JPH08256776A - 高効率発現ベクター - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 （修正有） 【目的】 特殊な宿主細胞株を用いることなく、所望の
蛋白質を高度に生産する細胞株を容易に樹立することが
できる発現ベクターに挿入するためのスペーサーＤＮ
Ａ、及び該スペーサーＤＮＡを挿入した発現ベクターの
提供。 【構成】 所望の蛋白質をコードする第１のＤＮＡ配列
とマーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列とを含み、第
２のＤＮＡ配列の５’末端側には内部リボゾーム認識部
位を有する真核細胞用発現ベクターを宿主真核細胞に導
入し、第２のＤＮＡ配列とともに第１のＤＮＡ配列のコ
ピー数を増幅させる方法において、真核生物のリボゾー
ムが認識し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列と、
第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列との間に、少なくと
も一部は蛋白質に翻訳されないか、又は該塩基配列が全
部翻訳された場合であっても第２のＤＮＡ配列と読取り
フレームがずれているスペーサーＤＮＡを挿入すること
によって、第２のＤＮＡの翻訳効率を低下させる。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明は、特殊な細胞を使用する
ことなく、有用な蛋白質を多量に産生する細胞株を容易
に樹立する機能を有するスペーサーＤＮＡ及び該スペー
サーＤＮＡを組込んだ発現ベクターに関する。

【０００２】

【従来の技術】近年、遺伝子工学の研究が進展し、組み
換えＤＮＡ技術による物質生産が実施されている。現
在、宿主として大腸菌を用いた組み換え技術による異種
蛋白質の生産方法はほぼ確立されたが、糖鎖の付与が必
須な物質又は異種細胞により生産させた場合にその生理
活性又は抗原性に変化が生じる物質の生産には、大腸菌
の宿主としての使用は不適当である。

【０００３】最近、この問題を解決するために、動物細
胞を宿主として用いた物質生産用ベクター系が各種開発
されている。即ち、プロモーター、ＲＮＡスプライシン
グシグナル及びポリＡ付加のシグナルを主として有する
ベクター系である。この中で、所望の蛋白質を高度に生
産させるためには、プロモーターの選択が重要であり、
従来からプロモーターの改良、開発が盛んに行われてき
た［ミカエル・クリーグラー(Michael Kriegler)著、加
藤郁之進監訳、「動物細胞の遺伝子工学」、第１版、第
４ページ、宝酒造、１９９４年］。

【０００４】また、宿主細胞に導入した遺伝子のコピー
数を増幅させることにより、所望の蛋白質を高度に生産
させる技術も開発されている。カウフマン(Kaufman) ら
［アメリカ特許第５，２３８，８２０号及びジャーナル
・オブ・モレキュラー・バイオロジー(Journal of Mole
cular Biology)、第１５９巻、第６０１ページ、１９８
２年］は、所望の蛋白質を発現するＤＮＡ配列、及びジ
ヒドロ葉酸還元酵素（以下、「ＤＨＦＲ」と記載するこ
とがある）を発現するＤＮＡ配列を、それぞれ別個のプ
ロモーターにより発現させるプラスミドベクターを遺伝
子工学的に作製し、これをＤＨＦＲを欠損しているとい
う点において特殊な細胞であるＤＨＦＲ欠損チャイニー
ズハムスター卵巣由来細胞株ＣＨＯ細胞（以下、「ＤＵ
ＫＸ−Ｂ１１細胞」と記載することがある）に、遺伝子
導入した。その後、ＤＨＦＲのＤＮＡ配列を増幅する薬
剤であるメトトレキセートを添加した培養液により遺伝
子導入細胞を培養し、ＤＨＦＲをコードするＤＮＡ配列
と共に、その近傍に存在する所望の蛋白質を発現するＤ
ＮＡ配列のコピー数をも増幅させる技術を開発した。

【０００５】しかしながら、この技術は、極めて特殊で
あり、かつ種類も限定されたＤＨＦＲ欠損細胞において
のみ効果的であり、現存する全ての培養細胞に適用でき
ず、必ずしも産業上有効な手段とはいえない。また、こ
の技術においては、ＤＨＦＲのＤＮＡ配列のみが増幅さ
れる場合、又は増幅によりＤＮＡ配列の再構成［リアレ
ンジメント(Rearrengement) ］が生じる場合が存在する
ことも明らかにされており［ヌクレイック・アッシズ・
リサーチ(Nucleic Acids Research)、第１９巻、第４４
８５ページ、１９９１年］、産業上利用するためには望
ましくない。

【０００６】また、薬剤耐性遺伝子としてアデノシンデ
アミナーゼ（以下、「ＡＤＡ」と記載することがある）
遺伝子を用いることにより、ＡＤＡのＤＮＡ配列を増幅
する薬剤であるＸｙｌａ−Ａを添加した培養液により細
胞を培養し、ＡＤＡをコードするＤＮＡ配列と共に、そ
の近傍に存在する所望の蛋白質を発現するＤＮＡ配列の
コピー数をも増幅させる技術も発明されている（特表昭
６２−５０２６６２号公報）。しかし、特殊であるＤＵ
ＫＸ−Ｂ１１細胞において、特にこの技術は効果的であ
り［ミカエル・クリーグラー(Michael Kriegler)著、加
藤郁之進監訳、「動物細胞の遺伝子工学」、第１版、第
１２３ページ、宝酒造、１９９４年］、現存する培養細
胞、例えば、内在性ＡＤＡの高い胃腸組織又は胸腺組織
由来細胞等には適用不可能であり、産業上有効な手段で
はない。

【０００７】更に、薬剤耐性遺伝子としてこれらのＤＨ
ＦＲ遺伝子、又はＡＤＡ遺伝子を用いた場合、培養液に
添加する動物血清中に含有される核酸前駆体を除去する
目的で、動物血清を透析する必要があり、産業上望まし
くない［ミカエル・クリーグラー(Michael Kriegler)
著、加藤郁之進監訳、「動物細胞の遺伝子工学」、第１
版、第１３１ページ、宝酒造、１９９４年］。

【０００８】その他、目的遺伝子の発現量を増加させる
ため、薬剤耐性遺伝子に変異を加え、意図的に薬剤耐性
活性を低下させることにより、導入遺伝子コピー数の多
い細胞株を樹立する技術も開発されており、変異ＤＨＦ
Ｒ［ヌクレイック・アッシズ・リサーチ(Nucleic Acids
Research)、第１９巻、第４４８５ページ、１９９１
年］、変異Ｎｅｏ［ジーン(Gene)、第１０８巻、第１９
３ページ、１９９１年］等を用いた当該技術が既に開発
されている。

【０００９】しかしながら、これらの従来技術は、個々
の薬剤耐性遺伝子に対し、変異薬剤耐性遺伝子を遺伝子
工学的に単離、又は作製しなければならず、汎用性の低
い技術であり、産業上望ましくない。

【００１０】一方、一般に真核生物では、ｍＲＮＡの
５’末端に存在するキャップ構造を認識し、リボゾーム
がｍＲＮＡの翻訳を開始するが、ピコルナウイルス科に
属する脳心筋ウイルス（以下「ＥＭＣＶ」と記載するこ
とがある）では、ｍＲＮＡ中に含有される特殊な二次構
造を形成するＲＮＡ、即ち、内部リボゾーム認識部位
（インターナル・リボゾーマル・エントリー・サイト(I
nternal Ribosomal EntrySite)：以下「ＩＲＥＳ」と記
載することがある）をリボゾームが直接認識し、ＩＲＥ
Ｓから蛋白質への翻訳を開始する。ＩＲＥＳが有する特
殊な翻訳開始機構は産業上重要であり、ＩＲＥＳに関す
る発明がなされている（アメリカ特許第４，９３７，１
９０号）。また、第１のＤＮＡ配列及び第２のＤＮＡ配
列との間に、ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列を挿入
し、第１のＤＮＡ配列及び第２のＤＮＡ配列にコードさ
れる蛋白質をそれぞれキャップ構造、及びＩＲＥＳから
発現するポリシストロニックｍＲＮＡを転写、発現する
ことを特徴とする発現ベクターも発明されており、内部
リボゾームエントリー部位を含むレトロウイルスベクタ
ー（特表平６−５０９７１３号公報）、発現ベクター
（特開平６−２７７０７４号公報）及び遺伝子産物の製
造方法（特開平６−７８７８４号公報）等を例示するこ
とができる。

【００１１】カウフマン(Kaufman) ら［ヌクレイック・
アッシズ・リサーチ(Nucleic AcidsResearch)、第１９
巻、第４４８５ページ、１９９１年］は、ＩＲＥＳをコ
ードするＤＮＡ配列を利用し、所望の蛋白質とＤＨＦＲ
を発現するポリシストロニックｍＲＮＡ発現ベクターを
遺伝子工学的に作製し、ＤＵＫＸ−Ｂ１１細胞に遺伝子
導入し、メトトレキセートを添加した培養液により遺伝
子導入細胞を培養し、ＤＨＦＲをコードするＤＮＡ配列
及び所望の蛋白質を発現するＤＮＡ配列のコピー数を、
導入ＤＮＡ配列の再構成を誘起することなく増幅させる
技術を開発した。しかし、前記のとおり、この技術は、
極めて特殊であり、かつ種類も限定されたＤＨＦＲ欠損
細胞においてのみ適用され、現存する全ての培養細胞に
は適用できず、産業上有効な手段であるとはいえない。

【００１２】また、ＩＲＥＳの塩基配列の一部に変異を
加えるか、又はＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列の下流
に結合するＤＨＦＲのＮ末端に、数個のアミノ酸を結合
した変異ＤＨＦＲをコードする遺伝子を遺伝子工学的に
作製し、故意にＤＨＦＲの発現量を低下させる技術も開
発されている［ジャーナル・オブ・ビロロジー(Journal
of Virology) 、第６６巻、第１９２４ページ、１９９
２年］。しかしながら、遺伝子工学的に加えたこれらの
変異が、第２のＤＮＡ配列である薬剤耐性遺伝子の発現
量に及ぼす影響について、それぞれの薬剤耐性遺伝子に
ついて検討する必要があり、汎用性の低い技術であり、
産業上望ましくない。実際、ＤＨＦＲ遺伝子の場合、こ
れらの変異を加えた発現ベクターを構築し、細胞に遺伝
子導入し、メトトレキセートを添加した培養液により遺
伝子導入細胞を培養しても、遺伝子導入細胞株を樹立で
きないことが公知である［ジャーナル・オブ・ビロロジ
ー(Journal of Virology) 、第６６巻、第１９２４ペー
ジ、１９９２年］。

【００１３】更に、遺伝子導入細胞を単離するために用
いる薬剤耐性遺伝子、薬剤等も種々開発されているが、
広範囲の培養細胞において、所望の蛋白質を高度に生産
する細胞株を、高い効率で樹立し得る産業上有効な技術
は未だに存在しない［ミカエル・クリーグラー(Michael
Kriegler)著、加藤郁之進監訳、「動物細胞の遺伝子工
学」、第１版、第１２３ページ、宝酒造、１９９４
年］。

【００１４】

【発明が解決しようとする課題】本発明者らは、前記従
来技術に鑑みて鋭意研究を行った結果、公知のＩＲＥＳ
をコードするＤＮＡ配列を利用したポリシストロニック
ｍＲＮＡ発現ベクターにおいて、ＩＲＥＳをコードする
ＤＮＡ配列の３’末端に存在し、真核生物のリボゾーム
が認識し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列と、薬
剤耐性遺伝子である第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列
との間に、塩基配列の一部又は全部が蛋白質に翻訳され
ない１塩基対（以下「ｂｐ」と記載することがある）以
上の塩基配列から構成されるスペーサーＤＮＡを挿入す
ることにより、ＩＲＥＳを介した薬剤耐性遺伝子である
第２のＤＮＡ配列の蛋白質への翻訳効率を、故意に低下
させた発現ベクターを作製して遺伝子導入することによ
り、特殊な宿主細胞を用いることなく、第１のＤＮＡ配
列にコードされる蛋白質を、高い効率で生産する細胞株
を極めて高率に樹立し得ることを見い出し、本発明を完
成した。

【００１５】尚、該スペーサーＤＮＡは、発現ベクター
の内部リボゾーム認識部位をコードするＤＮＡ配列の
３’末端に存在するＡＴＧ配列と、薬剤耐性遺伝子であ
るＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列との間に挿入され、該ス
ペーサーＤＮＡの一部又は全部の塩基配列が蛋白質に翻
訳されない。また、公知の技術のように、ＩＲＥＳの塩
基配列の一部に変異を加えるか、又はＩＲＥＳをコード
するＤＮＡ配列の下流に結合する薬剤耐性遺伝子産物の
Ｎ末端に、数個のアミノ酸を付加した変異薬剤耐性遺伝
子産物をコードする遺伝子等の作製を必要としない。

【００１６】本発明の目的は、特殊な宿主細胞を使用す
ることなく、第１のＤＮＡ配列にコードされる有用な蛋
白質を、高度に生産する細胞株を極めて高率に単離し、
しかも該細胞株の単離及び維持に要する高額な薬剤の使
用量を減少させうる発現ベクターに挿入するためのスペ
ーサーＤＮＡ、及び該スペーサーＤＮＡを挿入した発現
ベクターを提供することである。

【００１７】

【課題を解決するための手段】前記課題を解決するため
の本願の第１の発明は、所望の蛋白質をコードする第１
のＤＮＡ配列とマーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列
とを含み、第２のＤＮＡ配列の５’末端側にはＩＲＥＳ
を有する真核細胞用発現ベクターに挿入されるスペーサ
ーＤＮＡであって、前記ＩＲＥＳの３’末端に存在し、
真核生物のリボゾームが認識し得るＡＵＧ配列をコード
するＡＴＧ配列と、第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列
との間に挿入され、かつ該塩基配列の少なくとも一部は
蛋白質に翻訳されないか、又は該塩基配列が全部翻訳さ
れた場合であっても第２のＤＮＡ配列と読取りフレーム
がずれているスペーサーＤＮＡである。

【００１８】前記発明の好ましい実施態様として、少な
くとも３１塩基対からなるスペーサーＤＮＡ、及び配列
番号１〜配列番号３に記載のいずれかの塩基配列を有す
るスペーサーＤＮＡが提供される。

【００１９】本願の第２の発明は、次のａ）〜ｆ）のＤ
ＮＡ配列； ａ）プロモーター活性を有するＤＮＡ配列、 ｂ）所望の蛋白質をコードする第１のＤＮＡ配列、 ｃ）ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列、 ｄ）スペーサーＤＮＡ配列、及び ｅ）マーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列、 を含む真核細胞用発現ベクターであって、前記スペーサ
ーＤＮＡ配列は、前記ＩＲＥＳの３’末端に存在し、真
核生物のリボゾームが認識し得るＡＵＧ配列をコードす
るＡＴＧ配列と、第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列と
の間に挿入され、かつ該配列の少なくとも一部は蛋白質
に翻訳されないか、又は該塩基配列が全部翻訳された場
合であっても第２のＤＮＡ配列と読取りフレームがずれ
ている、発現ベクターである。

【００２０】本願の第三の発明は、所望の蛋白質をコー
ドする第１のＤＮＡ配列とマーカー遺伝子である第２の
ＤＮＡ配列とを含み、第２のＤＮＡ配列の５’末端側に
はＩＲＥＳを有する真核細胞用発現ベクターを宿主真核
細胞に導入し、該細胞の生育にマーカー遺伝子の発現を
必要とする物質の存在下で該ベクター導入細胞を培養す
ることによって、第２のＤＮＡ配列とともに第１のＤＮ
Ａ配列のコピー数を増幅させる方法において、前記ＩＲ
ＥＳの３’末端に存在し、真核生物のリボゾームが認識
し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列と第２のＤＮ
Ａ配列の開始ＡＴＧ配列との間に、少なくとも一部は蛋
白質に翻訳されないか、又は該塩基配列が全部翻訳され
た場合であっても第２のＤＮＡ配列と読取りフレームが
ずれているスペーサーＤＮＡを挿入し、第２のＤＮＡ配
列の翻訳効率を低下させることによって、増幅を促進さ
せることを特徴とする方法である。

【００２１】上記のそれぞれの発明において、ＩＲＥＳ
をコードするＤＮＡ配列は、ＥＭＣＶウイルス由来であ
り、３’末端に真核生物のリボゾームが認識し得るＡＵ
Ｇ配列をコードするＡＴＧ配列を有すること、ＡＴＧ配
列が、脳心筋炎ウイルス由来遺伝子のＡＴＧ−１１配列
であること、スペーサーＤＮＡが少なくとも３１塩基対
からなること及びスペーサーＤＮＡが配列番号１〜配列
番号３のいずれかに記載の塩基配列を有することを、望
ましい態様としてもいる。

【００２２】尚、本明細書において、ＤＮＡ配列、ＤＮ
Ａ断片又は遺伝子は、ＤＮＡ、ＲＮＡ又はこれらの化学
的修飾物であり、百分率は、特に断りのない限り、重量
による値である。

【００２３】次に、本発明について詳述する。

【００２４】＜１＞スペーサーＤＮＡ配列 本願の第１発明であるスペーサーＤＮＡは、所望の蛋白
質をコードする第１のＤＮＡ配列とマーカー遺伝子であ
る第２のＤＮＡ配列とを含み、第２のＤＮＡ配列の５’
末端側にはＩＲＥＳを有する真核細胞用発現ベクターに
挿入されるものである。このスペーサーＤＮＡは、前記
ＩＲＥＳの３’末端に存在するＡＴＧ配列（以下、「第
１のＡＴＧ配列」ということがある）と第２のＤＮＡ配
列の開始ＡＴＧ配列（以下、「第２のＡＴＧ配列」とい
うことがある）との間に挿入されるものであり、その塩
基配列は、該塩基配列の少なくとも一部は蛋白質に翻訳
されないか、又は該塩基配列が全部翻訳された場合であ
っても第２のＤＮＡ配列と読取りフレームがずれている
ことが必要である。すなわち、本発明のスペーサーＤＮ
Ａの配列は、第１のＡＴＧ配列と第２のＡＴＧ配列との
間に存在したときに、第１のＡＴＧ配列から開始された
翻訳が第２のＡＴＧ配列に達する前に終了するか、ある
いは第１のＡＴＧ配列から開始された翻訳の読取りフレ
ームが第２のＤＮＡ配列の読取りフレームと異なるよう
な配列である。そのためには、スペーサーＤＮＡの塩基
数を３ｎ＋１又は３ｎ＋２とするか、あるいは３ｎであ
ってもその塩基配列中に１個以上のストップ・コドンを
含ませればよい（ｎは０又は正の整数である）。また、
スペーサーＤＮＡの長さとしては、少なくとも３１塩基
対であることが好ましい。特に好適な本発明のスペーサ
ーＤＮＡとして、配列番号１〜配列番号３に記載の塩基
配列を有するスペーサーＤＮＡを例示することができ
る。

【００２５】上記のようなスペーサーＤＮＡを、ＩＲＥ
Ｓの３’末端に存在するＡＴＧ配列と第２のＤＮＡ配列
の開始ＡＴＧ配列との間に挿入することにより、第２の
ＤＮＡ配列の翻訳は、本来ＩＲＥＳによって開始される
翻訳とは異なる部位から始まるため、翻訳効率を減少さ
せることができる。

【００２６】次に本発明のスペーサーＤＮＡの調製法を
例示するが、スペーサーＤＮＡとしては上記の構造を有
していればよく、その調製法は特段制限されない。例え
ば、任意のプラスミドＤＮＡの一部をポリメラーゼ・チ
ェイン・リアクション（Polymerase Chain Reaction ：
以下「ＰＣＲ」と記載することがある）法により増幅し
得る５〜４０ヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチド
プライマーに、適当なＤＮＡ切断制限酵素認識部位を有
する５〜１５ヌクレオチドが付加された合成オリゴヌク
レオチドを、それぞれセンスプライマー及びアンチセン
スプライマーとして用い、前記プラスミドＤＮＡを鋳型
としてＰＣＲ反応を行うことによって、スペーサーＤＮ
Ａが得られる。

【００２７】また、所望のスペーサーＤＮＡを含有する
ＤＮＡ配列を増幅し、適当なＤＮＡ切断制限酵素（例え
ば、ＳｍａＩ、ＮｒｕＩ、ＭｓｃＩ等）により切断し、
所望のＤＮＡを分離しても、本発明のスペーサーＤＮＡ
が得られる。それぞれのスペーサーＤＮＡを含有するＰ
ＣＲ産物を低融点アガロースゲル電気泳動に供し、他の
不要成分から所望のＤＮＡ配列を分離し、フェノール法
により低融点アガロースゲルからＤＮＡ配列を回収し、
乾固することによっても、所望のスペーサーＤＮＡを得
ることもできる。

【００２８】また、公知の化学的合成法、通常の遺伝子
工学的方法又は入手可能な出発材料の利用によっても調
製することができる。その一例を示せば以下のとおりで
ある。 ｐＵＣ８プラスミドＤＮＡに、５〜４０ヌクレ
オチドに加えて適当なＤＮＡ切断制限酵素認識部位を有
する５〜１５ヌクレオチドを付加した合成オリゴヌクレ
オチドをセンス及びアンチセンスプライマーとし、スペ
ーサーＤＮＡを公知のＰＣＲ法により増幅する。それぞ
れのスペーサーＤＮＡを含有するＰＣＲ産物を低融点ア
ガロースゲル電気泳動に供し、他の不要成分からスペー
サーＤＮＡを分離する。フェノール法により低融点アガ
ロースゲルからスペーサーＤＮＡを回収し、乾固し、所
望のスペーサーＤＮＡを得る。

【００２９】尚、上記のように、スペーサーＤＮＡの両
端に制限酵素切断部位を持たせるようにすると、第１の
ＡＴＧ配列と第２のＤＮＡ配列との間に挿入しやすくな
る点で好ましいが、本発明にとって必須ではない。

【００３０】＜２＞本発明の発現ベクター 本発明の発現ベクターは、次のａ）〜ｆ）のＤＮＡ配列
を含む発現ベクターである。

【００３１】ａ）プロモーター活性を有するＤＮＡ配
列、 ｂ）所望の蛋白質をコードする第１のＤＮＡ配列、 ｃ）ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列、 ｄ）本発明のスペーサーＤＮＡ配列、及び ｅ）マーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列。

【００３２】上記のような構造を有する発現ベクターを
宿主真核細胞に導入し発現させると、スペーサーＤＮＡ
の介在によって、ＩＲＥＳにより開始されるマーカー遺
伝子である第２のＤＮＡ配列の翻訳効率を減少させるこ
とができる。その結果、発現ベクター導入細胞を取得す
る際に用いるマーカー遺伝子の発現を検出するための物
質、例えば薬剤耐性遺伝子の場合には薬剤、の量を減少
させることができる。また、ある種の薬剤耐性遺伝子の
ように、薬剤存在下で遺伝子が増幅されるものがある
が、そのような遺伝子を第２のＤＮＡ配列として用いる
と、その発現がスペーサーＤＮＡにより押さえられてい
るので、増幅効率が上昇することが期待される。その結
果、遺伝子導入細胞を単離する際、遺伝子産物を高度に
生産する細胞株を高い効率で得ることができる。また、
目的の発現ベクター導入株を一定期間継代後、遺伝子導
入された細胞株を安定して得られる確率が高くなる。

【００３３】上記プロモーターは、真核細胞発現用プロ
モーターであって、ＳＶ４０初期プロモーター、ＲＳＶ
プロモーター、ＴＫプロモーター、ＣＭＶプロモータ
ー、ＭＭＴＶプロモーター、β−アクチンプロモータ
ー、エロンゲーションファクタ−プロモーター等が挙げ
られる。又、ＣＭＶエンハンサー等のエンハンサーを有
していてもよい。

【００３４】所望の蛋白質としては、宿主真核細胞中で
発現させることができるものであれば特に制限されない
が、例えば、酵素、生理活性物質、細胞構成蛋白質等、
より具体的にはβ−ガラクトシダーゼ等が挙げられる。

【００３５】ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列として
は、真核生物のリボゾームが認識し翻訳を開始する機能
を有する配列であれば制限されないが、特にＥＭＣＶ由
来のＩＲＥＳをコードする配列が好ましい。このＩＲＥ
ＳをコードするＤＮＡ配列を有するプラスミドは市販さ
れており、それを使用してもよい。尚、本明細書におい
て「ＩＲＥＳ」というときは、特に断りのない限り、真
核生物のリボゾームが認識しうるＡＵＧ配列をコードす
るＡＴＧ配列を含むものとする。このＡＴＧ配列につい
ては後述する。

【００３６】マーカー遺伝子としては、発現ベクターを
導入した細胞に特定の薬剤に対する耐性能を付与する能
力を有する遺伝子、すなわち薬剤耐性遺伝子が挙げられ
る。具体的には、ネオマイシン耐性遺伝子（Ｎｅｏ）、
ＤＨＦＲ遺伝子、ＡＤＡ（アデノシンデアミナーゼ）遺
伝子、チミジンキナーゼ、ピューロマイシン耐性遺伝
子、ブラストサイジン耐性遺伝子、ハイグロマイシン耐
性遺伝子、キサンチン・グアニンホスホリボシルトラン
スフェラーゼ遺伝子等が挙げられる。本発明において
は、特にＮｅｏが好ましい。尚、ここでいう「遺伝子」
とは、プロモーターを含まないコード領域をいう。

【００３７】本発明の発現ベクターにおいて、上記の
ａ）〜ｅ）の各ＤＮＡ配列に加えて、マーカー遺伝子の
３’末端側にポリＡ付加シグナルをコードするＤＮＡ配
列を保持させてもい。ポリＡ付加シグナルをコードする
ＤＮＡ配列は本発明に必須ではないが、これを用いるこ
とにより所望の蛋白質を安定して発現させることができ
る点で好ましい。すなわち、ポリＡ付加シグナルの存在
によって、適当な長さのｍＲＮＡを生成させることがで
き、また、ｍＲＮＡの安定性を増加させることができ
る。ポリＡ付加シグナルをコードするＤＮＡ配列として
は、転写産物にポリＡ配列を付加させることができるも
のであればよく、具体的にはＳＶ４０ポリＡ付加シグナ
ル、ウシ成長ホルモンｍＲＮＡのポリＡ付加シグナルを
コードするＤＮＡ配列等が挙げられる。

【００３８】本発明の発現ベクターに用いるベクターＤ
ＮＡ及び発現ベクターを導入する宿主真核細胞は、その
細胞中でベクターが機能するものであればよく、ｐＭＳ
Ｇ（ＣＯＳ−７細胞）、ｐＲＣ／ＣＭＶ（ＣＨＯ細
胞）、ｐＲＥＰ４（ＮＩＨ３Ｔ３細胞）等が挙げられ
る。ベクターＤＮＡとして、プロモーター活性を有する
ＤＮＡ配列、第２のＤＮＡ配列及びポリＡ付加シグナル
のいずれか又は全部を含むベクターを用いてもよい。

【００３９】プロモーター活性を有するＤＮＡ配列と、
第１のＤＮＡ配列と、ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配
列、スペーサーＤＮＡ配列及び第２のＤＮＡ配列をこの
順に連結したものとを、ベクターに挿入することによっ
て、本発明の発現ベクターが得られる。第１のＤＮＡ配
列の発現効率を高めるためには、上記ａ）〜ｆ）の各々
のＤＮＡ配列をこの順序で連結し、プロモーター活性を
有するＤＮＡ配列によって他のＤＮＡ配列が単一の転写
単位として、すなわちジシストロニックに発現させるこ
とが好ましい。

【００４０】ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列とスペー
サーＤＮＡとの連結は、ＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配
列の３’末端に存在し、真核生物のリボゾームが認識し
得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列の３’末端と、
スペーサーＤＮＡの５’末端とを連結することによって
行う。ＥＭＣＶ由来のＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列
のように、３’末端に存在し、真核生物のリボゾームが
認識し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列が、リボ
ゾームにより開始コドンとして認識される場合には、そ
のＡＴＧ配列の３’末端にスペーサーＤＮＡを連結すれ
ばよい。ＥＭＣＶ由来のＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配
列においては、前記ＡＴＧ配列としては、複数存在する
ＡＴＧ配列のうちＡＴＧ−１１配列［ジャーナル・オブ
・ビロロジー(Journal of Virology) 、第６６巻、第１
９２４ページ、１９９２年］が好ましい。

【００４１】ポリオウイルスタイプのＩＲＥＳのよう
に、ＩＲＥＳの３’末端に存在する真核生物のリボゾー
ムが認識し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列が、
開始コドンとして認識されず、下流の離れた位置のＡＴ
Ｇから翻訳が開始するものである場合には、ＩＲＥＳか
らそのＡＴＧ配列までを含むＤＮＡ配列を用い、そのＡ
ＴＧ配列の３’末端にスペーサーＤＮＡを連結する。ま
た、ＡＴＧ配列としては、ＩＲＥＳによる翻訳開始機構
によってリボゾームが翻訳開始部位として認識し得るＡ
ＴＧ配列であれば、遺伝子工学的に作製し、任意の場所
に挿入したＡＴＧ配列であってもよい。

【００４２】スペーサーＤＮＡをＩＲＥＳをコードする
ＤＮＡ配列と第２のＤＮＡ配列との間に挿入するに際
し、その両末端を、次のいずれかの方法により予め処理
する。 適当なＤＮＡ切断制限酵素により消化する； 適当なＤＮＡ修飾酵素により修飾する； 適当なＤＮＡ切断制限酵素認識配列を含有する合成Ｄ
ＮＡリンカーをＤＮＡリガーゼにより連結する； これらの処理を種々に組み合わせて処理する。

【００４３】一方、ベクターＤＮＡも適当なＤＮＡ切断
制限酵素（例えば、ＭｓｃＩ、ＸｂａＩ等）により切断
して直鎖状となし、スペーサーＤＮＡの場合と同様に両
末端を処理し、スペーサーＤＮＡとプラスミドＤＮＡを
ＤＮＡリガーゼにより連結して、スペーサーＤＮＡを挿
入した発現ベクターを得ることができる。

【００４４】以下に、本発明の発現ベクターの具体的な
製造法として、ＥＭＣＶのＩＲＥＳをコードするＤＮＡ
を用いた方法を例示する。プロモーター活性を有するＤ
ＮＡ配列、所望の蛋白質をコードするＤＮＡ配列、３’
末端にＡＴＧ−１１配列を有するＩＲＥＳをコードする
ＤＮＡ配列、薬剤耐性遺伝子をコードするＤＮＡ配列、
及びポリＡを付加するシグナルをコードするＤＮＡ配列
を含有するそれぞれのプラスミドＤＮＡを、適当なＤＮ
Ａ切断制限酵素により消化し、他の不要成分からそれぞ
れのＤＮＡ配列を低融点アガロースゲル電気泳動により
分離する。フェノール法により低融点アガロースゲルか
らＤＮＡ配列を回収し、乾固し、所望のＤＮＡ配列を得
る。それぞれのＤＮＡ配列の両末端を適切なＤＮＡ切断
制限酵素、ＤＮＡ修飾酵素等により処理し、ＤＮＡリガ
ーゼによりプラスミドＤＮＡに挿入し、連結する。その
後、ＡＴＧ−１１配列と、薬剤耐性遺伝子をコードする
ＤＮＡ配列の開始ＡＴＧコドンの間を、適当なＤＮＡ切
断制限酵素により消化し、直鎖状とする。これを適当な
ＤＮＡ修飾酵素等により処理し、両末端を適当なＤＮＡ
切断制限酵素、又はＤＮＡ修飾酵素により処理した前記
スペーサーＤＮＡを挿入し、ＤＮＡリガーゼにより連結
し、発現ベクタープラスミドを調製する。

【００４５】本発明の発現ベクターは、前記動物細胞発
現用プロモーター以外に、次のＤＮＡ配列を含んでいる
ことが望ましい。

【００４６】ｉ）ＳＶ４０初期スプライシング部位等の
スプライシング配列； ii）アンピシリン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐
性遺伝子等、発現ベクター構築の過程で大腸菌を形質転
換する際に、特定の薬剤に対する耐性能を付与するＤＮ
Ａ配列； iii）ＳＶ４０初期プロモーター等、動物細胞内で機能
するＤＮＡ複製開始点； iv）ＣｏｌＥ１等、大腸菌内で機能するＤＮＡ複製開始
点； v）前記機能ＤＮＡ配列の種々の組合せ

【００４７】以上のようにして本発明のスペーサーＤＮ
Ａを挿入した発現ベクタープラスミドは得られるが、公
知の化学的合成法、通常の遺伝子工学的方法又は入手可
能な出発材料の利用によっても調製することができる。
その一例を示せば次のとおりである。

【００４８】プロモーター活性を有するＤＮＡ配列、所
望の蛋白質をコードするＤＮＡ配列、ＡＴＧ−１１配列
を含有するＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列、薬剤耐性
遺伝子をコードするＤＮＡ配列またはポリＡを付加する
シグナルをコードするＤＮＡ配列を含有するプラスミド
ＤＮＡを適したＤＮＡ切断制限酵素により消化後、他の
不要成分からそれぞれのＤＮＡ配列を低融点アガロース
ゲル電気泳動により分離する。フェノール法により低融
点アガロースゲルからＤＮＡ配列を回収後、乾固し、所
望のＤＮＡ配列を得る。適したＤＮＡ切断制限酵素によ
り直鎖状にしたプラスミドＤＮＡとそれぞれのＤＮＡ配
列をＴ４ ＤＮＡポリメラーゼと共に保温し、両末端を
平滑化する。

【００４９】次に、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼと共に保温
し、プラスミドＤＮＡとＤＮＡ配列を連結し、プロモー
ター活性を有するＤＮＡ配列、所望の蛋白質をコードす
るＤＮＡ配列、ＡＴＧ−１１配列を含有するＩＲＥＳを
コードするＤＮＡ配列、薬剤耐性遺伝子をコードするＤ
ＮＡ配列及びポリＡを付加するシグナルをコードするＤ
ＮＡ配列を記載した順番で含有するプラスミドＤＮＡを
得ることができる。該プラスミドＤＮＡのＡＴＧ−１１
配列と、薬剤耐性遺伝子をコードするＤＮＡ配列の開始
ＡＴＧ配列の間を適当なＤＮＡ切断制限酵素により消化
し、直鎖状にする。スペーサーＤＮＡと混和後、Ｔ４
ＤＮＡポリメラーゼと共に保温し、両末端を平滑化す
る。次に、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼと共に保温し、プラス
ミドＤＮＡとスペーサーＤＮＡとを連結することによ
り、所望のスペーサーＤＮＡを挿入した発現ベクタープ
ラスミドを得ることができる。

【００５０】次に試験例を示して本発明を更に詳述す
る。 ＜試験例１＞この試験は、本発明の配列番号１〜配列番
号３に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含む
ＤＮＡ断片を確認するために行った。

【００５１】（１）試料の調製 実施例１〜実施例３と同一の方法により、配列番号１〜
配列番号３に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡ
を含むＤＮＡ断片を調製した。

【００５２】（２）試験方法 前記スペーサーＤＮＡを常法（村松正実編、「ラボマニ
ュアル遺伝子工学」、第１版、第１９ページ、丸善、１
９８８年）によりアガロースゲル電気泳動に供し、エチ
ジウムブロマイド染色（村松正実編、「ラボマニュアル
遺伝子工学」、第１版、第１９ページ、丸善、１９８８
年）により可視化した。

【００５３】（３）試験結果 この試験の結果は図１に示す通りである。図１は、本発
明のスペーサーＤＮＡを含むＤＮＡ断片のアガロースゲ
ル電気泳動図であり、第１列、第２列、第３列及び第４
列はそれぞれＤＮＡサイズマーカー、配列番号１、配列
番号２及び配列番号３に記載の塩基配列を示し、図の左
側の数字はサイズマーカーの塩基対（ｂｐ）の数を示
す。

【００５４】図１から明らかなように、ＤＮＡサイズマ
ーカー（第１列）との比較から、所望のスペーサーＤＮ
Ａを含有するＤＮＡ断片、即ち約３００ｂｐ、約２７０
ｂｐ及び約３９０ｂｐ、が得られたことが確認された。

【００５５】＜試験例２＞この試験は、本発明の配列番
号１〜配列番号３に記載の塩基配列を有するスペーサー
ＤＮＡを挿入したスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現
ベクター１〜スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベク
ター３（実施例４〜６参照）を確認するために行った。
いずれの発現ベクターも、第１のＤＮＡ配列としてβ−
ｇａｌ、及び第２のＤＮＡ配列としてＮｅｏを有する。

【００５６】（１）試料の調製 実施例４〜６と同一の方法により、スペーサーＤＮＡ挿
入β−ｇａｌ発現ベクター１〜スペーサーＤＮＡ挿入β
−ｇａｌ発現ベクター３を調製した。

【００５７】（２）試験方法 前記スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクターをＤ
ＮＡ切断制限酵素ＰｓｔＩ（宝酒造社製）により消化
後、常法（村松正実編、「ラボマニュアル遺伝子工
学」、第１版、第１９ページ、丸善社、１９８８年）に
よりアガロースゲル電気泳動に供し、エチジウムブロマ
イド染色（村松正実編、「ラボマニュアル遺伝子工
学」、第１版、第１９ページ、丸善社、１９８８年）に
より可視化した。

【００５８】（３）試験結果 この試験の結果は図２に示すとおりである。図２は、本
発明のスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクターの
アガロースゲル電気泳動図であり、第１列、第２列、第
３列及び第４列は、それぞれＤＮＡサイズマーカー、配
列番号１、配列番号２及び配列番号３に記載の塩基配列
を有するスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター
を示し、図の左側の数字はＤＮＡサイズマーカーの塩基
対（ｋｂｐ）の数を示す。

【００５９】図２から明らかなとおり、ＤＮＡサイズマ
ーカー（第１列）との比較から、所望のスペーサーＤＮ
Ａ挿入β−ｇａｌ発現ベクターの切断パターン、即ち約
９．８ｋｂｐ、約９．０ｋｂｐと約０．８ｋｂｐ、及び
約９．８ｋｂｐ、が得られたことが確認された。

【００６０】＜試験例３＞この試験は、特殊な宿主細胞
を用いることなく、導入β−ｇａｌ高発現細胞株を容易
に樹立することを可能にする発現ベクタープラスミドに
挿入するための、最適な長さのスペーサーＤＮＡを決定
するために行った。

【００６１】（１）試料の調製 参考例２と同一の方法により、対照β−ｇａｌ発現ベク
ター２を調製した。また、実施例４〜６と同一の方法に
より、配列番号１〜配列番号３に記載の塩基配列を有す
るスペーサーＤＮＡを含む、スペーサーＤＮＡ挿入β−
ｇａｌ発現ベクター１〜スペーサーＤＮＡ挿入発現ベク
ター３を調製した。

【００６２】（２）試験方法 ａ）動物細胞への、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発
現ベクターの遺伝子導入方法 仔ウシ血清（ハイクローン社製）を１０％含有するダル
ベッコＭＥＭ（日水製薬社製。以下ＤＭＥＭと記載す
る）により、マウス胎芽由来線維芽細胞様ＮＩＨ３Ｔ３
細胞（特殊法人理化学研究所から入手）を３７℃、５％
ＣＯ₂ 気相下で継代培養した。尚、ＮＩＨ３Ｔ３細胞
は、ＤＨＦＲ欠損細胞のように、選択薬剤耐性遺伝子を
欠損した特殊な細胞株ではないことが公知である（瀬野
悍二、小山秀機、黒木登志夫編著、「動物細胞培養マニ
ュアル」、第１版、第１１２ページ、共立出版、１９９
３年）。継代培養したＮＩＨ３Ｔ３細胞に、配列番号１
〜配列番号３のスペーサーＤＮＡを含む、スペーサーＤ
ＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクターをリポフェクトアミン
（商標。ギブコＢＲＬ社製）試薬により、次のように導
入した。

【００６３】スペーサーＤＮＡ挿入発現ベクター（１．
５μｇ）、リポフェクトアミン試薬（７．５μｌ）及び
ＤＭＥＭ（最終容量０．２ｍｌに調整）を混和し、保温
（室温で４５分間）した。更にＤＭＥＭ（０．８ｍｌ）
を添加し、発現ベクター導入用溶液とした。この溶液に
よりＮＩＨ３Ｔ３細胞（約１０⁵ 個／直径３５ｍｍ培養
皿）を１２時間培養し、仔ウシ血清を２０％含有するＤ
ＭＥＭを１ｍｌ添加し、更に１２時間培養した。その
後、直径１００ｍｍの培養皿に該細胞を播種し、２５
０、４００又は８００μｇ／ｍｌのＧ４１８（ギブコＢ
ＲＬ社製）を添加した培養液により、約１４日間培養し
た。尚、Ｇ４１８を添加した培養液により細胞を培養し
たのは、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター
が組み込まれたため、該発現ベクターの第２のＤＮＡ配
列にコードされ、かつＩＲＥＳを介してｍＲＮＡから蛋
白質に翻訳されたＮｅｏにより、Ｇ４１８耐性能が付与
された細胞株を選別するためである。

【００６４】ｂ）細胞内に蓄積したβ−ｇａｌ蛋白質の
検出方法 細胞内に蓄積したβ−ｇａｌ蛋白質の検出は、常法［ジ
ェー・マレイ(J. Murray) 編、「ジーン・トランスファ
ー・アンド・エクスプレッション・プロトコール」(Gen
e transfer and expression protocol) 、第１版、第２
１７ページ、ヒューマナ・プレス(Humana Press)、１９
９１年］により次のとおり行った。培養皿に付着してい
る細胞をダルベッコリン酸緩衝液（日水製薬社製）によ
り２回洗浄し、２％ホルムアルデヒド及び０．２％グル
タールアルデヒド含有０．１Ｍリン酸緩衝液により固定
した（４℃、５分）。ダルベッコリン酸緩衝液により３
回洗浄し（室温）、０．１％Ｘ−ｇａｌ（宝酒造社製）
・３ｍＭフェリシアン化カリウム・３ｍＭフェロシアン
化カリウム及び１．３ｍＭ塩化マグネシウム含有０．１
Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ７．３）により２４時間、３７℃
で保温し、第１のＤＮＡ配列であるβ−ｇａｌ遺伝子の
産物である細胞内に蓄積したβ−ｇａｌ蛋白質の活性に
より青染される細胞コロニー（以下「陽性細胞コロニ
ー」と記載することがある）数の、全コロニー数に対す
る比率を算出した。

【００６５】（３）試験結果 この試験の結果は、表１に示すとおりである。表１は、
陽性細胞コロニー出現率に及ぼすスペーサーＤＮＡ長の
効果についてまとめたものであり、スペーサーＤＮＡを
挿入していない対照β−ｇａｌ発現ベクター２を遺伝子
導入した細胞において、２５０μｇ／ｍｌのＧ４１８を
添加した培養液を用いて発現ベクター導入細胞コロニー
を単離した場合、約１１％が陽性細胞コロニーであっ
た。Ｇ４１８濃度を４００及び８００μｇ／ｍｌまで増
加させても陽性細胞コロニー出現率はほとんど変化せ
ず、それぞれ約１５％及び約２１％であった。

【００６６】

【表１】

【００６７】一方、スペーサーＤＮＡを組込んだ本発明
の発現ベクターでは、陽性コロニー出現率の増加は顕著
であり、特に、５９ｂｐのスペーサーＤＮＡを組込んだ
β−ｇａｌ発現ベクター２を遺伝子導入し、２５０μｇ
／ｍｌのＧ４１８を添加した培養液により発現ベクター
導入細胞コロニーを単離した場合、全細胞コロニーの約
６２％が、第１のＤＮＡ配列であるβ−ｇａｌ遺伝子の
産物であるβ−ｇａｌを大量に生産している陽性細胞コ
ロニーであった。Ｇ４１８濃度を４００及び８００μｇ
／ｍｌまで増加させた場合、陽性細胞コロニー出現率は
更に増加し、それぞれ約７３％及び約８７％であった。

【００６８】Ｘ−ｇａｌ染色は、比較的感度の低いβ−
ｇａｌ蛋白質の検出方法［ジェー・マレイ(J. Murray)
編、「ジーン・トランスファー・アンド・エクスプレッ
ション・プロトコール」(Gene transfer and expressio
n protocol) 、第１版、第２１７ページ、ヒューマナ・
プレス(Humana Press)、１９９１年］であることから、
スペーサーＤＮＡを挿入したことにより、第１のＤＮＡ
配列にコードされるβ−ｇａｌが大量に生産されたため
に、陽性細胞コロニー数が増加したことが認められた。
また、最適なスペーサーＤＮＡ長は、配列番号２のスペ
ーサーＤＮＡに例示される５９ｂｐであることが判明し
た。

【００６９】＜試験例４＞この試験は、Ｘ−ｇａｌ染色
における陽性細胞株（以下「陽性細胞株」と記載するこ
とがある）取得率に及ぼす配列番号２のスペーサーＤＮ
Ａに例示される５９ｂｐのスペーサーＤＮＡを挿入し
た、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２の
効果について、更に詳しく試験した。すなわち、遺伝子
導入細胞株を単離し、一定期間の継代培養後であって
も、導入遺伝子が安定して組み込まれた樹立細胞株の取
得率について検討した。

【００７０】（１）試料の調製 参考例１及び参考例２と同一の方法により、対照β−ｇ
ａｌ発現ベクター１及び対照β−ｇａｌ発現ベクター２
を調製した。また、実施例５と同一の方法により、配列
番号２に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含
む、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２を
調製した。

【００７１】（２）試験方法 ａ）動物細胞へのβ−ｇａｌ発現ベクターの遺伝子導入
方法 試験例３と同一の方法により、対照β−ｇａｌ発現ベク
ター１、対照β−ｇａｌ発現ベクター２、又はスペーサ
ーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２を、ＮＩＨ３Ｔ
３細胞に遺伝子導入した。試験例３と同一の方法によ
り、種々の濃度のＧ４１８を添加した培養液により約１
４日間培養後、常法（東京大学医科学研究所制癌研究部
編、「細胞工学実験プロトコール」、第１版、第２２４
ページ、秀潤社、１９９１年）により、クローニングシ
リンダーを用いて細胞コロニーを単離し、更に約１週間
継代培養し、樹立細胞株とした。

【００７２】ｂ）細胞内に蓄積したβ−ｇａｌ蛋白質の
検出方法 試験例３と同一の方法により行った。

【００７３】（３）試験結果 この試験の結果は、表２に示すとおりである。陽性細胞
株取得率に及ぼすスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現
ベクター２の効果についてまとめた表２に示されるよう
に、第１のＤＮＡ配列にコードされるβ−ｇａｌ、及び
第２のＤＮＡ配列にコードされるＮｅｏをそれぞれ別個
のｍＲＮＡとして発現する対照β−ｇａｌ発現ベクター
１を遺伝子導入した細胞株では、８００μｇ／ｍｌのＧ
４１８を添加した培養液により発現ベクター導入細胞株
を単離した場合、約７％が陽性細胞株であった。一方、
β−ｇａｌとＮｅｏをコードするポリシストロニックｍ
ＲＮＡを発現し、かつ５９ｂｐのスペーサーＤＮＡが挿
入されているスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベク
ター２を遺伝子導入した場合、２５０μｇ／ｍｌのＧ４
１８により、発現ベクター導入細胞株を選別することに
より、全コロニーの約３３％が陽性細胞株であった。Ｇ
４１８濃度を４００及び８００μｇ／ｍｌに増加させた
場合、陽性細胞株取得率は更に増加し、それぞれ約５３
％及び約６２％に達した。

【００７４】

【表２】

【００７５】一方、スペーサーＤＮＡが挿入されていな
いβ−ｇａｌとＮｅｏをコードするポリシストロニック
ｍＲＮＡを発現する対照β−ｇａｌ発現ベクター２を遺
伝子導入した細胞では、Ｇ４１８濃度を４００及び８０
０μｇ／ｍｌまで増加させても陽性細胞株取得率はほと
んど変化せず、それぞれ約２１％及び約１３％であっ
た。

【００７６】以上の結果から、スペーサーＤＮＡ挿入β
−ｇａｌ発現ベクター２を遺伝子導入することにより、
ＮＩＨ３Ｔ３細胞に例示される特殊でない細胞株におい
ても、導入した遺伝子にコードされる蛋白質を、高度に
生産する細胞株を高効率に単離し得ることが立証され
た。また、約Ｇ４１８に例示される遺伝子導入細胞株の
樹立に要する高価である薬剤の使用量を減少させても、
導入遺伝子産物を高度に生産する細胞株を高効率で樹立
できることが示された。

【００７７】＜試験例５＞この試験は、導入した遺伝子
にコードされる蛋白質を、高度に生産する細胞株の濃縮
における、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクタ
ーの効果について検討するために行った。

【００７８】（１）試料の調製 参考例１及び参考例２と同一の方法により、対照β−ｇ
ａｌ発現ベクター１及び対照β−ｇａｌ発現ベクター２
を調製した。また、実施例５と同一の方法により、配列
番号２に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含
む、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２を
調製した。

【００７９】（２）試験方法 試験例４と同一の方法により、対照β−ｇａｌ発現ベク
ター１、対照β−ｇａｌ発現ベクター２又はスペーサー
ＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２を、ＮＩＨ３Ｔ３
細胞へ遺伝子導入した。試験例３と同一の方法により、
種々の濃度のＧ４１８を添加した培養液により約１４日
間培養後、発現ベクター導入細胞コロニー数を計測し
た。

【００８０】（３）試験結果 この試験の結果は、図３に示すとおりである。図３は、
Ｇ４１８濃度とＧ４１８耐性コロニー数との関係を示
し、図の縦軸及び横軸は、それぞれＧ４１８耐性コロニ
ー数（対数）及びＧ４１８濃度を示し、図中●、▲及び
○は、それぞれスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベ
クター２を遺伝子導入した細胞、対照β−ｇａｌ発現ベ
クター２を遺伝子導入した細胞及び対照β−ｇａｌ発現
ベクター１を遺伝子導入した細胞を示す。

【００８１】図３から明らかなとおり、本発明のβ−ｇ
ａｌとＮｅｏをコードするポリシストロニックｍＲＮＡ
を発現し、かつ５９ｂｐのスペーサーＤＮＡが挿入され
ているスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２
を遺伝子導入した細胞の場合、Ｇ４１８濃度を２５０μ
ｇ／ｍｌから８００μｇ／ｍｌまで増加させた場合、細
胞コロニー数は顕著に減少し、８００μｇ／ｍｌのＧ４
１８により得られた細胞コロニー数は、２５０μｇ／ｍ
ｌのＧ４１８により得られた細胞コロニー数の約８％で
あった。

【００８２】一方、スペーサーＤＮＡが挿入されていな
いβ−ｇａｌとＮｅｏをコードするポリシストロニック
ｍＲＮＡを発現する対照β−ｇａｌ発現ベクター２を遺
伝子導入した細胞では、細胞コロニー数は顕著に減少せ
ず、Ｇ４１８濃度を２５０μｇ／ｍｌから８００μｇ／
ｍｌまで増加させた場合、同様の比較において、細胞コ
ロニー数は約２８％になった。また、第１のＤＮＡ配列
にコードされるβ−ｇａｌ及び第２のＤＮＡ配列にコー
ドされるＮｅｏをそれぞれ別個のｍＲＮＡとして発現す
る対照β−ｇａｌ発現ベクター１を遺伝子導入した細胞
でも、細胞コロニー数は大きく減少せず、Ｇ４１８濃度
を２５０μｇ／ｍｌから８００μｇ／ｍｌまで増加させ
た場合、細胞コロニー数は約４４％であった。

【００８３】また、スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発
現ベクター２を遺伝子導入した場合、対照β−ｇａｌ発
現ベクター１叉は２を遺伝子導入した場合に比較し、相
対的に細胞コロニーの出現数は大きく減少した。すなわ
ち、８００μｇ／ｍｌのＧ４１８により対照β−ｇａｌ
発現ベクター２導入細胞を選別した場合と比較し、２５
０μｇ／ｍｌのＧ４１８によりスペーサーＤＮＡ挿入β
−ｇａｌ発現ベクター２を選別した場合、細胞コロニー
の出現数は対照β−ｇａｌ発現ベクター２を導入した場
合の約７０％まで減少した。

【００８４】以上の結果から、本発明のスペーサーＤＮ
Ａ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２を遺伝子導入し、選択
薬剤の濃度を増加した場合、導入遺伝子産物高度生産細
胞株の濃縮が、効果的に行われていることが立証され
た。

【００８５】＜参考例１＞（対照β−ｇａｌ発現ベクタ
ー１の製造） スペーサーＤＮＡとＩＲＥＳをコードするＤＮＡを含有
せず、第１のＤＮＡ配列と第２のＤＮＡ配列にコードさ
れる蛋白質を別個のプロモーターより、別個のｍＲＮＡ
として発現する対照β−ｇａｌ発現ベクター１を、公知
の方法（村松正実編、「ラボマニュアル遺伝子工学」、
第１版、丸善社、１９８８年）により次のとおり製造し
た。

【００８６】ｐａｃｔ−β−ｇａｌＤＮＡ（ニッポンジ
ーン社製）からニワトリβ−アクチンプロモーターＤＮ
Ａ配列断片を分取し、これをプラスミドＤＮＡ ｐＲｃ
／ＣＭＶ（インビトロジェン社製、ＳＶ４０プロモータ
ーによりＮｅｏを発現する）のＣＭＶプロモーターＤＮ
Ａ配列中のＤＮＡ切断制限酵素ＮｃｏＩ認識部位、及び
クローニング部位のＨｉｎｄＩＩＩ認識部位の間に挿入
し、連結した。

【００８７】得られたプラスミドのニワトリβ−アクチ
ンプロモーターＤＮＡ配列の下流に、プラスミドＤＮＡ
ｐＳＧ５（ストラタジーン社製）から分取したウサギ
β−グロビン遺伝子イントロンＩＩスプライシングアク
セプター部位ＤＮＡ配列を挿入し、連結した。

【００８８】更に、上記プラスミドのウサギβ−グロビ
ン遺伝子イントロンＩＩスプライシングアクセプター部
位ＤＮＡ配列の下流にプラスミドＤＮＡ ｐＭＳＧ（フ
ァルマシア社製）のＳＶ４０ポリＡシグナルＤＮＡ配列
断片を分取し、これを挿入し、連結した。

【００８９】更に、プラスミドＤＮＡ ｐＣＨ１１０
（ファルマシア社製）に含有される、β−ｇａｌをコー
ドするＤＮＡ配列を分取し、ニワトリβ−アクチンプロ
モーターＤＮＡ配列と、ＳＶ４０ポリＡシグナルＤＮＡ
配列の間に、第１ＤＮＡ配列として挿入し、連結した。

【００９０】このようにして、スペーサーＤＮＡとＩＲ
ＥＳをコードするＤＮＡ配列を含有せず、第１のＤＮＡ
配列及び第２のＤＮＡ配列にコードされる蛋白質（それ
ぞれβ−ｇａｌ及びＮｅｏ）を別個のプロモーターよ
り、別個のｍＲＮＡとして発現する図４の（ａ）に示す
対照β−ｇａｌ発現ベクター１を製造した。

【００９１】図４は、各種発現ベクターの模式図であ
り、（ａ）（ｂ）及び（ｃ）は、それぞれ本参考例の対
照β−ｇａｌ発現ベクター１、参考例２の対照β−ｇａ
ｌ発現ベクター２及び実施例４〜実施例６の本発明のβ
−ｇａｌ発現ベクターを示す。

【００９２】＜参考例２＞（対照β−ｇａｌ発現ベクタ
ー２の製造） 第１のＤＮＡ配列（β−ｇａｌ）と第２のＤＮＡ配列
（Ｎｅｏ）の間にＩＲＥＳをコードするＤＮＡ配列を有
するが、スペーサーＤＮＡが挿入されていない第１のＤ
ＮＡ配列と第２のＤＮＡ配列にコードされる蛋白質を発
現することのできるポリシストロニックｍＲＮＡを発現
する対照β−ｇａｌ発現ベクター２［図４（ｂ）］を、
公知の方法（村松正実編、「ラボマニュアル遺伝子工
学」、第１版、丸善社、１９８８年）により、次のとお
り製造した。

【００９３】ｐＣＩＴＥ−１（ノバゲン社製）に含まれ
るＡＴＧ−１１配列を有するＥＭＣＶのＩＲＥＳをコー
ドするＤＮＡ配列を分取し、対照β−ｇａｌ発現ベクタ
ー１のβ−ｇａｌをコードするＤＮＡ配列とＮｅｏをコ
ードするＤＮＡ配列との間に挿入し、連結し、対照β−
ｇａｌ発現ベクター２を製造した。尚、ＡＴＧ−１１配
列がＮｅｏの開始ＡＴＧコドンになるように連結した。

【００９４】

【実施例】以下に、実施例を示して本発明をさらに具体
的に説明するが、本発明は、以下の実施例に限定される
ものではない。

【００９５】

【実施例１】（配列番号１のスペーサーＤＮＡの製造） （１）スペーサーＤＮＡの製造に用いるオリゴヌクレオ
チドプライマーの製造 本発明のスペーサーＤＮＡを、ＰＣＲにより製造するた
め、プライマーとして用いる次のオリゴヌクレオチド
を、全自動ＤＮＡ合成機（ＡＢＩ社、３８１Ａ）を用い
て公知の方法［ヌクレイック・アシッズ・リサーチ（Nu
cleic Acids Research）、第１２巻、第４５３９ペー
ジ、１９８４年］により合成した。

【００９６】プライマー（１）： 5'-GCTGGCCACAAGAGACAGGATGAGGATC-3'（配列番号４） プライマー（２）： 5'-GAGCACAGCTGCGCAAGGAA-3'（配列番号５） プライマー（３）： 5'-GCTGGCCAAGGCTTGACCGACAATTG-3'（配列番号６）

【００９７】（２）配列番号１に記載の塩基配列を有す
るスペーサーＤＮＡの製造 プラスミドＤＮＡであるｐＲｃ／ＣＭＶ（インビトロジ
ェン社製）を鋳型として、プライマー（１）及び（２）
を用いて、公知の方法［ヘンリー・エー・エルリッチ
（Henry A. Erlich ）編、「ＰＣＲテクノロジー」、第
１版、第３１ページ、ストックトン・プレス（Stockton
Press）、１９８９年］によりＰＣＲを行い、配列番号
１に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含有す
るＤＮＡ断片を製造した。

【００９８】増幅したＤＮＡ断片を含むＰＣＲ産物をア
ガロースゲル電気泳動に供し、エチジウムブロマイド染
色により可視化し、所望するＤＮＡ断片を含むアガロー
ス断片を切り出した。アガロース断片の５倍重量の１０
ｍＭＴｒｉｓ−塩酸（ｐＨ７．５）、１ｍＭＥＤＴＡ溶
液を添加し、保温し（６５℃、５分間）、再びアガロー
スを溶解した。その後、等量のフェノール溶液を添加
し、混和し、遠心（１０，０００×ｇ、室温、３分間）
し、上清中に含まれるＤＮＡ断片をエタノール沈澱法に
より回収し、本発明の配列番号１に記載の塩基配列を有
するスペーサーＤＮＡを含有するＤＮＡ断片を得た。

【００９９】

【実施例２】（配列番号２のスペーサーＤＮＡの製造） プラスミドＤＮＡであるｐＲｃ／ＣＭＶ（インビトロジ
ェン社製）をＤＮＡ切断制限酵素ＳｍａＩ（宝酒造社
製）及びＭｓｃＩ（東洋紡社製）により処理した。配列
番号２のスペーサーＤＮＡを含有する処理液をアガロー
スゲル電気泳動に供し、エチジウムブロマイド染色によ
り可視化し、所望のＤＮＡ断片を含むアガロース断片を
切り出した。アガロース断片の５倍重量の１０ｍＭＴｒ
ｉｓ−塩酸（ｐＨ７．５）、１ｍＭＥＤＴＡ溶液を添加
し、保温し（６５℃、５分間）、再びアガロースを溶解
した。その後、等量のフェノール溶液を添加し、混和
し、遠心（１０，０００×ｇ、室温、３分間）し、上清
中に含まれるＤＮＡ断片をエタノール沈澱法により回収
し、５’末端に実施例１と同一の方法により化学合成し
たリンカーＤＮＡ ５’−ＡＴＧＧ−３’をＤＮＡリガ
ーゼにより連結し（１６℃、３０分間）、配列番号２に
記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含有するＤ
ＮＡ断片を得た。

【０１００】

【実施例３】（配列番号３のスペーサーＤＮＡの製造） ｐＲｃ／ＣＭＶ（１００ｎｇ）をＤＮＡ切断制限酵素Ｓ
ｍａＩ（宝酒造社製）及びＮｒｕＩ（宝酒造社製）によ
り消化し、Ｔ４ ＤＮＡポリメラーゼと共に保温し（３
７℃、５分間）、両末端を平滑化した。次に、Ｔ４ Ｄ
ＮＡリガーゼと共に保温（１６℃、３０分間）し、両末
端を連結した。該プラスミドＤＮＡを鋳型とし、前記プ
ライマー（２）及び（３）を用い、実施例１と同一の方
法により、配列番号３に記載の塩基配列を有するスペー
サーＤＮＡを含有するＤＮＡ断片を得た。

【０１０１】

【実施例４】（スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベ
クター１の製造） 実施例１で製造した配列番号１に記載の塩基配列を有す
るスペーサーＤＮＡを含有するＤＮＡ断片、及び対照β
−ｇａｌ発現ベクター２をＤＮＡ制限酵素ＭｓｃＩ（東
洋紡社製）により消化し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼ（宝酒
造社製）と共に保温し、（１６℃、３０分間）し、配列
番号１に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを対
照β−ｇａｌ発現ベクター２に挿入し、所望のスペーサ
ーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター１［図４（ｃ）］
を製造した。

【０１０２】

【実施例５】（スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベ
クター２の製造） ＡＴＧ−１１配列を含有するＥＭＣＶのＩＲＥＳのＤＮ
Ａ配列を含有するプラスミドＤＮＡ ｐＣＩＴＥ−１
（１００ｎｇ）、及びｐＢＣ−ＳＫ（＋）（１００ｎ
ｇ、クローンテック社製）を、ＤＮＡ制限酵素ＡｃｃＩ
（宝酒造社製）及びＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）により消
化し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼと共に保温し（１６℃、３
０分間）、連結することによって、ｐＢＣ−ＳＫ（＋）
にＡＴＧ−１１配列を含むＥＭＣＶのＩＲＥＳをコード
するＤＮＡ配列を挿入した。該ＩＲＥＳをコードするＤ
ＮＡ配列を有するｐＢＣ−ＳＫ（＋）（１００ｎｇ）
を、ＤＮＡ切断制限酵素ＭｓｃＩ及びＸｂａＩ（いずれ
も宝酒造社製）により消化し、ＤＮＡ切断制限酵素Ｓｍ
ａＩ及びＸｂａＩにより消化した対照β−ｇａｌ発現ベ
クター１と混和し、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼと共に保温し
（１６℃、３０分間）、配列番号２に記載の塩基配列を
有するスペーサーＤＮＡを組込んだ所望のスペーサーＤ
ＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベクター２［図４（ｃ）］を製
造した。

【０１０３】

【実施例６】（スペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発現ベ
クター３の製造） 実施例３と同一の方法により、実施例２で製造した配列
番号３に記載の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡを含
むＤＮＡ断片、及び対照β−ｇａｌ発現ベクター２を処
理し、配列番号３に記載の塩基配列を有するスペーサー
ＤＮＡを含有する所望のスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａ
ｌ発現ベクター３［図４（ｃ）］を製造した。

【０１０４】

【発明の効果】以上詳述したとおり本発明は、スペーサ
ーＤＮＡ及び該ＤＮＡを組込んだ発現ベクターに関する
ものであり、本発明によって奏せられる効果は次のとお
りである。 １）特殊な宿主細胞株を用いることなく、第１のＤＮＡ
配列にコードされる有用な蛋白質を高度に生産する細胞
株を容易に樹立することができる。 ２）遺伝子導入された細胞株の単離及び維持に要する、
高額な薬剤の使用量を減少することができる。

【０１０５】

【配列表】

配列番号：１ 配列の長さ：３１ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ配列 GCCACAAGAG ACAGGATGAG GATCGTTTCG C 31

【０１０６】配列番号：２ 配列の長さ：５９ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ 配列 GGGGAGCTTG GATATCCATT TTCGGATCTG ATCAAGAGAC AGGATGAGGA TCGTTTCGC 59

【０１０７】配列番号：３ 配列の長さ：１２２ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ 配列 GCCAAGGCTT GACCGACAAT TGCATGAAGA ATCTGCTTAG GGTTAGGCGT TTTGCGCTGC 60 TTCGGGGAGC TTGGATATCC ATTTTCGGAT CTGATCAAGA GACAGGATGA GGATCGTTTC 120 GC 122

【０１０８】配列番号：４ 配列の長さ：２８ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ 配列 GCTGGCCACA AGAGACAGGA TGAGGATC 28

【０１０９】配列番号：５ 配列の長さ：２０ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ 配列 GAGCACAGCT GCGCAAGGAA 20

【０１１０】配列番号：６ 配列の長さ：２８ 配列の型：核酸 鎖の数：両形態 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸 合成ＤＮＡ 配列 GCTGGCCAAG GCTTGACCGA CAATTG 26

【図面の簡単な説明】

【図１】 本発明のスペーサーＤＮＡを有するＤＮＡ断
片のアガロースゲル電気泳動写真である。第１列、第２
列、第３列及び第４列はそれぞれＤＮＡサイズマーカ
ー、配列番号１、配列番号２及び配列番号３に記載の塩
基配列を含有するＤＮＡ断片を示し、図の左側の数字は
サイズマーカーの塩基対（ｂｐ）の数を示す。

【図２】 本発明のスペーサーＤＮＡを組込んだ発現ベ
クターのアガロースゲル電気泳動写真である。第１列、
第２列、第３列及び第４列は、それぞれＤＮＡサイズマ
ーカー、配列番号１、配列番号２及び配列番号３に記載
の塩基配列を有するスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇａｌ発
現ベクターを示し、図の左側の数字はＤＮＡサイズマー
カーの塩基対（ｋｂｐ）の数を示す。

【図３】 Ｇ４１８濃度とＧ４１８耐性コロニー数との
関係を示す。図の縦軸及び横軸は、それぞれＧ４１８耐
性コロニー数（対数）及びＧ４１８濃度を示し、図中
●、▲及び○は、それぞれスペーサーＤＮＡ挿入β−ｇ
ａｌ発現ベクター２を遺伝子導入した細胞、対照β−ｇ
ａｌ発現ベクター２を遺伝子導入した細胞及び対照β−
ｇａｌ発現ベクター１を遺伝子導入した細胞を示す。

【図４】 各種発現ベクターの模式図である。（ａ）
（ｂ）及び（ｃ）は、それぞれ本参考例の対照β−ｇａ
ｌ発現ベクター１、参考例２の対照β−ｇａｌ発現ベク
ター２及び実施例４〜実施例６の本発明のβ−ｇａｌ発
現ベクターを示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 山内 雪香 神奈川県座間市東原５丁目１番83号 森永 乳業株式会社生物科学研究所内

Claims (13)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 所望の蛋白質をコードする第１のＤＮＡ
   配列とマーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列とを含
   み、第２のＤＮＡ配列の５’末端側に内部リボゾーム認
   識部位（インターナル・リボゾーマル・エントリー・サ
   イト）を有する真核細胞用発現ベクターに挿入されるス
   ペーサーＤＮＡであって、 前記内部リボゾーム認識部位の３’末端に存在し、真核
   生物のリボゾームが認識し得るＡＵＧ配列をコードする
   ＡＴＧ配列と、第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列との
   間に挿入され、かつ該塩基配列の少なくとも一部は蛋白
   質に翻訳されないか、又は該塩基配列が全部翻訳された
   場合であっても第２のＤＮＡ配列と読取りフレームがず
   れているスペーサーＤＮＡ。
2. 【請求項２】 塩基配列が、少なくとも３１塩基対から
   なる請求項１に記載のスペーサーＤＮＡ。
3. 【請求項３】 塩基配列が、配列番号１〜配列番号３に
   記載のいずれかの塩基配列を有する請求項１又は２記載
   のスペーサーＤＮＡ。
4. 【請求項４】 マーカー遺伝子が、薬剤耐性遺伝子であ
   る請求項１〜３のいずれか一項に記載のスペーサーＤＮ
   Ａ。
5. 【請求項５】 次のａ）〜ｆ）のＤＮＡ配列； ａ）プロモーター活性を有するＤＮＡ配列、 ｂ）所望の蛋白質をコードする第１のＤＮＡ配列、 ｃ）内部リボゾーム認識部位をコードするＤＮＡ配列、 ｄ）スペーサーＤＮＡ配列、及び ｅ）マーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列、 を含む真核細胞用発現ベクターであって、 前記スペーサーＤＮＡ配列は、前記内部リボゾーム認識
   部位の３’末端に存在し、真核生物のリボゾームが認識
   し得るＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列と、第２のＤ
   ＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列との間に挿入され、かつ該配
   列の少なくとも一部は蛋白質に翻訳されないか、又は該
   塩基配列が全部翻訳された場合であっても第２のＤＮＡ
   配列と読取りフレームがずれている、発現ベクター。
6. 【請求項６】 前記真核生物のリボゾームが認識し得る
   ＡＵＧ配列をコードするＡＴＧ配列が、リボゾームによ
   り翻訳コドンとして認識され得る請求項５記載の発現ベ
   クター。
7. 【請求項７】 内部リボゾーム認識部位をコードするＤ
   ＮＡ配列が、ピコルナウイルス科に属する脳心筋炎ウイ
   ルス由来である請求項６記載の発現ベクター。
8. 【請求項８】 内部リボゾーム認識部位をコードするＤ
   ＮＡ配列の３’末端が、少なくともＡＴＧ−１１配列ま
   で含む請求項７記載の発現ベクター。
9. 【請求項９】 スペーサーＤＮＡが、少なくとも３１塩
   基対からなる請求項５〜８のいずれか一項に記載の発現
   ベクター。
10. 【請求項１０】 スペーサーＤＮＡが、配列番号１〜配
    列番号３に記載の塩基配列を有する請求項５〜９に記載
    の発現ベクター。
11. 【請求項１１】 所望の蛋白質が、β−ガラクトシダー
    ゼ遺伝子である請求項５〜請求項１０に記載の発現ベク
    ター。
12. 【請求項１２】 マーカー遺伝子がネオマイシン耐性遺
    伝子である請求項５〜請求項１１に記載の発現ベクタ
    ー。
13. 【請求項１３】 所望の蛋白質をコードする第１のＤＮ
    Ａ配列とマーカー遺伝子である第２のＤＮＡ配列とを含
    み、第２のＤＮＡ配列の５’末端側には内部リボゾーム
    認識部位を有する真核細胞用発現ベクターを宿主真核細
    胞に導入し、該細胞の生育にマーカー遺伝子の発現を必
    要とする物質の存在下で該ベクター導入細胞を培養する
    ことによって、第２のＤＮＡ配列とともに第１のＤＮＡ
    配列のコピー数を増幅させる方法において、 前記内部リボゾーム認識部位の３’末端に存在し、真核
    生物のリボゾームが認識し得るＡＵＧ配列をコードする
    ＡＴＧ配列と、第２のＤＮＡ配列の開始ＡＴＧ配列との
    間に、少なくとも一部は蛋白質に翻訳されないか、又は
    該塩基配列が全部翻訳された場合であっても第２のＤＮ
    Ａ配列と読取りフレームがずれているスペーサーＤＮＡ
    を挿入し、第２のＤＮＡの翻訳効率を低下させることに
    よって、増幅を促進させることを特徴とする方法。