JPH0746986A - ビフィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオチド及びこれを用いる検出方法 - Google Patents
ビフィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオチド及びこれを用いる検出方法Info
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- JPH0746986A JPH0746986A JP4287095A JP28709592A JPH0746986A JP H0746986 A JPH0746986 A JP H0746986A JP 4287095 A JP4287095 A JP 4287095A JP 28709592 A JP28709592 A JP 28709592A JP H0746986 A JPH0746986 A JP H0746986A
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Abstract
ドバクテリウム・アドレッセンティスrRNA由来のオ
リゴヌクレオチド及び該オリゴヌクレオチドの標識体を
プローブとして用いることを特徴とするビフィドバクテ
リウム・アドレッセンティスの検出方法。 【効果】 本発明のオリゴヌクレオチドは、ビフィドバ
クテリウム・アドレッセンティスに特異的なものであ
り、この標識体をプローブとして用いれば、ビィフィド
バクテリウム・アドレッセンティスを迅速、簡便かつ正
確に検出することができる。
Description
・アドレセンティス(Bifidobacterium
adolescentis)に特異的なオリゴヌクレ
オチド及びこれを用いる検出方法に関する。
定は、主に、表現形質、すなわち、糖分解性状、ガス産
生、発育温度などを検査することにより行われている。
また、近年、DNA−DNAホモロジーによる判定も行
われるようになっている〔Benno,Y.,微生物,
Vol.6,p.1〜12(1990)〕。
質を基にした同定法は、試験者の熟練を必要とし、しか
も結果が出るまでにかなり時間がかかるという問題があ
った。また、DNA−DNAホモロジーによる方法で
は、菌体からDNAを抽出する必要があるが、ビフィド
バクテリウムはグラム陽性菌であるため、グラム陰性菌
に比べ溶菌操作が煩雑であるという欠点があった。更
に、DNA−DNAホモロジーの値は、類縁性の高い種
同士では高い値を示し、明確な差が出ないという問題も
あった。
ち、特にビフィドバクテリウム・アドレセンティスを、
迅速、簡便かつ正確に検出できる方法が望まれていた。
発明者らは鋭意研究を行った。すなわち、ビフィドバク
テリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオ
チドの標識体をプローブとして用い、これとのハイブリ
ッドを検出する方法を考え、また、その際に塩基数20
前後の短いオリゴヌクレオチドプローブを用いれば、核
酸の抽出を必要としないin situハイブリダイゼ
ーションを行うことができ、1塩基の相違まで検出でき
るという利点が得られる。また、プローブのターゲット
として16S rRNA上の種特異的な部分を選べば、
16S rRNAの配列は最近、系統分類の指標として
信頼性の高いものとされており、また、菌体当たりのr
RNAのコピー数が染色体DNAに比べ非常に多いた
め、検出感度が上がると考えられる。
クテリウムの標準株を酵素的に溶菌し、一般的な方法に
より粗高分子RNAを抽出し、この粗高分子RNAから
逆転写酵素を用いて16S rRNAの部分塩基配列を
決定した。得られた塩基配列を比較した結果、後記式
(1)で表わされる配列がビフィドバクテリウム・アド
レセンティスに特異的であり、プライマーとして有用で
あること、更にその標識体をプローブとして用いれば、
ビフィドバクテリウム・アドレセンティスを迅速、簡便
かつ正確に検出できることを見出し、本発明を完成し
た。
ィドバクテリウム・アドレセンティスrRNA由来のオ
リゴヌクレオチド及び該オリゴヌクレオチドの標識体を
プローブとして用いることを特徴とするビフィドバクテ
リウム・アドレセンティスの検出方法を提供するもので
ある。
ンティスに特異的なオリゴヌクレオチドは、前記式
(1)で表わされるRNA配列もしくはこれに相補的な
式(2)又は(3)で表わされるDNA配列を有するも
のである。 5′GCTCCCAGTCAAAAGCG 3′ (2) 3′CGAGGGTCAGTTTTCGC 5′ (3) また、これらの配列を有してプローブとしての機能を有
するものであれば、5′又は3′末端側に他の塩基が付
加されたものであってもよい。
NA自動合成機等を用いて化学的に合成することによ
り、またビフィドバクテリウム・アドレセンティスの遺
伝子から酵素的に切り出すことにより調製することがで
きる。
ィドバクテリウム・アドレセンティスを検出するには、
このオリゴヌクレオチドの標識体をプローブとして用
い、このプローブとサンプルとのハイブリダイゼーショ
ンを行い、ハイブリッド形成の有無を調べることによ
り、ビフィドバクテリウム・アドレセンティスの存在を
確認することができる。
などの検出可能な標識物を、通常の方法によりオリゴヌ
クレオチドに結合させたものを使用することができる。
標識体とサンプルとのハイブリダイゼーションは、通常
の方法により、例えばドットブロットハイブリダイゼー
ションやその他の方法により行うことができ、また、形
成したハイブリッドの確認は、オートラジオグラフィー
などにより標識物を検出することにより行えばよい。ま
た、これらのオリゴヌクレオチドのうちで、前述の式
(2)又は、(3)で表わされるDNA断片をプライマ
ーとして用い、PCR(ポリメラーゼ・チェーン・リア
クション)法によって菌種の同定を行うこともできる。
すなわち、同定の対象となる菌体を溶菌し、該菌の遺伝
子に対して、指標とする式(2)又は(3)のDNA断
片をプライマーの1つとして加え、DNAポリメラーゼ
で処理する。その後、電気泳動等によりDNAの増幅
が、観察されれば、対象菌体は用いたDNA断片に対応
した遺伝子部分を保持していること、すなわち、同種の
菌であることが特定できる。
が、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
製)にグルコースを1%加えた培地で一昼夜培養した。
100mlの培養液を遠心集菌し、洗液(50mMトリス緩
衝液,1mM EDTA,pH7.4) で3回洗浄し、菌体
を洗液7.3mlに懸濁した。この菌懸濁液に、2M ス
クロ−ス2.3ml、M1 酵素(0.5mg/ml,生化学
工業社製) 0.33ml、及びリゾチーム (50mg/ml)
を0.07mlを加え、37℃で30分間振とうして溶菌
させた。この溶菌液に、EDTA溶液(50mM トリス
緩衝液, 250mM EDTA, pH8.0) 925μl及
びSDS溶液(20%ドデシル硫酸ナトリウム, 50mM
トリス緩衝液, 20mMEDTA, pH8.0) 575μ
lを加え、透明になるまで60℃で振とうした。この溶
液を、TE溶液(10mM トリス緩衝液, 1mM EDT
A, pH7.4)で飽和させたフェノール及びクロロホル
ム/イソアミルアルコール(24:1)により除タンパ
ク処理し、エタノールにより核酸を沈澱させた。
トリス緩衝液, 1mM EDTA,pH7.4)に溶解
し、等量の4M NaClを加え、一晩、氷上に静置し
て、高分子RNAを沈澱させた。遠心分離により、高分
子RNAを集め、更にTE溶液に溶解した後、エタノー
ル沈澱により塩を除いた。得られたRNAは、70%エ
タノール中で−70℃で保存するか、又は適当な濃度の
TE溶液に溶解して用いた。
ス RNAシークエンスキット(ベーリンガー・マンハイム
社製)を用い、プライマーとして次の塩基配列を有する
ユニバーサルプライマー(Lane et al.,P
roc.Natl.Acad.Sci.USA.,8
2,6955−6959(1985))を用いてRNA
から直接シークエンスを行った。 G(A 又はT)ATTACCGCGGC(G 又はT)GCTG このプライマーがハイブリダイズするのは、E.col
i 16S rRNAの519−536に相当する。シ
ークエンスの際、(1)で得た高分子RNA溶液(2.
0 mg /ml) 4μl、プライマー(20μg/ml) 1.
5μl及び蒸留水1.5μlを混合して、アニーリング
用溶液とした。また、電気泳動は6%ポリアクリルアミ
ド、8M尿素のゲルを用いて行った。
ティスに種特異的な配列の選択 (2)で行ったシークエンスを比較することにより、ビ
フィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的な部分
を選択した。選択した部分を他の種のシークエンスの結
果と共に図1に示した。
ヌクレオチド(以下、プローブPADと呼ぶ)をDNA
合成機(アプライド・バイオシステムズ, Model
380B)を用いて合成し、常法により精製した。この
プローブPADとプローブPPR (実施例1(2)でシ
ークエンスに用いたユニバーサル・プライマー)を、メ
ガラベル(宝酒造社製)を用いて5′末端を32Pでラベ
ルした。
トブロッティング 適当な量の高分子RNAを蒸留水10μlに溶解し、1
00%ホルムアミド20μl、ホルムアルデヒド7μl
及び、20倍SSC(3M NaCl, 0.3M クエ
ン酸Na溶液)2μl加えた。この溶液を68℃で15
分間振とうしてRNAを変性させた後、2倍量の20倍
SSCを加え、この溶液をマイクロフィルトレーション
装置(バイオ−ドット,バイオ−ラッド製)にセットし
たナイロンメンブレン(ジーンスクリーンプラス,デュ
ポン社製)にアプライした。メンブレンを室温で乾かし
た後、ホルムアルデヒドを除くために、80℃で30分
間加熱した。
(0.9M NaCl,0.09M クエン酸Na溶
液)に浸した後、プラスチックバックに入れ、プレハイ
ブリダイゼーション液 (6倍SSC,5×デンハート氏
液,1%SDS,0.1mg/ml サーモン精子DNA,
10%デキストランサルフェート)を加え、50℃で1
時間振とうした。プレハイブリダイゼーション液をハイ
ブリダイゼーション液(6倍SSC,2×デンハート氏
液,1%SDS,10%デキストランサルフェート,約
106 cpm の標識プローブ)に置き換えて、50℃で、
2時間振とうした。メンブレンをプラスチックバックか
ら取り出し、6倍SSCで室温、5 分間の洗いを3回繰
り返した。更に、より厳重に、60℃で30分間以上洗
った。適当な時間オートラジオグラフィーを行うか、β
−スコープ(ベタジェン社製)を用いて結果を見た。表
2に、菌株から抽出した高分子RNAを用いて行ったド
ットブロットハイブリダイゼーションの結果をハイブリ
ッド形成が認められたものを+、認められなかったもの
を−で示した。
は、すべてのRNAとハイブリダイズした。このこと
は、このプローブの配列が、バクテリア16S rRNA
に共通な部分に相補的なものであることを、よく反映し
ており、プローブPPRは、ターゲットとするRNAの
存在を確認するポジィティブコントロールとして用いて
いる。一方、プローブPADを用いた場合は、ビフィド
バクテリウム・アドレセンティスから抽出したRNAに
はハイブリダイズしているが、他の種や、系統分類学的
に近いとされているアクチノミセス属の1つであるアク
チノミセス・ボビスを含む他の属からのものにはハイブ
リダイズしていない。すなわち、プローブPADはビフ
ィドバクテリウム・アドレセンティスに対して特異的で
あることが確認された。
ドットブロットハイブリダイゼーションを行った。 (1)菌体のホルムアルデヒドによる固定 一晩培養した約 3 ml の菌体を遠心、及びリン酸緩衝液
(145 mM NaCl,100 mM リン酸ナトリウム,
pH7.4)で洗浄した後、菌体を 5 ml のリン酸緩衝液
に懸濁した。これにホルムアルデヒドを1%になるよう
に加え、時々振りながら 30 分間氷中に置く。遠心集菌
及びリン酸緩衝液による洗浄を2回繰り返した後、菌体
を適当な量の145 mM NaCl、10 mM トリス緩衝
液、pH7.4に懸濁した。 (2)ドットブロットハイブリダイゼーション 固定した菌体をバイオ−ドット(バイオ−ラッド社製)
を用いてジーンスクリーン・プラス(デュポン社製)に
ドットブロットした後、メンブレンを80℃で1時間加
熱した。ハイブリダイゼーションは実施例2(3)と同
様に行った。菌株の固定した菌体を用いて行ったドット
ブロットハイブリダイゼーションの結果をハイブリッド
形成が認められたものを+、認められなかったものを−
として表3、表4に示す。
ローブPPRを用いた場合、表2と同様、属や種に関わ
らずすべての菌体にハイブリダイゼーションが認めら
れ、どの菌体もよく固定されているのがわかる。一方、
プローブPADを用いた場合、ビフィドバクテリウム・
アドレセンティスのすべての株にはハイブリッド形成が
認められた。すなわち、プローブPADはビフィドバク
テリウム・アドレセンティスという種に特異的であるこ
とが確認された。
ドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なものであ
り、この標識体をプローブとして用いれば、ビフィドバ
クテリウム・アドレセンティスを迅速、簡便かつ、正確
に検出することができる。
ifidobacterium adolescent
is) 配列 CGCUUUUGACUGGGAGC 配列番号:2 配列の長さ:17 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジ−:直鎖状 配列の種類:cDNA to rRNA 起源 生物名:ビフィドバクテリウム・アドレセンティス(B
ifidobacterium adolescent
is) 配列 5′GCTCCCAGTCAAAAGCG 3′ 配列番号:3 配列の長さ:17 配列の型:核酸 鎖の数:一本鎖 トポロジ−:直鎖状 配列の種類:cDNA to rRNA 起源 生物名:ビフィドバクテリウム・アドレセンティス(B
ifidobacterium adolescent
is) 配列 3′CGAGGGTCAGTTTTCGC 5′
である。
Claims (2)
- 【請求項1】 式(1) CGCUUUUGACUGGGAGC (1) で表わされる配列又はこれに相補的な配列を有するビフ
ィドバクテリウム・アドレセンティスrRNA由来のオ
リゴヌクレオチド - 【請求項2】 請求項1記載のオリゴヌクレオチドの標
識体をプローブとして用いることを特徴とするビフィド
バクテリウム・アドレセンティスの検出方法。
Priority Applications (5)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4287095A JPH0746986A (ja) | 1992-10-02 | 1992-10-02 | ビフィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオチド及びこれを用いる検出方法 |
EP93111615A EP0581171B1 (en) | 1992-07-20 | 1993-07-20 | Species-specific oligonucleotides for bifidobacteria and a method of detection using the same |
US08/093,884 US5443951A (en) | 1992-07-20 | 1993-07-20 | Species-specific oligonucleotides for bifidobacteria and a method of detection using the same |
DE69316801T DE69316801T2 (de) | 1992-07-20 | 1993-07-20 | Spezies-Spezifische Oligonukleotide gegen Bifidobakterien und Verfahren zum Nachweis unter Verwendung derselben |
CA002100919A CA2100919A1 (en) | 1992-07-20 | 1993-07-20 | Species-specific oligonucleotides for bifidobacteria and a method of detection using the same |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4287095A JPH0746986A (ja) | 1992-10-02 | 1992-10-02 | ビフィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオチド及びこれを用いる検出方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
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JPH0746986A true JPH0746986A (ja) | 1995-02-21 |
Family
ID=17712995
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4287095A Pending JPH0746986A (ja) | 1992-07-20 | 1992-10-02 | ビフィドバクテリウム・アドレセンティスに特異的なオリゴヌクレオチド及びこれを用いる検出方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0746986A (ja) |
-
1992
- 1992-10-02 JP JP4287095A patent/JPH0746986A/ja active Pending
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