JPH06501008A

JPH06501008A - オリゴ糖あるいはオリゴ糖抗原または抗体による転移能および侵襲性の抑制

Info

Publication number: JPH06501008A
Application number: JP3516668A
Authority: JP
Inventors: トヨクニ　タツシ; センイチロウハコモリ
Original assignee: ザ　バイオメンブレン　インスティテュート
Priority date: 1990-08-30
Filing date: 1991-08-29
Publication date: 1994-01-27
Also published as: AU8667791A; CA2089375A1; WO1992004048A3; EP0546122A1; AU659808B2; WO1992004048A2

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】オリゴ糖あるいはオリゴ糖抗原または抗体による転移能および侵襲性の抑制技術分野本発明は、一般的には、腫瘍細胞の転移および侵襲性の抑制、より詳細には、腫瘍関連炭水化物抗原（ｔｕｍｏｒ−ａｓｓ。

ｃｉａｔｅｄ　ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ　ａｎｔｉｇｅｎｓ）およびそれらのオリゴ糖誘導体を包含する薬物の使用による前記抑制に関するもの莫大な資金および人的資源の投入にもかがわらず、癌は依然として、主たる死因の一つである。現行の癌治療では、悪性腫瘍を生じた患者の約５０％しか治癒しない。ヒトでの殆どの悪性腫瘍において、転移が主たる死因である。

転移は、遠隔部位における二次腫瘍コロニーの形成である。それは多段階プロセスで、その第一段階が腫瘍の侵襲である。腫瘍細胞が、上皮基底膜などの宿主組織バリアーを局所的に侵襲し、間質に達し、そこから血管（またはリンパ管）に入り、さらに散在する。血管壁の上皮層に侵入したのち、循環腫瘍細胞は血流内へ移行し、内皮細胞管腔表面あるいは露出基底膜に接着することにより、標的器官の前毛細血管細静脈に捉えられる。腫瘍細胞は再び血管壁に侵入して、臓器実質に入る。結局、管外に遊出した腫瘍細胞が、それが生じたところとは異なる組織で増殖する。

殆どのヒト悪性腫瘍では、遠隔転移は、−次腫瘍を治療している頃には、余りにも小さくて、検出できないことが多い。さらに、広範囲に及ぶ転移コロニーのイニシェーションは、転移性疾患の臨床症状が明瞭になるよりも前に起るのが普通である。転移がサイズおよび年齢（ａｇｅ）で変動すること、転移の解剖学的部位が散在すること、およびそれらの構成が雑多であることは、いずれも、手術による除去を妨げ、転移コロニーへ送達されうる抗癌剤の濃度を限られたものとする因子である。

転移の治療および予防への現在のアプローチにおけるそれらの難点のため、当該分野では、腫瘍細胞の転移能を抑制するための改良された方法および組成物がめられている。本発明はこの要求を満たし、さらに他の関連した利点を提供するものである。

発明の要約要約すれば、本発明は、腫瘍細胞の転移能および侵襲性を抑制するための種々の試薬（ａｇｅｎｔ）および方法を提供する。本発明の一面では、生体試料（ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ）内で腫瘍細胞の転移能を抑制する方法が提供される。

その方法は、生体試料を、（ａ）鑑別診断上意義（ｄｉｆｆｅｒｎｔｉａｌｐｒｏｇｎｏｓｔｉｃ　５１ｇｎ１ｆｉｃａｎｃｅ）のある腫瘍関連炭水化物抗原、（ｂ）これらの抗原に特異的に結合する抗体、（Ｃ）これ゛ら抗原のオリゴ糖成分、および（ｄ）これらの抗原またはオリゴ糖の複合体（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ　）からなる群より選ばれた少なくとも一種の試薬とインキュベートすることからなり、この試薬は該試料の転移能を抑制するものである。好適な生体試料としては、細胞培養物および生体液が挙げられる。

本発明は、他の一面で、温血動物において腫瘍細胞の転移能を抑制する薬物の製造に使用するための試薬を提供する。該試薬は、（ａ）鑑別診断上意義のある腫瘍関連炭水化物抗原、（ｂ）これらの抗原に特異的に結合する抗体、（Ｃ）これら抗原のオリゴ糖成分および（ｄ）これら抗原またはオリゴ糖の複合体からなる群より選択され、該試薬は腫瘍細胞の転移能を抑制し得る。

関連した一面では、本発明は、オリゴ糖の生体内寿命を延長するのに有用な種々の糖質複合体（ｇｌｙｃｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ）を提供する。該複合体は、ポリ（エチレングリコール）と結合したオリゴ糖を含む。

本発明において使用するためのその他のオリゴ糖としては、ラクトース、ラクト −Ｎ−テトロース、メチルβ−りげられる。オリゴ糖類は、個々に用いても、互いに組合わせて用いてもよい。

本発明のこれらおよびその他の面は、以下の詳細な説明および添付の図面を参照すれば、明らかになるであろう。

図面の簡単な説明図１は、その腫瘍中で一定の（ｄｅｆｉｎｅｄ）腫瘍関連炭水化物抗原（ＴＡＣＡ）を発現するまたは発現しない癌患者の生存率をグラフによって示す。パネルＡは、ＭＡｂ　ＭＩＡ−１５−５によってめた肺偏平上皮癌におけるＨ／Ｌｅｙ／Ｌｅ５抗原の発現を表す。パネルＢは、結腸癌におけるシアロシル−Ｌ　ｅＸ（ｓｉａｌｏｓｙｌ−Ｌ　ｅＸ）の発現を表す。パネルＣは、結腸癌におけるシアロシル−Ｔｎの発現を表す。パネルＤは、卵巣癌患者の血清中のシアロシル− Ｔｎレベルを表す。

図２は、ＢＬ６細胞の肺コロニー沈着物（ｌｕｎｇ　ｃｏｌｏｎｙｄｅｐｏｓｉｔ）の数および大きさに及ぼすメチルβ一旦−ラクトシトまたはフェニルβ−Ｄ −チオラクトシトの効果をグラフによって示す。ＢＬ６を、対照培地、０．１Ｍメチルβ−Ｄ−ラクトシト（ｒＭｅ−β−ラクトシト」）または０．１Ｍフェニルβ一旦−チオラクトシト（ｒｐｈｅ−β−８−ラクトシト」）とともにブレインキュベートした。２Ｘ１０４個の細胞を、Ｃ５７／Ｂ　Ｌマウスに静脈内注射した。

２１日目に肺コロニー数をめ、各カラムに示したように、コロニーを直径に基づいて分類した（＞１ｍｍ対＜１ｍｍ）。コロニー数は肺片側当りで表した。実験数（ｎ）は括弧内に示した。

図３は、ＢＬ６細胞の肺コロニー沈着物の数および大きさに及ぼすメチルβ一旦 −ラクトシト前投与の効果をグラフによって示す。メチルβ一旦一ラクトシド（用量１ｍ１）をＣ５７／Ｂ　Ｌマウスに腹腔的注射した。１０分後、８１６メラノーマ細胞を静脈内注射した。１９日目に肺コロニーを計数し、大きさを調べた。Ａ群は対照動物（メチルβ−ローラクトシト無投与）を、Ｂ群および０群は、それぞれ０．２５Ｍおよび０．５Ｍメチルβ−Ｄ−ラクトシトを注射した動物を表す。各群について、カラム１はコロニーの総数を、カラム２は直径＞１ｍｍのコロニーの数を、カラム３は直径＜１ｍｍのコロニーの数をそれぞれ表す。実験数はｎとして表しである。

図４は、メチル（Ｍｅ）−β−ラクトシトの転移抑制効果をグラフによって示す。腫瘍細胞を静脈内注射し、続いて対照ＰＢＳ　（Ａ）；０．２５Ｍ　Ｍｅ−β −ラクトシト（Ｂ）；０．５Ｍ　Ｍｅ−β−ラクトシト（Ｃ）；０．５Ｍラクトース（Ｄ）；０．２５Ｍ　Ｎ−アセチルラクトサミン（Ｅ）；または０．５Ｍ　Ｍｅ−β−ガラクトシド（Ｅ）を腹腔内注射した。

図５は、ＬａｃＣｅｒへのメラノーマ細胞の接着がＧＭ３−ＬａｃＣｅｒ相互作用に基づくことをグラフによって示す。転移能の順序は、ＢＬ６＞ＦＩＯ＞Ｆｌ＞＞ＷＡ４である。パネルＡは、ＬａｃＣｅｒ被覆固相へのメラノーマ細胞接着の順序を示す。パネルＢは、ＬａｃＣｅｒ／フィブロネクチン（ＦＮ）共被覆固相へのメラノーマ細胞接着の順序を示す。パネルＣは、インテグリン依存性接着（ｉｎｔｅｇｒｉｎ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ａｄｈｅｓｉｏｎ　）を示す。

図６は、ＬａｃＣｅｒ　（パネルＡ）および内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）（パネルＢ）へのメラノーマ細胞（ＢＬ６）の接着がＬａｃＣｅｒおよびＧＭ３によって抑制されることをグラフによって示す。

図７は、Ｈ−ＬｅｙおよびＨ−Ｈ相互作用をグラフによって示す。パネルＡは、種々の糖脂質に結合するＨ１リポソームを示す。パネルＢは、種々の糖脂質に結合するＬｅＹリポソームを示す。

発明の詳細な説明上述のように、本発明は、腫瘍細胞の転移能および侵襲性を抑制するための試薬および方法に向けられている。多くの腫瘍細胞が転移能、すなわち、遠隔の部位で二次腫瘍コロニーを形成する能力を有している。悪性腫瘍細胞源としては、メラノーマ、肺癌、乳癌、結腸直腸癌、ならびに膀胱癌、前立腺癌などの泌尿生殖器癌がある。本発明においては、腫瘍細胞の転移能は、（ａ）腫瘍関連炭水化物抗原（Ｔ　Ａ　ＣＡ）、（ｂ）これらのＴＡＣＡに対する抗体、（Ｃ）これらＴＡＣＡのオリゴ糖成分または（ｄ）かかるＴＡＣＡの複合体、たとえば、リシルリシンの多価複合体、ＴＡＣＡを担持するグリコスフィンゴリピド（ＧＳＬ）リポソームなどの使用によって抑制（すなわち、腫瘍細胞が転移する能力を抑制）することができる。

ＴＡＣＡエピトープは、内皮細胞、血小板および基底膜との相互作用を通して、腫瘍細胞との接着において重要な役割を演じ、それによって腫瘍の転移、侵入が起りうる。

接着の機構は、炭水化物（ＣＨＯ）−ＣＨＯ相互作用、ＣＨＯ−レクチン相互作用またはセレクチンファミリー相互作用に基づいている可能性がある。活性化内皮細胞または血小板への種々の腫瘍細胞の接着は、主として、Ｌｅｃｃａｍまたはセレクチンスーパーファミリー（たとえばＥＬＡＭ−１、ＧＭＰ−１４０）が媒介する。タイプｌ鎖シアロシル−Ｌｅ（ＳＡ−Ｌｅ）を発現するが、シアロシル−Ｌｅ（ＳＡ−Ｌｅ）は発現しないＣｏ１ｏ２０５腫瘍細胞は、内皮細胞に接着する。この接着は、抗ＳＡ−ＬｅａＭＡｂにより抑制されたが、５Ａ−Ｌｅ　ＭＡｂによっては抑制されなかった。これらの知見は、５Ａ−Ｌｅ８だけでなく５Ａ−Ｌｅ　もまたＥＬＡＭ−１およびＧＭＰ−１４０によって認識される重要なリガンドであることを、示唆している。

本発明においては、腫瘍の転移および侵襲を、腫瘍細胞の接着をブロックすることにより抑制し、それによって転移性細胞の拡散は有意に減少し、または排除する。本発明で使用するのに適したＴＡＣＡは、鑑別診断上意義のあるもの（すなわち、侵襲能または転移能と明らかに関係している可能性のあるＴＡＣＡ）である。本発明でいうかかるＴＡＣＡは、類似の腫瘍の侵襲性、転移および臨床予後について、かかるＴＡＣＡの発現を示すものと示さないものとを比較することにより見分けることができる。本発明において使用するのに好ましいＴＡＣＡとしては、Ｈ／Ｌｅｂ　。

ｙ／Ｌｅ　１ンアロシル−Ｌｅ　（ＳＡ−Ｌｅ　）、シアロシル−Ｌｅ（ＳＡ− Ｌｅ）およびシアロシル−Ｔｎ（ＳＡ−Ｔｎ）が挙げられる。かかるＴＡＣＡの誘導体としては、Ｌｅ　二量体、シアロシル−Ｌｅ　二量体（ｓｉａｌｏｓｙｌ −ｄｉｍｅｒｉｃ　Ｌ　ｅ　）およびトリ７−ｙシルＬ　ｅ　（ｔｒｉｆｕｓｃｏｓｙｌ　Ｌ　ｅ　）が挙げられる。

シアロシル−Ｌｅ　（構造１）、シアロシル−Ｌｅ　−量体（構造２）、Ｌｅ　二量体（ｄｉｍｅｒｉｃ　Ｌｅ　）　（構造３）、トリフコシルＬ　ｅ　（ｔｒｉｆｕｃｏｓｙｌ　Ｌ　ｅ　）　（構造４）、Ｌｅｂ　（構造５）　、Ｈ（構造５）、５Ａ−Ｌｅａ（構造７）、５Ａ−Ｔｎ（構造８）およびＧＭ３　（構造９）の各構造を以下に示す。

構造１：構造２：構造３：構造４：構造５：構造６：Ｆｕａｙｌ−２Ｇａｌｊ１−３Ｇ１ｃＮＡｉＪ１−３ＧａｌＪ１−Ｒ構造７：ｕａ１１構造８：ＮｅＬＬＩＩｖｌ！！２−６ＧａＪＮＡｃａｌ−αＳｅｒ／Ｔｈｒ構造９：ＮｅｕＡｃａ２−３０ａｌ！ｊ１−４０Ｉｃｊ１−Ｃｅｒ上述の通り、本発明で使用するためのＴＡＣＡは、鑑別診断上の意義を示す。たとえば、かかる鑑別診断上の意義は、Ｈ／　Ｌ　ｅ　／　Ｌ　ｅ　ｂ抗原（ＭＡｂ　ＭＩＡ−１５−５によって特定される）を発現する腫瘍が、これら抗原を発現しない腫瘍よりもずっと悪い患者予後を示したという事　′実によって、説明できる。たとえば、図ＩＡに示したように、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅ５を発現する肺細胞偏平上皮癌患者の５年間生存率は１１％でしかなかった（すなわち、８９％が死亡した）が、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂを発現しない比較可能な患者の５年間生存率はおよそ６２％であった。５Ａ−Ｌｅ　および５Ａ−Ｔｎ抗原の発現を示す腫瘍対示さない腫瘍の場合にも、類似の結果が得られた。より明確には、図ＩＢに示したように、５Ａ−Ｌｅ　を発現する結腸癌の患者では、５年間生存率は１５％に過ぎなかったが、この抗原を発現しない比較可能な患者では、約５０％がこの期間を超えて生存した。別の研究では、５Ａ−Ｔｎを発現しない初期結腸癌の患者での５年間生存率は１００％であったが、これに対して、５Ａ−Ｔｎを発現する患者では、７５％であった（図ＩＣ参照）。図ＩＤに示すように、５Ａ−Ｔｎ抗原を発現するおよび発現しない卵巣癌患者の間で、同様の、しかしより明瞭な差が観察された。

上述のように、適当なＴＡＣＡに対する抗体も、本発明において採用し得る。ここでいうそのような抗体には、モノクローナル抗体およびポリクローナル抗体が包含され、それらは、完全分子であっても、かかる分子の断片であっでも、あるいはそれらの機能上の均等物であってもよい。

該抗体は、遺伝子工学によるものであってもよい。抗体断片の例としては、Ｆ　（ａｂ’　）　、Ｆａｂ’　、ＦａｂおよびＦｖが挙げられる。

簡潔に説明すれば、ポリクローナル抗体は、動物を免疫し、その後その血清を採取することにより製造できる。免疫は、たとえば、ウサギ、ラットまたはマウスへの全身的投与、たとえば皮下、牌内または筋肉的注射によって行う。

通常、初回免疫に続いて、血清採取前に一回以上の追加抗原（ｂｏｏｓｔｅｒ　）免疫を行うことが好ましい。かかる方法は周知であり、多くの文献に記載されている。

本発明では、ポリクローナル抗体を用いてもよいが、モノクローナル抗体（ＭＡｂ）の方が好ましい。本発明における好適なＭＡｂとしては、マウスまたはヒト起源のもの、あるいはヒトおよびマウス抗体の両者の部分部分を結合したちの（すなわち、マウス抗体の抗原結合領域（ａｎｔｉｇｅｎｂｉｎｄｉｎｇ　ｒｅｇｉｏｎ）プラス　ヒト抗体の定常領域（ｃｏｎｓｔａｎｔｒｅｇｉｏｎ　）　）などのキメラ抗体が挙げられる。ヒト抗体およびキメラ抗体は、当業者に既知の諸方法によって製造できる。ヒト抗体およびヒト−マウスキメラ抗体は、臨床投与時に、マウス抗体に比して抗−抗体を生成させ難いため、有利である。

ＭＡｂは、通常、ケーラー（Ｋｏｈｌｅｒ）およびミルスティン（Ｍｉｌｓｔｅｉｎ）の方法（Ｎａｔｕｒｅ　２５６：４９５−４９７．１９７５；Ｅｕｒ、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、　６：５１１−５１９．１９７６）ならびに彼らの初期の方法を改良した種々の技法（バーロウ（Ｈａｒｌｏｔ）およびレインド・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−（Ｃｏｌｄ　ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　）　、１９８８年、これの全体をここに引用して挿入する）によって製造できる。簡潔に述べれば、ＴＡＣＡ類またはそれらのオリゴ糖成分の一つで免疫した動物のリンパ節および／または膵臓をミエローマ（ｍｙｅｌｏｍａ）細胞と融合させてハイブリッド細胞系（「ハイブリドーマ」または「クローン」）を形成させる。各ハイブリドーマは、単一タイプの免疫グロブリンを分泌し、ミエローマ細胞と同様に、無限に細胞分裂する能力を有する。かかる分子をキャリアーに結合させて、それらの免疫原性を高めることが望ましい場合もある。

好適なキャリアーとしては、キーホール・リンペット・ヘモシアニン（ｋｅｙｈｏｌｅ　ｌｉｍｐｅｔ　ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ　）　、チログロブリン（ｔｈｙｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ）、ウシ血清アルブミン、およびこれらの誘導体が挙げられる。

ハイブリドーマを介するＭＡｂの製造の別法として、バクテリオファージおよび細菌を用いてＭＡｂ発現ライブラリーを創作する方法がある（たとえば、サストリーら、Ｐｒｏｃ、Ｎａｔｌ、Ａｃａｄ、Ｓｃｉ、ＵＳＡ　８６：５７２８．１９８９；ヒユーズら、５ｃｉｅｎｃｅ　２４６：１２７５．１９８９参照）。適当な特異性を示す抗体の選択は、当業者には自明であろう種々の方法によって実施できる。

本発明で使用するのに適したＭＡｂの代表的な例としては、ＭＩＡ−１５−５（ミャケおよびハコモリ、Ｂｉｏｃｈｅｍ、　３０：３３２８．１９９１）ならびにハコモリ、Ａｄｖａｎｃｅｓ　Ｉｎ　Ｃａｎｃｅｒ　Ｒｅ５ｅａｒｃｈ　５２：２５７−３３１．１９８９に引用されているＭＡｂ類が挙げられる。

上述のように、適当なＴＡＣＡのオリゴ糖成分も本発明で使用できる。ここに言う「オリゴ糖」という用語は、天然から導かれたオリゴ糖類、合成されたオリゴ糖類、ならびにＴＡＣＡオリゴ糖成分の部分を含むこれらの誘導体が包含される。

本発明において有用なその他のオリゴ糖としては、ラクトースならびにメチルβ 一旦−ラクトシト、ラクト−Ｎ−シトロース（Ｇａｌβ１−＝３ＧｌｃＮＡｃβ １−３Ｇａｌβ１→４Ｇ１ｃ）およびフェニルβ−Ｄ−チオラクトシトなどのラクトース誘導体が挙げられる。他のラクトース誘導体、たとえばエチルまたはフェニルラクトシト、メチルまたはエチルチオラクトシトも使用できる。

特定腫瘍の細胞の転移能を抑制するのに適したその他のオリゴ糖類は、腫瘍の転移能に関係する特定の炭水化物鎖の構造決定に基づいて同定することができる。

腫瘍の転移能に関係する炭水化物含有分子の同定は、グリコシダーゼ類およびグリコジルトランスフェラーゼ阻害剤の使用による方法を含めて、種々の方法で実施できる。脂質または蛋白質に結合した炭水化物の構造は、分解、電子衝撃直接プローブ（ＥＩ）および高速原子ボンバードメント（ＦＡＢ）を含めたマススペクトル、およびメチル化分析（それぞれ、たとえば、ヌーデルマンら、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ。

２６１：５４８７−５４９５．１９８６に記載の手法）に基づいて測定することができる。分解分析は、化学的におよび／または酵素的に、たとえばグリコシダーゼにより実施できる。分解分析により示唆された炭水化物配列は、メチル化分析（ハコモリ、Ｊ、Ｂｉｏｃｈｅｍ、　５５：２０５−２０８．１９６４）とそれに続くパーメチル化糖の化学イオン化マススペクトル（ステルナ−ら、Ａｒｃｈ。

Ｂｉｏｃｈｅｍ、Ｂｉｏｐｈｙｓ、　１５５：４６４−４７２．１９７４：レヴ工り−ら、Ｍｅｔｈ、Ｅｎｚｙｍ。

１、１３８：１３−２５．１９８７）によって決定できる。別法として、あるいはこれらの手法と共に、ノ々−メチル化グリカンについて、またζシそのままのグリカンの適宜の分解の後、ＥＩ質量分析（ＥＩ　ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ）を行ッテもよい（カンナギら、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、２５１．１９８８）。炭水化物配列の均一性は、そのままのまたはメチル化されたグリカンのプロトンＮＭＲおよびＦＡＢマススペクトルを含めて、種々の化学的および物理的基準に基づいて証明できる。いったん炭水化物配列が決定されれば、腫瘍細胞の転移能を抑制するのに適したオリゴ糖を選択することは、当業者にとっては自明であろう。

上に簡潔に述べたように、適当なＴＡＣＡまたはそれらのオリゴ糖成分の複合体、たとえばリシルリシンとの多価複合体やＴＡＣＡ担持グリコスフィンゴリピド（ＧＳＬ）リポソームも、本発明において使用できる。

複合体の成分は互いに、直接またはリンカ−基（１ｉｎｋｅｒｇｒｏｕｐ）を介して、共有結合していてもよい。各成分が互いに反応しうる置換基を有しているときには、それら成分の間での直接反応が可能である。たとえば、一方の成分にあるアミノ基またはスルフヒドリル基などの核性の基は、他方にあるカルボニル含有基、たとえば無水物や酸ハロゲン化物と、あるいは良好な脱離基、たとえばハロゲンを含有するアルキル基と反応できるであろう。

リンカ−基を介して複数成分を共有結合させることが望ましいこともある。種々の二官能性または多官能性試薬、ホモ官能性およびヘテロ官能性の両方（たとえばピアス・ケミカル社のカタログ、ロックフォード、イリノイに記載のもの）をリンカ−基として用いうろことは、当業者にとっては明らかであろう。リンカ− 基は、置換基の化学反応性を高め、か（して結合（カップリング）効率を高めるのに役立ちうる。化学反応性の向上は、さもなければ可能ではなかったであろう成分上の官能基の使用を容易にすることもできるであろう。たとえば、カルボキシル基を活性化できる。カルボキシル基の活性化としては、スクシンイミジルエステルなどの「活性エステル」の形成が挙げられる。

「活性エステル」なる語が請求核置換反応において高度に反応性のエステル類を指すことは既知のことである。

また、非共有結合によって成分が結合されている複合体を製造することが望ましい場合もある。たとえば、一種または二種以上のＴＡＣＡをＧＳＬリポソームの外表面に、先に述べたのと同様にして導入することができる（エツゲンスら、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、　２６４：９４７６−９４８４．１９８９；バラツリとコルン、Ｂｉｏｃｈｉｍ。

Ｂｉｏ　ｈ　ｓ、Ａｃｔａ　２９８：１０１５−１０１９゜１９７３　；ツカとパパハジョプーロス、Ｐｒｏｃ、Ｎａｔｌ、Ａｃａｄ、Ｓｃｉ、ＵＳＡ　ヱ５　：　４１９４−４１９８．１９７８）。

オリゴ糖の生体内寿命を増すことが望ましい場合もある。

本発明において開示したように、オリゴ糖類を、ポリ（エチレングリコール）などの直鎖両親媒性ポリマーに結合（すなわち共有結合）させることができる。オリゴ糖−ポリ（エチレングリコール）複合体を製造する方法の代表的な例は、オリゴ糖をスクシンイミジル基を持つように誘導したのち、末端アミノ基を持つポリ（エチレングリコール）と反応させるものである。後者の化合物は、一般式Ｎ　Ｈ２−（ＣＨ２ＣＨ２−０）　ｎ−ＣＨ３によって表される。式中、ｎは、一般的には、平均４４．７（すなわち分子量約２．０００）ないし１１２．９（すなわち分子量約５．　０００）である。

腫瘍細胞の転移能の抑制には、生体外（ｆｎ　ｖｉｔｒｏ）および生体内（ｉｎ　ｖｉｖｏ）での種々の用途、たとえば分離した腫瘍細胞あるいは腫瘍をもつ宿主の処置という用途がある。

生体外について言えば、上に述べたように、本発明は、生体試料内で腫瘍細胞の転移能を抑制する方法を提供する。

該方法は、生体試料を、（ａ）鑑別診断上意義のある腫瘍関連炭水化物抗原、（ｂ）これらの抗原に特異的に結合する抗体、（Ｃ）これら抗原のオリゴ糖成分および（ｄ）こ、　れら抗原またはオリゴ糖の複合体からなる群より選択した少なくとも一種の試薬とインキュベートすることを含み、該試薬は、該試料の転移能を抑制する。好適な生体試料としては、血液、尿、リンパ液、滑液、脳を髄液などの体液中の細胞培養物および細胞懸濁液が挙げられる。Ｔ　Ａ　ＣＡ。

オリゴ糖、またはそれらの複合体は、通常、最終濃度的０゜１〜ＬＭ、一般には約０．２〜０．５Ｍで、インキュベートする。インキュベーションは、一般に、３７℃で５〜１５分間行う。生体試料処理後、該試料は、たとえば転移能抑制効果確認のため、動物に注射または移植することができる。

本発明は、ヒトなどの温血動物において腫瘍細胞の転移能を抑制するための薬物および方法における前記試薬の使用法をも提供する。（ａ）鑑別診断上意義のある腫瘍関連炭水化物抗原、（ｂ）これらの抗原に特異的に結合する抗体、（ｃ）これら抗原のオリゴ糖成分および（ｄ）これら抗原またはオリゴ糖の複合体からなる群より該試料の転移能を抑制する試薬を一種または二種以上選択する。ＴＡＣＡ１オリゴ糖、またはそれらの複合体は、通常、約０．１〜ＬＭ、一般には約０．　２〜０．５Ｍの濃度で投与する。

ある特定の物質について、たとえばヒト以外の動物における生体外および生体内での研究に基づいて、最適有効量を定める方法は、当業者にとっては明らかであろう。覆々の投与経路を用いうる。一般に、投与は、静脈内にまたは体腔内、たとえば胸腔内または腹腔内に、あるいは切除腫瘍の層（ｂｅｄ）内に行う。上述のごときＴＡＣＡ、Ａｂ、オリゴ糖あるいはそれらの誘導体は、生理食塩水などの薬学的に許容される担体または希釈剤と組み合わせて投与してよい。さらに、かかる物質は、免疫療法剤または化学療法剤と組み合わせて投与してもよい。かかる物質および薬物の組み合わせが望まれる場合には、各々の化合物を順次に投与しても、同時に投与しても、あるいは組み合わせて、単一の組成物として投与してもよい。ＣＡＴスキャンなどの診断手法を、投与の前後に実施して、転移能抑制効果を確認することができる。

以下の実施例は、説明のために示すものであって、限定を意味するものではない。

実　施　例実施例１　ラクトース誘導体の合成ヘプタアセチルラクトシルイミデート（ツインメルマンら、Ｊ、Ｃａｒｂｏｈｙｄｒ、Ｃｈｅｍ、　ヱ：４３５゜１９８８）を、標準的操作法（グルンドラーとシュミット、Ｌｉｅｂｉｇｓ　Ａｎｎ、Ｃｈｅｍ、　１９８４：１８２６．１９８４）に従って、トリメチルシリルトリフルオロメタンスルホネートを含有する乾燥ジクロロメタン中で、メタノールと反応させた。シリカゲルカラムクロマトグラフィー（トルエン／ＥｔＯＡｃ　に１）により精製し、０．０１Ｍナトリウムメトキシドで脱−〇−アセチル化すると、メチルβ−Ｄ−ラクトシトが、イミデートから６８％の収率で得られた：融点２１１−２１２℃（文献値２０５℃、スミスとヴアン・クレーヴ工、Ｊ、Ａｍ、Ｃｈｅｍ。

Ｓｏｃ、　７７　二　３１５９．　１９５５）　；　［α］　＋１゜−−Ｄ３°　（旦　６，９、Ｈ２０）　（文献値；＋１°、旦　５゜０、Ｈ２Ｏ１同上文献）。

Ｂ、フェニルβ−Ｄ−チオラクトシトラクトース・オクタアセテート（ハドソンとクンツ、Ｊ。

Ａｍ、Ｃｈｅｍ、Ｓｏｃ、　４７：２０５２．１９２６）を、ジクロロメタン中０℃で、チオフェノールおよび５ｎＣ１４で処理しくニコラウら、工し工２」エエＣｈｅｍ、一旦」−生成物をＭ　ｅ　ＯＨ中Ｎ　ａ　ＯＭ　ｅで脱アセチル化し、アンノく一リスト（＾ｍｂｅｒｌｙｓｔ）Ｒ１５で中和した。生成物を、水を溶離剤として用い、バイオゲル（ＢｉｏＧｅｌ）　Ｐ−２カラムで精製し、続いて糖含有画分を凍結乾燥すると、フェニルβ−Ｄ−チオラクトシトが、白色無定形粉末として残った。

Ｃ８ラクト−Ｎ−テトロースこのオリゴ糖（Ｇａｌβ１−−３Ｇ１ｃＮＡｃβ１→３Ｇａ１β１→４Ｇｌｃ）は、人乳から、エタノールでの前処理および水を溶離剤としてのバイオゲルＰ− ２循環カラムクロマトグラフィーと、続いての水を用いての逆相（Ｃ１８）高速液体クロマトグラフィー（デユアとブ・νシュ、Ａｎａｌ、Ｂｉｏｃｈｅｍ、　１３３：１，１９８３）によって調製した。’Ｈ−ＮＭＲスペクトルは、基準試料（ａｕｔｈｅｎｔｉｃ　ｓａｍｐｌｅ）　（バイオカーブ・ケミカルズ、ルンド、スウェーデン（ＢｉｏＣａｒｂ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、　Ｌｕｎｄ、　Ｓｗｅｄｅｎ　）　）のそれと重なった。

Ｄ、β−Ｄ−ラクトシトのポリ（エチレングリコール）誘導体反応式は下記の通りである：＋　れｚ−（ｃ只、ｃａ２−ｏ７．　ＣＭ３体は、容易に入手できる３−スクシンイミドオキシカルボと末端アミノ基を有する（ザリプスキーら、Ｅｕｒ、Ｐ。

ｌｙｍ、Ｊ、よ旦：１１７７．１９８３）ポリ（エチレングリコール）メチルエーテル（平均分子量２０００　、アル）と２　（１６３ｍｇ、０．０８２ミリモル）とを、乾燥量処理すると、アセトンを溶離剤としたＬＨ−２０でのクロマトグラフィーの後に、β一旦−ラクトシドヘプタアセＭ水酸化ナトリウムにより室温で１時間かけて鹸化し、凍結乾燥すると、所望のラクトシドエが、定量的に得られた：トースおよびラクトース誘導体の作用Ａ、　細胞および動物Ｂ１６メラノーマ細胞系の高度に転移性のクローンＢＬ６は、もともと、ジーン・スターキー博士（モンタナ州立大、ボウズマン、モンタナ）から入手したものである。同系のＣ５７／Ｂ　Ｌマウスを用いて、クローンを、それらの転移能に従って、再選択した。Ｃ５７／Ｂ　Ｌマウスを、濾過空気雰囲気下に、プラスチックケージに入れておき、水およびペレット飼料を自由に摂取させた。２ｍＭグルタミンおよび１０％ウシ胎児血清（Ｆ　ＣＳ）を加えたＲＰＭ１１６４０中で細胞を培養し、２ｍＭ　ＥＤＴＡ含有燐酸緩衝食塩水（Ｐ　Ｂ　Ｓ）を用いて剥離した。トリパンブルー排除試験（ｔｒｙｐａｎ　ｂｌｕｅ　ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ　ｔｅｓｔ）で生存能力（ｖｉａｂｉｌｉｔｙ　）を試験した。

Ｂ、　転移能に対するオリゴ糖類の作用ＢＬ６細胞懸濁液（ＲＰＭＩ　１６４０培地１ｍｌ当り１−３×１０６個の細胞）を調製し、アリコート（ａｌｉｑｕ。

ｔ）を、種々濃度の各種オリゴ糖の存在下または不存在下に、３７℃で５−１０分間インキュベートした。インキュベーション後、たとえば、２００μｌ当り３　Ｘ　１０４または２×１０４個の細胞を（オリゴ糖による前処理を行ったのちまたは行わずに）８週令の雌性マウスの尾静脈に注射した。１８−２１日後に、マウスを殺し、肺をＰＢＳ（ｐＨ７，４）中の１０％ホルムアルデヒドによって固定し、解剖顕微鏡下に腫瘍細胞コロニーを計数し、これらの条件下での肺における転移性メラノーマコロニー数の背景値（ｂａｃｋｇｒｏｕｎｄ　ｖａｌｕｅ）を得た。コロニーの数および大きさに関するデータは、分散分析（ＡＮＯＶＡ）法によって統計学的に処理した。直径１ｍｍ以上のコロニーを大型、直径１ｍｍ未満のものを小型とした。

１つの実験では、ＢＬ６細胞を、種々濃度のラクトース、ラクト−Ｎ−テトｏ− ス（Ｇａｌβ１−３Ｇ１ｃＮＡｃβ１−３Ｇａｌβ１−４Ｇｌｃ）、メチルβ− Ｄ−ラクトシトまたはフェニルβ−Ｄ−チオラクトシトと共に、種々の時間にわたってインキュベートした。大部分の実験では、０．１Ｍの濃度を用い、細胞を３７℃で１０分間インキュベートし、４００Ｘｇで１０分間の緩和な遠心分離によって糖含有培地から分離し、ＲＰＭＩ　１６４０に再懸濁し、尾静脈に注射した（懸濁液０．２ｍｌ中に３Ｘ１０４信の細胞）。いくつかの実験では、２　Ｘ　１０４個の細胞を注射し、２１日後にコロニーを計数した。覆々の糖溶液中でインキュベートした後のＢＬ６細胞の生存力（ｖｉａｂｉｌｉｔｙ）および細胞成長能をトリパンブルー排除試験によって試験し、生体外の標準条件下にＲＰＭＩ　１６４０中で平板培養することにより、また退会を合わせた（ａｇｅ−ｍａｔｃｈｅｄ）Ｃ５７／ＢＬマウスに皮下接種することにより、試験して、腫瘍の増殖を調べた。

ラクトースおよびラクト−Ｎ−テトロースは、ＢＬ６細胞をこれらの糖類と共にブレインキュベートしたのち、同一条件下に細胞を静脈内注射したとき、肺における転移性コロニーを、それぞれ２６％および３６％減少させた。上と同じ条件下で０．１Ｍ、０．ＯＩＭまたは０．００５Ｍのメチルβ−Ｄ−ラクトシトでＢＬ６細胞を処理すると、対照（ｃｏｎｔｒｏｌ）と比較して、転移性腺コロニー数を（それぞれ）４３％、１６％、および８％減少した。０．１Ｍのメチルβ− Ｄ−ラクトシトが惹起した有意の減少は、別々の３回の実験で再現され、減少率は、終始一貫して、３５％と４５％の間であることが判明した。

第二の、完全に独立した一連の実験で、異なる条件下でメチルβ一旦一ラクトシドまたはフェニル−β一旦一チオラクトシドで処理した場合にも、転移コロニー形成が有意に減少した。すなわち、メチルβ−且−ラクトシトまたはフェニルβ −且−チオラクトシトと共にブレインキュベーションしたのちの総コロニー数はそれぞれ対照値の３５％または５０％に減少した。全ての実験において、大型コロニーの減少が、小型コロニーの減少よりもより明瞭で、とくに、フェニルβ− Ｄ−チオラクトシトでそうである（図２）。メチル−β−Ｄ−ラクトシトおよびフェニル−β−Ｄ−チオラクトシトは共に、細胞数の増加およびチミジンの取り込みに対して僅かな生体外刺激効果を示す。すなわち、腫瘍沈着に対する抑制作用は、生体外および生体内における細胞成長に対する作用とは関係しない。

別の実験では、メラノーマ細胞の転移に対するメチルβ−Ｄ−ラクトシトの影響を、該オリゴ糖を投与し、腫瘍細胞とインキュベートした後に調べた。すなわち、メチル−β−Ｄ−ラクトシト（濃度０．２５Ｍまたは０．５Ｍ）の１ｍｌ量をマウスに腹腔的注射した。１０分後、Ｂ１６メラノーマ細胞を静脈内注射した。

１９日後に、肺コロニーを計数した。腫瘍細胞接種に先立つメチルβ一旦一ラクトシドの注射により、肺での転移コロニー形成が有意に減少した（図３）。

さらに、メチル−β−ラクトシトの転移抑制効果に関する観察を、別のメチル− β−ラクトシト注射法にまで拡張した；すなわち、腫瘍細胞を静脈内注射したのち、メチル−β−ラクトシトを腹腔的注射した。これらの実験で、０゜２５０．５Ｍメチル−β−ラクトシトの注射は、肺の転移コロニー数を４０％−７０％減少させた（図４参照：Ａ＝ＰＢＳ対照、Ｂ＝０．２５Ｍ　Ｍｅ−β−ラクトシト；Ｃ＝０．５Ｍ　Ｍｅ−β−ラクトシト；Ｄ＝０．５Ｍ　ラクトース；Ｅ＝０．２５Ｍ　Ｎ−アセチルラクトサミン；Ｆ＝０．５Ｍ　Ｍｅ−β−ガラクトシド；腹腔的注射）。

他の実験で、転移能の程度を異にするマウスメラノーマＢ１６の諸変異体（ｖａｒｉａｎｔ）　（Ｂ　Ｌ　６／　Ｆ　１０／Ｆ　１／ＷＡ４）は、先にメラノーマ関連抗原であると同定されている（ヒラバヤシら、Ｊ、Ｂｉｏｌ、Ｃｈｅｍ、　２６０：１３３２８．１９８５；ノアズら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ。

１３９　：　３１７１，１９８７）ＧＭ３ガングリオシドの発現を同じ順序を示した。ＧＭ３は、内皮細胞表面で高度に発現されるＬａｃＣｅｒと相互作用する。ＬａｃＣｅｒ被覆固相または内皮細胞へのＢ１６変異体の接着の順序も、それらの転移能の順序と同じであった。これに対し、８１６変異体のインテグリン依存性接着は、ＢＩ６、ＦｌｏおよびＦｌとほぼ同じであった（図５参照）。これらの観察は、ＬａｃＣｅｒのＢＩ３接着が分子的ＧＭ３−ＬａｃＣｅｒ相互作用に基づくことを示唆する。内皮細胞への８１６メラノーマの接着が、メチル−β −ラクトシトによってだけでな（、ＬａｃＣｅｒリポソーム、Ｇｇ３Ｃｅ　ｒリポソームおよびＧＭ３リポソームによっても阻害されることも、証明された（図６参照）。

実施例３　ヒト肺腺癌細胞系でのシアロシル−Ｌｅ　−量体の発現と転移能Ａ、　細胞系ＫＵＭ−ＬＫ−２は、ヌードマウスにおいて自然肺転移を生じることが明らかにされているヒト非腺癌細胞系である。３５のヒト癌細胞系をヌードマウスでスクリーニングしたが、この細胞系のみが、ヌードマウスの肺で転移沈着物（ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ　ｄｅｐｏｓｉｔ）を生じた。ＫＵＭ−ＬＫ−２を親細胞系として用いて、限界希釈法（ｌｉｍｉｔｉｎｇ　ｄｉｌｕｔｉｏｎｔｅｃｈｎｉｑｕｅ）により、ＩＶ注射で肺転移を生じる亜細胞系（ｓｕｂ−ｃｅｌｌ　１ｉｎｅ）を得た。

限界希釈法の操作法は次の通りであった。ＫＵＭ−ＬＫ−２を、１０％ＦＣ８（ハイクローン、ローガン、ユタ（Ｈｙｃｌｏｎｅ、　Ｌｏｇａｎ　、ＵＴ）　）を加えたＲＰＭＩ　１６４０培地（ギブコ、グランド・アイランド、ニューヨーク（ＧＩＢＣＯ，Ｇｒａｎｄ　ｌ５ｌａｎｄ、　ＮＹ　）　）中、３７℃で、５％ＣＯ２／９５％空気雰囲気下に培養した。細胞を２ｍＭ　ＥＤＴＡ溶液で簡単に処理し、ＲＰＭＩ　１６４０で２回洗浄して、１０％ＦＣ８含有ＲＰＭＩ中の単細胞懸濁液を調製した。

細胞の生存率は、トリパンブルー排除染色によりめたところ、〉９８％であった。１００μ！当り１個の細胞を含有する細胞懸濁液を９６ウエルのマイクロタイタープレート（コーニング・グラス・ワークス、コーニング、ニューヨーク（Ｃｏｒｎｉｎｇ　Ｇｌａｓｓ　Ｗｏｒｋｓ、　Ｃｏｒｎｉｎｇ、　ＮＹ）　）の各ウェルに移し、２４時間連続培養した。ついで、各ウェルを、位相差顕微鏡で調べた。

安定した細胞形態を根拠に、限界希釈法によって得られた２５クローンの中から、転移能（ｒＭＰＪ　）を異にする３細胞系（ＨＡＬ−８、ＨＡＬ−２４およびＨＡＬ−３３）を選択した。それらの２５クローンは、もともと、安定した形態および連続した生体外細胞成長を示す６３クローンから選んだものである。これらのクローンはすべて、自然肺転移を生じた。しかし、ＩＶ注射したときには、肺転移沈着物形成において、クローン間に明瞭な差が認められた。

ＭＰの高い２クローン、ＭＰの低い５クローンおよびＭＰを示さない１８クローンが区別された。これらクローンのＩＶ注射による選択を繰り返して、終始一貫したＭＰを示す最も安定な亜細胞系（ｓｕｂ−ｃｅｌｌ　１ｉｎｅ　）を確立した。これらが、ｎｕ／ｎｕマウス肺に対して、それぞれＭＰの高い、低い、およびＭＰを示さないＨＡＬ−８、−３３および−２４であった（表１参照）。肉眼および顕微鏡検査から判断すると、これらの３つの亜細胞系はいずれも、他の器官あるいはリンパ節への転移を示さなかった。それらの亜細胞系は、ＫＵＭ−ＬＫ−２中にもともと存在していた安定な変異体を表す。染色体分析によれば、これらのサブクローンは独立したものである。

表　１クローンＨＡＬ−８、−２４および −３３のヌードマウスにおける転移能８ＨＡＬ−８１５１５，８（８−２３）２２　１５゜０　（１０−２２）４６　１６．３　（１１−２５）ＨＡＬ−２４１５０ＨＡＬ−３３１５４，３（３−７）ａ　上記各世代期にヌードマウスの尾静脈に注射（細胞数２×１０５）した。注射から５６日後、マウスを殺し、肺表面の転移性小結節（ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ　ｎｏｄｕｌｅｓ）を解剖顕微鏡の下で数えた。

ｂ　６匹の平均（括弧内は範囲）。

Ｂ、　細胞表面炭水化物エピトープの発現種々の炭水化物エピトープの細胞表面での発現を、Ｌｅｘ　（ＭＡｂ　５ＨＩ）、シアロシル−Ｌｅ　（ＭＡｂ　５Ｈ４）、シアロシル−Ｌｅ　二量体（ＭＡｂ　ＦＨ６）、Ｔ　（ＭＡｂ　ＨＨ８）　、Ｔｎ　（ＭＡｂ　ＩＦ５）およびシアロシル−Ｔｎ　（ＭＡｂ　ＴＫＨ２）に対する種々のモノクローナル抗体（ＭＡｂ）を用いたサイトフルオロメトリーにより解析した。使用した抗体は全て、それぞれのハイブリドーマからの培養上澄みを、免疫グロブリンとして１０μｇ／ｍｌに調整したものであった。

細胞を、０．２５％トリプシン、２ｍＭ　ＥＤＴＡ溶液によって培養フラスコから剥離した；各ＭＡｂ処理のために、１×１０５個の細胞を用意した。細胞をＭＡｂと共に４℃で１時間インキュベートし、ＲＰＭｒ　１６４０で２回洗った。

つぎに、ヤギ抗マウスＩｇＧまたはＩｇＭ−ＦＩＴＣ（ベーリンガー・マンハイム、インディアナポリス、インディアナ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ、　Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、　ＩＮ　））をＰＢＳで５０倍希釈して、加え、４℃で３０分間インキュベートした。最後に、細胞を３回洗い、ＰＢＳで再懸濁して、ＥＰｒＣ８ＰＲＯＦＩＬＥフローサイトメトリー（エピマウス、ハイアリ−１７０リダ（Ｅｐｉｃｓ、　ｆｌｉａｌｅａｈ。

ＦＬ）　）にかけた。これらの実験を、異なる３世代の細胞を用いて反復した。

亜細胞系ＨＡＬ−８、−２４および一３３表面における６種の炭水化物エピトープ（それぞれのＭＡｂによって定義される）の発現のパターンは、シアロシル− Ｌｅ　二量体の場合を除いて、はぼ同じプロフィールを示した（３種の亜細胞系について示した蛋白質プロフィールとして）。

特に、ＨＡＬ−８、−２４および−３３は、シアロシル−Ｌｅ　およびシアロシル−Ｔｎの構造を高度に且つ等しく発現することが見出された。これら３系の各々は、少量のＬｅ　およびＴｎを発現したが、Ｔは発現しなかった。これに対し、シアロシル−Ｌｅ　二量体の発現は、ＨＡＬ−８で高度であり、ＨＡＬ−３３で中程度であり、ＨＡＬ−２４で低度であった。

Ｃ２細胞のシアリダーゼ処理による転移の抑制細胞を、２ｍＭ　ＥＤＴＡ含有ＰＢＳを用いて剥離し、洗浄し、９倍体積のＰＢＳに再懸濁した。細胞懸濁液の１ｍｌを、０．２Ｕ／ｍｌのクロストリジウム・パーフリンジエンス（（’ｊｏｓｔｒｊｄｊｔｔｉ　ｐｅｒｆｒｔ’ｎｚｅｔｙｓ　）由来のシアリダーゼ（タイプＸ１シグマ・ケミカル・カンパニー、セントルイス、ミズーリ　（ｔｙｐｅ　Ｘ、　Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ、、　Ｓｔ、Ｌｏｕｉｓ。

ＭＯ））と共に、３７℃で５分間インキュベートした。インキュベーションの後、細胞を３回洗い、ＲＰＭＩ　１６４０で再懸濁し、ＭＰおよびシアロシル−Ｌｅ　−量体の発現を調べた。ＨＡＬ−８および−３３のＭＰは、細胞のシアリダーゼ処理によって完全に抑制された（下記表２参照）。シアロシル−Ｌｅ　−量体の発現は、血液に運ばれての転移において重要な役割を果しているように思われる。

表　２クローンＨＡＬ〜８および−３３の転移能処理　クローン　５６日目の肺小結節数５対照（ＰＢＳ）　ＨＡＬ−８ｔ６．３　（９−２４）ＨＡＬ−３３４，６（３−７）シアリダーゼ　ＨＡＬ−８０ＨＡＬ−３３０ａ　ヌードマウスの尾静脈に注射（細胞数２×１０５）した。注射から５６日後に、マウスを殺し、肺表面の転移性小結節を解剖顕微鏡の下で数えた。

ｂ　６匹の平均（括弧内は範囲）。

以上から、本明細書では説明のために特定の実施態様を記載したが、本発明の精神、範囲を逸脱することなく、種々の修飾をなしつることは、明らかであろう。

生存工数ＦＩＧＵＲＥ　ＩＡＦＩＧＵＲＥ　ＩＢＦＩＧＵＲＥ　ＩＣＦＩＧＵＲＥ　ＩＤＦＩＧＵＲＥ　２ＦＩＧＵＲＥ　３ＦＩＧＵＲＥ　４ＦＩＧＵＲＥ　５ＡＦＩＧＵＲＥ　５Ｂ０１．０　１０　１００［ＦＮ］　ＬＩｇ／ｍ１ＦＩＧＵＲＥ　５Ｃ丁１筈管１も電層（ＪＪＭ）ＦＩＧＵＲＥ　６ＡＦＩＧＵＲＥ　６Ｂ＋ｍ、−ａ＋　ｍａｘ−−４Ｌ　Ｐ（：ｒ／ＵＳ　９１１０６２０２ｍ、１．− ｈ−−＋　１９１１．ｅ−＋＋−１１ａ、　ＰＣＴ／ＵＳ　９１１０６２０２＋ −＋ＷＰｍｍ、ａｍに一＋−ｅ−ｍｅ　ＰＣｒ／ＵＳ　９１１０６２０２１Ｐｌ＃ｆｆ＄ｌ＋−ユ＾−ｔｌｉｔｍ１ｍ　舛ＬρＣＴＩＪＳ　９１１０６２０２国際調査報告ｐｃＴ／ｌ’ｓ　９１１０６２０２：１ｗ　ｍ”：ｎ’：ｖｎ　”ｏｆ＠　’：１　＝ｉａｅｇ“、フ＝７＝＝Ｊ二 °ｒニー＝＝ち；品π＝°＝°”ロ°−゛和ｉず屁２剪°“|′− ７−１１刺−鈴−瞳−ｖｆ−−雷−Ｈｌ呻マ曇瞳−１−イ搗幹剖ゆａ−リ瞳ｉ− 射盲一噂η炸−−−イ浄・−げ−贈・ａｚｌ＊−−−一一フロントページの続き（８１）指定国　ＥＰ（ＡＴ、ＢＥ、ＣＨ，ＤＥ。

ＤＫ、　ＥＳ、　ＦＲ，ＧＢ、　ＧＲ，ＩＴ、　ＬＵ、　ＮＬ、　ＳＥ）、　ＡＵ、　ＣＡ、ＪＰ（７２）発明者　ハコモリ　センイチロウアメリカ合衆国　９８０４０　ワシントン　マーサー　アイランド　エイティース　サウスイースト　２０２４

Claims

【特許請求の範囲】

１．鑑別診断上意義のある腫瘍関連炭水化物抗原、該抗原に特異的に結合する抗体、該抗原のオリゴ糖成分および該抗原または該オリゴ糖の複合体からなる群より選ばれた、温血動物での腫瘍細胞の転移能を抑制する薬物の製造に用いるための試薬。
２．オリゴ糖成分が、ラクトース、ラクト−Ｎ−テトロース、メチルＤ−ラクトシドおよびフェニルＤ−チオラクトシドからなる群より選ばれたものである請求項１の試薬。
３．腫瘍関連炭水化物抗原が、シアロシル−Ｌｅｘ、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂ、シアロシル−Ｌｅａ、シアロシル−Ｔｎ、Ｌｅｘ二量体、シアロシル−Ｌｅｘ二量体およびトリフコシル−Ｌｅｘからなる群より選ばれたものである請求項１の試薬。
４．オリゴ糖成分が、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂ、シアロシル−Ｌｅｘ、シアロシル− Ｌｅａ、シアロシル−Ｔｎ、Ｌｅｘ二量体、シアロシル−Ｌｅｘ二量体およびトリフコシル−Ｌｅｘからなる群より選ばれた腫瘍関連炭水化物抗原のオリゴ糖基（ｇｒｏｕｐ）である請求項１の試薬。
５．オリゴ糖がポリ（エチレングリコール）に結合されている請求項２または４の試薬。
６．ポリ（エチレングリコール）に結合されたオリゴ糖を有する複合体。
７．オリゴ糖が、ラクトース、ラクト−Ｎ−テトロース、メチルＤ−ラクトシドおよびフェニルＤ−チオラクトシドからなる群より選ばれたものである請求項６の複合体。
８．オリゴ糖が、シアロシル−Ｌｅｘ、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂ、シアロシル−Ｌｅａ、シアロシル−Ｔｎ、Ｌｅｘ二量体、シアロシル−Ｌｅｘ二量体およびトリフコシル−Ｌｅｘかりなる群より選ばれた腫瘍関連炭水化物抗原のオリゴ糖部分である請求項６の複合体。
９．生体試料を、鑑別診断上意義のある腫瘍関連炭水化物抗原、該抗原に特異的に結合する抗体、該抗原のオリゴ糖成分、および該抗原または該オリゴ糖の複合体からなる群より選ばれた、該試料の転移能を抑制する少なくとも１種の試薬と共にインキュベートすることからなる、生体試料中で腫瘍細胞の転移能を抑制する方法。
１０．オリゴ糖成分が、ラクトース、ラクト−Ｎ−テトロース、メチルＤ−ラクトシドおよびフェニルＤ−チオラクトシドからなる群より選ばれたものである請求項９の方法。
１１．腫瘍関連炭水化物抗原が、シアロシル−Ｌｅｘ、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂ、シアロシル−Ｌｅａ、シアロシル−Ｔｎ、Ｌｅｘ二量体、シアロシル−Ｌｅｘ二量体およびトリフコシル−Ｌｅｘからなる群より選ばれたものである請求項９の方法。
１２．オリゴ糖成分が、Ｈ／Ｌｅｙ／Ｌｅｂ、シアロシル−Ｌｅｘ、シアロシル −Ｌｅａ、シアロシル−Ｔｎ、Ｌｅｘ二量体、シアロシル−Ｌｅｘ二量体およびトリフコシル−Ｌｅｘからなる群より選ばれた腫瘍関連炭水化物抗原のオリゴ糖基（ｇｒｏｕｐ）である請求項９の方法。
１３．オリゴ糖がポリ（エチレングリコール）に結合されている請求項１０または１２の方法。