JPH08505041A - 糖タンパク上もしくは糖脂質上のまたは遊離分子としてのオリゴ糖構造体の合成に用いるための、およびこれらの構造体を決定するクローン化遺伝子配列を単離するための方法および産物 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 遺伝子を単離する方法であって、下記のステップを含む方法が開示されている。（ｉ）関心の対象である翻訳後特性を有する細胞を単離し、ここにおいてこの翻訳後特性は、細胞の表面上における関心の対象である膜結合オリゴ糖や多糖の存在、該細胞の抽出物における関心の対象である可溶性オリゴ糖や多糖の存在、または該細胞の抽出物における特にグリコシルトランスフェラーゼ活性の存在であり；（ｉｉ）単離した細胞の遺伝子材料からｃＤＮＡまたはゲノムＤＮＡの遺伝子ライブラリーを作製し；（ｉｉｉ）宿主細胞をこの遺伝子ライブラリーで形質転換し；さらに（ｉｖ）当該形質転換された宿主細胞をスクリーニングし、関心の対象である翻訳後特性を有する宿主細胞を見い出し、これによって前記の遺伝子を含む細胞を得る。この方法はグリコシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子を得るのに使用できる。

Description

【発明の詳細な説明】 糖タンパク上もしくは糖脂質上のまたは遊離分子としてのオリゴ糖構造体の合成 に用いるための、およびこれらの構造体を決定するクローン化遺伝子配列を単離 するための方法および産物 本発明は、１９９１年６月１９日に提出された米国特許出願第０７／７１５９ ００号の一部継続出願である。この米国特許出願第０７／７１５９００号は１９ ９０年１２月１２日に提出され現在放棄されている米国特許出願第０７／６２７ ６２１号の一部継続出願である。この米国特許出願第０７／６２７６２１号は１ ９９０年２月１４日に提出され現在放棄されている米国特許出願第０７／４７９ ８５８号の一部継続出願である。技術分野 ： 本発明は、糖タンパク上もしくは糖脂質上のまたは遊離分子としてのオリゴ糖 または多糖構造体を合成するための方法および産物に関する。背景技術 ： 炭水化物は生物学的化合物として重要な地位を占めるものであり、その構造は 非常に多岐にわたっている。この多様性は無原則ではなく、むしろ正確に組織特 異性および発生に関する発現パターンを示し特定のオリゴ糖構造体の集合からな っている。細胞内において炭水化物はその構成成分として働き、細胞内の粘度を 調節し、エネルギーを蓄え、あるいは細胞表面における鍵成分としての役割を果 たしている。数多くの部位特異的細胞間作用に細胞表面の炭水化物が関与してい る。例えば精子と卵子の合体や受精卵の移植のどちらにも細胞表面の炭水化物が 介在している。また、細胞接着性分子（例えばＧＭＰ−１４０、内皮白血球接着 分子−１（ＥＬＡＭ−１）およびＭｅ１−１４のようなリンパ球接着分子など） として機能する多くのタンパク質はレクチンに類似した構造的特徴を示し、特定 の細胞表面炭水化物構造と結合することが現在知られている（フェイジ、Ｔｒｅ ｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｓｃｉ．（１９９１）１６：８４−８６）。グリコシ ル化タンパクは腫瘍関連抗原として現在多くの癌腫の存在を同定するのに用いら れている。単離されたオリゴ糖もそれ自身生物学的活性を示すことが判明してい る。 ある特定のガラクトースオリゴ糖は、赤血球でウロパトゲン性のカルス形成バ クテリアの凝集を抑制することが知られている（米国特許第４５２１５９２号） 。別のオリゴ糖はプラスミノーゲンアクチベータのレベルを高めることにより、 強いアンチトロンビン活性を有することが示されている（米国特許第４８０１５ ８３号）。これと同じ生物学的活性が、オリゴ糖の結合を通して、アミノ糖タン パクと共同して医療機器において抗凝固効果を発揮する医療的表面を提供するた めに用いられている（米国特許第４８１０７８４号）。また別のオリゴ糖はグラ ム陽性抗生物質あるいは消毒剤として有用であるとされている（米国特許第４８ ５１３３８号および４６６５０６０号）。さらにオリゴ糖は特定のバクテリアの 同定と診断においてバクテリア受容体部位として用いられてきた（米国特許第４ ６５７８４９および４７６２８２４号）。 また、オリゴ糖はタンパクや脂質と結合してこれらに影響を与えることがよく 知られている（ラデマチャーら、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、（１９８ ８）５７：７８５）。オリゴ糖の内の特定のものはタンパクの安定性、血流から の生体内クリアランス速度、タンパク分解速度、熱安定性および溶解性に影響を 与えることが示されている。細胞表面炭水化物のオリゴ糖成分における変化が癌 性化した細胞中で認められている。別のオリゴ糖の変化が細胞分化において検出 されている（トーンら、テトラヒドロン・レポート（１９８９）４５（１７）： ５３６５−５４２２）。よって生物学的機能についてのオリゴ糖の意義は非常に 大きい。 分子生物学におけるこれらの物質の基本的役割によって、広範な研究が行われ 、特にこれらの物質を合成するための有機合成法に関し開発努力が傾注されてき た。炭水化物を調製する合成手法はかなり進歩しているが、その技法は利用可能 な合成過程において必要とされる選択的保護および脱保護に関し無視できない難 点を伴っている。これらの難点に加えて炭水化物の単離・精製および構造決定に 関する問題点があることから、従来合成有機化学の手法で経済的に価値ある炭水 化物を産することができなかった。 酵素を用いる触媒的合成は、水性溶液中の温和な条件のもとで、好ましくない 副産物をほとんど生成せずに経済的かつ非常に高収率で炭水化物（例えばオリゴ 糖および／または多糖）を産することができ、過去の古典的な有機合成に比べ驚 異的な利点をもたらした。そのような酵素の例としてはグリコシルトランスフェ ラーゼなどが挙げられるが、これらのタンパクは低濃度でしか存在せず膜に結合 しているため単離するのが難しく、特に哺乳類などの真核細胞からの単離が困難 であった。 １９８７年現在、アミノ酸配列情報または抗グリコシルトランスフェラーゼ抗 体を用いる標準分子クローニング手法を用いてβ（１，４）ガラクトシルトラン スフェラーゼ（１９８６年）とα（２，６）シアリルトランスフェラーゼ（１９ ８７年）にそれぞれ対応する哺乳類などの真核性のグリコシルトランスフェラー ゼｃＤＮＡを二つ単離することに成功している。上述した炭水化物の高価値に鑑 み、これに続くグリコシルトランスフェラーゼ遺伝子とｃＤＮＡと単離するため の方法の改良およびこれらを用いた炭水化物合成の改良が強く望まれる。発明の開示 従って、本発明の目的は哺乳類など真核性のグリコシルトランスフェラーゼ遺 伝子とｃＤＮＡを簡便に単離する方法を提供することである。 本発明の他の目的はこれらの単離された遺伝子とｃＤＮＡを修飾してそれぞれ 対応した修飾グリコシルトランスフエラーゼを得る方法を提供することである。 本発明の更なる目的はこれらの修飾されていないあるいは修飾されている遺伝 子やｃＤＮＡを提供するとともに、これらに遺伝子導入手法や試験管内グリコシ ル化反応を適用し、例えば細胞表面オリゴ糖構造を改変するために用いることで ある。 本発明の発明者はこの度、上記の目的および以下の記述から理解される本発明 のその他の目的を全て満たす遺伝子転移手法を見いだした。本発明はその方法論 としては、グリコシルトランスフェラーゼの基質と受容体特性についてのすでに 存在する情報を利用し、細胞表面で発現されたこれらの酵素のオリゴ糖産物に特 異的な多くの抗体およびレクチン試薬を用いるものである。図面の簡単な説明 図１、２、３、４、５、６および７は本発明によって提供される６つのＤＮＡ 配列を示し、これらはグリコシルトランスフェラーゼをコードするものである。 図１はＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）−Ｄ−ＧｌｃＮ ａｃ（／Ｇｌｃ）−α−（１，３／１，４）−フコシルトランスフェラーゼ（ル イスフコシルトランスフェラーゼ、Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ）（配列認識番号１）とし て働くことができるタンパクをコードするＤＮＡ配列とコードされたタンパク（ Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ）（配列認識番号２）のアミノ酸配列を示す。 図２はマウスＵＤＰ−Ｇａｌ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）−Ｄ−ＧｌｃＮａｃ α（１，３）−ガラクトシルトランスフェラーゼ（配列認識番号３）をコードす るＤＮＡ配列とコードされたタンパク（配列認識番号４）のアミノ酸配列を示す 。 図３はヒトＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−ガラクトシドα（１，２）−フコシルトラ ンスフェラーゼ（配列認識番号５）をコードするＤＮＡ配列とコードされたタン パク（配列認識番号６）のアミノ酸配列を示す。 図４と５はＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）］−Ｄ−ＧｌｃＮａ Ｃα（１，３）−フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＶ）をコードする ＤＮＡ配列（それぞれ配列認識番号７および９）とコードされたタンパク（Ｆｕ ｃ−ＴＩＶ）（配列認識番号８）を示す。図５もルイスフコシルトランスフェラ ーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ）（配列認識番号２）のアミノ酸配列を示す。 図６はＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）］−Ｄ−ＧｌｃＮａｃα （１，３）−フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＶ）（番号を付記した上 のヌクレオチド鎖）をコードするＤＮＡ配列（配列認識番号１０）とその対応す るタンパク配列（ＦｕｃＴＶ）（配列認識番号１１）を示し、合わせてルイス式 血液型におけるフコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ）（番号付記の ない下の配列）のＤＮＡ配列も示す。ルイスのフコシルトランスフェラーゼとの アミノ酸の違いをルイスＤＮＡ配列（配列認識番号１２）の下方にルイスのアミ ノ酸を併記して示す。フコシルトランスフェラーゼのトランスメンブラン領域を 下線で示す。 図７はｐＣＤＮＡｌ−α（１，３）Ｆｕｃ−ＴＶＩ（配列認識番号１３）にお けるゲノムＤＮＡインサートのコード部のＤＮＡ配列、および当該遺伝子の５’ および３’領域の一部を示す。ｐＣＤＮＡｌ−α（１，３）Ｆｕｃ−ＴＶＩ（こ れをα（１，３）ＦＴ ＤＮＡと標記する）におけるゲノムＤＮＡ断片によって コードされたＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）］−Ｄ−ＧｌｃＮａ ｃα（１，３）−フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＶＩ）とルイス式血 液型におけるフコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ）（これをルイス ＤＮＡと標記する）（配列認識番号１２）のＤＮＡ配列の比較も図７中に示す。 ＤＮＡ配列の確認位置は、同じ位置における同じヌクレオチド間に縦線（｜）で 示す。また、配列が不明のところは（．）で示す。 得られたタンパク配列Ｆｕｃ−ＴＶＩは、アルファベット一文字のコードでα （１，３）ＦＴ ＡＡとして標記し、そのＤＮＡ配列（配列認識番号１４）の上 方に示す。 図８は、異なるα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ遺伝子発現ベクター またはコントロールベクターでトランスフェクトされ、細胞表面のオリゴ糖決定 基に対するモノクローナル抗体を用いた分析に供されたＣＯＳ−１細胞のフロー サイトメトリーの結果を示す棒グラフである。ＣＯＳ−１細胞はプラスミドｐＣ ＤＭ７（ｐＣＤＭ７）、プラスミドｐＣＤＮＡＩ（ｐＣＤＮＡＩ）、図１に記載 したα（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼ（ルイスのフコシルトラ ンスフェラーゼ、Ｆｕｃ−ＴＩＩＩとしても知られている。配列認識番号２）を コードするＤＮＡ配列を含有するｐＣＤＭ７、または図４に記載したα（１，３ ）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＶ、配列認識番号８）、図６に記 載したα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＶ、配列認識番号 １１）あるいは図７に記載したα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕ ｃ−ＴＶ、配列認識番号１４）をコードするＤＮＡ配列を含有するｐＣＤＮＡＩ のいずれかでトランスフェクトした。トランスフェクトしてから三日後に細胞を 収穫し、対Ｈ（抗Ｈ）、対ルイスｘ（抗Ｌｅｘ）、対シアリルルイスｘ（抗ｓＬ ｅｘ）、対ルイスａ（抗Ｌｅａ）または対シアリルルイスａ（ｓＬｅａ）の各オ リゴ糖決定基に対するモノクローナル抗体（図中左上部に示す）で染色し、次い でフルオレセインと結合した第二抗体で染色した。その後、細胞をフローサイト メトリーで分析した。各トランスフェクト体集団（細胞の略２５−３０％がトラ ン スフェクトされ陽性の細胞表面マーカーを発現した）における抗原陽性細胞の平 均蛍光強度を棒グラフに示す。これらの分析の方法の詳細はローら、Ｊ．Ｂｉｏ ｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９１）２６６：１７４６７−１７４７７；ウェストンら、 Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９２）２６７：４１５２−４１６０；ローら、 Ｃｅｌｌ（１９９０）６３：４７５−４８４；およびエルンストら、Ｊ．Ｂｉｏ ｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６４：３４３６−３４４７）に記載されている。発明の最良の実施態様 一般に本発明は、細胞の翻訳後の特性を利用して細胞から遺伝子および／また はｃＤＮＡを単離する方法を提供する。この遺伝子および／またはｃＤＮＡが単 離される細胞は、単細胞あるいは多細胞組織体から得られる細胞のどちらでもよ い。 本発明においては、ある細胞の翻訳後の特性はその細胞がタンパクや脂質を酵 素的方法によって修飾する能力、すなわち一以上の単糖類をこのタンパクや脂質 に共有結合的に結合することによって修飾する能力、をもって定義されるかある いはタンパクや脂質分子からそのような置換基を特異的に除去する酵素的方法に よって改変する能力をもって定義する。 一実施例においては、本発明方法は以下の４つの基本ステップを包含する： （ｉ）関心の対象である翻訳後の特性−すなわちある特定の膜結合オリゴ糖や多 糖類（糖タンパクや糖脂質）、溶解性オリゴ糖や多糖、またはある特定の酵素活 性（下記参照）などの特性−を有する真核細胞（哺乳類の細胞など）を遺伝子供 与体として用いるために同定し； （ｉｉ）ドナー真核細胞（哺乳類の細胞など）の遺伝子材料からｃＤＮＡまたは ゲノムＤＮＡの遺伝子ライブラリーを作製し； （ｉｉｉ）遺伝子導入のためのレシピエントとして適切な特定の真核宿主を同定 し、この真核宿主細胞（哺乳類細胞など）をこの遺伝子ライブラリーで形質転換 し；さらに （ｉｖ）形質転換された宿主細胞をスクリーニングし、関心の対象の翻訳後特性 を有する宿主細胞を検出する。 上記のようにして翻訳後の特性を得るに至った宿主細胞は、関心の対象である 翻訳後の特性に関連する遺伝子情報を有する。以下に既述する技法を用いてこの 遺伝子情報（遺伝子）を形質転換された宿主細胞から検索し、アクセルら（米国 特許第４６３４６６５号）やギルバートら（米国特許第４４１１９９４号）の標 準法を利用してこの翻訳後特性を与えることを特徴とする大量の遺伝子産物、即 ちグリコシルトランスフェラーゼ、を産生することができる。 上記のステップ（ｉ）においてドナーの真核細胞（哺乳類細胞など）は、細胞 抽出液中における特定の酵素活性の検出や、その細胞の、膜に結合したあるいは 溶解性のオリゴ糖または多糖の検出に基づいて選択される。 このように、一実施例においては、細胞抽出液中に検出された酵素活性は翻訳 後にタンパク、脂質、またはオリゴ糖をグリコシル化する、あるいはグリコシル 基によって修飾する、動物酵素に起因し得る酵素活性であることができる。この 酵素活性は、これらの酵素のいずれかに対して特異的な基質を用いて検出できる 。そのような基質は公知である。 他の実施態様では、上記のステップ（ｉ）において、細胞を選択するにあたり 、特定の細胞性の膜結合オリゴ糖および／または多糖の検出に基づいてこれを行 うことができる。 また他の実施態様では、上記のステップ（ｉ）における細胞の選択は、細胞抽 出物中の溶解性オリゴ糖もしくは多糖または細胞から溶解放出されたオリゴ糖も しくは多糖の存在に基づいてこれを行うことができる。 本発明は、遺伝子産物についてのアミノ酸配列情報なしに、またその遺伝子産 物に特異的な抗体を入手する必要なしに組織体から遺伝子を単離する新規な遺伝 子導入方法を提供する。例えば、もしある特定の酵素をコードする遺伝子を探索 するときには、一連の細胞株培養物や培養組織を公知の標準法でスクリーニング し、特定の酵素活性（関心の対象である酵素に対応し、よってその細胞は探索し ている酵素の遺伝子を含有するかまたは発現する）をその細胞や組織の抽出物中 で検出することによって関心の対象である発現可能な遺伝子を含有する一以上の 細胞株や組織を同定する。もしその細胞におけるオリゴ糖や多糖の膜成分が関心 の対象であるなら、そのような膜特性を有する細胞株や組織を単離する。またも し溶解性オリゴ糖や多糖が関心の対象であるなら、そのものの抽出物中で検出可 能なオリゴ糖や多糖を有する細胞株や組織を単離する。 一旦そのような細胞株や組織が同定されたら、この単離された細胞に基づいて 遺伝子ライブラリーが製作される。この遺伝子ライブラリーはｃＤＮＡまたはゲ ノムＤＮＡである。好ましい実施例においては、もし単離された細胞がある特定 の試薬に接触することで関心の対象である翻訳後の特性が高められやすい性質を 有している場合には、そのような試薬を用いることでこの細胞中のｍＲＮＡ信号 を得ることができ、および／または、遺伝子自身を得ることができる。この遺伝 子は、その特定の遺伝子あるいは増幅された遺伝子セグメントに対応する増幅さ れたｍＲＮＡコピーを産し、最終的にｃＤＮＡコピーを産する。 そうでない場合にはｃＤＮＡ遺伝子ライブラリーとゲノムＤＮＡ遺伝子ライブラ リーの両者を公知の方法によって得ることができる。一旦遺伝子ライブラリーが 得られると、これを用いて公知方法（例えばカルシウムリン酸塩沈降法、リポゾ ームトランスフェクション、ＤＥＡＥデキストラントランスフェクション、マイ クロインジェクションなど）により宿主細胞を形質転換する。 本発明において有用な宿主細胞は好ましくはレクチンまたは抗体による希望の 翻訳後特性の検出に感受性が高いものである。すなわち形質転換された宿主細胞 における、膜結合オリゴ糖や膜結合多糖、糖タンパクまたは糖脂質のレクチンや 抗体を用いた検出に感受性が高いものである。しかしながら、そのようなレクチ ンや抗体の検出に対して感受性が高くない宿主細胞のスクリーニングも本発明に 従って酵素活性をスクリーニングすることによって行うことができる。 （Ａ）宿主細胞（例えば哺乳類細胞）は、酵素（グリコシルトランスフェラーゼ ）の触媒機能を発揮させかつ保存するために、真核細胞であるべきである。（Ｂ ）宿主細胞は希望するものに類似の、あるいは同族の産生物のグリコシルトラン スフェラーゼ活性を顕著なレベルで発現してはならない。グリコシルトランスフ ェラーゼ関連遺伝子では、宿主細胞の形質転換が成功裏に行われたかどうかは細 胞抽出液中の対応する酵素活性を検出することで決定される。（Ｃ）他の特性と して、宿主細胞は適切な糖ヌクレオチド基質を合成することができ、これをゴル ジ体へ輸送するべきである（ゴルジ体にはグリコシルトランスフエラーゼ触媒領 域 が存在し機能している）。実質的にすべての野性型の動物細胞がこの機能を有し ている。（Ｄ）宿主細胞は希望するグリコシルトランスフェラーゼが要求する適 切な受容体基質（オリゴ糖、脂質またはタンパク）を合成する能力を有するべき であり、細胞の構造が細胞表面上に表れているかまたは細胞環境／媒体中へとそ の構造を放出するべきである。（Ｅ）宿主細胞は希望するグリコシルトランスフ ェラーゼをコードするかさもなくば希望するグリコシルトランスフェラーゼの発 現を決定するトランスフェクトされた配列の発現を許すものであるかまたはその 発現を提供するものであるべきである。これは公知技術による真核（哺乳類など ）から真核（哺乳類など）へのゲノムＤＮＡの導入やｃＤＮＡ発現系に対して選 択されたベクター系に固有のものである。（Ｆ）宿主細胞は関連するグリコシル トランスフェラーゼをコードするかさもなくばこれの発現を決定するトランスフ ェクトされた配列の奪取を許すものであるべきである。 野性型の真核細胞（哺乳類細胞など）は一般にこれらの性質を有している。上 記の（Ｂ）や（Ｄ）の条件を満たさない特定の野性型の細胞が関心の対象であっ た場合、これを標準法によって突然変異させこれらの性質のいずれかを有する突 然変異細胞を得る。またもし酵素法に基づいた選択を行う場合には上述の（Ｃ） と（Ｄ）の条件は不要である。 一旦宿主細胞が形質転換されたら、集団はスクリーニングされ、関心の対象で ある遺伝子材料を含有する宿主細胞を検出する。これは宿主細胞が関心の対象と なっている翻訳後特性を有するかどうかを調べることによって達成される。言い 換えると形質転換された宿主細胞の抽出物中の酵素活性を検出することによって 、あるいは細胞上の膜結合性オリゴ糖や多糖を検出することによって、またある いは細胞の抽出物ないしは細胞の分泌物中の溶解性オリゴ糖や多糖を検出するこ とによって達成される。陽性の結果となった宿主細胞を単離し、関心の対象であ る遺伝子をこれらの形質転換された細胞から検索する。 もし宿主細胞がゲノムＤＮＡトランスフェクションによって形質転換されてい るならば、遺伝子奪取（gene rescue）を次のようにして行うことができる。 （ａ）種に特異的な繰り返し配列でトランスフェクトされたゲノム配列を標識化 することによる、ハイブリッド化による分子クローニング；または （ｂ）トランスフェクトされたゲノム配列の、マーカー配列に対する試験管内ま たは生体内連結による標識化。 もし宿主細胞を形質転換するのにｃＤＮＡが用いられれば、遺伝子／ｃＤＮＡ 奪取は次のようにして行うことができる。 （ａ）Ｈｉｒｔの手順によるエピソーム奪取、または （ｂ）プラスミド標識による組み込みコピー奪取。 遺伝子奪取に関する詳細を以下の実施例に記載する。 適切なドナーと宿主細胞としては以下のものが挙げられる。 （Ｉ）ヒト血液型Ｈα（１，２）フコシルトランスフェラーゼー（エルンストら 、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：３４３６−３４４７、１９８９；ラジャン ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：１１１５８−１１１６７、１９８９；ラ ーセンら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８７：６６７４− ６６７８、１９９０）。 Ａ）Ｌ細胞宿主−マウスの種 Ｂ）α（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を発現しない。またＦｕｃα （１，２）Ｇａｌ構造を細胞表面に発現しない。 Ｃ）ＧＤＰ−フコース、すなわちα（１，２）フコシルトランスフェラーゼの糖 ヌクレオチド基質を合成する。 Ｄ）当該酵素のアクセプター基質であるＧａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ分 子を合成し、それらを細胞表面で発現する。 Ｅ）マウス細胞はヒト遺伝子を発現できることが知られている。 Ｆ）マウス細胞はヒトＡｌｕ繰り返しＤＮＡ配列に類似したＤＮＡ配列を含まな い。これらのＡｌｕ配列（種に特異的な繰り返し配列）を用いてマウスのトラン スフェクト細胞株からヒト遺伝子を同定しかつこれを最終的に奪取する。 （ＩＩ）マウスα（１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼ−ラーセンら、Ｐ ｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８６：８２２７−８２３１、１ ９８９）。 Ａ）ＳＶ４０ウイルスのラージＴ抗原を発現する腎細胞 − ＣＯＳ−１細胞株 、サルの種。 Ｂ）α（１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼ活性を発現しない。またＧａ ｌα（１，３）Ｇａｌ構造を細胞表面に発現しない。 Ｃ）α（１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼの基質であるＵＤＰ−ガラク トースを合成する。 Ｄ）当該酵素のアクセプター基質であるＧａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ分 子を合成し、それらを細胞表面で発現する。 Ｅ）ｃＤＮＡライブラリーのためのｃＤＮＡ／ＣＯＳ−１細胞発現系 − 標準 法。 Ｆ）ｃＤＮＡライブラリーのためのｃＤＮＡ／ＣＯＳ−１細胞発現系 − 標準 法。 （ＩＩＩ）ヒト・ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラ ーゼ−ジェー・エフ・クロウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｄｅｖｅ ｌｏｐｍｅｎｔ、ｖｏｌ．４、（１９９０）、ページ１２８８−１３０３。 Ａ）ＳＶ４０ラージＴ抗原を発現する腎細胞−ＣＯＳ−１細胞株、サル。 Ｂ）α（１，３）フコシルトランスフェラーゼ活性を顕著なレベルで発現しない 。また細胞表面のＧａｌβ（１，４）［Ｆｕｃα（１，３）］ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ 構造を発現しない。 Ｃ）α（１，３）フコシルトランスフェラーゼの基質であるＧＤＰ−フコースを 合成する。 Ｄ）当該酵素のアクセプター基質であるＧａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ分 子を合成し、それらを細胞表面で発現する。 Ｅ）ｃＤＮＡライブラリーのためのＣＤＭ ７／ＣＯＳ−１細胞発現系 − 標 準法。 Ｆ）ｃＤＮＡライブラリーのためのＣＤＭ ７／ＣＯＳ−１細胞発現系 − 標 準法。 この遺伝子を選択する最後の段階においては、上記ＣとＤの条件は不要となる 。なぜならｃＤＮＡクローンのプールをＣＯＳ−１細胞にトランスフェクトし、 次いでトランスフェクトされた細胞から調製された抽出物のα（１，３）フコシ ルトランスフェラーゼ活性を直接測定することによってｃＤＮＡクローンのプー ル はスクリーニングされるからである。 本発明の実施例の一態様によれは、本発明はグリコシルトランスフェラーゼを コードする遺伝子を単離する方法およびその方法によって単離された遺伝子を提 供するものである。このグリコシルトランスフェラーゼとしては、フコシルトラ ンスフェラーゼ、シアリルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミニル トランスフェラーゼ、ガラクトシルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルガラクト サミニルトランスフェラーゼ、マンノシルトランスフェラーゼ、スルフォトラン スフェラーゼ、グリコシルトランスフェラーゼ、アセチラーゼ、あるいは他のグ リコシルトランスフェラーゼが挙げられる。 各グリコシルトランスフェラーゼ は酵素によって伝達される異なったタイプの糖ととりわけ会合することが知られ ている（バイヤーら、「グリコシルトランスフェラーゼ、オリゴ糖構造の評価に おける利用、および構造−機能の関係」、Ａｄｖ．Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、（１ ９８２）５２：２３−１７５ − 本明細書の一部を構成するものとしてここに 援用する）。このように、細胞中あるいは細胞上に存在するオリゴ糖、糖タンパ クまたは糖脂質について見いだされた特定の糖結合は特定のグリコシルトランス フェラーゼと会合する。そのような結合を同定するためには色々な方法が公知で あり（上記バイヤーらの文献を参照）、本発明の思想に沿ってそれらの方法を適 用し、対応するグリコシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子を単離するこ とができる。 本発明によって提供されるグリコシルトランスフェラーゼの一つであるシアリ ルトランスフェラーゼは以下のシアリン酸結合と会合する：（１）Ｓｉａα２→ ６Ｇａｌ；（２）Ｓｉａα２→３Ｇａｌ；（３）Ｓｉａα２→６ＧａｌＮａｃ； （４）Ｓｉａα２→６ＧｌｃＮＡｃ；（５）Ｓｉａα２→８Ｓｉａ；（６）Ｓｉ ａα２→４Ｇａｌ；および（７）Ｓｉａα２→４ＧｌｃＮＡｃ。 本発明によって提供されるグリコシルトランスフェラーゼの一つであるフコシ ルトランスフェラーゼは以下の結合と会合する：（１）Ｆｕｃα（１→２）Ｇａ ｌβ−；（２）Ｇａｌβ（１→３）［Ｆｕｃα（１→４）］ＧｌｃＮＡｃβ−； （３）Ｇａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃβ−；（４）Ｇ ａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→３）］Ｇｌｃ；（５）−ＧｌｃＮＡｃβ（１ →４）［Ｆｕｃα（１→６）］ＧｌｃＮＡｃβ１→Ａｓｎ；（６）−ＧｌｃＮＡ ｃβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→３）ＧｌｃＮＡｃβ１→Ａｓｎ；（７）Ｆｕｃ α（１→６）Ｇａｌβ→；（８）Ｆｕｃα（１→３）Ｇａｌβ−；（ａ）Ｇｌｃ β１→３Ｆｕｃα１→Ｏ−ＴｈｒおよびＦｕｃα１→Ｏ−Ｔｈｒ／Ｓｅｒ；（１ ０）Ｆｕｃα１→セラミド；および（１１）Ｆｕｃα１→３Ｆｕｃ。 また本発明によって提供されるＮ−アセチルグリコーサミニルトランスフェラ ーゼは以下の結合と会合する：（１）ＧｌｃＮＡｃβ１→４ＧｌｃＮＡｃ；（２ ）ＧｌｃＮＡｃβ１→Ａｓｎ；（３）ＧｌｃＮＡｃβ１→２Ｍａｎ；（４）Ｇｌ ｃＮＡｃβ１→４Ｍａｎ；（５）ＧｌｃＮＡｃβ１→６Ｍａｎ；（６）ＧｌｃＮ ＡＣβ１→３Ｍａｎ；（７）ＧｌｃＮＡｃα１→３Ｍａｎ；（８）ＧｌｃＮＡｃ β１→３Ｇａｌ；（９）ＧｌｃＮＡｃβ１→４Ｇａｌ；（１０）ＧｌｃＮＡｃβ １→６Ｇａｌ；（１１）ＧｌｃＮＡｃα１→４Ｇａｌ；（１２）ＧｌｃＮＡｃα １→４ＧｌｃＮａｃ；（１３）ＧｌｃＮＡｃβ１→６ＧａｌＮＡｃ；（１４）Ｇ ｌｃＮＡｃβ１→３ＧａｌＮＡｃ；（１５）ＧｌｃＮＡｃβ１→４ＧｌｃＵＡ； （１６）ＧｌｃＮＡｃα１→４ＧｌｃＵＡ；（１７）ＧｌｃＮＡｃα１→４Ｉｄ ＵＡ。 さらに本発明によって提供されるガラクトシルトランスフェラーゼは以下の結 合と会合する：（１）Ｇａｌβ１→４Ｇｌｃ；（２）Ｇａｌβ１→４ＧｌｃＮＡ ｃ；（３）Ｇａｌβ１→３ＧｌｃＮＡｃ；（４）Ｇａｌβ１→６ＧｌｃＮＡｃ； （５）Ｇａｌβ１→３ＧａｌＮＡｃ；（６）Ｇａｌβ１→６ＧａｌＮＡｃ；（７ ）Ｇａｌα１→３ＧａｌＮＡｃ；（８）Ｇａｌα１→３Ｇａｌ；（９）Ｇａｌα １→４Ｇａｌ（１０）Ｇａｌβ１→３Ｇａｌ；（１１）Ｇａｌβ１→４Ｇａｌ（ １２）Ｇａｌβ１→６Ｇａｌ；（１３）Ｇａｌβ１→４キシロース；（１４）Ｇ ａｌβ１→１’スフィンゴシン；（１５）Ｇａｌβ１→１’−セラミド（１６） Ｇａｌβ１→３ジグリセリド；（１７）Ｇａｌβ１→Ｏ−ヒドロキシリジン；お よび（１８）Ｇａｌ−Ｓ−システイン。さらに本発明によって提供されるＮ−ア セチルガラクトーサミニルトランスフェラーゼは以下の結合と会合する；（１） （ＧａｌＮＡｃα１→３）［（Ｆｕｃα１→２）］Ｇａｌβ；（２）ＧａｌＮＡ ｃα１→Ｓｅｒ／Ｔｈｒ；（３）ＧａｌＮＡｃβ１→４Ｇａｌ；（４）ＧａｌＮ Ａｃβ１→３Ｇａｌ；（５）ＧａｌＮＡｃα１→３ＧａｌＮＡｃ；（６）（Ｇａ ｌＮＡｃβ１→４ＧｌｕＵＡβ１→３）_n；（７）（ＧａｌＮＡＣβ１→４１ｄ ＵＡα１→３−）_n；（８）−Ｍａｎβ→ＧａｌＮＡｃ→ＧｌｃＮＡｃ→Ａｓｎ 。 本発明によって提供されるその他のグリコシルトランスフェラーゼは以下の結 合と会合する。 ＧａｌＮＡｃに対して： Ｇａｌβ１−３ＧａｌＮＡｃ Ｇａｌβ１−４ＧａｌＮＡｃ Ｇａｌα１−３ＧａｌＮＡｃ ＧｌｕＮＡｃβ１−３ＧａｌＮＡｃ ＧｌｕＮＡｃβ１−６ＧａｌＮＡｃ ＧｌＮＡｃα１−３ＧａｌＮＡｃ Ｓｉａα２−３ＧａｌＮＡｃ Ｓｉａα２−６ＧａｌＮＡｃ Ｇａｌに対して； Ｇａｌβ１−３Ｇａｌ Ｇａｌα１−３Ｇａｌ Ｆｕｃα１−２Ｇａｌ ＧｌｕＮＡｃβ１−３Ｇａｌ ＧｌｕＮＡｃβ１−４Ｇａｌ ＧｌｕＮＡｃβ１−６Ｇａｌ ＧｌｕＮＡｃα１−４Ｇａｌ ＧａｌＮＡｃα１−３Ｇａｌ ＧａｌＮＡｃβ１−３Ｇａｌ ＧａｌＮＡｃβ１−４Ｇａｌ Ｓｉａα２−３Ｇａｌ Ｓｉａα２−６Ｇａｌ Ｇｌｃに対して： Ｍａｎα１−６Ｇｌｃ Ｍａｎα１−４Ｇｌｃ ＧｌｃＮＡｃに対して： Ｇａｌβ１−４ＧｌｃＮＡｃ Ｇａｌβ１−３ＧｌｃＮＡｃ Ｆｕｃα１−３ＧｌｕＮＡｃ Ｆｕｃα１−４ＧｌｕＮＡｃ Ｇｌｃα１−４ＧｌｃＮＡｃ ＧｌｃＮＡｃα１−４ＧｌｃＮＡｃ Ｓｉａα２−４ＧｌｃＮＡｃ Ｓｉａに対して： Ｓｉａα２−８Ｓｉａ タンパクに対して： ＧａｌＮＡｃα１−Ｏ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒ。 本発明によって提供されるさらに他のグリコシルトランスフェラーゼの例とし ては、以下のものが挙けられる：β１，３ＧｌｃＮＡｃ−β１，３グルクロニル トランスフェラーゼ、グルクロン酸−β１，４−Ｎ−アセチルグルコーサミニル トランスフェラーゼ、アスパラギンＮ−アセチルグルコーサミニルトランスフェ ラーゼ、セリンβ−キシロシルトランスフェラーゼ、キシロースβ１，４−ガラ クトシルトランスフェラーゼ、ガラクトースβ１，３ガラクトシルトランスフェ ラーゼ、ガラクトースβ１，３グルクロニルトランスフェラーゼ、グルクロン酸 β１，４−Ｎ−アセチルガラクトーサミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチル ガラクトーサミンβ１，３グルクロニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルガラ クトーサミン−４−スルフォトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルガラクトーサミ ン−６−スルフォトランスフェラーゼ、アスパラギン−βＮ−アセチルグルコー サミニルトランスフェラーゼ、セリン／スレオニン−αＮ−アセチルガラクトー サミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミン−β１，４ガラクト ーサミニルトランスフェラーゼ、ガラクトース−β１，３−Ｎ−アセチルグルコ ーサミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミン−６−スルフォト ランスフェラーゼ、ガラクトース−６−スルフォトランスフェラーゼ、グルク ロン酸−α１，４−Ｎ−アセチルグルコーサミニルトランスフェラーゼ、Ｎ−ア セチルグルコーサミンβ１，４−グルクロニルトランスフェラーゼ、ヘパリン− Ｎ−アセチル−グルコーサミン−Ｎ−アセチルトランスフェラーゼ、ガラクトー ス−１，６−Ｎ−アセチルガラクトシルトランスフェラーゼ、ヘパリン−Ｎ−ア セチルグルコーサミンスルフォトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミ ン−α１，４−グルクロニルエピメラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミン−６− スルフォトランスフェラーゼ、Ｎ−アセチルグルコーサミン−Ｎ−スルフォトラ ンスフェラーゼ、グルクロニル−α１，４−Ｎ−アセチルグルコーサミニルトラ ンスフェラーゼ、イズロニル−２−スルフォトランスフェラーゼ、グルクロニル ーβ１，４−Ｎ−アセチルガラクトーサミニルトランスフェラーゼ、およびＮ− アセチルガラクトーサミン−α１，３−グルクロニルエピメラーゼ。 これらの酵素は以下の結合や結合組織多糖中のオリゴ糖構造と会合する（ロー デン・エル、”結合組織プロテオグリカン類の構造と代謝”、「Ｇｌｙｃ２ｃｏ ｇｒａｔｅｏｐｒｏｔｅｉｎｓとプロテオグリカン類の生化学」、Ｗｍ．レンナ ーズ編、ページ２６７−３７１、プレナム出版、ニューヨーク。これを本明細書 の一部を構成するものとしてここに援用する。特にページ２６９、２７０、２７ １中の表）。 上記のグリコシルトランスフェラーゼ遺伝子および／またはｃＤＮＡは、クロ ーニングされた分子として得ることができるか、あるいは同族で適切な上記の結 合中に現れた翻訳後特性を用い本発明に従って宿主細胞株に伝達され、細胞を単 離する。この単離された細胞から遺伝子またはｃＤＮＡライブラリーが製作され るとともにグリコシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子やｃＤＮＡが単離 される。 マンノシルトランスフェラーゼ類の構成員を包含する付加的な酵素としては、 α（１，２）マンノシルトランスフェラーゼ類、α（１，３）マンノシルトラン スフェラーゼ類、α（１，６）マンノシルトランスフェラーゼ類、およびβ（１ ，４）マンノシルトランスフェラーゼ類が挙げられ、下記に示すようにアスパラ ギンと結合したオリゴ糖中に形成された結合構造と会合する（さらにコーンフェ ルド・エフおよびコーンフェルド・エス（１９８５）「アスパラギン結合性オリ ゴ 糖の組み立て」、Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、５４、ページ６３１− ６６４を参照）。 その他のものとしては、セラミドグルコシルトランスフェラーゼとセラミドガ ラクトシルトランスフェラーゼ、オリゴサッカリルトランスフェラーゼおよびＮ −アセチルニューラミニン酸（シアリン酸）をＯ−アセチル化するＯ−アセチラ ーゼか挙げられる。 略記法 Ｓｉａ；シアリン酸 Ｇａｌ；Ｄ−ガラクトース ＧａｌＮａｃ；Ｄ−Ｎ−アセチルガラクトーサミン Ｇｌｃ；Ｄ−グルコース ＧｌｃＮＡｃ；Ｄ−Ｎ−アセチルグルコーサミン Ｆｕｃ；Ｌ−フコース Ｍａｎ；Ｄ−マンノース ＩｄＵＡ；Ｌ−イズロン酸 ＧｌｃＵＡ；Ｄ−グルクロン酸 Ｘｙｌ；Ｄ−キシロース Ｓｅｒ；セリン Ｔｈｒ；スレオニン Ａｓｎ；アスパラギン 本発明の他の態様においては、本発明は、溶解性または固相のオリゴ糖、多糖 、脂質またはタンパクを得るための方法を提供する。本発明方法は、オリゴ糖ま たは多糖の前駆体を融合タンパク質に接触させることを包含する。用いられる酵 素は本発明によって提供されるグリコシル化されていないグリコシルトランスフ ェラーゼまたは融合タンパクであって、これは二つの成分を包含する：第一の成 分は少なくともグリコシルトランスフェラーゼにおいて触媒として機能する領域 （下記参照）であり、第二の成分は固相支持体に付着したタンパク質スペーサー かあるいは親和性リガンドを包含するタンパク成分である。本発明の酵素は、上 記前駆体を希望するオリゴ糖、多糖、糖脂質または糖タンパクへと転換すること によってこれらを得るものである。 本発明のめざましい利点は、一態様におい ては、グリコシル化されていないグリコシルトランスフェラーゼを提供できるこ とである。全部ではないにしても多くの天然に見いだされるグリコシルトランス フェラーゼ類は糖タンパクであると一般に考えられている。これらがオリゴ糖／ 多糖前駆体からオリゴ糖や多糖を産生するのに用いられるときには、これらの酵 素自身がグリコシル化される可能性がある。この（望ましくない）活性によって 出発物質が消費され、酵素活性不足をもたらす。本発明のグリコシル化されてい ないグリコシルトランスフェラーゼはこのような目立った欠点を有しない。それ らがグリコシル化されていない酵素として得られる理由は、関連するグリコシル 化メカニズムを欠いた微生物において産生された産物であるためかまたはグリコ シルトランスフェラーゼのグリコシル化が阻害されている動物細胞中において得 られるものであるためである。動物細胞中におけるグリコシルトランスフェラー ゼのグリコシル化の阻害は、単離されたグリコシルトランスフェラーゼ遺伝子を 公知の技法によって突然変異させ、グリコシルトランスフェラーゼ上のグリコシ ル化部位を除去することによって達成される。 本発明のグリコシル化されていないグリコシルトランスフェラーゼは、少なく ともグリコシルトランスフェラーゼの触媒として機能する領域に対応するものか ら、グリコシルトランスフェラーゼをコードする遺伝子全体に対応するグリコシ ル化されていないタンパクに至る、グリコシル化されていないタンパクであるこ とができる。 他の態様においては、本発明は上記の二つの成分を包含する融合タンパクを提 供する：第一の成分は少なくともグリコシルトランスフェラーゼにおいて触媒と して機能する領域であり、第二の成分は固相支持体に付着したタンパク質スペー サーかあるいは親和性リガンドを包含するタンパク成分である。 グリコシルトランスフェラーゼはこの酵素をコードする遺伝子の三つの異なっ た領域に各々対応する三つのドメインを有することが知られている。遺伝子の３ ’末端に見いだされる遺伝子領域は触媒として働くドメインをコードすることが 知られている（ロー、「細胞生物学セミナー」（１９９１）２：２８９−３０７ 。これを本明細書の一部を構成するものとしてここに援用する）。本発明の融合 タンパクは少なくとも触媒として作用するドメインを含有するものであるか、全 タンパク配列を包含するものであってよい。このタンパクは公知の方法により第 二の成分に融合されて得られる。 第二の成分は、触媒機能ドメインを固相支持体に固定するか、または第二の成 分上の特異的親和リガンドの存在を利用してこれを回収することによって使用に 供することができる。第二の成分としてはＳｔａｐｈ．プロテインＡのＩｇＧ結 合ドメインを用いることができる。そのような融合タンパクはＩｇＧ−セファロ ースのようなＩｇＧを含有する固相支持体に結合することができる。多くの他の 代替的タンパクがグリコシルトランスフェラーゼの触媒活性セグメントに融合で き、固相支持体への結合を達成することができる。そのようなタンパクおよびそ れらの各々のマトリックス関連レセプターとしては、ストレプトアビジン−ビオ チン、ＩｇＧ重鎖−プロテインＡ、および実質的に他の公知タンパクやペプチド セグメントのいずれかであってそれに対して抗体が存在するかまたは抗体が調製 できるものが挙げられる。 他の実施例においては、本発明は、リコンビナント糖タンパク、糖脂質、また は遊離オリゴ糖を、例えば本発明に従って得られる酵素または本発明に従って得 られる組織体を用いて産生する方法を提供する。例えば、特定の翻訳後グリコシ ル化能を以下のステップによって宿主細胞に与えることができる：まず希望の遺 伝子またはｃＤＮＡを単離し、標準的な形質転換またはトランスフェクション技 法によって細胞中に導入し、トランスフェクトされたクローン化遺伝子産物の発 現が可能な組織体を得る；宿主細胞はトランスフェクトされた遺伝子によって決 定される上記翻訳後能力を獲得するが、細胞はトランスフェクト前にはこの能力 を現さない。あるいは上記の手法を行うにあたり、翻訳後の能力を決定する単一 のクローン化遺伝子を用いる代わりに、クローン化されていない遺伝子セグメン ト（例えば高分子量のゲノムＤＮＡ）またはクローン化されたゲノムＤＮＡ断片 やｃＤＮＡ分子のライブラリーを用いることもできる。このようにして形質移入 された細胞に対して選択を行うが、選択は新たに獲得された希望の翻訳後の能力 を検出することによってなされ、この能力を発現するクローン細胞株系を単離す る。 他の態様においては、本発明によって得られる酵素は細胞表面のオリゴ糖分子 を修飾する試験管内反応において利用することができる。例えば、本発明者は血 液型ＡのＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼとその基質であるＵＤＰ−Ｇ ａｌＮＡｃを精製し、試験管内でマウス細胞上の血液型Ｈのオリゴ糖決定基から 血液型Ａ決定基へと変換した（エルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９ ８９）２６４：３４３６−３４４７）。これと同様な手続きを本発明によって得 られる酵素単独、あるいは他の利用可能なグリコシルトランスフェラーゼやグリ コハイドロラーゼに適用し、死んだあるいは生きている機能的な真核または原核 細胞の細胞表面のオリゴ糖構造に希望の性質を持たせるように修飾することがで きる。 付加的な特定の翻訳後のグリコシル化能を有する上記のような宿主細胞に、公 知のリコンビナント技法を適用して、糖タンパク、糖脂質または遊離オリゴ糖を 得ることができる。この細胞は翻訳後のグリコシル化能を有する特徴とともにリ コンビナント糖タンパク、糖脂質または遊離オリゴ糖を産生できるという特徴を 有している。 これらの後半に述べた実施例は、例えば新規なオリゴ糖分子を特殊な哺乳類細 胞（例えば特殊なまたは一般的な免疫機能を有する細胞）の表面に付加するため に利用することができ、得られる付加物は体内の特定の組織やその他の部位を標 的として治療や診断の用途に使用できる。特にそのような修飾された細胞はさら に、修飾された細胞の表面に付加された特定のオリゴ糖構造を特異的に認識する レクチン様の細胞接着分子を発現する組織を標的とすることができる。 他の実施態様では、本発明は細胞内のグリコシル化活性を阻止する方法を提供 する。この実施例においては、特定の翻訳後グリコシル化能が宿主細胞から除か れる。この結果を得るには、（ｉ）遺伝子を不活化し、（ｉｉ）それ自身かその 近傍に一以上の遺伝子選択的マーカーを挿入する試験管内修飾を行った後で、標 準の形質転換または形質導入技法によって特定のクローン試薬を細胞に導入すれ ばよい。この修飾された不活性遺伝子は、標準法によって組換えを行うことによ り、効果的に内因性の機能性遺伝子と置き代わることができる。 もし必要ならば、このプロセスを２回以上行って２倍体（またはより高次の倍 体）の組織体において野性型遺伝子の両者を不活性化することができる。最終的 には、（二つの）非機能的遺伝子（今はこの遺伝子は除去すべき翻訳後の能力を 決定することができない）を有する細胞株が得られる。あるいは、本発明によっ て得られる遺伝子は、標準技法に準拠してアンチセンス定位に発現される状態で 形質転換または形質移入を行うことによって細胞に導入される。この結果、標準 のアンチセンス発現方法によって、それと同族の野性型の遺伝子の発現が除かれ る。細胞を、本発明によって得られる遺伝子に由来する配列を有するアンチセン ス合成オリゴ糖で処理することにより、標準法で同族の野性型の遺伝子の発現を 除去することができる。 あるいは、本発明によって得られた遺伝子を形質転換または形質移入によって 、好ましくない発現が新しい翻訳後修飾の発現によって除かれるように細胞中に 導入する。この手法は、共通のアクセプター基質上のいくつかのグリコシルトラ ンスフェラーゼの活性が互いに排他的であること、即ちα（１，２）フコシル化 はα（２，３）シアリル化を防ぐとともにこの逆も成り立ち、またα（１，３） ガラクトシル化はα（２，３）シアリル化を防ぐとともにこの逆も成り立つこと 、が観察から得られた。 細胞の翻訳後の能力（グリコシル化を含む）の付加あるいは除去によって、例 えば、診断または治療に用いうる脂質、タンパク、または遊離オリゴ糖を産生す るために用いられる宿主細胞株が得られる。グリコシル化などを含むそれらの物 質の特異的翻訳後修飾はそれらの物質の機能に影響を及ぼす。例えば、組織プラ スミノーゲンアクチベーターやエリスロポエチンなどのリコンビナントタンパク は、通常糖タンパクとして存在する。もしこれらの糖タンパク上に特定のオリゴ 糖が存在しそれらの生合成、血清中半減期、レセプターの相互作用または他の機 能について有益な効果をもたらすことが示されれば、本発明が提供する試薬と方 法を用いて特異的で機能的に最適なオリゴ糖構造を有するリコンビナントタンパ クを産する宿主を構築することができる。 この態様は、例えば特定のオリゴ糖分子を特定の種類の哺乳類細胞（例えば特 定のあるいは一般的な免疫機能）の表面から除去してそれらが生体の健常で生理 的な組織やその他の部位を標的とすることを阻止し、他の生理的でない標的に向 かうようにして治療や診断のために用いることができる。特にそのような修飾さ れた細胞は、それらが通常作用する組織から、他の種類の細胞に対して特異性を 有するレクチン様の細胞接着分子を発現する組織へと逸らすことができる。 他の態様においては、本発明は従来得ることができなかった量の遺伝子産物を 提供する。これらの遺伝子産物、即ちグリコシルトランスフェラーゼという酵素 は、酵素リアクターにおいて用いることができ、関心のある糖タンパク、糖脂質 、オリゴ糖または多糖を産することができる。本態様においては、クローングリ コシルトランスフェラーゼ遺伝子セグメントを標準のリコンビナントタンパク発 現系において使用して、その遺伝子でコードされた酵素を大量に生成することが できる。これらの酵素は大規模試験管内方式によるオリゴ糖や糖脂質の合成、あ るいはタンパクや糖タンパクのグリコシル修飾のために用いることができる。 そのような企図におけるアクセプターオリゴ糖は、以下のいずれかによっても たらされる。 （ａ）天然由来のあるいは化学合成による市販のモノ−、ジ−、または高次の糖 類； （ｂ）本プロセスによって生成されたその他のリコンビナント酵素によって試験 管内で産生されるジ−または高次のオリゴ糖；または （ｃ）翻訳後の能力が上記のエンジニアリング手法で得られたものであるような 細胞株から産生されるかあるいは精製されたジ−または高次のオリゴ糖。 この態様には、試験管内バイオリアクターを使用する二つの方法がある。その 一つにおいては、オリゴ糖アクセプターとヌクレオチド糖基質を、触媒活性を有 するグリコシルトランスフェラーゼに結合した固相マトリックスを含有するリア クターへと導入する。このマトリックスは上記の融合タンパクを用いて得ること ができるものであるが、この融合タンパクはグリコシルトランスフェラーゼの溶 解性セグメントとして触媒活性成分を含み、またこの成分は固相マトリックスへ と当該融合タンパクを結合するのに用いられるタンパクセグメントと融合されて いる。そのような融合タンパクの具体例としては、Ｓｔａｐｈ．プロテインＡの ＩｇＧ結合ドメインのセグメントに融合していて触媒活性を有するマウスα（１ ，３）ガラクトシルトランスフェラーゼのセグメントが挙げられる（ラーセンら 、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）８６、８２２７−８２３ １、１９８９）。 アクセプターおよびヌクレオチド糖基質を、そのようなリアクター中、適切な 温度、ｐＨ、およびその他の公知の条件下でオリゴ糖または多糖産物の希望する 量が得られるまで充分な時間をかけてインキュベートする。産生物は次いで公知 の方法により収穫される。 変法においては、ヌクレオチド糖基質と溶解性グリコシルトランスフェラーゼ の触媒ドメイン含有融合タンパクを、固相支持体に共有結合的に結合した（即ち 固相化された）オリゴ糖アクセプター分子を含有するリアクターに導入する。結 合は、オリゴ糖アクセプター分子の酵素的に修飾される部分を反応媒体として用 いるように、公知方法によって行われる。 本発明は、産生するタンパクの翻訳後修飾に関して特定の能力を有する動物細 胞系を生成する方法、並びに真核性由来の（例えば哺乳類などの動物の）タンパ クの翻訳後修飾をもたらす酵素の発現や生合成を決定する、クローン化された遺 伝子、クローン化された相補的ｃＤＮＡおよびそれらのｍＲＮＡを単離する方法 を提供する。本発明は特に真核性由来の（例えば哺乳類などの動物の）糖結合物 を構築する翻訳後のプロセスを提供するにあたってこれらの遺伝子のタンパク産 物を最初に単離する必要がないという特徴を有するものであるが、これに限定さ れない。本発明は、翻訳後の段階においてグリコシル化や硫酸化、さらにはリン 酸化、メチル化、脂肪酸アシル化およびグリコシル修飾（グリコシルハイドロラ ーゼ）によってタンパクを修飾する真核性酵素（例えば哺乳類などの動物のもの ）をコードするクローン化された遺伝子、クローン化された相補的ｃＤＮＡおよ びそれらのｍＲＮＡを包含する。 本発明の用途としては次のものを挙げることができる： （ｉ）特定の翻訳後能力を有する動物細胞の構築（診断や治療の用途）。 本発明方法は、特定の翻訳後修飾に依存してその有用性や効能が変わってしま う、診断や治療に用いる物質の産生のために適切な、宿主としての動物細胞株を 構築するために用いることができるものである。例えば、多くの治療用途に用い られるタンパク、ペプチド、リコンビナント等の生物学的効果は、それらに共有 的に結合しているオリゴ糖構造に決定的に依存していることがよくある。これら のオリゴの構造は、第一義的には上記治療用途の産物を製造するために用いられ る細胞中に見いだされる酵素であるグリコシルトランスフェラーゼ類の数と種類 に従って定まる。 動物細胞とイーストはこのようなグリコシル化反応を起こす能力を有する。し かしながら、すべての動物やイーストがこれらのグリコシルトランスフェラーゼ 酵素の全てを産生するわけではない。つまり、幾つかのオリゴ糖構造はすべての 動物やイーストによっては産生されない。この逆もまた真であり、即ち、酵素産 生細胞は有効な生物学的活性を阻止するオリゴ糖構造を作りだすグリコシルトラ ンスフェラーゼ類を表すものであるかもしれない。本発明は産生細胞中において 、特定のグリコシルトランスフェラーゼの能力を作りだすあるいは取り除くもの であって、これによって細胞が産生する物質の治療的効能を適正なものにするも のである。 このために用いられる従来の方法としては、リコンビナントや天然物を産生す るために最も適切な細胞株を同定する経験的な方法が挙げられる。この方法は一 般に最適なものではない、なぜなら適切な翻訳後修飾能力を有する細胞株は天然 に存在しないかあるいは適切に修飾された産物を多量に産生するために特に適し てはいないからである。また、経験的手法で同定された動物細胞株によって産生 された治療的物質上の好ましくない翻訳後修飾は、化学的手法によりあるいは酵 素的手法により除去されうるとしても、そのようなプロセスは費用がかかるかま たは効率が悪く、さらにはその両者であることもある。 従来の方法と比べた場合の本発明方法の利点としては、特定の翻訳後修飾能力 を有する細胞株を構築する能力が挙げられる。もしこれらの細胞株の構築が適切 になされれば、望ましくない翻訳後修飾を除去するために治療的あるいは診断的 物質を化学的あるいは酵素的に処理することを必要としない。さらに、不適切な 翻訳後修飾能を有するがその他の点では産生細胞として優れたものである細胞株 については、これを修飾してその産生物の正しい翻訳後修飾を達成することがで きる。 この方法により、特定の診断用あるいは治療用の動物細胞産生物の要求にまさ しく適合した翻訳後修飾能を有する動物細胞株を構築することができる。 （ｉｉ）オリゴ糖を酵素的方法によって効率的に合成あるいは産生するための適 切な反応試薬を単離するという用途（例えば酵素リアクターにおいて）。 オリゴ糖は、器官移植の分野において免疫調節反応試薬として治療的目的のた めに用いうるものである。特に、溶解性および固体相のオリゴ糖は、器官のドナ ーとレシピアントの間に主要血液型抗原系が異なることによる不適合性がある場 合には、抗体介在の器官移植拒否反応を阻止したり緩和したりするための治療薬 としての用途を有するであろう。また同様に、溶解性オリゴ糖は、バクテリア性 、ウイルス性、あるいは寄生虫性の病原体を、それらが侵入した動物の組織表面 上の糖複合体受容体へ付着させないように働く治療剤としての用途を有するであ ろう。 さらに、糖複合体は、発生と分化の過程において細胞間ないしは細胞とその環 境との間における調整接着現象に関与している。これらの現象の例としては精子 と卵子の接合が挙げられ、その最初の現象は着床の初期において有精卵が子宮壁 に付着することを仲介するものである。このような観察結果は、一例として、（ 生物学的に「中性」な）オリゴ糖分子を避妊薬として使用する可能性が存在する ことを示すものである。 最近、特定構造のオリゴ糖か化学合成によって（但しこれは非効率的で費用が かさむ）、または天然資源からの単離によって（これは費用がかかり非効率的な 手続きによるものであって、しばしば大量の動植物材料を処理する必要があり、 また希望のオリゴ糖を他の汚染されたオリゴ糖から精製して得る必要があるもの である）産生されている。 本発明は、クローン化されたグリコシルトランスフェラーゼの遺伝子配列を単 離するメカニズムを提供するものであって、これによって大量の精製グリコシル トランスフェラーゼ酵素を経済的に合成できるという特徴を有するものである。 これらの酵素は、その構造体を酵素的に合成するための酵素リアクター（酵素を 溶液中に含有させるか、あるいは固相マトリックス上に固定化する）を構築する ために用いることができる。 この手法は種々の理由から、オリゴ糖の化学合成やその天然資源からの精製に よる手法よりもより効率的なものである。まず第一に、必要な化学物質は酵素基 質のみであり、この殆どは容易に入手でき、あるいは合成できるからである。第 二に、酵素的手法による合成は希望する物質と基質の加水分解によるヌクレオチ ドモノフォスフェートあるいはヌクレオチドジフォスフェートのみを産生するか らである。後者の二つの薬剤は、動物細胞中における上記反応の天然副生物とし て見いだされるものであって、基本的には毒性がなく、得られたオリゴ糖合成産 物から容易に分離できる。 これに対し、化学合成手続きによれば、除去しなければならない多くの副反応 産物を生成するのが普通であり、これらは有毒であることもある。また、天然資 源からのオリゴ糖の精製においては、天然物質中に存在する他の汚染オリゴ糖を 除去しなければならない。 第三の点として、酵素的触媒反応は非常に効率がよいことが挙げられる。基質 から産生物への変換は実質的に完全に達成される。これに対して、上記構造体の 化学合成は多工程からなるものであって、各工程における収率は１００％には程 遠いものであるとともに、現行の化学合成手続きの全体的効率は、酵素による合 成で達成可能な効率に近づくものでない。また、天然物質からのオリゴ糖の精製 は、汚染された、無関係の、および／または望まないオリゴ糖から希望するオリ ゴ糖を分離するのに必要な精製手続きに固有の顕著なロスと、希望するオリゴ糖 の不十分な単離を伴うものである。 合成用途のためのグリコシルトランスフェラーゼ類は動物組織から精製するこ ともできるが、そのような精製はそれ自身では不充分である。なぜならこれらの 酵素は典型的には非常に低量で存在するものであるからである。本発明はこれら の酵素を多量に提供するための二つのメカニズムを提供する。 第一にこれは比較的多量の酵素を産生する動物細胞を構築、選択することによ ってなされる。あるいは本発明は、これらの酵素をコードするクローン化ｃＤＮ Ａを単離し、ないしはこれらの酵素をそのようなクローン化ｃＤＮＡや遺伝子か らもたらされる情報を介してこれらの酵素をコードする合成遺伝子を構築するメ カニズムを提供する。これらのクローン化核酸配列は、次いで標準的リコンビナ ントＤＮＡ技術によって多量のグリコシルトランスフェラーゼを生成するために 用いることができる。 （ｉｉｉ）研究用試薬として直接用いることができる、もしくは研究的利用の ための抗グリコシルトランスフェラーゼ抗体を生成するために用いることができ るリコンビナントグリコシルトランスフェラーゼを生成するために好適な試薬を 単離するという用途。 本発明はこれらの酵素を多量に得るための二つのメカニズムを提供するもので あるが（上記（ｉｉ）参照、すなわち特別に構築された動物細胞、またはこれら の酵素をコードする天然若しくは合成遺伝子を利用するもの）、このメカニズム はオリゴ糖や糖タンパクの構造や機能を調べるための研究用道具として用いるこ とができるであろう。同様に、この方法によって産生された酵素やこの方法によ って提供された核酸配列およびタンパク配列は、その酵素に対する抗体を生成す るために用いることができるであろう（クローン化された酵素のｃＤＮＡや遺伝 子に由来する配列を有する合成ペプチドでの免疫、あるいはリコンビナント酵素 での直接的免疫によって）。 上記の抗体は、上記酵素の生合成や反応工程を研究するための研究用試薬とし ても用いることができるとともに、本明細書に記載するすべての用途における精 製の助剤としても用いることができる。 （ｉｖ）診断用試薬としてのグリコシルトランスフェラーゼに対する抗体。 上記グリコシルトランスフェラーゼ類の内のあるものは体液中に存在する腫瘍 マーカーと関連がある。これらの酵素は典型的には体液中の活性試験で検定され てきたが、これは競合するグリコシルトランスフェラーゼ活性のために非特異的 となる場合がある。上記試験はまた感受性が低いこともある、なぜなら不活性酵 素が腫瘍マーカーとして有用である場合があるが、その場合にはそのような酵素 は酵素活性試験では検出されえないであろうからである。 本発明は上記の酵素に対する抗体を生成するメカニズムを提供するものである （クローン化されたグリコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡや遺伝子からの情報 によって構築される合成ペプチドに対する、あるいはリコンビナントグリコシル トランスフェラーゼによって産生される酵素に対する、あるいはまた本方法によ って構築された動物細胞によって産生された酵素に対する、モノクローナル抗体 およびポリクローナル抗体）。特定のグリコシルトランスフェラーゼ類に対して 特異的な抗グリコシルトランスフェラーゼ抗体は、本手段によって得ることがで き、かつ、酵素活性試験をしのぐ特異性と感度で体液中のグリコシルトランスフ ェラーゼを検出、定量するために用いることができる。 （ｖ）分泌性または細胞会合性糖複合体上に新規な糖複合体を生成するための グリコシルトランスフェラーゼ基質特異性のエンジニアリング。 本発明は、適切な公知の突然変異誘発方式によって、野性型の酵素が産生する 糖結合とは異なった糖結合を生成する突然変異体グリコシルトランスフェラーゼ を生成する試薬（クローン化グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子あるいはｃＤ ＮＡ）および遺伝子工学的選択方法を提供するものである。この新規な結合は天 然にあるものでもないものでもよく、それらが結合している分子の生物学的活性 を高める成分としての用途を有する。あるいは突然変異誘発と選択的手法によっ て、負の優性を示すように作用する突然変異体を生成することができる。このよ うにして得られた負の優性の突然変異体は、それから得られる生成物が望ましく ないものである場合には、内因性グリコシルトランスフェラーゼ活性を不活化す るために用いることができる。 本発明は、上記酵素の表面発現産物を同定するために考案された方法によって グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子（および翻訳後修飾を行う酵素の合成へと 導く遺伝子）を単離することを可能とするものであり、標準的な分子クローニン グ法が要求する酵素精製の必要がない（すなわちその酵素の一次構造についての 情報やその酵素に対する抗体の必要がない）。 本発明方法を実行してみた一例における結果は、グリコシル化に関し特異的な 能力を有する細胞の生成であった。実施の詳細は、本発明の発明者によってなさ れた次の文献に記載されている：Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６４ （６）：３４３６−３４４７及びＪ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６４ （１９）：１１１５８−１１１６７、これらを本明細書の一部を構成する情報と しててここに援用する。 要点を述べれば、本発明方法のこの実施例においては、希望する糖複合体を構 築する特異的な能力を有する培養動物細胞株の生成が包含されるものであり、こ れは、希望する酵素を発現する細胞から得た遺伝子材料を用いて、希望するグリ コシルトランスフェラーゼやその産物を発現しない細胞中に外因性の遺伝子材料 を導入することによって達成される。次いで陽性選択手続きによって、細胞表面 において酵素産物を発現する形質移入細胞を同定する。続いてこの新たな表現型 をもたらした形質移入遺伝子配列を、遺伝子ライブラリ構築および核酸ハイブリ ダイゼーションを含む標準的手続きによって単離する。この方法によれば酵素を 精製する必要なしにグリコシルトランスフェラーゼの発現を決定する遺伝子材料 を単離できるものである。 遺伝子の単離方法は、分散し反復するヒトＤＮＡ配列（Ａｌｕ）の利用を包含 する上記配列のハイブリダイゼーション手続きによる検出と単離の手続きによっ て示し、「タグ」付で形質移入された配列については他の方法によって示す。こ こで当該他の方法としては希望の遺伝子の同定・単離を核酸ハイブリダイゼーシ ョンや遺伝子選択手続きによって可能とするＤＮＡマーカーの形質移入されたＤ ＮＡへの連結が挙げられる（たとえばｓｕｐＦまたはＧ４１８耐性”Ｎｅｏ”配 列）が、これに限定されるものではない。 適切な表現型を有する形質移入された細胞を選択するための方法として３つの 方法、即ちフローサイトメトリー、ロゼット法、およびパンニングを実施例Ｉ、 ＩＩ、およびＩＩＩにそれぞれ記述する。実施例においては酵素産物に特異的な 抗体を用いたか、他の非抗体試薬も表面発現された酵素産物を特異的に認識する ものであれば用いることができる（植物や動物のレクチンを含む）。 本発明が提供する酵素は、対応する生（native）酵素と比較してユニークな特 徴を有する。天然由来のグリコシルトランスフェラーゼを精製し、得られた産物 の相同性についての要求を提起した。とはいうもののこの相同性の要求は、調整 物をＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法によって分析することによって なされた。古い（即ち１９８２年より前）文献においては、同質の（homogeneou s）酵素は、クーマシーブリリアントブルー染色あるいは他の染色法によって同 定されたが、それらは同時代の銀染色手法よりもはるかに感受性が低いものであ る。よってそのような調整物は同質とは言いかたいものであったことはほぼ確定 的である。 より新しい文献においては、銀染色法によって３つのグリコシルトランスフェ ラーゼが分析されている（すなわちラットのシアリル−Ｔ、ＧｌｃＮＡｃ−Ｔ− ＩおよびＧｌｃＮＡｃ−Ｔ−ＩＩ）。これらは実質的に汚染タンパクを含有しな いように見受けられる。それにもかかわらずこの精製手続きによって得られた最 終の精製タンパクの少量を上記した感受性を有する銀染色法で分析すると、その 感受性は充分なものではなく、使用した少量の精製タンパクにおいて約５−１０ 重量％の汚染物質のレベルを検出することができなかった。従って、本発明の前 においては、最低９５％好ましくは最低９８％の純度レベルを有するグリコシル トランスフェラーゼ類は得られていなかった。本発明のリコンビナントグリコシ ルトランスフェラーゼは、クローン化グリコシルトランスフェラーゼＤＮＡ配列 を用いて大量に、溶解した形態であるいはアフィニティー精製可能なタンパクセ グメントに融合した形で、さらに従前得られていなかった均質な状態で得ること ができるものである。 上記のように、本発明が提供するタンパクは非グリコシル化形態となしうると いう点でも従来得られたタンパクとは異なるものである。すべての天然由来グリ コシルトランスフェラーゼが糖タンパクでないにしても、多くのものがそれ自身 一以上のＮ−結合性および／またはＯ−結合性のオリゴ糖構造体を含有する。こ の構造体はそれ自身、当該酵素自身によって例えば酵素リアクター中などにおい てグリコシル化されるので、反応効率を低下させ酵素活性ロスを引き起こすアク セプタ基質と比肩するものである。この”自動グリコシル化”現象は、酵素およ び／またはバイオリアクターの触媒効率を不活化ないし低くする能力を有してい る。 クローン化グリコシルトランスフェラーゼ類の使用はこの問題を回避する方法 を提供するものである。まず、グリコシルトランスフェラーゼ類をグリコシル化 する能力のない大腸菌などの細菌性宿主中において、クローン化グリコシルトラ ンスフェラーゼを発現させると、多量のグリコシル化されていないグリコシルト ランスフェラーゼが産生される。これらのリコンビナントタンパクをバイオリア クター中で使用すると、そのタンパクはグリコシル化されていないので、上記の 理由により天然由来のグリコシル化された酵素よりその性能において勝るものと なる。 また、もしこれらの酵素をリコンビナント酵素をグリコシル化できる真核細胞 宿主中で発現することが必要な場合には、標準的な部位指向性突然変異誘発手法 で、リコンビナントタンパクから、動物細胞に対し当該酵素をグリコシル化させ るように作用するアミノ酸シグナルを除去するために用いることができる。この ような公知のシグナルとしては、アスパラギン結合性グリコシル化を許容するＮ −Ｘ−ＴまたはＮ−Ｘ−Ｓ単位を有するアスパラギン残基やＯ−結合性グリコシ ル化の基質であるいくつかのセリンおよびスレオニン残基が挙げられる。 グリコシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列の改変については、標 準的突然変異誘発法によってそのＮ、Ｓ、Ｔ残基をコードするコドンを除去する か、または類似の物理的性質を有するがＮ−結合性またはＯ−結合性のグリコシ ル化を支援することができないアミノ酸を決定するコドンへと各々のコドンを変 化させることによってこれを行うことができる。本発明はまた独自の突然変異リ コンビナントグリコシルトランスフェラーゼ類を提供するものである。グリコシ ルトランスフェラーゼ遺伝子やｃＤＮＡの単離・発現は、天然に存在する酵素が 元来有する固定した特性よりも優れた特性を有する突然変異グリコシルトランス フェラーゼを生成する機会を提供するものである。以下に示す幾つかの特性を有 する突然変異グリコシルトランスフェラーゼを得るために、部位指向性もしくは ランダム突然変異誘発に基づく標準法を利用することができる。 （１）最小の触媒ドメイン： グリコシルトランスフェラーゼタンパクからのア ミノ酸除去を向上させることができるとともに、得られた突然変異グリコシルト ランスフェラーゼの活性試験を行うことができる。グリコシルトランスフェラー ゼ分子の異なった部分に関するすでに知られている機能に基づき、触媒活性を有 する突然変異グリコシルトランスフェラーゼであって（ａ）溶解性のもの（即ち 天然のグリコシルトランスフェラーゼを不溶性とするためバイオリアクターに用 いるのに不適切なものとする天然グリコシルトランスフェラーゼ上のトランスメ ンブランセグメントを欠くもの）、および（ｂ）天然のグリコシルトランスフェ ラーゼよりも大幅に小さいもの（トランスメンブランセグメントと”幹”領域を 保持するもの。この何れもが触媒活性にとっては不要である）、であるような突 然変異グリコシルトランスフェラーゼが産生できるものと予想される。 タンパク重量に基づくと、突然変異グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子ある いはｃＤＮＡから得られる小さな触媒活性ドメインは、天然に存在して触媒的に 不活性なトランスメンブランおよび／または幹領域にそってタンパクの”荷物” （baggage）を有するより大きなグリコシルトランスフェラーゼよりも高い触媒 活性を示す。 このように、リコンビナント突然変異体由来の触媒ドメインは、オリゴ糖の試 験管内合成（例えばリアクターを用いて）に使用するためにははるかに効率的で ある。グリコシルトランスフェラーゼ類におけるｍＲＮＡの増幅手法： グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子を単離するための遺伝子伝達に使用され る遺伝子工学的材料（ｃＤＮＡライブラリ構築のためのｍＲＮＡ、またはゲノム ライブラリ構築やゲノムＤＮＡ形質移入のためのゲノムＤＮＡ）のソースとして の細胞株に対し、上記方法を最適化するような処理を行う。細胞株に対する選択 手続きによってグリコシルトランスフェラーゼｍＲＮＡの安定状態のレベルを高 め、および／または選択された細胞のおのおのの遺伝子を増幅してその多コピー をドナー細胞に存在するようにさせる。これは、より多量のグリコシルトランス フェラーゼオリゴ糖産物をたとえば細胞表面などに発現する細胞の変種を選択す る手続きに細胞株を付すことによってなされる（化学的、照射、あるいはその他 の突然変異誘発方法のあとでまたはそれらの方法抜きで）。このタイプの手法を 実施例ＩＩに示す。 オリゴ糖産物分子の多くが細胞内の同族グリコシルトランスフェラーゼ酵素分 子の多くと相関関係にあり、かつグリコシルトランスフェラーゼｍＲＮＡの安定 状態レベルの上昇と相関している。グリコシルトランスフェラーゼｍＲＮＡのレ ベルが高いことにより、それぞれのｃＤＮＡのより多くのコピーが高発現突然変 異細胞株から調製されたｃＤＮＡライブラリ中に存在することとなり、従ってこ のライブラリからグリコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡを奪取する可能性が増 す。ある場合には、特定のｍＲＮＡがより高いレベルであるということは同族の グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子のコピー数の増加と関連している場合もあ ろう。そのような増幅されたグリコシルトランスフェラーゼ遺伝子は、他の無関 係な遺伝子よりも細胞ゲノム中においてより大量に含まれ、あるいは親の選択さ れていない細胞株においてより大量に含まれるため、ゲノムＤＮＡライブラリま たはゲノムＤＮＡ形質移入の手法による単離がより容易である。 形質移入の研究によって、癌遺伝子が幾つかのグリコシルトランスフェラーゼ 類の発現を増大させることを示すことができる。即ち、癌遺伝子を含有し容易に 入手できるベクターを用いる標準的な形質移入法によって、一以上の癌遺伝子に よる形質移入で細胞株を修飾し、その結果得られる形質移入されたクローンを試 験してグリコシルトランスフェラーゼレベルの上昇を調べることができる。その ようなクローンはまた、下記の実施例Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩに簡略に示すＦＡ ＣＳあるいはレクチン選択法によっても同定・選択することができる。これらの クローンは、上記のようにｃＤＮＡライブラリを調製するために用いることがで きる。 多くの化学的試薬が細胞株におけるグリコシルトランスフェラーゼの発現、あ るいは発現の増加をもたらすものとして示されている。これは細胞株の試験管内 分化と関連があると考えられ、そのような試薬としてはレチノール酸が挙げられ 、また、ジメトキシスルフォキシドで誘起されるヒトおよびマウスの造血前駆体 の分化と関連があると考えられる。これらはいくつかのグリコシルトランスフェ ラ ーゼの発現の増加を伴っている。これが起こる理由は問題のグリコシルトランス フェラーゼのｍＲＮＡの安定状態が上昇するためであり、これを利用してｃＤＮ Ａライブラリ介在の形質移入手法によって同族のクローン化ｃＤＮＡを単離する 能力を高めることができる（下記実施例１１参照）。 酵素を精製する必要なしに細胞表面で酵素産物を検出する方法である、遺伝子 や動物グリコシルトランスフェラーゼ（あるいは他の翻訳後修飾酵素）をコード するクローン化ｃＤＮＡを単離するための別法としては以下のものがある：希望 する酵素を発現した細胞や組織から調製されたｍＲＮＡを用いて、哺乳類または イースト宿主中においてクローン化ｃＤＮＡを発現するプラスミドまたはファー ジ中にｃＤＮＡライブラリを構築する。このようにして得たｃＤＮＡライブラリ をスクリーニングして希望するｃＤＮＡを検出する。この検出は、多量の酵素を 発現しないかその表面発現された産物を発現しない宿主細胞株であるとともに必 要な酵素基質分子を有するものであってかつその表面上に酵素のオリゴ糖産物を 顕出することができる宿主細胞中に当該ライブラリを導入することによってなさ れる。ｃＤＮＡライブラリに取り込まれた宿主細胞は、希望するｃＤＮＡを含有 する細胞を選択する選択手続きに付され、フローサイトメトリー、ロゼット法、 あるいはパンニング、および当該酵素のオリゴ糖産物に対して特異的な試薬によ って、対応する新規なオリゴ糖産物を発現する。希望する酵素の発現を指向する クローン化ｃＤＮＡは、選択された細胞から標準法で単離される。 この手法は以下の技法とともに用いられる： １．動物細胞への安定した形質移入、選択、次いで用いたベクターにより核酸 ハイブリダイゼーションまたはＣＯＳ細胞融合技法による希望のクローンｃＤＮ Ａの奪取。 ２．ＣＯＳまたはＷＯＰ細胞への過渡形質移入、選択、次いでシード、Ｐｒｏ ｃ．Ｎａｔ’１．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）（１９８７）８４：３３６５− ３３６９による方法、あるいは哺乳類細胞においてエピソームとして複製される ｃＤＮＡクローンベクターを利用するものである類似の方法（マルゴルスキーら 、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．、（１９８８）８：２８３７−２８４７による 希望のクローン化ｃＤＮＡの奪取。 ３．イースト細胞の形質転換、選択、次いで核酸ハイブリダイゼーションによ る希望のクローン化ｃＤＮＡの奪取。 加えて、哺乳類ｃＤＮＡ発現ライブラリはまた、関連あるグリコシルトランス フェラーゼ（または翻訳後修飾に関与する他の酵素）をコードするクローン化ｃ ＤＮＡを含有するｃＤＮＡ分子のプールを検出する酵素検定を用いて、シブの選 択法によってスクリーニングすることができる。特に、適当なグリコシルトラン スフェラーゼを発現する細胞から調製されたｍＲＮＡを用いてｃＤＮＡライブラ リを哺乳類発現ベクター（プラスミドまたはファージ）に構築することができる 。 このライブラリは、まずクローンを含有するバクテリア細胞のプール中に分配 してスクリーニングに付す。ここで各プールはそのライブラリのある分画を表す か、プールの総体は全ライブラリを表すものである。各プールの一部を取り置き 、残部（取りおかれたクローンのシブを含有する）はｃＤＮＡ−ベクタ−ＤＮＡ 分子（即ちプラスミドまたはファージＤＮＡ）を得るために処理する。各プール から調製したＤＮＡは別個に、上記の適切な宿主細胞の一つに導入し（１、２、 および３を参照）、ついで適当な発現時間経過後、形質移入されたあるいは形質 転換された宿主細胞から抽出物を調製し、得られた抽出物が適切なグリコシルト ランスフェラーゼ活性を有するかどうか検定する。適切な酵素の合成を指向する プラスミドを含有することが判明した最小のプールを、取り分けておいたものか ら検索して再分割する。再びこれらの再分割されたプールの代表部分を取り置き 、残部（これも取りおかれたクローンのシブを含有する）を処理してプラスミド ＤＮＡを得、形質移入あるいは形質導入工程、発現、抽出、さらに酵素検定へと 移行する。このプロセスを、関連あるグリコシルトランスフェラーゼの発現を指 向する単一のクローンが単離されるまで繰り返す。このように、このプロセスは 、適切なクローン化ｃＤＮＡや遺伝子を単離するために酵素産物の表面発現に依 存することがない。この手法の一例を実施例ＩＩＩに示す。 本発明で用いられる手続きは、必ずしも宿主の相補的遺伝子によって限定され る必要はない。本発明の遺伝子伝達に関する特徴は、通常レシピエント細胞にお いては発現しないかあるいは存在さえしない遺伝子の発現を可能とする点にある 。本明細書においては特にグリコシルトランスフェラーゼへの適用を記載するが 、 硫酸化、リン酸化、メチル化、脂肪酸アシル化、およびグリコシル修飾の除去（ グリコシルハイドロラーゼ）等、他の翻訳後修飾の形態を制御する酵素や遺伝子 にも適用可能なものである。 ここまで記載した方法は、優性のグリコシル化の特徴を見いだす選択によるグ リコシルトランスフェラーゼ遺伝子やｃＤＮＡの単離に関するものであった。Ｃ ＯＳ細胞やＷＯＰ細胞において用いられる過渡的発現系もまたＣＯＳやＷＯＰ宿 主中にすでに存在するグリコシルトランスフェラーゼトランスクリプトに同型の ｃＤＮＡを同定しクローン化するために用いることができる。 特に”アンチセンス”定位に転写されたクローン化ｃＤＮＡは、同族のグリコ シルトランスフェラーゼの発現をＣＯＳあるいはＷＯＰ宿主から除去し、よって 劣性のグリコシル化の特徴をもたらすであろう。このようなＤＮＡ配列は、次い で再び以下に示す手続き（フローサイトメトリー、ロゼット法、およびパンニン グ）によって、実施例Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩに詳細に述べるように、発現が除 去されたグリコシルトランスフェラーゼによって認識されるオリゴ糖結合の表面 発現を選択する選択手続きに付して単離することができる。あるいは、シブ選択 手法を用いて内因性グリコシルトランスフェラーゼの発現を低減あるいは除去す るクローン化ｃＤＮＡ分子を酵素検定と同様にして同定することができる。 本発明のＤＮＡ配列と対応するグリコシルトランスフェラーゼを以下の表に示 す。 表１ Ａ．Ｆｕｃ−ＴＩＩＩ（ルイス酵素）、配列認識番号１（ＤＮＡ）および配列認 識番号２（タンパク）。 ＤＮＡ： 少なくとも配列認識番号１のヌクレオチド位置１９９から１１５８ までであって、配列認識番号１の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号２のアミノ酸位置４３から３６１までであ って、配列認識番号２の全体に至るまで。 Ｂ．ネズミα（１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼ、配列認識番号３（Ｄ ＮＡ）および配列認識番号４（タンパク）。 ＤＮＡ： 少なくとも配列認識番号３のヌクレオチド位置４６３から１４６１ までであって、配列認識番号３の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号４のアミノ酸位置６３から３９４までであ って、配列認識番号４の全体に至るまで。 Ｃ．ヒトα（１，２）フコシルトランスフェラーゼ、配列認識番号５（ＤＮＡ） および配列認識番号６（タンパク）。 ＤＮＡ： 少なくとも配列認識番号５のヌクレオチド位置４７８２から５７８ ３までであって、配列認識番号５の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号６のアミノ酸位置３３から３３６５までで あって、配列認識番号６の全体に至るまで。 Ｄ．Ｆｕｃ−ＴＩＶ、配列認識番号７（ＤＮＡ）および配列認識番号８（タンパ ク）。 ＤＮＡ： 少なくとも配列認識番号７のヌクレオチド位置２０８９から３１５ ９までであって、配列認識番号７の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号８のアミノ酸位置５０から４０５までであ って、配列認識番号８の全体に至るまで。 Ｅ．Ｆｕｃ−ＴＶ、配列認識番号１０（ＤＮＡ）および配列認識番号１１（タン パク）。 ＤＮＡ：少なくとも配列認識番号１０のヌクレオチド位置２４７から１１１ １までであって、配列認識番号１０の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号１１のアミノ酸位置４３から３７４までで あって、配列認識番号１１の全体に至るまで。 Ｆ．Ｆｕｃ−ＴＶＩ、配列認識番号１３（ＤＮＡ）および配列認識番号１４（タ ンパク）。 ＤＮＡ：少なくとも配列認識番号１３のヌクレオチド位置２５５から１２０８ までであって、配列認識番号１３の全体に至るまで。 タンパク：少なくとも配列認識番号１４のアミノ酸位置４３から３５９までで あって、配列認識番号１４の全体に至るまで。 配列認識番号１は、ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］ −Ｄ−ＧｌｕＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラ ーゼとして機能することができるＦｕｃ−ＴIIIと命名されたタンパク配列をコ ードする。このタンパクは、本出願人の同時係属中の１９９０年１０月２５日出 願の米国特許出願番号第０７／６０３，０１８号に開示された内皮白血球接着分 子−１（ＥＬＡＭ−１）に対するオリゴ糖リガンドを構築するために用いうる酵 素である。なお、上記米国出願をここに本明細書を構成する一部として援用する 。このリガンドはシアリル−ルイスｘ分子である。また、この酵素は、ここに記 述されるクローン化ＤＮＡ配列で発現されたとき、哺乳類細胞中においてそれら の細胞上で特定の細胞表面糖複合体構造を新たな発現を生み出すように機能する 。このような構造は、以下の細胞表面糖複合体構造に対する抗体によって認識さ れる（図８と表２参照）。 ＳＳＥＡ−１またはルイスｘ Ｇａｌβ（１，４）［Ｆｕｃα（１，３）］ ＧｌｃＮＡｃ シアリル−ルイスｘ ＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，４） ［Ｆｕｃα（１，３）］ＧｌｃＮＡｃ ルイスａ Ｇａｌβ（１，３）［Ｆｕｃα（１，４）］ ＧｌｃＮＡｃ シアリル−ルイスａ ＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，３） ［Ｆｕｃα（１，４）］ＧｌｃＮＡｃ 上記のＤＮＡ配列（Ｉ）においては、アミノ酸位置４３から３６１までに対応 する配列が機能的であるば、これより大きい全配列に至るものまでを用いてもよ い。 この酵素は、ここに記載するクローン化ＤＮＡ配列によって発現されたとき、 ＤＮＡ配列を発現する細胞から調製された抽出物中で検定すると、その名が示し ている酵素様式の作用を示す（表２参照）。この酵素によるオリゴ糖産物は、中 性またはα（２，３）シアリル化”タイプＩＩ”アクセプターにα（１，３）の 形態で結合したフコースを表すか、あるいは中性またはα（２，３）シアリル化 ”タイプＩ”アクセプターにα（１，４）の形態で結合したフコースを表す（下 表参照）。 ＳＳＥＡ−１またはルイスｘ Ｇａｌβ（１，４）［Ｆｕｃα（１，３）］ ＧｌｃＮＡｃ シアリル−ルイスｘ ＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，４） ［Ｆｕｃα（１，３）］ＧｌｃＮＡｃ ルイスｙ Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌβ（１，４）［Ｆ ｕｃα（１，３）］ＧｌｃＮＡｃ ルイスａ Ｇａｌβ（１，３）［Ｆｕｃα（１，４）］ ＧｌｃＮＡｃ シアリル−ルイスａ ＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，３） ［Ｆｕｃα（１，４）］ＧｌｃＮＡｃ ルイスｂ Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌβ（１，３） ［Ｆｕｃα（１，４）］ＧｌｃＮＡｃ 本明細書の以後の部分においては、これらの産物は末端近傍のα（１，３）お よびα（１，４）フコース残基と称する。 この酵素の触媒ドメインは、発現研究によって局在化させることができた。こ のｃＤＮＡによってコードされた酵素の酵素特性および染色体の局在化研究の結 果、このｃＤＮＡはヒト・ルイス血液型遺伝子座の産物であることがわかる。 このＤＮＡ配列と対応するタンパクは次の用途を有する： （ｉ）この酵素（診断薬や治療薬を産生するための酵素）の産物を表す末端近傍 のα（１，３）およびα（１，４）フコース残基によって、細胞表面上、細胞間 のまたは分泌されたタンパクあるいは脂質上におけるオリゴ糖の翻訳後修飾に関 する特定の能力を有する動物細胞を構築すること。 特に、本発明のクローン化ＤＮＡ配列は、標準的な方法によって、通常は同族 酵素やその産物（オリゴ糖上の末端近傍のα（１，３）およびα（１，４）フコ ース残基）を発現しない哺乳類細胞株へと導入され、当該細胞中で”センス”方 向に転写される結果、細胞表面上、細胞間、または分泌された糖タンパクや脂質 上に末端近傍のα（１，３）およびα（１，４）フコース残基を発現できる細胞 株を産する。 あるいは、このクローン化されたＤＮＡ配列は、標準的な方法によって、同族 酵素やその産物（末端近傍のα（１，３）およびα（１，４）フコース残基）を発現する 哺乳類細胞株へと導入され、当該細胞中で”アンチセンス”方向に転写 される結果、細胞表面上、細胞間、または分泌された糖タンパクや脂質上に末端 近傍のα（１，３）およびα（１，４）フコース残基を発現できない細胞株を産 する。また、内因性のＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］ −Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラ ーゼ遺伝子は、同族の酵素を発現する哺乳類細胞において、相同リコンビナント 法や、ここに記載するＤＮＡ配列に基づく”アンチセンス”遺伝子発現もしくは オリゴヌクレオチド手法によって、さらにはまた内因性のＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β −Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３ ／１，４）フコシルトランスフェラーゼを不活化するものであって突然変異誘発 および遺伝子選択図式から得られる、優性陰性突然変異フコシルトランスフェラ ーゼ配列を本明細書中の配列情報と組み合わせて用いて、ここに記載するＤＮＡ 配列で不活性化することができる。 この方法は、診断や治療のための材料を産生する宿主細胞として好適な動物細 胞株を構築するのに用いることができるが、ここにおいてそれらの材料の有用性 や効果は、クローン化されたＤＮＡ配列とそれと同族の酵素によって決定される 特定の翻訳後修飾に依存するものである。例えば、多くの治療的タンパクやペプ チド、リコンビナントなどの生物学的有効性は、それらの物質に共有結合的に結 合しているオリゴ糖構造に決定的に依存しているであろうという点についてはす でに知られている。このオリゴ糖の構造は、基本的には上記治療的産物を産生す るために用いた細胞中に見いだされるグリコシルトランスフェラーゼ酵素の数と 種類によって定まる。 動物細胞や酵母はこのようなグリコシル化反応を行う能力を有する。しかしな がら、すべてのグリコシルトランスフェラーゼ酵素が各動物細胞や酵母によって 産生されることはなく、従って幾つかのオリゴ糖構造（ここに記載するＤＮＡ配 列によってコードされる酵素によって生成される末端近傍のα（１，３）および α（１，４）フコース残基を含む）は、そのような動物細胞や酵母によっては産 生されない。 この逆もまた真であり、即ち、酵素産生細胞はここに記載するＤＮＡ配列でコ ードされるＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−Ｇｌ ｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼに類似 のあるいはこれと同一のグリコシルトランスフェラーゼを発現するものであるか もしれない。 末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコース残基は、哺乳類やその他の 真核性宿主によって産生される天然あるいはリコンビナントの治療薬または診断 薬（糖タンパクまたは糖脂質）の生物活性を改変（よかれあしかれ）するものと 考えられる。このようなリコンビナント剤を産生するために用いられる真核宿主 細胞は、本発明が記述するＤＮＡ配列情報や関連する情報によって変化を受ける が、この情報は、末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコース残基を希望 する宿主においてここに記載するクローン化された配列全体または配列の一部を 発現させることによりリコンビナント産物上のオリゴ糖に付加させるものである 。あるいは、末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコース残基は、上述の 形質移入された”アンチセンス”ベクター構築物、組換えに基づく遺伝子の不活 化、”アンチセンス”オリゴヌクレオチド手法もしくは負の優性の突然変異フコ シルトランスフェラーゼを用いることにより、宿主細胞において産生された産物 から除去することができる。 このプロセスに関する従来の”方法”としては、適切に修飾されたリコンビナ ントまたは天然の産物を得るために用いる手法であって、特定の酵素やこれと類 似のあるいは同一の機能を有する酵素を発現する、あるいはしない細胞株を同定 する経験的手法が挙げられる。これは常に最適なものとは限らない、なぜならこ の特定の翻訳後修飾能を有する細胞株は天然には存在しないかもしれないし、ま た適切に修飾された産物を多量に得るには適切でないかもしれないからである。 一方、経験的手法によって同定された動物細胞株から産生される治療的物質に存 在する末端近傍の不要なα（１，３）及びα（１，４）フコース残基は、化学的 にあるいは酵素的に除去しなければならないば、これは費用がかかるか、または 非効率である。 ここに記載するクローン化された機能的なＤＮＡ配列と上記の技法との組合わ せの使用を従来法に比べた場合の利点としては、末端近傍のα（１，３）及びα （１，４）フコース残基を糖タンパクや糖脂質のオリゴ糖上に生成する能力を特 異的に欠く株を構築できることがあげられる。適切に構築されれば、このように して得た細胞株からは、不要な末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコー ス残基を除去するために治療・診断薬を化学反応や酵素反応に付す必要がない。 さらに、末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコース残基がもし動物細胞 から産生される特定の診断・治療用産生物として望ましい場合には、細胞株をこ こに記載するクローン化ＤＮＡ配列で処理して当該残基を生成することができる 。 （ｉｉ）オリゴ糖を酵素的手法によって効率的に合成、産生（例えば酵素リア クターを用いて）するのに適切な試薬の単離。 オリゴ糖は器官移植の分野において免疫調製反応剤としての治療的用途を有し ている。特に溶解性および固体相のオリゴ糖は、器官のドナーとレシピエントと の間にルイス式血液型を含む主要血液型抗原系の相違による不適合性が存在した 場合の抗体介在移植拒否反応を阻止、あるいは緩和する治療薬としての用途を有 する。また、溶解性オリゴ糖は、細菌性、ウイルス性、または寄生虫性の病原体 が動物組織に侵入したとき、その組織上に見いだされる糖複合体”レセプター” へこれらの病原体が付着するのを阻止する治療薬としての用途を有する。 例えば、ルイス血液型オリゴ糖抗体（末端近傍のα（１，３）及びα（１，４ ）フコース残基を含む）の一部は、ウロパトゲン性の細菌のある形態のものに対 しては”レセプター”として働くという証拠がある。またさらに、末端近傍にα （１，３）及びα（１，４）フコース残基を含む糖複合体は、白血球−ＥＬＡＭ −１相互作用の様な細胞間の接着現象の調整や、発生と分化の過程における細胞 とその環境との間の接着現象の調整に関与している。これらの現象の例としては 精子と卵子の接合が挙げられ、その最初の現象は着床の初期において有精卵が子 宮壁に付着することを仲介するものである。このような観察結果は、一例として 、（生物学的に「天然の」）オリゴ糖分子を避妊薬として使用する可能性が存在 す ることを示すものである。この酵素によって構築されるオリゴ糖分子は白血球− ＥＬＡＭ間の相互作用を断ち、その結果抗炎症剤としての作用を有する。 現在、末端近傍にα（１，３）及びα（１，４）フコース残基を含有するオリ ゴ糖が化学合成によって（但しこれは非効率的であるか、費用がかさむか、ある いはその両者である）、または天然資源からの単離によって（これは費用がかか り非効率的な手続きによるものであって、しばしば大量の動植物材料を処理する 必要があり、また希望のオリゴ糖を他の汚染されたオリゴ糖から精製して得る必 要があるものである）産生されている。 ここに記載の本発明は、精製したＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４ ／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルト ランスフェラーゼ即ちＦｕｃ−ＴＩＩＩを大量に合成するためのメカニズムを提 供する。本発明は、酵素バイオリアクター（溶解された、あるいは固相マトリッ クス上に固定化された酵素を使用するものであって、末端近傍にα（１，３）及 びα（１，４）フコース残基を含有する構造体を酵素的に合成可能ならしめる、 当該酵素（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．（１９９０）４ ：１２８８−１３０３を参照）の触媒領域と融合したプロテインＡ成分を介すな どしてこのバイオリアクターを製作するために用いることができる。 この手法は、種々の理由から末端近傍にα（１，３）及びα（１，４）フコー ス残基を含有する構造体を化学的に合成する手法やそれらを天然物から精製する 手法よりもより効率的なものである。まず第一に、必要な化学物質は酵素基質と コファクターのみであり、この殆どは容易に入手でき、あるいは合成できるから である。第二に、酵素的手法によるそのような構造体の合成は、希望する物質と 、基質の加水分解によるヌクレオチドジフォスフェートのみを産生するからであ る。後者の薬剤は、動物細胞中において上記反応の天然副生物として見いだされ るものであって、基本的には毒性がなく、得られたオリゴ糖合成産物から容易に 分離できる。これに対し、化学合成手続きによれば、除去しなければならない多 くの副反応産物を生成するのが普通であり、これらは有毒であることもある。ま た、天然資源からのオリゴ糖の精製においては、天然物質中に存在する他の汚染 オリゴ糖を除去しなければならない。 第三に、酵素的触媒反応は非常に効率がよい。基質から産生物への変換は実質 的に完全に達成される。これに対して、オリゴ糖上の末端近傍にα（１，３）及 びα（１，４）フコース残基を化学合成するプロセスは多工程からなるものであ って、各工程における収率は１００％には程遠いものであるとともに、現行の化 学合成手続きの全体的効率は、酵素による合成で達成可能な効率に近づくもので ない。また、末端近傍にα（１，３）及びα（１，４）フコース残基を含有する オリゴ糖を天然物質から精製するにあたっては、汚染された無関係のオリゴ糖か ら希望するオリゴ糖を分離するのに必要な精製手続きに固有の顕著なロスを伴い 、希望するオリゴ糖の単離も不十分である。 ここに記載のＤＮＡ配列によってコードされるＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇ ａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４ ）フコシルトランスフエラーゼは、合成用途のため動物組織から精製することも できるが、そのような精製はそれ自身では不充分である。なぜならこの酵素は典 型的には非常に少量しか存在しないものであるからである。 本発明はこれらの酵素を多量に提供するための二つのメカニズムを提供する。 第一にこれは比較的多量の酵素を産生する動物細胞を構築、選択することによっ てなされる。あるいは、このクローン化核酸配列は、標準的リコンビナントＤＮ Ａ技術によって多量のグリコシルトランスフェラーゼを酵母中あるいは真核細胞 宿主において生成するために用いることができる。さらにこの酵素をコードする 配列に対し、標準的な分子クローニング図式あるいは突然変異誘発を適用して修 飾を行うことができ、野性型の酵素より好ましい新たな特性を有するリコンビナ ントフコシルトランスフェラーゼを産することができる。 たとえば、酵素に対する修飾は、それをより安定にするように、あるいはバイ オリアクターへの固定化に関しより適切なものとするように行うことができる。 （ｉｉｉ）研究用試薬として直接用いることができる、もしくは研究的利用の ためのＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮ Ａｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼに対する抗 体を生成するために用いることができるリコンビナントＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β− Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／ １，４）フコシルトランスフェラーゼを生成するために好適な試薬を単離すると いう用途。 本発明は上記酵素を多量に産生するための二つのメカニズムを提供するもので あるが（上記（ｉｉ）参照、すなわち特別に構築された動物細胞、またはこれら の酵素をコードする天然若しくは合成遺伝子を利用するもの）、このメカニズム はオリゴ糖や糖タンパクの構造や機能を調べるための研究用道具として用いるこ とができるであろう。同様に、この方法によって産生された酵素やこの方法によ って提供された核酸配列およびタンパク配列は、本酵素に対する抗体を生成する ために用いることができるであろう（クローン化された酵素のｃＤＮＡや遺伝子 に由来する配列を有する合成ペプチドでの免疫、あるいはリコンビナント酵素で 自身を用いた免疫によって）。このような抗体は、上記酵素の生合成や反応工程 を研究するための研究用試薬としても用いることができるとともに、本明細書に 記載するすべての用途における精製の助剤としても用いることができる。 （ｉｖ）診断用試薬としてのグリコシルトランスフェラーゼに対する抗体。 ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ （／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼの異常発現はヒ トの悪性腫瘍と関連があり、この酵素が多くのヒト組織における悪性腫瘍につい てそれらを早期に検出するための腫瘍マーカーとしてこの酵素が役に立つことを 示唆している。酵素の腫瘍マーカーは典型的には体液中の活性試験で検定されて きたが、これは競合するグリコシルトランスフェラーゼ活性のために非特異的と なる場合がある。上記試験はまた感受性が低いこともある、なぜなら不活性酵素 が腫瘍マーカーとして有用である場合があるが、その場合にはそのような酵素は 酵素活性試験では検出されえないであろうからである。 本発明は、上記の酵素に対する抗体を生成するメカニズムを提供するものであ る（当該抗体とは即ち、ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３） ］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェ ラーゼをコードするｃＤＮＡや遺伝子からの情報によって構築される合成ペプチ ドに対する、あるいは真核細胞もしくは原核細胞宿主によって産生されるリコン ビナント酵素に対する、モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体）。 このＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡ ｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフエラーゼに対して特異 的に産生された抗体は、酵素活性試験をしのぐ特異性と感度で体液中の本グリコ シルトランスフエラーゼを検出、定量するために用いることができ、悪性腫瘍の 早期発見を可能ならしめる腫瘍マーカーとして役立つ可能性を有するものである 。 （ｖ）フコシルトランスフェラーゼ阻害剤あるいは不活化剤を見いだすための 天然および合成の化合物のスクリーニングにおいてリコンビナント酵素を使用す ること。 多くの研究において、細胞におけるオリゴ糖上の細胞表面末端近傍のα（１， ３）及びα（１，４）フコース残基の数の増加と、その細胞の悪性転移能力の間 には関連があることが判明している。もしそこに因果関係があるなら、本明細書 に記載の配列でコードされる酵素を阻害する薬剤は抗腫瘍剤としての作用を有す るであろう。また、最近の研究の多くによると、末端近傍α（１，３）及びα（ １，４）フコース結合を含有するシアリル化された中性のオリゴ糖は、炎症時に おけるセレクチン付着分子（ＥＬＡＭ−１；ＧＭＰ−１４０；Ｍｅ１１４／ＬＡ Ｍ−１）への白血球の付着の仲介に関与している。これらの研究が示唆している ことは、白血球上でのα（１，３）及びα（１，４）フコース結合の合成を防ぐ ことができる分子は、末端近傍のα（１，３）及びα（１，４）フコース結合を 合成・顕示する白血球の能力を低減あるいは除去するように機能するものであっ て、抗炎症医薬となりうるものであるということである。本明細書に記載の試薬 は、抗フコシルトランスフェラーゼ活性を示す化合物を単離・確認するためのス クリーニングに有用なものである、なぜなら本発明のクローン化配列に標準法を 適用して比較的多量の純粋なフコシルトランスフェラーゼを産生できるからであ る。また本発明の試薬はスクリーニングを補佐するものである、なぜなら潜在的 阻害剤の効果が純粋な酵素でテストされることになり、全細胞抽出物や部分的に 精製された酵素を使用した場合に起こりうる混同を生じないからである。 （ｖｉ）新規な糖複合体構造を分泌糖複合体あるいは細胞関連糖複合体上に生成 するためのグリコシルトランスフェラーゼ基質特異性のエンジニアリング。 本発明は、次の試薬ａ）クローン化ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１， ４／１，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシル トランスフェラーゼｃＤＮＡ）およびそれを単離するために用いる遺伝子工学的 選択方法を提供するものであって、本発明選択方法は、適切な突然変異誘発図式 に則り、野性型酵素によって産生されるグリコシド結合とは異なったグリコシド 結合を生成する突然変異体、ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１， ３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランス フェラーゼを生成可能ならしめるものである。上記の新規な結合は天然に存在す るものであっても存在しないものであっても良く、それらが結合した分子の生物 学的活性を亢進する成分としての用途が考えられるものである。 あるいは、突然変異誘発と選択の手段によって、負の優性の法則性のもとに働 く突然変異体ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）］−Ｄ−Ｇ ｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼを生 成することができる。このようにして得た優性の度合いが負である突然変異体は 、内因性のグリコシルトランスフェラーゼによる産物が望ましくない場合には当 該内因性グリコシルトランスフェラーゼの活性を不活化するために用いることが できる。生成される突然変異体ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１ ，３）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ（／Ｇｌｃ）α（１，３／１，４）フコシルトラン スフェラーゼはまた、例えば試験管内および生体内でオリゴ糖の種々の糖鎖（フ コース、マンノースなど）を加水分解するフコシダーゼとして機能するものでも ある。 （ｖｉｉ）ルイス遺伝子座に関して個体の遺伝子座を定めること。 本発明によるクローン化ｃＤＮＡに対する遺伝子における、あるいはこれに結 合したＤＮＡ配列の多型性は、ルイス遺伝子座に関し、個体の遺伝子座を定める ために用いることができる。これは、器官移植手続きに関する用途とともに、生 体侵入時（例えば尿路感染など）に血液型構造を受容体として用いる病原体によ って引き起こされる感染のし易さを測る物差しとしての用途を有する。 配列認識番号３はマウスＵＤＰ−Ｇａｌ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）ＧｌｃＮ Ａｃα（１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードする。配列認識番号 ５はヒトＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−ガラクトシドα（１，２）フコシルトランス フェラーゼをコードする。これらのタンパクの用途は、ほぼ配列認識番号１の酵 素に関して記述した内容と同じである。 配列認識番号５によってコードされる酵素の独特な応用としては、ラクトース アミンやネオラクトタイプβ−Ｄ−ガラクトシド上のチェーン・ターミネーター ・ガラクトース残基をα−２−Ｌ−フコース残基に酵素的にフコシル化すること が挙げられる。そのような修飾は、精製α（１，２）ＦＴ、あるいはその誘導体 類およびその基質であるＧＤＰフコースを用いて、β−Ｄ−ガラクトシド残基で 終結しているアシアログリカンでインビトロで行うことができる。上記アシアロ グリカンは天然に存在するものであり、シアリン酸で置換した末端ガラクトース 部を有するグリカンを、試験管内でニュウラミニダーゼによって分解することに よって構築することができる。また、上記フコシル化は、グリカンが、α（１， ２）ＦＴ ｃＤＮＡや遺伝子セグメントによって形質移入された哺乳類細胞にお いて発現されているときに起こるものと考えられる。そのようなα（１，２）フ コシル化グリカンは、高い溶解特性を有する可能性があり、また、血漿中半減期 が長くなる可能性があり（通常は糖タンパクのクリアランスを肝臓のアシアロ糖 タンパク受容体によって仲介する、末端ガラクトース残基がフコース残基によっ て覆われてしまうため）、かつ生物学的活性を亢進させるであろう。 オリゴ糖構造体における、組織特異性を有する発生上の発現パターンの調整に 関して細胞が用いる分子メカニズムについてはほとんど分かっていない。しかし ながらそのようなパターンは、恐らく主に同族のグリコシルトランスフェラーゼ 類の発現の協調的調整によって定まるものと考えられる。これらの酵素の多くが 同一のヌクレオチド糖基質あるいはオリゴ糖アクセプター基質を認識することか ら、それらは実質的に一次タンパクと核酸配列の類似性を示すことが予想され、 そのような類似性は、クロスハイブリダイゼーションによって関連グリコシルト ランスフェラーゼ遺伝子を単離することを容易にするであろう。 本発明者による分子クローニングによって、上述の幾つかのクローン化グリコ シルトランスフェラーゼｃＤＮＡの単離が可能となった。一次配列を比較するこ とにより、これらの酵素は実質的に同一である予想された形態の構造を保持して いることが判明した。 しかしながら、一対の他と異なるグリコシルトランスフェラーゼを例外として 、多くのものがほぼ同一のヌクレオチド糖基質またはオリゴ糖アクセプター基質 の要請を示しているとはいえ、これらの酵素の間には一次配列の類似性が実質的 に存在しない。その例外的な対であるネズミα１，３ガラクトシルトランスフェ ラーゼ配列（あるいはそのヒト疑似ホモローグ）と、ヒトα１，３Ｎ−アセチル ラクトースアミントランスフェラーゼ）とは、これらの酵素が異なったヌクレオ チド糖基質を用い、明確に異なるオリゴ糖アクセプター基質要請を示していると はいえ、一次タンパクと核酸配列の類似性がかなり高い。 以上を考え合わせると、上記の観察によって、幾つかのグリコシルトランスフ ェラーゼは構造上の関連を有するが、そのような関連は必ずしもヌクレオチド糖 あるいはオリゴ糖アクセプター基質の要請に関する情報からは予言できるとは限 らないことがわかる。 上記したように、本発明者は、ヒト・ルイス血液型フコシルトランスフェラー ゼをコードするクローン化ｃＤＮＡを分離するために本発明の遺伝子移入手順を 使用した。本酵素は２個の異なるグリコシル転移反応を触媒する点において例外 的なグリコシルリトランスフェラーゼである。本酵素と血液型Ｈ α（１，２） フコシルトランスフェラーゼとの間の配列比較を行なうと、これら２つのフコシ ルトランスフェラーゼは、同一のヌクレオチド糖基質ＧＤＰ−フコースを使い、 また置換されていないタイプＩまたはタイプＩＩの二糖成分で終わるオリゴ糖を 利用できるのにも関わらず、異なった一次配列を維持することが分かる。 生化学的および遺伝子工学的なデータは、ヒトゲノムは表面局在のＳＳＥＡ− １決定基を構築する能力を有するフコシルトランスフェラーゼをコードする１以 上の構造遺伝子を含有していることを示している。これらの酵素は異なった受容 体基質特異性、および二価カチオンとＮ−エチルマレイミド失活に対する異なっ た反応性を示すため、ルイス・フコシルトランスフェラーゼとは異なったポリペ プチドであると考えられる。さらに、それらの発現はルイス式血液型フコシルト ランスフェラーゼ遺伝子座とは異なる座によって決定され、ルイスの遺伝子座パ ターンとは異った組織特異パターンを表す。 これらの酵素はルイス式血液型フコシルトランスフェラーゼと非常に類似した 特性を示すため、これらの酵素とそれに対応する遺伝子とは一次配列のレベルで 十分に関連づけられ、クロスハイブリダイゼーションの手法によってそれらを分 離できると発明者は認識した。したかって、他の実施例では、本発明はグリコシ ルリトランスフェラーゼをコードする遺伝子をクロスハイブリダイゼーションに よって分離するための方法を提供する。本発明に従って使用できるクロスハイブ リダイゼーション技術は一般に知られている。例えば、ラウアー（Ｌａｕｅｒ） ら、Ｃｅｌｌ（１９８０年）、２０：１１９−１３０、フリッチ（Ｆｒｉｔｓｃ ｈ）ら、Ｃｅｌｌ（１９８０年）、１９：９５９−９７２、ヘインズ（Ｈａｙｎ ｅｓ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８０年）、２５５：６３５５−６３ ６７：およびプラウドフット（Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａ ｃａｄ．Ｓｃｉ． （ＵＳＡ）（１９７９年）７６：５４２５−５４３９を参照。 これらの全てを本明細書の一部を構成するものとしてここに引用する。 上記のように、動物細胞によって構築されたオリゴ糖はそれらの構造が非常に 多様である。この多様性は不規則ではなく、正確な組織特異性と発生発現パター ンを示すオリゴ糖構造の特定のセットを含んでいる。これらの発現パターンを調 整するために細胞によって使用される分子メカニズムはあまり理解されていない 。しかし、上記パターンは、これらのパターンを決定するグリコシルリトランス フェラーゼの発現の協調調整によって主に決定されると思われる。最近の分子ク ローニングの努力の結果、幾つかのクローン化されたグリコシルリトランスフェ ラーゼｃＤＮＡの分離が可能となった。これらの酵素の一次配列を比較すること により、これらの酵素は事実上同一の推測された構造形態を維持することが明ら かとなった。しかし、これらの酵素の多くは事実上同一のヌクレオチド糖基質ま たはオリゴ糖受容体基質の要件を示すものの、１組の異なったグリコシルリトラ ンスフェラーゼを除き、これらの酵素の間では一次配列の類似性が実質的には存 在しないようである。例外の１組であるマウスα１，３ガラクトシルトランスフ ェラーゼ配列またはそのヒト配列相同体、およびヒトα１，３Ｎアセチルガラク トースアミン・トランスフェラーゼは、これらの酵素は異なったヌクレオチド糖 基質を使用し、異なったオリゴ糖受容体基質の要件を示すものの、一次タンパク および核酸配列が実質的に同じである。まとめると、これらの観察は、いくつか の グリコシルリトランスフェラーゼは構造的に関連しているが、それらの関係は、 ヌクレオチド糖またはオリゴ糖受容体基質の要件からは必ずしも予測できないこ とを示している。本発明者は最近、ヒト・ルイス血液型フコシルトランスフェラ ーゼをコードするクローン化されたｃＤＮＡを分離するために哺乳類遺伝子移入 手順を使用した（クコウスカ−ラターロ）ら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．、４： １２８８−１３０３、１９９０年）。本酵素は２個の異なるグリコシル転移反応 を触媒する点において例外的なグリコシルリトランスフェラーゼである。本酵素 と血液型Ｈ α（１，２）フコシルトランスフェラーゼとの間の配列比較を行な うと（ラーセン（Ｌａｒｓｅｎ）ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ． ＵＳＡ 、８７：６６７４−６６７８、１９９０年）、これら２つのフコシルトラ ンスフェラーゼは、同一のヌクレオチド糖基質ＧＤＰ−フコースを使い、また置 換されていないタイプＩまたはタイプＩＩの二糖成分で終わるオリゴ糖を利用で きるのにも関わらず、異なった一次配列を維持することが分かる（クコウスカ− ラターロら、Ｇｅｎｓ Ｄｅｖｅｌ．、４：１２８８−１３０３、１９９０年； ラーセンら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８７：６６７４ −６６７８、１９９０年）。生化学的および遺伝子工学的なデータは、ヒトゲノ ムは表面局在のＳＳＥＡ−１決定基を構築する能力を有するフコシルトランスフ ェラーゼをコードする１以上の構造遺伝子を含有していることを示している（ク コウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．、４：１２８８−１３０３、 １９９０年；ポトビン（Ｐｏｔｖｉｎ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２６５ ：１６１５−１６２２、１９９０年）。これらの酵素は異なった受容体基質特異 性、および二価カチオンとＮ−エチルマレイミド失活に対する異なった反応性を 示すため、ルイス・フコシルトランスフェラーゼとは異なったポリペプチドであ ると考えられる（ポトビン（Ｐｏｔｖｉｎ）ら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２ ６５：１６１５−１６２２、１９９０年）。さらに、それらの発現はルイス式血 液型フコシルトランスフェラーゼ遺伝子座とは異なる座によって決定され、ルイ スの遺伝子座パターンとは異った組織特異パターンを表す（ワトキンズ（Ｗａｔ ｋｉｎｓ）、Ａｄｖ．Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅｔ．、１０：１−１１６、１９８０年） 。これらの酵素はルイス式血液型フコシルトランスフェラーゼと非常に類似した 特 性を示すため、これらの酵素とそれに対応する遺伝子とは一次配列のレベルで十 分に関連づけられ、クロスハイブリダイゼーションの手法によってそれらを分離 できると発明者は認識した。本発明者は、幾つかのそのようなクロスハイブリダ イジングヒト遺伝子の分離、それらの構造とＤＥＡＥ−デキストラン媒介形質移 入後のＣＯＳ−１細胞中のそれらの発現の分析、およびそれらの受容体基質の特 性の分析を行なった。 そして、他の実施例においては、本発明は、ＧＤＰ−Ｆｕｃ：［β−Ｄ−Ｇａ １（１，４）］−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα（１，３）−フコシルトランスフェラーゼ （Ｆｕｃ−ＴＩＶ）としての機能できるタンパク配列をコードするＤＮＡ配列（ 配列認識番号７、図４に示す）を提供する。この酵素は、クローン化配列認識番 号７のＤＮＡ配列によって発現されたとき、哺乳類細胞中で機能し、これらの細 胞の特定の細胞表面糖複合体の新たな発現をひき起こす。 配列認識番号９の本ＤＮＡ配列（図５にｐＦＴ−３ＤＮＡとして示す）は配列 認識番号７のＤＮＡ配列に含まれている。即ち、配列認識番号９のＤＮＡ配列は 、配列認識番号７の配列内のヌクレオチド位置１９４２から始まることが分かっ ている（ヌクレオチド位置１９４２−１９４４のコドン）。 本発明の実施例で提供されるＤＮＡ配列および対応するペプチドは、図４に示 す配列認識番号７の配列の少なくともヌクレオチド位置２０８９−３１５９、好 ましくは位置１９４２−３１５６からのセグメントに対応しなければならない。 これらのＤＮＡ配列は、末端に任意的に付加される更なるＤＮＡ配列を有しても よい。これらの懸垂（ｐｅｎｄｅｎｔ）ＤＮＡは、任意の長さであることができ 、最長で図４に示すものに対応する長さまでである。 好ましい実施例では、本発明の上記実施例は、配列認識番号７の配列内少なく ともヌクレオチド位置２０８９−３１５９、好ましくは位置１９４２−３１５６ の間の配列に対応し、図４に示すこれらにセットに対応する更なるＤＮＡ配列を 各末端に任意的に付加したＤＮＡ配列、およびそれらに対応するタンパクを提供 する。この場合、これらの懸垂ＤＮＡおよび対応するタンパクは、任意の長さで あることができ、最長で図４に示す長さ迄である。 部分的に本酵素によって構築されるこれらの糖複合体構造は、ステージ特異性 胚抗原Ｉ（ＳＳＥＡ−１またはルイスｘ、構造：Ｇａｌβ（１，４）〔Ｆｕｃα （１，３）〕ＧｌｃＮＡｃ）に対する抗体によって、またＶＩＭ−２決定基であ るＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃβ−（１，３）Ｇａ ｌβ（１，４）〔Ｆｕｃ α（１，３）〕ＧｌｃＮＡｃに対する抗体によって認 識される。この酵素は、配列認識番号７のＤＮＡによって発現されたとき、図８ および表２に示したようにそのＤＮＡ配列を発現する細胞から調製された抽出物 中でアッセイすると、その名前がほのめかしているように酵素的に機能する。 本酵素のオリゴ糖産物は、”タイプＩＩ”のＧｌｃＮＡｃ残基（ラクトース〔 アミン〕受容体）へ、アルファ１，３構造で結合したフコースを表す。以下の説 明においては、これらの産物を末端近傍のα（１，３）フコース残基と称する。 上記のような３つの特定のクロスハイブリダイゼーションヒト遺伝子（配列認 識番号７、配列認識番号１０および配列認識番号１３）の分離、およびこられの 構造とＤＥＡＥ−デキストラン媒介形質移入後のＣＯＳ−１細胞中に於ける発現 の分析、およびそれらの受容体基質特性の分析が下記の実施例（実施例ＩＶ、Ｖ ：ＶＩ）に記載され、図８と表２にまとめられている。配列認識番号１０の配列 （Ｆｕｃ−ＴＶ）は、ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−Ｇ ｌｃＮＡｃ α（１，３）フコシルトランスフェラーゼとして機能できる特定の タンパク配列をコードする。この酵素は、上記のクローン化ＤＮＡ配列によって 発現されたとき、哺乳類細胞中で機能し、これらの細胞上で特定の細胞表面糖複 合体構造の新たな発現を引き起こす。これらの構造は、ステージ特異性胚抗原Ｉ （ＳＳＥＡ−１またはルイスＸ、構造：Ｇａｌβ（１，４）〔Ｆｕｃ α（１， ３）〕ＧｌｃＮＡｃ）に対する抗体によって、またシアリル・ルイスｘ決定基で あるＮｅｕＡｃα（２，３）Ｇａｌβ（１，４）〔Ｆｕｃ α（１，３）〕Ｇｌ ｃＮＡｃに対する抗体によって認識される。この酵素は、上記のクローン化され たＤＮＡ配列によって発現されたとき、そのＤＮＡ配列を発現する細胞から調製 された抽出物中でアッセイすると、その名前がほのめかしているように酵素的に 機能する。本酵素のオリゴ糖産物は、“タイプＩＩ”のＧｌｃＮａｃ残基（ラク トース〔アミン〕受容体）へ、アルファ１，３構造で結合したフコースを表す。 以下の説明においては、これらの産物を末端近傍のα（１，３）フコース残基と 称する。本酵素の触媒ドメインの位置は、配列認識番号１１の配列のアミノ酸４ ３−３７４を含むことが実験的に示された。 配列認識番号１３および配列認識番号１４（Ｆｕｃ−ＴＶＩ）のＤＮＡおよび コードされたタンパクは以下のように使用される。 ｉ．細胞表面または細胞内、または分泌タンパクまたは脂質のオリゴ糖、本酵 素の産物を表す末端近傍のα−（１，３）フコース残基による、翻訳後修飾に関 する特定の能力を有する動物細胞株の構築（バイオテクノロジー産業による診断 剤および治療剤の生産のため）。 即ち、本明細書で述べるクローン化ＤＮＡは、標準的な技術によって、同族の 酵素またはその産物（オリゴ糖上の末端近傍のα−（１，３）フコース残基）を 通常は発現しない哺乳類細胞株中に導入し、その細胞内で“センス”方向に転写 し、細胞表面または細胞内のオリゴ糖、または分泌タンパクまたは脂質上の末端 近傍のα−（１，３）フコース残基を発現できる細胞株を得る。あるいは、この クローン化ＤＮＡ配列は、通常の技術によって、同族の酵素およびその産物（末 端近傍のαー（１，３）フコース残基）を発現する哺乳類細胞株中に導入し、そ の細胞内で“アンチセンス”方向に転写し、細胞表面または細胞内のオリゴ糖、 または分泌タンパクまたは脂質上に末端近傍のα（１，３）およびフコース残基 を発現できない細胞株を得るようにしてもよい。またあるいは、同族の酵素を発 現する哺乳類細胞におけるＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ −ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼ遺伝子を本明細書 で述べるＤＮＡ配列を用い、相同りコンビネーション技術、または本明細書で述 べるＤＮＡ配列に基づく“アンチセンス”オリゴヌクレオチドのアプローチ、ま たは内因性のＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡ ｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼを不活化し、本明細書に記載す る配列情報に関連して、突然変異生成および遺伝子選択法を通して得られる負の 優性を示す突然変異体フコシルトランスフェラーゼ配列によって不活化してもよ い。 この方法は、クローン化ＤＮＡ配列およびその同族酵素によって決定される特 定の翻訳後修飾に有用性または効力が依存する診断物質または治療物質のための 好適な宿主細胞となる動物細胞株を構築するために使用できる。例えば、多くの 治療タンパク、ペプチド、リコンビナント等の生物学的効果は、それらに共有結 合的に付加されるオリゴ糖構造に決定的に基づいている。これらのオリゴ糖の構 造は、主にこれらの治療産物を生産するのに使用される細胞内に発見されるグリ コシルトランスフェラーゼの数と種類によって定まる。動物細胞および酵母は、 これらのグリコシル化反応を行なう能力を有するが、グリコシルトランスフェラ ーゼ酵素の全てが各動物細胞または酵母によって産出されるものではなく、した がって、幾つかのオリゴ糖構造（本明細書で述べるＤＮＡ配列によってコードさ れる酵素によって生成される末端近傍のα（１，３）フコース残基を含む）はそ れらから産出されない。この逆も真である。即ち、生産細胞は、本明細書に記載 されたＤＮＡ配列によってコードされるＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１ ，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼと類 似または同一のグリコシルトランスフェラーゼを発現する。末端近傍のα（１， ３）フコース残基は、哺乳類または他の真核宿主細胞によって生産される天然の またはリコンビナントの治療または診断剤（糖タンパク、糖脂質）の生物学的活 性を変更するであろう（よかれあしかれ）。バイオテクノロジー産業がこれらの リコンビナント剤を生産するために使用する真核宿主細胞を、本発明に記載され たＤＮＡ配列情報およびそれに関連する情報を用いて変更し、本明細書に記載さ れたクローン化された配列の全てまたは一部を必要とされる宿主細胞において発 現することにより、末端近傍のα（１，３）フコース残基をリコンビナント産物 上のオリゴ糖に付加できるであろう。あるいは、形質移入した“アンチセンス” ベクター構造体、リコンビネーションに基づく遺伝子の不活性化、“アンチセン ス”オリゴヌクレオチドの手法、または上に概説した負の優性の突然変異体フコ シルトランスフェラーゼを使用することによって、これらの宿主細胞内に生成さ れる産物から末端近傍のα（１，３）フコース残基を除去してもよい。 このプロセスのために使用される従来方法には、この特定の酵素または、適切 な修飾りコンビナントまたは天然産物の生産のために類似したまたは同一の方法 で機能する酵素を発現する細胞と発現しない細胞株を認識するための経験的手法 を含む。この特定の翻訳後修飾能力を有する細胞株は天然に存在しないか、適切 に修飾された製品を高レベルで生産するのに適していないかも知れないため、こ のアプローチが常に最適ではない。一方、経験的手法によって同定された動物細 胞株が産生する治療材料上に存在する不要な末端近傍のα（１，３）フコース残 基は、化学的または酵素的に除去しなければならず、プロセスのコストが高くな るか効率が悪化する。上に概説した技術との関連で本明細書中に記載したクロー ン化した機能的ＤＮＡ配列を使用することの利点には、他の従来の方法に比べ、 糖タンパクおよび糖脂質のオリゴ糖上に末端近傍のα（１，３）フコース残基を 生成する能力を特異的に欠く株を構築する能力を有することが含まれる。適切に 構築されたこれらの細胞株は、不要な末端近傍のα（１，３）フコース残基を除 去するための治療または診断材料の化学的または酵素的な処理の必要性を無くす 。さらに、動物細胞によって生産される特定の診断または治療製品にとって末端 近傍のα（１，３）フコース残基が必要であることが分かった場合、これらの残 基を生成するために細胞株を本明細書で述べたクローン化ＤＮＡ配列を用いて処 理してもよい。 ｉｉ．オリゴ糖の能率的な酵素的合成と生産（例えば、酵素リアクターを用い て）に適した試薬の分離 オリゴ糖は、臓器移植の分野において免疫調節剤としての治療的有用性を有す る。特に、溶解性で固体相のオリゴ糖は、ルイス血液型システムを含む、主要血 液型抗原システムが臓器ドナーと受入患者との間で相違することによる不適合性 がある場合における抗体媒介臓器移植拒否反応を阻止するかまたは改善するため に使用される治療薬として使用できるであろう。同様に、可溶性のオリゴ糖は、 バクテリア性、ウイルス性、または寄生性の病原体が糖複合体“受容体”に付着 するのを阻止することによって機能する治療薬として使用されるであろう。この 糖複合体受容体は、これらの病原菌が侵入する動物組織の表面で見つかる。例え ば、ルイス血液型オリゴ糖抗原（末端近傍のα（１，３）フコース残基を含む） の一部はウロパソゲン性のバクテリアのいくつかの形に対して“受容体”として 働く。さらに、末端近傍のα（１，３）フコース残基などの糖複合体体は、発生 および分化のプロセス中における細胞間、および細胞とそれらの環境との間での 結合を変化させことと関連づけられている。これらの結合には、精子の卵子への 接合、着床初期における子宮壁への卵の付着の媒介などが含まれる。これらの観 察は、例えば、（生物学的に“天然の”）オリゴ糖分子を避妊薬として使用でき る可能性も存在するかもしれない。さらに、末端近傍のα（１，３）フコース残 基を含む特定の糖複合体は、免疫系の細胞、幾つかの腫瘍細胞、および血管の内 皮細胞の表面の間の付着の媒介に重要な役割を果たす接着分子のＬＥＣＣＡＭ／ セレクチンファミリーのためのリガンドとして関係付けられている。したがって 、本明細書で述べているクローン化されたフコシルトランスフェラーゼ配列を使 用し、抗炎症および抗腫瘍転移機能を保持する製薬特性を有するオリゴ糖型分子 を構築することができる。 現在、末端近傍のα（１，３）フコース残基を含むオリゴ糖は、化学的合成（ 効率が悪く、コストが高い）、または天然のソースからの単離によって（時とし て多量の動物または植物材料の処理、および必要とされるオリゴ糖の他の汚染オ リゴ糖からの精製を必要とする、コストが高く、効率の悪い手続きを使用して） 生産されている。本明細書で述べられている発明は、精製されたＧＤＰ−Ｆｕｃ ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシル トランスフェラーゼを多量に合成するメカニズムを提供する。このメカニズムは 、末端近傍のα（１，３）フコース残基を含む構成を酵素的に合成できる酵素バ イオリアクターを構築するのに使用できる（本発明者であるジョーン・ロウによ って発行された以前の原稿に記載されているように、溶液中の、または例えばプ ロテインＡ成分を介して固相マトリックス上に固定化された酵素が酵素の触媒領 域に融合される）。この方法は、末端近傍のα（１，３）フコース残基を含む構 造の化学的合成を含むアプローチ、および天然ソースからのそれらを精製するも のに比べ、種々の理由でより効率的である。第１に、必要とされる化学物質は酵 素基質のみであるが、これらは容易に入手でるか、さもなければ合成できる。第 ２に、そのような構造の酵素的合成は、必要とされる産物と基質加水分解のヌク レオチド・二燐酸物のみを産出する。後者の化学物質は、動物細胞におけるこれ らの反応の天然副産物として発見されるものであり、比較的毒性が無く、そして 、オリゴ糖合成産物から容易に分離できる。これに対し、化学的合成手順では一 般に、除去しなければならない数々の副反応産物が生成し、それらは毒性を有 する。同様に、天然のソースからのオリゴ糖の精製は、天然の材料内に存在する 他の汚染オリゴ糖を除去する必要がある。第３に、酵素的触媒作用が際立って効 率的であり、基質をほぼ完全に製品に変換できる。これに対し、オリゴ糖上の末 端近傍のα（１，３）フコース残基の化学的合成は、複数工程のプロセスであり 、各工程での収率は１００％よりかなり低く、現在の化学合成手順の累積効率は 、酵素合成によって可能な効率には達していない。同様に、天然の材料からの末 端近傍のα（１，３）フコース残基を有するオリゴ糖の精製は、オリゴ糖の種類 に関わらず、汚染物から必要とされるオリゴ糖を分離するために必要となる精製 手順に固有の大きなロスを伴い、必要とされるオリゴ糖の分離も不十分である。 本明細書で述べているＤＮＡ配列によってコードさされるＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β −Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシルトラン スフェラーゼは、合成の目的のために動物の組織から部分的に精製されるが、こ れらの精製はそれ自体不十分である。これは、一般に当該酵素が非常に少量しか 存在しないことが主要な原因である。本発明は、本酵素の大量の生産を可能にす る２つのメカニズムを提供する。第１は、本酵素を比較的多量に産出する動物細 胞を構築して選択することによって行なわれる。あるいは、クローン化された核 酸配列に標準的なリコンビナントＤＮＡ技術を適用し、酵母または原核宿主細胞 内で多量のグリコシルトランスフェラーゼを産出する。さらに、この酵素をコー ドする配列を，標準の分子クローニング、または突然変異誘発を通して修飾し、 天然形の酵素に比べてより好ましい新規な特性を有するリコンビナント・フコシ ルトランスフェラーゼを得てもよい。例えば、酵素をより安定にし、バイオリア クター内での固定に対しての適合性を向上させるために酵素に対して修飾が行な われるかもしれない。 ｉｉｉ．研究用試薬として直接使用するか、研究での応用のために、ＧＤＰ− Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フ コシルトランスフェラーゼに対する抗体を生成するリコンビナント・ＧＤＰ−Ｆ ｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコ シルトランスフェラーゼを生産するのに適した試薬の分離 本発明は、オリゴ糖または糖タンパクの構造と機能を研究するための研究の道 具として使用されるであろう本酵素を多量に生成するための２つのメカニズムを 提供する（上記パラグラフｉｉ参照、すなわち、特別に構築される動物細胞、ま たはこれらの酵素をコードする天然または合成遺伝子を介して構築される）。同 様に、本方法によって生産される酵素、または本方法によって提供される核酸配 列およびそれらから誘導されるタンパク配列は、（合成ペプチドを介して）本酵 素に対する抗体を生成するために使用できる。また、これらの抗体は、これらの 酵素の生物学的合成と処理を研究するための研究用試薬として使用でき、また本 明細書に記載されている全ての使用のためのそれらを生成する時の助剤として使 用できる。 ｉｖ．診断用試薬としてのグリコシルトランスフェラーゼに対する抗体 ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１ ，３）−フコシルトランスフェラーゼの異常発現は、ヒトにおける悪性腫瘍と関 連づけられており、本酵素が多数のヒト組織を含む悪性腫瘍の早期検出の腫瘍マ ーカーとして機能しているであろうことが示唆されている。典型的に、酵素腫瘍 マーカーは、活性試験により体液内において検定され、競合するグリコシルトラ ンスフェラーゼ活性のために、非特異性となることがある。不活性な酵素が腫瘍 マーカーとして有用であるが酵素活性試験では検出できない可能性もあるため、 これらの試験も感度が悪い。本発明は、本酵素に対する抗体（ＧＤＰ−Ｆｕｃ： 〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシルト ランスフェラーゼをコードするクローン化ＤＮＡ配列から得られる情報から構築 される合成ペプチドに対しての、または真核性あるいは原核性の宿主細胞によっ て発生されるリコンビナント酵素に対する抗体（モノクローナルおよびポリクロ ーナル抗体）を生成するメカニズムを提供する。このようにして生成されたＧＤ Ｐ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３） −フコシルトランスフェラーゼに対する特異的な抗体は、体液中の本グリコシル トランスフェラーゼを検出し測定するために使用でき、酵素活性試験を上回る特 異性と感度を有し、また悪性度の早期検出のための腫瘍マーカーとして機能する 可能性を有している。 ｖ．フコシルトランスフェラーゼ阻止剤または不活化剤として天然または合成 化合物をスクリーニングするのに使用するリコンビナント酵素 数々の研究が、細胞のオリゴ糖上の細胞表面末端近傍のα（１，３）フコース 残基の数の増加と、その細胞の悪性的に転移する能力との間の関係について言及 している。もしそこに因果関係があるとすれば、本明細書中の配列によってコー ドされる酵素を阻止する薬は抗腫瘍剤としての活性を有する可能性がある。同様 に、最近の数多くの研究は、炎症中における選択接着分子（ＥＬＡＭ−１、ＧＭ Ｐ−１４０、Ｍｅ１１４／ＬＡＭ−１）への白血球の接着の媒介に、末端近傍の α（１，３）およびα（１，４）リンケージを含むシアリル化された中性のオリ ゴ糖を関連づけている。これらの研究は、白血球上のα（１，３）およびα（１ ，４）フコースリンケージの合成を阻止できる分子は、末端近傍のα（１，３） およびα（１，４）リンケージを合成しかつ表現する白血球の能力を低下または 除去でき、抗炎症医薬品となることを示唆している。本明細書に記載されている 試薬は、抗フコシルトランスフェラーゼ活性を示す化合物を分離し確認するため のスクリーニングのために有用であることがわかる。なぜなら、クローン化した 配列に標準的技術を適用することにより、比較的多量の純粋なフコシルトランス フェラーゼが得られるからである。細胞抽出物全体を用いたときや、部分的に精 製された酵素を用いたときに起こりうる効果の混同を生じることなく、潜在的な 阻止剤の効果が純粋な酵素についてテストされるため、これはスクリーニングに おける手助けになる。 ｖｉ．分泌または細胞に結合する糖複合体上の新規な糖複合体構造の生成に特 異的なグリコシルトランスフェラーゼ基質のエンジニアリング 本発明は、適切な突然変異誘発および遺伝子選択とともに使用することにより 、野性型酵素によって生成されるものとは相違するグリコシルリンケージを発生 する突然変異体ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮ Ａｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼを生成することができる試薬 （クローン化ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡ ｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼ遺伝子セグメント）を提供する 。この新規なリンケージは、天然に存在するかもしれないし、存在しないかもし れないが、それらが付加された分子の生物学的活性を高める成分として利用でき る。 本酵素は、他のα（１，３）フコシルトランスフェラーゼに類似した一次配列を 維持しているが、異なった１組の受容体基質利用性特性を示すため、指向性突然 変異誘発手続きを考えることができる。あるいは、負の優位性を示すように作用 する突然変異体ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮ Ａｃ α（１，３）−フコシルトランスフェラーゼを生成するために突然変異誘 発と選択アプローチを使用してもよい。このようにして得られる負の優性の突然 変異体は、そのような酵素の生成物が不要な場合には内因性グリコシルトランス フェラーゼ活性を不活化するのに使われる。また突然変異体ＧＤＰ−Ｆｕｃ：〔 β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）〕−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３）−フコシルトラ ンスフェラーゼは、例えば、試験管内および生体内においてオリゴ糖からの種々 の糖リンケージ（フコース、マノースまたはその他）を加水分解するフコシダー ゼとして機能するように生成される。 ｖｉｉ．本フコシルトランスフェラーゼ遺伝子座における個体の遺伝子型決定 本明細書で詳述されているＤＮＡ配列によってコードされるものと類似か同一 のフコシルトランスフェラーゼが幾つかのファミリー（科）では存在しないこと が発見されている。もしその不在が障害表現型と関連しているのであれば、この クローン化された遺伝子セグメントに対応する遺伝子内のまたは遺伝子に結合し たＤＮＡ配列多型が、遺伝子カウンセリングの目的のために、本遺伝子座におけ る個体の遺伝子型を決定するのに使用できる。同様に、そのような障害表現型の ための分子的背景がそのような現象と因果関係を有するのであれば、そのような 障害表現型のための分子の基礎は本明細書で述べられている遺伝子セグメントの 研究を通して明らかにされるであろう。 本発明の他の特徴は、本発明を示すための実施例についての下記の記載によっ て明らかになるであろう。しかし、本発明はその実施例に限定されるものではな い。 実施例 実施例Ｉ．α（１，２）フコシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列のクローニン グと発現（ＤＮＡ配列認識番号５、タンパク配列認識番号６） ： ヒトα（１，２）フコシルトランスフェラーゼ遺伝子導入のための宿主として のマウスＬ細胞−マウスＬ細胞を遺伝子導入のための宿主としてテストした。マ ウスＬ細胞はこの目的のために広く用いられてきた。これらの細胞はゲノムＤＮ Ａを高効率でＬ細胞に導入することができ、また外因性ＤＮＡ配列の安定した導 入を選択するための代謝あるいは抗生物質耐性に関する幾つかのダイアグラムを 利用することができる。 タイプＩＩのＨ構造を認識するモノクローナル抗体と共に蛍光活性化セルソー ティング法を用いて、細胞Ｌ細胞の表面におけるＨ Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌ 結合の発現を調べた。この抗Ｈ抗体によって染色された細胞は、対照のマウスＩ ｇＭモノクローナル抗体で染色された細胞から得られるプロフィルおよびＦＩＴ Ｃ接合第二抗体によってのみ染色される細胞から得られるプロフィルと実質的に 同等なＦＡＣＳプロフィルを示した。この結果から、Ｌ細胞は抗Ｈ抗体によって 検出可能な表面局在のＦｕｃα（１，２）Ｇａｌ結合を発現しないことが判る。 本発明者はＬ細胞抽出物を試験して、表面発現されたＨ決定基がなかった理由 はα（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性の欠損によるものであることを 確認した。α（１，２）フコシルトランスフェラーゼの試験のためのアクセプタ ーとしてはフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを用いた。この化合物はα（１，２ ）フコシルトランスフェラーゼ類に特異的なアクセプターであって、これらの酵 素によって効率的に利用される一方、α（１，３）、α（１，４）、またはα（ １，６）結合を生成するフコシルトランスフェラーゼ類のアクセプターとしては 機能しない。Ｌ細胞抽出物は、多量の抽出物を用いて試験してもあるいはインキ ュベーション時間を延ばして試験しても、検出可能なα（１，２）フコシルトラ ンスフェラーゼ活性を有しない。Ａ４３１細胞抽出物との混合実験の結果、検出 可能な酵素活性の見かけ上の不存在は阻害剤のためではないことが判明した。 発明者はＮ−アセチルラクトースアミン（Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ） 末端基を有する複合糖質のＬ細胞上の表面発現についても検討した。これらの末 端基は、ヒトα（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を補足する潜在的な アクセプター分子であってこれによって得られる表面発現されたＦｕｃα（１， ２）Ｇａｌ結合を抗Ｈ抗体で検出することを可能とするものであると考えられる 。エリトリナクリスタガリ（ＥＣＡ）から得られる凝集素をこの分析に用いた。 このレクチンは一以上の未置換Ｎ−アセチルラクトースアミン末端基を有するオ リゴ糖に対して高い親和性を示す。Ｌ細胞を、精製したＦＩＴＣで標識されたＥ ＣＡ、あるいはハプテンＮ−アセチルラクトースアミンでプレインキュベートし 、かつＦＩＴＣで標識されたＥＣＡで染色してＦＡＣＳ分析にかけた。その結果 、これらの細胞に大量のＥＣＡが結合していることおよびその結合はハプテンＮ −アセチルラクトースアミンによって効果的に阻止されることが示された。この 結果は、Ｌ細胞がＮ−アセチルラクトースアミン成分を含有するオリゴ糖を合成 するという予想と一致するものであり、これらの複合糖質の一部が修飾されない ままに残り細胞表面で発現していることを示唆している。 本発明者はさらにフコシルトランスフェラーゼ基質ＧＤＰフコースの合成能に ついてＬ細胞を試験した。この分析試験の結果、ＧＤＰ−［³Ｈ］フコースとＧ ＤＰ−［³Ｈ］マンノースの両者が［２−³Ｈ］マンノースで標識された細胞から 調製された水性抽出物中に確認された。この細胞におけるＧＤＰ−［³Ｈ］フコ ースの細胞下の存在位置はこの分析試験では確認できない。効果的なゴルジ体フ コシルトランスフェラーゼ活性は、恐らくゴルジ腔におけるＧＤＰフコースの基 質濃度の存在を要求するものと考えられる。これらの細胞はフコース代謝におけ る欠陥について選択されたものではないので、これらの細胞はゴルジ腔へ細胞質 合成化合物を輸送する能力を有するように思われる。このことは、これらの細胞 が放射性物質で標識されたフコースを膜複合糖質中へと導入することができるこ とを示すことによって確認される。この標識フコースの殆どは、Ｎ−結合性オリ ゴ糖のいくつかのもののアスパラギン結合性Ｎ−アセチルグルコーサミンに対す るα（１，６）結合の中のフコースを現しているであろう。 上記を総合すると、これらの試験は、（α−１，２）フコシルトランスフェラ ーゼ活性を決定するヒトＤＮＡ配列の導入・発現の後で、Ｌ細胞は表面に位置す るＨＦｕｃα（１，２）Ｇａｌ結合を現す能力を有することを示している。 α（１，２）フコシルトランスフェラーゼＤＮＡ配列に対するドナーとしての ヒトＡ４３１細胞−ヒトＡ４３１細胞株がタイプＩとＩＩの血液型Ｈ構造を発現 することにより、これを遺伝子導入の源として検討した。Ａ４３１細胞から調製 された抽出物は、フェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを用いた試験でα（１，２） フコシルトランスフェラーゼ活性を有することが示されている。Ａ４３１抽出物 によって作製された放射性標識化産物は、ヒト血清Ｈ（α−１，２）フコシルト ランスフェラーゼによって産生された正統［¹⁴Ｃ］フコシル化フェニル−β−Ｄ −ガラクトシドと同時にクロマトグラフされた。Ａ４３１産物をα−Ｌ−フコシ ダーゼで分解すると定量的にＬ−フコースが得られた。これらの結果は、Ａ４３ １細胞が一以上の機能的な（α−１，２）フコシルトランスフェラーゼ遺伝子を 有し、よって遺伝子導入のためのヒトＤＮＡ源として適切であることを示してい る。 モノクローナル抗Ｈ抗体によって認識される表面分子を発現するマウス形質移 入体の単離−ヒトα（１，２）フコシルトランスフェラーゼの発現を決定するＤ ＮＡ配列を有するマウス細胞を単離するために、Ｌ細胞の単層培養物を、Ａ４３ １細胞とｐＳＶ２−ｎｅｏプラスミドＤＮＡから調製された高分子量のゲノムＤ ＮＡと共に共形質移入した（３０：１）。ｐＳＶ２−ｎｅｏとの共形質移入の後 、外因性ＤＮＡ配列が安定的に導入されている形質移入体の選択を可能とする、 トランスフェクトされた細胞をＧ４１８含有培地において生育した。この手順に よって、本発明者は略６００００個の独立したＧ４１８耐性形質移入体を示す細 胞集団を生成した。本方法は典型的には略１０００ｋｂのトランスフェクトされ た配列をレシピエント細胞のゲノム中に導入するものである。ヒトゲノムのサイ ズは略３×１０⁶ｋｂであるので、ヒトゲノム半数体の略２０コピーが一次形質 移入体のこの「ライブラリ」中に存在するものと本発明者は評価している。 パンニングと滅菌セルソーティングの組合せによってＨ抗体を発現する形質移 入体を選択した。トランスフェクトされた細胞の全集団を代表する細胞のプール を、タイプＩＩのＨ構造を認識するマウスＩｇＭモノクローナル抗体と反応させ た。結合した抗Ｈ抗体による形質移入体に対し、ヤギ抗マウスＩｇＭでコーティ ングされた滅菌皿上でパンニングによる最初の選択を行った。この段階で、本発 明者は本手続きがフローサイトメトリーによる選択よりもより効果的であること を見いだした。なぜなら本手続きによれば多数の形質移入体を迅速にかつ簡便に 処理することができるからである。パンニングによって選択された形質移入体を 、培養物に戻して引き続き選択のサイクルにかけて増幅した。この最初の選択の 後における細胞のＦＡＣＳプロフィルには、抗Ｈ抗体に結合した細胞であること を明白に示すピークはなかった。しかしながら、ＦＡＣＳヒストグラム分析の結 果は、略０．１３％の細胞が対照抗体で染色された細胞より一層明るく染色され たことを示していた。全細胞集団の最も明るい細胞３−５％の細胞を無菌的に収 集し、再び１４日間培養後同じ手順によって再び選択を行った。３回の選択の後 、ＦＡＣＳ分析によって抗Ｈ抗体で明るく染色された明確な細胞集団が現れた。 これらの細胞を収集して再び培養した。発見的手法を用いるために、形質移入体 をＦＡＣＳ選択と平行してパンニングによる選択にかけた。本発明者は、抗Ｈ抗 体に結合した細胞集団を富化するにはパンニングがより効果的であることを見い だした。これは恐らくＩｇＭ抗Ｈ抗体がＨ−陽性である形質移入体を凝集させ、 ＦＡＣＳによる選択に干渉するためであろう。 従って引き続く選択はすべてパンニングによって行った。パンニングをさらに ３回繰り返した後（合計７回のパンニング）、選択した集団における細胞の９０ ％以上が抗Ｈ抗体で明るく染色された。この集団からクローン分離集団を生成し 、各々のサブクローンについてＦＡＣＳによってＨ抗原発現を分析した。多くの クローンは、Ｈ−発現のあるいは非発現の形質移入体からなる、表現型が混合し た細胞を出現させた。表現型の見かけ上の不安定さの理由は不明である。安定で 明るいＨ抗原陽性の表現型を示したクローンを一つ選択してさらに分析した（ク ローンｍＨ１−１２）。クローンｍＨ１−１２の表現型は、Ｈ発現の選択を行わ なかったにもかかわらず９カ月以上安定に維持された。 本発明者は、ネズミ（α−１，２）フコシルトランスフェラーゼ遺伝子がＬ細 胞集団における変異細胞中でめったに活性を示さないこと、あるいはトランスフ ェクション手続きそれ自身がこの遺伝子を活性化しかつ選択プロセスがこれらの 好ましくない事柄を引き起こすことがあることに関し、これらを防止する方策を 検討した。即ち、並行して行う対照実験において、ｐＳＶ２−ｎｅｏを選択マー カーとして用いて、Ｌ細胞から調製された高分子量のゲノムＤＮＡでＬ細胞をト ランスフェクトした。次いで正しく上記の方法によってこれらの形質移入体をＨ 抗原発現に関し選択した。発明者は、Ｈ−発現細胞をネズミゲノム半数体の１５ コピー以上の等価物を組み込んだ独立した形質移入体（少なくとも４００００） の集合からＨ−発現細胞を検出あるいは単離することができなかった。 一次形質移入体は細胞表面のタイプＩＩ血液型Ｈ抗原および（α−１，２）フ コシルトランスフェラーゼ活性を発現する−クローンｍＨ１−１２を、タイプＩ Ｉ血液型Ｈ構造（Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ−Ｒ）を 認識するモノクローナル抗Ｈ抗体で選択した。この抗体のｍＨ１−１２細胞に対 する結合は、抗体をタイプＩＩ Ｈ ハプテン２’−フコシルラクトース（Ｆｕ ｃα（１，２）Ｇａｌβ（１，４）Ｇｌｃ）でプレインキュベートしたとき阻止 された。対照的に、抗Ｈ抗体とＬ−フコース、あるいは抗Ｈ抗体とＮ−アセチル ラクトースアミンないしラクトースの同じ濃度におけるプレインキュベーション では、この抗体のｍＨ１−１２細胞への結合を阻止しない。タイプＩＩ Ｈ構造 に関して特異的であることをすでに示した、異なったモノクローナル抗Ｈ抗体（ ＢＥ２）をこれらの実験において使用したとき、本発明者は２’−フコシルラク トースとの結合の阻害を観察したが、他のハプテンとの結合の阻害は観察されな かった。これらの研究の結果は、ｍＨ１−１２細胞は、末端Ｆｕｃα（１，２） Ｇａｌ結合と結合された、細胞表面における糖複合体を発現することを示唆して いる。 この結合の存在に関する付加的な証拠は、ヒト血漿から精製される結合特異性 血液型Ａ（α−１，３）ＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼを利用することによっ て得られる。このグリコシルトランスフェラーゼは末端非還元基として血液型Ｈ アクセプターを絶対的に要求する。それはこの構造のガラクース部に対するα− １，３結合中のＮ−アセチルガラクトーサミンの付加を促進し、ＧａｌＮＡα（ １，３）［Ｆｕｃα（１，２）］Ｇａｌという形の血液型Ａ−反応性分子を構築 する。血液型Ａグリコシルトランスフェラーゼの作用によって血液型Ａ反応性の 決定基をｍＨ１−１２細胞表面上において生成することによって、タイプＩＩ Ｈ阻止の研究の結果から推測されるように、末端Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌ結 合の存在を確認できるであろう。 ホルマリン固定されたｍＨ１−１２細胞を、血液型Ａ（α１，３）ＧａｌＮＡ ｃトランスフェラーゼ、そのヌクレオチド糖基質（ＵＤＰＧａｌＮＡｃ、１ｍＭ 、ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃのＫ_mの約２０倍）、およびこの酵素の活性を維持する バッファーからなる組成物でインキュベートした。得られた細胞を用いて、新た に合成された表面に局在する血液型Ａ決定基質の存在を、モノクローナル抗Ａ抗 体を用いた間接免疫蛍光法によって探索した。 Ａ（α−１，３）ＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼとその基質で４時間インキ ュベートした後、血液型Ａ決定基が細胞表面上に検出可能となった。ＵＤＰ−Ｇ ａｌＮＡｃまたは血液型Ａトランスフェラーゼの不存在下で行った対照反応にお いては、抗Ａ抗体による染色は観察されなかった。Ｌ細胞はこれらのいずれの条 件においても抗Ｈ、抗Ａとの結合を示さなかった。 本発明者はＡ酵素で処理された細胞を抗Ｈ抗体とともに染色し、表面発現され たＨ構造の喪失について試験した。Ｈ構造は、Ａ酵素によってＦｕｃα（１，２ ）Ｇａｌ結合のガラクトースに付着しているＮ−アセチルガラクトーサミン分子 によって”マスク”されているはずである。Ａ酵素とその基質の両者とともに４ 時間インキュベーションすると、抗Ａ抗体によって生成した染色は少しだけ低減 した。しかしながら、２４時間転換反応を行うと、細胞表面のＨ反応性が実質的 に完全に消えてしまった。この結果は、強いＡ反応性が続く現象と一致する。Ａ 酵素を含有するが基質を含有しない対照反応混合物で２４時間処理した細胞は、 強い抗Ｈ染色を示した。このことから、２４時間の反応の後にみられるＨ反応性 の喪失は、血液型Ａ酵素組成物を汚染するグリコハイドロラーゼあるいはプロテ アーゼ活性によるＨ構造の破壊によるものでないことがわかる。長期間のインキ ュベーション後のＨ活性の喪失は、よってＡ酵素によって促進されたα−１，３ −結合性Ｎ−アセチルガラクトーサミンの付加による、Ｈ構造の”マスキング” の結果である。得られたこれらのデータから、ｍＨ１−１２細胞は、正統的なＨ Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌ結合で集結する、細胞表面の糖複合体を発現すること がわかる。 ｍＨ１−１２細胞から調製された抽出物を試験することにより、これらの細胞 はα−（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を発現することが確認された 。これらの反応におけるフコシル化された産物をα−フコシダーゼで分解するこ とにより、フコースの付着がαアノマー性結合であることが確認された。 一次形質移入体におけるヒトＤＮＡ配列の分析−サザンブロット分析によって 、ｍＨ１−１２細胞株がヒトＤＮＡ配列を含有しているかどうかを調べた。ＢＬ ＵＲ８ Ａｌｕ配列を、ヒトの配列を検出するために用いた。使用したハイブリ ダイズ条件および洗浄条件では、ヒトＡｌｕプローブはマウス配列とクロスハイ ブリダイズしなかったが、マウスＬ細胞ＤＮＡ（１０μｇ）に付加されたＡｌｕ 配列の幾つかのコピーの等価物を検出することができた。比較として、Ａ４３１ ＤＮＡサンプル（３ｎｇ）は、高度に反復し、散在するＡｌｕ配列を予想させる 、分散したしかし比較的強いハイブリダイズ信号を示した。これらの条件の下で 、本発明者はｍＨ１−１２細胞（５００ｎｇ）のゲノム中に多量のヒト配列を検 出した。この分析から、予想として、ｍＨ１−１２細胞のゲノムはおよそ１００ ０ｋｂのヒトＤＮＡを含有することがわかる。 細胞表面のタイプＩＩ Ｈ抗原を発現する多数の二次形質移入体の単離および （α−１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性−本発明者は、ｍＨ１−１２細 胞のゲノムにおける多くのヒト配列において、Ｈ−陽性表現型の発現を仲介する 特異的なヒト配列を同定、確認するために以下の手続きを行った。外因性ヒトＤ ＮＡの量を低減するために、本発明者はｍＨ１−１２から調製されたＤＮＡを用 いて”二次的な”形質移入体”ライブラリ”を生成し、これらのライブラリをス クリーニングしてＨ構造を発現する形質移入体を検出した。発明者は、このよう にして検出された、Ｈを発現する二次形質移入体は、それらのゲノム中において 検出できる、それぞれ少量のヒトＤＮＡ制限フラグメントを有するであろうと予 想した。発明者は幾つかの独立した二次形質移入体を単離しようとした、なぜな らＨ決定遺伝子に結合しているヒト配列は、これらのヒトフラグメントの部分集 合であって、独立して得られた、Ｈを発現する二次形質移入体それぞれにおいて 、同じ大きさの特徴的制限フラグメントとして確認されうることが予想されたか らである。 ｍＨ１−１２細胞から調製されたゲノムＤＮＡをｐＳＶ２−ｎｅｏによってＬ 細胞中へ共形質移入した。このようにして４つの異なった二次ライブラリを生成 した（表Ｉ）。 頻度は、単離された一つの独立したＨを発現する形質移入体／スクリーニング された形質移入体のプレートの数の比で表した。セルソーティングあるいはパン ニングによってスクリーニングされたライブラリに対しては、これは最小の評価 である。なぜならこれらの免疫選択手続きはＨ発現シブと、独立して得られたＨ −陽性形質移入体とを差別することを許容しないからである。少なくとも一つの 独立したＨ−発現形質移入体がこれらのライブラリのそれぞれに存在する。トラ ンスフェクション効率評価（「実験手順」参照）の結果、一次ライブラリｍＨ１ に関し、また二次ライブラリｍＨｓ１、ｍＨｓ３、ｍＨｓ４、およびｍＨｓ５に 関し、各プレートは約２０００の独立した形質移入体を含有していた。ｍＨｓ２ 二次ライブラリについては、スクリーニングに先立つプレート試験によって約５ ０のコロニーが各プレートに存在することがわかった。クローンｓ２−１とｓ２ −２は二つの別個のプレートからロゼット法によって単離した。クローンｓ２− ３は約６５０の独立した形質移入体コロニーの細胞集団をパンニングすることに よって単離した。 パンニング手続きによって各ライブラリを独立にスクリーニングしてＨ発現形 質移入体を検出した。３ラウンド目のパンニングに先立ってＦＡＣＳ分析を行っ た結果、これらのライブラリのそれぞれはＨ抗体陽性の細胞を含有していた（抗 Ｈ抗体に結合した細胞の１−６０％）。パンニングによる一連の選択を、細胞の ５０−９０％がＨ−陽性の表現型を示すようになるまで続けた。クローン細胞株 （Ｓ１−１１とＳ３−６）をｍＨｓ１およびｍＨｓ２ライブラリ由来の集団から 確立した。この時これらの細胞株中の細胞の９５％以上が抗Ｈ抗体で明るい染色 を示した。ライブラリｍＨｓ４とｍＨｓ５は細胞クローニング手続きに付さなか った代わりにパンニングによる付加的な選択を行った。合計１１ラウンドの選択 の後、これらの細胞の約９５％（ｍＨｓ４ライブラリからの選択）および５０％ （ｍＨｓ５ライブラリからの選択）がＨ抗原の発現を示した。 本発明者がｍＨ１−１２細胞株を構築するために用いたリン酸カルシウムトラ ンスフェクション手続きは、時として分別可能なプラスミド配列を、希望の表現 型を決定するトランスフェクトされたゲノムＤＮＡ配列と物理的に結合する場合 があった。ｐＳＶ２−ｎｅｏ配列の、ｍＨ１−１２一次形質移入体におけるＨ− 陽性表現型を決定するヒトＤＮＡ配列への結合は、Ｈ−発現二次形質移入体の同 定を簡便にし、分子クローニング手続きによる関連するトランスフェクトされた 配列の単離を容易にする。そのような結合を調べるためのテストとして、本発明 者はｍＨ１−１２一次形質移入体から調製したＤＮＡでＬ細胞をトランスフェク トすることにより二次ライブラリ、ｍＨｓ２を生成した。トランスフェクション にあたっては、外因性のｐＳＶ２−ｎｅｏ ＤＮＡは加えなかった。この手続き により、約５０の独立したＧ４１８形質移入体が１５個の径１０ｃｍの皿上に産 生した。この結果、ｐＳＶ２−ｎｅｏ ＤＮＡを加えて二次ライブラリを生成し たときに得られたＧ４１８耐性コロニーの数に対して、数において４０分の１の 低下が見られた（１皿当たりＧ４１８耐性細胞は２０００まで）。 このｍＨｓ２ライブラリをまず原位置にて（ｉｎ ｓｉｔｕ）ロゼット法によ ってスクリーニングし、抗Ｈ抗体に結合する形質移入体を迅速に確認した（下記 の「実験手順」参照）。約５０のコロニーを含有する培養皿のそれぞれを、トラ ンスフェクションの１６日後、他のいずれかの操作の前にこの方法でスクリーニ ングした。試験した１５個の皿の内の二つにロゼット−陽性コロニーが各一個確 認された。これらの二個の独立したＨ−陽性コロニーをクローニングリングで単 離し、Ｈ−発現細胞株（ｓ２−１とｓ２−２）をそれぞれから確立した。他の１ ３個の皿上のコロニーを収穫することによって、付加的な独立したクローンＨ発 現形質移入体（ｓ２−３）が単離され、これらをパンニングによる選択手続きに かけた後、細胞クローニングに付した。 結合していない単一コピーのマーカーの共形質移入が１％以下の頻度で起こっ た。ｍＨｓ２ライブラリ（表Ｉ）中において発明者が観察したＧ４１８耐性の共 発現の頻度とＨ表現型は、これら二つのマーカーが一次形質移入体において結合 していることと合致する。あるいは、これらの頻度は、一次形質移入体中の多数 のコピーにおいて存在する、結合していないマーカーの共形質移入によって説明 されるかもしれない。いずれにしても、一次および二次ライブラリ（表Ｉ）にお いて観察されるＨ−発現形質移入体の出現頻度は、これらの形質移入体によって 発現されるＨ−陽性表現型が単一のトランスフェクトされた座によって決定され ることを示している。 代表的なＨ−発現性二次形質移入体（クローンｓ２−２）上における抗Ｈ反応 性表面分子は、Ｈ抗原−陽性の一次形質移入体ｍＨ１−１２に対して適用したも のと同じ分析法によって、正統なＨ Ｆｕｃα（１，２）Ｇａｌリンケージであ ることが示された。ｓ２−２細胞から調製された抽出物は（α−１，２）フコシ ルトランスフェラーゼ活性を有する事が見いだされた。（α−１，２）フコシル トランスフェラーゼ活性はまた他のＨ−発現性二次形質移入体のそれぞれから調 製された抽出物中に見いだされた。 独立したＨ−発現性二次形質移入体はヒトＤＮＡ配列を含有する共通の制限フ ラグメントを有する−発明者は、各Ｈ−陽性の二次形質移入体のゲノムは比 較的少量のヒトＤＮＡを含有し、このＤＮＡは、それぞれの形質移入体において 見いだされる（α−１，２）フコシルトランスフェラーゼの配列を制御するヒト 配列を包含するであろうと予想した。原則的に、これらの配列によって生成され る一以上の特性制限断片は各形質移入体において同定可能であるはずである。逆 にいえば、無関係なヒト配列は二次形質移入体においてランダムな制限パターン を示すはずである。発明者はそこで各形質移入体からゲノムＤＮＡを単離し、種 々の制限酵素でこれらのＤＮＡを分解し、得られた分解産物をサザンブロット分 析に付した。ヒトＤＮＡ配列を含有する制限断片がＢＬＵＲ８ Ａｌｕプローブ で検出された。多くのＤＮＡ制限断片が各クローン化された二次形質移入体に存 在する。これらの細胞におけるヒトゲノムＤＮＡの総量は２５ないし５５ｋｂと 評価される。各クローン化された二次形質移入体のゲノムは２．７ｋｂおよび３ ．４ｋｂの大きさのヒトＤＮＡ ＥｃｏＲＩ制限断片の特性対を有する。これら の断片はまた、ライブラリｍＨｓ４およびｍＨｓ５からのパンニングによって選 択される細胞のプールにおいて明らかである。同様の分析から、各Ｈ−発現性二 次形質移入体のゲノムが共通の１．５および１．９ｋｂのＰｓｔＩ断片と共通の ２．８ｋｂのＰｖｕＩＩヒトＤＮＡ制限断片を含有することが示されている。こ れらの結果は、上記の特性的ヒト制限断片内のまたはこれに結合したＤＮＡ配列 が、これらの形質移入体を選択するのに用いた細胞表面のＨ Ｆｕｃα（１，２ ）Ｇａｌ結合の発現に関連し、さらにこれらの細胞に見いだされる（α−１，２ ）フコシルトランスフェラーゼの発現と関連しているものであることを示唆する ものである。 形質移入体における共通のヒトＤＮＡ配列がこれらの細胞中における（α−１ ，２）フコシルトランスフェラーゼの発現を指向するものであることをさらに確 認するために、分子クローニングの手法によってこれらの断片を単離し、哺乳類 の過渡発現系においてその機能をテストした。Ｈ−発現性二次形質移入体中のＨ 表現型の発現と関連していることが既に判明している二つのヒトＤＮＡ−Ｅｃｏ ＲＩ断片を、二次形質移入体ｓ２−２を用いて、ラムダファージベクター中で調 製したミニゲノムライブラリから単離した（「実験手順」参照）。これらの断片 が（α１，２）フコシルトランスフェラーゼの合成に向けての充分な遺伝子情報 を 有するかどうかを決定するために、これらはまず独立に、哺乳類コスミドベクタ ーｐＷＥ１５中にサブクローニングした。このベクターはＳＶ４０の複製源を有 し、ＣＯＳ−１細胞中のエピソームのように効率的に複製を行う。得られたプラ スミドは３．４ｋｂのＥｃｏＲＩ（プラスミド：ｐＨ３．４）または２．７ｋｂ のＥｃｏＲＩ断片（プラスミド：ｐＨ２．７）を含有していた。次にこれらのプ ラスミドを、個々にＤＥＡＥデキストラントランスフェクション（「実験手順」 参照）によってＣＯＳ−１細胞に導入し、トランスフェクトされた細胞は、その 後その（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性について検討した。発明者 は偽トランスフェクトＣＯＳ−１細胞あるいはｐＨ２．７でトランスフェクトさ れたＣＯＳ−１細胞中において、検出可能な（α１，２）フコシルトランスフェ ラーゼ活性を見いださなかった。しかしながら、プラスミドｐＨ３．４でトラン スフェクトされたＣＯＳ−１細胞は大きな（α１，２）フコシルトランスフェラ ーゼ活性を発現した。この抽出物によって生成されたフコシル化されたフェニル −β−Ｄガラクトシド産物のα−フコシダーゼ分解から、付着したフコースがα アノマー形状であることが確認された（「実験手順」参照）。 この（α１，２）フコシルトランスフェラーゼのｐＨ活性プロフィルは、ヒト 血清分画、Ａ４３１細胞およびＨ−発現性マウス形質移入体において見いたされ る（α１，２）フコシルトランスフェラーゼについて得られたプロフィルを鏡映 していた。同様に、ＣＯＳ−１細胞中に発現したリコンビナント酵素が示す見か けのミカエリス定数（ＧＤＰ−フコース：Ｋ_m＝１７．５μＭ；フェニル−β− Ｄ−ガラクトシド：Ｋ_m＝４．４ｍＭ）は、本発明者がヒト血清分画中、および 彼が分析した各細胞株中の（α１，２）フコシルトランスフェラーゼについて測 定した値と基本的に同一であった。以上を考え合わせると、これらの結果は、３ ．４ｋｂ ＥｃｏＲＩの断片内のヒトＤＮＡ配列が（α１，２）フコシルトラン スフェラーゼをコードし、これらの配列はヒト血液型Ｈ（α１，２）フコシルト ランスフェラーゼ遺伝子の一部もしくは全部を包含するものであるという説を裏 付けるものである。ｐＨ３．４中の３．４ｋｂ ＥｃｏＲＩ断片、ｐＨ２．７中 の２．７ｋｂ ＥｃｏＲＩ断片、３．４ｋｂ断片に近接したＤＮＡ配列を配列決 定し、配列認識番号５を得た。 これらのクローン化されたヒトゲノムＤＮＡ配列の性質を特性化するために、 発明者はまず、プラスミドｐＨ３．４中のインサートから種々の制限断片を単離 し、Ｈ−発現性で安定な形質移入体におけるトランスクリプトおよびＨ決定基と 同族（α１，２）フコシルトランスフェラーゼを発現するヒト細胞株Ａ４３１に おけるトランスクリプトを同定・確認する能力について試験した。発明者は、ｐ Ｈ３．４中のインサートからの１．２ｋｂ ＨｉｎｆＩ制限断片が、単一の、比 較的量の少ないＡ４３１細胞中の３．６ｋｂのトランスクリプトを同定・確認す ることを見いだした。このプローブはまた、Ｈ−発現性マウスＬ細胞形質移入体 中においてトランスクリプトを検出するが、トランスフェクトされていない親Ｌ 細胞においてはこれを検出しない。 細胞表面のＨ構造の発現を指向するクローン化されたｃＤＮＡおよび（α１， ２）フコシルトランスフェラーゼ ：発明者は１．２ｋｂ ＨｉｎｆＩ断片とコロ ニーハイブリダイゼーションによってＡ４３１細胞ｃＤＮＡライブラリから二つ のハイブリダイゼーション陽性ｃＤＮＡクローンを単離した。クローン化したｃ ＤＮＡについて、その表面局在性Ｈ抗原の発現決定能力と同族（α１，２）フコ シルトランスフェラーゼ活性を調べるために、哺乳類発現ベクターｐＣＤＭ７中 にクローン化された最大のｃＤＮＡインサートからなるプラスミドを、そのベク ターのエンハンサー−プロモーター配列に関しセンス定位で構築した（ｐＣＤＭ ７−α（１，２）ＦＴ、「実験手順」参照）。ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴで トランスフェクトされたＣＯＳ−１細胞のフローサイトメトリー分析によって、 このｃＤＮＡは細胞表面のＨ分子の発現を決定することが示された。さらに、ｐ ＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴでトランスフェクトされたＣＯＳ−１細胞は大きな α（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を発現したが、ｐＣＤＭ７でトラ ンスフェクトされた細胞はそうでなかった。発明者は、この（α１，２）フコシ ルトランスフェラーゼを用いて、この酵素に特異的であるとともにヒトＨおよび Ｓｅ（α１，２）フコシルトランスフェラーゼとを区別することができる人工的 なアクセプター（フェニル−β−Ｄ−ガラクトシド）についてその見かけのミカ エリス定数を決定した。得られた見かけのＫ_m（２．４ｍＭ）は、発明者および 他の者が血液型Ｈ（α１，２）フコシルトランスフェラーゼについて測定した値 （発明者：３．１ｍＭ、他者：４．６ｍＭ、６．４ｍＭ、１．４ｍＭ）と略同じ レベルであった。また、この見かけのＫｍはｐＨ３．４（４．４ｍＭ）でトラン スフェクトされたＣＯＳ−１細胞から調製された抽出物中の（α１，２）フコシ ルトランスフェラーゼが示す値と非常に近いものであった。この見かけのＫｍは ヒト乳酵素（１５．１ｍＭ）中に見いだされる（α１，２）フコシルトランスフ ェラーゼの示す値−これはＳｅ座によってコードされた（α１，２）フコシルト ランスフェラーゼを示すものであるが−とはかけ離れている。これらのデータは 、ヒトＨ血液型（α１，２）フコシルトランスフェラーゼによって示される動特 性を反映した動特性を有する（α１，２）フコシルトランスフェラーゼの発現を 、プラスミドｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴにおけるｃＤＮＡが決定することを 示している。 ｃＤＮＡ配列はタイプＩＩトランスメンブレン糖タンパクを予示する： ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴにおけるｃＤＮＡインサートは３３７３塩基対 の長さを有する。その対応するトランスクリプトは長さが３．６ｋｂであって、 このｃＤＮＡが実質的に完全長であることを示唆している。二つの潜在的イニシ エーターコドンがその最初の１７５個のヌクレオチドにおいて見いだされる。し かしながら、これらのうちの二番目のもののみが哺乳類の翻訳開始に関連して配 列コンテスト中に含められる。メチオニンコドンは、３６５個のアミノ酸からな るタンパク（配列認識番号６）を予言する長いオープンリーディングフレームを 開始する。これに基づいて計算するとＭｒは４１２４９Ｄａである。このオープ ンリーディングフレームは３．４中の３．４ｋｂ ＥｃｏＲＩ断片において見い だされるオープンリーディングフレームと共直線性である。予言されたタンパク 配列の水治療分析の結果、それは他の幾つかのクローン化されたグリコシルトラ ンスフェラーゼについてと同様に、タイプＩＩのトランスメンブランタンパクで あることがわかった。このトポロジーは、８個の残基ＮＨ₂−末端細胞質ゾルド メイン、塩基性アミノ酸によってフランキングされた１７個の残基疎水性トラン スメンブレンドメイン、および恐らくゴルジ固有で触媒機能を有する３４０個の アミノ酸ＣＯＯＨ−末端ドメインを予言する。二つの潜在的Ｎ−グリコシル部位 がこの後者のドメインに見いだされるが、このことは、これが他のグリコシルト ランスフェラーゼと同様、糖タンパクとして存在する可能性を示唆している。こ の配列と、タンパクやＤＮＡデータベース中の他の配列との間には顕著な類似性 は見いだされない（プロテイン・アイデンフィケーション・リソース、リリース ２１．０、およびＧｅｎｂａｎｋ、リリース６０．０）。ただしｃＤＮＡの３’ −未翻訳セグメント内の６４２ｂｐ配列は例外で、これはヒトＡｌｕコンセンサ ス配列に類似している。さらに発明者は、ｃＤＮＡ配列と、その予言されたタン パク配列や他のクローン化されたグリコシルトランスフェラーゼのｃＤＮＡとの 間にも、顕著な配列の類似性を見いださなかった。 ｃＤＮＡでコードされたタンパクは（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ である ：上記の発現実験の結果は、ｃＤＮＡ配列によって予言されるドメイン構 造と合わせて考えると、それが（α１，２）フコシルトランスフェラーゼをコー ドするという仮定と合致している。それにもかかわらず、発明者はこの点を直接 確認したいと考え、それがこの酵素活性をトランス−決定する分子を代わりにコ ードする可能性を排除した。発明者は、哺乳類の発現ベクターｐＰＲＰＴＡにお けるスタフィロコッカス・アウレウス（Ｓｔａｐｈ．ａｕｒｅｕｓ）プロテイン Ａ（「実験手順」参照）のＩｇＧ−結合性ドメインの分泌された形態のものへ予 想されるタンパクの推定触媒ドメインを領域を融合し、ベクターであるｐＰＲＯ ＴＡ−α（１，２）ＦＴ_cを生成した。類似の構造体との類推から、発明者は他 のクローン化グリコシルトランスフェラーゼ（詳細は下記）を調製し、もしその ｃＤＮＡ配列が実際に（α１，２）フコシルトランスフェラーゼをコードするな ら、プラスミドｐＰＲＯＴＡ−α（１，２）ＦＴ_cは、分泌され、溶解性でアフ ィニティー生成可能な（α１，２）フコシルトランスフェラーゼを生成するであ ろうことを期待した。実際、ｐＰＲＯＴＡ−α（１，２）ＦＴ_cでトランスフェ クトされたＣＯＳ−１細胞のプレートから調製された調整培地は、合計５７９０ ユニットの（α１，２）フコシルトランスフェラーゼを含有していた一方、合計 １４８５ユニットが細胞と会合していた。さらに、実質的に１００％の放出（α １，２）フコシルトランスフェラーゼ活性が特異的にＩｇＧ−セファロースに保 持され、このマトリックスを徹底的に洗浄すると殆どが回収された。これとは対 照的であるが、発明者は、ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴでトランスフェク トされたＣＯＳ−１中の活性の殆どは細胞会合性（３４５０ユニット）であって 、ごく微量の活性がこれらの細胞から調製された調整培地で検出されるにすぎな い（８０ユニットまで）ことを見いだした。実質的にこの後者の活性はどのマト リックスとも結合していない。ｐＣＤＭ７またはベクターｐＰＲＯＴＡでトラン スフェクトされたＣＯＳ−１細胞から調製された抽出物は、細胞と会合したまた は解放された（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を検出可能なレベル で有しなかった、これらのデータは、ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴにおけるｃ ＤＮＡインサートは（α１，２）フコシルトランスフェラーゼをコードすること 、および触媒活性を有する（α１，２）フコシルトランスフェラーゼを生成する のに充分な情報は推定トランスメンブレンセグメントの遠位の３３３のアミノ酸 を包含するものであることを示している。実施例Ｉ“（α１，２）フコシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列の クローニングと発現”のための実験手順 本明細書全体を通して使用されている“Ｌ細胞”という語は、マウスＬａｐｒ ｔ^-ｔｋ^-細胞株を表す。 ラクトース、Ｎ−アセチルラクトースアミン、２’−フコシルラクトース（Ｆ ｕｃα（１，２）Ｇａｌβ（１，４）Ｇｌｃ）、ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ、フェニ ル−β−Ｄ−ガラクトシド、およびフィコール４００をシグマから入手した。Ｌ −フコースをファンスティール（Ｐｆａｎｓｔｉｅｈｌ）研究所（ウォーキガン 、イリノイ州）から入手した。ＵＤＰ〔１−³Ｈ〕Ｎ−アセチルガラクトースア ミン（８．７Ｃｉ／ｍｍｏｌ）とＤ−〔Ｕ−¹⁴Ｃ〕マンノース（２３９ｍＣｉ／ ｍｍｏｌ）をデュポン−ニューイングランド・ニュークリア（ＤｕＰｏｎｔ−Ｎ ｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｎｕｃｌｅａｒ）から入手した。Ｄ−〔２−³Ｈ〕マン ノース（１６．３Ｃｉ／ｍｍｏｌ）、Ｌ−〔６−³Ｈ〕フコース（７２Ｃｉ／ｍ ｍｏｌ）、Ｌ−〔１−¹⁴Ｃ〕フコース（５８．７ｍＣｉ／ｍｍｏｌ）、ＧＤＰ〔 Ｕ−¹⁴Ｃ〕−β−Ｌ−フコース（２６８ｍＣｉ／ｍｍｏｌ）、および〔α−³²Ｐ 〕ｄＣＴＰ（３０００Ｃｉ／ｍｍｏｌ）をアマーシャム社（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｃｏｒｐ．）から入手した。非放射性のＧＤＰ−フコースをエリック・ホームス （Ｅｒｉｃ Ｈｏｍｅｓ）博士（シアトル）からご提供頂いた。ＦＩＴＣ−ＥＣ ＡをＥ−Ｙ研究所（サンマテオ、カリフォルニア州）から入手した。プラスミド ｐＳＶ２−ｎｅｏをデービッド・チャプリン博士（ワシントン大学、セントルイ ス）から入手した。制限酵素（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ、また はＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を製造者の指示に従って使用した 。 抗血清： モノクローナル抗Ｈ、抗Ａおよび抗Ｂ抗体（マウスＩｇＭ）をケムビオメド社 （Ｃｈｅｍｂｉｏｍｅｄ，Ｌｔｄ．）（アルバータ、カナダ）から購入した。モ ノクローナル抗Ｈ抗体ＢＥ２は、ＢＥ２ハイブリドーマ細胞株上清（下記参照） から調製した。抗マウスＩｇＭとＦＩＴＣで標識した抗マウスＩｇＭ（両方とも 抗原−アフィニティーによる精製、ヤギ）をシグマから入手した。 細胞株と培養： マウスＬａｐｒｔ^-ｔｋ^-細胞はデービッド・チャプリン博士から入手した。ヒ トＡ４３１細胞は、ブライアン・ホワイトレイ（Ｂｒｉａｎ Ｗｈｉｔｅｌｅｙ ）博士およびルイス・グレイサー（Ｌｕｉｓ Ｇｌａｓｅｒ）博士（ワシントン 大学、セントルイス）から入手した。ＢＥ２細胞はアメリカン・タイプ・カルチ ャー・コレクションから入手した。細胞は、１０％の胎児ウシ血清（ハイクロン （Ｈｙｃｌｏｎｅ）、ローガン、ユタ州）を加えたダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃ ｏ）の修飾イーグル培地（ＧＩＢＣＯ）中で生育した。形質移入した細胞は、Ｇ ４１８（ＧＩＢＣＯ）（活性剤）を４００μｇ／ｍｌの割合で含む培地中で生育 した。 ゲノムＤＮＡの調製： 高分子量のゲノムＤＮＡを標準的な方法で培養された細胞から調製した。ゲノ ムＤＮＡのサンプルをトリス−アセテート−ＥＤＴＡで緩衝された０．３％アガ ロースゲルを通して電気泳動解析し、それらの完全性を確認するとともに、調製 物中の分子の平均サイズを見積もった。 形質移入： リン酸カルシウム沈降法により、ヒトゲノムＤＮＡを用いてマウスＬ細胞の形 質移入を行った。ＤＮＡの沈降物（２０−３０μｇのゲノムＤＮＡと１μｇのｐ ＳＶ２−ｎｅｏ）を用いて細胞（５×１０⁵個／１００ｍｍの皿）を一晩インキ ュベートした。ｍＨｓ二次ライブラリを生成した形質移入には、外因性のｐＳＶ ２−ｎｅｏＤＮＡは含まれていなかった。翌日細胞を新しい培地に移し、その次 の日にＧ４１８による選択を行った。形質移入効率は、ＤＮＡを加えた１日後に 形質移入した細胞を収穫し、細胞懸濁液の一連の同じ希釈溶液を平板培養するこ とによって見積もった。希釈液の一方の組をＧ４１８選択下で生育し、他の組は 抗体無しで生育し、得られた形質移入効率を平板培養の効率によって補正できる ようにした。２週間の生育後、５０％メタノールに０．２％のメチレンブルーを 溶解した溶液を用いて染色してコロニーを数えた。１００ｍｍの皿の上の５×１ ０⁵個の細胞を形質移入すると、典型的には約２０００個の独立した形質移入が 得られる。 Ｈ−発現形質移入体の免疫的選択： ３ｍＭのＥＤＴＡを含むＰＢＳを用いてインキュベートすることにより、形質 移入体を培養皿から除去した。分離された細胞を洗浄し、染色培地（１０ｍＭの Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．４、０．１％のアジドナトリウム、２％胎児ウシ血清含有 ダルベッコの修飾イーグル培地）の中に再懸濁した。パンニング、またはセルフ ーティングを行っている間細胞の温度を４℃に維持した。細胞を低い密度で平板 培養することによって細胞のクローニングを行い、各細胞がコロニーを形成でき るようにした。各コロニーはクローニングシリンダーを用いて分離した。 パンニング−細菌性の培養皿（ファルコン１００７、６０ｍｍ）をパンニング のために用意した。５０ｍＭのトリス中に１０μｇ／ｍｌの割合で希釈した抗体 溶液（ｐＨ９．５）４ｍｌを用いてヤギ抗マウスＩｇＭを一晩４℃でインキュベ ートすることにより、ヤギ抗マウスＩｇＭを皿に結合させた。抗体溶液を吸い上 げ、皿をＰＢＳを用いて２回洗浄した。その後、１ｍｇ／ｍｌの割合でウシ血清 アルブミンを含むＰＢＳを用い、室温で少なくとも１時間インキュベートするこ とによって皿をブロック化した。皿はその後直ぐに使用するか、ずっと４℃で保 管した。皿は使用する前にＰＢＳで３回洗浄した。 パンニングすべき細胞は、抗Ｈ抗体を１０μｇ／ｍｌの割合で含有する染色培 地中に１０⁷／ｍｌの濃度で再懸濁した。細胞を４℃で３０分インキュベートし 、１ｍＭのＥＤＴＡ、０．１％のアジドナトリウムおよび２％のフィコール４０ ０ を含む１０ｍｌのＰＢＳ使用して細胞をペレット化することによって結合しない 抗体を除去した。遠心分離の後、上澄みを注意深く吸い上げ、細胞を染色培地中 に１０⁶／ｍｌの割合で再懸濁した。細胞懸濁液の分割量３ｍｌを、ヤギ抗マウ スＩｇＭで被覆した６０ｍｍのパンニング皿に塗布した。その後皿を４℃で１時 間インキュベートし、血清を含まないダルベッコの修飾イーグル培地を用いて５ 回すすぎ、非付着性の細胞を除去した。新鮮な血清に満ちた培地を皿に加え、組 織培養インキュベータに戻した。翌日、付着性の細胞をトリプシン−ＥＤＴＡを 用いて除去し、標準的な組織培養皿に再び塗布した。選定を行う前に細胞を１０ −１８日生育した。 セルソーティング−モノクローナルＩｇＭ抗Ｈ抗体（染色培地中に１０μｇ／ ｍｌ）、またはコントロールモノクローナルＩｇＭ抗Ｂ抗体（染色培地中に１０ μｇ／ｍｌ）を用いて４℃で３０分インキュベートすることにより、ＦＡＣＳ分 析を行うために形質移入体を調製した。その後、氷冷した染色培地中で細胞を洗 浄し、フルオロセインを結合したヤギ抗マウスＩｇＭを４０μｇ／ｍｌの割合で 含む染色培地中において４℃で３０分インキュベートした。細胞を洗浄し、染色 培地中に再懸濁し、ＦＡＣＳ（コウルター・エレクトロニクス、モデル エピッ クスＣ）による分析を行った。サンプルを前方および９０°の光拡散にさらし、 死んだ細胞は分析対象から排除する。Ｈ−発現細胞を染色培地内で吸い上げによ って収集し、追加の選択の前に１０−１８日間の培養を再び行った。 ロゼット手順−抗Ｈ抗体に結合する形質導入体を同定するためにロゼット法を 使用した。約１００−３００個の細胞から成る分離されたコロニーを含む１００ ｍｍの皿の上でこの手順を行った。まずコロニーのプレートをＰＢＳを用いて２ 回すすぎ、マウスＩｇＭモノクローナル抗Ｈ抗体を１０μｇ／ｍｌの割合で含む ４ｍｌのＰＢＳ、２％の胎児ウシ血清、０．１％のアジドナトリウムを用いて４ ℃で１時間インキュベートした。その後、ＰＢＳを用いてプレートを３回すすぎ 、ヤギ抗マウスＩｇＭを結合したヒト赤血球４ｍｌを用いて４℃で３０分インキ ュベートした（ヤギ抗マウスＩｇＭは、塩化クロムを用いてヒトのＯ型の赤血球 に結合した。結合後、赤血球をＰＢＳで洗浄し、ＰＢＳ、２％胎児ウシ血清、０ ．１％アジドナトリウム中に０．２％ｖ／ｖで希釈し、直ぐに使用した。）。 その後、赤血球の懸濁液を注意深く吸い出し、プレートをＰＢＳで穏やかにすす ぎ、ライトボックスの上で検査した。抗Ｈ抗体に結合したコロニーは、コロニー に付着する赤血球から成る“ロゼット”として顕微鏡で観察した。 血液型Ａ（α−１，３）ＧａｌＮＡｃトランスフェラーゼの精製： セファロース（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）４Ｂ（シグマ、ロット番号１０４Ｆ０３ ３４）に対するアフィニティー・クロマトグラフィーによりヒト血液型Ａの血漿 からＡ型トランスフェラーゼを分離した。酵素活性が最大の箇所を含むカラムの 分画を集め、マウス血清アルブミン（ベーリング・ダイアグノスティックス＞９ ８％）を１％の濃度で加え、分割量を使用するまでの間−８０°Ｃで保管した。 最終調製物の活性を標準的な放射化学的方法によって測定した。１酵素ユニット は、１時間当たり１ｎｍｏｌのＧａｌＮＡｃを２’−フコシルラクトース受容体 に転換するものであると定義されている。 ペーパークロマトグラフイー： ワットマンＮｏ．３ｍｍまたはワットマンＮｏ．１を用い、下記の溶媒系で下 降ペーパークロマトグラフィーを行った：溶媒Ａは、酢酸エチル／ピリジン／水 （１０：４：３）、溶媒Ｂは、ピリジン／水／酢酸エチル／（１０：１１：５： ３６）（上相）。乾燥したクロマトグラムを１センチの帯に切断し、放射能で標 識された化合物を水を用いて溶離した。各溶離物の分割量内の放射能をシンチレ ーション計数管によって測定した。 Ｌ細胞のＧＤＰ−フコース含有量の分析： マウスＬ細胞内のＧＤＰ−フコースを同定するために、３０ｍｌの完全培地中 の２５０μＣｉのＤ−〔２−³Ｈ〕マンノースを用いて、細胞（２×１０⁶個）を ３日間標識付けを行った。細胞を収穫し、沸騰する湯浴中において６０％エタノ ールを用いて５分間抽出した。ヌクレオチド糖を含有する水溶性の抽出物を真空 下で濃縮し、少量の水の中に再懸濁した。標識されていないＧＤＰ−マンノース （２７０ｎｍｏｌ）とＧＤＰ−フコース（１３０ｎｍｏｌ）を内部標準として加 え、混合物を、５０ｍＭの酢酸アンモニウム中で平衡セファデックス（Ｓｅｐｈ ａｄｅｘ）Ｇ−２５カラム（０．９×４２ｃｍ）上でのゲル濾過クロマトグラフ ィー付した。溶出液を２６８ｎｍで監視し、ＧＤＰ−マンノースとＧＤＰ−フ コースを含む分画を集め、真空下で濃縮し、２００μｌの水の中に再懸濁した。 これを、弱い陰イオン交換カラム（ＡＸ３００、４ｍｍ×２４ｃｍ、ピアース・ ケミカル社）上でＨＰＬＣにより分画化した。１００ｍＭの酢酸トリエチルアミ ン（ｐＨ：７．０）中で平衡のとられたＨＰＬＣカラムにサンプルを塗布し、酢 酸トリエチルアミン（ｐＨ ７．０）の１００から３００ｍＭの直線勾配を用い て、毎分２ｍｌの流速で５０分間溶出した。溶出液を２６８ｎｍで監視し、分画 （０．５ｍｌ）を集めてシンチレーション計数を行い、後に分析した。標識され ていないヌクレオチド糖内部標準は、それらの固有の溶出時間（ＧＤＰ−フコー スは３５．５分、約８００ｃｐｍｓで、ＧＤＰ−マンノースは３３．０分、約１ ０００ｃｐｍｓ）によって確認した。標識されていないＧＤＰ−フコースとＧＤ Ｐ−マンノースとともに遊離する分画に対応する放射能ピーク物質を、０．１Ｎ のＨＣｌを用い、１００℃で４５分間加水分解した。その後、これらは、Ｌ−〔¹⁴ Ｃ〕フコースおよびＤ−〔¹⁴Ｃ〕マンノース標準と並行して、溶媒Ｂ中で２０ 時間、ワットマンＮｏ．３ＭＭ上での下降ペーパークロマトグラフィーによって 分画化した。何れの場合も、加水分解された量の約３０％を適切な単糖類として 回収した。 フコースで標識したグリコペプチドの分析： 放射標識したグリコペプチドを調製し、分析した。２０ｍｌの完全培地中の２ ００μＣｉのＬ−〔６−³Ｈ〕フコースを用いてマウスＬ細胞（２×１０⁶個）に ３日間標識付けを行った。細胞を収穫し、クロロホルム、そして水を用いて抽出 し、最後の抽出の後に残ったペレットをプロナーゼ（ベーリング・ダイアグノス ティックス）を用いて分解した。その後、セファデックスＧ−２５カラム上での ゲル濾過クロマトグラフィーによって脱塩した。この材料を真空下で濃縮し、分 割量を０．１ＮのＨＣｌ中において１００℃で４５分間加水分解した。この加水 分解物を、Ｌ−〔¹⁴Ｃ〕フコース標準と並行して、溶媒Ｂ中で２０時間、ワット マンＮｏ．３ＭＭ上での下降ペーパークロマトグラフィーにかけた。マクロ分子 材料内に存在する総量の約２６％が放出され、放射能で標識されたフコース標準 を用いクロマトグラフィによって分離した。 ＧＤＰ−フコース：β−Ｄ−ガラクトシド２−α−Ｌ−フコシルトランスフ ェラーゼのアッセイ ： 培養された細胞をＰＢＳで洗浄し、遠心分離によってペレット化し、０．５％ のトリトンＸ−１００を含む少量の２５ｍＭ燐酸ナトリウム（ｐＨ ６．１）に 再懸濁した。タンパク質の濃度が約５ｍｇ／ｍｌとなるように容積を調節した（ ＢＣＡ法、ピアース・ケミカル社）。典型的には、調製直後に抽出物のアッセイ を行った。標準アッセイは、４０μｌの２５ｍＭ燐酸カリウムに５−２０μｌの 酵素溶液（典型的には３０−１００μｇの細胞抽出タンパクまたは１５μｌの血 清）を溶解したもの、０．１％のトリトンＸ−１００、３μＭのＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ 〕フコース、２５ｍＭのフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド、および５ｍＭのＡＴ Ｐを含んでいた。反応混合物のｐＨを最終測定ｐＨが６．１となるように調製し た。所定時間の後、２０μｌのエタノールを加えてアッセイを終了した。その後 、混合物を１５，０００×ｇで５分間遠心分離した。上澄みを集め、ワットマン のＮｏ．１上に塗付し、溶媒Ａの中で４時間、下降ペーパークロマトグラフィに よる分画を行った。その後上記のように放射能を測定した。何れの場合も、フェ ニル−β−Ｄ−ガラクトシド受容体を添加しない反応を並行して行い、内因性受 容体分子の補正が行えるようにした。フコシル化されたフェニル−β−Ｄ−ガラ クトシドを用いてクロマトグラフィーで分画された内因性受容体分子の産物はど のサンプルからも確認出来なかった。 α−フコシダーゼの分解： ペーパークロマトグラフィによりフコシルトランスフェラーゼのアッセイから 〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｂ−ガラクトシド（約１０，０００ｃｐｍ）を 分離し、水溶解物を真空下で濃縮し、５μｌの水に再懸濁した。これを、５ｍＭ のクエン酸ナトリウムを含む最終容量が２０μｌの溶液（ｐＨ ６．０）中の０ ．０２５ユニットのウシ腎臓α−Ｌ−フコシダーゼ（ＥＣ ３．２．１．５１） を用いて、３７℃で１時間分解した。混合物を溶媒Ａの中で４時間、ワットマン Ｎｏ．１上での下降ペーパークロマトグラフィにより分画した。分解産物は、並 行して行われた正統の〔¹⁴Ｃ〕フコース、およびヒト血漿Ｈ（α−１，２）フコ シルトランスフェラーゼによって合成された精製〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β −Ｄ−ガラクトシドの分離との比較によって同定された。 間接的蛍光抗体法： ８ウェルの組織培養チャンバースライド（ラブ−テック）上に塗布した細胞に 対して蛍光抗体法を実施した。分析の２４時間前に、１ウェル当たり５×１０⁴ 個の密度で細胞を塗布した。抗Ｈ抗体および抗Ａ−次性抗体を、ウシ血清アルブ ミンを２ｍｇ／ｍｌの割合で含むＰＢＳ中に、最終濃度が１０μｇ／ｍｌとなる ように希釈した。細胞と結合する一次性抗体を、ＦＩＴＣを結合したヤギ抗マウ スＩｇＭを用いて検出し、ウシ血清アルブミンを２ｍｇ／ｍｌの割合で含むＰＢ Ｓ中に４０μｇ／ｍｌとなるように希釈した。 ハプテン阻止−塗布した細胞をＰＢＳを用いて２回洗浄し、希釈した抗Ｈ抗体 １００μｌ、または異なるオリゴ糖ハプテンをそれぞれ２０ｍＭの濃度で含有す る希釈した抗体１００μｌを使用し、４℃で３０分インキュベートした。その後 チャンバーを２回洗浄し、ＦＩＴＣを結合したヤギ抗マウスＩｇＭを１００μｌ 添加した。４℃で３０分放置した後、ＰＢＳを用いてチャンバーを３回洗浄し、 ＰＢＳ中に溶解した３．７％のホルムアルデヒド中において、室温で１０分細胞 を固定した。ＰＢＳを用いて細胞を２回洗浄し、チャンバーを除去し、２５％の グリセロールを含有するＰＢＳ中にスライドを取り付けた。表面蛍光照明を備え たザイス・アキシオフォト（Ｚｅｉｓｓ Ａｘｉｏｐｈｔｏ）写真用顕微鏡を用 いて蛍光顕微鏡検査法により細胞を検査した。 ヒト血液型Ａ（α−１，３）ＧａｌＮａｃトランスフェラーゼを用いた完全な 細胞の標識−培養スライドチャンバに塗布した細胞を１５０ｍＭのＮａＣｌを用 いて２回洗浄し、１５０ｍＭのＮａＣｌに３．７％のホルムアルデヒドを溶解し た溶液中において、室温で１０分間固定した。細胞を１５０ｍＭのＮａＣｌを用 いて３回洗浄し、完全なトランスフェラーゼ反応混合物または対照混合物１００ μｌを用いてインキュベートした。その完全なトランスフェラーゼ反応混合物は 、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１５ｍＭのＭｎＣｌ₂、５０ｍＭのカコジル酸ナトリ ウム（ｐＨ ６．８）、０．２％のウシ血清アルブミン、１ｍＭのＵＤＰ−Ｇａ ｌＮＡｃ、および１．１４ユニットのヒトの血液型Ａ（α−１，３）ＧａｌＮａ ｃトランスフェラーゼを含んでいた。対照混合物は、ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃまた は血液型Ａ（α−１，３）ＧａｌＮａｃトランスフェラーゼが除かれている以外 は 同じ成分を含んでいた。３７℃でインキュベーションを行い、４時間または２４ 時間経過後に、ＰＢＳを用いてチャンバーを２回洗浄することによってインキュ ベーションを停止した。その後、ハプテン阻止の研究について上記したように、 マウスモノクローナル抗Ａ、または抗Ｈ抗体を用いて間接的蛍光抗体法によって 細胞を分析した。 サザン・ブロッティング法： 制限酵素（１μｇのＤＮＡ当たり８ユニット、一晩の分解）を用いてゲノムＤ ＮＡを完全に分解した。トリス−ほう酸塩−ＥＤＴＡで緩衝された０．６％のア ガロースゲルを用いた電気泳動によって制限断片を分画した。ＤＮＡ断片を標準 的なサザン・ブロッティング法に従ってナイロンの膜（ハイボンド−Ｎ、アマー シャム社）に移した。ブロットは、５０％のフォルマリン、５ＳＳＣ、および１ ５０μｇ／ｍｌの変性サケ精子ＤＮＡの中で、少なくとも２時間３９℃で予備ハ イブリダイドした（１×ＳＳＣは１５０ｍＭのＮａＣｌ、１５ｍＭのクエン酸ナ トリウム（ｐＨ ７．０）、１×ＰＥはＨ５０ｍＭのトリス（ｐＨ ７．５）、 ０．１％のピロ燐酸ナトリウム、１％のドテシル硫酸ナトリウム、０．２％のポ リビニルピロリドン（Ｍ_r４０，０００）、０．２％のフィコール（Ｍ_r４００， ０００）および５ｍＭのＥＤＴＡ）。ハイブリダイゼーションは同じ溶液中で３ ９℃で少なくとも１６時間行った。ブロットを、２×ＳＳＣ、０．１％のドデシ ル硫酸ナトリウムの中で室温で４回洗浄し、０．７５×ＳＳＣ、０．５％のドデ シル硫酸ナトリウムの中で１回、６５℃で３０分洗浄した。３００−ベースペア ＢａｍＨＩ断片からなるＢＬＵＲ８プローブをＢＬＵＲ８プラスミドから分離し た。この断片を標識化するまえに、２回ゲル精製し、プラスミド配列による汚染 をなくした。ランダム・プライミング法を用い、少なくとも５×１０⁸ｃｐｍ／ μｇの特定の活性に対して〔α³²Ｐ〕ｄＣＴＰを用いてプローブを標識した。 ペーパークロマトグラフィー 酢酸エチル／ピリジン／水（１０：４：３、溶 媒Ａ）においてワットマンＮｏ．４０を用い、または９５％エタノール／１Ｍの 酢酸アンモニウム（７：３、溶媒Ｂ）においてワットマンＮｏ．３ＭＭを用いて 下降ペーパークロマトグラフィーを行った。乾燥したクロマトグラムをオートラ ジオグラフィーで処理することによって¹⁴Ｃで標識された化合物を検出した。 それに代え、乾燥したクロマトグラムを１センチの帯に切断し、放射能によって 標識された化合物を水を用いて溶出した。各溶出液の分割量をシンチレーション カクテルと混合し、放射能をシンチレーション計数管によって測定した。 放射能で標識化された標準品の調製 ２０μｌの１００ｍＭトリス−ＨＣｌの 中で、ヘビ毒液フォスフォジエステラーゼ（ＥＣ ３．１．４．１、１μｌ、０ ．００３ユニット、ベーリンガー・マンハイム）を用い、ｐＨ８、３７℃で１時 間、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（１ｎｍｏｌ）の酵素開裂を行って〔¹⁴Ｃ〕フコ ース−１−燐酸を調製した。反応物を、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースおよび〔¹⁴Ｃ 〕フコースと並行して、溶媒Ｂを用いてワットマンＮｏ．３ＭＭ上で下降ペーパ ークロマトグラフィーによって２０時間分画した。〔¹⁴Ｃ〕フコース−１−燐酸 （Ｒ _fucose ＝０．４５）を水を用いてクロマトグラムから溶出し、真空下で濃縮 した。α（１，２）フコシルトランスフェラーゼのアッセイのための後述の反応 条件を用い、ヒト血清中の（α１，２）フコシルトランスフェラーゼの活性によ り、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（３μＭ）とフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド（ ２５ｍＭ）から〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを生成した。 この反応産物を、溶媒Ａ中のワットマンＮｏ．４０上での下降ペーパークロマト グラフィーによって４時間分画した。〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラ クトシドは、乾燥したクロマトグラムをオートラジオグラフィーで処理すること によって確認し、水を用いて紙から溶出させ、真空下で濃縮した。それに代え、 〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを下記のＳｅｐ−Ｐａｋの手 順を用いてフコシルトランスフェラーゼアッセイ混合物から分離した。 細胞株および細胞の培養 ＣＯＳ−１細胞をアメリカン・タイプ・カルチャー ・コレクションから入手し、１０％の胎児ウシ血清を含むダルベッコの修飾イー グル培地中で生育した。 タンパク質の測定 タンパク質の濃度を、ＢＣＡ法（ピアース・ケミカル社） により製造業者の指示に従って測定した。ウシ血清アルブミンを標準として使用 した。 細胞抽出物の調製 細胞をＰＢＳを用いて洗浄し、ゴム製のポリスマンを用い て培養皿から取り出し、遠心分離によってペレットにした。細胞のペレットを、 冷たい１％のトリトンＸ−１００（サーファクタンプスＸ−１００、ピアース・ ケミカル社）の２倍量に再懸濁し、マイクロチップを備えたブランソンの超音波 処理機を用い、５０％の出力で１５秒超音波処理した。抽出物は直ぐにアッセイ するか、使用するまで−２０°Ｃで貯蔵した。これらの条件下で、冷凍した抽出 物内の酵素の活性は数週間の間安定していたが、凍結解凍を繰り返すと急激に悪 化した。Ｃ３Ｈマウスからの組織を分離し、レーザーナイフを用いて刻み、１％ のトリトンＸ−１００の２倍量に再懸濁し、上記と同様に超音波処理し、１５０ ０×ｇで５分間遠心分離し、上澄みを集めた。小腸を薄いポリプロピレンの棒の 上に裏返し、粘膜細胞を燐酸塩で緩衝した生理食塩水に掻き入れ、１５００×ｇ で遠心分離することによって細胞を集め、これによってマウスの腸粘膜抽出物を 調製した。その後、抽出物を上記のようにして調製した。 マウス腸（α１，２）フコシルトランスフェラーゼの部分的精製 予備的な実験の結果、マウス腸粘膜から調製した抽出物は、受容体に依存しな いでＧＤＰ−フコースを加水分解する活性を多く含んでいることが判明した。基 質加水分解は（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性の正確な測定に影響 を与えるため、腸抽出物を陰イオン交換クロマトグラフィーによって分画し、（ α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性からＧＤＰ−フコース加水分解活性 を分離した。手順は全て４０℃で行った。２ｍｌのトリトンによって可溶化され た抽出物をトリス−ＨＣｌ（ｐＨ ７．６）に加えて１０ｍＭにし、１０ｍＭの トリス−ＨＣｌ（ｐＨ ７．６）によって予め平衡化したＤＥＡＥ−セルロース （ＤＥ５２、ワットマン）を２ｍｌ（基礎量）用いて５分間処理した。酵素溶液 を濾過し、燐酸ナトリウムバッファーに加えて１０ｍＭにし、ｐＨを６．１に調 製した。最初の抽出物中に存在した酵素活性の約４７％が、ＤＥＡＥ−セルロー ス分画手順によって回収された。ＤＥＡＥ−セルロースを用いた２回目の処理に より、ＧＤＰ−フコース加水分解活性を大きく減少させることなく（データは示 していない）酵素活性が大きく消失した。受容体の添加を行わないことを除き標 準的なフコシルトランスフェラーゼアッセイ状態の下で使用した場合、調製物は 、反応物に最初に存在していたＧＤＰ−フコースの２％未満しか加水分解しなか った。 血清の硫酸アンモニウム分画 非分泌者から採血した新鮮な血液から血清を調 製した。血液をガラス管の中で３７℃で１時間凝固させ、上記したと全く同じよ うに硫酸アンモニウムによる沈降により直ぐに分画した。２０％−４０％の硫酸 アンモニア分画を、４℃で、４リットルの水で２回（各８時間）透析した。（α １，２）フコシルトランスフェラーゼのアッセイを直ぐに行った。それに代え、 分画化した血清の一部を取り分け、使用するまで−２０°Ｃで保存した。 ヒト乳（α１，２）フコシルトランスフェラーゼのイオン交換クロマトグラフ イー 文献に掲載された手順によりヒト乳から（α１，２）フコシルトランスフェラ ーゼを分離した。簡単に述べると、Ｓｅ−陽性のドナーからの３００ｍｌの乳を 遠心分離により脱脂し、２０ｍＭのカコジル酸ナトリウム（ｐＨ ６．０）を用 いて十分に透析した。これを、２０ｍＭのカコジル酸塩（ｐＨ ６．０）中で平 衡化されたスルホプロピル−セファデックス（Ｓｅｐｈａｄｅｘ）のカラム（２ ．６×１１５ｃｍ）に塗布した。その後２０ｍＭのカコジル酸塩（ｐＨ ６．０ ）１リットルを用いてカラムを洗浄し、２０ｍＭのカコジル酸塩（ｐＨ ６．０ ）と２０ｍＭのカコジル酸塩に５００ｍＭのＮａＣｌに加えたもの（ｐＨ ６． ０）それぞれ１．５リットルから作られた直線勾配を用いて溶出した。分画（１ ３ｍｌ）を集め、以下に述べるように、フェニル−β−Ｄ−ガラクトシド受容体 を使用して（α１，２）フコシルトランスフェラーゼのアッセイを行った。分画 １３０−１４４が（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性を含んでいた。 これらを組合せ、ＹＭ５膜（ＭＷカットオフ＝５，０００）と適合したアミコン （Ａｍｉｃｏｎ）攪拌細胞中での限外濾過によって１ｍｌに濃縮し、冷たい脱イ オン化水により平衡化した。濃縮された酵素の一部を取り分け、−８０°Ｃで保 存した。 ＧＤＰ−β−Ｌ−フコースとＧＤＰ−α−Ｌ−フコースの合成と特徴付け ニューンズ（Ｎｕｎｅｚ）ら（Ｎｕｎｅｚ ｅｔ ａｌ、Ｃａｎ．Ｊ．Ｃｈｅ ｍ．、５９、２０８６−２０９５、１９８１年）の方法を改良した方法によりＧ ＤＰ−β−Ｌ−フコースを合成し、精製した。以下に述べる改良した方法は、合 成工程の前の分画結晶によりアノマー１−フコピラノシル燐酸を分離する必要が なくなる。アノマー産物の分離は、最後の合成工程の後で行うＨＰＬＣによって 行う。 合成に使用するピリジンとテトラヒドロフラン（アルドリッチ）を水素化カル シウムの上で還流しながら沸騰させ、希釈し、４Å分子ふるいの上に供給した。 蒸発は全て、ロータリーエバポレーターの上で減圧状態で浴温を３５℃以下にし て行った。Ｌ−フコースをニューンズら（Ｎｕｎｅｚ ｅｔ ａｌ、Ｃａｎ．Ｊ ．Ｃｈｅｍ．、５９、２０８６−２０９５、１９８１年）に記載されているのと 全く同じ方法でアセチル化した。得られた２，３，４−トリ−Ｏ−アセチル−α −およびβ−Ｌ−フコピラノースの混合物（２．７ｇ、９．２７ｍｍｏｌ）をＯ −フェニレンフォスホクロリデートを用いて燐酸化した。アノマー１−フコピラ ノシル燐酸の混合物を含有する粗反応産物を、水の中で予め平衡化したＤｏｗｅ ｘ−１カラム（ＨＣＯ₃ ^-、２０−５０メッシュ、１．５×２３ｃｍ）上で分画し た。アノマー混合物を塗布した後、カラムを水（５００ｍｌ）で洗浄し、４００ ｍＭのトリエチルアンモニウム重炭酸バッファー（ｐＨ ７．５、２５０ｍｌ） を用いて溶出した。トリエチルアンモニウム重炭酸溶出剤は、減圧下で蒸発させ 濃いシロップとした。シロップを水に溶解し、蒸発乾固した。この部分的に精製 された１−フコピラノシル燐酸のアノマー混合物（ビス−トリエチルアンモニウ ム塩、粗産物の収率：７０％）をＧＤＰ−β−Ｌ−フコースの合成に用いた。初 めに、アノマー１−フコピラノシル燐酸（２００ｍｇ）を乾燥ピリジンに何度も 溶解し、真空中で蒸発乾燥した。グアノシン５’−ホスホモルホリデート（４０ ０ｍｇ）を乾燥したアノマー１−フコピラノシル燐酸に加えた。混合物を乾燥ピ リジンに何度も再懸濁し、真空下で蒸発乾固させた。その後、反応混合物を乾燥 ピリジン（１５ｍｌ）に懸濁し、室温でインキュベートした。ＧＤＰ−β−Ｌ− フコースの形成は、弱陰イオン交換カラム（ＡＸ３００、４．６ｍｍ×２２ｃｍ 、ピアース・ケミカル社）上で、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で毎 日モニターした。反応混合物からの分割量（１０μｌ）を蒸発乾固し、水に溶解 し、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（２０００ｃｐｍ）と混合した。そして、サンプ ルを水中で平衡化されたＨＰＬＣカラムに塗布し、１００％の水から２５０ｍＭ のトリエチルアンモニウム燐酸（ｐＨ ７．０）への直線勾配を用い、毎分 ２ｍｌの流量で６０分間溶出した。溶出剤を２６８ｎｍでモニターし、０．５ｍ ｌの分画を集め、シンチレーション計数によって共結合したＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フ コースであることを確認した。２６８ｎｍの吸収を示す３つのピークは約１８０ ｍＭのトリエチルアンモニウム燐酸で溶出した。最初のピーク継続時間（３８． ５分）は、ＧＤＰ−α−Ｌ−フコース（下記参照）の継続時間と同じであった。 第２のピークは４０．６分で溶出し、ＧＤＰ−β−Ｌ−〔¹⁴Ｃ〕フコースの標準 物と一緒に溶出した。４２．４分に溶出した第３の小さいピークは確認出来なか った。反応は本質的には５日後に完了すると判断した。最終反応混合物における βアノマーの割合は、約２：３であることを発見した。その後反応物を蒸発乾固 し、水に溶解した。調製用ヒドロポア（Ｈｙｄｒｏｐｏｒｅ）ＡＸカラム（２１ ．４ｍｍ×２５ｃｍ、レーニン・インストルメント社）上で上記の溶液からＧＤ Ｐ−β−Ｌ−フコースを精製した。水溶液の分割量を水中で平衡化されたカラム に塗布 し、サンプルを１００％の水から２００ｍＭのトリエチルアンモニウム 燐酸（ｐＨ ７．０）への直線勾配を用い、毎分１０ｍｌの流量で４５分間溶出 した。溶出剤を２６８ｎｍでモニターした。ＧＤＰ−α−Ｌ−フコースが３６． ２分に溶出した。ＧＤＰ−β−Ｌ−フコースが３８．５分に溶出した。ＧＤＰ− β−Ｌ−フコースのピークを集め、減圧下で蒸発乾固した。水を用いた共蒸発を 繰り返して酢酸アンモニウムを除去した。ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースとともに溶 出した、我々が仮にＧＤＰ−β−Ｌ−フコースとした化合物をＶＧ質量スペクト ロメーター（モデル７Ｂ−２５０Ｓ）を用いて陰イオン高速原子照射質量スペク トラム分析（キセノン）を行った。その結果（ｍ／ｚ〔Ｍ−Ｈ〕^-５８８）はこ の同定結果と一致していた。化合物をプロトン分離¹³Ｃ ＮＭＲ分光法によって 解析し、フコースのアノマー構造を確認し、その化合物をＧＤＰ−β−Ｌ−フコ ースであることを確認した。プロトン分離¹³Ｃ ＮＭＲスペクトルは、９０９． ５ＭＨｚ、２２１ｐｐｍの走査幅で動作し３２Ｋのデータ点を持つブルーカーＷ Ｍ３６０で得た。プローブ温度は３８±１℃であった。共鳴はテトラメチルシラ ンに対してｐｐｍ以下であると報告されている。この分析により、下記のスペク トルデータが得られた。¹³Ｃ ＮＭＲ（Ｄ₂Ｏ中に４０μＭ、ｐＨ ７．０）； グアニン：δ１４０．２７（Ｃ１およびＣ８）、１５６．４６（Ｃ２）、１５４ ． ３８（Ｃ４）、１１８．８５（Ｃ５）、１６１．４６（Ｃ６）；リボシル成分： ８９．３６（Ｃ１）、７６．０６（Ｃ２）、７３．６（Ｃ３）、８６．４（Ｃ４ ）、６７．８（Ｃ５）；フコシル成分：１００．９（Ｃ１）、７５．０９（Ｃ２ ）、７３．９４（Ｃ３）、７３．７１（Ｃ４）、７３．０２（Ｃ５）、１７．３ ５（Ｃ６）。ＧＤＰ−Ｌ−フコースのアノマー形の区別は、フコース環のアノマ ーＣ（１）の化学的なシフトに基づいて行われる。βアノマーにおけるフコース のＣ（１）共鳴は、αアノマー（９８．３１ｐｐｍ、下記参照）におけるアノマ ーＣ（１）の共鳴に対して下方にずれる。この化合物で得られた値は、ＧＤＰ− β−Ｌ−フコースについてニューンズらが報告したものと本質的に同一であった 。グアニン、リボース、フコース環の炭素原子に起因する共鳴も文献の値に一致 している。 １−フコピラノシル燐酸のアノマー混合物の代わりに（α−Ｌ−（−）フコー ス−１−燐酸（シグマ）のジシクロヘキシルアンモニウム塩を使用したことを除 き、ＧＤＰ−β−Ｌ−フコースの調製について述べたのと同様の方法でＧＤＰ− α−Ｌ−フコースを合成した。ＧＤＰ−α−Ｌ−フコースの分析と精製は、ＧＤ Ｐ−β−Ｌ−フコースついて述べたと同じ条件でＨＰＬＣによって行った。仮に ＧＤＰ−α−Ｌ−フコースと仮定したその精製化合物について陰イオン高速原子 照射質量スペクトラム分析（キセノン）を行った。その結果（ｍ／ｚ〔Ｍ−Ｈ〕^- ５８８）はこの仮定と一致していた。化合物を¹³Ｃ ＮＭＲ分光法によって解 析して下記のスペクトルデータを得た。¹³Ｃ ＮＭＲ（Ｄ₂Ｏ中に５０μＭ、ｐ Ｈ ６．９７）；グアニン：δ１４０．２７（Ｃ１およびＣ８）、１５６．４６ （Ｃ２）、１５４．４１（Ｃ４）、１１８．８４（Ｃ５）、１６１．４６（Ｃ６ ）；リボシル成分：８９．３５（Ｃ１）、７６．０４（Ｃ２）、７１．９８（Ｃ ３）、８６．４（Ｃ４）、６７．８（Ｃ５）；フコシル成分：９８．３１（Ｃ１ ）、７０．３６（Ｃ２）、７２．９９（Ｃ３）、７４．３（Ｃ４）、７０．３６ （Ｃ５）、１７．８８（Ｃ６）。この化合物（９８．３１ｐｐｍ）におけるフコ ース環のＣ（１）共鳴は、ニューンズらが報告しているようにαアノマー構造に 一致している。グアニン、リボース環の炭素原子に起因する共鳴も、ＧＤＰ−β −Ｌ−フコース内のこれらの原子について報告されている文献の値に一致して いる。ＧＤＰ−β−Ｌ−フコースは、（α１，２）フコシルトランスフエラーゼ のための基質としては不活性であることが発見された。 ＧＤＰ−Ｌ−フコース：β−Ｄ−ガラクトシド：２−α−Ｌ−フコシルトラン スフェラーゼのアッセイ チェスター（Ｃｈｅｓｔｅｒ）ら（Ｃｈｅｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ、Ｅｕｒ．Ｊ ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、６９：５８３−５９３、１９７６年）によって報告された 手順を改良した方法によってフコシルトランスフェラーゼのアッセイを行った。 標準アッセイはＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（３μＭ）、フェニル−β−Ｄ−ガラ クトシド（２５ｍＭ）、ＡＴＰ（５ｍＭ）、および２５ｍＭの燐酸ナトリウムバ ッファー２０μｌ中に酵素溶液（１−１０μｌ）を溶解したもの（ｐＨ ６．１ ）を含有していた。予備アッセイに基づいて加える酵素活性の量を調整し、イン キュベーション（分画化した血清について４時間、他の酵素調製物については２ 時間）の期間中において反応が直線的に行われるようにした。このような条件下 では、インキュベーションの期間中に基質の１５％未満しか消費されなかった。 最適なｐＨを決定するために、２５ｍＭの酢酸ナトリウム、燐酸ナトリウムまた はトリス−ＨＣｌを用いて緩衝した。種々のｐＨ値のバッファーの濃縮溶液を予 め調製し、これを用いた。各反応物の最終ｐＨをマイクロｐＨプローブを用いて 測定した。ＧＤＰ−フコースの見掛けＫｍ値を測定するためのアッセイにおいて は、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースを、標識されていないＧＤＰ−フコースを用いて 、最終的な比放射能が２６．３ｍＣｉ／ｍｍｏｌとなるように希釈した。このス トック溶液におけるＧＤＰ−フコースの濃度は、水に希釈した分割量の２５４ｎ ｍにおける紫外線の吸収から計算した。ＧＤＰ−フコースの吸光係数は知られて いないので、ＧＤＰ（２５４ｎｍでε＝１３８００、ｐＨ ７．０）の分子吸光 係数を計算に使用した。このストックを用いてアッセイにおいて種々の濃度（３ −３００μＭ）を得た。これらのアッセイにおけるフェニル−β−Ｄ−ガラクト シドの濃度は、乳から由来の酵素を除き全て２５ｍＭであった。本受容体のため の酵素が示した見掛けＫｍは１５．１ｍＭであるので、０．７５ｍＭのフェニル −β−Ｄ−ガラクトシドの存在下で検査を行った。フェニル−β−Ｄ−ガラクト シドの見掛けＫｍ値を測定するためのアッセイにおいては、受容体の濃度を０． ５か ら１００ｍＭに変化させた。これらのアッセイではＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースが ３μＭの濃度で存在した。商業的に入手できるＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースの比較 的低い比放射能およびそのコストのため、実験では、そのＫｍよりも十分低い基 質濃度を用いなければならなかった。アッセイは全て３７℃にて行った。適切な 期間の後、２０μｌのエタノールを加えてアッセイを終了し、１ｍｌの水を用い て希釈した。その後、混合物を１５，０００×ｇで５分間遠心分離した。その上 澄みは、実質的に放射能によって標識した産物を１００％含んでいた。この上澄 みを集め、分割量を用い、フコシル化された産物の分離と数量化を以下に述べる 疎水性の相互クロマトグラフィ法によって行った。全てのアッセイは二重、三重 に行い、それらには受容体が存在しないものも含まれていた。外因性の受容体が 存在しないものにおいて得られた値を引いて、外因性の受容体分子が存在するも のの補正を行った。この背景となる受容体の“活性”は、常にフェニル−β−Ｄ −ガラクトシド受容体に組み込まれた放射能の３％未満であった。見掛け上のミ カエリス定数は、受容体の濃度率の測定のラインウィーバ・バークプロットから 得た。インターセプトは最小２乗評価法によって計算した。 疎水性の相互クロマトグラフィにに基づく分離手順は、多数のサンプルを高速 で処理するために開発されたものである。この手順により、使い捨てのＣ−１８ Ｓｅｐ−Ｐａｋカートリッジ（ウォーターズ−ミリポア）上においてＧＤＰ−〔¹⁴ Ｃ〕フコースから〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニルーβ−Ｄ−ガラクトシドを分離で きる。Ｓｅｐ−Ｐａｋカートリッジの底を２穴のゴム製ストッパーの一方の穴に 取付け、カートリッジの頂部に５ｍｌの注射器を取り付ける。ストッパの他方の 穴は真空源（約３００ｍｍＨｇ）に取り付けた。取り付けられたＳｅｐ−Ｐａｋ カートリッジは、５ｍｌのアセトニトリル、そして５ｍｌの水で洗浄することに よって準備される。これは、取り付けた注射器のバレル内に各洗浄溶液を別々に 注入することによって行われる。（真空配管を取り付けた）ゴム製のストッパを ２０ｍｌのプラスチック製のシンチレーションバイアルの頂部に圧装したときに 作られる真空によって洗浄液がカートリッジを介して引き込まれる。注射器の内 容物は、カートリッジを介してバイアル内に吸い出す。その後、フコシルトラン スフェラーゼ反応サンプルを注射器に充填し、カートリッジを介して新しいシ ンチレーションバイアル内に吸い出す。〔¹⁴Ｃ〕フコシルフエニル−β−Ｄ−ガ ラクトシドはＳｅｐ−Ｐａｋカートリッジ上に残る。そして２ｍｌの水を用いて ３回吸い出しを行ってカートリッジを洗浄し、各洗浄水を新しいシンチレーショ ンバイアルに集める。５０％のアセトニトリル２ｍｌを用いて３回吸い上げるこ とにより〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを溶出する。シンチ レーションカクテル（１０ｍｌ、バイオセイフII、リサーチ・プロダクト・イン ターナショナル）を各バイアルに加えて透明な溶液を得、それぞれにおける放射 能をシンチレーション計数によって測定する。分画１−４において溶出する放射 能は、製造業者から得た基質に不純物として存在するか（約１％）基質または産 物の加水分解によって形成されるＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕−フコース、フコース−１− 燐酸、および〔¹⁴Ｃ〕フコースを表す。分画５−７は〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル −β−Ｄ−ガラクトシドを表す。本手順により放射能の９７％以上を回収できる 。再構築実験は、純粋な〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを実 質的に１００％回収できることを示した。分離と回収はｐＨおよび酵素源に依存 せず、最高で２％の濃度で洗剤（トリトンＸ−１００およびラブロール−ＰＸ） 耐性であった。この方法による産物の分離は、サンプル当たり約１分必要とした 。Ｓｅｐ−Ｐａｋカートリッジは、性能の劣化を伴うことなくずっと再使用でき た。 Ｓｅｐ−Ｐａｋ法は〔¹⁴Ｃ〕フコース−１−燐酸からＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコー スを分離できず、このためＧＤＰ−フコースを消費し、フコース−１−燐酸およ び／またはフコースを生成するヌクレオチドピロホスファターゼ活性を検出でき ない。そのため、全てのアッセイにおいてＡＴＰ（５ｍＭ）を使用してヌクレオ チドピロホスファターゼ活性を阻止した。ヌクレオチドピロホスファターゼ活性 を効果的に阻止していることは、各酵素調製物を用いた模擬フコシルトランスフ ェラーゼアッセイの下降ペーパークロマトグラフィーにより確認した。各酵素源 を、フェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを含まない標準アッセイカクテル２０μｌ の中で３７°Ｃで１−４時間インキュベートした。反応終了後、各々の分割量を ワットマンＮｏ．３ＭＭに塗り付け、溶媒Ｂの中で２０時間下降ペーパークロマ トグラフィーにより分画化し、上記した方法で放射能を測定した。正統のＧＤＰ −〔¹⁴Ｃ〕フコース、〔¹⁴Ｃ〕フコース−１−燐酸、およびＬ−〔¹⁴Ｃ〕フコー スの標準物を並行してクロマトグラフィー処理した。このシステムはＧＤＰ−フ コース、フコース−１−燐酸、およびフコースを分離する。このため、インキュ ベーションの終わりにおいて残留するＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースの量を数値化し 、ピロホスファターゼ活性を見積ることができる。標準アッセイ状態下では、最 初に各模擬反応物中に存在していたＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースの９７％以上が加 水分解せずにに残り、グリコシル化に利用できた。 また各酵素調製物を、〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド産物 を加水分解し、（α１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性の精密な測定を妨 げる可能性のあるα−フコシダーゼについてテストした。酵素調製物を、フコシ ルトランスフェラーゼアッセイバッファーであるが、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース またはフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドを加えないものの中で、精製した〔¹⁴Ｃ 〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド（７０００ｃｐｍ、１０ｐｍｏｌ） を用いてインキュベートした。これらの反応物を３７℃で種々の時間インキュベ ートし、Ｓｅｐ−Ｐａｋ法によって分画し、残留する〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル −β−Ｄ−ガラクトシドの量を測定した。分画したヒト血清、およびマウス腸粘 膜抽出物は何れも多量のα−フコシダーゼ活性を含んでいた。しかし、１０ｍＭ のＬ−フコースを反応カクテルに含ませることにより、これらの酵素調製物にお けるフコシダーゼ活性を効果的に阻止できた。したかって、これらの酵素源をア ッセイする場合には１０ｍＭのＬ−フコースを含ませた。大量のα−フコシダー ゼ活性は、他の細胞抽出物の何れからも検出されなかった。標準アッセイ条件下 では産物の加水分解が１時間あたり１％を越えることはなかった。これらの抽出 物を使用した再構築実験は、１０ｍＭの濃度のＬ−フコースは（α１，２）フコ シルトランスフェラーゼの活性を変更しないことを示した。 全体として、これらの実験は、分画化したヒト血清、ヒト乳、マウス腸粘膜、 または粗細胞抽出物のアッセイするために使用した条件の下では、測定された〔¹⁴ Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドの量は現実の酵素活性を反映し ていることを示した。これはＧＤＰ−フコースの基質の産物加水分解および受容 体に依存しない加水分解は何れも無視できたためである。 〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドのα−フコシダーゼを用い た分解 〔¹⁴Ｃ〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシド（約１０，０００ｃｐｍ） を、５ｍＭクエン酸ナトリウム（ｐＨ ６．０、最終容量２０μｌ）に溶解した ０．０２５ユニットのウシ腎臓α−Ｌ−フコシダーゼ（ＥＣ ３．２．１．５１ 、シグマ）を用いて、３７°Ｃで１時間分解した。この混合物を溶液Ａの中で４ 時間、ワットマンＮｏ．４０の上での下降ペーパークロマトグラフィによって分 画した。その分解産物を、並行して分離したＬ−〔¹⁴Ｃ〕フコースおよび〔¹⁴Ｃ 〕フコシルフェニル−β−Ｄ−ガラクトシドの標準物と比較することによって確 認した。 形質移入体クローンｓ２−２からのヒトＤＮＡ制限断片の分離 Ｈ−発現二次形質移入体ｓ２−２から高分子量のゲノムＤＮＡを分離し、Ｅｃ ｏＲＩを用いて完全に分解し、トリス−ほう酸−ＥＤＴＡ中で緩衝化した１％ア ガロースゲルを通して分画した。２．７ｋｂと３．４ｋｂのヒトＥｃｏＲＩを含 むゲルの領域を３ｍｍ幅に分割し、これらに含まれているＤＮＡを電気溶出によ って分離した。そのサイズ分画されたＤＮＡを、放射能によって標識されたＡｌ ｕプローブ（ＢＬＵＲ８）を用い、上記したハイブリダイゼーションおよび洗浄 条件を使用してサザン・ブロッティングにより分析した。２．７ｋｂもしくは３ ．４ｋｂの断片を含む分画を別々に使用してｌａｍｂｄａ ｇｔｌｌにおけるフ ァージライブラリを調製した。これらのライブラリを放射能によって標識したＢ ＬＵＲ８プローブを用いてスクリーニングした。第３のスクリーンから分離した 陽性ファージを使用してファージＤＮＡを調製し、２．７ｋｂのＥｃｏＲＩ断片 または３．４ｋｂのＥｃｏＲＩ断片を含むファージをサザン・ブロッティングに より同定した。３．４ｋｂまたは２．７ｋｂのインサートをＥｃｏＲＩ分解によ りファージの腕から分離し、アガロースゲル電気泳動と電気溶出によって精製し 、ｐＷＥ１５におけるＥｃｏＲＩサイトの間に個々にサブクローン化した。 ＣＯＳ−１細胞の形質移入 ＤＥＡＥ−デキストラン手順によってプラスミド ＤＮＡをＣＯＳ−１細胞内に形質移入した。形質移入してから７２時間後、細胞 を収穫し、上記のようにして抽出物を調製し、抽出物を（α１，２）フコシルト ランスフェラーゼ活性、ＧＤＰ−フコース加水分解活性、およびα−フコシダ ーゼ活性についてアッセイした。 ヒト（α１，２）ＦＴ ｃＤＮＡクローンの分離 Ａ４３１細胞ｃＤＮＡ哺乳 類発現ライブラリからの１．８×１０⁶組み換えクローンを、³²Ｐによって標識 した１．２ｋｂのＨｉｎｆＩ断片（ｐＨ３．４）をプローブとして用い、コロニ ーハイブリダイゼーションによってスクリーニングした。フィルターを、上記の ハイブリダイゼーション溶液中で４２℃で１８時間雑種形成し、洗浄し、オート ラジオグラフィー処理を行った。２つのハイブリダイゼーション陽性コロニーを 得、さらに２回のハイブリダイゼーションとコロニーの精製によって分離した。 両方のハイブリダイゼーション陽性ｃＤＮＡクローン中のインサートの予備的な 配列解析を行ったところ、それらのいずれもがｐＣＤＭ７発現ベクタープロモー タ配列に対してアンチセンス方向であることを示した。したがって、発現の研究 のために最大のインサートをｐＣＤＭ７中にセンス方向で再クローンし、その結 果得られたプラスミドをｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴとした。 フローサイトメトリー分析 ＣＯＳ−１細胞を、上記のＤＥＡＥ−デキストラ ン手順を使用し、プラスミドＤＮＡを用いて形質移入した。形質移入された細胞 を７２時間の発現期間の後で収穫し、マウスＩｇＭ抗Ｈモノクローナル抗体（ケ ムビオメッド（Ｃｈｅｍｂｉｏｍｅｄ、１０μｇ／ｍｌ）またはマウスＩｇＭ抗 ルイザモノクローナル抗体（ケムビオメッド、１０μｇ／ｍｌ）を用いて染色し た。その後細胞を蛍光体を結合したヤギ抗マウスＩｇＭ抗体（シグマ、４０μｇ ／ｍｌ）を用いて染色し、フローサイトメトリーによって分析した。 ノーザンおよびサザン・ブロッティング Ａ４３１ポリ（Ａ）−プラスＲＮＡ （１０μｇ／ｌａｎｅ）についてノーザン・ブロッティング解析を行った。ゲノ ムＤＮＡ（１０μｇ／ｌａｎｅ）についてサザン・ブロッティング解析を行った 。ブロットを³²Ｐによって標識した１．２ｋｂのＨｉｎｆＩ断片（ｐＨ３．４） を用いて調べた。 ＤＮＡ配列解析 ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴ中のインサートを、Ｔ７ＤＮ Ａポリメラーゼ（ファーマシア）とｃＤＮＡインサートの配列に従って合成され た２０−ｍｅｒのオリゴヌクレオチドプライマを用いてサンガー（Ｓａｎｇｅｒ ）の方法によって配列決定した。配列の解析とデータベース調査はマイクロ ゲニー・パッケージ（ベックマン）とウィスコンシン大学遺伝子コンピュータグ ループの配列分析ソフトウエアパッケージを使用して行った。 α（１，２）フコシルトランスフェラーゼ活性のアッセイ 細胞抽出物、形質 移入されたＣＯＳ−１細胞からの条件が整えられた培地、およびＩｇＧ−セファ ロース−結合酵素を調製し、上記の方法でα（１，２）フコシルトランスフェラ ーゼ活性についてアッセイを行った。１ユニットのα（１，２）フコシルトラン スフェラーゼ活性は、１時間当たりに形成される１ｐｍｏｌの産物であると定義 されている。受容体、フェニル−β−Ｄ−ガラクトシドの見掛けミカエリス係数 を上記したのと全く同じ方法で測定した。 プロテインＡ−α（１，２）ＦＴフュージョンベクターの構築および解析 仮定の触媒領域と３’−未翻訳配列を含むｃＤＮＡインサートの３１９６ｂｐＳ ｔｕＩ／ＸｈｏＩ断片をｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴから分離した。この断片 をクレノウ（Ｋｌｅｎｏｗ）酵素を用いて平滑化し、燐酸化されかつアニールさ れたオリゴヌクレオチド（ＣＧＧＡＡＴＴＣＣＣＣＡＣＡＴＧＧＣＣＴＡＧＧ、 ＣＣＴＡＧＧＣＣＡＴＧＴＧＧＧＧＡＡＴＴＣＣＧ）に連結した。このオリゴヌ クレオチドは、配列同定番号Ｎｏ．６のアミノ酸３３から３６５に対応する、Ｓ ｔｕＩサイトに近い仮のトランスメンブレインの間にコード化配列を再構築する ために設計されたものである。連結された断片をゲル精製し、ＥｃｏＲＩを用い て分解させ、再びゲル精製を行った。このＥｃｏＲＩによって結合した断片をｐ ＰＲＯＴＡの特有のＥｃｏＲＩサイトに連結した。ｐＰＲＯＴＡ−α（１，２） ＦＴ_cと名付けた、正しい方向の単一のインサートを含むプラスミドをＤＮＡ配 列決定によって解析し、ベクター、リンカーおよびインサートの結合部を横切る 配列を確認した。プラスミドｐＰＲＯＴＡ−α（１，２）ＦＴＣ、ｐＰＲＯＴＡ 、ｐＣＤＭ７−α（１，２）ＦＴ、またはｐＣＤＭ７をＣＯＳ−１細胞に形質移 入した。７２時間の発現期間の後、セファロースＩｇＧマトリクスまたは対照セ ファロースＩｇＧマトリクスに結合した細胞に関する培地中でのα（１，２）Ｆ Ｔ活性を数量化した。 実施例ＩＩ：ＵＤＰ−Ｇａｌ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３） ガラクトシルトランスフェラーゼ（ＤＮＡ配列認識番号３、タンパク質配列認識 番号４）をコードするＤＮＡ配列のクローニングと発現： クローン化された官能的β−Ｄ−ガラクトシル−１，４−Ｎ−アセチル−Ｄ− グルコースアミニド α−１，３−ガラクトシルトランスフェラーゼｃＤＮＡの を分離するための遺伝子転換のアプローチ 表面局在末端Ｇａｌ（α１−３）Ｇ ａｌリンケージの組織と特定細胞発現は、ＵＤＰ−ＧａｌとＮ−アセチルラクト ースアミンとの間のグリコシル転移反応の触媒として働く同族の（α１−３）Ｇ Ｔｓの発現とを関連づけている。ＣＯＳ−１細胞は、（α１−３）ＧＴのための 受容体基質としては機能するが、本酵素または表面局在産物（下記参照）は発現 しない表面発現ポリラクトースアミン分子を構築する。したがって、本発明者は 、（α１−３）ＧＴをコードするクローン化されたｃＤＮＡは、ＣＯＳ−１細胞 内で発現した場合、その酵素〔末端Ｇａｌ（α１−３）Ｇａｌリンケージ〕の表 面局在オリゴ糖産物を生成することを期待した。さらに、これらの特定の形質移 入体は、末端Ｇａｌ（α１−３）Ｇａｌリンケージと特定的に結合するレクチン （ＧＳ Ｉ−Ｂ₄）によって被覆されたプレートへの付着によって分離できた。 標準的な過渡発現システムでは、ＣＯＳ−１細胞上の細胞表面分子の発現を決定 し、哺乳類の発現ベクターにおける大きなｃＤＮＡライブラリの構築を容易にで きる形質移入されたｃＤＮＡを奪取することができるため、上記のアプローチで は上記の標準的な過渡発現システムを使用した。 形質移入されたＣＯＳ−１細胞中でのＧＳ Ｉ−Ｂ₄結合活性を発現を決定す るクローン化されたｃＤＮＡの分離 マウスＦ９テトラトカルシノーマ細胞は（ α１−３）ＧＴを発現し、この酵素活性は、これらの細胞のレチノール酸によっ て誘発された差別化に付随して増加する。したかって、本発明者は、レチノール 酸によって差別化されたＦ９細胞からｃＤＮＡ発現ライブラリを調製し、このラ イブラリをスクリーニングして、形質移入されたＣＯＳ−１細胞中でのＧＳＩ− Ｂ₄結合活性を発現を決定するｃＤＮＡを得た。ＣＯＳ−１細胞内に形質移入し たとき、ＧＳ Ｉ−Ｂ₄で被覆された培養皿への細胞の比付着性に向けられる表 面分子の発現を決定するプラスミド（ｐＣＤＭ７−αＧＴ）を分離した。蛍光活 性化セルソーティングによりこれらの観測を確認した。ｐＣＤＭ７−αＧＴ を用いて形質移入したが、ｐＣＤＭ７を用いては形質移入体していないＣＯＳ− １細胞を、蛍光イソチオシアン酸を結合したＧＳ Ｉ−Ｂ₄を用いて明るく染色 した。これの染色は、本レクチンのハプテンであるラフィノーズによって阻止で きる。この観察は、ｐＣＤＭ７−αＧＴがＩ−Ｂ₄によって同定される表面局在 分子の新たな発現、そして細胞表面のオリゴ糖上のＧａｌ（α１−３）Ｇａｌリ ンケージの発現を決定することを示す。 ｃＤＮＡ配列分析によりトランスメンブレイン・トポロジーを有するタンパク 質を予想する。ｐＣＤＭ７−αＧＴ（配列認識番号３、図２）中のｃＤＮＡイン サートは１５００塩基対長さを持ち、ｐＣＤＭ７プロモータ配列に関してセンス 方向の単一の長いオープンリーディングフレームを含む。このリーディングフレ ームの最初の１５コドンの中に３個のメチオニンコドンが発見される。本発明者 はこれらの最も近いものを、コザックの哺乳類の翻訳開始のためのルールに基づ き、イニシエーターコドンと名付けた。このリーディングフレームは、３９４ア ミノ酸長（配列認識番号４、図２）で、分子質量が４６，４７２Ｄａのタンパク 質を推定する。ヒドロパシィー分析は、本タンパクがタイプIIのトランスメンブ レイン分子の特徴を有することを示し、これは他の２つの哺乳グリコシルトラン スフェラーゼについて推定したものとトポロジー的に同一である。このトポロジ ーから、４１アミノ酸の細胞質的に方向付けられたＮＨ₂−末端セグメント；塩 基性残基によってフランキングされた１９個のアミノ酸からなる疏水性断片から なる単一のトランスメンブレイン領域；および最終的にはゴルジ腔に向けられる 大きな（多分触媒性の）ＣＯＯＨ末端領域が予想される。２つの潜在的なＮ−グ リコシル化部位が存在し、このタンパク質は、他のグリコシルトランスフェラー ゼと同じ様にグリコプロテインとして合成されるであろうことを示している。こ のｃＤＮＡ配列は、−９０と−２５１にＡＴＧコドンを有する長い５’未翻訳領 域を含有しており、翻訳制御メカニズムは、この配列の発現の調節に関与してい ることを示唆している。これはトランスクリプトが上流のＡＴＧコドンも含む、 他の哺乳グリコシルトランスフェラーゼのレミニセンスである。このタンパク質 の推定のＮＨ₂−末端の端部は、ある形式のネズミβ−１，４−ガラクトシルト ランスフェラーゼに存在する特性的開裂信号配列を欠いている。 現在利用できるタンパクと核酸のデーターベース（プロテイン・アイデンティ フィケーション・リソース、リリース２１．０、およびジーンバンク、リリース ６０．０）の調査の結果、ネズミβ−１，４−ガラクトシルトランスフェラーゼ とラットα−２，６−シアリルトランスフェラーゼを含め、（α１−３）ＧＴＤ ＮＡ配列と非常に近い配列は発見されなかった。 触媒的に活性な分泌プロテインＡ−（α１−３）ＧＴヒュージョンプロテイン の発現 本発明者はこのｃＤＮＡが（α１−３）ＧＴをコードし、内因性の遺伝 子、トランスクリプト、タンパク質との相互作用により（α１−３）ＧＴ活性を 誘発するトランス−アクティング分子を代わりにコードするという可能性を同時 に除外できることを望んだ。したがって、本タンパク質（配列認識番号４の残基 ６３−３９４）の推定触媒領域に対応する配列を、哺乳類の発現ベクターｐＰＲ ＯＴＡの中で、スタフィロコカス オーレウス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）タンパクのＩｇＧ結合領域の分泌可能な形にインフレームで融 合し、ベクターｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_cを得た。このベクターを、触媒活性を有 する分泌溶解性プロテインＡ−（α１−３）ＧＴフュージョンプロテインを発現 する能力をテストした。 ｐＣＤＭ７ベクターまたはｐＰＲＯＴＡベクターを用いて形質移入したＣＯＳ −１細胞では、細胞に結合するかまたは放出された（α１−３）ＧＴ活性は検出 できなかった。これに対し、ｐＣＤＭ７−αＧＴまたはｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_c ベクターを用いて形質移入したＣＯＳ−１細胞から調製した抽出物は、合計４， ５７４および２０，５００ユニットの（α１−３）ＧＴ活性をそれぞれ含有して いた。また、ｐＣＤＭ７−αＧＴまたはｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_cを用いて形質移 入した細胞から調製された調整培地は、４，１５５および５０，４３８ユニット の溶解性の（α１−３）ＧＴ活性をそれぞれ含有していた。重要なことは、ｐＰ ＲＯＴＡ−αＧＴ_cによって生成した放出活性はＩｇＧセファロースマトリック スに結合することができたが、ｐＣＤＭ７−αＧＴによって生成した放出活性は 本アフィニティー吸収剤と相互作用しなかったことである。この結果は、クロー ン化されたｃＤＮＡは、（α１−３）ＧＴをコードし、触媒活性（α１−３）Ｇ Ｔを生成するのに十分な情報が推定トランスメンブレインセグメントから遠い３ ３２アミノ酸の中に残ること、および酵素的に活性な状態の触媒ドメインを２連 のフュージョンプロテインの一部としてアフィニティー精製できることを示して いる。 （α１−３）ＧＴの三糖産物の構造の測定 エキソグリコシダーゼ分解を用い てリコンビナント酵素によって生成したオリゴ糖の産物について推定されるα− アノマーリンケージを確認した。ｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_cによって生成したＩｇ Ｇ−セファロース結合酵素活性を用いることにより、ＵＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕Ｇａｌお よびＮ−アセチルラクトースアミンから放射能で標識した三糖産物を調製した。 ＨＰＬＣによって精製した三糖産物をガラクトシダーゼを用いて分解すると〔¹⁴ Ｃ〕Ｇａｌが放出されたのに対し、三糖産物はβ−ガラクトシダーゼ分解に対し て完全に耐性があった。 Ｎ−アセチルラクトースアミン受容体におけるガラクトースの炭素３が、リコ ンビナント酵素によって形成されるグリコシドリンケージに関与することを確認 するため、本発明者は〔³Ｈ〕Ｇａｌによって標識されたＮ−アセチルラクトー スアミン受容体を調製し、標準的な（α１−３）ＧＴ反応条件下で、ＩｇＧ−セ ファロース結合プロテインＡ−（α１−３）ＧＴ活性と１ｍＭのＵＤＰ−Ｇａｌ を用いてインキュベートした。この反応による三糖産物を精製し、メチル化分析 を行った。放射性の２，４，６−トリメチルガラクトースを確認した。これらを 総合すると、リコンビナント酵素は、Ｇａｌ（α１−３）Ｇａｌ（β１−４）− ＧｌｃＮＡｃを用いて三糖産物を構築するために、ＵＤＰ−ＧａｌおよびＮ−ア セチルラクトースアミンを基質として使用できる。 ノーザン・ブロット分析 （α１−３）ＧＴ ｃＤＮＡはＦ９テトラカルチノ ーマ細胞における３．６キロベースの単一のトランスクリプトにハイブリダイズ する。発明者が、コロニーハイブリダイゼーションによって分離された他のクロ ーン化された（α１−３）ＧＴ ｃＤＮＡについてＤＮＡ配列を分析したところ 、ｐＣＤＭ７−αＧＴ中のインサートは本トランスクリプトの５’末端を表すこ とが示された。本トランスクリプトの残る２．１キロベースは、発現クローニン グ手順によっては奪取されない未翻訳の配列からなっている。 レチノール酸によって差別化されたＦ９テトラトカルチノーマ細胞中における （α１−３）ＧＴの比活性は、処理していないＦ９細胞の場合よりも約４倍高い 。ノーザン・ブロット分析の結果、安定状態での（α１−３）ＧＴトランスクリ プトのレベルも、Ｆ９テトラトカルチノーマ細胞のレチノール酸によって誘発さ れた差別化に付随して増加する。こらの結果は、β−１，４−ガラクトシルトラ ンスフェラーゼについてＦ９細胞で報告された結果に類似しており、この細胞株 の試験管内での差別化に付随することが知られている細胞表面オリゴ糖構造にお ける動的変化は、グリコシルトランスフェラーゼ遺伝子発現における大きな変化 に関連があることを示唆している。実施例II“ＵＤＰ−Ｇａｌ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α （１，３）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列のクローニ ングと発現”のための実験手順 Ｆ９細胞ｃＤＮＡライブラリの構築 シードとアルフォの手順を使用し、また 哺乳類の発現ベクターｐＣＤＭ７を使用し、レチノール酸によって差別化された Ｆ９テトラトカルチノーマ細胞からポリ（Ａ）⁺ＲＮＡを分離し、これからｃＤ ＮＡライブラリを調製した。ｐＣＤＭ７はベクターｐＣＤＭ８の先祖である。ｐ ＣＤＭ７はｐＣＤＭ８には存在するポリオーマ配列がないが、実質的に同一であ る。ライブラリは３×１０⁶個の独立したリコンビナントを含んでいた。 マウス（α１−３）ＧＴ ｃＤＮＡクローンの単離 ライブラリの増殖部分か らプラスミドＤＮＡを調製し、ＤＥＡＥ−デキストラン手順を用いてＣＯＳ−１ 細胞中に形質移入した。（１００ｍｍの皿に）５×１０⁵個のＣＯＳ−１細胞を 入れたサンプル４０個を、それぞれ５０μｇのプラスミドを用いて形質移入した 。７２時間の発現期間の後、形質移入されたＣＯＳ−１細胞の単層を収穫し、グ リフォニア シンプリシフォニア （Ｇｒｉｆｆｏｎｉａ ｓｉｍｐｌｉｃｉｆｏ ｌｉａ）イソレクチンＩ Ｂ₄（ＧＳ Ｉ−Ｂ₄）によって被覆した皿上でパンニ ングした。０．１ｍＭのＣａ²⁺と０．１ｍＭのＭｎ²⁺を含有する燐酸緩衝生理食 塩水（ＰＢＳ）中に１ｍｌ当たり１０μｇのＧＳ Ｉ−Ｂ₄を溶かした溶液を用 いてレクチンパンニング皿を準備した。プラスミドＤＮＡ分子を付着性細胞から 奪取し、エスチェリチア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）宿主細胞 ＭＣ１０１６／Ｐ３に形質転換した。プラスミドＤＮＡをこれらの形質転換 体から調製し、同じ手順でさらにスクリーニングを行った。ＣＯＳ−１細胞での ＧＳ−ＩＢ₄結合活性の発現を決定するプラスミドをスクリーニングするために シブ（Ｓｉｂ）選定を行った。２回目のスクリーニングから救助されたプラスミ ド分子を含むＥ．ｃｏｌｉ形質転換体を平面培養し、各々１００−５０００のコ ロニーを含む１６個のプールを得た。プラスミドＤＮＡを複製プレートから調製 し、個々にＣＯＳ−１細胞に形質移入し、形質移入体をＩ−Ｂ₄で被覆した皿の 上でパンニングによってスクリーニングした。これらの実験は、１０００個のコ ロニーの内の約１個がＧＳ Ｉ−Ｂ₄結合表現型を決定するクローン化されたｃ ＤＮＡを含んでいたことを示した。１つの“活性な”１０００個のコロニーのプ ールを幾つかの小さいプールに分け、これらのそれぞれについてＩ−Ｂ₄結合活 性をテストした。小さい活性のプールを順次用いて３回のシブ選択を行い、ＣＯ Ｓ−１細胞におけるＧＳ Ｉ−Ｂ₄結合活性の発現を導く単一のプラスミド（ｐ ＣＤＭ７−αＧＴ）を同定した。 フローサイトメトリー プラスミドＤＮＡを用いて形質移入したＣＯＳ−１細 胞を、形質移入後４８〜７２時間で収穫した。蛍光イソチオシアネートを結合し たＧＳ Ｉ−Ｂ₄を１ｍｌ当たり１０μｇで染色培地に溶解したもの、または５ ０ｍＭのラフィノースを用いて予めインキュベートした、蛍光イソチオシアネー トを結合したＧＳ Ｉ−Ｂ₄を使用して細胞を染色した。そして、上記したよう に細胞を蛍光活性化セルソーティングにより分析した。 ノーザン・ブロッティングおよびサザン・ブロッティングによる分析 ノーザ ン・ブロットを、放射能によって標識したｐＣＤＭ７−αＧＴのｃＤＭＡインサ ートを用いてハイブリダイゼーション溶液中で４２°Ｃでハイブリダイズした。 ｃＤＮＡインサート内の配列に従って合成したオリゴデオキシヌクレオチドを用 い、チェーンターミネーション法によって配列決定を行った。配列データベース の調査と分析はウィスコンシン大学遺伝子工学コンピュータグループが出版して いる配列分析ソフトウエアパッケージを使用して行った。 （α１−３）ＧＴおよび生成物の特性のアッセイ 形質移入したＣＯＳ−１細 胞から抽出物を調製した。細胞抽出物、形質移入されたＣＯＳ−１細胞からの条 件が整えられた培地、またはＩｇＧ−セファロース−結合酵素を対象に（α１ −３）ＧＴについてアッセイを行った。１ユニットの（α１−３）ＧＴの活性は 、１時間当たりに、Ｎ−アセチルアクトースアミンに形成される１ｐｍｏｌのＧ ａｌであると定義されている。 ＨＰＬＣで精製し、放射能で標識したオリゴ糖反応産物を、α−ガラクトシダ ーゼ（シグマ、２０ｍＵ）またはβ−ガラクトシダーゼ（シグマ、１ｍＵ）を用 い、製造業者の推薦するバッファー中で３７°Ｃで１時間分解を行った。反応産 物をその後ＨＰＬＣで分画化した。標準的な手順に従って反応生成物のメチル化 分析を行った。 プロテインＡ−（α１−３）ＧＴフュージョンベクターの構築と分析 指定触 媒ドメイン域を含む（α１−３）ＧＴ ｃＤＮＡの１０５０塩基対断片を、Ｅｃ ｏ ＲＩを用いて分解してｐＣＤＭ７−αＧＴから切り出した。これを二本鎖リン カー（５’−ＡＣＧＧＡＡＴＴＣＣＧＴ−３’）を用いてｐＰＲＯＴＡのＥｃｏ ＲＩサイトにクローニングし、正しいリーディングフレームを維持し、プラスミ ドｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_cを得た。 プラスミドｐＰＲＯＴＡ−αＧＴ_c、ｐＣＤＭ７−αＧＴおよびｐＰＲＯＴＡ を個々にＣＯＳ−１細胞に形質移入した。７２時間の発現期間の後、培地を収穫 し、低速（３００×ｇで８分）と高速（１００，０００×ｇで１時間）で遠心分 離した。次いで上澄みを０．０５％のツウィーン（Ｔｗｅｅｎ）２０に調整し、 上記した予め平衡化したＩｇＧ−セファロース、またはセファロース６Ｂを１０ ０μｌ用い、４°Ｃで一晩、一括してインキュベートした。その後、マトリック スを十分に洗浄し、（α１−３）ＧＴのアッセイに直接使用した。 実施例ＩＩＩ：ＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）−Ｄ−ＧｌｃＮａｃ（／Ｇ ｌｃ）−α（１，３／１，４）−フコシルトランスフェラーゼをコードするクロ ーン化されたヒトｃＤＮＡの単離（ＤＮＡ配列認識番号１、タンパク配列認識番 号２） ： 一実施例では、本発明は、最初に酵素を精製することなく、官能的α（１，３ ）フコシルトランスフェラーゼ〔α（１，３）ＦＴ〕、またはα（１，４）フコ シルトランスフェラーゼ〔α（１，４）ＦＴ〕分子をコード化するクローン化さ れ たｃＤＮＡを分離するか、さもなければ、α（１，３）ＦＴまたはα（１，４） ＦＴの発現を決定することができる遺伝子伝達システムを提供する。その代わり 、本システムでは、これらの酵素の細胞表面発現オリゴ糖産物の検出を可能とし 、それらの酵素作用の特定のアッセイを提供するために現存の試薬を利用する。 このアプローチでは、クローン化された適切なｃＤＮＡ分子を選択できる特定 の特性を有する受容体宿主細胞が必要となる。宿主は、α（１，３）ＦＴｓも同 族の表面Ｇａｌβ（１，４）〔Ｆｕｃα（１，３）〕ＧｌｃＮＡｃリンケージ（ ＳＳＥＡ−１構造）も発現してはならない。しかし、ＳＳＥＡ−１分子の表面出 現のための適切な基質を合成できなければならない。これらの基質にはヌクレオ チド糖ＧＤＰ−フコース、グリコシル転移反応のためのオリゴ糖受容体として機 能する表面発現グリコ複合体分子が含まれる。こらの特徴の各々はＣＯＳ−１細 胞によって満たされる。 蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）分析は、ＣＯＳ−１細胞は表面局在ＳＳ ＥＡ−１決定基を発現しないことを示した。ＣＯＳ−１細胞の抽出物を用いて行 った酵素分析の結果、ＳＳＥＡ−１発現がないのは、α（１，３）ＦＴ活性の不 足が原因であることが分かった。本発明者は、ＣＯＳ−１細胞はそれらのＧｏｌ ｇｉの中にＧＤＰ−フコースの基質レベルを含有していることを期待した。何故 なら、ある種の抗レクチン突然変異細胞株を除く、実質的に全ての哺乳細胞がＧ ＤＰ−フコースを合成し、それをゴルジ腔にトランスロケーションするためであ る。また、ＣＯＳ−１細胞は、形質移入されたｃＤＮＡによって決定されたα（ １，３）ＦＴ活性のための潜在的なオリゴ糖受容体を表す、置換されたポリラク トースアミンを含む表面発現グリコ複合体を構成する。本発明者は、α（１，２ ）ＦＴの発現を決定するために本発明者が以前示したクローン化されたヒト遺伝 子断片を用いた形質移入の後、ＣＯＳ−１細胞上の異なった端子にリンクしたフ コースのリンケージの発現を示し、上記の基質は表面発現した末端フコースの構 成に利用できることを確認した。したがって、本発明者は、ＣＯＳ−１細胞はα （１，３）ＦＴ決定ｃＤＮＡを用いて形質移入に続き、表面発現ＳＳＥＡ−１分 子を構築できることを観察した。 α（１，３）ＦＴの発現を決定するクローン化されたｃＤＮＡの分離と表面局 在るＳＳＥＡ−１構造 ヒトＡ４３１細胞株は、α（１，４）ＦＴの産物を表す細胞表面ルイス血液型 ａおよびｂの構造を発現することが示されている。Ａ４３１抽出物を用いて行っ た酵素アッセイにより、細胞は対応するα（１，３）ＦＴ活性も発現することを 確認した。したがって、Ａ４３１細胞ｍＲＮＡを用い、哺乳類の発現ベクターｐ ＣＤＭ７の中でｃＤＮＡライブラリを構築し、ＣＯＳ−１細胞に形質移入した。 形質移入した細胞を、ＳＳＥＡ−１決定だけのために効果のあるモノクローナル 抗体を使用し、シードの手順によってスクリーニングした。 選択手続きにおけるα（１，３）ＦＴを決定するｃＤＮＡの量の増加に対応す るため、２’−フコシルラクトースを受容体基質として使用するアッセイを採用 した。この受容体はルイスα（１，３／１，４）ＦＴと対立遺伝子でないヒトα （１，３）ＦＴとを区別できる。これは、本受容体は前者の酵素によっては効果 的に使用されるが、後者の酵素によっては利用されないためである。このアッセ イでは、本発明者はＡ４３１ ｃＤＮＡライブラリを用いて形質移入したＣＯＳ −１細胞、もしくは最初の選択によって分離された増殖プラスミドＤＮＡを用い て形質移入した細胞内での酵素活性を検出できなかった。しかし、２回目の選択 によって得られた増殖プラスミドＤＮＡは、ＣＯＳ−１細胞内に形質移入された ときに低レベルの酵素活性を導くことが分かった。パンニングによる３回目の選 択によって酵素活性の穏やかな増加が得られた。この段階で、クローン化された α（１，３）ＦＴ ｃＤＮＡを同定して分離するために“シブ選択”を採用した 。３回目のパンニング選定によって分離されたクローンのプールを、形質移入し たＣＯＳ−１細胞中においてα（１，３）ＦＴ活性を生成する能力についてテス トした。これらの実験のために、５００クローンの内の約１つがα（１，３）Ｆ Ｔ発現を決定するプラスミドを表すと推定した。約４００クローンの１つの“活 性な”プールを幾つかに分け、得られたプールのそれぞれについて、形質移入し た細胞中における酵素活性能力をテストした。活性な１６個のクローンプール内 の１つのクローン（ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴ）がα（１，３）Ｆ Ｔを非常に高いレベルで発現することを発見した。本プラスミドがＳＳＥＡ−１ （ルイスｘ）決定基（図８）の表面発現をももたらすことを確認するためにＦＡ ＣＳ解析を使用した。本プラスミドを用いて形質移入したＣＯＳ−１細胞は抗Ｓ ＳＥＡ抗体によって明るく染色されるが、対照ＩｇＭ抗Ｈ抗体によっては染色さ れない。これに対し、ｐＣＤＭ７ベクターのみを用いて形質移入した細胞は両方 の抗体による背景染色を示す。形質移入した細胞を抗ルイス抗体（図８）を用い て染色した実験でも同一の結果が得られた。 クローン化されたｃＤＮＡの推定タンパク質配列はトランスメンブレイン・ト ポロジーを推定する ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴ（配列認識号１）中のｃＤＮＡインサ ートは、ヌクレオチド長が２０２２で、７２ｂｐの５’未翻訳領域、１０８３ｂ ｐの連続したオープンリーディングフレーム、およびポリ（Ａ）末端で終わって いる８６７ｂｐの３’未翻訳領域から成る。 このクローン化されたｃＤＮＡを、Ａ４３１細胞内の単一の突出した２．３ｋ ｂのトランスクリプトにハイブリダイズすると、本インサートが実質的に最大長 であることが分かる。弱い７．５ｋｂの追加のトランスクリプトは現在のところ 未定義である。長いオプーンリーディングフレームの最初にあるイニシエーショ ンコドンはコザックのコンセンサス・イニシエーション配列に類似した配列内に 埋め込まれており、これの前に２個のインフレームのストップコドンかある。ま た、指定されたイニシエーターの上流側には単一の追加のＡＴＧがある。このＡ ＴＧもコザック・コンセンサス配列に適合するが、非常に短いインフレーム配列 を開始する。上記の長いオプーンリーディングフレームは、Ｍｒ４２，０６９Ｄ ａの３６１アミノ酸タンパク（配列認識番号２）を推定する。最新のＤＮＡとタ ンパクの配列データベース（プロテイン・アイデンティフィケーション・リソー ス（リリース２１．０）およびジーンバンク（リリース６０．０））を用いて配 列比較を行ったところ、ヒトＡｌｕ配列に類似の３’未翻訳領域内の断片を除き 、本配列に非常に類似した配列は確認できなかった。３’未翻訳領域は、機能の 重要性は未知の１６ヌクレオチド配列の２０個の縮重したコピーも含んでいる。 ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴ中のインサートによって推定された配 列と、４個の異なったクローン化した哺乳グリコシルトランスフェラーゼとを比 較したが、明らかなプライマリー配列の類似性は発見できなかった。また、これ らの酵素のプライマリー配列の類似性は広範囲にわたるものではないが、全体的 な構造組織は類似している。即ち、これらの酵素は、タイプIIのトランスメンブ レインタンパク質の代表であり、それぞれが、短いＮＨ₂末端の細胞質ドメイン 、単一のトランスメンブレインセグメント、および最終的にはゴルジ腔に存在す るより大きいＣＯＯＨ末端触媒ドメインから成っている。推定されるタンパク配 列の検査とハイドロパシー分析の結果、本タンパクは類似の構造組織を保持する ことが示唆された。１９個のアミノ酸から成り、塩基残基に隣接するアミノ末端 の近傍に単一の疎水性セグメントがある。この仮の単一アンカー配列はゴルジ腔 内に３２７個のアミノ酸を有し、サイトゾルコンパートメント内の１５個の残基 を残す。 ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴによってコードされるタンパクはフコ シルトランスフェラーゼである 発現データと本配列の他のグリコシルトランスフェラーゼに対する予想したト ポロジー類似性は、本ｃＤＮＡがα（１，３）ＦＴをコードすることを示してい る。しかし、これらのデータは、形式上には、本ｃＤＮＡ配列が、内因性の遺伝 子、トランスクリプトまたはタンパク質との相互作用によってα（１，３）ＦＴ 活性を翻訳決定する分子をコードする可能性があることと一致している。酵素活 性が本分子に直接関連していることを示すため、推定したポリペプチド（配列同 定番号Ｎｏ．２の残基４３−３６１）の推定触媒ドメインを、哺乳類の発現ベク ターｐＰＲＯＴＡの中で、スタフィロコカス オーレウス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃ ｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）プロテインＡのＩｇＧ結合ドメインの分泌形態に融 合し、ベクターｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４−Ｆｔ）。を得た。このフュ ージョンプロテインは、フコシルトランスフェラーゼの仮のトランスメンブレイ ンのアンカーセグメントを欠いているため、それは分泌分子として合成され、Ｉ ｇＧを含むマトリクス上でアフィニティー精製でき、その後α（１，３）ＦＴ活 性についてテストできるものと発明者は期待した。対照ベクターｐＣＤＭ７また はＲＯＴＡを用いて形質移入したＣＯＳ−１細胞は、細胞に結合するか細胞から 放出された酵素活性を生成しなかった。しかし、ｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１ ，４）ＦＴ_cまたはｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴを用いて形質移入し た ＣＯＳ−１細胞から調製された調整培地は多量のα（１，３）ＦＴ活性を含んで いた。特に、ｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４）ＦＴ_cによって生成した放出 活性は事実上１００％がＩｇＧ−セファロースマトリクスによって保持され、こ の活性の約２４％が、綿密な洗浄の後でマトリクスから回収できる。これに対し 、ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴによって生成した放出活性はアフィニ ティー吸収剤と相互作用しなかった。この結果は、クローン化された本ｃＤＮＡ によってコードされたタンパク質は、フコシルトランスフェラーゼをコードする こと、（α１，３）ＦＴ活性を生成するのに十分な情報が酵素のＣＯＯＨ末端の ３１９アミノ酸中に存在すること、および酵素的に活性な状態にある酵素領域を ２連のフュージョンプロテインの一部としてアフィニティー的に精製するのに本 アプローチを使用できることを示している。 フコシルトランスフェラーゼはグリコシル化されたトランスメンブレインタン パクである 本酵素について推定されたトランスメンブレイン・トポロジーを確認するため 、フコシルトランスフェラーゼｃＲＮＡを調製し、一連の試験管内翻訳実験によ る分析を行った。これらの実験において生成した³⁵Ｓ−メチオニンによって標識 された一次翻訳産物は約３７，５００Ｄａの分子量を持って移動した。この観察 された分子量と推定した分子量（４２，０６９ＤＡ）との差は、メンブレイン・ スパンニングタンパク質は時として、可溶性タンパクの分子量生成体に比べて異 常に早くＳＤＳポリアクリルアミドを通して移動するという観察結果に一致して いる。この放射能で標識されたタンパクを、イヌ膵臓ミクロゾームの存在下で試 験管内 翻訳によって生成させた時、それは約４２，０００ＤａのＭｒで移動した 。ミクロゾームの存在下で翻訳を行なった時における約６，０００Ｄａの増加が 観察され、これは、ミクロゾーム・メンブレインを横切っての共翻訳転座の間に 、ミクロゾーマル・オリゴサッカリルトランスフェラーゼによって２つのコア・ グリコシル化構造が２つの潜在的なアスパラギンによってリンクされたグリコシ ル化部位に加えられることを示唆している。また、この生成物はミクロゾームと ともに共沈降させ、タンパク質がミクロゾーム・メンブレイン中に共翻訳的に挿 入されるか、またはそれを横切って転座したことを示唆した。この放射能で標識 さ れた、ミクロゾームに結合したタンパク質をエンドグリコシダーゼＨを用いて制 限的に分解したところ、その分子質量は、一次翻訳産物と実質的に同一の質量に 減少した。部分的なエンドグリコシダーゼＨによる分解により、単一の残基コア のグリコシル化ユニットを含む分子から構成されると思われる中規模の付加バン ドが生成した。これらの結果は、コア・オリゴ糖構造の付加が、共翻訳実験にお いて観察されたタンパクのサイズの増加の原因であることを示している。これら の観察は、推定されたフコシルトランスフェラーゼアミノ酸配列中の２つの潜在 的なＮ−グリコシル化部位は、ミクロゾーム・メンブレインを横切っての転座の 間にグリコシル化されることを示している。 フコシルトランスフェラーゼの予想されるトランスメンブレイン・トポロジー はプロテアーゼ保護実験の結果によっても支持された。ミクロゾームの存在下に おける共翻訳は、プロテアーゼによる分解に対して抵抗力をもつ４２，０００Ｄ ａのポリペプチドを産出する。プロテアーゼ分解による生成物は、分解されてい ないミクロゾーム結合のポリペプチドよりも僅かに早く移動する。この差は、ミ クロゾームの外面に出現することが予想される１５個のＮＨ₂末端アミノ酸の幾 つかまたは全ての除去によるものである可能性が高い。翻訳の後のミクロゾーム の付加により、プロテアーゼに反応しやすくグリコシル化されていない、放射能 によって標識された生成物が得られ、タンパクのメンブレイン挿入は共翻訳的で あり翻訳の後に行なわれるものでないことを示した。プロテアーゼに反応しやす いグリコシル化された約３４ＫＤａのポリペプチドも実験中に少量確認すること ができる。このタンパク質の正確な性質は知られておらず、プロテイナーゼＫの 濃度に依存して現れる。したがって、それは幾つかのミクロゾーマル小胞の完全 さが失われたときに生成する無傷のタンパクのタンパク断片を表すものと本発明 者は考えた。全体として、本ポリペプチドのバルクは、共翻訳的転座プロセスに よってミクロゾーマル・ルーメン内で隔離でき、Ｎ−グリコシル化される生成物 を最終的に産出できることことをこれらの実験が示している。これらの結果は、 フコシルトランスフェラーゼ配列から推定したタイプIIのトランスメンブレイン ・トポロジーと一致している。 フコシルトランスフェラーゼは２つの異なったグリコシルリンケージを構築で きる 一般的に各グリコシルトランスフェラーゼは、単一のグリコシル転移反応を行 ない、その結果単一のグリコシルリンケージを生成するコンピテントであると考 えられている。しかし、遺伝子学的および生物学的な研究は、ヒトのルイス血液 型遺伝子座は、幾つかのタイプＩおよびタイプＩＩ受容体基質上にサブ末端Ｆｕ ｃα（１，３）およびＦｕｃα（１，４）リンケージを生成する単一のフコシル トランスフェラーゼの発現を決定するであろうことを示している。特に、ルイス 酵素は、受容体である２’−フコシルラクトースを使用できる唯一のヒト・フコ シルトランスフェラーゼであると考えられている。プラスミドｐＣＤＭ７−α（ １，３／１，４）ＦＴを、本受容体に基づく酵素アッセイを含む増加法を用いて 分離したため、そのｃＤＮＡインサートはルイス酵素をコードするものであるよ うに思われた。これを確認するため、本発明者は一連の分析を行なってリコンビ ナント酵素の受容体特異性を決定した。 ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴを用いて形質移入したＣＯＳ−１細胞 の抽出物につき、ＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースと、タイプＩ受容体であるラクト− Ｎ−ビオースＩまたはタイプＩＩ受容体であるラクトースおよびＮ−アセチルラ クトースアミンとの間でのグリコシル転移に触媒作用を及ぼす能力をテストした 。公知のヒト・フコシルトランスフェラーゼによってこれらの受容体の各々から 形成できるモノフコシル化された生成物は２種類しかない。分子の末端Ｇａｌ上 にＦｕｃα（１，２）リンケージを含むＨ活性の生成物と、単糖のＣ４ヒドロキ シル（タイプＩ受容体）またはそのＣ３ヒドロキシル（タイプＩＩ受容体）を介 してこれらの受容体のサブ末端単糖にα−アノマー構造でリンクしたフコースを 含むルイスｘまたはルイスａ活性の生成物とである。したがって、本発明者は、 反応生成物を、それぞれの受容体を有する可能性のある上記２種類の反応生成物 を区別し、酵素特異性を決定できる下降ペーパークロマトグラフィ法を用いて反 応生成物を分画化した。 本発明者は、ルイスｘ三糖３−フコシルラクトースのクロマトグラフィ移動度 特性を有する放射能によって標識された化合物を形成し、もう一つの可能性のあ る生成物であるタイプＩＩのＨ三糖と区別するためにラクトースがリコンビナン ト酵素によって利用されることを発見した。同様に、Ｎ−−アセチルラクトース アミンが受容体として使用される場合、これらの抽出物が３−フコース−Ｎ−ア セチルラクトースアミンを生成した。各生成物がα−フコシダーゼを用いて分解 されるとそれらから放射能で標識されたフコースが多量に放出され、これは酵素 が、アルファ・アノマー構造における受容体基質にフコースを結びつけているこ とを示している。これらの結果は、ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴが、 ＳＳＥＡ−１決定基を表すＧａｌβ（１，４）〔Ｆｕｃα１，３〕ＧｌｃＮＡｃ リンケージの発現を決定することを示すフローサイトメトリーによる観察と一致 している。 さらに、タイプＩ受容体であるラクト−Ｎ−ビオースＩを、Ｈ活性標準２’− フコシルラクト−Ｎ−ビオースＩとは異なり、ルイスａ三糖４−フコシルラクト −Ｎ−ビオースＩとしての本質と一致した移動度を用いてクロマトグラフィを行 なった。また本生成物はα−フコシダーゼを用いた分解に対し反応し易かった。 これらの実験にアフィニティー生成されたプロテインＡ−フコシルトランスフェ ラーゼを用いた場合、３つの二糖類の全てについて同一の結果が得られた。まと めると、これらの結果は、リコンビナントフコシルトランスフェラーゼは、タイ プＩＩおよびタイプＩの二糖類受容体上にＦｕｃα（１，３）およびＦｕｃα（ １，４）グリコシルリンケージを構成できることを示している。 相補的な一組の分析の中で、タイプＩおよびタイプＩＩの血液型Ｈ三糖類をフ コシルトランスフェラーゼｃＤＮＡによってコードされた酵素のための受容体と してテストした。血液型Ｈα（１，２）−ＦＴとＧＤＰ〔¹⁴Ｃ〕フコースを含む 細胞抽出物を使用し、末端ガラクトース残基のＣ２ヒドロキシルにある二糖前駆 体をフルコシル化することによって放射能で標識されたタイプＩとタイプＩＩの Ｈ分子を調製した。その後、これらのＨＰＬＣ精製され放射能で標識されたタイ プＩおよびタイプＩＩのＨ受容体の各々を、標識されていないＧＤＰ−フコース およびｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４）ＦＴ_cによって生成したアフィニテ ィー精製されたフコシルトランスフェラーゼ活性を使用する反応で使用した。こ れらの反応のＨＰＬＣ分析によりタイプＩまたはタイプＩＩ受容体を用いてそれ ぞれ生成したルイスｂ三糖およびルイスｙ三糖について推定したクロマトグラフ ィ移動度を有する、放射能で標識された新たな化合物を同定した。ｐＣＤＭ７− α（１，３／１，４）ＦＴを用いて形質移入したＣＯＳ−１細胞から調製した抽 出物についても実質的に同一の結果が得られた。これらの実験の結果と類似のも のを表２にまとめた。 ３番目の一連の実験では、本発明者は、シアリル・ルイスｘおよびシアリル・ ルイスａ三糖決定基を生成するために末端ガラクトース残基かα（２，３）リン ケージのシアル酸によって置換された“タイプＩ”または“タイプＩＩ”の受容 体上で本酵素が作用できることを示した。ｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）Ｆ Ｔを用いて形質移入し、モノクローナル抗シアリル・ルイスｘ抗体を用いて染色 したＣＯＳ−１細胞のフローサイトメトリー解析により、末端ガラクトース残基 がα（２，３）リンケージのシアル酸によって置換された“タイプＩＩ”受容体 に対するα（１，３）ＦＴ作用の産物であるシアリル・ルイスｘのアンチゲン（ 図８）の表面発現を本プラスミドが決定できることが示される。同様に、ｐＣＤ Ｍ７−α（１，３／１，４）ＦＴを用いて形質移入し、モノクローナル抗シアリ ル・ルイスａ抗体を用いて染色したＣＯＳ−１細胞により、末端ガラクトース残 基がα（２，３）リンケージのシアル酸によって置換されたタイプＩ受容体に対 するα（１，４）ＦＴ作用の産物であるシアリル・ルイスａのアンチゲン（図８ ）の表面発現を本プラスミドが決定できることが示される。これらの分析は、ｐ ＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴによってコードされたフコシルトランスフ ェラーゼは、タイプＩまたはタイプＩＩ受容体のサブ末端ＧｌｃまたはＧｌｃＮ Ａｃ上に２つの異なったグリコシルリンケージを構成できること、およびこれは 、受容体上の末端ガラクトースのα（１，２）フコシル化またはα（２，３）シ アリル化の状態に依存しないことを示している。これらの特徴は、ヒト・ルイス 血液型遺伝子座によって決定されるフコシルトランスフェラーゼ活性について報 告されたものと同じであり、単一のフコシルトランスフェラーゼが２つの異なっ たグリコシルリンケージの形成に触媒作用を及ぼすことができることを示してい る。 フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡはヒト・ルイス血液型遺伝子座に対する ヒト・ゲノム配列シンテニーを同定する 遺伝子データは、ヒト・ルイス血液型は染色体１９上の遺伝子座によって決定 されることを示している。したがって、ヒト染色体１９の有無のみが異なる一組 のヒト−マウス・体細胞雑種をサザン・ブロット分析するために本フコシルトラ ンスフェラーゼｃＤＮＡを使用した。その結果は、高い厳密さで、フコシルトラ ンスフェラーゼｃＤＮＡが染色体１９上に位置するクロスハイブリダイジング配 列を同定することを示している。酵素分析と合わせて考えると、これらのデータ は、クローン化された本ｃＤＮＡはヒト・ルイス血液型遺伝子座の産物を表すこ とを強く示唆している。実施例ＩＩＩ“ＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４／１，３）−Ｄ−Ｇｌ ｃＮａｃ（／Ｇｌｃ）−α（１，３／１，４）−フコシルトランスフエラーゼを コードするクローン化されたヒトｃＤＮＡの分離”のための実験手順 ：ｃＤＮＡライブラリの構築 標準的な手順を用い哺乳類の発現ベクターｐＣＤＭ ７を使用し、ヒトＡ４３１細胞から分離したポリ（Ａ）⁺ＲＮＡからｃＤＮＡラ イブラリを調製した。ｐＣＤＭ７にはベクターｐＣＤＭ８に存在するポリオーマ 配列がないが、実質的に同一である。ライブラリは２．６×１０⁶個の独立した リコンビナントを含んでいた。 細胞株 マウス３Ｔ３−ヒト雑種株ＫＬＥＪ−４７およびＫＬＥＪ−４７／Ｐ −１はハワード・グリーン（Ｈｏｗａｒｄ Ｇｒｅｅｎ）博士（ハーバード大学 、ボストン）から入手した。マウス３Ｔ３細胞はビィシュバ・ディギット博士（ ミシガン大学、アン・アーバー）から入手した。他の全ての細胞株および細胞生 育のための条件は以前に文献に述べられているものと同様である。 パンニング皿の調製 パンニング皿は、それらを最初にヤギ抗マウスＩｇＭで 被覆し、そしてモノクローナル抗ＳＳＥＡ−１抗体で被覆した（腹水はディ・ソ ルター（Ｄ．Ｓｏｌｔｅｒ）博士から提供を受けた、１：１０００に希釈）。 ｃＤＮＡライブラリのスクリーニング Ａ４３１ライブラリを前述のようにし てスクリーニングした。パンニング皿に付着している形質移入されたＣＯＳ−１ 細胞からプラスミドＤＮＡを奪取し、形質転換により細菌宿主ＭＣ１０６１／Ｐ ３に導入した。形質転換体を、抗生物質選択下で培養溶液内で飽和するまで生育 し、分割量を冷凍貯蔵のために取り出し、培養物の残りをプラスミドＤＮＡの 調製に使用した。このプラスミドＤＮＡの一部を、抗ＳＳＥＡ−１パンニング皿 の上での形質移入と免疫的選択による増殖のために使用した。 ＦＡＣＳ分析 形質移入されたＣＯＳ−１細胞を、マウスＩｇＭ抗ＳＳＥＡ− １（抗ルイスｘ）モノクローナル抗体（腹水の１：１０００稀釈）マウスモノク ローナルＩｇＭ抗Ｈあるいはルイスａ抗体（ケムビオメッド社、エドモントン； １０μｇ／ｍｌ）、マウスモノクローナルＩｇＭ抗シアリル・ルイスｘ抗体（Ｃ ＳＬＥＸ、Ｐ．テラサキ、１０μｇ／ｍｌ）、またはマウスモノクローナルＩｇ Ｇ抗シアリル・ルイスａ抗体（ＣＳＬＥＡ，Ｐ．テラサキ、１：１０００稀釈、 腹水）を用いて染色した。細胞をフルオレセイン結合ヤギ抗マウスＩｇＭ（シグ マ社；４０μｇ／ｍｌ）で染色し、すでに発明者による文献記載のある蛍光活性 化セルソーティング法による分析に付した。ノーザンブロットおよびサザンブロット Ａ４３１細胞のＲＮＡを前記したノー ザンブロット分析に付した。プローブは、プラスミドｐＣＤＭ７−α（１，３／ １，４）ＦＴ中のｃＤＮＡインサートの５’末端から単離された１．７ｋｂのＸ ｈｏｌ−Ｘｂａｌ断片からなるものであった。この断片は、ヒトＡｌｕ配列に類 似の配列を示す当該ｃＤＮＡの部分を含有していない。このプローブはα［³²Ｐ ］ｄＣＴＰでニックトランスレーションすることにより比活性６×１０⁸ｃｐｍ ／μｇについて標識された。 ゲノムＤＮＡを調製し、前記したサザンブロッティングに付した。ブロットは ０．１ｘＳＳＣ、０．５％ＳＤＳで６５℃、３０分間最終洗浄した。使用したプ ローブは、それがランダムプライミング法で標識された他は、ノーザンブロット 分析と同条件であった。 配列決定 プラスミドｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴ中のｃＤＮＡイ ンサートの配列決定を、二重鎖プラスミドＤＮＡテンプレートと市販の反応試薬 （ファルマシア）を用いるチェーンターミネーター法によって行った。両鎖はｃ ＤＮＡインサートの配列に従って合成した１７−ｍｅｒあるいは１９−ｍｅｒオ リゴヌクレオチドプローブで配列決定した。ベックマン・マイクロジニー・パッ ケージとシーケンス・アナリシス・ソフトウェア・パッケージ（ウィスコンシン 大学、遺伝子工学コンピューターグループ）を用いてＤＮＡ配列を集積し、分 析した。 試験管内・トランスクリプション−翻訳 プラスミドｐＣＤＭ７−α（１，３ ／１，４）ＦＴ ＤＮＡを、Ｎｏｔｌを用いた分解により、クローン化したｃＤ ＮＡインサートから下流を直線化した。Ｔ７ポリメラーゼ・プロモータベースの試験管内 ・トランスクリプションキット（ファーマシア）を用いてこの直線化し たテンプレートトランスクリプションからキャップＲＮＡトランスクリプトを生 成した。トランスクリプトはｐＣＤＭ７のｃＤＮＡクローニングサイトに近いＴ ７プロモータから始まる。試験管内で作られたＲＮＡトランスクリプトを用い、³⁵ Ｓ−メチオニン（アマーシャム）の存在下で、製造業者の指示に従ってラビッ ト網状赤血球溶解産物試験管内・トランスクリプションシステム（ファーマシア ）をプログラムした。イヌ膵臓ミクロゾーム・メンブレイン（プロメガ）（共翻 訳）の存在下で生成しるか、ミクロゾームの付加（後の翻訳的ミクロゾームの付 加）の前に生成したメンブレイン結合の放射能で標識された試験管内翻訳生成物 をショ糖クッションを通して、遠心分離により可溶性の反応成分のバルクから分 離した（０．５ｍＭのショ糖、１０ｍＭのトリス７．４、１５０ｍＭのＮａＣｌ 、１７０，０００×ｇで６０分）。エンドグリコシダーゼＨ分解のために、ミク ロゾームに結合した放射能で標識された製品を最初に５０ｍＭのクエン酸ナトリ ウム（ｐＨ ５．５）中に再懸濁し、ＳＤＳ中で０．２％にし、１００℃で４分 間加熱した。その後この材料の分割量を同量の水を用いて希釈し、３７℃で２０ 時間、０．１％のＢＳＡ、０．５％のトリトンＸ−１００、０．５ｍＭのＰＭＳ Ｆ、４０μｇ／ｍｌのベスタチン、１０μｇ／ｍｌのα₂マクログロブリン、お よび３０μｇ／ｍｌのＥ−６４の存在下で、１０ｍＵまたは５ｍＵのエンドグリ コシダーゼＨを用いて分解した。これに代え、ペレットを氷冷した５ｍＭのＣａ Ｃｌ₂を含有する試験管内の翻訳バッファ中に再懸濁し、１５０μｇ／ｍｌのプ ロテイナーゼＫを用いて、氷上で１時間、１％トリトンＸ−１００の存在化また は非存在下でインキュベートした。その後種々の放射能で標識された試験管内翻 訳産物を、６２．５ｍＭのトリス（ｐＨ ６．８）、１００ｍＭのジチオスレイ トール、２％のＳＤＳ、１０％のグリセロール、および０．０２％のブロムフェ ノールブルーの中で、１００℃で４分加熱することによって変性し、還元した。 サンプル をＳＤＳポリアクリルアミドを通して分画化し、ゲルをオートグラフィにかけた 。 フコシルトランスフェラーゼのアッセイ 培養した細胞をＰＢＳ中で洗浄し、 ゴム製のポリスマンを用いて掻くことによって収穫し、ＰＢＳ中で再洗浄し、遠 心分離によりペレット化した。抽出物中の最終的なタンパク濃度が略５ｍｇ／ｍ ｌになるように細胞のペレットを１％トリトンＸ−１００中に再懸濁して細胞の 抽出物を調製した（ＢＣＡ法、ピアース・ケミカル社）。 ５０ｍＭのＭＯＰＳ（ｐＨ ６．５）、２５ｍＭのＭｎＣｌ₂、１０ｍＭのＬ −フコース、５ｍＭのＡＴＰ、３ｍＭのＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（６００，０ ００ｃｐｍ／ｎｍｏｌの比放射能、アッセイ当たり３５，０００ｃｐｍ）、２． ５ｍＭの受容体（即ち、２’−フコシルラクトース、Ｎ−アセチルラクトースア ミン、ラクトース、またはラクト−Ｎ−ビオースＩ）、および１０μｌの細胞抽 出物を含む最終容量が２０μｌの溶液中でアッセイを行なった。シブ選定プロセ スの間に行なわれるα（１，３）ＦＴ比活性を測定する場合、およびプロテイン Ａ−フコシルトランスフェラーゼ・フュージョンタンパク実験の分析においては 、添加する細胞抽出物の量およびインキュベート時間を、比放射能を正確に反映 した（直線の）反応速度が得られる様に調製した。反応物を３７℃で２−６時間 インキュベートし、２０μｌのエタノールの添加によって終了し、５００μｌの 水を用いて希釈した。そのインキュベートが完了し、希釈された反応物を１５， ０００×ｇで５分間遠心分離した。各反応物の上澄み５０μｌの放射能を計数し て放射能の総量を測定し、各２００μｌをＤｏｗｅｘ−１クロマトグラフィによ って分画した。カラムから溶出する放射能で標識された中性の材料は、生成物形 成の測定として直接計数した。酵素の比放射能は、１時間でＧＤＰ−フコースか ら受容体に伝達された１ｍｇの細胞抽出物タンパク当たりのフコースのｐｍｏｌ と定義されている。また、中性の生成物を、下降ペーパークロマトグラフィとＨ ＰＬＣにより下記の様にしてさらに分析し、それらのアイデンティティを確認し た。受容体を添加しない反応を並行して行い、内因性受容体分子への転換、およ び基質と産物の加水分解をを補正できるようにした。これらの対照実験は、ＧＤ Ｐ−〔¹⁴Ｃ〕フコース内の放射能の２．６％未満が、受容体を添加しない場合に 中性 生成物として発見されたこと、および本材料の実質的に全てのものが〔¹⁴Ｃ〕フ コースを表したことを示した。 放射性物質で標識されたＨ−タイプＩとＨ−タイプＩＩの分子を受容体として 用いた場合については、放射性物質で標識されていないＧＤＰフコースをＧＤＰ −［¹⁴Ｃ］フコースの代わりに用い、反応を１６時間継続した。残存する未反応 の中性放射性標識受容体基質と中性放射性標識産物をＤｏｗｅｘ−１クロマトグ ラフィーで単離し、次いでＨＰＬＣで分析した。放射性物質で標識されたＨ−タイプＩとＨ−タイプＩＩ受容体の調製 ． ヒトα（１，２）ＦＴ活性を含有する細胞抽出物を用いて放射能で標識された Ｈ−タイプＩとＨ−タイプＩＩの受容体分子を合成した。細胞抽出物は、ヒトα （１，２）ＦＴをコードするヒトＤＮＡセグメントを含むマウスＬ細胞形質移入 体であるｍＨ１−１２から調製した。これらの抽出物は検出可能なα（１，３） ＦＴ活性またはα（１，４）ＦＴ活性を含んでいない。ラクト−Ｎ−ビオースＩ （２０ｍＭ）またはＮ−アセチルラクトースアミン（２０ｍＭ）を、１００μｇ のｍＨ１−１２抽出タンパク質を用い、３μＭのＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコースを含 む２５ｍＭのカコジル酸ナトリウム（ｐＨ ６．２）４０μｌの中で、３７℃で １６時間インキュベートした。４０μｌのエタノールを加えて反応を終了させ、 ２００μｌの水で希釈した。沈澱したタンパクを１２，０００×ｇで５分遠心分 離して除去し、上澄み中の中性で放射能で標識した反応産物をＤｏｗｅｘ−１ク ロマトグラフィによって分離した。中性で放射能で標識した各々の物質の大部分 を含むＨ−タイプＩの三糖分子（ラクト−Ｎ−ビオースＩ反応）またはＨ−タイ プＩＩ三糖分子（Ｎ−アセチルラクトースアミン反応）を以下に述べる方法でＨ ＰＬＣによって精製した。 ＨＰＬＣおよび下降ペーパークロマトグラフィによる生成物の分析 アフィニティ精製したプロテインＡ−フコシルトランスフェラーゼ・ヒュージ ョンプロテインによって、もしくはｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４ＦＴ）によ ってプログラムされたＣＯＳ−１抽出物、タイプＩまたはタイプＩＩ二糖受容体 、およびＧＤＰ−〔¹⁴Ｃ〕フコース（上記参照、フコシルトランスフェラーゼア ッセイ）によって生成した、放射能で標識化された中性反応生成物を下降ペ ーパークロマトグラフィまたはＨＰＬＣクロマトグラフィによって分画し、それ らの構造を決定した。ＨＰＬＣによって分析したサンプルを７０％アセトニトリ ルに溶解し、アセトニトリル：水（７０：３０）で平衡化したＤｙｎａｍａｘ６ ０Ａ（一次アミンカラム、レイニン・インスツルメント、４．１４ｍｍ×２５ｃ ｍ）に塗布した。アセトニトリル：水（７０：３０から４０：６０）の直線勾配 を用いて、１分当たり１ｍｌの流量で１時間化合物を溶出した。溶出液をベック マン・インスツルメントのオンラインラジオアイソトープ検出器を用いてモニタ ーした。下降ペーパークロマトグラフィによって分析したサンプルを水に溶解し 、フェニル／イソプロパノール／蟻酸／水（８５：５：１０：１００、下層）中 でワットマンＮｏ．４０を通して分画した。クロマトグラフィ（図６、パネルＡ では４０時間、パネルＢでは４８時間）の後、空気乾燥したクロマトグラムを１ ｃｍの帯に切断し、放射能で標識された化合物を２ｍｌの水に溶出した。各溶出 液を１０ｍｌのシンチレーションカクテルと混合した後、シンチレーション計数 によって放射能を測定した。ＨＰＬＣで精製した¹⁴Ｃで標識したタイプＩおよび タイプＩＩのＨ活性三糖標準物は、¹⁴Ｃで標識したタイプＩおよびタイプＩＩの Ｈ活性受容体三糖類について上記したようにして調製した。 α−Ｌ−フコシダーゼ分解 中性で、ＨＰＬＣで精製され放射能で標識化され たフコシルトランスフェラーゼ産物をα−Ｌ−フコシダーゼで分解し、付加した フコースのアルファ・アノマー構造を確認した。（１，３）〔¹⁴Ｃ〕フコシル− Ｎ−アセチルラクトースアミン、（１，３）〔¹⁴Ｃ〕フコシル−２’−フコシル ラクトース、（１，３）〔¹⁴Ｃ〕フコシルラクトース、および（１，４）〔¹⁴Ｃ 〕フコシルラクト−Ｎ−ビオースＩをＨＰＬＣで精製し、各々の分割量（１０， ０００から２０，０００ｃｐｍｓ）を、１００ｍＵのα−Ｌ−フコシダーゼ（Ｅ ．Ｃ． ３．２．１．５１、ボーリンガー・マンハイム）を用い、１００ｍＭの クエン酸ナトリウム（ｐＨ ５．５）７０μｌの中で、３７℃で２２時間分解し た。Ｄｏｗｅｘカラムクロマトグラフィーによって脱塩し、上記の条件を使用し てＨＰＬＣ分析を行なった。分解生成物を、並行して行なったＬ−〔¹⁴Ｃ〕フコ ースおよび〔¹⁴Ｃ〕フコースで標識した受容体の分離との比較によって確認した 。それぞれのケースにおいて、α−Ｌ−フコシダーゼ分解によりＬ− 〔¹⁴Ｃ〕フコースが多量に放出された。 ｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４）ＦＴ_cの構築と分析 指定フコシルトラ ンスフェラーゼ触媒領域を含んでいるｃＤＮＡインサートのＡ１３４４ｂｐのＳ ｍａｌ−ＢａｍＨｌ断片をｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴから分離した 。この断片をＤＮＡポリマラーゼＩのクレノウ断片を用いて平滑化し、その端を キナーゼ化した二本鎖リンカー（５’ＣＧＧＡＡＴＴＣＣＧ ３’）に連結した 。連結した断片をゲル精製し、ＥｃｏＲＩを用いて分解し、再度ゲル精製した。 この断片をＰＰＲＯＴＡの特異的なＥｃｏＲＩサイトに挿入した。単一のインサ ートを適切な方向で含む１つのプラスミド（ｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４ ）ＦＴ_c）をＤＮＡ配列決定によって分析し、ベクター、リンカーおよびインサ ートの間の結合点を横切る推定した配列を確認した。 プラスミドｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４）ＦＴ_c、ｐＣＤＭ７−α（１ ，３／１，４）ＦＴまたはｐＰＲＯＴＡ（各５０μｇ）を、ＤＥＡＥ−デキスト ラン媒介形質移入によって個々にＣＯＳ−１細胞（１００ｍｍの皿の各々に対し て５００，０００個）に導入した。７２時間の発現期間の後、各プレートから培 地（１０ｍｌ）を収穫し、低速（３００×Ｇで８分）と高速（１００，０００× Ｇで１時間）で遠心分離した。そして上澄みを０．０５％のツウィーン２０に調 整し、直接アッセイするか、ＩｇＧ−セファロース結合の研究に使用した。Ｉｇ Ｇ−セファロースまたはセファロース６Ｂを製造業者（ファーマシア）が述べて いるようにして予め平衡化し、ダルベッコの修飾イーグル培地（ＦＣＳ／ＤＭＥ Ｍ）中の１０％胎児ウシ血清で平衡化した。形質移入したＣＯＳ−１細胞から調 製された既知量の酵素活性を含む処理された上澄みの分割量を、平衡化したＩｇ Ｇ−セファロースまたはセファロース６Ｂを１００μｌ用いて４℃で一晩、一括 してインキュベートした。上澄みをアッセイ（“フロースルー”活性）のために 保存した。その後、マトリクスを遠心分離により、５０ｍＭのトリス（ｐＨ ７ ．５）１ｍｌ、１ｍｇ／ｍｌのウシ血清アルブミンを用いて９回、２０ｍＭのト リス（ｐＨ ７．５）１ｍｌ、５ｍＭのＣａＣｌ₂、０．０５％のツウィーン２ ０を用いて２回、そしてＦＣＳ／ＤＭＥＭを用いて１回洗浄した。その後、マト リクスを同量のＦＣＳ／ＤＭＥＭに再懸濁した。この懸濁液をα（１，３）ＦＴ 活性 のアッセイに直接使用した。 実施例ＩＶ：ＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃ α（１，３） フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＩＶ、ＤＮＡ配列認識番号７、タンパ ク配列同定番号Ｎｏ．８）をコードするＤＮＡ配列のクロスハイブリダイセーシ ョンによるクローニングと発現 ： 本発明者は以前に、ヒト・ルイス式血液型フコシルトランスフェラーゼ（配列 認識番号２）をコードするクローンｃＤＮＡ（配列認識番号１）を分離するため に哺乳類の遺伝子転換手順を使用した。生化学的および遺伝子的データは、ヒト ゲノムは表面局在ルイスｘ決定基（Ｇａｌβ１→４〔Ｆｕｃα（１→３）Ｇｌｃ ＮＡｃ−）を構成する能力を有するフコシルトランスフェラーゼをコードする２ つまたはそれ以上の構造遺伝子を含んでいることを示していることに本発明者は 気が付いた。これらの酵素は受容体基質特異性、および２価カチオンとＮ−エチ ルマレイミド失活に対して異なる反応性を示すため、本酵素はルイス・フコシル トランスフェラーゼとは異なったポリペプチドであると考えられた。さらに、そ れらの発現は、ルイス式血液型フコシルトランスフェラーゼの遺伝子座とは異な る座によって決定せれ、それらはルイスの座によって決定される発現パターンと 相違する組織特異パターンを表す。これらの酵素はルイス式血液型フコシルトラ ンスフェラーゼに非常に似通った特性を示すため、それらに対応する遺伝子は一 次配列のレベルで十分に関連づけられ、クロスハイブリダイゼーションのアプロ ーチによってそれらを分離できると発明者は考えた。彼および他の研究者が、同 じ基質を使うグリコシルトランスフェラーゼ配列がそれらの一次核酸またはアミ ノ酸の配列に全く関係していないことを以前に示したのに関わらず彼はこれを考 えた。なぜなら、彼はフコシルトランスフェラーゼは非常に類似した基質要件を 示したこと、かつそれぞれのケースで構成された１以上のオリゴ糖産物がルイス フコシルトランスフェラーゼによって作られたものと同一であることを知ってい たためである。 これらのα（１→３）フコシルトランスフェラーゼが構造的に関連する遺伝子 ファミリーによってコードされる可能性を考慮し、彼はクローン化したルイス・ フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡを用い、クロスハイブリダイゼーション法 によって他のかようなものを分離することを探究した。低ストリンジェンシイ・ サザン・ブロット・ハイブリダイゼーション実験によって、ルイスα（１，３） フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡのコード領域が強いハイブリダイゼーショ ンヒトＤＮＡ制限フラグメントならびにいくつかの弱いハイブリダイゼーション フラグメントを検出することが明らかとなった。弱いハイブリダイゼーションフ ラグメントは、制限酵素の使用に関わらず常に検出され、正統のルイス遺伝子と 異なる１以上のＤＮＡ配列は多分強いハイブリダイゼーションフラグメントによ って表されていることを示唆した。これらの配列の分子的性質をさらに検査する ため、彼はヒトλファージゲノムＤＮＡライブラリをルイスｃＤＮＡプローブを 用いて低ストリンジェンシィでスクリーニングした。全部で１８のファージが約 ５個のヒトゲノム均等を表すファージから分離した。これらのファージの内の１ ６個のサザン・ブロット分析により、それらの制限パターンとハイブリダイゼー ション信号強度に基づき３グループに分けることができた。中程度のハイブリダ イゼーション強度のグループを表す６個のファージを確認した。３．６ｋｂのク ロスハイブリダイゼーションＰｓｔＩ制限フラグメントを本グループを代表する ファージからサブクローン化した。このフラグメントのルイスプローブを有する ヒトゲノムＤＮＡで検出されたクロスハイブリダイゼーションフラグメントに対 する関係を決定するために、ルイスコーディング配列プローブを用いてクロスハ イブリダイゼーションした本フラグメントの４００ｂｐのＡｖａＩＩ−ＰｖｕＩ Ｉセグメントも使用して低ストリンジェンシィでサザン・ブロットをプローブし た。サザン・ブロットを生成するのに使用した各酵素についてＡｖａＩＩ−Ｐｖ ｕＩＩプローブは１つの強いハイブリダイゼーションフラグメントを検出し、１ 以上の弱いハイブリダイゼーションフラグメントを検出した。強いハイブリダイ ゼーションフラグメントの各々は、同じ酵素によって生成されルイスプローブに よって検出される弱いハイブリダイゼーションフラグメントの１つと対応してい た。同様にルイスプローブを用いて検出された強いハイブリダイゼーションフラ グメントの各々は、ＡｖａＩＩ−ＰｖｕＩＩプローブに対して弱いハイブリダイ ゼーションを示すフラグメントと対応していた。これらの結果は、このプローブ とこれから誘導される３．６ｋｂのフラグメントは、ゲノムＤＮＡサザン・ブロ ット上でルイスプローブによって検出される弱いクロスハイブリダイゼーション ＤＮＡ配列を表すことを示した。 相同のＤＮＡ制限フラグメントは、ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコ シルトランスフェラーゼｃＤＮＡと類似性を有するポリペプチドを推定する単一 の長いオープンリーディングフレームを維持する ３．６ｋｂのＰＳｔＩフラグメント（配列認識番号７）のＤＮＡ配列分析によ り、ルイスｃＤＮＡプローブ（図４および図５）にクロスハイブリダイゼーショ ンされる配列に対応する３’部分内の単一の長いオープンリーディングフレーム が同定された。このリーディングフレームは、哺乳類の翻訳開始のためのコザッ クのコンセンサスルールに一致した配列コンテクスト内に発見されるメチオニン コドンから始まる。また、このリーディングフレームによって予想されるタンパ ク配列のハイドロパシィー分析は、そのＮＨ₂終端の単一の疎水性セグメントを 示し、推定されたポリペプチド（配列認識番号８）は哺乳グリコシルトランスフ ェラーゼにおいて典型的なタイプＩＩのトランスメンブレイン定位を維持してい ることを示唆している。このリーディングフレームは、その遠方の部分において 、ルイス・フコシルトランスフェラーゼ（図５）の対応する部分と多量のアミノ 酸配列の同一性を共有している。これらの配列は、ルイス・フコシルトランスフ ェラーゼの触媒領域内においてそれらのＣＯＯＨ末端位置の間において最大の類 似性を有している。後者の酵素の“ステム”およびトランスメンブレイン領域内 において予想されるＮＨ₂端に向けて配列の逸脱が起こる。 ＤＮＡ制限断片によってｍＲＮＡトランスクリプトがＨＬ−６０ミエロイド細 胞中に検出される ：このセグメントが官能性α（１，３）フコシルトランスフェ ラーゼ遺伝子を表す可能性を試験するために、その一部をプローブとして用いて 、そのような酵素を発現することが知られている細胞株中のトランスクリプトを 同定した。ＨＬ−６０ヒト細胞株を用いた理由は、これらのミエロイド系統細胞 がルイスα（１，３）フコシルトランスフェラーゼとは異なった一以上のα（１ ，３）フコシルトランスフェラーゼを発現することが知られているからである。 オープンリーディングフレームの一部に対応する４００ｂｐ ＡｖａＩＩ− ＰｖｕＩＩセグメントを用いてこれらの細胞から単離したポリアデニル化された ｍＲＮＡのノーザンブロット分析を行った結果、４つの異なったトランスクリプ トが同定された。対照的に、ルイスｃＤＮＡを用いて同じ分析を行ったときには 、トランスクリプトは検出されなかった。この結果は、ＨＬ−６０細胞によって 発現されたフコシルトランスフェラーゼがクローン化されたＰｓｔＩセグメント 中のオープンリーディングフレームによってコードされる可能性と一致している 。 相同なＤＮＡ制限断片中のオープンリーディングフレームはα（１，３）フコ シルトランスフェラーゼの発現を決定する ： このセグメントがα（１，３）フコシルトランスフェラーゼをコードするかど うかを決定するために、３．６ｋｂ ＰｓｔＩ断片を哺乳類の発現ベクター中に クローン化し、得られたプラスミド（ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＩＶ、「実験手 順」参照）を形質移入することによって２種類の哺乳類宿主細胞に導入した。形 質移入された細胞を、ベクター依存性細胞表面糖複合体発現に関して、およびフ コシルトランスフェラーゼ活性に関して分析した。三つの実験において、ＣＯＳ −１細胞とＣＨＯ細胞を宿主として使用したが、その理由はとちらの細胞株も検 出可能なα（１，３）−およびα（１，４）フコシルトランスフェラーゼ活性を 通常発現しないからである。同様にＣＯＳ−１およびＣＨＯ細胞は検出可能な量 の細胞表面のＧａｌβ１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−（ルイスｘ 、ＳＳＥＡ−１）成分、またはα２→３シアリル化誘導体（ＮｅｕＡｃα２→３ Ｇａｌβ１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮａｃ−、シアリル ルイスｘ） を通常発現しない。しかしながらこれらの細胞は通常、そのような分子に対する 前駆体として機能できる、フコシル化されていない中性のオリゴ糖、およびα２ →３−シアリル化されたタイプＩＩのオリゴ糖の表面顕出（surface display） を、形質移入されたルイスｃＤＮＡ発現ベクターによってコードされたα（１， ３）フコシルトランスフェラーゼの作用によって維持する。ＣＯＳ−１細胞はま たルイスａ（Ｇａｌβ１→３［Ｆｕｃα（１→４）］ＧｌｃＮＡｃ−）およびシ アリルｌｅｗｉｓ ａ（ＮｅｕＮＡｃα２→３Ｇａｌβ１→３［Ｆｕｃα（１→ ４）］ＧｌｃＮＡｃ−）成分に対するタイプＩ前駆体の表面顕出を維持する。ベ クターｐＣＤＮＡＩを用いた理由は、このプラスミドは哺乳類宿主中の、外因性 でサブ クローン化された配列をそのベクター中のサイトメガロウイルスの直接的アーリ ープロモーター配列によって効果的に転写するからである。 最初の生化学的分析においては、プラスミドｐＣＤＮＡＩ−Ｆｕｃ−ＴＩＶに よって形質移入されたＣＯＳ−１細胞から調製された抽出物のベクター依存性フ コシルトランスフェラーゼ活性を、幾つかの低分子量アクセプター基質を用いて 試験した。標準フコシルトランスフェラーゼ試験（「実験手順」参照）において は、ｐＣＤＮＡＩ−Ｆｕｃ−ＴＩＶで（対照の形質移入体によってでなく）形質 移入された細胞から調製された抽出物は、タイプＩＩのジサッカライドアクセプ タ−Ｎ−アセチルラクトースアミンを利用してクロマトグラフモビリティー（「 実験手順」参照）を有する放射性産物を生成する、フコシルトランスフェラーゼ 活性（２９６ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）を有する。このモビリティーは、正統Ｇａｌ β１→３［Ｆｕｃα（１→４）］ＧｌｃＮＡｃ（Ｒ_{2'-fucosyl-N-acetyllactosa mine} ＝０．８５）に特徴的なものである。しかしながら、これらの試験条件にお いては、２つの他の中性のタイプＩＩ分子（２’フコシルラクトース、ラクトー ス）が、それらの抽出物中におけるフコシルトランスフェラーゼに対するアクセ プター基質として、Ｎ−アセチルラクトースアミン程は効果的に機能しなかった （２’フコシルラクトース、ラクトースのそれぞれに対して１７および１０ｐｍ ｏｌ／ｍｇ−ｈ）。タイプＩの基質、ラクト−Ｎ−ビオースＩを用いて検出され たのはごく少量の伝達だけであった。 同様にして、発明者は、シアリル化アクセプタ−ＮｅｕＮＡｃα（２→３）Ｇ ａｌβ（１→３）ＧｌｃＮＡｃ−（１ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈより少量）へのフコー スの伝達を、Ｎ−アセチルラクトースアミン（４７４ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）に対 して比較的大きな活性を示す抽出物中においてすら検出しなかった。対照的に、 これらの同じ条件下で、ルイス血液型フコシルトランスフェラーゼを含有する抽 出物は、シアリル化されたアクセプター（２９７ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）とＮ−ア セチルラクトースアミン（５２６ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）の双方を利用し、それぞ れシアリルルイスｘ四糖およびルイスｘ三糖（「実験手順」参照）を生成した。 このように、この酵素によって試験管内で示された制限されたアクセプターの優 先順位（preference）は、ルイスα（１，３／１，４）フコシルトランスフェラ ー ゼ（これは試験した５つのアクセプターのそれぞれを効果的に利用できるもので ある）によって示されたものと好対照を示す。これらの結果を表２にまとめた。 ｐＣＤＮＡＩ−Ｆｕｃ−ＴＩＶによって形質移入されたＣＯＳ−１細胞はまた 、フローサイトメトリー分析にかけ、これらのオリゴ糖産物の新たなベクター依 存性表面発現を検出し、この酵素の生体内アクセプター基質要求の評価を行った 。形質移入されたＣＯＳ−１細胞は、ルイスｘ成分Ｇａｌβ１→４［Ｆｕｃα（ １→３）］ＧｌｃＮＡｃ−）（図８）に対するモノクローナル抗体で陽性の染色 結果を示し、一方、インサートなしのｐＣＤＮＡｌベクターで形質移入された細 胞はこの決定基を発現しなかった。しかしながら、ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＩ Ｖで形質移入されたＣＯＳ−１細胞あるいはその対照プラスミドはシアリルルイ スｘ抗原に対し特異的な抗体を染色しなかった（図８）。同様に、形質移入され た細胞は、検出可能なルイスａまたはシアリルルイスａ分子の表面発現を示さな かった。 末端にα（２→３）−結合性シアリン酸を有するポリラクトースアミノグリカ ン類も、単一の内部α（１，３）結合性フコースを、末尾から二番目のラクトー スアミン繰り返し単位のＮ−アセチルラクトースアミン残基上に保持するものと して存在する。この決定基（ＮｅｕＡｃα２→３Ｇａｌβ１→４ＧｌｃＮＡｃβ １→３Ｇａｌβ１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−）はモノクローナ ル抗体ＶＩＭ−２によってミエロイド細胞の表面上に検出可能であり、タイプＩ Ｉポリラクトースアミンアクセプター上のα（１，３）フコシルトランスフェラ ーゼ（このものの末端ガラクトース残基はα（２，３）シアリン酸成分で置換さ れている）の作用によって構築できる。ルイスα（１，３／１，４）フコシルト ランスフェラーゼで形質移入されたＣＯＳ−１細胞もプラスミドｐＣＤＮＡｌ− Ｆｕｃ−ＴＩＶで形質移入されたＣＯＳ−１細胞もこの決定基を検出を可能とす る量において顕出しない。 実質的に同等の結果を、プラスミドｐＣＤＮＡＩ−α（１，３）ＦＴｍｌｕ（ 「実験手順」参照）で形質移入されたＣＯＳ−１細胞を用いることによって得る ことができる。このベクターは図４のｂｐ１９０４からオープンリーディングフ レームに対応する配列を包含する。これらの結果は、図４中のオープンリーデ ィングフレームがこのフコシルトランスフェラーゼ遺伝子のコード部位に対応す るという仮説に対しての付加的な証拠を提供するものである。 更に、酵素活性がこのタンパクに直接的に関連しているものであることを示す ために、予想されたポリペプチド（配列認識番号８においてアミノ酸番号５０か ら４０５）の推定触媒ドメインを、哺乳類ベクターｐＰＲＯＴＡのスタフィロコ ッカス・アウレウス・プロテインＡのＩｇＧ結合ドメインの分泌形態のものに融 合し、ベクターｐＲＯＴＡ−α（Ｆｕｃ−ＴＩＶ）_cを生成した。この融合タン パクはフコシルトランスフェラーゼの推定トランスメンブレイン固定セグメント を欠如しているかも知れないので、発明者はＩｇＧ含有マトリックス上にアフィ ニティー精製できる分泌分子として合成できるのではないかと考え、α（１，３ ）ＦＴ活性について試験した。対照ベクターｐＣＤＭ７、またはｐＰＲＯＴＡで 形質移入されたＣＯＳ−１細胞は検出可能な細胞と会合した或いは細胞から遊離 した酵素の活性を生じなかった。しかしながら、ｐＰＲＯＴＡ−α（Ｆｕｃ−Ｔ ＩＶ）_cで形質移入されたＣＯＳ−１細胞から調製された調整培地は、Ｎ−アセ チルラクトースアミンで試験したところ、顕著なα（１，３）ＦＴ活性を有して いた。ｐＰＲＯＴＡ−α（Ｆｕｃ−ＴＩＶ）_cによって生成した遊離された酵素 活性の実質的に１００％がＩｇＧ−セファロースマトリックスで特異的に保持さ れている。これらの結果はこのクローン化されたＤＮＡセグメントによってコー ドされたタンパクはフコシルトランスフエラーゼをコードすること、およびα（ １，３）ＦＴ活性を生成するのに充分な情報がこの酵素のＣＯＯＨ−末端の３５ ６のアミノ酸中に存在することを示している。 ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＩＶ（ＣＨＯ−ＦＴ３細胞）で形質移入されたＣＨ Ｏ細胞株から調製される抽出物を生化学的に分析すると、形質移入されたＣＯＳ −１細胞から得られる結果と類似の結果を生ずる。標準のフコシルトランスフェ ラーゼ試験（実験手順参照）においては、抽出物は対照の形質移入された細胞株 ＣＨＯ−Ｖから調製された抽出物は、Ｎ−アセチルラクトースアミン、２’フコ シルラクトース、ラクトース、またはラクト−Ｎ−ビオースＩ、あるいはＮｅｕ Ａｃα（２→３）Ｇａｌβ（１→４）ＧｌｃＮＡｃで試験したとき、α（１，３ ）フコシルトランスフェラーゼ活性を有しなかった。対照的に、ＣＨＯ−ＦＴ３ 株 で調製された抽出物は、α（１，３）フコシルトランスフェラーゼ活性（５９． １ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）を有し、この後者はタイプＩＩのジサッカライド・アク セプターであるＮ−アセチルラクトースアミンを利用して、正統Ｇａｌβ（１→ ４）［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ（Ｒ_{2'-fucosyl-N-asetyllactosamine} ＝０．８５）（「実験手順」参照）に特徴的なものである放射性産物を生成した 。これらの試験条件においては、ＣＨＯ−ＦＴ３抽出物はタイプＩＩアクセプタ ー分子２’フコシルラクトースとラクトースをかなり低い効率で利用するもので あった（それぞれ５．８ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈおよび２．０ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ） 。これらの抽出物を、タイプＩの基質であるラクト−Ｎ−ビオースＩを用いて検 出したとき、およびシアリルルイスｘ前駆体であるＮｅｕＮＡｃα２→３Ｇａｌ β１→４ＧｌｃＮＡｃを用いて検出したとき、実質的に伝達は検出されなかった （前者、後者とも＜ｐｍｏｌ／ｍｇ−ｈ）。これらの結果は、形質移入されたＣ ＯＳ−１細胞から調製された抽出物から得られた物質を確認するとともに、第一 の評価として、ＣＯＳ−１とＣＨＯの遺伝子的背景は酵素のこれら５つの低分子 量アクセプター物質の利用能にさほど強く影響を与えないことを確認するもので ある。 一つの顕著で重要な例外は、ＣＨＯ−ＦＴ３細胞を用いたフローサイトメトリ ー分析は実質的に形質移入されたＣＯＳ−１細胞を用いたそれと同一であること が判明したことである。ＣＨＯ−ＦＴ３細胞は、抗ルイスｘ抗体で均一で明るい 染色を示したか、シアリルルイスｘ分子に対する指向性を有する抗体ではそうな らない。対照の形質移入された細胞はどの抗体でも染色されない。期待されたよ うに、どの細胞株も中性およびα２→３−シアリル化ルイスａアイソマーに対す る抗体で染色されない。なぜならＣＨＯ細胞はタイプＩ前駆体を構築するからで ある。しかしながら、これらの細胞は、形質移入されたＣＯＳ−１細胞とは重大 な差異を有する。この差異とは、ルイスα（１，３／１，４）フコシルトランス フェラーゼｃＤＮＡ（ｐＣＤＭ７（１，３／１，４）ＦＴ）により形質移入され たＣＨＯ細胞のように、多量のＶＩＭ−２決定基を発現することである。 形質移入された細胞からの抽出物を用いて行い、表２に要約して記載した生化 学的分析の結果を合わせて考えると、図８に示したフローサイトメトリー分析、 プロテインＡ遺伝子融合実験、およびＤＮＡ配列分析は、プラスミドｐＣＤＮＡ １−Ｆｕｃ−ＴＩＶがα（１，３）フコシルトランスフェラーゼをコードするこ とが結論される。プラスミドｐＣＤＮＡｌ−α（１，３）ＦＴｍｌｕもまた、こ の酵素が図４に示したオープンリーディングフレームによってコードされること を示している。これらの結果はさらに、この酵素はタイプＩＩ前駆体を利用する ことができるがタイプＩは利用できないことを示し、このことは、この酵素はシ アリルルイスｘ決定基を形成するにあたって、α２→３シアリル化タイプＩＩ糖 複合体を有効に利用できないということを示唆している。実施例ＩＶ”ＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα （１，３）フコシルトランスフェラーゼ：（Ｆｕｃ−ＴＶ）をコードするＤＮＡ 配列のクロスハイブリダイゼーションによるクローニング、および発現”の実験 手順 ： 細胞培養：使用したＣＯＳ−１細胞、ＣＨＯ形質移入体、およびＡ４３１細胞 の入手源および培養条件は前記の通り（エルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ ．（１９８９）２６５：３４３６−３４４７およびラジャンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６４：１１１５８−１１１６７参照）。ヒトＨＬ−６ ０細胞株はスティーブ・クンケル博士（ミシガン大学、Ａｎｎ Ａｒｂｏｒ）か ら提供を受けた。ＨＬ−６０細胞は１０％胎児ウシ血清とダルベッコの修飾イー グル培地で生育した。 抗体：抗Ｌｅｘ抗体抗ＳＳＥＡ−１（ソルターら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａ ｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）（１９７８）、７５：５５６５−５５６９）（マウスモ ノクローナルＩｇＭ、腹水）を使用した。抗Ｈおよび抗ルイスａ抗体（マウスモ ノクローナルＩｇＭ、抗原アフィニティにて精製）はケムバイオメッド社（エド モントン、アルバータ州）から購入した。抗シアリル・ルイスｘ抗体ＣＳＬＥＸ ｌ（福島ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９８４）４４：５２７９−５２８５） （マウスモノクローナルＩｇＭ、ＨＰＬＣにて精製）および抗シアリル・ルイス ａ抗体ＣＳＬＥＡｌ（チアら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９８５）４５：４３ ５−４３７）（マウスモノクローナルＩｇＧ３、硫酸アンモニウムにて沈降）を 使用した。抗ＶＩＭ−２はブルース・メイチャー博士（サンフランシスコ州立大 学）から提供された。マウスＩｇＧ抗体組成物（ＭｓＩｇ）はコールター社から 購入した。フルオレセイン複合ヤギ抗マウスＩｇＭまたはＩｇＧ抗体はシグマ社 から購入した。 ヒトゲノムライブラリの構築：高分子量のヒトゲノムＤＮＡは末梢血液白血球 から前記のように調製した（エルンストら、１９８９）。ゲノムＤＮＡは制限エ ンドヌクレアーゼＳａｕ３Ａを使用して部分分解した。部分分解されたゲノムＤ ＮＡは食塩水勾配による超遠心分離によってサイズ分画した。８ｋｂから２０ｋ ｂの間のＤＮＡフラグメント富化分画を、あらかじめ末端をＳａｕ３Ａフラグメ ントに適合するように部分的にｄＴＴＰおよびｄＣＰＴで満たしたＸｈｏＩで分 解したラムダＦＩＸ（ストラダジーン）ファージの腕に連結した。連結した混合 物は試験管中で市販のパッケージ用抽出物（ストラダジーン）を用いてパッケー ジとし、大腸菌宿主ＴＡＰ９０（パッターロンら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅ ｓ．１９８７、１５：６２９８）により標定されている。プラーク・ハイブリダ イゼーションにより約１．０ｘ１０⁶のリコンビナント・ラムダファージが選択 された。プラーク・リフトはニトロセルロースフィルター（シュライチャーおよ びシュエル）を使用して調製し、４２℃で１６時間、５０％フォルムアミド、５ Ｘ ＳＳＣ、１０Ｘデンハーツ溶液、および０．１％ＳＤＳ中で予備ハイブリダ イゼーションした。フィルターは３５℃で７２時間、１０％硫酸デキストラン、 および１ｍｌあたり１００マイクログラムの変性鮭精子ＤＮＡを含んだ予備ハイ ブリダイゼーション溶液中でハイブリダイズした。プローブは、［α−³²Ｐ］ｄ ＣＴＰで標識したルイス式血液型α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラ ーゼをコードするｃＤＮＡインサートの５’末端から単離した１．７ｋｂＸｈｏ ｌ−Ｘｂａｌフラグメントで構成されたものである。フィルターは室温、２Ｘ ＳＳＣで２０分間づつ３回リンスし、ついで５０℃で４０分間、１Ｘ ＳＳＣお よび０．５％ＳＤＳで各１回リンスした。そのあとフィルターをオートラジオグ ラフィにかけた。２回の追加プラーク・ハイブリダイズサイクルの後、１８の独 立したハイブリダイズ陽性のプラークが検定された。ファージＤＮＡは液状溶解 産物から調製し、ついで制限エンドヌクレアーゼ分解およびサザン・ブロット分 析により特性判定を行った。 ＤＮＡ配列分析：ファージＤＮＡはＰｓｔＩで分解し、ヒトα（１，３／１， ４）フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡと相同の３．８ｋｂフラグメントはゲ ル精製し、ｐＴＺ１８ＲのＰｓｔＩ部位に連結した。単一のインサートを含有す る代表的なサブクローンをｐＦＴ−３と命名した。９７０ｂｐのハイブリダイゼ ーション陽性のＡｖａＩＩ−ＰｓｔＩ断片をｐＦＴ−３中のインサートから単離 し、ｐＴＺ１８Ｒにサブクローニングした。このプラスミド沖のインサートのＤ ＮＡ配列を、Ｔ７ ＤＮＡポリメラーゼ（ファルマシアＬＫＢバイオテクノロジ ー社）およびフランキング・プラスミド配列、ついでインサート配列に基づいて 合成したオリゴヌクレオチドを使用し、ジデオキシ鎖決定法により配列決定した 。この配列データはさらに追加の合成デオキシヌクレオチドを作るために使用し 、それをｐＦＴ−３中のインサートの他の部分を配列するために使用した。配列 分析はウイスコンシン大学の遺伝子工学コンピューターグループによる配列分析 用ソフトウエアパッケージを使用した。 サザンブロット分析： 高分子ヒトゲノムＤＮＡを末梢全血から調製した。ゲノムＤＮＡ（１０μｇ） を制限エンドヌクレアーゼで分解し、０．８％アガロースゲルで分画後、サザン ブロット分析に付した。異なったプローブによって得られたハイブリダイゼーシ ョンパターンを比較するために、単一のゲル上に電気泳動された制限分解物の同 じセットから同じブロットを調製した。サザンブロットを、３５℃に保持された 温度でハイブリダイズされた。サザンブロットを、ルイスα（１，３／１，４） フコシルトランスフェラーゼ酵素をコードするヒトｃＤＮＡの５’末端を表すプ ラスミドｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴの１．７ｋｂＸｈｏＩ−Ｘｂａ Ｉ断片で探索した。またこれに代えて、サザンブロットを、ｐＦＴ−３中のイン サートから単離した４００ｂｐのＡｖａＩＩ−ＰｖｕＩＩ断片で探索した。ハイ ブリダイゼーションの後、ブロットを２Ｘ ＳＳＣの０．５％ＳＤＳで室温で２ 回、１０分間洗浄し、オートラジオグラフィーにかけた。 ノーザンブロット分析： 培養細胞から全ＲＮＡ調製した。次いで、ポリＡ＋ＲＮＡを商業的に供給され ているカラム（クロンテック）および製造業者が提唱する手順を用いるオリゴｄ Ｔセルロースカラムクロマトグラフィーによって全ＲＮＡより単離した。ＲＮＡ サンプルをホルムアルデヒド含有の１．０％アガロースゲルを通して電気泳動し 、次いでナイロン膜（ハイボンド−Ｎ、アマーシャム社）へと形質移入した。ノ ーザンブロットを、６１℃で１時間、１Ｘ ＰＥ（１６）、５Ｘ ＳＳＣ、１％ ドデシル硫酸ナトリウム、および１００μｇ／ｍｌの剪断サケ精子ＤＮＡ中で予 備ハイブリダイズした。プロットは同じハイブリダイゼーション溶液中で６１℃ で少なくとも１６時間ハイブリダイズした。プローブはｐＦＴ−３中のインサー トから単離した４００ｂｐのＡｖａＩＩ−ＰｖｕＩＩ断片で放射性標識した。ハ イブリダイゼーションに続いて、ブロットに対し、２Ｘ ＳＳＣで各１０分間の 室温での洗浄を３回繰り返し、さらに２Ｘ ＳＳＣと０．２％ＳＤＳ中で６２℃ で３０分間洗浄した。ｐＦＴ−３中のインサートの形質移入及び発現 ： プラスミドｐＦＴ−３におけ る３．８ｋｂのＰｓｔＩインサートを切断し、哺乳類発現プラスミドｐＣＤＮＡ ｌ（試験管内ゲン）中のＰｓｔＩ部位にクローン化した。単一のインサートをプ ラスミドのＣＭＶプロモーターエンハンサー発現に関してセンス定位で有する一 つのプラスミドをｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＩＶと命名し、引き続く分析に用い た。 安定に形質移入されたＣＨＯ細胞株の構築と放射性物質による標識： ＣＨＯ −Ａｄｅ−Ｃ細胞をＳｃａＩ−線形化ｐＣＤＭ７−Ｆｕｃ−ＴＩＶで形質移入し 、１０モル倍量のＥｃｏＲＩ−線形化ｐＳＶ２−Ｎｅｏ中で共沈降した。単一の クローンＳＳＥＡ−１−陽性細胞株（ＣＨＯ−ＦＴ３）がこの集団から得られた 。ＣＨＯ−ＦＴ３から調製される細胞抽出物は、アクセプターＮ−アセチルラク トースアミンで試験したところ、多量のα（１，３）フコシルトランスフェラー ゼ活性を有していた。 ＦＡＣＳ分析：プラスミドＤＮＡｓを形質移入されたＣＯＳ−１細胞は形質移 入から４８−７２時間後に採取され、染色用媒体で希釈したモノクローナル抗体 で染色した。抗ルイスａおよび抗Ｈ抗体（マウスＩｇＭモノクローナル；抗原ア フィニティにて精製；ケムバイオメッド社、エドモントン）は１０μｇ／ｍｌで 使用した。抗ＳＳＥＡ−１（マウスモノクローナルＩｇＭ；腹水）は１：１００ ０に希釈して使用した。抗シアリル・ルイスｘ（マウスモノクローナルＩｇＭ； 腹水からＨＰＬＣにて精製）は１０μｇ／ｍｌで使用した。抗シアリル・ルイス ａ（マウスモノクローナルＩｇＧ３；腹水の硫酸アンモニウム沈降物）は１：１ ０００に希釈して使用した。対照のマウスＩｇＧ３抗体（ＭｓＩｇ、コールター 社）を１０μｇ／ｍｌの濃度で使用した。抗−ＶＩＭ−２抗体（マウスモノクロ ーナルＩｇＭ、腹水）は１：２００に稀釈して使用した。細胞はフルオレセイン ・イソチオシアネート複合ヤギ抗マウスＩｇＭまたはＩｇＧにより適宜染色し、 ＦＡＣＳｃａｎ（ベクトンーディキンソン）分析に付した。 フコシルトランスフェラーゼ評価分析：形質移入したＣＯＳ−１細胞から１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含む細胞抽出物を調製した。フコシルトランスフェ ラーゼ評価分析を、５０ｍＭカコジル酸ナトリウム、ｐＨ６．２、５ｍＭ ＡＴ Ｐ、１０ｍＭ フコース、２０ｍＭ ＭｎＣｌ₂、３μＭ ＧＤＰ−¹⁴Ｃ−フコ ース、および５μｌの細胞抽出物（３０μｇのタンパク）を含む合計２０μｌで 行った。受容体基質を最終濃度２０ｍＭになるように添加した。３７℃で１時間 反応させ、２０μｌのエタノールを加えて反応を終結させ、そのあとさらに６０ ０μｌの蒸留水を加えた。それぞれの反応物の分割量（５０μｌ）をシンチレー ション計測器にかけ、それぞれの反応中の合計放射能量を計測した。別の分割量 （２００μｌ）を、４００μｌのＤｏｗｅｘ １Ｘ２−４００（フォルメート状 ）を含むカラムにかけた。フラクションを通過した液、およびそれに続く２μｌ の溶出水溶液を回収しプールした後、分割量をシンチレーション計測器にかけ、 中性産物に導入された放射性フコースの量を計測した。加工ペーパークロマトグ ラフィーによって、受容体Ｎ−アセチルラクトースアミンが形成した産物の構造 を確認した。Ｄｏｗｅｘカラム溶出液における中性産物は、凍結乾燥によって濃 縮し、少量の水に再懸濁した後、ワットマンＮｏ．４０によって分画した（フェ ノール／イソプルパノール／ギ酸／水＝８５：５：１０：１００、低層）。クロ マトグラフィー（４０時間）の後、風冷したクロマトグラムを１ｃｍのストリッ プに切断し、これを２ｍｌの水で溶出した。各溶出液の放射能を、１０ｍｌのシ ンチレーションカクテルと混合した後、シンチレーションカウンターで計測した 。 アフィニティー精製した、プロテインＡ−ルイスフコシルトランスフェラーゼ 融合タンパクを用いて、この分析に使用するための、正統で、放射性標識を有す るＧａｌβ（１→４）［¹⁴Ｃ−Ｆｕｃ（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ標準を調製した 。この融合タンパクを、２０ｍＭのＮ−アセチルラクトースアミン、１５０μｍ のＤＧＰ−［¹⁴Ｃ］フコース（ｓｐ．ａｃｔ．＝３８００ｃｐｍｓ／ｎｍｏｌ） を用いて標準のフコシルトランスフェラーゼ反応混合物中にインキュベートした 。中性で放射性標識化された産物は、７０％アセトニトリル水溶液を含有するイ ソクラクティク勾配を用い、ウオーターズ・炭水化物分析カラムによるアミン吸 着の高速液体クロマトグラフィー（流速１ｍｌ／分）で精製した。得られた精製 物（１７ｎｍｏｌ）を¹⁴Ｃ−ＮＭＲ（複合炭水化物研究所センター、アセンズ、 ジョージア州）による分析に付した。サンプルを繰り返し重水中で交換し、５０ ０ＭＨｚでＮＭＲ分析を行った。プロトンＮＭＲスペクトルは２８℃でＢｒｕｋ ｅｒＡＭ５００上に記録した。化学シフトはアセテートに対するものである（δ 、１．９０８ｐｐｍ）。予想された三糖、Ｇａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→ ３））ＧｌｃＮＡｃが５００ＭＨｘの分光分析で確認された。２８℃の重水中で 記録されたスペクトルは、ＧｌｃＮＡｃ（α−アノマー）に対し、δがほぼ５． １０２ｐｐｍにおいてＨ−１信号を示した。Ｇａｌについてはδがほぼ４．４６ ７および４．４５４ｐｐｍ（それぞれ三糖のα−およびβ−アノマー）、またＦ ｕｃについてはδがほぼ５．１０２ｐｐｍであった。ＧｌｕＮＡｃのβアノマー に対するアノマー信号は残基ＨＯＤピーク（δはほぼ４．７２ｐｐｍ）によって 不明瞭であった。ＧｌｃＮＡｃ Ｎ−アセチル基のメチル信号とＦｕｃのＣ６プ ロトンは、δがそれぞれ約２．３０２及び１．１７８ｐｐｍの箇所であった。こ れらの化学シフトは、正しい三糖Ｇａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→３）］Ｇ ｌｃＮＡｃについての発行された文献情報と一致した。 α−Ｌ−フコシルトランスフェラーゼの分解： 中性の、クロマトグラフィー精製した放射性標識化フコシルトランスフェラー ゼ産物をα−Ｌ−フコシダーゼで分解し、接着したフコースのα−アノマー形状 を確認した。３−［¹⁴Ｃ］フコシル−Ｎ−アセチルラクトースアミンを下降ペー パークロマトグラフィーで上記のように精製し、分割量（７０００ｃｐｍｓ）を ｐＨ５．５のクエン酸ナトリウム１００ｍＭ溶液の２０μｌ中で、３７℃、２２ 時間で４０ｍＵのα−Ｌ−フコシダーゼ（Ｅ．Ｃ．３．２．１．５１、ベーリン ガー−マンハイム）で分解した。Ｄｏｗｅｘカラムクロマトグラフィーによって 反応物を脱塩し、上記の条件で高速液体クロマトグラフィー分析に付し放射性標 識化標準を製作した。分解産物は、Ｌ−［¹⁴Ｃ］フコースと３−［¹⁴Ｃ］フコシ ル−Ｎ−アセチルラクトースアミン出発物質を平行して分離した分離体と比較し て同定した。Ｌ−［¹⁴Ｃ］フコースの定量的遊離はα−Ｌ−フコシダーゼ分解に よって達成された。 実施例Ｖ： クロスハイブリダイゼーションによるＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４ ）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＶ 、ＤＮＡ配列認識番号１０、タンパク配列認識番号Ｎｏ．１１）の単離： ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡに クロスハイブリダイゼーションするヒトゲノムＤＮＡセグメントの分子クローニ ング：低ストリンジェンシイ・サザン・ブロット・ハイブリダイゼーション実験 によって本発明者には、ルイス・フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡのコード 領域が強いハイブリダイゼーション制限フラグメントならびにいくつかの弱いハ イブリダイゼーション制限フラグメントを検出することが明らかとなった。 本発明者は、強いハイブリダイゼーション（制限）フラグメントがルイス・フ コシルトランスフェラーゼｃＤＮＡに似た１つまたはそれ以上の遺伝子を表して いるものと期待した。これらの配列の分子的性質をさらに調べるために、上記実 施例ＩＶに記述したように、本発明者はヒト・ラムダ・ファージ・ゲノムＤＮＡ ライブラリをルイスｃＤＮＡプローブを用いて低ストリンジェンシイでスクリー ニングした。ほぼ５つのヒトゲノム等価物を代表するファージから合計１８のフ ァージを単離した。これらファージの内１６のサザン・ブロット分析の結果、そ れらの制限パターンおよびハイブリダイゼーション信号強度に基づいて、それら が３つのグループに分類されることがわかった。強いハイブリダイゼーション強 度の分類に入るいくつかのファージが同定された。これらのファージの１つから 単離されたクロスハイブリダイゼーション制限フラグメントかサブクローン化さ れ配列された。 相同のＤＮＡ制限フラグメントは、ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコ シルトランスフェラーゼｃＤＮＡに非常によく似たポリペプチドを推測させる単 一の長いオープンリーディングフレームを保持する：サブクローン化されたフラ グメントのＤＮＡ配列分析において、それらの３’部分に単一の長いオープンリ ーディングフレームのあることが確認された。このフレームは塩基対１に始まり 、塩基対１１２５で終わる（配列認識番号１０）（図６参照）。このリーディン グフレームは、コザックのほ乳類翻訳開始のコンセンサス・ルールの配列コンテ キストにみられるメチオニン・コドンで始まっている。このリーディングフレー ム から推測されるタンパク配列（配列認識番号１１）の水治療分析において１つの 疎水性セグメントがＮＨ₂末端にあることが予想され、推測されるポリペプチド が、ほ乳類グリコシルトランスフェラーゼに典型的なタイプＩＩトランスメンプ ラン定位を有していることを示唆している。このリーディングフレームは全長に わたって、ルイス・フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡの対応部分と非常に高 いアミノ酸および核酸配列の同一性を有している（図６）。この配列類似性はわ ずか２、３の位置で異なっているだけであり、明らかに異なっているのはオープ ンリーディングフレーム内の塩基対１３９である。ルイスｃＤＮＡに対してこの ３３塩基対が挿入されていることにより、ルイス・フコシルトランスフェラーゼ ｃＤＮＡとに比し１１個のアミノ酸が挿人されたポリペプチドを作ることになる 。これら２つのＤＮＡ配列、およびそれらから誘導されたタンパク配列が実質的 に類似していることから、本発明者はこの新しいクロスハイブリッド配列は、フ コシルトランスフェラーゼをコードした、未だ規定されたことのない遺伝子の、 単一のエクソン配列を表すものであると期待した。 相同のＤＮＡ制限フラグメントは、α（１，３）フコシルトランスフェラーゼ の発現を決定する：このセグメントが機能性フコシルトランスフェラーゼをコー ドしているかどうかを調べるために、全オープンリーディングフレームを含んだ １．９４ｋｂ Ｅａｒｌ−Ｘｂａｌフラグメントをほ乳類発現ベクターに入れて クローン化し、得られたプラスミド（ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶ）を形質移入 により、ほ乳類宿主細胞に導人した。これらの実験では宿主としてＣＯＳ−１細 胞を使用したが、これはこれらの細胞が通常、ほとんど検知できないα（１，３ ）およびα（１，４）フコシルトランスフェラーゼ活性を発現するからである。 同様に、ＣＯＳ−１細胞は通常、検知できるほどの細胞表面のＧａｌβ１→４（ Ｆｕｃα（１→３）ＧｌｃＮＡｃ−（Ｌｅｗｉｓ ｘ，ＳＳＥＡ−１）またはＧ ａｌβ１→３（Ｆｕｃα（１→４）ＧｌｃＮＡｃ−（Ｌｅｗｉｓ ａ）成分は発 現しない一方、そのような分子を構築するのに必要なフコシル化されないタイプ ＩＩおよびタイプＩオリゴ糖プレカーサーの表面出現を維持する。ｐＣＤＮＡＩ ベクターを使用したが、これはこのプラスミドがベクター中のサイトメガロウイ ルスの直前プロモーター配列により、ＣＯＳ−１宿主中の外因性のサブクローン 配列を効率的に転写し、これらの細胞中にマルチコピー・エピソームとして維持 さ れるからである。 ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶを形質移入したＣＯＳ−１細胞を先ずフロー・サ イトメトリーにより分析し、あらためてこれらのオリゴ糖のベクター依存の表面 発現を検出した。形質移入されたこれらの細胞の大部分は、ルイスｘ成分（Ｇａ ｌβ１→４（Ｆｕｃα（１→３）ＧｌｃＮＡｃ−）に対するモノクローナル抗体 により明るく染色されたのに対し（図８）、インサートなしのｐＣＤＮＡｌベク ターを形質移入した細胞はこの発色がなかった。これに対しｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕ ｃ−ＴＶまたはこれでコントロールされたプラスミドを形質移入したＣＯＳ−１ 細胞は、タイプＩをベースとするルイスａ三糖に特異性を持つ抗体によって染色 されることはなかった（図８）。 これらを考え合わせると、このセグメントは中性のタイプＩＩオリゴ糖プレカ ーサーを利用する能力のあるα（１，３）フコシルトランスフェラーゼをコード するか、この酵素はタイプＩグリコ複合体を効率的に利用できず、従って強いα （１，４）フコシルトランスフェラーゼ活性は示さないということであり、これ らの結果はＤＮＡ配列分析の結果とも一致している。 末端ガラクトース残基がα（２、３）シアル酸成分で置換されたタイプＩＩ受 容体を利用することができるヒトα（１，３）フコシルトランスフェラーゼが１ つまたはそれ以上存在する可能性を裏付ける証拠がある。それらの酵素はこれら の分子をフコシル化することができ、シアリル−ルイスｘの決定基（ＮｅｕＡｃ α（２→３）Ｇａｌβ（１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−）を生成 する。たとえば、ルイスフコシルトランスフェラーゼはこの反応を起こすことが できる。 したがって、明らかにプラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶでコードされた フコシルトランスフェラーゼが、シアリル−ルイスｘ決定基を構築する能力があ るかどうかを調べることが注目された。ＣＯＳ−１細胞は、（ＮｅｕＡｃα（２ →３）Ｇａｌβ（１→４）ＧｌｃＮＡｃ−）で終わる表面発現されたグリコ複合 体を維持する；これらはシアリル−ルイス構築のための受容体基質であって、形 質移入されたフコシルトランスフェラーゼ発現ベクターでコードされた酵素の働 きによって決定される。したがって、ＣＯＳ−１細胞にプラスミドｐＣＤＮＡｌ −Ｆｕｃ−ＴＶを形質移入し、モノクローナル抗シアリル−ルイスｘ抗体で染色 し、フロー・サイトメトリー分析を行った。ベクター単体を形質移入した対照細 胞あるいはｐＣＤＮＡｌ−α（１，３）−Ｆｕｃ−ＴＶを形質移入すると、逆対 照の抗体（抗−Ｈ）で染色された細胞に比べて、大量の染色が検出された（図８ ）。 しかしながら、これらの細胞はタイプＩがベースとなっているシアリル−ルイ スａ決定基（ＮｅｕＡｃａ（２、３）Ｇａｌβ（１，３［Ｆｕｃα（１，４）］ ＧｌｃＮＡｃ−）に特異性を有する抗体では染色されなかった（図８）。反対に 、本発明者は以前に、ルイス・フコシルトランスフェラーゼ発現のプラスミドｐ ＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴを形質移入したＣＯＳ−１細胞の大部分は シアリルールイスｘおよびシアリル−ルイスａ抗体によって明るい染色を示すこ とを観察しており、これはこの酵素の受容体基質特異性の生化学分析で予想され た通りである。 プラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶがα（１，３）フコシルトランスフェ ラーゼをコードするという結論は、ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶを形質移入した ＣＯＳ−１細胞の抽出物中の酵素の受容体基質要求に関する生化学分析によって 確認された。予期した通り、これら抽出物中の酵素はタイプＩＩ二糖受容体Ｎ− アセチルラクトスミンを利用し、予想された産物Ｇａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα （１→３）］ＧｌｃＮＡｃ）を産生した。この酵素はまた、三糖ＮｅｕＡｃａ（ ２、３）Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮａｃを効率的に利用し、シアリルルイスｘ 四糖を産生した（表２）。このような条件のもとで、ラクトースを含む他のタイ プＩＩ分子およびα（１，２）フコシル化受容体Ｆｕｃα（１→２）Ｇａｌβ（ １→４）Ｇｌｃは、非常に低い効率ではあったが、これらの抽出物中のフコシル トランスフェラーゼに対する受容体基質の働きをした（表２に要約）。 興味深いことに、タイプＩ基質のラクト−Ｎ−ビオースＩも、同じく効率は低 かったが、この酵素によって利用された（表２）。このことは、この酵素が、効 率は低いがα（１，４）フコシルトランスフェラーゼの機能を有していることを 示唆しており、これはまた、フロー・サイトメトリー分析においてα（１，４） 構造が認められないことによっても示唆されていることである。この酵素が示し た受容体指向性は、ルイス・フコシルトランスフェラーゼが示すものと対照的で ある。ルイス・フコシルトランスフェラーゼはテストした４つの受容体すべてを 効率的に利用する。 酵素活性がこのタンパクに直接関係したものであることをさらに明確に示すた めに、想定されるポリペプチドの予想触媒領域（配列認識番号１１のアミノ酸４ ３から３７４）を、ほ乳類発現ベクターｐＰＲＯＴＡの中で、スタフィロコッカ ス・アウレウス・プロテインＡ ＩｇＧの結合ドメインの分泌物に融合し、ベク ターｐＰＲＯＴＡ−Ｆｕｃ−ＴＶ_cを形成した。この融合タンパクはフコシルト ランスフェラーゼの想定されるトランスメンブレン固定セグメントが欠如してい ると考えられるために、本発明者はそれが分泌分子として合成され、ＩｇＧを含 んだマトリックス上でアフィニティ精製され、ついでそのα（１，４）フコシル トランスフェラーゼ活性を測定することを考えた。対照ベクターｐＣＤＭ７また はｐＰＲＯＴＡを形質移入されたＣＯＳ−１細胞は検知できるほどの細胞の会合 あるいは放出による酵素活性は生じなかった。ｐＰＲＯＴＡ−Ｆｕｃ−ＴＶ_cを 形質移入したＣＯＳ−１細胞から得られた調整媒体では、Ｎ−アセチルラクトス ミンを用いて分析すると、大量のα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ活性 を含んでいた。ｐＰＲＯＴＡ−Ｆｕｃ−ＴＶ_cにより作られ放出された活性のほ ぼ１００％が、ＩｇＧ−セファロース・マトリックスにより特異的に捕捉された 。これらの結果は、このクローン化されたＤＮＡセグメントによってコードされ たタンパクがフコシルトランスフェラーゼをコードしていることを示しており、 α（１，３）フコシルトランスフェラーゼ活性を発生させるのに十分な情報が、 この酵素のＣＯＯＨ末端の３３２個のアミノ酸の中に存在していることがわかる 。フロー・サイトメトリー分析ならびにＤＮＡ配列分析の結果を考え合わせると これらの実験はプラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶが新規なα（１，３）フ コシルトランスフェラーゼをコードしたものであることを示している。 実施例Ｖ：”クロスハイブリダイゼーションによるＧＤＰ−Ｆｕｃ−β−Ｄ−Ｇａｌ（１， ４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−Ｔ Ｖ）の単離”の実験手順 ： 細胞培養：使用したＣＯＳ−１細胞の入手源および培養条件は前記の通り。エ ルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６５：３４３６−３４４ ７およびラジャンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９８９）２６４：１１１５ ８−１１１６７参照。 抗体：抗Ｌｅｘ抗体抗SＳＥＡ−１（マウスモノクローナルＩｇＭ、腹水）を 使用した。(ソルターら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）（ １９７８）、７５：５５６５−５５６９）抗Ｈおよび抗ルイスａ抗体（マウスモ ノクローナルＩｇＭ、抗原アフィニティにて精製）はケムバイオメッド社（エド モントン、アルバータ州）から購入した。抗シアリル・ルイスｘ抗体ＣＳＬＥＸ ｌ（福島ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９８４）４４：５２７９−５２８５） （マウスモノクローナルＩｇＭ、ＨＰＬＣにて精製）および抗シアリル・ルイス ａ抗体ＣＳＬＥＡｌ（チアら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９８５）４５：４３ ５−４３７）（マウスモノクローナルＩｇＧ３、硫酸アンモニウムにて沈降）を 使用した。フルオレセイン複合ヤギ抗マウスＩｇＭまたはＩｇＧ抗体はシグマ社 から購入した。 ヒトゲノムライブラリの構築：高分子量のヒトゲノムＤＮＡは末梢血液白血球 から調製した。ゲノムＤＮＡは制限エンドヌクレアーゼＳａｕ３Ａを使用して部 分分解した。部分分解されたゲノムＤＮＡは食塩水勾配による超遠心単離によっ てサイズ分画した。８ｋｂから２０ｋｂの間のＤＮＡフラグメントを富化した分 画を、あらかじめ末端をＳａｕ３Ａフラグメントに適合するように部分的にｄＴ ＴＰおよびｄＣＰＴで満たしたＸｈｏｌで分解したラムダＦＩＸ（ストラダジー ン）ファージの腕に連結した。 連結した混合物は試験管中で市販のパッケージ用抽出物（ストラダジーン）を 用いてインピトロでパッケージとし、大腸菌宿主ＴＡＰ９０上で滴定した。プラ ーク・ハイブリダイゼーションにより約１．０ｘ１０⁶のリコンビナント・ラム ダファージが選別された。プラーク・リフトはニトロセルロースフィルター（シ ュライチャーおよびシュエル）を使用して調製し、４２℃で１６時間、５０％フ ォルムアミド、５ＸＳＳＣ、１０Ｘデンハーツ溶液、および０．１％ＳＤＳ中で 予備ハイブリダイゼーションした。フィルターは３５℃で７２時間、１０％硫酸 デキストラン、および１ｍｌあたり１００マイクログラムの変性鮭精子ＤＮＡを 含んだ予備ハイブリダイゼーション溶液中でハイブリダイゼーションした。プロ ーブは、［α−³²Ｐ］ｄＣＴＰで標識化したルイス式血液型α（１，３／１，４ ）フコシルトランスフェラーゼをコードするｃＤＮＡインサートの５’末端から 単 離した１．７ｋｂ Ｘｈｏｌ−Ｘｂａｌフラグメントで構成されたものである。 フィルターは室温、２Ｘ ＳＳＣで２０分間づつ３回リンスし、ついで５０℃で ４０分間、１Ｘ ＳＳＣおよび０．５％ＳＤＳで各１回リンスした。そのあとフ ィルターをオートラジオグラフィにかけた。２回の追加プラーク・ハイブリダイ ゼーションサイクルの後、１８の独立したハイブリダイゼーション陽性のプラー クが同定された。ファージＤＮＡは液状溶解産物から調製し、ついで制限エンド ヌクレアーゼ分解およびサザン・ブロット分析により特性判定が行われた。 ＤＮＡ配列分析：ファージＤＮＡは種々の制限酵素で分解し、ヒトα（１，３ ／１，４）フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡと相同のフラグメントはゲル精 製し、ｐＴＺ１８Ｒのマルチクローン化部位に連結した。代表的なサブクローン はＴ７ＤＮＡポリメラーゼ（ファルマシアＬＫＢバイオテクノロジー社）および 合成オリゴヌクレオチドを使用し、フランキング・プラスミド配列、ついでイン サート配列に基づいてジデオキシ鎖決定法により配列した。この配列データはさ らに追加の合成デオキシヌクレオチドを作るために使用し、それをインサートの 残りの部分を配列するために使用した。配列分析はウイスコンシン大学の遺伝子 工学コンピューターグループによる配列分析用ソフトウエアパッケージを使用し た。 プラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶの構築： １．９４ｋｂ Ｅａｒｌ−Ｘｂａｌフラグメントを、強くハイブリダイズされ たファージから取り出した代表的ファージから単離し、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ） ＤＮＡポリメラーゼＩのクレノウ断片で平滑化し、ほ乳類発現プラスミドｐＣＤ ＮＡｌ（インビトロゲン）のＥｃｏＲＶおよびＸｂａｌ部位に入れてクローン化 した。プラスミドのＣＭＶプロモーター・エンハンサー配列のセンス定位に単一 インサートを有するプラスミドをｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶと命名した。 ＦＡＣＳ分析：プラスミドＤＮＡｓを形質移入されたＣＯＳ−１細胞は形質移 入から４８−７２時間後に採取され、染色用媒体で希釈したモノクローナル抗体 で染色した。抗ルイスａおよび抗Ｈ抗体（マウスＩｇＭモノクローナル；抗原ア フィニティにて精製；ケムバイオメッド社、エドモントン）は１０μｇ／ｍｌで 使用した。抗ＳＳＥＡ−１（マウスモノクローナルＩｇＭ；腹水）は１：１００ ０に希釈して使用した。抗シアリル・ルイスｘ（マウスモノクローナルＩｇＭ； 腹水からＨＰＬＣにて精製）は１０μｇ／ｍｌで使用した。抗シアリル・ルイス ａ（マウスモノクローナルＩｇＧ３；腹水の硫酸アンモニウム沈降物）は１：５ ００に希釈して使用した。細胞はフルオレセイン・イソチオシアネート複合ヤギ 抗マウスＩｇＭまたはＩｇＧにより適宜染色し、ＦＡＣＳｃａｎ（ベクトン−デ ィキンソン）分析にかけた。 フコシルトランスフェラーゼ評価分析：形質移入したＣＯＳ−１細胞から１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含む細胞抽出物を調製した。フコシルトランスフェ ラーゼ評価分析を、２５ｍＭカコジル酸ナトリウム、ｐＨ６．２、５ｍＭＡＴＰ 、１０ｍＭ Ｌ−フコース、１０ｍＭ ＭｎＣｌ₂、３μＭ ＧＤＰ−¹⁴Ｃ−フ コース、および５μｌの細胞抽出物を含む合計２０μｌで行った。受容体基質を 最終濃度２０ｍＭになるように添加した。３７℃で１時間反応させ、２０μｌの エタノールを加えて反応を終結させ、そのあとさらに６００μｌの蒸留水を加え た。それぞれの反応物の分割量（５０μｌ）をシンチレーション計測器にかけ、 それぞれの反応中の合計放射能量を計測した。別の分割量（２００μｌ）を、４ ００μｌのＤｏｗｅｘ ｌＸ２−４００、フォルメート状、を含んだカラムにか けた。フラクションを通過した液、およびそれに続く２μｌの溶出水溶液を回収 しプールした後、分割量をシンチレーション計測器にかけ、中性産物に入った放 射性フコースの量を計測した。 実施例ＶＩ：クロスハイブリダイゼーションによるＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１，４ ）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ（Ｆｕｃ−ＴＶ Ｉ；ＤＮＡ配列認識番号Ｎｏ．１３、タンパク配列認識番号１４）をコードする ＤＮＡのクローン化および発現 ： 生化学および遺伝子工学の研究によって、ヒトゲノムは２つあるいはそれ以上 の明確に異なったＧＤＰ−Ｌ−フコース：β−Ｄ−ガラクトシド３−α−Ｌ−フ コシルトランスフェラーゼ類をコードしていることが示されている（ポトビンら 、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５；１６１５−１６２２、１９９０；ワトキン スら、Ａｄｖ．Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅｔ．１０：１−１１６、１９８０）。本発明者 は最近これらの酵素の１つをコードするクローン化ｃＤＮＡについて記述したが 、これはヒト・ルイス式血液型遺伝子座の産物を表すものであると考えられる （クコウスカーラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．、４：１２８８−１３０ ３、１９９０）（ＤＮＡ配列認識番号１およびタンパク配列認識番号２）。これ らのＧＤＰ−Ｌ−フコース：β−Ｄ−ガラクトシド３−α−Ｌ−フコシルトラン スフェラーゼ類が構造的に関連した遺伝子ファミリーにコードされている可能性 を考え、本発明者はクローン化されたフコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡを用 い、クロスハイブリダイゼーション手法によりそれらの他のメンバーを単離しよ うと試みた。 ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡに クロスハイブリダイゼーションするヒトゲノムＤＮＡセグメントの分子クローン 化 ：上記実施例ＩＶおよびＶで述べたように、低ストリンジェンシイ・サザン・ ブロット・ハイブリダイゼーション実験において、ルイス・フコシルトランスフ ェラーゼｃＤＮＡのコード領域は、強いハイブリダイゼーション制限フラグメン ト、ならびにいくつかの弱いハイブリダイゼーション制限フラグメントを検出す ることが明らかとなっている。これらの配列の分子的性質をさらに調べるために 、本発明者はヒト・ラムダ・ファージ・ゲノムＤＮＡライブラリを、ルイスｃＤ ＮＡプローブを用いて低ストリンジェンシイでスクリーニングした。ほぼ５つの ヒトゲノム等価物を代表するファージから合計１８のファージを単離した。これ らファージの内１６のサザン・ブロット分析の結果、それらの制限パターンおよ びハイブリダイゼーション信号強度に基づいて、それらが３つのグループに分類 されることがわかった。強いハイブリダイゼーション強度の分類に入るいくつか のファージが同定された。これらのファージの１つから単離されたクロスハイプ リダイゼーション制限フラグメントがサブクローン化され配列決定された。 相同のＤＮＡ制限フラグメントは、ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコ シルトランスフェラーゼｃＤＮＡに非常によく似たポリペプチドを推測させる単 一の長いオープンリーディングフレームを有する ：サブクローン化されたフラグ メント（配列認識番号１３）のＤＮＡ配列分析において、塩基対１に始まり、塩 基対１０８０で終わる単一の長いオープンリーディングフレームのあることが確 認された（図７参照）。このリーディングフレームは、コザックのほ乳類翻訳開 始のコンセンサス・ルールの配列コンテキストにみられるメチオニン・コドンで 始まっている。このリーディングフレームから推測されるタンパク配列（配列認 識番号１４）の水治療分析において１つの疎水性セグメントがＮＨ₂末端にある ことが予想され、推測されるポリペプチドがほ乳類グリコシルトランスフェラー ゼに典型的なタイプＩＩトランスメンブラン定位を維持していることを示唆して いる。このリーディングフレームは全長にわたって、ルイス・フコシルトランス フェラーゼｃＤＮＡの対応部分に非常に高いアミノ酸（図示なし）および核酸配 列の同一性を有している（図７）。これら２つのＤＮＡ配列、およびそれらから 誘導されたタンパク配列が実質的に類似していることから、本発明者はこの新し いクロスハイブリッド配列は、フコシルトランスフェラーゼをコードした、未だ 規定されたことのない遺伝子の、単一のエクソン配列を表すものであると期待し た。 相同のＤＮＡ制限フラグメントは、α（１，３）フコシルトランスフェラーゼ の発現を決定する ：このセグメントが機能性フコシルトランスフェラーゼをコー ドしているかどうかを調べるために、完全なオープンリーディングフレームを含 んだ１．２ｋｂフラグメントをポリメラーゼ・チェーン反応により調製し、ほ乳 類発現ベクター中にクローン化し、そのプラスミド（ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−Ｔ ＶＩ）を形質移入により、ほ乳類宿主細胞に導入した。これらの実験では宿主と してＣＯＳ−１細胞を使用したが、これはこれらの細胞が通常、ほとんど検知で きないα（１，３）およびα（１，４）フコシルトランスフェラーゼ活性を発現 するからである（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．，４：１ ２８８−１３０３、１９９０）。同様に、ＣＯＳ−１細胞は通常、検知できるほ どのＧａｌβ１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−（Ｌｅｗｉｓ ｘ， ＳＳＥＡ−１）またはＧａｌβ１→３［Ｆｕｃα（１→４）］ＧｌｃＮＡｃ−（ Ｌｅｗｉｓ ａ）成分を細胞表面に発現しない一方、そのような分子を構築する のに必要なフコシル化されないタイプＩＩおよびタイプＩオリゴ糖プレカーサー の表面表示を維持する。（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ． ，４：１２８８−１３０３、１９９０）。ｐＣＤＮＡＩベクターを使用したが、 これはこのプラスミドがベクター中のサイトメガロウイルスの直前プロモーター 配列により、ＣＯＳ−１宿主中の外因性のサブクローン配列を効率的に転写し、 これらの細胞中にマルチコピー・エピソームとして維持されるからである（クコ ウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．，４：１２８８−１３０ ３、１９９０）。ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩを形質移入したＣＯＳ−１細胞 を先ずフロー・サイトメトリーにより分析し、あらためてこれらのオリゴ糖のベ クター依存の表面発現を検出した。形質移入されたこれらの細胞の大部分は、ル イスｘ成分（Ｇａｌβ（１→４）［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−）に対 するモノクローナル抗体により明るく染色されたのに対し（図８）、インサート なしのｐＣＤＮＡｌベクターを形質移入した細胞はこの発色をしなかった。これ に対し、ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩまたはそれでコントロールされたプラス ミドを形質移入したＣＯＳ−１細胞は、タイプＩをベースとするルイスａ三糖に 特異性を有する抗体によって染色されることはなかった（図８）。これらを考え 合わせると、これらの結果は、このセグメントは中性のタイプＩＩオリゴ糖プレ カーサーを利用する能力のあるα（１，３）フコシルトランスフエラーゼをコー ドするが、この酵素はタイプＩグリコ複合体を効率的に利用できず、従ってα（ １，４）フコシルトランスフェラーゼ活性は示さないということであり、ＤＮＡ 配列分析の結果と一致している。 末端ガラクトース残基がα（２、３）シアル酸成分で置換されたタイプＩＩ受 容体を利用することができるヒトα（１，３）フコシルトランスフェラーゼが１ つまたはそれ以上存在する可能性を裏付ける証拠がある。（ポトビンら、Ｊ．Ｂ ｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５；１６１５−１６２２、１９９０；ホルメスら、Ｊ． Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６１：３７３７−３７４３、１９８６；パルシックら 、Ｃａｒｂｏｈｙｄ．Ｒｅｓ．、１９０：１−１１，１９８９）。それらの酵素 はこれらの分子をフコシル化することができ、シアリル−ルイスｘの決定基（Ｎ ｅｕＡｃａ（２→３）Ｇａｌβ（１→４［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ− ）を生成する。たとえば、ルイス・フコシルトランスフェラーゼはこの反応を起 こすことができる（パルシックら、Ｃａｒｂｏｈｙｄ．Ｒｅｓ．、１９０：１− １１、１９８９；ロウら、Ｃｅｌｌ．，６３：４７５−４８４、１９９０）。し たがって、明らかにプラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩでコードされたフ コシルトランスフェラーゼが、シアリル−ルイスｘ決定基を構築する能力がある かどうかを調べることが注目された。ＣＯＳ−１細胞は、（ＮｅｕＡｃα（２、 ３）Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃ−で終わる表面発現されたグリコ複合体を 維持する（ロウら、Ｃｅｌｌ．，６３：４７５−４８４、１９９０；福田ら、Ｊ ．Ｂ ｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３；５３１４−５３１８、１９８８）；これらはシアリ ル−ルイス構築のための受容体基質であって、形質移入されたフコシルトランス フェラーゼ発現ベクターでコードされた酵素の働きによって規定される（ロウら 、Ｃｅｌｌ．，６３：４７５−４８４、１９９０）。したがって、ＣＯＳ−１細 胞にプラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩを形質移入し、モノクローナル抗 シアリル−ルイスｘ抗体で染色し、フロー・サイトメトリー分析を行った。ベク ター単体を形質移入した対照細胞、あるいはｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩを形 質移入し、逆対照の抗体（抗−Ｈ、図８）で染色された細胞に比べて、大量の染 色が検出された。しかしながら、これらの細胞はタイプＩがベースとなっている シアリル−ルイスａ決定基（ＮｅｕＡｃα（２、３）Ｇａｌβ（１，３）［Ｆｕ ｃα（１，４）］ＧｌｃＮＡｃ−）に特異性を有する抗体では染色されなかった （図８）。反対に、本発明者は以前に、ルイス・フコシルトランスフェラーゼ発 現のプラスミドｐＣＤＭ７−α（１，３／１，４）ＦＴを形質移入したＣＯＳ− １細胞の大部分がシアリル−ルイスｘおよびシアリル−ルイスａ抗体（ロウら、 Ｃｅｌｌ．，６３：４７５−４８４、１９９０）によって明るい染色を示すこと を観察しており、これはこの酵素の受容体基質特異性の生化学分析で予想された 通りである（パルシックら、Ｃａｒｂｏｈｙｄ．Ｒｅｓ．、１９０：１−１１、 １９８９）。 プラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩがα（１，３）フコシルトランスフ ェラーゼをコードするという結論は、プラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩ を形質移入したＣＯＳ−１細胞の抽出物中の酵素の受容体基質要求に関する生化 学分析によって確認された。予期された通り、これら抽出物中の酵素はタイプＩ Ｉ二糖受容体のＮ−アセチルラクトスミンを利用し、予想された産物Ｇａｌβ（ １→４）［Ｆｕｃα（１→３）］ＧｌｃＮＡｃ−）を産生した。この酵素はまた 、三糖ＮｅｕＡｃａ（２，３）Ｇａｌβ（１，４）ＧｌｃＮＡｃを効率的に利用 し、シアリルルイスｘ四糖を生成した（表２）。このような条件のもとで、ラク トースを含む他のタイプＩＩ分子およびα（１，２）フコシル化タイプII受容体 Ｆｕｃα（１→２）Ｇａｌβ（１→４）Ｇｌｃは、これらの抽出物中のフコシル トランスフェラーゼに対して、検知できるほどの効率の受容体基質の働きはしな かった。タイプＩ基質のラクト−Ｎ−ビオースＩもこの酵素には利用されなか った。このことは、この酵素がα（１，３）フコシルトランスフェラーゼとして だけ働くことを示唆しており、これはまた、フロー・サイトメトリー分析によっ ても示唆されているところである。この酵素が示した受容体指向性は、ルイス・ フコシルトランスフェラーゼが示すものと対照的であり、ルイス・フコシルトラ ンスフェラーゼはテストした４つの受容体すべてを効率的に利用する（クコウス カ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．，４：１２８８−１３０３、１９９ ０；モリコーンら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１９１：１６９−１７６、 １９９０）。図８に示されているフロー・サイトメトリー分析の結果、およびＤ ＮＡ配列分析を考え合わせると、これらの生化学実験は表２に要約したように、 プラスミドｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩは、明確に異なった独自の受容体特異 性を備えた新規なフコシルトランスフェラーゼをコードしている。 Ｆｕｃ−ＴＶＩのタンパク配列はＦＵＣ−ＴＶおよびＦＵＣ−ＴＩＩＩの配列 と非常によく似ていることから、触媒活性のある、分泌されたプロテインＡ−Ｆ ｕｃ−ＴＶＩ融合タンパクは、Ｆｕｃ−ＴＶＩの残基４３から３５９（配列認識 番号１４）を、ｐＰＲＯＴＡ−α（１，３／１，４）ＦＴ_cおよびｐＰＲＯＴＡ −Ｆｕｃ−ＴＶ_cを作るときに使用した同じ方法で、プロテインＡセグメントに 融合させることによって作ることができるものと期待される。 実施例ＶＩ：”クロスハイブリダイゼーションによるＧＤＰ−Ｆｕｃ：β−Ｄ−Ｇａｌ（１， ４）−Ｄ−ＧｌｃＮＡｃα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ１１（Ｆｕｃ −ＴＶＩ；ＤＮＡ配列認識番号１４、タンパク配列認識番号１５）をコードする ＤＮＡ配列のクローン化および発現”の実験手順 ： 細胞培養：使用したＣＯＳ−１細胞の入手源および培養条件は前記の通り（エ ルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６５；３４３６−３４４７、１９８ ９；ラジャンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２６４；１１１５８−１１１６７ 、１９８９）。 抗体：抗Ｌｅｘ抗体抗ＳＳＥＡ−１（ソルターら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａ ｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ）、７５：５５６５−５５６９、１９７８）（マウスモノ クローナルＩｇＭ、腹水）はデイバー・ソルター博士（ウイスター研究所、フィ ラデルフィア）から提供された。抗Ｈおよび抗ルイスａ抗体（マウスモノクロー ナルＩｇＭ、抗原アフィニティにて精製）はケムバイオメッド社（エドモントン 、アルバータ州）から購入した。抗シアリル・ルイスｘ抗体ＣＳＬＥＸｌ（福島 ら、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．、４４：５２７９−５２８５、１９８４）（マウス モノクローナルＩｇＭ、ＨＰＬＣにて精製）および抗シアリル・ルイスａ抗体Ｃ ＳＬＥＡＩ（ガルトンら、Ｎｉｎｔｈ Ｉｎｔ．Ｃｏｎｖｏｃ．Ｉｍｍｕｎｏ． 、Ａｍｈｅｒｓｔ、ＮＹ、ｐｐ．１１７−１２５、カルガー、バセル；チアら、 Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．、４５：４３５−４３７、１９８５）（マウスモノクロ ーナルＩｇＧ３、硫酸アンモニウム沈降法）はＰ．テラサキ博士（ＵＣＬＡ、ロ サンゼルス）より提供された。プールされた抗マウスＩｇＧ抗体調製品（ＭｓＩ Ｇ）はコールター社から購入した。フルオレセイン複合ヤギ抗マウスＩｇＭまた はＩｇＧ抗体はシグマ社から購入した。 ヒトゲノムライブラリの構築：高分子量のヒトゲノムＤＮＡを前記の通り、末 梢血液白血球から調製した（エルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５； ３４３６−３４４７、１９８９）。ゲノムＤＮＡは制限エンドヌクレアーゼＳａ ｕ３Ａを使用して部分分解した。部分分解されたゲノムＤＮＡを食塩水勾配によ り超遠心分離によってサイズ分画した。８ｋｂから２０ｋｂの間のＤＮＡフラグ メント富化分画を、あらかじめ末端をＳａｕ３Ａフラグメントに適合するように 部分的にｄＴＴＰおよびｄＣＰＴで満たしたＸｈｏｌ分解のラムダＦＩＸ（スト ラダジーン）ファージの腕に連結した。連結した混合物は試験管中で市販のパッ ケージ用抽出物（ストラダジーン）を用いてパッケージとし、大腸菌宿主ＴＡＰ ９０上で滴定した（パターソンら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．、１５：６ ２９８、１９８７）。プラークハイブリダイゼーションにより約１．０ｘ１０⁶ のリコンビナント・ラムダファージが選別された。プラーク・リフトはニトロセ ルロース・フィルター（シュライチャーおよびシュエル）を使用して調製し、４ ２℃で１６時間、５０％フォルムアミド、５ＸＳＳＣ、１０Ｘデンハーツ溶液、 および０．１％ＳＤＳ中で予備ハイブリダイゼーションした。フィルターは３５ ℃で７２時間、１０％硫酸デキストランおよび１ｍｌあたり１００マイクログラ ムの変性した鮭の精子ＤＮＡを含んだ予備ハイブリダイゼーション溶液中でハイ ブリダイゼーションした。プローブは、［α−³²Ｐ］ｄＣＴＰで標識化した（フ ェインバーグら、Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．、１３２：６−１３、１９８３） ルイス式血液型α（１，３／１，４）フコシルトランスフェラーゼをコードした ｃＤＮＡインサートの５’末端から単離した１．７ｋｂＸｈｏＩ−ＸｂａＩフラ グメントで構成されたものである（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅ ｖｅｌ．，４：１２８８−１３０３、１９９０）。フィルターは室温、２Ｘ Ｓ ＳＣで２０分間づつ３回リンスし、ついで５０℃で４０分間、１Ｘ ＳＳＣおよ び０．５％ＳＤＳで１回リンスした。そのあとフィルターをオートラジオグラフ ィにかけた。２回の追加プラーク・ハイブリダイゼーションサイクルの後、１８ の独立したハイブリダイゼーション陽性のプラークが同定された。ファージＤＮ Ａｓは液状溶解産物（マニアティスら、「分子クローニング：研究所マニュアル 」、コールド・スプリング・ハーバー研究所、コールドスプリングハーバー、ニ ューヨーク、１９８２）から調製し、ついで制限エンドヌクレアーゼ分解および サザン・ブロット分析により特性判定が行われた。 ＤＮＡ配列分析：ファージＤＮＡは種々の制限酵素で分解し、ヒトα（１，３ ／１，４）フコシルトランスフェラーゼｃＤＮＡと相同のフラグメントはゲル精 製し、ｐＴＺ１８Ｒのマルチクローン化部位に連結した。代表的なサブクローン はＴ７ＤＮＡポリメラーゼ（ファルマシアＬＫＢバイオテクノロジー社）および 合成オリゴヌクレオチドを使用し、フランキング・プラスミド配列、ついでイン サート配列に基づいてジデオキシ鎖決定法（サンガーら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａ ｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、７４：５４６３−５４６７、１９７７）により配列し た。この配列データはさらに追加の合成デオキシヌクレオチドを作るために使用 し、それをインサートの残りの部分を配列するために使用した。配列分析はウイ スコンシン大学の遺伝子工学コンピューターグループによる配列分析用ソフトウ エアパッケージを使用した（デベリュークスら、Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ ．、１２：３８７−３９５、１９８４）。 ｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩへのインサートの形質移入と発現：１．２ｋｂ フラグメントをＰＣＲにより生成した。これには強くハイブリダイズされたファ ージから取り出した代表的ファージから単離したＤＮＡを使用し、ほ乳類発現プ ラスミドｐＣＤＮＡｌ（インビトロゲン）のＨｉｎｄＩＩＩ部位にクローン化し た。プラスミドのＣＭＶプロモーター・エンハンサー配列のセンス定位に単一イ ンサートを持ったプラスミドをｐＣＤＮＡｌ−Ｆｕｃ−ＴＶＩと命名した。 ＦＡＣＳ分析：プラスミドＤＮＡｓを形質移入されたＣＯＳ−１細胞は形質移 入から４８−７２時間後に採取し（ラジャンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２ ６４；１１１５８−１１１６７、１９８９）、前記のとおり染色用媒体で希釈し たモノクローナル抗体で染色した（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅ ｖｅｌ．，４：１２８８−１３０３、１９９０；エルンストら、Ｊ．Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ．２６５；３４３６−３４４７、１９８９）。抗ルイスａおよび抗Ｈ抗 体（マウスＩｇＭモノクローナル；抗原アフィニティにて精製；ケムバイオメッ ド社、エドモントン）は１０μｇ／ｍｌで使用した。抗ＳＳＥＡ−１（マウスモ ノクローナルＩｇＭ；腹水）は１：１０００に希釈して使用した。抗シアリル・ ルイスｘ（マウスモノクローナルＩｇＭ；腹水からＨＰＬＣにて精製）は１０μ ｇ／ｍｌで使用した。抗シアリル・ルイスａ（マウスモノクローナルＩｇＧ３； 腹水の硫酸アンモニウム沈降物）は１：１０００に希釈して使用した。対照のマ ウスＩｇＧ３抗体（ＭｓＩｇ、コールター）は１０μｇ／ｍｌの濃度で使用した 。抗ＶＩＭ-２抗体（マウスモノクローナルＩｇＭ；腹水）は１：２００に希釈 して使用した。そのあと細胞はフルオレセイン・イソチオシアネート複合ヤギ抗 マウスＩｇＭまたはＩｇＧにより適宜染色し、前記ＦＡＣＳｃａｎ（ベクトン− ディキンソン）分析にかけた（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅ ｌ．，４：１２８８−１３０３、１９９０）。 フコシルトランスフェラーゼ評価分析：形質移入したＣＯＳ−１細胞から、前 述の手順（クコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．，４：１２８８ −１３０３、１９９０）を用いて、１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００を含む細胞抽 出物を調製した。フコシルトランスフェラーゼ評価分析を、５０ｍＭカコジル酸 ナトリウム、ｐＨ６．２、５ｍＭ ＡＴＰ、１０ｍＭ Ｌ−フコース、２０ｍＭ のＭｎＣｌ₂、３μＭ ＧＤＰ−¹⁴Ｃ−フコース、および５μｌ（タンパク３０ μｇ）の細胞抽出物を含む合計２０μｌで行った。受容体基質を最終濃度２０ｍ Ｍになるように添加した。３７℃で１時間反応させ、２０μｌのエタノールを加 えて反応を終結させ、そのあとさらに６００μｌの蒸留水を加えた。それぞれの 反応物の分割量（５０μｌ）をシンチレーション計測器にかけ、それぞれの反応 物中の合計放射能量を計測した。別の分割量（２００μｌ）を、４００μｌのＤ ｏｗｅｘ ｌＸ２−４００、フォルメート状、を含んだカラムにかけた（ラジャ ンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２６４；１１１５８−１１１６７、１９８９ ）。フラクションを通過した液およびそれに続く２μｌの溶出水溶液を回収しプ ールした後、分割量をシンチレーション計測器にかけ、中性物質に入った放射性 フコースの量を計測した。 表２は、前節で記述したように、形質移入されたＣＯＳ−１細胞に発現された リコンビナント・ヒトα（１，３）フコシルトランスフェラーゼ類を含んだ細胞 抽出物を使用して、低分子量受容体基質で得られる製品の相対生成比率を表した ものである。フコシルトランスフェラーゼ分析は、ロウら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈ ｅｍ．、（１９９１）、２６６：１７４６７−１７４７７；ウエストンら、Ｊ． Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、（１９９２）、２６７：４１５２−４１６０；およびク コウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．、（１９９０）、４：１２８ ８−１３０３に詳細に説明されている方法により行った。それぞれの酵素につい ては、それぞれの受容体オリゴ糖を飽和させる量（２０ｍＭ、ただし２’−フコ シルラクトースは５ｍＭ使用）で、かつ３μＭのＧＤＰ−¹⁴Ｃ−フコースの存在 下で、同じ抽出物を使用した。反応時間および酵素の量は製品産生が直線的関係 になるように調整した（ＧＤＰフコース基質の消費量１５％以下）。ロウら、Ｊ ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、（１９９１）、２６６：１７４６７−１７４７７；ウ エストンら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、（１９９２）、２６７：４１５２−４ １６０；およびクコウスカ−ラターロら、Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖｅｌ．，（１９９ ０）、４：１２８８−１３０３に記載の通り、これらの製品はカラム・クロマト グラフィにより分離し、液体シンチレーション計測により定量し、それらの構造 は高速液体クロマトグラフィにより確認した。 上記の説明に照らせば、本発明は多くの修正法や変法が可能なことは明らかで ある。したがって、添付の請求の範囲において本発明は、特に本明細書中に説明 した以外の方法によっても実施することができることはいうまでもない。 配列表 （１） 一般的情報： （ｉ）出願人：ロー，ジヨン ビー． （ii）発明の名称：糖タンパク上もしくは糖脂質上のまたは遊離分子として のオリゴ糖構造体の合成に用いるための、およびこれらの構造体を決定するクロ ーン化遺伝子配列を単離するための方法および産物 （iii）配列の数：１４ （iv）あて名： （Ａ） あて名：オブロン，スピバーク，マクレランド，メイヤー ア ンドヌースタッド，ピー．シー． （Ｂ） ストリート：１７５５ ジェフアーソン デイビス ハイウエ イ，４階 （Ｃ） 市：アーリントン （Ｄ） 州：バージニア （Ｅ） 国：アメリカ合衆国 （Ｆ） 郵便番号:２２２０２ （ｖ）コンピューター入力形式： （Ａ） 媒体:フロッピーディスク （Ｂ） コンピューター：ＩＢＭ ＰＣ 互換機 （Ｃ） オペレーティング システム：ＰＣ−ＤＯＳ／ＭＳ−ＤＯＳ （Ｄ） ソフトウェア：PatentIn Release ＃1.0，Version #1.25 （vi）本出願データー： （Ａ） 出願番号：ＵＳ （Ｂ） 出願日：１９９２年７月２０日 （Ｃ） 分類: （viii） 代理人／エージェント 情報： （Ａ） 氏名：ラバレイ，ジーン−ポール エム．ピー． （Ｂ） 登録番号:３１，４５１ （Ｃ） 照会/処理番号：２３６３−０６０−５５ （ix）通信情報： （Ａ） 電話：（７０３）５２１−４５００ （Ｂ） テレフアックス：（７０３）４８６−２３４７ （Ｃ） テレックス：２４８８５５ ＯＰＡＴ ＵＲ （２） 配列認識番号：１： （ｉ）配列の特徴： （Ａ） 長さ：２０４３ 塩基対 （Ｂ） 型：核酸 （Ｃ） 鎖の数：不明 （Ｄ） トポロジー：不明 （ii）分子の型：ｃＤＮＡ （iv）アンチセンス：なし （xi）配列：配列認識番号：１： （２） 配列認識番号：２： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３６１ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列：配列認識番号：２： （２） 配列認識番号：３： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：１５００ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ｃＤＮＡ （iv）アンチセンス：なし （xi）配列：配列認識番号：３： （２） 配列認識番号：４： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３９４ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列:配列認識番号：４： （２） 配列認識番号：５： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：８１７４ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （iv）アンチセンス：なし （xi）配列：配列認識番号：５： （２） 配列認識番号：６： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３６５ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列：配列認識番号：６： （２） 配列認識番号：７： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３６４７ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （iv）アンチセンス：なし （xi）配列：配列認識番号：７： （２） 配列認識番号：８： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：４０５ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列：配列認識番号：８： （２） 配列認識番号：９： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：１４８８ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （xi）配列:配列認識番号：９： （２） 配列認識番号：１０： （ｉ） 配列の特徴： （Ａ）長さ：１３１６ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （xi）配列：配列認識番号：１０： （２） 配列認識番号：１１： （i） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３７４ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列:配列認識番号：１１： （２） 配列認識番号：１２： （i） 配列の特徴： （Ａ）長さ：１０８６ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （xi）配列：配列認識番号：１２： （２） 配列認識番号：１３： （i） 配列の特徴： （Ａ）長さ：１６５４ 塩基対 （Ｂ）型：核酸 （Ｃ）鎖の数：不明 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：ＤＮＡ（ｇｅｎｏｍｉｃ） （xi）配列：配列認識番号：１３： （２） 配列認識番号：１４： （i） 配列の特徴： （Ａ）長さ：３５９ アミノ酸 （Ｂ）型：アミノ酸 （Ｄ）トポロジー：不明 （ii）分子の型：タンパク質 （xi）配列:配列認識番号：１４：

【手続補正書】特許法第１８４条の８ 【提出日】１９９４年２月１５日 【補正内容】請求の範囲 １．配列認識番号１４のアミノ酸配列をコードする配列を含む単離されたＤＮ Ａ断片。 ２．配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までの配列を含む請求項 １に記載のＤＮＡ断片。 ３．配列認識番号１３の配列を含む請求項１に記載のＤＮＡ断片。 ４．配列認識番号１４のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を含むベクター 。 ５．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までを含む 請求項４に記載のベクター。 ６．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の配列を含む請求項４に記載のベクター。 ７．配列認識番号１４の配列を有するタンパク質。 ８．配列認識番号１４の位置４３−３５９に対応するアミノ酸配列を含むポリ ペプチド。 ９．配列認識番号１４のアミノ酸配列をコードする配列を本質的に含む請求項 １に記載のＤＮＡ断片。 10．配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までの配列を本質的に含 む請求項２に記載のＤＮＡ断片。 11．配列認識番号１３の配列を本質的に含む請求項３に記載のＤＮＡ断片。 12．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までを本質 的に含む請求項５に記載のベクター。 13．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の配列を本質的に含む請求項６に記載のベ クター。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，Ｍ Ｃ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ， ＴＤ，ＴＧ)，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ， ＣＺ，ＦＩ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，Ｍ Ｇ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ ，ＳＫ，ＵＡ，ＶＮ

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．配列認識番号１４のアミノ酸配列をコードする配列を含む単離されたＤＮ Ａ断片。 ２．配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までの配列を含む請求項 １に記載のＤＮＡ断片。 ３．配列認識番号１３の配列を含む請求項１に記載のＤＮＡ断片。 ４．配列認識番号１４のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を含むベクター 。 ５．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の塩基２５５から塩基１２０８までを含む 請求項４に記載のベクター。 ６．ＤＮＡ配列が配列認識番号１３の配列を含む請求項４に記載のベクター。 ７．配列認識番号１４の配列を有するタンパク質。 ８．配列認識番号１４の位置４３−３５９に対応するアミノ酸配列を含むポリ ペプチド。