JPH0889281A - 酵素による7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法 - Google Patents
酵素による7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法Info
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- JPH0889281A JPH0889281A JP25502994A JP25502994A JPH0889281A JP H0889281 A JPH0889281 A JP H0889281A JP 25502994 A JP25502994 A JP 25502994A JP 25502994 A JP25502994 A JP 25502994A JP H0889281 A JPH0889281 A JP H0889281A
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Abstract
(57)【要約】 (修正有)
【目的】セファロスポリン類抗生物質の製造原料となる
7−グルタリルアミノデアセチルセファロスポラン酸及
び7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の酵素を用
いる製造法の提供。 【構成】デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及
びD−アミノ酸オキシダーゼと接触させる7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法、及び
デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及びD−ア
ミノ酸オキシダーゼと接触させ、得られる7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸を、脱アシル化
酵素と接触させる7−アミノデアセチルセファロスポラ
ン酸の製造法。
7−グルタリルアミノデアセチルセファロスポラン酸及
び7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の酵素を用
いる製造法の提供。 【構成】デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及
びD−アミノ酸オキシダーゼと接触させる7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法、及び
デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及びD−ア
ミノ酸オキシダーゼと接触させ、得られる7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸を、脱アシル化
酵素と接触させる7−アミノデアセチルセファロスポラ
ン酸の製造法。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、セファロスポリン類抗
生物質の製造原料となる7−グルタリルアミノデアセチ
ルセファロスポラン酸(以下、GL−7−ADCAと略
すこともある)及び7−アミノデアセチルセファロスポ
ラン酸(以下、7−ADCAと略すこともある)の酵素
を用いる製造法に関する。
生物質の製造原料となる7−グルタリルアミノデアセチ
ルセファロスポラン酸(以下、GL−7−ADCAと略
すこともある)及び7−アミノデアセチルセファロスポ
ラン酸(以下、7−ADCAと略すこともある)の酵素
を用いる製造法に関する。
【0002】
【従来の技術】7−ADCAを出発原料として、種々の
セファロスポリン類抗生物質が製造され、医薬品として
広く実用に供されている。7−ADCAは、デアセチル
セファロスポリンC(以下、DCPCと略すこともあ
る)の7位アミノ基に結合したアシル基を除去する反応
(以下,脱アシル化と略すこともある)等を経て製造さ
れている。DCPCの化学的脱アシル化法は今日まで多
くの方法が知られている(例えば特公昭41−1386
2号および特公昭45−40889号)。また、酵素を
用いるDCPCを原料とした7−ADCA製造法として
は、GL−7−ADCAを経由する方法と、直接脱アシ
ル化する方法がある。前者は、DCPCを酸化するD−
アミノ酸オキシダーゼ(以下、AODと略すこともあ
る)を用い、GL−7−ADCAを生成した後、脱アシ
ル化酵素で切断し、7−ADCAを得る方法である(特
開昭63−074488号)。後者は、DCPCを直接
脱アシル化して7−ADCAを得る方法である(特開昭
62−048379号公報参照)。
セファロスポリン類抗生物質が製造され、医薬品として
広く実用に供されている。7−ADCAは、デアセチル
セファロスポリンC(以下、DCPCと略すこともあ
る)の7位アミノ基に結合したアシル基を除去する反応
(以下,脱アシル化と略すこともある)等を経て製造さ
れている。DCPCの化学的脱アシル化法は今日まで多
くの方法が知られている(例えば特公昭41−1386
2号および特公昭45−40889号)。また、酵素を
用いるDCPCを原料とした7−ADCA製造法として
は、GL−7−ADCAを経由する方法と、直接脱アシ
ル化する方法がある。前者は、DCPCを酸化するD−
アミノ酸オキシダーゼ(以下、AODと略すこともあ
る)を用い、GL−7−ADCAを生成した後、脱アシ
ル化酵素で切断し、7−ADCAを得る方法である(特
開昭63−074488号)。後者は、DCPCを直接
脱アシル化して7−ADCAを得る方法である(特開昭
62−048379号公報参照)。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】一般的に用いられる化
学的脱アシル化法は、反応工程が複雑であること、反応
に用いる副原料の価格が高いこと、反応の副産物として
大量の化合物が排出されることなど工業的には問題点が
多い。また、上記酵素反応を利用した、DCPCからの
7−ADCAの製造法は、収率が低い。このような状況
下、DCPCより酵素反応により効率よく7−ADCA
を製造する方法の開発が望まれていた。
学的脱アシル化法は、反応工程が複雑であること、反応
に用いる副原料の価格が高いこと、反応の副産物として
大量の化合物が排出されることなど工業的には問題点が
多い。また、上記酵素反応を利用した、DCPCからの
7−ADCAの製造法は、収率が低い。このような状況
下、DCPCより酵素反応により効率よく7−ADCA
を製造する方法の開発が望まれていた。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、DCPC
をカタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼと接触さ
せ、得られるGL−7−ADCAを、脱アシル化酵素と
接触させることにより、効率よく7−ADCAを製造で
きることを見いだし、さらに鋭意検討を重ねた結果本発
明を完成するに至った。即ち本発明は、(1)デアセチ
ルセファロスポリンCをカタラーゼ及びD−アミノ酸オ
キシダーゼと接触させることを特徴とする7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法、
(2)デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及び
D−アミノ酸オキシダーゼと接触させ、得られる7−グ
ルタリルアミノデアセチルセファロスポラン酸を、脱ア
シル化酵素と接触させることを特徴とする7−アミノデ
アセチルセファロスポラン酸の製造法、(3)カタラー
ゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼを担体に担持せしめた
(1)及び(2)記載の製造法、(4)脱アシル化酵素
を担体に担持せしめた(2)記載の製造法、及び(5)
脱アシル化酵素がアシネトバクター属菌由来である
(2)記載の製造法に関する。本発明の製造方法で用い
られる、D−アミノ酸オキシダーゼは、DCPCに作用
して、GL−7−ADCAを生成する能力を有する酵素
であればいかなるものでも用いることができる。D−ア
ミノ酸オキシダーゼの好ましい例として、例えば特表平
4−504362号公報記載のD−アミノ酸オキシダー
ゼが挙げられる。さらに好ましくは、微生物〔例、トリ
ゴノプシス(Trigonopsis)属,ロドトルラ(Rhodotorula)
属,カンジダ(Candida)属等の酵母、ペニシリウム(Peni
cillium)属, アスペルギルス(Aspergillus)属等のカ
ビ、アエロバクテル(Aerobacter)属等のバクテリアな
ど〕由来のD−アミノ酸オキシダーゼが好ましい。さら
に、酵母由来のものが特に好ましい。該酵素の具体例を
挙げれば、例えばトリゴノプシス バリアビリス(Trigo
nopsis variabilis)由来のD−アミノ酸オキシダーゼ
が好ましい。
をカタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼと接触さ
せ、得られるGL−7−ADCAを、脱アシル化酵素と
接触させることにより、効率よく7−ADCAを製造で
きることを見いだし、さらに鋭意検討を重ねた結果本発
明を完成するに至った。即ち本発明は、(1)デアセチ
ルセファロスポリンCをカタラーゼ及びD−アミノ酸オ
キシダーゼと接触させることを特徴とする7−グルタリ
ルアミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法、
(2)デアセチルセファロスポリンCをカタラーゼ及び
D−アミノ酸オキシダーゼと接触させ、得られる7−グ
ルタリルアミノデアセチルセファロスポラン酸を、脱ア
シル化酵素と接触させることを特徴とする7−アミノデ
アセチルセファロスポラン酸の製造法、(3)カタラー
ゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼを担体に担持せしめた
(1)及び(2)記載の製造法、(4)脱アシル化酵素
を担体に担持せしめた(2)記載の製造法、及び(5)
脱アシル化酵素がアシネトバクター属菌由来である
(2)記載の製造法に関する。本発明の製造方法で用い
られる、D−アミノ酸オキシダーゼは、DCPCに作用
して、GL−7−ADCAを生成する能力を有する酵素
であればいかなるものでも用いることができる。D−ア
ミノ酸オキシダーゼの好ましい例として、例えば特表平
4−504362号公報記載のD−アミノ酸オキシダー
ゼが挙げられる。さらに好ましくは、微生物〔例、トリ
ゴノプシス(Trigonopsis)属,ロドトルラ(Rhodotorula)
属,カンジダ(Candida)属等の酵母、ペニシリウム(Peni
cillium)属, アスペルギルス(Aspergillus)属等のカ
ビ、アエロバクテル(Aerobacter)属等のバクテリアな
ど〕由来のD−アミノ酸オキシダーゼが好ましい。さら
に、酵母由来のものが特に好ましい。該酵素の具体例を
挙げれば、例えばトリゴノプシス バリアビリス(Trigo
nopsis variabilis)由来のD−アミノ酸オキシダーゼ
が好ましい。
【0005】カタラーゼは、AODの活性を増大させる
能力を有する酵素であればいかなるものでも用いること
ができる。該カタラーゼの好ましい例として、例えば特
表平4−504362号公報記載のカタラーゼが挙げら
れる。さらに哺乳類の組織〔例、ウシ肝臓、ネズミ肝臓
等〕、微生物〔例、アスペルギルス(Aspergillus)属
等のカビなど〕由来のカタラーゼが好ましい。該酵素の
具体例を挙げれば、ウシ肝臓由来のカタラーゼが好まし
い。本発明に用いられる、脱アシル化酵素は、GL−7
−ADCAに作用して、7−ADCAを生成する能力を
有する酵素であればいかなるものも用いることができ
る。該脱アシル化酵素の好ましい例として、例えば特表
平4−504362号公報記載の脱アシル化酵素が挙げ
られる。さらに、微生物〔例、アシネトバクター(Acine
tobacter)属,シュードモナス(Pseudmonas)属,アルス
ロバクター(Arthrobacter)属等のバクテリアなど〕由
来の脱アシル化酵素が好ましい。さらに、アシネトバク
ター(Acinetobacter)属由来のものが特に好ましい。
能力を有する酵素であればいかなるものでも用いること
ができる。該カタラーゼの好ましい例として、例えば特
表平4−504362号公報記載のカタラーゼが挙げら
れる。さらに哺乳類の組織〔例、ウシ肝臓、ネズミ肝臓
等〕、微生物〔例、アスペルギルス(Aspergillus)属
等のカビなど〕由来のカタラーゼが好ましい。該酵素の
具体例を挙げれば、ウシ肝臓由来のカタラーゼが好まし
い。本発明に用いられる、脱アシル化酵素は、GL−7
−ADCAに作用して、7−ADCAを生成する能力を
有する酵素であればいかなるものも用いることができ
る。該脱アシル化酵素の好ましい例として、例えば特表
平4−504362号公報記載の脱アシル化酵素が挙げ
られる。さらに、微生物〔例、アシネトバクター(Acine
tobacter)属,シュードモナス(Pseudmonas)属,アルス
ロバクター(Arthrobacter)属等のバクテリアなど〕由
来の脱アシル化酵素が好ましい。さらに、アシネトバク
ター(Acinetobacter)属由来のものが特に好ましい。
【0006】DCPCを出発原料として、GL−7−A
DCAを製造する工程は、反応に悪影響を及ぼさない溶
媒中で、DCPCにカタラーゼ及びD−アミノ酸オキシ
ダーゼを接触させることにより行われる。該溶媒として
は、例えば緩衝液(例、リン酸緩衝液,酢酸緩衝液等)
などの水系の溶媒が用いられる。反応液のpHは、約6
から9の間に調整されることが好ましい。さらに約7.
5から8.5の間に調整されることが好ましい。pHの
調整のため、反応液にアルカリ(例、水酸化カリウム,
水酸化ナトリウム等の水酸化アルカリ金属、炭酸カリウ
ム,炭酸ナトリウム等のアルカリ金属の炭酸塩、アンモ
ニア水等)を加えることも有効である。D−アミノ酸オ
キシダーゼの使用量は、DCPC 1gに対し、D−ア
ミノ酸オキシダーゼ約1から200単位を用いる。さら
に好ましくは、DCPC 1gに対し、D−アミノ酸オ
キシダーゼ約5から100単位を用いる。カタラーゼの
使用量はDCPC 1gに対し、約0.01から100
単位を用いる。さらに好ましくは、DCPC 1gに対
し約0.03から50単位を用いる。ここで用いる酵素
の1単位とは、1μmolの基質を変換するのに必要な
酵素量を意味する。
DCAを製造する工程は、反応に悪影響を及ぼさない溶
媒中で、DCPCにカタラーゼ及びD−アミノ酸オキシ
ダーゼを接触させることにより行われる。該溶媒として
は、例えば緩衝液(例、リン酸緩衝液,酢酸緩衝液等)
などの水系の溶媒が用いられる。反応液のpHは、約6
から9の間に調整されることが好ましい。さらに約7.
5から8.5の間に調整されることが好ましい。pHの
調整のため、反応液にアルカリ(例、水酸化カリウム,
水酸化ナトリウム等の水酸化アルカリ金属、炭酸カリウ
ム,炭酸ナトリウム等のアルカリ金属の炭酸塩、アンモ
ニア水等)を加えることも有効である。D−アミノ酸オ
キシダーゼの使用量は、DCPC 1gに対し、D−ア
ミノ酸オキシダーゼ約1から200単位を用いる。さら
に好ましくは、DCPC 1gに対し、D−アミノ酸オ
キシダーゼ約5から100単位を用いる。カタラーゼの
使用量はDCPC 1gに対し、約0.01から100
単位を用いる。さらに好ましくは、DCPC 1gに対
し約0.03から50単位を用いる。ここで用いる酵素
の1単位とは、1μmolの基質を変換するのに必要な
酵素量を意味する。
【0007】反応は、約0.1から3vvm、好ましく
は約0.2から2vvmの酸素を供給することが好まし
い。ここで用いる1vvmとは、反応容器の容積が10
リットルとした場合、純酸素に換算して、毎分10リッ
トルの酸素を供給することを意味する。通気方法は、目
的とする酸素量を供給し得る方法であればいかなる通気
方法も採用し得る。具体的には、例えば純酸素を通気す
る方法、酸素と空気の混合気体を通気する方法等が用い
られる。反応温度は、約15℃からカタラーゼ及びD−
アミノ酸オキシダーゼが失活しない温度の範囲より適宜
選択される。好ましくは、約15から50℃の範囲より
選択される。反応時間は、約15分から2日間である。
本工程により得られたGL−7−ADCAを含む反応液
は、そのままあるいは所望により酵素及び不溶物を遠心
分離または濾過によって除去した後、次の脱アシル化工
程の出発原料として用いることができる。反応液より、
GL−7−ADCAを分別採取することも可能である。
この場合酵素及び不溶物を遠心分離または濾過により除
去した後に分別採取することが好ましい。GL−7−A
DCAの分別採取は自体公知の方法により行うことがで
きる。すなわち、例えば弱酸性有機物の一般的な分別採
取法により行う。具体的には、例えばイオン交換樹脂
(例、アンバーライトIR−A900等)、活性炭、セ
ルロース、シリカゲルなどを用いるクロマトグラフィー
あるいはゲル濾過法などを組み合わせることにより、G
L−7−ADCAを分別採取する。分別採取したGL−
7−ADCAを、脱アシル化工程の出発原料として用い
ることもできる。上記本発明の製造法により製造したG
L−7−ADCAから、7−ADCAを製造するには、
反応に悪影響を及ぼさない溶媒中で、GL−7−ADC
Aに脱アシル化酵素を接触させることにより行われる。
該溶媒としては、例えば緩衝液(例、リン酸緩衝液,酢
酸緩衝液等)などの水系の溶媒が用いられる。反応液の
pHは、約5から9の間に調整されることが好ましい。
さらに約7.5から9の間に調整されることが好まし
い。pHの調整のため、反応液にアルカリ(例、水酸化
カリウム,水酸化ナトリウム等の水酸化アルカリ金属、
炭酸カリウム,炭酸ナトリウム等のアルカリ金属の炭酸
塩、アンモニア水等)を加えることも有効である。脱ア
シル化酵素の使用量は、前工程の出発原料であるDCP
C 1gに対し、約1から1000単位を用いる。さら
に好ましくは、DCPC 1gに対し、約5から500
単位を用いる。反応温度は、約15℃から脱アシル化酵
素が失活しない温度の範囲より適宜選択される。好まし
くは、約15から50℃の範囲より選択される。反応時
間は、約15分から2日間である。
は約0.2から2vvmの酸素を供給することが好まし
い。ここで用いる1vvmとは、反応容器の容積が10
リットルとした場合、純酸素に換算して、毎分10リッ
トルの酸素を供給することを意味する。通気方法は、目
的とする酸素量を供給し得る方法であればいかなる通気
方法も採用し得る。具体的には、例えば純酸素を通気す
る方法、酸素と空気の混合気体を通気する方法等が用い
られる。反応温度は、約15℃からカタラーゼ及びD−
アミノ酸オキシダーゼが失活しない温度の範囲より適宜
選択される。好ましくは、約15から50℃の範囲より
選択される。反応時間は、約15分から2日間である。
本工程により得られたGL−7−ADCAを含む反応液
は、そのままあるいは所望により酵素及び不溶物を遠心
分離または濾過によって除去した後、次の脱アシル化工
程の出発原料として用いることができる。反応液より、
GL−7−ADCAを分別採取することも可能である。
この場合酵素及び不溶物を遠心分離または濾過により除
去した後に分別採取することが好ましい。GL−7−A
DCAの分別採取は自体公知の方法により行うことがで
きる。すなわち、例えば弱酸性有機物の一般的な分別採
取法により行う。具体的には、例えばイオン交換樹脂
(例、アンバーライトIR−A900等)、活性炭、セ
ルロース、シリカゲルなどを用いるクロマトグラフィー
あるいはゲル濾過法などを組み合わせることにより、G
L−7−ADCAを分別採取する。分別採取したGL−
7−ADCAを、脱アシル化工程の出発原料として用い
ることもできる。上記本発明の製造法により製造したG
L−7−ADCAから、7−ADCAを製造するには、
反応に悪影響を及ぼさない溶媒中で、GL−7−ADC
Aに脱アシル化酵素を接触させることにより行われる。
該溶媒としては、例えば緩衝液(例、リン酸緩衝液,酢
酸緩衝液等)などの水系の溶媒が用いられる。反応液の
pHは、約5から9の間に調整されることが好ましい。
さらに約7.5から9の間に調整されることが好まし
い。pHの調整のため、反応液にアルカリ(例、水酸化
カリウム,水酸化ナトリウム等の水酸化アルカリ金属、
炭酸カリウム,炭酸ナトリウム等のアルカリ金属の炭酸
塩、アンモニア水等)を加えることも有効である。脱ア
シル化酵素の使用量は、前工程の出発原料であるDCP
C 1gに対し、約1から1000単位を用いる。さら
に好ましくは、DCPC 1gに対し、約5から500
単位を用いる。反応温度は、約15℃から脱アシル化酵
素が失活しない温度の範囲より適宜選択される。好まし
くは、約15から50℃の範囲より選択される。反応時
間は、約15分から2日間である。
【0008】本発明の製造法では、DCPCを含有する
醗酵終了液を出発原料として用いることもできる。その
場合、カタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼによる
処理工程においてアジ化ナトリウム及び過酸化水素を加
えることも有効である。アジ化ナトリウムの使用量は、
DCPC 1gに対し約5から500mM,好ましくは
約50から200mMを用いる。過酸化水素の使用量
は、DCPC 1gに対し、約0.02から1mg、好
ましくは約0.1から0.5mgを用いる。本発明の製
造法は、カタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼある
いは脱アシル化酵素を固定化して用いることも有効であ
る。該固定化は、例えばプラスチックまたは布等の担体
に担持せしめることにより行われる。固定化の方法は、
自体公知の方法により行うことができる。例えば、微孔
性プラスチックシートをポリエチレンイミンおよびグル
タルアルデヒドで処理して、酵素タンパク質のアミノ基
との間に化学結合を形成し、固定化することができる。
反応液より目的とする、7−ADCAを採取するには、
酵素及び不溶物を遠心分離あるいはろ過により除去した
後に行うことが好ましい。7−ADCAを分別採取する
には、自体公知の方法により行う。すなわち、例えば、
ろ液に酸(例、硫酸,塩酸等の無機酸、酢酸,酒石酸,
クエン酸等の有機酸等)を加え、ろ液のpHを約4とす
ることにより、7−ADCAを晶出させ、これを採取す
る。また、例えば、弱酸性有機物の一般的な分別採取法
も適用できる。すなわち、イオン交換樹脂(例、アンバ
ーライトIR−A900等)、活性炭、セルロース、シ
リカゲルなどを用いるクロマトグラフィーあるいはゲル
ろ過法などを組み合わせることにより、7−ADCAを
分別採取する。
醗酵終了液を出発原料として用いることもできる。その
場合、カタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼによる
処理工程においてアジ化ナトリウム及び過酸化水素を加
えることも有効である。アジ化ナトリウムの使用量は、
DCPC 1gに対し約5から500mM,好ましくは
約50から200mMを用いる。過酸化水素の使用量
は、DCPC 1gに対し、約0.02から1mg、好
ましくは約0.1から0.5mgを用いる。本発明の製
造法は、カタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼある
いは脱アシル化酵素を固定化して用いることも有効であ
る。該固定化は、例えばプラスチックまたは布等の担体
に担持せしめることにより行われる。固定化の方法は、
自体公知の方法により行うことができる。例えば、微孔
性プラスチックシートをポリエチレンイミンおよびグル
タルアルデヒドで処理して、酵素タンパク質のアミノ基
との間に化学結合を形成し、固定化することができる。
反応液より目的とする、7−ADCAを採取するには、
酵素及び不溶物を遠心分離あるいはろ過により除去した
後に行うことが好ましい。7−ADCAを分別採取する
には、自体公知の方法により行う。すなわち、例えば、
ろ液に酸(例、硫酸,塩酸等の無機酸、酢酸,酒石酸,
クエン酸等の有機酸等)を加え、ろ液のpHを約4とす
ることにより、7−ADCAを晶出させ、これを採取す
る。また、例えば、弱酸性有機物の一般的な分別採取法
も適用できる。すなわち、イオン交換樹脂(例、アンバ
ーライトIR−A900等)、活性炭、セルロース、シ
リカゲルなどを用いるクロマトグラフィーあるいはゲル
ろ過法などを組み合わせることにより、7−ADCAを
分別採取する。
【0009】
【実施例】本発明を説明するために、以下に実施例を挙
げるが、本発明はそれらに限定されるものではない。 実施例1 0.1Mリン酸緩衝液(pH8.0)10mlに DC
PC(343 mg)を溶解し、固定化AOD〔20単
位,カタラーゼ0.03単位を含む、ベーリンガー・マ
ンハイム(Boehringer Mannheim)社製、独〕を加え
る。2N水酸化カリウムで反応液のpHを8.0に調節
しながら酸素(1vvm)を通気し、20℃で、60分
間撹拌した。反応後、AODを除いた反応液に固定化脱
アシル化酵素(50単位,ベーリンガー・マンハイム社
製,独)を加え、3Nアンモニア水で反応液のpHを
8.0に調節しながら28℃で、40分間撹拌した。
〔表1〕に示す通り、DCPCから7−ADCAを効率
よく製造できる。(いずれも、反応開始時および反応終
了時の量を100%とした相対値で示した。)
げるが、本発明はそれらに限定されるものではない。 実施例1 0.1Mリン酸緩衝液(pH8.0)10mlに DC
PC(343 mg)を溶解し、固定化AOD〔20単
位,カタラーゼ0.03単位を含む、ベーリンガー・マ
ンハイム(Boehringer Mannheim)社製、独〕を加え
る。2N水酸化カリウムで反応液のpHを8.0に調節
しながら酸素(1vvm)を通気し、20℃で、60分
間撹拌した。反応後、AODを除いた反応液に固定化脱
アシル化酵素(50単位,ベーリンガー・マンハイム社
製,独)を加え、3Nアンモニア水で反応液のpHを
8.0に調節しながら28℃で、40分間撹拌した。
〔表1〕に示す通り、DCPCから7−ADCAを効率
よく製造できる。(いずれも、反応開始時および反応終
了時の量を100%とした相対値で示した。)
【表1】
【0010】実施例2 0.1Mリン酸緩衝液(pH8.0,300ml)にD
CPC(10.3g)を溶解し、固定化AOD(600
単位,カタラーゼ 0.9単位を含む、ベーリンガー・
マンハイム社製,独)を加える。2N水酸化カリウムで
反応液のpHを8.0に調節しながら酸素(1vvm)
を通気し、20℃で、80分間撹拌した。反応後、AO
Dを除いた反応液に固定化脱アシル化酵素(1500単
位,ベーリンガー・マンハイム社製,独)を加え、3N
アンモニア水で反応液のpHを8.0に調節しながら2
8℃で、40分間撹拌した。反応終了後、ガラスフィル
ターで固定化酵素を除去し、このろ液に10N硫酸を加
え、pH4に調整することにより7−ADCAを晶析さ
せた。生成した結晶をガラスフィルターで濾過し、メタ
ノールで洗浄し、真空乾燥することにより7−ADCA
の結晶を2.2gを得た。
CPC(10.3g)を溶解し、固定化AOD(600
単位,カタラーゼ 0.9単位を含む、ベーリンガー・
マンハイム社製,独)を加える。2N水酸化カリウムで
反応液のpHを8.0に調節しながら酸素(1vvm)
を通気し、20℃で、80分間撹拌した。反応後、AO
Dを除いた反応液に固定化脱アシル化酵素(1500単
位,ベーリンガー・マンハイム社製,独)を加え、3N
アンモニア水で反応液のpHを8.0に調節しながら2
8℃で、40分間撹拌した。反応終了後、ガラスフィル
ターで固定化酵素を除去し、このろ液に10N硫酸を加
え、pH4に調整することにより7−ADCAを晶析さ
せた。生成した結晶をガラスフィルターで濾過し、メタ
ノールで洗浄し、真空乾燥することにより7−ADCA
の結晶を2.2gを得た。
【0011】実施例3 除菌した醗酵終了液(DCPC 36.7 mg/mlを含む,1
0ml)に固定化AOD(20単位,カタラーゼ0.0
3単位を含む、ベーリンガー・マンハイム社製,独)を
加え、2N水酸化カリウムで反応液のpHを8.0に調
節しながら酸素(0.5vvm)を通気し、20℃で、
80分間撹拌した。反応後、AODを除いた反応液にア
ジ化ナトリウム(65mg)、30%(v/v)過酸化
水素水(300μl)を添加し、20℃で10分間撹拌
した。さらにその反応液に脱アシル化酵素(50単位,
ベーリンガー・マンハイム社製,独)を加え、3Nアン
モニア水で反応液のpHを8.0に調節しながら28℃
で、80分間撹拌した。この反応液は、7.4mg/mlの
7−ADCAを含有していた。
0ml)に固定化AOD(20単位,カタラーゼ0.0
3単位を含む、ベーリンガー・マンハイム社製,独)を
加え、2N水酸化カリウムで反応液のpHを8.0に調
節しながら酸素(0.5vvm)を通気し、20℃で、
80分間撹拌した。反応後、AODを除いた反応液にア
ジ化ナトリウム(65mg)、30%(v/v)過酸化
水素水(300μl)を添加し、20℃で10分間撹拌
した。さらにその反応液に脱アシル化酵素(50単位,
ベーリンガー・マンハイム社製,独)を加え、3Nアン
モニア水で反応液のpHを8.0に調節しながら28℃
で、80分間撹拌した。この反応液は、7.4mg/mlの
7−ADCAを含有していた。
【0012】
【発明の効果】本発明の製造法によれば、デアセチルセ
ファロスポリンCから、単一反応容器内で、酵素反応に
より、工業的に簡単かつ効率良く7−グルタリルアミノ
デアセチルセファロスポラン酸を製造することができ
る。さらに、ついで7−グルタリルアミノデアセチルセ
ファロスポラン酸は、脱アシル化酵素により、容易にま
た収率良く7−アミノデアセチルセファロスポラン酸に
変換できる。
ファロスポリンCから、単一反応容器内で、酵素反応に
より、工業的に簡単かつ効率良く7−グルタリルアミノ
デアセチルセファロスポラン酸を製造することができ
る。さらに、ついで7−グルタリルアミノデアセチルセ
ファロスポラン酸は、脱アシル化酵素により、容易にま
た収率良く7−アミノデアセチルセファロスポラン酸に
変換できる。
フロントページの続き (72)発明者 藤本 茂 大阪府池田市石橋4丁目11番11号 (72)発明者 樽井 直樹 大阪府吹田市津雲台5丁目18番D−75− 208号
Claims (5)
- 【請求項1】デアセチルセファロスポリンCをカタラー
ゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼと接触させることを特
徴とする7−グルタリルアミノデアセチルセファロスポ
ラン酸の製造法。 - 【請求項2】デアセチルセファロスポリンCをカタラー
ゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼと接触させ、得られる
7−グルタリルアミノデアセチルセファロスポラン酸
を、脱アシル化酵素と接触させることを特徴とする7−
アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法。 - 【請求項3】カタラーゼ及びD−アミノ酸オキシダーゼ
を担体に担持せしめた請求項1および請求項2記載の製
造法。 - 【請求項4】脱アシル化酵素を担体に担持せしめた請求
項2記載の製造法。 - 【請求項5】脱アシル化酵素がアシネトバクター属菌由
来である請求項2記載の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP25502994A JPH0889281A (ja) | 1993-10-20 | 1994-10-20 | 酵素による7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法 |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26279193 | 1993-10-20 | ||
JP5-262791 | 1993-10-20 | ||
JP25502994A JPH0889281A (ja) | 1993-10-20 | 1994-10-20 | 酵素による7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0889281A true JPH0889281A (ja) | 1996-04-09 |
Family
ID=26541982
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP25502994A Withdrawn JPH0889281A (ja) | 1993-10-20 | 1994-10-20 | 酵素による7−アミノデアセチルセファロスポラン酸の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0889281A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100512774B1 (ko) * | 2001-10-06 | 2005-09-07 | 종근당바이오 주식회사 | 7-아미노세팔로스포란산의 제조를 위한 세팔로스포린c배양액의 전처리방법 |
-
1994
- 1994-10-20 JP JP25502994A patent/JPH0889281A/ja not_active Withdrawn
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR100512774B1 (ko) * | 2001-10-06 | 2005-09-07 | 종근당바이오 주식회사 | 7-아미노세팔로스포란산의 제조를 위한 세팔로스포린c배양액의 전처리방법 |
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Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A300 | Withdrawal of application because of no request for examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300 Effective date: 20020115 |