチルアミノプロピル）−Ｎ−エチルカルボジイミド（塩酸塩）と８０mgのボビン血清アルブミンとを含有する溶液、５mlに３時間かけて滴下する。常温で一昼夜撹拌した後、水を減圧下、除去し、残さを２mlの水に溶解して、クロマトグラフィー（メルク社の”Ｆractogel TＳＫ−ＨＷ４０カラム”（登録商標）、２０Ｘ４０mm、移動相０．１５ＭＮaＣl）で分析する。第１溶出生成物を集めて、水で透析し、得られた溶液を凍結乾燥する。生成物のハプテン量を測定する。該測定は、オリジナルの蛋白質のＵＶ吸収を、修飾ヌクレオシドにグラフトした蛋白質のそれと比較することにより行われる。２７０nmと３００nmの吸収比較によって、７．８モルの２−（５−ヒドロキシシトシン−１−イル）−４−カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリンが、蛋白質の１モルあたりにグラフトされていることが確認される。本発明は最後に、Ｒ⁵が蛋白質残基を示す、前記方法によって得られる抗原の特異的抗体に関する。ポリクローナル抗体は、以下に記載するように、ウサギに注射することによる従来法で得られる。しかしながら、得られた抗体は、新規な先に調製された抗原に特異的であるため、新規である。以下、該ポリクローナル抗体の調製の例を挙げる。実施例３：実施例２の抗原に特異的なポリクローナル抗体の調製免疫プロトコールは、以下に記載するような方法で処理された、２Ｋgの株ＮＺ”Ｓ．Ｓ．Ｃ．”の２匹の雌のウサギをベースにした。エマルションが、実施例２で調製されたハプテン−蛋白質結合体、１mg／リットルを完全フロイントアジュバント、１mlと混合することによって調製された。各雌のウサギは、首と背中に、前記エマルション、１００μlを注射された。最初の注射から４週間後、ウサギは、同一条件下で第１ブースターを受けた。さらに４週間後、さらなるブースターを受けた。後者は、１mlのと完全フロイントアジュバントと、１mg／mlのハプテン−蛋白質結合体から形成されたエマルション、０．５mlを、臀部に筋肉内注射することにより行われた。２週間後、２〜５mlの血液がウサギの耳から採取された。収集された血清によって、第１テストをすることができた。最後に、第２ブースターから４週間後、第３ブースターが、第２ブースターと同様の原理を用いて筋肉内注射することにより行われた。２週間後、ウサギは殺され、その血液のほとんどを収集された。血清は、前記抗原の特異的抗体を含有するものである。モノクローナル抗体が、マウスなどの哺乳類のミエローマ細胞をたとえばＢＡＬＢ／cマウス株からのひ臓細胞と融合させることによって、従来の方法で得られる。該マウスは、キャリア蛋白質（Ｒ⁵が蛋白質）に結合した修飾モルホリノヌクレオシドからなる抗原（Ｖ）で免疫化されたものである。該抗体は、本発明による方法によって得られた新規な抗原に特異的である。以後、該モノクローナル抗体の調製例を示す。実施例４：実施例２（２−（５−ヒドロキシキシトシン−１−イル）−４ −カルボキシメチル−６−ヒドロキシメチルモルホリン）の抗原に特異的なモノクローナル抗体の調製免疫化：実施例２の抗原の懸濁液を、完仝フロイントアジュバントと同一容量で乳化した。該エマルションを、６〜８週令の、株ＢＡＬＢ／cの雌のマウスに、０．１mlの投与量で、腹腔内ブースター注射した。該ブースターの２週間後、最後の免疫化が、マウスの尾の静脈に注射することにより行われた。なお、該注射は、０．１５ＭＮaclに溶解された抗原を組み入れたものである。細胞融合およびクローン化最終ブースター注射の３日後、ひ臓がマウスから除去され、粉砕された。ひ臓細胞は、血清を含有しない修飾Ｄulbecco媒体（ＤＭＥＭ）中で洗浄された。１０８ひ臓細胞が、１０７ミエローマ細胞と混合され、次いで常温で７分間５００xgで遠心分離された。次いで、媒体を除去して、遠心分離したものを回収し、これに５０％ＰＥＧ４０００（メルク社）を０．８ml、３７℃で静かに撹拌しながら１分間かけて添加した。次いで、修飾Ｄulbecco媒体を１分間に１mlの割合で添加し、次いで５分間２０mlを添加した。該細胞を１０分間２００xgで遠心分離し、次いで、遠心分離されたものを１５mlのＤＭＥＭおよび１０％ＦＢＳ（胎児ボビン血清）中に再懸濁した。この０．０５mlずつを、マクロフアージで被覆された培養ウエルが設けられたプレートに分配した。該プレートを、ＤＭＥＭ（ＨＡＴ媒体）中における、ハイポキサンチン（１．１０^-4Ｍ）、アメソプテリン（４．１０^-7Ｍ）およびチミジン（１．６１０^-5Ｍ）に添加する前に、３７℃ で２４時間培養した。融合してから７時間後、各ウエルに０．０２５mlのＨＡＴ媒体が添加され、次いで媒体は３〜４日毎に補充された。該コロニーは、実施例２の抗原に対する各活性エリーザテストによってテストされた。該テストでポジティブな結果の細胞のみがクローン化されたものである。請求の範囲１．以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ²は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、アリールオキシ基、フリーアミノ部位を取り込む蛋白質、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体。２．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１−イル、（５，６−シヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎl−オキシド、（８ −オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミシン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４−ヒドロキシ−８− オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール− ４オン）−５−イル］アミノから選択される、請求項１に記載のヌクレオシド誘導体。３．Ｒ²が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１または２に記載のヌクレオシド誘導体。４．以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキルオキシ基、またはアリールオキシ基を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、以下の化学式：（式中、n、Ｒ¹およびＲ⁶は、前記と同様の意味を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と置換基を反応させることからなる、式（II ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法。５．前記置換基が、オゾン、過酸化水素、コリジンと組み合わせたブロミン、Ａg₂Ｏおよびブロミン、過マンガン酸カリウム、４酸化オスミウム、メタナール、またはＡlＬiＨ₄から選択された薬剤である、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。６．前記置換基が、光化学、任意の酸素の存在下のイオン化光線、接触水素化、またはブロミンおよび水による処理とそれに続く水素化分解から選択された処理である、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。７．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ− ５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１− イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎ l−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６ −アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５ −ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４ −ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］アミノから選択される、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。８．以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁵は、蛋白質、アルキルポリスチレン、またはアルキル鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、該方法は、ＮＨ₂−Ｒ⁵ タイプの化合物（式中、Ｒ⁵は、上記と同様の意味をしめす）を、以下の化学式：（式中、n、Ｒ¹およびＲ³は、前記と同様の意味を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と反応させることからなる、式（Ｖ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法。９．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ− ５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１− イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎ l−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６ −アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５ −ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４ −ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項８に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。１０．以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示し、Ｒ⁵は、哺乳類由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原を用いた適当な哺乳類の免疫化によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）ポリクローナル抗体。１１．Ｒ⁵が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１０に記載のポリクローナル抗体。１２．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５− ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ −５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１ −イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン− Ｎl−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ− ５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ− ４−ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項１０に記載のポリクローナル抗体。１３．以下の化学式：（式中、nは、任意の正の整数であり、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された修飾核塩基を示し、Ｒ⁵は、マウス由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原によって免疫化されたマウスのひ臓細胞を用いた哺乳類のミエローマ細胞の融合によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）モノクローナル抗体。１４．Ｒ⁵が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１３に記載のモノクローナル抗体。１５．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５− ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ −５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１ −イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン− Ｎl−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ −５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４−ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項１３に記載のモノクローナル抗体。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩ (Ｃ１２Ｐ 21/08 Ｃ１２Ｒ 1:91） (72)発明者カデット，ジャンフランス国 73160 コニンリュジャン―ムーラン１ (72)発明者シマズ，イサベルフランス国 38000 グルノーブルクルブリア 161

Claims

【特許請求の範囲】１．以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ²は、ヒドロキシル基、アルキル基、アリール基、フリーアミノ部位を取り込む蛋白質、アミノアルキル＝ポリスチレン、またはアルキルアミン鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体。２．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎl−オキシド、（８ −オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４−ヒドロキシ−８− オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール− ４オン）−５−イル］アミノから選択される、請求項１に記載のヌクレオシド誘導体。３．Ｒ²が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１または２に記載のヌクレオシド誘導体。４．以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁶は、ヒドロキシル基、アルキル基、またはアリール基を示し、Ｒ³は、クラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、以下の化学式：（式中、Ｒ¹およびＲ⁶は、前記と同様の意味を示し、Ｒ⁴は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と置換基を反応させることからなる、式（II ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法。５．前記置換基が、オゾン、過酸化水素、コリジンと組み合わせたブロミン、Ａg₂Ｏおよびブロミン、過マンガン酸カリウム、４酸化オスミウム、メタナール、またはＡlＬiＨ₄から選択された薬剤である、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。６．前記置換基が、光化学、任意の酸素の存在下のイオン化光線、接触水素化、またはブロミンおよび水による処理とそれに続く水素化分解から選択された処理である、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。７．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ− ５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１− イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎ l−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６ −アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５ −ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４ −ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］アミノから選択される、請求項４に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。８．以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ⁵は、蛋白質、アルキルポリスチレン、またはアルキル鎖でグラフトしたシリカを示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換塩基を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法であって、該方法は、ＮＨ₂−Ｒ⁵ タイプの化合物（式中、Ｒ⁵は、上記と同様の意味をしめす）を、以下の化学式：（式中、Ｒ¹およびＲ³は、前記と同様の意味を示す）で表わされるヌクレオシド誘導体と反応させることからなる、式（Ｖ）で表わされるヌクレオシド誘導体の製造方法。９．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５−ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ− ５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１− イル、（５，６−シヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン−Ｎ l−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６ −アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５ −ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４ −ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項８に記載のヌクレオシド誘導体の製造方法。１０．以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−、またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換核塩基を示し、Ｒ⁵は、哺乳類由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原を用いた適当な哺乳類の免疫化によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）ポリクローナル抗体。１１．Ｒ⁵が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１０に記載のポリクローナル抗体。１２．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５− ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ −５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１ −イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン− Ｎl−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ− ５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ− ４−ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項１０に記載のポリクローナル抗体。１３．以下の化学式：（式中、Ｒ¹は、Ｈまたは直鎖のモノ−、ジ−またはトリ−リン酸を示し、Ｒ³ は、ウラシル、チミン、シトシン、グアニン、またはアデニンから選択された置換核塩基を示し、Ｒ⁵は、マウス由来の蛋白質ではない）で表わされる抗原によって免疫化されたマウスのひ臓細胞を用いた哺乳類のミエローマ細胞の融合によって得られることを特徴とする、ヌクレオシドから逆誘導された（anti−derived）モノクローナル抗体。１４．Ｒ⁵が、メチル化ボビン血清アルブミン、ターキーまたはチキンの卵アルブミン、またはヘモシアニンから選択された蛋白質である、請求項１３に記載のモノクローナル抗体。１５．Ｒ³が、（５−ヒドロキシシトシン）−１−イル、（５−ヒドロキシヒダントイン）−１−イル、−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ−ＣＯ−ＮＨ₂、（５−ヒドロキシウラシル）−１−イル、（５−ホルミルウラシル）−１−イル、（５− ヒドロキシメチルウラシル）−１−イル、−ＮＨ−ＣＨＯ、（５，６−ジヒドロ −５，６−ジヒドロキシチミン）−１−イル、（５，６−ジヒドロチミン）−１ −イル、（５，６−ジヒドロ−５−ヒドロキシチミン）−１−イル、アデニン− Ｎl−オキシド、（８−オキソ−７，８−ジヒドロアデニン）−９−イル、［（６−アミノ−５−ホルミルアミノ−ピリミジン）−４−イル］アミノ、（８−オキソ−７，８−ジヒドログアニン）−９−イル、［（２−アミノ−６−オキソ−５−ホルミルアミノピリミジン）−４−イル］−アミノ、（４，８−ジヒドロ−４−ヒドロキシ−８−オキソ−グアニン）−９−イル、または［（２，２−ジアミノ−オキサゾール−４−オン）−５−イル］−アミノから選択される、請求項１３に記載のモノクローナル抗体。