JPH06500990A - 新規タンパク質 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 新規タンパク質 本発明は、熱帯熱マラリア原虫（Ｐｉａｓｍｏｄｉｕｍ　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ ）によって起こるヒトマラリア感染に対して防御的な免疫反応を誘発し得る新規 タンパク質、並びに該タンパク質をコートする遺伝子のクローニングおよび発現 に関する。本発明はさらに、該タンパク質を含む新規ワクチンおよびマラリアの 危険にさらされているヒトの予防接種におけるその使用に関する。

ヒトマラリアはプラスモディウム（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ）属の寄生虫によって 起こる。

ヒトに感染するプラスモディウムは４種類か知られている　熱帯熱マラリア原虫 　・（Ｐｉａｓｍｏｄｉｕｍ　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）、三日熱マラリア原生Ｃ Ｐ、　ｖｉｖａｘ）　、四日熱マラリア原虫（Ｐ、　ｍａｌａｒｉａｅ）、およ び卵形マラリア原生（Ｐ、　ｏｖａｌｅ）。最も重症のヒトマラリアは熱帯熱マ ラリア原虫と三日熱マラリア原虫か原因で起こり、熱帯熱マラリア原虫か最も頻 繁に見られる。

マラリアの寄生虫はスポロゾイトの形て蚊によってヒトに伝播され、スポロゾイ トは肝臓に移動し、肝細胞内で増殖し、そこから現れ出て赤血球内で成長サイク ルを開始する。各サイクルの終わりに放出されるメロゾイト世代の寄生虫は速や かに赤血球細胞内に再侵入する。少数のメロゾイトは、血液食で摂取された後に 、ハマダラカ＠　（Ａｎｏｐｈｅｌｅｓ）の雌の蚊内でそれらのライフサイクル を完成する有性世代の寄生虫（雌雄の配偶子母細胞）へ発達し、スポロゾイトの 子孫を生産して完結する。

マラリアは体を衰弱させる病気であり、かくして１以上の世代（各世代は免疫学 的に互いに区別される）の寄生虫に存在する表面抗原に基づいたワクチンを開発 することか望まれるだろう。しかしながら、この方面での努力は今までのところ 十分な成功を収めていない。

ヒトを含めた唾乳須は、照射されたスポロゾイトで予防接種を行った場合に、プ ラスモディウムの攻撃から防御されることか分かっている（Ｃｌｙｄｅ　ｅｔ　 ａｌ、、　Ａｍ８、３０７：１１７−２８　（＋９８４））。この方法は、有効 であるが、スポロゾイトの培養か困難であるために限られている。

スポロゾイトは種−特異的表面タンパク質のサーカムスボロゾイト（ｃｉｒｃｕ ｍｓｐｏｒｏｚｏｉｔｅ：　ＣＳ）タンパク質を発現し、このタンパク質は舊歯 類の寄生虫プラスモディウム・ベルゲイＣＰ、　ｂｅｒｇｈｅｉ）において初め て同定された。このタンパク質に対するモノクローナル抗体は感染した蚊の攻撃 からマウスを完全に防御した（Ｐｏｔｏｃｎｊａｋ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｊ　ＥＸ ＩＩ　Ｍｅｄ、　＋５１：　１５０４−１３　（１９８０））。

ＣＳタンパク質に基づいた研究が広く報告されている（例えば、５ｃ１ｅｎｃｅ 。

２２５　：５９３−９および６２８−９　（１９８４）　、米国特許第４．７０ ７．３５７号、５ｃｉｅｎｃｅ、　２３０゜８１５−１８　（１９８５）、５ｃ ｉｅｎｃｅ、　２２８：９５８−６２　（１９８５）、ＰＣＴ／ＷＯ３６１０１ ７２１およびＬａｎｃｅ煤B Ｉ・＋２７７−８１　（＋９８７）を参照されたい）。しかし、ＣＳタンパク質 またはそのサブユニットに基づいたワクチンは商品化されたことがなく、臨床試 験では思ったほど効果のないことが立証された（“マラリアワクチン：失敗した 将来への展望“。

５ｃｉｅｎｃｅ、　２４７：　４０２−３　（１９９０））。

最近のデータは可能性のあるワクチン候補としてのＣＳタンパク質の有用性につ いて幾つかの疑問を投げかけている：すなわち、ヒトでの貧弱な免疫原性、この 抗原に対する免疫反応の（マウスに見られるような）強い遺伝的制限、および免 疫学的に関係のある配列の多型性は、このタンパク質か、他の修飾なしでは、効 果的な抗スポロゾイトおよび／または抗肝臓世代ワクチンへと開発され得ないこ とを示唆している。従って、今日では、スポロゾイトおよび／または肝臓世代寄 生虫に対する防御免疫を誘導しつる新たな赤血球細胞内の同定が、マラリアワク チン開発の分野ではより重要な課題であると認められている（Ｐａｒａｓｉｔｏ ｌｏｇｙＴｏｄａｙ、　６：３．６４−６５　（１９９０）および１ｍｍｕｎｏ ｌｏｇｙ　Ｔｏｄａｙ、　９：　３５１−３５５　（１９８８））。

別のまたは更なる戦略は、有性世代の寄生虫を含む血液食で摂取された場合に、 蚊の感染およびそれ故に伝播を防ぐ抗体を誘導しうる有性世代のワクチンを調製 することだろう。このような伝播阻止ワクチンは予防接種を受けた個体を感染か ら防御しないか、スポロゾイトおよび／または無性赤血球世代ワクチンと組み合 わせた場合に、これらのワクチンのいずれか１つに耐性のワクチン誘導突然変異 体の伝播の機会を低減させるだろう。

多型性は有性世代のタンパク質にはあまり見られないことか示唆されている。

その理由は、寄生虫が蚊に取り込まれたときだけこれらのタンパク質が発現され 、それ故にヒト免疫系（おそらくスポロゾイトの発生変化に対して主な圧力とな る）では見られないからである。

伝播阻止免疫は数種の細胞外配偶子による免疫化によってうまく誘導された。

熱帯熱マラリア原虫（ＰｌａｓｍｏｄｉｕｌＩＩｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）では、 ３世代特異的抗原（２５，４５／４８および２３０　ｋＤａ）が同定され、これ らに対するモノクローナル抗体は伝播を阻止する。これらのタンパク質は寄生虫 の有性世代の異なる時期に発現される表面タンパク質に相当する。Ｋａｓｌｏｗ ら（Ｎａｔｕｒｅ、　３３３．７４−７６　（１９８８））は最近２５ｋＤａタ ンパク質をコードする遺伝子をクローニングした。後者のタンパク質は熱帯熱マ ラリア原虫の接合子およびオーキネート上の表面タンパク質である。

伝播阻止免疫の誘導に関与した他の熱帯熱マラリア原虫の遺伝子のクローニング は、主にペプチドの配列決定に必要とされる十分量の寄生虫および精製タンパク 質を得ることに問題があるために、これまで実施されていない。

本発明者らは、ハイブリダイゼーションプローブを作製するのにペプチド配列の 利用可能性に左右されない新規なりローニング戦略を採用した。その代わりに、 有性世代の表面抗原は無性血液世代ではおそらく発現されないだろうという観察 に基づいて、減算ハイブリダイゼーション技法が使用された。

ｃＤＮＡライブラリーはＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ　ＮＦ３４から得られた全 配偶子母細胞ＲＮＡより作製し、放射性標識した１本ｊｉｃＤＮＡ（有性および 無性血液世代の寄生虫から単離されたＲＮＡより作製した）とのハイブリダイゼ ーションにより有性世代に特異的なコード配列の存在についてスクリーニングし た。無性ＣＤＮＡプローブとハイブリダイズしたクローンは排除した。

その結果、本発明者らは、有性世代の寄生虫により発現される新規遺伝子を同定 した。推定−次構造の分析から、この遺伝子は表面タンパク質の特徴をすべて備 えている１６　ｋＤａのタンパク質をコードすることか明らかである。免疫−電 子顕微鏡実験から、配偶子母細胞および配偶子の膜に１６　ｋＤａタンパク質が 存在することが明確に立証された。これらの点を考慮すると、この特性により、 それは伝播阻止マラリアワクチンの成分として可能性がある。

驚いたことに、Ｐｆｓ１６遺伝子の生産物はＰ、　ｆａｌｃｊｐａｒｕｍスポロ ゾイトの表面においても同定された。Ｐｆｓ１６の合成ペプチドに対して調製さ れた抗体、およびＰｆｓ１６の組換え融合タンパク質に対して調製された抗体は 、ウェスターンブロッティングによってスポロゾイトのタンパク質抽出物中の１ ６　ｋＤａタンパク質を認識するばかりでなく、最近の免疫−電子顕微鏡実験も スポロゾイト表面においてその存在を明らかにした。

従って、Ｐ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍの１６　ｋＤａ抗原（またはその組換えＤ ＮＡ構築物）はスポロゾイトおよび赤血球性世代の寄生虫並びにその有性形態に 対して２重防御免疫応答を誘起する可能性がある。

かくして、本発明は、以下に示した配列を育する１６　ｋＤａタンパク質、およ びその免疫原性誘導体（突然変異体を含む）を提供する。

用語“免疫原性誘導体″は、ヒトへの内部投与後にタンパク質に対する免疫応答 を誘発する能力を保持するタンパク質の末端切断型あるいは他の誘導体のような あらゆる分子を包含する。このような池の誘導体はアミノ酸の付加、欠失、置換 または再配列により、あるいはその化学的修飾により製造できる。

サブユニットワクチンの製造に有用でありうるタンパク質の免疫原性断片は、相 応の遺伝子断片の発現により、あるいはペプチド合成により、例えばＭｅｒｒｉ ｆｉｅｌｄ合成（Ｔｈｅ　Ｐｅｐｔｉｄｅｓ、　Ｖｏｌ　２．、　Ａｃａｄｅｍ ｉｃ　Ｐｒｅｓｓ、　ＮＹ、　ｐ、　３）を用いて製造することができる。

本発明の免疫原性誘導体はハイブリッド、すなわち他のプラスモディウムの免疫 原または他のプラスモディウム以外の免疫原の１以上のエピトープを有する追加 の配列を含む融合ポリペプチド、であり得る。また、本発明の免疫原性誘導体は Ｂ型肝炎表面またはコア抗原のようなキャリアーポリペプチドに、もしくはアジ ュバントの場合のように免疫刺激特性を育するか、１６　ｋＤａタンパク質また はその誘導体に対する免疫応答を増強するか、あるいは＋６　ｋＤａタンパク質 またはその誘導体の発現、精製または処方に有用な他のキャリアーに融合させる ことができる。

本発明はさらに、グルタルアルデヒドのような通常の結合剤を使って巨大分子に 化学結合させた場合の＋６　ｋＤａタンパク質またはその免疫原性誘導体をも包 含する（Ｇｅｅｒｌｉｎｇｓ　ｅｔ　ａｌ、、（１９８８）　Ｊ、［ｍｍｕｎｏ ｌ、　Ｍｅｔｈｏｄｓ、１０６．２３９−２４４）。

本発明の別の面は、１６　ｋＤａタンパク質またはその免疫原性誘導体をコード するＤＮＡを組換え宿主細胞内で発現させ、生産物を回収し、その後場合により 、その誘導体を製造することから成る、＋６　ｋＤａタンパク質またはその誘導 体の製造方法を提供する。

このようなコード配列を含むＤＮＡ分子は本発明の別の面を構成し、標準的なり ＮＡ合成技術を用いて、例えばり、Ｍ、　ＲｏｂｅｒｔｓらがＢｉｏｃｈｅｍｉ ｓｔｒｙ　１９８５．２４゜５０９０−５０９８に記載するような酵素連結、化 学合成、ｉｎ　ｖｉｔｒｏ酵素重合、またはこれらの技術の組合わせにより合成 することかできる。

ＤＮＡの酵素重合は、必要とされるヌクレオシド三リン酸ｄＡＴＰ、ｄＣＴＰ、 ｄＧＴＰおよびｄＴＴＰを含む適当な緩衝液中１０−３７°Ｃの温度で、一般に は５０μｌまたはそれ以下の容量にて、ＤＮＡポリメラーゼＩ　（Ｋｌｅｎｏｗ フラグメント）のようなりＮＡポリメラーゼを用いてｉｎ　ｖｉｔｒｏで実施さ れる。ＤＮＡ断片の酵素連結は、０．０５Ｍ　トリス（ｐＨ７，４）　、　０． ０１Ｍ　ＭｇＣ］＊　、０．０１Ｍジチオトレイトール、ＩＩＴＩＭスペルミジ ン、］ｍｌＪ　ＡＴＰおよびｏ、　＋ｍｇ／ｍｌウシ血清アルブミンのような適 当な緩衝液中、４℃から周囲温度までの範囲で、一般には５０μｍ以下の容量に て、Ｔ４　ＤＮＡリガーゼのようなりＮＡリガーゼを用いて実施される。ＤＮＡ ポリマーまたは断片の化学合成は、通常のホスホトリエステル、ホスファイトま たはホスホルアミダイト化学により、Ｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　Ｅｎｚｙｍａ ｔｒｃ　５ｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ　ＧｅｎｅＦｒａｇｍｅｎｔｓ　−Ａ　Ｌａ ｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ　（ｅｄ、）１．Ｇ、Ｇａ５５ｅｎ　ａｎｄ　 Ａ、Ｌａｎｇ）、Ｖｅｒｌ≠■ Ｃｈｅｍｉｅ、　Ｗｅｉｎｈｅｉｍ　（１９８２）に記載されるような、または 他の科学文献、例えばＭ。

Ｊ、Ｇａ１ｔ、ｆ（、ｌＶ、Ｄ、Ｍａｔｔｈｅｓ、Ｍ、Ｓｉｎｇｈ、Ｂ。Ｓ、５ ｐｒａａｔ　ａｎｄ　Ｒ，Ｃ，Ｖｔｍａｓ、ＮｕｃｌｅｒｃＡｃｉｄｓ　Ｒｅ５ ｅａｒｃｈ、＋９８２．　ＩＱ、　６２４３；　Ｂ、Ｓ、　５ｐｒｏａｔ　ａｎ ｄ　Ｗ、　Ｂａｎｎｗａｒｔｈ。

Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ　Ｌｅｔｔｅｒｓ、＋９８３．２４．５７７１：　Ｍ、 Ｄ、　Ｍａｔｔｅｕｃｃｉ　ａｎｄ　Ｍ、Ｈ，Ｃａｒｕｔｈ■窒刀B Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ　しｅｔｔｅｒｓ、１９８０．　２１．　７１９：　Ｍ 、Ｄ、Ｍａｔｔｅｕｃｃｉ　ａｎｄ　Ｍ、Ｈ，Ｃａｒｕｔｈ■窒刀B Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　５ｏｃ ｉｅｔｙ、　１９８１．１０３．３１８５：　Ｓ、Ｐ、　Ａр≠高刀@ｅｔ ａｌ、、　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｃｈｅｍｉｃａ ｌ　５ｏｃｉｅｔｙ、　＋９８３．１０５．６６１；　Ｎ、c。

５ｉｎｈａ、　Ｊ、　Ｂｉｅｒｎａｔ、　Ｊ、　ＭｃＭａｎｎｕｓ、　ａｎｄ　 Ｈ，Ｋｏｅｓｔｅｒ、　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃ１ｄｓ　ＲｅTｅａｒｃｈ。

＋９８４．１２．４５３９：およびＨ，Ｗ、Ｄ、　Ｍａｔｔｈｅｓ　ｅｔ　ａｌ 、、ＥＭＢＯＪｏｕｒｎａｌ、　＋９８４．３．８０１に開示されるような固相 法を使って実施される。

これとは別に、コード配列は公知技術（例えば、相補ｃＤＮＡｊｌを作製するた めのｍＲＮＡの逆転写）を使ってＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍのｍＲＮＡから、 あるいは市販されているｃＤＮＡキットから誘導することもできる。

本発明は開示された特定の配列に限定されるものではなく、上記のように、１６ ｋＤａタンパク質またはその免疫原性誘導体をコードするあらゆる分子を含むも のである。

１６　ｋＤａタンパク質の変異型をコードするＤＮＡポリマーは、Ｇ、　Ｗｉｎ ｔｅｒ　ｅｔ　ａｌ、。

るｃＤＮＡの部位特異的突然変異誘発により、あるいはＣｈａｎ　ａｎｄ　Ｓｍ １ｔｈ、　Ｎｕｃｌ。

ることかできる。

本発明の方法は、Ｍａｎｉａｔｉｓ　ｅｔ　ａｌ、＋　Ｍｏ１ｅｃｕｌａｒ　Ｃ ｌｏｎｉｎｇ　−Ａ　ＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ；　Ｃｏ１ｄ　Ｓｐｒ ｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ、　１９８２−１９８９に記載されるような慣用の組換え 技術により行われる。

特に、本方法は次の工程： １）前記１６　ｋＤａタンパク質またはその免疫原性誘導体をコードするヌクレ オチド配列を含むＤＮＡポリマーを、宿主細胞内で、発現しつる複製可能なまた は組込み型の発現ベクターを作製すること；ｉＤ該ベクターで宿生細胞を形質転 換すること；１ｉｉ）形質転換された該宿主細胞を、該ＤＮＡポリマーの発現を 可能にする条件下で培養して該タンパク質を生産させること：およびｉｖ）該タ ンパク質を回収すること から成っている。

本明細書中で用いる用語“形質転換する″は、例えばＧｅｎｅｔｉｃ　Ｅｎｇｉ ｎｅｅｒｉｎｇ：Ｅｄｓ、　Ｓ、Ｍ、　Ｋ４ｎｇｓｍａｎ　ａｎｄ　Ａ、Ｊ、　 Ｋｉｎｇｓｍｎ：　Ｂｌａｃｋｙｅｌｌ　５ｃｉｅｎｔｉｆｊｃ　Ｐｕｂｌｉモ ≠狽盾奄獅刀F Ｑｘｆ　ｏｒｄ、Ｅｎｇｌａｎｄ、　＋９８８に記載されるような慣用技術を使 って、適当なプラスミドまたはウィルスベクターによる形質転換、トランスフェ クションあるいは感染により宿主細胞へ外来ＤＮＡを導入することを意味する。

用語“形質転換された“または“形質転換体”は以後、対象の外来遺伝子を含み かつ発現する、得られた宿主細胞に対して適用されるだろう。

発現ベクターは新規であり、これも本発明の一部を構成する。

複製可能な発現ベクターは、本発明に従って、宿主細胞と適合するベクターを切 断して完全なレプリコンを有する線状ＤＮＡセグメントを供給し、該線状セグメ ントを、該線状セグメントと一緒になって目的産物をコードするｌまたはそれ以 上のＤＮＡ分子（例えば、１６　ｋＤａタンパク質またはその断片をコードする ＤＮＡポリマー）と、連結条件下で結合させることにより作製し得る。

従って、ＤＮＡポリマーは、所望により、予め作製しておいても、ベクターの構 築中に作製してもよい。

ベクターの選択は、原核細胞または真核細胞であり得る宿主細胞により幾分かは 決まるだろう。適当なベクターにはプラスミド、バクテリオファージ、コスミド および組換えウィルスが含まれる。

複製可能な発現ベクターの作製は、ＤＮＡの制限、重合および連結用の適当な酵 素を用いて慣例的に、例えば先に引用したＭａｎｉａｔｉｓらに記載された手法 により実施することかできる。

組換え宿主細胞は、本発明に従って、形質転換条件下に本発明の複製可能な発現 ベクターで宿主細胞を形質転換することにより得られる。適当な形質転換条件は 慣例的であり、例えば先に引用したＭａｎｉａｔｉｓら、または“ＤＮＡ　Ｃｌ ｏｎｉｎｇ”Ｖｏｌ、　Ｉｌ、　Ｄ、Ｍ、　Ｇｌｏｖｅｒ　ｅｄ、、　ＩＲＬ　 Ｐｒｅｓｓ　Ｌｔｄ、　１９８５に記載されている。

形質転換条件の選択は宿主細胞によって決まる。かくして、Ｅ、　ｃｏｌｉのよ うな細菌宿主はＣａＣＬｚの溶液で処理するか（Ｃｏｈｅｎ　ｅｔ　ａｌ、、　 Ｐｒｏｃ、　Ｎａｔ、　Ａｃａｄ、　Ｓｃｉ、。

１９７３、６９．２１１０）、またはＲｂＣｌ　ＳＭｎＣ１ｚ　、酢酸カリウム およびグリセロールの混合物から成る溶液で処理し、その後３−［Ｎ−モルホリ ノ１−プロパン−スルホン酸、ＲｈＣｌおよびグリセロールで処理する。哺乳類 の培養細胞は、細胞上へのベクターＤＮＡのカルシウム共沈により形質転換でき る。本発明はまた、本発明の複製可能な発現ベクターで形質転換された宿主細胞 を包含する。

ＤＮＡポリマーの発現を可能にする条件下での形質転換宿主細胞の培養は、例え ば先に引用したＭａｎｉａｔｉｓらおよび“ＤＮＡ　Ｃｌｏｎｉｎｇ”に記載さ れるような慣用法により実施される。従って、細胞に栄養素を供給し、４５°Ｃ 以下の温度で細胞を培養することか好ましい。

生産物は宿主細胞に応じて慣用法により回収される。かくして、宿主細胞がＥ。

ｃｏｌｉのような細菌である場合は、それを物理的、化学的または酵素的に溶菌 し、得られた溶菌液からタンパク質産物を単離する。宿主細胞が哺乳類の細胞で ある場合は、一般に栄養培地または無細胞抽出物から生産物を単離することがで きる。

慣用のタンパク質単離法には選択的沈殿、吸着クロマトグラフィー、およびモノ クローナル抗体アフィニティーカラムを含むアフィニティークロマトグラフィー か含まれる。

好ましくは、宿主細胞はＥ、　ｃｏｌｉである。また、バキュロウィルスのよう な適当なベクターを用いて昆虫細胞内で発現を行ってもよい。本発明の特定面で は、タンパク質を鱗翅目（Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａ）の細胞内で発現させて、免 疫原性ポリペプチドを生産する。鱗翅目細胞でのタンパク質の発現のために、バ キュロウィルス発現系の使用が好適である。かかる発現系では、バキュロウィル スプロモーターに機能しつる状態で連結されたタンパク質コード配列を含む発現 カセットがシャトルベクターに配置される。この種のベクターはＥ、　ｃｏｌｉ または池の適当な原核細胞宿主内でシャトルベクターを増幅させるのに十分な量 の細菌ＤＮＡを含む。また、シャトルベクターは野生型バキュロウィルスと異種 遺伝子間の組換えを可能にするように、目的のタンパク質コード配列に隣接して 十分量のバキュロウィルスＤＮＡを含む。

その後、組換えベクターは野生型バキュロウィルス由来のＤＮＡと共に鱗翅目細 胞に同時トランスフェクトされる。相同的組換えから生じる組換えバキュロウィ ルスを標準技法により選択し、プラーク精製する。Ｓｕｍｍｅｒｓ　ｅｔ　ａｌ 、、　ＴＡＥＳＢｕｌｌ　（Ｔｅｘａｓ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｅｘｐｅ ｒｉｍｅｎｔａｌ　５ｔａｔｉｏｎ　Ｂｕｌｌｅｔｉｎ）　ＮＲ１５５５，lａ ｙ。

１９８７を参照されたい。

昆虫細胞でのＣＳタンパク質の発現法はＳｍ１ｔｈＫｌｉｎｅ　Ｒ［ＴのＵＳＳ Ｎ　２８７．９３４（ＷＯ／ＵＳ８９１０５５５０）に詳細に記載されている。

昆虫細胞での生産は幼虫に感染させることによっても達成できる。例えば、本発 明の組換えバキュロウィルスを痕跡量の野生型バキュロウィルスと共に幼虫に与 え、約２日後に血リンパからタンパク質を抽出することにより、ヘリオチス・ビ レセンス（Ｈｅｌｉｏｔｈｉｓ　ｖｉｒｅｓｃｅｎｓ）の幼虫においてタンノく り質を生産じ得る。例えば、ＭｉｌｌｅｒらのＰＣＴ／ＷＯ３８１０２０３０を 参照されたい。

本発明の新規なタンパク質はまた、ＥＰ−Ａ−０２７８９４１にＣＳタンノくり 質に関して記載されたようにして、酵母細胞でも発現させることかできる。

本発明のワクチンは免疫防御量の＋６　ｋＤａタンパク質またはその免疫原性誘 導体を含む。用語“免疫防御量”とは、病気か回避または軽減されかつ／また病 気の伝染か阻止もしくは遅延されるように、その後のＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕ ｍの攻撃に対して免疫応答を誘起するのに必要な量のことである。本発明のワク チンでは、タン　、バク質の水溶液を直接使用できる。また、前もって凍結乾燥 させてまたはさせずに、タンパク質を各種の既知アジュバントと混合もしくは吸 着させることができる。このようなアジュバントには水酸化アルミニウム、ムラ ミルジペプチドおよびサポニン類、例えばＱｕｉ　Ｉ　Ａ、３Ｄ−ＭＰＬ　（３ 脱アシル化モノホスホリルリビドＡ）またはＴＤＭが含まれるか、これらに限定 されない。別の方法として、タンパク質をリポソームのような微粒子内にカプセ ル化することもてきる。

更に別の方法として、死滅させた百日咳菌（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ）または破傷 風トキソイドのような免疫刺激性巨大分子にタンパク質を結合させることもてき る。

ワクチンの調製はＮｅｗ　Ｔｒｅｎｄｓ　ａｎｄ　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｓ　 ｉｎ　Ｖａｃｃｉｎｅｓ、　Ｖｏｌｌｅｒ　ｅｔ　ａｌ。

（ｅｄｓ、）、　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐａｒｋ　Ｐｒｅｓｓ、　Ｂａｌｔｉ ｍｏｒｅ、　Ｍａｒｙｌａｎｄ、　１９７８ｔこ一般的（こL載さ れている。リポソーム内へのカプセル化はＦｕｌｌｅｒｔｏｎの米国特許第４． ２３５．８７７号に記載されている。巨大分子へのタンパク質の結合は、例えば Ｌｉｋｈｉ　ｔｅの米国特許第４．３７２．９４５号およびＡｒｍｏｒらの米国 特許第４．４７４．７５７号に開示されている。

Ｑｕｉｌ　Ａの使用法はＤａｌｓｇａａｒｄ　ｅｔ　ａｌ、、　Ａｃｔａ　Ｖｅ ｔ　５ｃａｎｄ、　１８：３４９　（１９７７）に記載されている。

各ワクチン用量中に存在する本発明タンパク質の量は、代表的なワクチンにおい て有意な副作用を示さずに免疫防御応答を誘発する量として選択される。このよ うな量は使用する特定の免疫原およびワクチン中のアジュｌくントの有無により 変化するだろう。一般に、各用量は１−１０００μｇのタンパク質、好ましくは ｌ−２００μｇを含むと予想される。個々のワクチンの最適量は抗体価および被 験者における他の反応の観察を含めた標準的な実験により決定し得る。最初の予 防接種後、被験者は約４週間で追加免疫を受け、その後感染の危険が存在する間 ６か月毎に反復追加免疫を受けることか望ましい。

本発明の他の面は、免疫原として効果的な量の１６　ｋＤａタンノくり質または その免疫原性誘導体もしくは本発明によるワクチンを患者に投与することから成 る、ヒトのマラリア感染を防御または軽減し、かつ／またマラリア寄生虫の伝播 を阻止する方法を提供する。

以下の実施例は本発明を例示するものであって、限定するものではない。制限酵 素および他の試薬類は実質的に販売者の説明書に従って使用した。

実施例１ 成熟Ｐ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ　（ＮＦ５４）配偶子母細胞を半自動懸濁培養 システム（Ｐｏｎｎｕｄｕｒａｉ　ｅｔ　ａｌ、、　１９８３）で生産した。培 養後１４日ロー、５６０　ｘ　ｇ　、　５分の遠心により感染した赤血球を回収 した。配偶子形成の誘導後（Ｖｅｒｍｅｕｌｅｎ　ｅｔ　ａｌ、。

＋９８３）　、？クロガメート／接合子および配偶子母細胞を、Ｖｅｒｍｅｕｌ ｅｎ　ｅｔ　ａｌ。

（１９８３）に記載されるように不連続Ｎｙｃｏｄｅｎｚ　（Ｎｙｅｇａａｒｄ 、　０ｓｌｏ）勾配を通して遠心シテ別々ニ回収した。これらの細胞を１００　 ｍｌＪ　ＮａＣ１，５０ｍＭ　トリス−）１ｃＩ　Ｉ）Ｈ７，２，５０ｍＭ　Ｅ ＤＴＡ、０．２％ＳＤＳおよび２％トリトン−Ｘ１００中で溶解した後、Ｍａｎ ｉａｔｉｓ　ｅｔａｌ、　（１９８２）に記載されるようなフェノール／クロロ ホルム抽出および３０　ｍＭ　ＮａＡｃｐＨ６，８および５０　ｍＭ　ＥＤＴＡ 中の５．７　Ｍ　ＣｓＣ１のクッションを通した遠心によりＲＮＡを精製した。

ｃＤＮＡライブラリーはＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ　ＮＦ３４から得られた全 配偶子母細胞ＲＮＡから作製された。オリゴ（ｄＴ）をプライマーとした第１鎖 合成とＲＮａｓｅＨ−ＤＮＡポリメラーゼ■により仲介される第２！３１合成に よりｃＤＮＡを合成した（Ｇｕｂｌｅｒ　ａｎｄ　Ｈｏｆｆｍａｎｎ、　１９８ ３）。ｄＧＴＰによるホモポリマーノ付加後、ｃＤＮＡをプラスミドｐＰＬｃ２ ４５＋　１のオリゴ（ｄＣ）付加５ｓｔ１部位にアニーリングした。ベクターｐ ＰＬｃ２４５＋　１はプラスミドｐＰＬｃ２４５　（Ｒｅｍａｕｔ　ｅｔ　ａｌ 、、　＋９８３）の誘導体であり、２２１　ｂｐの５ａｉｌ／Ｒｓａｌ制限断片 かＭＩ３ｍｐＨＤＮＡのＳａｔ　Ｉ／Ｐｖｕｌ　１断片により置き換えられてい る。Ｅ、　ｃｏｌｉ　ＭＣｌ０６１　（Ｃａｓａｄａｂａｎ　ａｎｄ　Ｃｏｈｅ ｎ、　１９８０）への形質転換後、約２５、０００の形質転換体が得られた。こ のようにして作製されたｃＤＮＡライブラリーは、配偶子母細胞、マクロガメー ト／接合子および無性血液世代のＮＦ３４寄生虫から単離したＲＮＡのオリゴ（ ｄＴ）付加により作製された、”Ｐｆｆ識１本鎖ｃＤＮＡとのｉｎ　５ｉｔｕハ イブリダイゼーシヨンにより有性世代に特異的なコード配列の存在についてスク リーニングした。マクロガメート／接合子および配偶子母細胞のｃＤＮＡとのみ ハイブリダイズしたクローンを同定した。これらのクローンの１つ、ＧＢ８、は 以下に示す配列の一部を含んでいた。挿入断片を単離し、２２Ｐて漂識し、その 後これを用いてＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ　ＮＦ３４からの全配偶子母細胞Ｒ ＮＡのラムダ−ｇｔｌｌｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。このライ ブラリーの作製は発表されている（Ｗｅｓｓｅｌｉｎｇ　ｅｔ　ａｌ、、　１９ ８９）。これらのファージクローンの１つ（ＧＢ８ｃ）は以下に示すＰｆｓ１６ ＤＮＡ配列を含んでいた。

Ｐ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ無性血液世代、配偶子母細胞およびマクロガメート ／接合子からの全ＲＮＡのノーザンハイブリダイゼーション分析から、クローン ＧＢ８ｃは配偶子母細胞およびマクロガメート／接合子において約１４００　ｂ ｐの単一のｍＲＮＡ種として発現される遺伝子を含むことか分かった。無性血液 世代からのＲＮＡに対するハイブリダイゼーションは実際上存在しないか、また は非常に弱かった。

ノーザンハイブリダイゼーションでは、３μｇの全ＲＮＡ　（無性血液世代、配 偶子母細胞または配偶子／接合子から単離した）を２．２Ｍホルムアルデヒドを 含む１％アガロースゲルに負荷した。このゲルを２５　ｍＭ　ＮａＰＯ，緩衝液 （ｐ）１７．０）中で電気泳動にかけ、２ＯＸ　５ＳＰＥ中でニトロセルロース （Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅｒ　ａｎｄ　５ｃｈｕｅｌｌ）にＲＮＡを移行させた。プ ロットとのハイブリダイゼーションは５０　ｍＭ　ＮａＰＯ４（ｐＨ６，５）、 ０．８　Ｍ　ＮａＣ１，５０％ホルムアミド、１　ｍＭ　ＥＤＴＡ　、　０．１ ％　ＳＤＳ、　２．５　ｘＤｅｎｈａｒｄｔ溶液、５０Ｐｇ／ｍｌ変性サケ精子 ＤＮＡおよび５００　μｇ／ｍ！酵母ＲＮＡ中４２℃で１６時間行った。プロッ トを高緊縮条件（０，１％ＳＤＳ、　６５°Ｃ）で洗浄した。

高比放射能のプローブはｐＧＥＭｂｌｕｅのポリリンカーに前もって連結させた 相応の制限断片のｉｎ　ｖｉｔｒｏ転写により作製した。

ヌクレオチド配列解析のために、選択した組換えプラスミドから相応のＤＮＡ断 片を消化し、ＭＩ３ｍｐｌＯ／ｍｐＨベクター（Ｇｅｎｅ、　２６：１０１−１ ０６　（１９８３））にサブクローニングした。ヌクレオチド配列はＳａｎｇｅ ｒ　（Ｓａｎｇｅｒ　ｅｔ　ａｌ、、　＋９７７）によって最初に開発されたジ デオキシシーフェンシング戦略を用いて決定した。

Ｐｆｓ１６コード領域およびフランキング領域のヌクレオチド配列は添付した図 １に示しである。ヌクレオチドにはＡＴＧ開始コドンの八に対して番号が付けで ある。推定アミノ酸配列はヌクレオチド配列の上に示され、ＬｕおよびＥｌｚｉ ｎｇａ（１９７７）により提案されたナンバリングシステムに従って番号か付け である。実線で囲った部分は実施例６の合成ペプチドのアミノ酸配列を表す。

推定アミノ酸配列はＮ末端のシグナル配列とメンプラン・アンカー配列とＣ末端 の親水性配列を含む。この配列はアミノ酸Ｃｙｓ、　ＴｒｐおよびＴｙｒを欠い ている。

タンパク質配列内に、可能なＮ−グリコジル化部位（Ａｓｎ−Ｘ−３ｅｒ／Ｔｈ ｒ）は検出されなかった。ＤＮＡレベル（ＥＭＢＬヌクレオチドデータベース： リリーズ１２）およびタンパク質レベル（ＮＢＲＦ／ＰＸＲタンパク質データベ ース：リリーズ１２）でのコンピューターサーチ分析は、Ｐｆｓ１６遺伝子とそ の誘導されたタンパク質配列がこれまでに知られたどのＤＮＡ配列またはタンパ ク質配列とも有意な顕像性をもたないことを示した。

遺伝子Ｐｆｓ１６をベクタープラスミドＣＤＭｇ中のＣＭＶプロモーターのすぐ 下流（ＢｓｔＸ］部位）に挿入した。適当な組換えプラスミドの選択後、遺伝子 Ｐｆｓ１６細胞によりコードされるタンパク質（Ｐｆｓ　１６ｋＤａ）のＣＯ８ 細胞（サル腎細胞に由来する）での一時的生産を、免疫蛍光検定（ＩＦＡ）によ り調べた。これらの実験から、ＣＯ８細胞表面へのトランスフェクション後に、 （組換え）＋６ｋＤａタンパク質またはその断片に対して誘導された抗血清と特 異的に反応する抗原を検出し得ると断定することができた。

実施例３ 昆虫細胞での遺伝子Ｐｆｓ１６の発現 アメリカ産行列毛虫ヨトウガのスボドプテラ・フルギペルダ（ｆａｌｌ　ａｒｍ ｙ　ｗｏｒｍＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ　ｆｒｕｇｊｐｅｒｄａ）の組織培養細胞（ Ｓｆ９細胞）てＰｆｓ１６遺伝子を発現させるために、バキュロウィルスＡｃＭ ＮＰＶから誘導された発現系を使用した。トランスファーベクターとして、プラ スミドｐＪＶＰ１０．　Ｚ、　Ｐｆｓ１６を使用した。このプラスミドは陽性の 選択（β−ガラクトシダーゼ）ベクターｐＪＶＰ１０．　Ｚの誘導体であり、Ｔ ４　ＤＮＡポリメラーゼで平滑末端化したその唯一のＮｈｅ［部位に、完全なＰ ｆｓ１６遺伝子とフランキング配列（すなわち、その５°末端に４個のヌクレオ チドおよびその３゛末端に３個のヌクレオチド）を含む平滑末端化ＰＣＲ断片（ Ｖｉａｌｇｒｄ　ｅｔａｔ　１９９０）を挿入することにより構築される。この 部位はポリへドリンプロモーターのすぐ下流に存在する。

Ｐｆｓ１６遺伝子を含む組換えＡｃＭＮＰＶｌｏ、　Ｚ、　Ｐｆｓ１６ウイルス の選択およびクローニング後に、それをさらに増殖させた。その後、Ｓｆ９細胞 に組換えウィルスを感染させた後に＋６ｋＤａタンパク質が生産されたかどうか を調べた。

これは実際にその事例であることが分かった。免疫蛍光実験により、このタンパ ク質は主にＳｆ９細胞の表面に存在することが立証された。Ｐｆｓ１６タンパク 質の分泌は観察されなかった。ＡｃＭＮＰＶ−１０，２，Ｐｆｓ１６感染細胞の 全細胞抽出物からｍ製したウェスターンプロットの免疫学的スクリーニングから 、Ｓｆ９細胞においては少なくとも３種の遺伝子Ｐｆｓ１６特異的タンパク質か 生産されたことが判明した。

最大のものは多分Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍの配偶子母細胞 に存在するＰｆｓ１６タンパク質と共泳動する（中間）タンパク質のプロセッシ ングされていない前駆物質である。最小のタンパク質の本性は不明である。その 電気泳動移動度から判断して、本発明者らは、それが宿主細胞膜に挿入する間に １６ｋＤａタンパク質の前駆体タンパク質から切り離されるシグナルペプチドよ りも大きいと断定する。篤いたことに、同一の分子量を有する類似した組のタン パク質がＥ、　ｃｏｌｉでの完全Ｐｆｓ１６遺伝子の発現後にも観察された。

Ｐｆｓ１６遺伝子の全コード配列をワクシニアトランスフェクションプラスミド ｐｓｃＩ　Ｉ（１）の唯一のＳｍａ［制限酵素切断部位にクローニングして、組 換えプラスミドｐｓｃ１１：Ｐｆｓ１６を作製した。

この構築物では、Ｐｆｓ１６遺伝子がワクシニアウィルス７．５プロモーター（ １）の転写制御下にある。

Ｐｆｓ１６遺伝子を発現する組換えワクシニアウィルスを得るために、発表され た標準方法を採用した（２）。簡単に述べると、ＣＶＩ細胞（ＡＴＣＣ＃　ＣＣ Ｌ７０）に野生ワクシニアウィルス（ＷＲ株）を感染させ、その後プラスミドｐ ｓｃ１１：Ｐｆｓ１６でトランスフェクトした。これらの感染細胞から得られた ウィルスストックを、５−ブロモデオキシウリジン（ＢＵｄＲ）の存在下で、Ｒ ＡＴ−２（ＴＫ−’）細胞（ＡＴＣＣ＃　ＣＲＬ１７６４）の単層に感染させた 。組換えウィルスはＴＫ−、βＧａド溶菌プラークとして選択した。さらに、そ れらをＲＡＴ−２細胞上でのプラーク精製に３回かけ、この場合も二重ＴＫ−、 βＧａド選択を用いた。得られた精製組換えウィルスはｖｓｃｌｌ：Ｐｆｓ１６ と命名した。

この組換えウィルスによるＰｆｓ１６遺伝子の発現を証明するために、ＣＶＩお よびＢＨＫ２＋　（ＡＴＣＣ＃　ＣＣ１１０）細胞にｖｓｃＩＩ：Ｐｆｓ１６、 またはＰｆｓ１６遺伝子のコード配列を含まない対照の組換えウィルスｖｓｃ］ Ｉを感染させた。感染の１６−４８時間後、細胞を回収し、ＰＡＧ／ＳＤＳ負荷 緩衝液中で溶解し、そして細胞抽出物をイムノプロットにより分析した。ε、　 ｃｏｌｉにより生産された、精製組換え１６ｋＤａタンパク質に対して誘導され たウサギ抗血清（Ｋ３７Ｓ８）とプロットを反応させた。この分析の結果は、ウ ィルスｖｓｃＩ　Ｉ：Ｐｆｓ１６を感染させたＣＶＩおよび８ＨＫ２１細胞か１ ６ｋＤａ抗原を合成することを示す。

区！ １、ＣＨＡＫＲＡＢＡＲＴＩ　Ｓ、、　ＢＲＡＣＨＬＩＮＧ　Ｋ、　ａｎｄ　Ｍ ｏ５ｓ　Ｂ、　（１９８５）。

“ワクシニアウィルス発現ベクター・β−ガラクトシダーゼの同時発現は組換え ウィルスプラークの可視スクリーニングをもたらす′ＭＯＬ　ＡＮＤ　ＣＥＬＬ 、　ＢＩＯＬ、　５：　３４０３−３４０９２、ＭＡＣＫＥＴＴ　Ｍ、、　ＳＭ ＩＴＨＧ、Ｌ、、　ａｎｄ　Ｍｏ５ｓ　Ｂ、　（１９８４）。

“外来遺伝子を発現する感染性ワクシニアウィルス組換え体の作製および選択方 法′ Ｊ、　Ｖｉｒｏｌ、　４９：８５７−８６４゜アミノ醇残基３１−４７を含む合 成ペプチドをＢａｒａｎｙとＭｅｒｒｉｆｉｅｌｄ　（１９８０）により開示さ れた段階的固相法に従って合成し、逆相高性能液体クロマトグラフィーで精製し た。

アミノ酸組成はアミノ酸分析により証明した。この合成ペプチドはＧｅｅｒｌ　 ｉｎｇｓら（１９８８）に従ってグルタルアルデヒドを用いてウシ血清アルブミ ンに結合させた。

適当なＰｆＳＩ６遺伝子断片（それぞれＢａｍＨＩ／Ｄｒａ１．　ＢａｍＨＩ／ ５ｓｐｌ断片）を挿入したｐＧＥＸ−２７ベクター（Ｓｍｉｔｈ　ｅｔ　ａｌ、 、　１９８８）を使って、Ｓｃｈｉｓｔｏｓｏｍａ　ｊａｐｏｎｉｃｕｍのグル タチオンＳ−トランスフェラーゼ（Ｓｍｉｔｈ　ｅｔ　ａｌ、、　１９８６）に 共有結合させた１　６ｋＤａの部分から成る組換え融合タンパク質を合成した。

Ｅ、　ｃｏｌｉ　Ｊ）４１０１　ｒｅｃＡに発現させた。融合タンパク質はグル タチオンアガロースビーズ（Ｓｕｌｐｈｕｒｌｉｎｋａｇｅ、　Ｓｉｇｍａ）へ の吸着およびその後の溶離により単離した。

実施例７ ニュージ−ランドウサギに、フロイント完全アジュバント中に乳化した２００μ ｇのＰ３１／４７　ＢＳＡ複合体のホモジネートを皮下注射し、３週間の間隔で フロインド不完全アジュバント中のＰ３１／４７　ＢＳＡ複合体で追加免疫を行 った。それぞれの追加免疫後７８目に主な耳静脈から採血した。血液を４°Ｃで 一要因まらせ、使用するまで血清を−２０”Ｃで貯蔵した。

免疫したウサギからの抗血清は、イムノブロッティングによりＰ、　ｆａｌｃｉ ｐａｒｔ＋ｍの配偶子および配偶子母細胞の両方に対する反応性について分析し た。配偶子および配偶子母細胞の抽出物はＳＤＳ試料緩衝液（６２，５ｍｌＪ　 ）リス−ＨＣ１，２％ＳＤＳ。

１０％グリセロール、５％２−メルカプトエタノール、　０．００３％ブロモフ ェノールブルー）中で１　ｘ　１０’個の寄生虫を沸騰させることにより調製し た。ＳＤＳ　（０，１％）を含むポリアクリルアミド（１０％−２０％）ゲルを 調製し、Ｌａｅｍｍｌｉ　（１９７０）に従って変性条件下で泳動した。記載さ れる（Ｔｏ＊ｂｊｎ　ｅｔ　ａｌ、、　１９７９）通りにタンパク質を０．４５ μｍニトロセルロースフィルターに移した。ニトロセルロースフィルターをＴＢ ＳＴ　（５０ｍＭ　Ｉ−リス−ＨＣｌ、　２００　ｍＭ　ＮａＣｌ、　５　ｍＭ 　ＥＤＴＡ、　０．０５＄　Ｔｗｅｅｎ−２０，ｐＨ７，５）■ の１％粉ミルクでブロックし、その後様々なウサギ抗血清のｌ：１００希釈物と １−２時間インキュベートした。検出はＴＢＳＴ緩衝液中のアルカリホスファタ ーゼ−ヤギ抗ウサギＩｇＧ　（Ｈ＋Ｌ）の１：８０００希釈物を用いて１時間行 った。ＲＢＳで十分に洗浄した後、１００ｍＭｌ−リス、１００　ｍＭ　ＮａＣ １および５　ｍＭ　ＭｇＣ１ｔ　（ｐＨ９，５）中の５−ブロモ−４−クロロ− ３−インドリルホスフェ−）（ｐ−）ルイジン塩、Ｓｉｇｍａ）およびニトロブ ルー−テトラゾリウムクロライドを用いて着色反応を行った。バンドが現れるま でフィルターを展開し、その後２０」トリス−ＨＣｌ　（ｐＨｓ、ｏ）および５ 　ｍＭ　ＥＤＴＡ中で洗った。

ウェスターンプロット分析は、合成ペプチドに対して調製された抗体が配偶子お よび配偶子母細胞の両方のタンパク質抽出物中のＭｒ＝１６　ｋＤａのタンパク 質と強く反応することを示した。この抗体は標準免疫蛍光検定（Ｍｏｅｌａｎｓ 　ｅｔ　ａｔ、。

＋９９１）において乾燥した配偶子および配偶子母細胞とも反応した。

この結論は、合成ペプチドに対して誘導されたウサギ抗体を用いた免疫−金電子 顕微鏡実験（下記参照）により実証された。これらの実験から、＋６ｋＤａタン パク質はＰｌａｓｍｏｄｉｕｍ　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍの配偶子および配偶子母 細胞の表面に存在することか明らかになった。

免疫電子ＩＪＩ微鏡 Ｐ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ　（ＮＦ５４）を傾斜システム（ｔｉｐｐｅｒ　ｓ ｙｓｔｅｍ）で培養し、記載される通り（Ｐｏｎｎｕｄｕｒａｉ　ｅｔ　ａｌ、 、　＋９８６）に同調培養を行った。配偶子母細胞を含む血液試料を培養物から 取り出し、すぐに固定した。鞭毛発生を開始させて、配偶子を検出するために、 固定前に他の試料を室温で１０−３０分間維持した。全試料は０．１Ｍリン酸緩 衝液中の１％アクロレイン７２％バラホルムアルデヒドで２時間固定し、１０分 Ｍ　（１５（１０Ｋ　ｇ＞遠心分離し、その後０．１Ｍリン酸緩衝液中の系（ｗ ／ｖ＞パラホルムアルデヒド中に再懸濁した。４°Ｃで一夜放置後、細胞をリン 酸緩衝液で十分に洗い、ベレットをゼラチン（２％Ｗ／Ｖ）に埋包した。エタノ ール７０％に対して脱水後、中間グレードのり、　Ｒ，白色樹脂（Ｌｏｎｄｏｎ 　Ｒｅ５ｉｎ社）に試料を埋め込み、５０℃で重合させた。薄い切片を数滴のメ タ過ヨウ素酸ナトリウムの飽和水溶液中室温で１５分間溶蝕（エツチング）し、 蒸留水ですすぎ、０．１Ｍリン酸緩衝液中の１％ウシ血清アルブミンとブレイン キュベートした。続いて、それらは湿潤チャンバー内て５０μＩ滴のＰ３１／４ ７に対する抗体（約２５μｇ／ｍ　Ｉの濃度か得られるまで適宜に希釈した）と ４°Ｃて一夜インキユベートした。切片を十分に洗い、プロティン入金（１０ｍ ｍ）　（Ｓｌｏｔ　ａｎｄ　Ｇｅｕｚｅ、　＋９８５）と１時間反応させた。対 照切片は免疫前血清とインキュベートした。最終洗浄後、それらを蔦グルタルア ルデヒドで１０分間後−固定し、洗浄し、酢酸ウラニルで染色した。

さらに、合成ペプチド３１／４７、ＢａｍＨ］／Ｄｒａｌ断片およびＢａｍＨＩ ／５ｓｐｌ断片融合タンパク質に対して誘導されたウサギ抗血清を用いた、全配 偶子母細胞、マクロガメート／接合子およびスポロゾイトのタンパク質のウェス ターンプロット分析から、１６ｋＤａタンパク質かＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ スポロゾイトのタンパク質抽出物中に存在することが分かった（Ｍｏｅｌａｎｓ 　ｅｔ　ａｌ　＋９９１ａ）。この発見は免疫−全電子顕微鏡分析により確認さ れ、＋６ｋＤａタンパク質はスポロゾイトの表面に一様に広がっていた（Ｍｏｅ ｌａｎｓ　ｅｔ　ａｌ　＋９９１）　ｏ合成ペプチドおよびＢａｍｆ（Ｉ／Ｄｒ ａｌ融合タンパク質に対して誘導されたウサギ抗血清との反応か得られた。

１６ｋＤａタンパク質に基づいたワクチンは、次の目的の１つまたは両方を達成 するためにデザインされるニ ー　高力価の伝播阻止抗体の生産を誘発することにより有性せ代寄生虫に対する 免疫を誘起させるニ ー　高力価の中和抗スポロゾイト抗体の生産により赤血球性世代の寄生虫に対す る防御免疫、並びに肝臓世代の寄生虫に対する強い細胞性免疫応答を誘起させる 。

本発明のワクチンは次のように調製される：３％水酸化アルミニウムの緩衝水溶 液（１０−リン酸ナトリウム、１５０　ｍ）Ｊ　ＮａＣ１、ｐＨ６，８：　濾過 滅菌済み）に、同様の緩衝液中の本発明のＰ、　ｆａｌｃｉｐａｒｕｍポリペプ チドを、最終濃度か１００μｇ／ｍｌのポリペプチドおよび０．５ｍｇ／ｍｌの アルミニウム（Ａｌ”つとなるように攪拌しながら加える。ＰＨを６．８に維持 する。この混合物を約０℃で一夜放置する。チメロサールを加えて０．０００５ ％の最終濃度とする。ｐＨをチェックし、必要ならば６．８に調整する。

本発明のワクチンは抗体応答、細胞性応答、または両方を誘起させるためにデザ インされる。ＣＳタンパク質と同様に、本発明の］　６ｋＤａタンパク質はスポ ロゾイトの表面に存在する。それ故に、それはたいてい侵入する寄生虫によって 肝細胞内に運ばれる。従って、ＣＳタンパク質から類推して、１６ｋＤ＆抗原は 感染した肝細胞に対して誘導された細胞障害性Ｔ細胞の適格な標的であり得る（ Ｎａｔｕｒｅ。

３４１、３２３−３２５　（１９８９））。細胞性応答を誘起させるために利用 できる技法には次のものが含まれる： （ａ）対象の抗原を発現する、生きている組換えウィルスによる免疫感作、例え ばワクシニアに関しては５ｃｉｅｎｃｅ、　２２４：３９７−９　（１９８４） ＃よびＮａｔｕｒｅ、　３３４，２５８−２６０ニ、水痘−帯状庖疹ウィルスに 関してはＰｒｏｃ、　Ｎａｔｌ、　Ａｃａｄ、　Ｓｃｉ、　ＵＳＡ　８４゜３８ ９６−３９００　（＋９８７）に、そしてアデノウィルスに関してはＪｏｕｒｎ ａｌ　ｏｆ　ＩｎｆｅｃｔｉｏｕｓＤｉｓｅａｓｅｓ　１６１：２７−３０　（ １９９０）に記載されている。

（ｂ）対象の抗原を発現する、生きている組換え細菌による免疫感作、例えばサ ルモネラ菌に関してはＶａｃｃｉｎｅ、　７．４９５−４９８　（１９８９）　 、ＷＯ３９１０２９２４，５ｃｉｅｎｃｅ。

２４０、３３６−３３８　（＋９８８）および５ｉｉｔｈＫＩｉｎｅ　Ｂｅｃｋ ａ＋ａｎのＵＳＳＮ２２２．２０２　（ＥＰ−Ａ−０３５７２０８）に、そして ウシ結核菌（Ｍｙｃａｂａｃｔｅｒｉｕａ＋　ｂｏｖｉｓ）のようなミコバクテ リウム員に関してはＷＯ９０１００５９４に記載されている。

（Ｃ）免疫原性のある又はない粒子に抗原を担持させる。例えば、Ｖａｌｅｎｚ Ｕｅｌａら（米国特許第４．７２２．８４０号）、ＥＰ−Ａ−０２７８９４０お よびＲｕｔｇｅｒＳら（Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ。

６：１０６５−７０　（＋９８８））はＢ型肝炎表面抗原に融合された種々の長 さのＰ。

ｆａｌｃｉｐａｒｕｍｃ　Ｓ反復を教示している。融合体はサツカロミセス・セ レビシェＣ３ａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）内でウィルス 粒子として発現される。

（ｄ）別法として、ｒｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｔｏｄａｙ、　１１．　Ｎｏ、３　 （１９９０）、　８９および次頁に記載されるリポソームのような不活性粒子に 抗原を担持させるか、またはＮａｔＬＩｒｅ。

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４７、１８５゜ ３、Ｃａｒｔｅｒ、　Ｒ，Ｍｉｌｌｅｒ、　Ｌ、Ｈ，、Ｒｅｎｅｒ、　Ｊ、、　 Ｋａｕｓｈａｌ、　Ｄ、、　Ｋｕｔｕｒ、　Ｎ、、　Ｇｒａ魔■刀B Ｐ、、　Ｇｒｏｔｅｎｄｏｒｓｔ、　Ｐ、、　Ｇ＋ｖａｄｚ、　Ｃ，、Ｆｒｅｎ ｃｈ、　Ｒ，ａｎｄ　Ｗｉｒｔｈ、　Ｄ、１９８４）Ｐｈｉｌ、Ｔｒａｎｓ　Ｒ ，Ｓｏｃ、　Ｌｏｎｄ、、　３０７．２０１−２１３゜４、　Ｃａ５ａｄａｂａ ｎ、　Ｍ、Ｊ、　ａｎｄ　Ｃｏｈｅｎ、　Ｓ、Ｎ、　（１９８０）　Ｊ、　Ｍｏ １．　Ｂｉｏｌ、、　１３８．１７X−２０７゜ ５、Ｇｗａｄｚ、　Ｒ，Ｗ、　（９７６）　５ｃｉｅｎｃｅ　（Ｗａｓｈ、　Ｄ Ｃ）、　１９３．１１５０−１１５１゜８、Ｇｅｅｒｌｒｎｇｓ、　）１．Ｊ、 、　Ｗｅｊｊｅｒ、　ｉｆ、Ｊ、、　Ｂｌｏｅｍｈｕｆｆ、　Ｗ、、　Ｗｅｌｌ ｉｎｇ、　Ｇ、Ｗ、@ａｎｄ Ｗｅｌｔｉｎｇ−Ｗｅｓｔｅｒ、　Ｓ、　（１９８８）　Ｊ、　ｒｗｕｎｏｌ、 　Ｍｅｔｈｏｄｓ、　１０６．２３９−２４４゜７、Ｇｕｂｌｅｒ、　Ｕ、　ａ ｎｄ　Ｈｏｆｆｍａｎｎ、　Ｂ、Ｊ、　（１９８３）　Ｇｅｎｅ、　２５．２６ ３−２６９゜８、Ｋａｓｌｏｗ、　Ｄ、Ｃ，、Ｑｕａｋｙｉ、　Ｅ、Ａ、、　５ ｙｉｎ、　Ｃ，、Ｒａｕｍ、　Ｍ、Ｇ、、　Ｋｅｉｓｔｅｒ、　Ｄ、Ｇ、B Ｃｏｌｉｇａｎ、　Ｊ、Ｅｌ、　Ｍｃ　Ｃｕｔｃｈａｎ、　Ｔ、Ｐ、　ａｎｄ　 Ｍｉｌｌｅｒ、　Ｌ、Ｈ，（１９８８）　Ｎａｔｕｒｅ。

３３３、７４−７６゜ ９、Ｋａｓｌｏｗ、　Ｄ、Ｃ，、Ｑｕａｋｙｉ、　ｒ、Ａ、　ａｎｄ　Ｋｅｉｓ ｔｅｒ、　Ｄ、Ｇ、　（１９８９）　１Ｊｏｌｅｃｕｌａｒ@ａｎｄ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ、　３２．１０１−１０４ １０、　Ｋａｕｓｈａｌ、　Ｄ、Ｃ，、Ｃａｒｔｅｒ、　Ｒ，、Ｒｅｎｅｒ、　 Ｊ、、　Ｇｒｏｔｅｎｄｏｒｓｅ、　Ｃ，Ａ、　Ｍｉｌｌｅ秩B Ｌ、Ｆ、　ａｎｄ　Ｈｏｗａｒｄ、　Ｒ，Ｊ、　（１９８３）　Ｊ、　ｒｍｍｕ ｎｏｌ、、　１３１．２５５７゜Ｉｆ、　Ｋｏｎｉｎｇｓ、　Ｒ，（１９８７） 　Ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎ　Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ、　１５３．１２−３４゜１２ 、　Ｌａｅｍｍｌｉ、　［Ｊ、に、　（１９７０）　Ｎａｔｕｒｅ　２７７、６ ８０−６８５゜１３、　Ｍａｎｎｉａｔｉｓ、　Ｔ、、　Ｆｒ１ｔｓｃｈ、巳、 Ｐ、　ａｎｄ　Ｓａｍｂｒｏｋ、　Ｊ、　（１９８２）　Ｍｏｌｅｃｕｌａ■ Ｃｌｏｎｉｎｇ、Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏ１ｄ　Ｓｐｒ ｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ＰｒｅｓｓB Ｃｏ１ｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ、　！ｆｆ。

１４、Ｍｉｌｌｅｒ、　Ｌ、Ｉ（、ｅｔ　ａｌ、　（１９８６）　５ｃｉｅｎｃ ｅ、　２３４．１３４９−Ｊ、３５６１５、Ｍｏｅｌａｎｓ、　１．［、Ｍ、Ｄ 、、　Ｍｅｉｓ、　Ｊ、Ｆ、Ｇ−Ｍ、、　Ｋｏｃｋｅｎ、　Ｃ，、Ｋｏｎｉｎｇ ｓ、　Ｒ，Ｎ、ＨC。

Ｓｃｈｏｅｎｍａｋｅｒ、　Ｊ、Ｇ、Ｇ、、　Ｍｏ１．　Ｂｉｏｃｈｅａ＋、　 Ｐａｒａｓｉｔ　４５１９３−２０４　（１９９１ａ）。

＋６．　Ｎｕｓｓｅｎｚｗｅｉｇ、　Ｖ、　ａｎｄ　Ｎｕｓｓｅｎｚｗｅｉｇ、 　Ｒ，Ｓ、（１９８９）　Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　［ｍｍ浮獅盾撃盾■凵B Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ、Ｉｎｃ、、　Ｖｏｌ、４５．　ｐｐ、２８３− ３３４１７、　Ｐａｎｙｉｍ、　Ｓ、、　Ｗａｌａｉｒａｔ、　Ｐ、　ａｎｄ　 Ｙｕｔｈａｖｏｎｇ、　Ｙ、　（＋９８５）　Ａｐｐｌｉｃａｔｉ盾氏@ｏｆ ｇｅｎｅｔｊｃ　ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　ｔｏ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｎ　ｔ ｒｏｐｉｃａｌ　ｄｉｓｅａｓｅ　ｐａｔｈｏｇｅｎｓ　ｗ奄狽■ ｓｐｅｃｉａｌ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　ｔｏ　Ｐｌａｓｍｏｄｉａ、　Ａ　１ａ ｂｏｒａｔｏｒｙ　ｍａｎｕａｌ　ｏｆ　５ｅｌｅｃｔｅｄｔｅｃｈｎ１ｑｕｅ ｓ。

＋８．、Ｐｏｎｎｕｄｕｒａｉ、　Ｔ、、　Ｌｅｎｓｅｎ、　Ａ、Ｈ，Ｗ、　ａ ｎｄ　Ｍｅｕｗｉｓｓｅｎ、　Ｊ、Ｈ，ｌ　Ｔｈ、　（１９W３） Ｐａｒａｓｉｔｏｌｏｇｙ、　８７．４３９゜＋９．　Ｑｕａｋｙｉ、　１．　 ｅｔ　ａｌ、　（＋９８７）　Ｊ、　ｒｍｍｕｎｏｌ、、　１３９．４２１３− ４２１７２０、　Ｒｅｍａｕｔ、　Ｅ、、　５ｔａｎｓｓｅｎｓ、　Ｐ、　ａｎ ｄ　Ｆｉｅｒｓ、　Ｗ、　（＋９８３）　Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃ１ｄ刀@Ｒｅｓ 、。

１１、　４６７７−４６８８゜ ２＋、　Ｒｅｎｅｒ、　Ｊ、、　Ｇｒａｖｅｓ、　Ｐ、Ｍ、、　Ｗｉｌｌａｍｓ 、　Ｊ、Ｌ、　ａｎｄ　Ｂｕｒｋｏｔ、　Ｔ、Ｒ１（１９８R） Ｊ、　Ｅｘｐ、　Ｍｅｄ、、　１５８９７６゜２２、　Ｓａｎｇｅｒ、　Ｆ、、 　Ｎ１ｃｋｌｅｎ、　Ｓ、　ａｎｄ　Ｃｏｕｌｓｏｎ、　Ａ、Ｒ，（１９７７） 　Ｐｒｏｃ、　Ｎａｔｌ、@Ａｃａｄ。

Ｓｃｉ、　ＵＳＡ、　７４．５４６３−５４６７゜２３、　Ｓｍ１ｔｈ、　Ｄ、 Ｂ、　Ｄａｖｅｒｎ、　Ｋ、Ｍ、　Ｂｏａｒｄ、　Ｐ、Ｇ、、　Ｔｉｕ、　Ｗ、 Ｕ、、　Ｇａｒｃｉａ、　Ｅ、f、　ａｎｄ Ｍｉｔｃｈｅｌｌ、　Ｇ、Ｐ、　（１９８６）　Ｐｒｏｃ、　Ｎａｔｌ、　Ａｃ ａｄ、　Ｓｃｉ、　ＵＳＡ、　８３．８７０３−８７０７゜２４、　Ｓｍ１ｔｈ 、　Ｄ、Ｂ、　ａｎｄ　Ｊｏｈｎｓｏｎ、　Ｋ、Ｓ、　（１９８８）　Ｇｅｎｅ 、　６７、３１−４０゜２５、Ｔｏｗｂｉｎ、Ｍ、、５ｔａｅｈｅｋｊｎ、Ｔ、 ａｎｄ　Ｇｏｒｄａｎ、Ｊ、（１９７９）　Ｐｒｏｃ　Ｎａｔｌ、Ａｃａｄ。

Ｓｃｉ、　ＵＳＡ、　７６、４３５０−４３５４゜２６、５ｌｏｔ、　Ｊ、Ｗ、 　ａｎｄ　Ｇｅｕｚｅ、　）１．Ｊ、　（＋９８５）　Ｅｕｒ、　Ｊ、　Ｃｅ１ １．　Ｂｉｏｌ、、　３８．８V−９３゜ ２７、　Ｖｅｒｍｅｕｌｅｎ、　Ａ、Ｎ、、　Ｐｏｎｎｕｄｕｒａｉ、　Ｔ、、 　Ｌｅｎｓｅｎ、　Ａ、Ｈ，Ｗ、、　Ｒｏｅｆｆｅｎ、　ＷAＦ、Ｇ、。

Ｍｅｕｗｉｓｓｅｎ、Ｊ、Ｈ，Ｅ、Ｔｈ、（１９８３）　Ｔｒａｎｓ、Ｒ，Ｓｏ ｃ、Ｔｒｏｐ、Ｍｅｄ、Ｈｙｇ、７７、　７５３−７５９゜ ２８、　Ｖｅｒｍｅｕｌｅｎ、　Ａ、Ｎ、、　Ｐｏｎｎｕｄｕｒａｉ、　Ｔ、、 　Ｂｅｃｋｅｒｓ、　Ｐ、Ｊ、Ａ、、　Ｖｅｒｈａｖｅ、　i、Ｐ、。

Ｓｍ１ｔｓ、　Ｍ、Ａ、　ａｎｄ　！Ｊｅｕｗｉｓｓｅｎ、　Ｊ、Ｈ，Ｅ、Ｔｈ 、（１９８５）　Ｊ、εＸｐ、　ＩＪｅｄ、、１６２゜＋４６０−１４７６゜ ２９、　Ｖｉａｌａｒｄ、Ｊ、、Ｌａｌｕｍｉｅｒｅ、　Ｍ、、Ｖｅｒｎｅｔ、 １．　Ｂｒ１ｅｄｉｓ、Ｄ、、　Ａｌｋｈａｔｉｂ、　Ｇ、B Ｈｅｎｎｉｎｇ、Ｄ、、Ｌｅｖｉｎ、Ｄ、ａｎｄ　Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ、Ｃ， 、（１９９０）　Ｊ、ｏｆ　Ｖｊｒｏｌｏｇｙ６４３７−５０゜ ３０、　Ｗｅｂｅｒ、　Ｊ、Ｌ、　（１９８７）　Ｇｅｎｅ、　５２．　１０３ −１０９゜３１＋Ｗｅｓｓｅｌｉｎｇ、　Ｊ、Ｇ、、　Ｄｉｒｋｓ、　Ｒ，Ｓｍ １ｔｓ、　Ｍ、Ａ、　ａｎｄ　Ｓｃｈｏｅｎｍａｋｅｒｓ、　Ｊ、Ｇ、f。

（１９８９）　Ｇｅｎｅ、　８３．３０１−３０９゜Ｌシコユ延＝ユ ＡＴＣＡＴＡ　ＡＧＴ　ＡＣＴ　ＧＣＴ　ＧＴＣＡＣＡ　Ｍ？　ＡＴＧ　ＡＴＣ ＡＴＣＴＴＧ　ＡＴＣＡＴＡ　ＴＴＡＬ−−ｕヱ、ユｃｏｎｔｉｎｕｅａ ｔａｒ−ｔｅａセｔｅａ　ｔｔｔａｔｔｔａａａ　ｔａｔｔｔａｔａセａ　ｔａ ｔａｔａｃａｔａ　ｔｔａｔａｔａｔａｃ　ａａｃａ国際調査報告 フロントベージの続き （５１）　Ｉｎｔ、　Ｃ１，５識別記号　庁内整理番号Ｃ１２Ｎ　５／１０ Ｃ１２Ｐ　２１１０２　ＺＮＡ　Ｃ８２１４−４Ｂ／／（Ｃ１２Ｎ　１／２１ Ｃ１２Ｒ１：１９） （Ｃ１２Ｎ　５／１０ Ｃ１２Ｒ１：９１） （Ｃ１２Ｎ　７１０Ｉ Ｃ１２Ｒ１：９２） （７２）発明者　メーランス、インゲ　イルマ　マリア　ドミニク オランダ国　ナイメーゲン　エヌエルー６５４１　エスエイチ　スペルウェルシ ュドラード　７６ Ｉ

Claims (23)

【特許請求の範囲】
1. １．図１に示すアミノ酸配列からなる熱帯熱マラリア原虫（Ｐ．ｆａｌｃｉｐａ ｒｕｍ）の１６ｋＤａタンパク質およびその免疫原性誘導体（突然変異体を含む ）。
2. ２．配偶子とスポロゾイトの両方の膜から得られる点に特徴がある、熱帯熱マラ リア原虫の１６ｋＤａタンパク質およびその免疫学的誘導体。
3. ３．哺乳動物においてスポロゾイトと赤血球外世代の寄生虫の両方に対して免疫 応答を誘起させ得る点に特徴がある、請求項１または２記載の熱帯熱マラリア原 虫の１６ｋＤａタンパク質およびその免疫学的誘導体。
4. ４．請求項１−３のいずれか１つに記載した１６ｋＤａタンパク質またはその免 疫学的誘導体を含む融合タンパク質。
5. ５．巨大分子に結合された１６ｋＤａタンパク質またはその免疫学的誘導体。
6. ６．請求項１−５のいずれかに記載した実質的に純粋なタンパク質。
7. ７．請求項１−５のいずれか１つに記載した１６ｋＤａタンパク質またはその免 疫学的誘導体もしくは融合タンパク質をコードする、実質的に図１に示した通り のＤＮＡ配列またはその変異型。
8. ８．請求項７に記載したＤＮＡ配列を含む発現ベクター。
9. ９．請求項８に記載した発現ベクターで形質転換された宿主。
10. １０．請求項９に記載した細菌またはウイルス宿主。
11. １１．医薬として使用するための、請求項１−５のいずれか１つに記載したタン パク質。
12. １２．請求項１−５のいずれか１つに記載したタンパク質を適当な担体と共に含 有してなるワクチン組成物。
13. １３．他のブラスモディウム抗原をさらに含む、請求項１０記載のワクチン組成 物。
14. １４．請求項１−５のいずれか１つに記載したタンパク質を含む、熱帯熱マラリ ア原虫感染症に対する伝播阻止ワクチン。
15. １５．請求項１−５のいずれか１つに記載したタンパク質を含む、抗−赤血球外 およびスポロゾイトワクチン。
16. １６．請求項１０に記載した宿主を含むワクチン。
17. １７．アジュバントをさらに含む、請求項１１−１４のいずれか１つに記載した ワクチン。
18. １８．熱帯熱マラリア原虫感染症の予防用ワクチンを調製するための、請求項１ −５のいずれか１つに記載したタンパク質の使用。
19. １９．伝播阻止ワクチンとして使用されるワクチンを調製するための、請求項１ −５のいずれか１つに記載したタンパク質の使用。
20. ２０．免疫学的に有効な量の請求項１−５のいずれか１つに記載したタンパク質 を投与することからなる、熱帯熱マラリア原虫感染症にかかりやすい患者の予防 処置方法。
21. ２１．請求項１−５のいずれかに記載したタンパク質の生産方法であって、ａ） 宿主を請求項６に記載のＤＮＡ配列で形質転換し、ｂ）該宿主を適当な培地で培 養し、該培地から該タンパク質を単離することからなる方法。
22. ２２．実質的にここに記載した通りのタンパク質。
23. ２３．実質的にここに記載した通りのワクチン。