JPH055840B2 - - Google Patents
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Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
Description
この発明はヒトインスリン様成長因子(以下
IGF−と略称する)の製造法に関する。 ところで、ヒトインスリン様成長因子は、あ
る種のホルモンにより刺激されたヒトの組織、肝
および腎において主として合成される蛋白ホルモ
ンであつて、ヒト血清中に見出される。 IGF−は、インスリン様の活性および軟骨に
よる硫酸塩取込みを刺激する活性を有するととも
に細胞内での蛋白およびDNAの合成を増強する
ことが、知られている。 従つて、それは成長の促進に有用であり、また
糖尿病の臨床治療においても有用でありうる。 IGF−はヒト血清中に分泌される量がわずか
であり、数トンのヒト血清から数mgしか単離でき
ない。なお、IGF−産生細胞から純粋な形で単
離され、IGF−が上記の生物学的性質を有する
ことが見出され、そのアミノ酸配列が文献に報告
されている。 しかしながら、IGF−のより実行可能な商業
的製造法が必要であり、かかる必要性が本発明の
完成に対する刺激となつた。 組換えDNA(遺伝子組換え)技術ならびに関連
技術の適用が、最も有効なIGF−の大量製造法
となると考えられた。 IGF−は、次の配列の70個のアミノ酸からな
ることが知られている。
IGF−と略称する)の製造法に関する。 ところで、ヒトインスリン様成長因子は、あ
る種のホルモンにより刺激されたヒトの組織、肝
および腎において主として合成される蛋白ホルモ
ンであつて、ヒト血清中に見出される。 IGF−は、インスリン様の活性および軟骨に
よる硫酸塩取込みを刺激する活性を有するととも
に細胞内での蛋白およびDNAの合成を増強する
ことが、知られている。 従つて、それは成長の促進に有用であり、また
糖尿病の臨床治療においても有用でありうる。 IGF−はヒト血清中に分泌される量がわずか
であり、数トンのヒト血清から数mgしか単離でき
ない。なお、IGF−産生細胞から純粋な形で単
離され、IGF−が上記の生物学的性質を有する
ことが見出され、そのアミノ酸配列が文献に報告
されている。 しかしながら、IGF−のより実行可能な商業
的製造法が必要であり、かかる必要性が本発明の
完成に対する刺激となつた。 組換えDNA(遺伝子組換え)技術ならびに関連
技術の適用が、最も有効なIGF−の大量製造法
となると考えられた。 IGF−は、次の配列の70個のアミノ酸からな
ることが知られている。
【表】
【表】
この発明の発明者らは、以下の諸必須工程を用
いて大量のIGF−を製造することに成功した。 工程1 IGF−をコードする遺伝子を製造するプロセ
ス。このプロセスに続いて、保護ペプチドをコー
ドする遺伝子を、IGF−をコードする遺伝子
(以下、IGF−遺伝子と呼ぶ)と、該IGF−
遺伝子の上流にリンカーを用いるかまたは用いな
いで連結することからなるところの、保護ペプチ
ドと融合したIGF−(以下、融合IGF−と呼
ぶ)をコードする遺伝子を製造するプロセスを設
ける。 適当な「リンカー」には、IGF−遺伝子の上
流に保護ペプチドを連結するための適当な制限酵
素認識部位をもち、数個のアミノ酸をコードする
遺伝子が包含され得て、「リンカー」自身が該保
護ペプチドを構成する。 とくに好ましい「リンカー」は後記の実施例中
で例示されているごときものである。 適当な「融合IGF−、すなわち保護ペプチド
と融合したIGF−」は、後記の実施例において
説明、例示されるごときものである。 工程2 プロモーター遺伝子および融合IGF−をコー
ドする遺伝子をプラスミド中に挿入することから
なる発現ベクター製造プロセス。 とくに適当な「発現ベクター」には、プラスミ
ドpLHSdMmtrpなどが含まれうる。 とくに適当な「プラスミド」には、pBR322な
どが含まれうる。 工程3 前記発現ベクターで宿主生物を形質転換するこ
とからなる形質転換体製造プロセス。 適当な「宿主生物」には、エシエリキア・コリ
(Escherichia coli)(たとえばエシエリキア・コ
リHB101など)などが含まれうる。 工程4 前記の形質転換体を適当な培地中で培養するこ
とからなる融合IGF−製造プロセス。 工程5 宿主生物の細胞から融合IGF−を単離するプ
ロセス。 工程 6 前記融合IGF−を保護ペプチド脱離反応に付
すことからなるIGF−製造プロセス。 「融合IGF−、すなわち保護ペプチドと融合
したIGF−」なる表現における「保護ペプチ
ド」は、宿主生物細胞中でのプロテアーゼによる
分解に対してIGF−を保護するために使用さ
れ、該融合IGF−Iの脱離反応によつて除去され
る。 すなわち、該融合IGF−は、脱離反応によつ
てIGF−を調製するための中間体であり、従つ
て該保護ペプチドは、天然または合成の蛋白、天
然または合成のペプチド、あるいはそれらの断片
から誘導された任意の脱離可能な保護ペプチドで
ありうる。 適当な「融合IGF−」には、蛋白ペプチドの
メチオニンを介してその蛋白ペプチドと融合した
IGF−がふくまれる。 この脱離反応に使用される適当な試薬には臭化
シアンが含まれる。 この工程では、蛋白ペプチドがそれぞれのメチ
オニンを介してIGF−と融合している場合に
は、融合IGF−は、臭化シアンを用いる脱離反
応によつて高収率でIGF−に転化できる。 本脱離反応は、反応に悪影響を及ぼさない通常
の溶媒中で緩和な条件下に実施できる。 上記IGF−のアミノ酸配列から、いくつかの
特定の非自明の基準に従つて、対応するヌクレオ
チド配列を発明した。IGF−遺伝子を、クロー
ニングベクターとしての既知のプラスミドに挿入
することによつて、クローン化した。組換えプラ
スミドからIGF−遺伝子を切出し、つぎに、プ
ロモーターによる制御下でのIGF−遺伝子の発
現を極大ならしめるように特にデザインされたプ
ラスミド中にIGF−遺伝子を挿入した。さら
に、保護ペプチドをコードする構造遺伝子を前記
IGF−遺伝子の上流にかつそれを隣接して挿入
した。 以下に、本発明をより詳しく説明するが、本発
明はそれらに限定されるものではない。 〔1〕 IGF−遺伝子の調製とクローニング: (1) IGF−遺伝子の調製: 遺伝暗号の多様性のため、上記アミノ酸配
列から、IGF−をコードする多数のヌクレ
オチド配列を予言することが可能である。 多数の可能性のうちから最適の配列を本発
明に従つて決定するに当つて、いくつかの自
明でない基準に従つた。まず、使用する予定
の宿主生物に受容れられうるトリヌクレオチ
ドコドンを使用すべきである。第二に、その
配列は、所望通りの配置でプラスミド中へ挿
入できるよう、分子の末端に種々の制限酵素
認識部位をもつことが望ましい。さらに、周
知のクローニングベクターの使用が可能とな
るような部位を選択するようにすべきであ
る。第三に、合成が不必要に複雑であつては
ならず、また、遺伝子の組立てを容易にすべ
く、誤まつた交差ハイブリツド化を極少にし
て、不可逆的なオフダイアゴナル(off−
diagonal)な相互反応をできるだけ避けるよ
うにすべきである。 IGF−遺伝子部分をコードするために選
んだ好ましい配列を一例を以下に示すことが
できる:
いて大量のIGF−を製造することに成功した。 工程1 IGF−をコードする遺伝子を製造するプロセ
ス。このプロセスに続いて、保護ペプチドをコー
ドする遺伝子を、IGF−をコードする遺伝子
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遺伝子の上流にリンカーを用いるかまたは用いな
いで連結することからなるところの、保護ペプチ
ドと融合したIGF−(以下、融合IGF−と呼
ぶ)をコードする遺伝子を製造するプロセスを設
ける。 適当な「リンカー」には、IGF−遺伝子の上
流に保護ペプチドを連結するための適当な制限酵
素認識部位をもち、数個のアミノ酸をコードする
遺伝子が包含され得て、「リンカー」自身が該保
護ペプチドを構成する。 とくに好ましい「リンカー」は後記の実施例中
で例示されているごときものである。 適当な「融合IGF−、すなわち保護ペプチド
と融合したIGF−」は、後記の実施例において
説明、例示されるごときものである。 工程2 プロモーター遺伝子および融合IGF−をコー
ドする遺伝子をプラスミド中に挿入することから
なる発現ベクター製造プロセス。 とくに適当な「発現ベクター」には、プラスミ
ドpLHSdMmtrpなどが含まれうる。 とくに適当な「プラスミド」には、pBR322な
どが含まれうる。 工程3 前記発現ベクターで宿主生物を形質転換するこ
とからなる形質転換体製造プロセス。 適当な「宿主生物」には、エシエリキア・コリ
(Escherichia coli)(たとえばエシエリキア・コ
リHB101など)などが含まれうる。 工程4 前記の形質転換体を適当な培地中で培養するこ
とからなる融合IGF−製造プロセス。 工程5 宿主生物の細胞から融合IGF−を単離するプ
ロセス。 工程 6 前記融合IGF−を保護ペプチド脱離反応に付
すことからなるIGF−製造プロセス。 「融合IGF−、すなわち保護ペプチドと融合
したIGF−」なる表現における「保護ペプチ
ド」は、宿主生物細胞中でのプロテアーゼによる
分解に対してIGF−を保護するために使用さ
れ、該融合IGF−Iの脱離反応によつて除去され
る。 すなわち、該融合IGF−は、脱離反応によつ
てIGF−を調製するための中間体であり、従つ
て該保護ペプチドは、天然または合成の蛋白、天
然または合成のペプチド、あるいはそれらの断片
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ありうる。 適当な「融合IGF−」には、蛋白ペプチドの
メチオニンを介してその蛋白ペプチドと融合した
IGF−がふくまれる。 この脱離反応に使用される適当な試薬には臭化
シアンが含まれる。 この工程では、蛋白ペプチドがそれぞれのメチ
オニンを介してIGF−と融合している場合に
は、融合IGF−は、臭化シアンを用いる脱離反
応によつて高収率でIGF−に転化できる。 本脱離反応は、反応に悪影響を及ぼさない通常
の溶媒中で緩和な条件下に実施できる。 上記IGF−のアミノ酸配列から、いくつかの
特定の非自明の基準に従つて、対応するヌクレオ
チド配列を発明した。IGF−遺伝子を、クロー
ニングベクターとしての既知のプラスミドに挿入
することによつて、クローン化した。組換えプラ
スミドからIGF−遺伝子を切出し、つぎに、プ
ロモーターによる制御下でのIGF−遺伝子の発
現を極大ならしめるように特にデザインされたプ
ラスミド中にIGF−遺伝子を挿入した。さら
に、保護ペプチドをコードする構造遺伝子を前記
IGF−遺伝子の上流にかつそれを隣接して挿入
した。 以下に、本発明をより詳しく説明するが、本発
明はそれらに限定されるものではない。 〔1〕 IGF−遺伝子の調製とクローニング: (1) IGF−遺伝子の調製: 遺伝暗号の多様性のため、上記アミノ酸配
列から、IGF−をコードする多数のヌクレ
オチド配列を予言することが可能である。 多数の可能性のうちから最適の配列を本発
明に従つて決定するに当つて、いくつかの自
明でない基準に従つた。まず、使用する予定
の宿主生物に受容れられうるトリヌクレオチ
ドコドンを使用すべきである。第二に、その
配列は、所望通りの配置でプラスミド中へ挿
入できるよう、分子の末端に種々の制限酵素
認識部位をもつことが望ましい。さらに、周
知のクローニングベクターの使用が可能とな
るような部位を選択するようにすべきであ
る。第三に、合成が不必要に複雑であつては
ならず、また、遺伝子の組立てを容易にすべ
く、誤まつた交差ハイブリツド化を極少にし
て、不可逆的なオフダイアゴナル(off−
diagonal)な相互反応をできるだけ避けるよ
うにすべきである。 IGF−遺伝子部分をコードするために選
んだ好ましい配列を一例を以下に示すことが
できる:
【表】
【表】
この明細書における配列の表示において、
A、G、CおよびTは、それぞれ次の式を意
味する:
A、G、CおよびTは、それぞれ次の式を意
味する:
【式】
【式】
また、5′−末端のA、G、CおよびTは、そ
れぞれ次式を意味する:
れぞれ次式を意味する:
【式】
そして、3′−末端のA、G、CおよびTは、
それぞれ次式を意味する:
それぞれ次式を意味する:
【式】
【式】
【式】
上記の諸基準、とくに上記第二の基準を考慮
に入れるとき、次の少しく長い配列を選択す
ることができる。 実際、この発明の適当な実施態様として、
EcoRIおよびBamHI部位を選択して、それ
ぞれ5′末端および3′末端に導入することがで
きる。 さらに、メチオニンコドン(ATG)を、
IGF−のN末端アミノ酸コドンの上流に、
これに隣接して、挿入し、2種の停止コドン
(TGAおよびTAG)を、C末端コドンの下
流に、これに隣接して、挿入した。
に入れるとき、次の少しく長い配列を選択す
ることができる。 実際、この発明の適当な実施態様として、
EcoRIおよびBamHI部位を選択して、それ
ぞれ5′末端および3′末端に導入することがで
きる。 さらに、メチオニンコドン(ATG)を、
IGF−のN末端アミノ酸コドンの上流に、
これに隣接して、挿入し、2種の停止コドン
(TGAおよびTAG)を、C末端コドンの下
流に、これに隣接して、挿入した。
【表】
【表】
本発明は、相当する多数のオリゴヌクレオチ
ドブロツクのハイブリツド化およびライゲー
シヨンからなることを特徴とする、前記のご
とき遺伝子の製造方法にも関するものであ
る。 (i) オリゴヌクレオチド類の合成: 実際、30種の合成オリゴヌクレオチドを
作成することによつて、上記の拡張された
配列を有する分子を合成することとした。
それら合成オリゴヌクレオチドを所定の段
階でハイブリツド化し、ライゲートすると
き、上記の二重鎖ヌクレオチド配列を与え
るものである。 この明細書におけるオリゴヌクレオチド
類の合成に関する記載においては、次の略
号を用いる。 Ap、Gp、CpおよびTpは、それぞれ次
式を意味する:
ドブロツクのハイブリツド化およびライゲー
シヨンからなることを特徴とする、前記のご
とき遺伝子の製造方法にも関するものであ
る。 (i) オリゴヌクレオチド類の合成: 実際、30種の合成オリゴヌクレオチドを
作成することによつて、上記の拡張された
配列を有する分子を合成することとした。
それら合成オリゴヌクレオチドを所定の段
階でハイブリツド化し、ライゲートすると
き、上記の二重鎖ヌクレオチド配列を与え
るものである。 この明細書におけるオリゴヌクレオチド
類の合成に関する記載においては、次の略
号を用いる。 Ap、Gp、CpおよびTpは、それぞれ次
式を意味する:
【式】
【式】
また、3′末端のA、G、CおよびTは、そ
れぞれ次式を意味する:
れぞれ次式を意味する:
【式】
【式】
【式】
ABzpo、GiBpo、CBzpo、TpoおよびACUpo
は、それぞれ次式を意味する。 DMTrはジメトキシトリチルであり、B
はアデニニル、グアニニル、シトシニルお
よびチミニル(便宜上、保護基は示さな
い)、 Uはウラシルであり、 Acはアセチルであり、 mは1または2なる整数であり、 nは1〜12の整数である。 オリゴヌクレオチド類は次の通りであ
る:
は、それぞれ次式を意味する。 DMTrはジメトキシトリチルであり、B
はアデニニル、グアニニル、シトシニルお
よびチミニル(便宜上、保護基は示さな
い)、 Uはウラシルであり、 Acはアセチルであり、 mは1または2なる整数であり、 nは1〜12の整数である。 オリゴヌクレオチド類は次の通りであ
る:
【表】
【表】
その逐次カツプリング反応を第1表に示
す。 モノ(またはジ、あるいはトリ)マー
()は、広瀬の方法(T.Hirose、蛋白
質・核酸、酵素ISSN、25、225(1980)、日
本で発行)によつて調製でき、カツプリン
グはリン酸トリエステル法〔R.Creaら、
Nucleic Acids Research、8、2331
(1980)およびM.L.Duckworthら、
Nucleic Acids、Research、9、1691
(1981)〕により、セルロース担体上で実施
できる。 とくに、実施例1に記載したヘキサデカ
ヌクレオチド
HOApApApCpCpGpApCpCpGpGpCpTp
ApTpGOH(G1)の合成に関して、合成
法を説明することとする。ヘキサデカヌク
レオチドG1合成のフローチヤートを第2
表に示す。
す。 モノ(またはジ、あるいはトリ)マー
()は、広瀬の方法(T.Hirose、蛋白
質・核酸、酵素ISSN、25、225(1980)、日
本で発行)によつて調製でき、カツプリン
グはリン酸トリエステル法〔R.Creaら、
Nucleic Acids Research、8、2331
(1980)およびM.L.Duckworthら、
Nucleic Acids、Research、9、1691
(1981)〕により、セルロース担体上で実施
できる。 とくに、実施例1に記載したヘキサデカ
ヌクレオチド
HOApApApCpCpGpApCpCpGpGpCpTp
ApTpGOH(G1)の合成に関して、合成
法を説明することとする。ヘキサデカヌク
レオチドG1合成のフローチヤートを第2
表に示す。
【表】
↓
DMTrOCBzpoCBzpoGiBpoABzpoCBzpoCBzpoG
iBpoGiBpoCBzpoTpoABzpoTpoGiBpoAcUpo〓c
ellulose
↓
HOCBzpoCBzpoGiBpoABzpoCBzpoCBzpo
GiBpoGiBpoCBzpoTpoABzpoTpoGiBpoAcUpo〓
cellulose
DMTrOABzpoABzpoABzpo〓CE
DMTrOCBzpoCBzpoGiBpoABzpoCBzpoCBzpoG
iBpoGiBpoCBzpoTpoABzpoTpoGiBpoAcUpo〓c
ellulose
↓
HOCBzpoCBzpoGiBpoABzpoCBzpoCBzpo
GiBpoGiBpoCBzpoTpoABzpoTpoGiBpoAcUpo〓
cellulose
DMTrOABzpoABzpoABzpo〓CE
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 保護ペプチドが最終のアミノ酸としてメチオ
ニンを有する蛋白ペプチドであつて、その蛋白ペ
プチドの該メチオニンを介してインスリン様成長
因子と融合している保護ペプチド融合インスリ
ン様成長因子を臭化シアンを用いた脱離反応に
付すことを特徴とするインスリン様成長因子の
製造法。 2 保護ペプチド融合インスリン様成長因子が
次のアミノ酸配列をもつ特許請求の範囲1記載の
インスリン様成長因子の製造法。 【表】 【表】
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB848407044A GB8407044D0 (en) | 1984-03-19 | 1984-03-19 | Producing human insulin |
GB8424197 | 1984-09-25 | ||
GB8407044 | 1984-09-25 |
Related Child Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4153492A Division JPH07108229B2 (ja) | 1984-03-19 | 1992-06-12 | 保護ペプチド融合インスリン様成長因子i遺伝子 |
JP4153493A Division JPH0713080B2 (ja) | 1984-03-19 | 1992-06-12 | 保護ペプチド融合インスリン様成長因子i |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS611396A JPS611396A (ja) | 1986-01-07 |
JPH055840B2 true JPH055840B2 (ja) | 1993-01-25 |
Family
ID=10558294
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP5551485A Granted JPS611396A (ja) | 1984-03-19 | 1985-03-18 | インスリン様成長因子iの製造法 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS611396A (ja) |
GB (1) | GB8407044D0 (ja) |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0759598B2 (ja) * | 1986-02-14 | 1995-06-28 | 藤沢薬品工業株式会社 | ヒトインスリン様成長因子▲i▼の製造法 |
WO2016051752A1 (ja) * | 2014-09-29 | 2016-04-07 | 国立大学法人東北大学 | プロテアーゼの基質ペプチド及びプロテアーゼの活性測定方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS54163600A (en) * | 1977-11-08 | 1979-12-26 | Genentech Inc | Microbiological polypeptide expression method and means |
JPS56145221A (en) * | 1980-03-24 | 1981-11-11 | Genentech Inc | Bacteria polypeptide development using tryptophan promotor operator |
-
1984
- 1984-03-19 GB GB848407044A patent/GB8407044D0/en active Pending
-
1985
- 1985-03-18 JP JP5551485A patent/JPS611396A/ja active Granted
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS54163600A (en) * | 1977-11-08 | 1979-12-26 | Genentech Inc | Microbiological polypeptide expression method and means |
JPS56145221A (en) * | 1980-03-24 | 1981-11-11 | Genentech Inc | Bacteria polypeptide development using tryptophan promotor operator |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB8407044D0 (en) | 1984-04-26 |
JPS611396A (ja) | 1986-01-07 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |