JPH05500056A - アジュバント複合体 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 アジュバント複合体 本発明は、脂質および少なくとも１つのグリコシド（ｇｌｙｃｏｓｉｄｅ）より なるアジュバント活性を有する複合体、および該複合体の取り込みのための新規 なグリコシドに関する。

微生物に対して動物を予防的に免疫する方法は、微生物由来の抗原を、動物中で の抗体の産生を増強する物質、および／または抗原の細胞（介在）性免疫応答を 増強する物質とともに投与することよりなる。この増強物質はアジュバントとし て知られている。多くの国で現在ヒトまたは豚での使用が認められている唯一の アジュノくントは水酸化アルミニウムとリン酸アルミニウムである。これらのア ジュバントは多くのワクチンに対して充分であるか、フロイント完全アジュバン ト（ＦＣＡ）またはキルＡ（Ｑｕｉｌ　Ａ）　（サポニンとしても知られている ）が、しばしば抗体応答や細胞性免疫の誘導に、より有効であることが研究によ り証明されている。しかしこれらのアジュバントは動物でワクチン接種に対して 有害な反応を起こすことがある。

ヨーロッハ特許出ＷＡＯ１０９９４２号とヨーロツノク特許出願０１８０５６４ 号は、トリテルペノイドサポニン（特にキルＡ）のようなグリコシドと、疏水性 領域を含む抗原との間て形成される免疫原性複合体（ｉｍｍｕｎｏｇｅｎ−ｉｃ 　ｃｏｍｐｌｅｘｅｓ）について記載している。これらの免疫刺激性複合体（ｉ ｍｍｕｎｏ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｇ　ｃｏｍｐｌｅｘｅｓ）は「イスコム」　（ “ｉｓｃＯｍｓ”）という名前が与えられている。イスコム中のキルＡの量は、 同様の抗原性効果を出すためにキルＡと抗原を混合する場合よりも、約１０から １００倍低い。イスコムはキルＡに見られるような有害な反応を示さない。

ヨーロッパ特許出願２３１０３９号は、基本的なイスコム構造（以後イスコム「 マトリックス」と呼ぶ）の形成に抗原の存在は必要でなく、ステロール（例えば コレステロール）、リン脂質（例えばフォスファチジルエタノールアミン）およ びグリコシド（例えばキルＡ）からマトリックスを形成させることができること を示している。しかしこのようなマトリックスがアジュバントとして有効である ことは開示されてなく、抗原の存在なしにイスコム様構造が形成され得ることを ついでに示したのみである。我々は、このような空の（ｅｍｐｔｙ）マトリック スは、イスコムマトリックスの一部でない細菌およびマイコプラズマ抗原に添加 することにより、アジュバント機能を与えるために使用できることを見いだした 。

さらに前記の３種の文献においては、水不溶性抗原が使用された場合は、これと 界面活性剤により可溶化し、次にグリコシドなどと混合してから界面活性剤を（ 例えば透析により）除去して、イスコムを形成させている。

我々は、界面活性剤の存在においてもイスコムは形成され、この除去は不要であ ることを見いだした。イスコムマトリックスも同様の方法で形成される。

本発明の１つの面は、（１）細菌またはマイコプラズマに関連する抗原、そして （２）前記の抗原は取り込まれていないイスコムマトリックスよりなる、ヒトま たは動物に使用するためのワクチンを与える。

本発明はまた、（１）グリコシド、ステロールおよび随時リン脂質の複合体を形 成し、（２）該複合体をｗＩ菌またはマイコプラズマに関連する抗原と混合する ことよりなる、ヒトまたは動物に使用するためのワクチンの調製方法を包含する 。

ここで「動物」とは、ヒトでないを推動物を意味し、好ましくは牛、豚、羊、山 羊、馬、犬または猫などの哺乳動物を意味する。

ワクチンは１つまたはそれ以上の賦形剤および通常の性質を有する担体を含んで いてもよい。これらは通常前記工程の段階（２）の最中またはその後に添加され る。

ここで「細菌またはマイコプラズマに関連する抗原」とは、抗原に接触させた（ 　ｅｘｐｏｓｅｄ）を推動物中で、細菌またはマイコプラズマに対して防御抗体 の産生または細胞性免疫応答を誘導することができる任意の物質を意味する。こ の抗原は細菌またはマイコプラズマに関連する蛋白、糖蛋白、糖脂質、多糖また はリボ多糖のすべてまたは一部でもよく、またはこのような蛋白、糖蛋白、糖脂 質、多糖またはリボ多糖のすへてまたは一部に類似するポリペブチ１くまたは他 の物質でもよい。イスコムマトリックスの形成中にその中に抗原は取り込まれな いため、従来技術の方法のように抗原は疏水性領域を有していたり、疏水性基に 結合している必要もない。ワクチン中に細菌またはマイコプラズマ自身か存在す る必要はないが、抽出物の代わりに全細胞（例えばヘモフィルスプルーロニュー モｓ−−（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ　ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ））が 使用されるなら、ワクチンのコストを下げることかできる。

、：こて［マイコプラズマｊには、ウレアプラズマ（ｕｒｅａｐｌａｓｍａｓ） やアコレプラズマ（ａｃｈｏｌｅｐｌａｓｍａｓ）として知られている密接に関 連する微生物も含まれる。

細菌の疾患には、マイコバクテリウム（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕ−［＋１．＞ （例えばエム・チュウバーキュローシス（Ｍ、　ｔｕｂｅｒｃｕ−１ｏｓｉｓ） やエム・ボビス（Ｍ、　ｂｏｖｉｓ））　、クロストリジウム（Ｃｌｏｓｔｒｉ ｄｉｕｍ）　（例えばシー・ウェルチイ（Ｃ，ｗｅｌｃｂｉ　ｉ）、リケッｆ　 ｔ　（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ）　、スピロヘータ（Ｓｐｉｒｏｃｈａ−ｅｔｅｓ ）、（例えばトレポネーマバリダム（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａｐａｌｌｉｄｕｍ’） またはレブトスピラボモナ（Ｌｅｐｔｏｓｐｉｒａｐｏｍｏｎａ）　）　、エッ シャリッチア（ε５ｃｈｅｒｉｃｈｉａ）（例えば−イー・コリ（Ｅ、　ｃｏｌ ｉ）　）　、スタフィロコッカス（５ｔａｐｈ−ｙｌｏｃｏｃｃｉ）　（例えば ニス・アウレウス（Ｓ、　ａｕｒｅｕｓ））、ヘモフィルス（Ｈａｅｍｏｐｈｉ ｌｕｓ）　（例えばエイチ・・インフルエンザ（Ｈ，１ｎｆｌｕｅｎｚａｅ）や エイチ・ブルーロニューモニー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　） 　、ポーデテラ（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ）（例えはヒー・バータシス（Ｂ、　ｐ ｅｒｔｕｓｓｊｓ）　）　、ビブリオ（Ｖｉｂｒｉｏ）　（例えばブイ・コレラ （Ｖ、　ｃｈｏｒｅｒａｅ）　）　、サルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）　（ 例えばニス・ティフィ（Ｓ。

ｔｙｐｈｉ）やニス・バラティフィ（Ｓ、　ｐａｒａｔｙｐｈｉ））　、ストレ プトコッカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｉ）　（例えばニス・アガラクチー（Ｓ 、　ａｇａＬａｃｔｉａｅ）　）、ナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）　（例え ばエヌ・ゴルア（Ｎ、ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａ）　）　、パスツレラ（Ｐａｓｔｅ ｕｒｅｌｌａ）　（例えばビーーフルトシダ（Ｐ、　ｍｕｌｔｏｃｉ−ｄａ）） 、レジオネラ（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ）　（例えばエル・ニューモニー（Ｌ、　 ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　）　、クラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ）（例えばシ ー・ブシタツシ（Ｃ，ｐｓｉｔｔａｃｉ）　）　、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄ ｏｍｏｎａｓ）　（例えばビー・マリ−（Ｐ、　ｍａｌｌｉ−ａｅ）　）　、ア クチッパシラス（Ａｃｔｉｎｏｂａｃｉｌｌｕｓ）（例えばニー・ブルーロニュ ーモニ−（Ａ、　ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕ＋ｎｏｎｉａｅ）　）、キャンピロバク ター（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ）（例えばシー・ジェジュニ　（Ｃ，ｊｅｊ ｕｎｉ）　）、リステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）　（例えばエル・モノサイトゲ ネス（Ｌ、　ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）　）　、プルセラ（Ｂｒｕｅｅｉｌ ａ）　（例えばビー・アボータス（Ｂ、　ａｂｏｒｔｕ−ｓ））　、：）リネバ クテリウム（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ）（例えばシー・シフテリー（Ｃ ，ｄｉｐｔｈｅｒｉａｅ）　）　、エルシニア（Ｙｅｒｓｉｎｉａ）　（例えば ワイ・シュードチュウバーキュローシス（Ｙ、　ｐｓｅｕｄｏｔｕｂｅｒｃｕｌ ｏｓｉｓ）　、ニューモコッカス（Ｐｎｅｕｍｏｃｏｃｃｉ）　（例えばストレ ブトツカス・ニューモニ−（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｃｕｓ　ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ） ）　、バシラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ’＞（例えば、ビー・アントラシス（Ｂ、　 ａｎｈｒａｃｉｓ））　、クレブシエラ（Ｋｌｅｂｓｉｅｌｌａ）　（例えばケ ー・ニューモニ−（Ｋ、ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　）　、シゲラ（Ｓｈｉｇｅｌ ｌａ）（例えばニス・ジセンテリ−（Ｓ、　ｄｙｓｅｎｔｅｒｉａｅ）　）およ びアクニノミセーテス（Ａｃｔｉｎｏｍｙｓｅｔｅｓ）　（例えばノカルジアア ステロイデスＣＮｏｃａｒｄＬａ　ａｓｔｅｒｏｉｄｅｓ））に引き起こされる 疾患が含まれる。

好ましくは、細菌は、マイコバクテリウム（Ｍｙｃｏｂａｃ−ｔｅｒｉｕｍ＞　 （例えばエム・チュウバーキュローシス（Ｍ。

ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）　）　、クロス！・リジウム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉ ｕｍ）（例えばシー・ウェルチイ（Ｃ，ｗｅｌｃｈｉｉ）　）　、リケッチャ（ Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ）　、スピロヘータ（Ｓｐｉｒｏｃｈａｅｔｅｓ）　（例 えばトレポネーマバリダム（Ｔｒｅｐｏｎｅｍａ　ｐａｌｌｉｄｕｍ）　）、エ ッシャリッチア（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ）（例えばイー・コリ　（Ｅ。

ｃｏｌｉ）　）　、スタフィロコッカス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｉ）　（例 えばニス・アウレウス（Ｓ、　ａｕｒｅｕｓ））　、ヘモフィルス（Ｈａｅｍｏ ｐｈｉｌｕｓ）　（例えばエイチ・インフルエンザ（Ｈ。

ｉｎｆ　Ｉｕｅｎｚａｅ）やエイチ・ブルーロニューモ＝　−（Ｈ，ｐｌ−ｅｕ ｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　）　、ボーデテラ（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ）　（ 例えばビー・バータンス（Ｂ、　ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）　）　、ビブリオ（Ｖｉ ｂｒｉｏ）（例えばブイ・コレラ（Ｖ、　ｃｈｏｙｅｒａｅ）　）　、サルモネ ラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）　（例えばニス・ティブイ（Ｓ、　ｔｙｐｈｌ）や ニス・パラティブイ（Ｓ、　ｐａｒａｔｙｐｈｉ））　、ストレプトコッカス（ Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｉ）　（例えばニス・アガラクチー（Ｓ、　ａｇａｌａ ｃｔｉａｅ））　、ナイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）　（例えばエヌ・ゴルア （Ｎ、　ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａ））　、パスツレラ（Ｐａｓｔ−ｅｕｒｅｌｌ、 ａ）　（例えばピーーフルトシダ（Ｐ、　ｍｕｌｔｏｃｉｄａ））、レジオネラ （Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ）　（例えは、エル・ニューモニー（Ｌ、　ｐｎｅｕｍ ｏｎｉａｅ）　）　、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）（例えばビー −７リー（Ｐ、　ｍａｌｌｉａｅ）　）　、アクチッパシラス（Ａｃｔｉｎｏｂ ａｃｉｌｌｕｓ）　（例えばニー・ブルーロニューモニー（Ａ、　ｐｌｅｕｒｏ ｐｎｅｕｍｏｎｊａｅ））　％キャンピロバクター（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅ ｒ）　（例えばシー・ジェジュ＝　（Ｃ，ｊｅｊ−ｕｎＩ））、リステリアＣＬ ｉ５ｔｅｒｉａ）　（例えばエル・モノサイトゲネス（Ｌ、　ｍｏｎｏｃｙｔｏ ｇｅｎｅｓ））である。特定の抗原はコリ（Ｃｏｌｉ）中に粘着因子（例えばサ ルモネラ（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）中の繊毛に８８、ボリン（ｐｏｒｉｎ）蛋白 ）やビー・バータンス（Ｂ、　ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）やナイセリアメニンギチヂ ス（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ　ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）の外殻の膜蛋白を含む。

好ましくは、抗原は従来のイスコム（すなわちヨーロッパ特許出願１０９９４２ 号やヨーロッパ特許出願］、　８０５６４号に記載されたもの）を形成しないも のである。

エイチ・ブルーロニューモニー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）に対 して豚のワクチン接種か特に好適である。

獣医学的または医学的に関連のあるマイコプラズマは、マイコプラズマボビス（ Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ　ｂｏｖｉｓ）、エム１ガリセブチカムＣＭ、　ｇａｌｌ ｉｓｅｐｔｉｃｕｍ）、エム・アガラクチー（Ｍ、　ａｇａｌａｃｔｉａｅ）　 、１ム・ヒオニュ−−Ｔ：＝　−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎ−ｅｕｍｏｎｉａｅ）　、 エム・ニューモニ−（Ｍ、　ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　、エム・ソノビー（Ｍ、 　５ｙｎｏｖｉａｅ）　、エム・アースリチヂス（ａｒｔｈｒｉｔｉｄｉｓ）　 、エム・カブリコリラム（Ｍ、　ｃｐｒｉｃｏｌｉｕｍ）、エム・デスパー（Ｍ 、　ｄｉｓｐａｒ）　、エム・ホミニス（Ｍ。

ｈｏｍｉｒ＋ｉｓ）、エム・ミコイデス・カプリ亜種（Ｍ、　ｍｙｃｉｏｄｅｓ ｓｕｂｓ、　ｃａｐｒｉ）、エム・オラーレ（Ｍ、　ｏｒａｌｅ）、エム・オリ ニューモニー（Ｍ、　ｏｒｉｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、エム・ノクルモニス（Ｍ 。

ｐｕｌｍｏｎｌｓ＞、エム°シラス（Ｍ、　ｃｙｎｏｓ）　、エム°ヒオリニス （Ｍ、　ｈｙｏｒ旧ｎ１ｓ）、エム・ミコイデス（Ｍ、　ｍｙｃｉｏｄｅｓ）、 エム・サルバリウム（Ｍ、　ｓａｌｖａｒｉｕｍ）そしてエム・ファーメンタン スＣＭ、　ｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）などがある。

前記の方法で抗原は（イスコム構造自身の一部として）イスコムマトリックス中 に取り込まれていないが、イスコｌ、マ）・リックスの外側に存在してもよいし 、または後でイスコムマトリックス中に組み込まれてもよい。

あるいはこれは溶液中にまたは分散して、完全に分かれて存在してもよい。

イスコムマトリックスはヨーロッパ特許出願０２３１０３９号に記載の方法、す なわち可溶化したステロール、グリコシドおよび（Ｆｆｉ時）　ＩＪン脂質を混 合し、次に可溶化剤を除去することにより調製してもよい。あるいは、可溶化剤 の除去を省略してもよい。キルＡ、コレステロールそしてフオスファヂジルエタ ノールアミンから得られたイスコムの電子顕微鏡写真（倍率ｉ１６．ｏ００Ｘ） は、ヨーロッパ特許出願０２３　］、　０３９号の図１に記載されている。リン 脂質が使用されない場合、２次元構造が形成される。このような構造の例はヨー ロッパ特許出願０２３１０３９号の図２に記載されている。この図はキルＡとコ レステロールから得られた構造の電子顕微鏡写真（倍率１４６．０００Ｘ）であ る。

本発明の方法で使用されるグリコシドは、ヨーロッパ特許出願０１０９９４２号 やヨーロッパ特許出願０２３１０３９号に記載のグリコシドと同じてもよい。

一般的にこのグリコシドは両親媒性を示すグリコシドであり、分子中に疎水性お よび親水性領域を含む。好ましくはサポニンが使用され、特にキラジャサボナリ アモリナ（Ｑｕｉｌｌａｊａ　５ａｐｏｎａｒｉａ　Ｍｏ１ｉｎａ）からのサポ ニン抽出物、まずケー・ダルスガード（Ｋ、　Ｄａｌ、ｓｇａｒｄ）の方法で調 製されるＤＱ−ｘキス（ＤＱ−ｅｘｔｒａｃｔ）　：サポニンアジュバント（Ｓ ａｐｏｎｉｎ　Ａｄｊｕｖａｎｔｓ、）、プル・オフ・インド・エビズ（Ｂｕｌ 、１．　Ｏｆｆ、Ｉｎｔ、、　Ｅｐｉｉｚ、）７７巻と７−８　１２８９−１２ ９５頁（１９７２年）、そしてこれもケー・ダルスガード（Ｋ、　Ｄａｌｓｇａ ｒｄ）　：サポニンアジュバントＩ［［アーキフフィアディーゲサムテビルスフ ｔ−シュング（Ｓａｐｏｎｉｎ　Ａｄｊｕｖａｎｔｓ　Ｉ目Ａｒｃｈｉｖ　ｆｕ ｒ　ｄｉｅ　ｇｅｓａｍｔｅＶｉｒｕｓｆｏｒｓｃｈｕｒ＋ｇ）　４４巻、２４ ３−２５４頁（１９７４年）の方法により調製さｔｌるキルＡがある。他の好適 なサポニンは、イースキュラスヒボ力スターナム（Ａｅｓｃｕ−ｉｕＳ　ｈｉｐ ｐＱｃａｓｔａｎＵＤｌ）からの−（−スジー゛′ン（ａｅｓＣｉｎｅ）（バッ トとウィンクラ−（Ｔ　Ｐａｔｔ　ａｎｄ　Ｗ　Ｗｉｎｋｌｅｒ）　：ダスセラ ビコーチッシュビルクザーメブリンチブデアロスカータニー（Ｄａｓｔｈｅｒａ ｐｅｕｔｉｓｃｈ　ｗｉｒｋｓａｍｅ　Ｐｒ１ｎｚｉｐ　ｄｅｒＲｏｓｓｋａａ ｔａｎｉｅ）イース午ユラスヒボカスターナム（Ａｅｓｃ−ｕｌｕｓ　ｈｉｐｐ ｏｃａｓｔａｎｕｍ）アルツナイメテルフオルシュング（Ａｒｚｎｅｉｍｉｔｔ ｅｌｆｏｒｓｃｈｕｎｇ）　第　１　ａ　＠＜４＞　、　２　７　ａ　−２７５ 頁（１９６０年）、およびジブソフィラストラチウム（Ｇｙｐｓｏｐｈｉｌｆａ 　ｓｔｒｕｔｈｉｕｍ）からのサボアルビン（ｓａｐｏａｌ−ｂｉｎ）（ポヘテ ン、ジューズおよびルイセン（ＲＶｏｃｈｅｔｅｎ。

Ｐ、　Ｊｏｏｓ　ａｎｄ　ＲＲｕｙｓｓｅｎ）　：サボアルビンの物理科学性質 とその泡安定性への関係（Ｐｈｙｓｉｃｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｐｒｏｐｅｒｔ− ｉｅｓ　ｏｆ　５ａｐｏａｌｂｉｎ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｒｅｌａｔｉｏｎ　 ｔｏ　ｔｈｅ　ｆｏａｍｓｔａｂｉｌｉｔｙ）、ジエイ・ファーム・ベルブ（Ｊ 、　Ｐｈａ、ｒｍ、　Ｂｅ−Ｉｇ、　’）第４２巻、２１３−２２６頁（１９６ ８年））である。キルＡの使用が特に好ましい。

本発明の方法において、グリコシドはミセル生成の少なくとも臨界濃度で使用さ れる。キルＡの場合この濃度は約０．０３重量％である。

一般的に、グリコシド（特にキルＡの場合）ニスチロール（特にコレステロール の場合）ニリン脂質のモル比は、ｌ：］：０−１、各数字につき±２０％（好ま しくは±１０％以下）である。これはギルＡ：コレステロールの重量比の約５＝ １に等しい。

本発明において使用されるステロールは、公知の動物性または植物性のステロー ル、例えばコレステロール、ラノステロール、ルミステロール、スチグマステロ ール、そしてシトステロールでよい。本発明の方法において、好ましくはコレス テロールが使用される。

３次元イスコムか形成されるようにするために、リン脂質を使用することが好ま しい。好適なリン脂質としては、フォスファチジルコリンやフｔスファチジルエ タノールがある。

本発明の第２の面において、水不溶性抗原よりなる免疫原性複合体の調製方法が 与えられ、この方法は抗原を可溶化剤で可溶化し、可溶化された抗原、グリコシ ド、ステロールおよび随時リン脂質を混合し、実質的に可溶化剤を除去せずにイ スコムを形成させることよりなる。

すなわちイスコムを形成させるために、限外濾過、透析、超遠心、またはクロマ トグラフィー法により可溶化剤を除去する必要はない。

抗原は前記したものであるが、これはマイコプラズマまたは細菌の代わりに、菌 類や寄生虫（例えば原生動物や嬬虫（ｈｅｌｍｉｎｔｈｓ））またはウィルスに 関連しているものでもよい。

疾患に関連する菌類としては：キャンヂダ種（Ｃａｎｄｉｄａ　ｓｐｐ、）　、 クリプトコツカス種（Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｓｐｐ、）、アスペルギルス 種（Ａｓｐｅｇｉｌｌｕｓｓｐｐ、）　、ミクロスポラム種（Ｍｉｃｒｏｓｐｏ ｒｕｍ　ｓｐｐ、）、トリコフィトン種（Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙ−ｔｏｎ　ｓｐｐ 、）　、エピデルモフィトン種（Ｅｐｉｄｅｒｍｏｐｈｙｔｏｎ　ｓｐｐ、）　 、そしてデルマドフィラス種（Ｄｅｒｍａｔｏｐｈｉｌｕｓ　ｓｐｐ、）などが ある。

疾患に関連した寄生虫としては、ヨーロッパ特許出願１０９９４２号に記載され たものなどがある。

疾患に関連したウィルスとしては、ヨーロッパ特許出願１０９９４２号に記載さ れたちのなどがある。これらの多くは外皮（ｅｎｖｅｌｏｐｅ）を存しており、 ここから適当な抗原か抽出される。特定のウィルスとしては、馬インフルエンザ ウィルス、馬ヘルペスウィルス、牛ウィルス性下痢ウィルス、コロナウィルス（ ｃｏｒｏｎａｖｉｒｕｓ）　、パルボウイルス（ｐａｒｖｏｖｉｒｕｓ）、猫白 血病ウィルス、猫免疫不全ウィルスそして馬ウィルス性動脈炎ウィルスなとかあ る。

可溶化剤はヨーロッパ特許出願０１０９９４２号またはヨーロッパ特許出願０２ ３１０３９号に記載の任意のものでよく、例えば界面活性剤、尿素またはグアニ ジンなとかある。

一般的に非イオン性、イオン性または両性イオン性界面活性剤、またはコール酸 をベースにした界面活性剤（例えばデスオキシコール酸すｌ−１１ウム）などが この目的に使用できる。好ましくは使用される界面活性剤は、オクチルグルコシ ド、ノニルＮ−メチルグルカミトまたはデカノイルＮ−メチルグルカミドである か、アルギルフェニルポリオギシエｆ−１ノンエーテル（特に９から１０個のオ キシエ升しン基を有するポリエチＬノングリコールｐ−−イソオクチルフコ、ニ ルニーデル、これは商品名）・リドンＸ　−１００尺１”１ｂ販されている）も 適し−ζ、シ゛乙。

本発明の方法は、両性（ａｍｐｈｉｐａｔｈｉｃ　ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ）を示 す抗原性蛋白またはペプチド（例えばヨーロッパ特許出願１０９９４２号に記載 のもの゛）からの免疫原性複合体の調製の使用できる。

抗原の単離と疎水性基への結合の適当な方法は、ヨーロッパ特許出願１０９９４ ２号に記載されている。

本発明の第２の面の方法において、溶解されたまたは可溶化された抗原は、一般 的に少なくともミセル生成の臨界濃度のグリコシド、ステロール、および随時リ ン脂質を含有する溶液と接触させられる。

必要な場合は、得られた免疫原性複合体の溶液を凍結乾燥する。のちに凍結乾燥 した調製物を水を添加して復元する。

本発明の第３の面は、ステロールそして随時リン脂質を可溶化剤で可溶化し、可 溶化剤を除去することなくグリコシドの溶液と混合することよりなる、イスコム マトリックスを作成する方法を与える。

ＥＴ溶化剤、ステロール、リン脂質およびグリコシドは前記したものである。

さらに本発明は、本発明の、第１または第２の面により調製された免疫原性覆合 体を含有する薬剤組成物に関する。これらの性質は、免疫原性複合体を非経口投 与に適した形（好ましくは注射できる形、特に皮下または筋肉内注射に適した形 ）で免疫原性複合体を調製することにより得られる。一般１７．薬剤組成物は免 疫原性複合体を水性の、薬剤として許容される媒体（必要な場合は浸透圧の調製 のための緩衝液および／または塩化ナトリウムのような塩）中に含有する。これ らの方法は当該技術分野で公知である。

以下の非限定的な実施例により、本発明の種々の好適な面を説明する。

実施例１−６＝空のイスコムマトリックス調製物必要な試薬 リン酸緩衝化生理食塩水（ダルベツコ−Ａ　（ＤｕｌｂｅｃｃｏＡ）、オキソイ ド（０ｘｏｉｄ）） 脂質ミックス（下記参照） 無菌蒸留水中のキルＡ１０鮎Ｗ／Ｖ溶液（スーパーフォス（５ｕｐｅｒｆｏｓ） ） ロール（グレードＩ　（Ｇｒａｄｅ　Ｔ）、豚の肝臓由来、シグマ社）、Ｌβフ ォスファチジルコリン（シグマ社）、メガ（Ｍｅｇａ）　９または１０またはト リトン（メガ９はノニルＮ−メチルグルカミドであり、メガＩＯはデカノイルＮ −メチルグルカミドである）、および無菌蒸留水方法 （ａ）２０％Ｗ／Ｖのメガ１０を無菌蒸留水中に調製する：すなわち２ｇのメガ １０を測り取り、１０ｍ１の水の中に溶解する。（ｂ）５０ｍｇのコレステロー ルを測り取り、５０ｍｇのフォスファチジルコリンに添加する。（Ｃ）コレステ ロールかフォスフアナジルコリン中に溶解したとき２ｍｌのクロロホルムを添加 する。（ｄ）１０ｍｌの２０％Ｗ／ＶメガＩＯを添加する。混合物は外観がミル クのように白くなる。これで容量か１２ｍ１になる。しかし撹拌でクロロホルム か蒸発し、最終容量は１０１１１１になる。（ｅ）暖かい部屋（３７°Ｃ）で、 容器のフタをとったまま磁気撹拌器上に放置する。撹拌を続けると混合物はさら に流動性になり透明になる。（ｆ）室温で保存する。

コ（ｕｎｉｖｅｒｓａｌ　ｆｌａｓｋ）中に入れる。１００μｍの１０９６キル Ａ溶液を加える。脂質ミックス４００μｍを加える。

溶液を最高の速度で１０秒間渦巻撹拌する。溶液を０．２μｍフィルター（ミリ ポア社）に通して除菌する。電子顕微鏡による分析用に少量デカントする。＋４ ℃で保存以下の変更を加えて実施例１の方法を行った。２０ｍ１のＰＢＳＡを無 菌のユニバーサルフラスコ中に入れる。

２００μＩのｌＯ％キルＡ溶液を加える。脂質ミックス８００μｌを加える。溶 液を最高の速度で１０秒間渦巻撹拌する。溶液を０．２μｍフィルターに通して 除菌する。電子顕微鏡による分析用に少量デカントする。＋４℃で保存する。

実施例３ ３０　Ｋの分子量カットオフ膜のついたアミコン（Ａｍｉ−ｃｏｎ）の撹拌中の セルに２０ｍ１のＰＢＳＡを加えた。８００μｍの脂質ミックスと２００μｍの １０％キルＡ溶液を加えた。溶液を５ｍ１ｆ：濃縮し、１００ｍ１のＰＢＳＡを 加えた。この操作を２回繰り返した。２０ｍ１の内容物を０．２μｍのフィルタ ーに通して、名前をつけて＋４℃で３０にの分子量カットオフ膜のついたアミコ ン（Ａｍｉ−ｃｏｎ）の撹拌中のセルに２０ｍ１のＰＢＳＡを加えた。４００μ ｍの脂質ミックスと１００μｍのｌＯ％キルＡ溶液を加えた。溶液を５ｍｌに濃 縮し、１００ｍ１のＰＢＳＡで再懸濁した。この操作を２回繰り返した。セル中 の最後の２０ｍ１の内容物を０．２μｍのフィルターに通して除菌し、名前をつ けて＋４°Ｃて保存した。

実施例５ ３０にの分子量カットオフ膜のついたアミコン（Ａｍｉ・−Ｃ００）の撹拌中の セルに２０ｍ１のＰＢＳＡを加えた。２００μｌの脂質ミックスと５０μ】の１ ０％キルＡ溶液を加えた。溶液を５ｍｌにａ槽し、１００［［１１のＰＢＳＡで 再懸濁した。この操作を１２回繰り返し７た。セル中の最後の２０ｍ１の調製物 を０．２μｍのフィルターに通し、名前をつけて＋４°Ｃで保存した。

実施例６ ３０にの分子量力ットオ）膜のついたアミコン（Ａｍｉ−ｃｏｎ）の撹拌中のセ ルに２０ｍ１のＰＢＳＡを加えた。１００μｍの脂質ミックスと２５μｌの１０ ％キルＡ溶液を加えた。溶液を５ｍｌに濃縮し、１００ｍ１のＰＢＳＡで再懸濁 した。この操作を２回繰り返した。セル中の最後の２０ｍ１の調製物を０．２μ ｍのフィルターに通して除菌し、名前をつけて＋４°Ｃで保存した。

電子顕微鏡による分析では、こねらのイスコムマトリックスは他の実施例よりも 少ないように見えた。

実施例７・マウスの実験　効果 近交系（Ｂａｌｂ／Ｃ）の同じ位の連合（６−８週合）の雌のマウスを使用した 。これらのマウス（Ｓ　Ｐ　Ｆ’　）はハーランーオラック（Ｈａｒｌａｎ−０ １ａｃ）（１＝セスタ−（Ｂｉｃｅｓｔｅｒ））の囲いて維持した装置から得ら れた。この実験中マイコブラズマヒオニューモニ−（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ　ｈ ｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）の国立菌株保存機関（Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｃｅ１ｌ 　Ｔｙｐｅ　Ｃｏ１１ｅｃｔｉｏｎ）の株を使用した。この菌はフリイス培地（ Ｆｒｉｉｓ　ｍｅｄｉｕｍ）の改変培地中で維持した。保存菌株は一７０°Ｃで 保存した。４０ｍ１の培養液にｐ１７．４で４ｍｌの保存菌培養物を接種し、次 に３７°Ｃで３日間またはｐＨが６．８に下がるまで培養して、ワクチン取り込 みのための各懸濁液を′：Ｊ４製した。この頃までの菌は増殖の対数期に入って いた。培養物を２級エチ【／ンイミン°Ｃ不活性化し、正接流（ｔａｎｇｅ−ｎ ｔｉａｌ　ｆ！ｏｉｖ）限外濾過を用いて濃縮し２、リン酸緩衝化生理食塩水（ ＰＢＳ）で洗浄し２．た。抗原の濃縮は、すべてのワクイーンか、マウスし投与 ツるワクチ゛１０．Ｉａｔｉにつき１０μｇの総蛋白を含有するように調節した 。

実施例３から６のイスコム調製物は以Ｆのように使用した。

８群の６匹つつのマウスを、各マウスに以下の調製物を０．１　ｍｌづつ与える ように、２回にわたって免疫した。

群　ワクチン接種 ＡｉＯμｇのエム・ヒオニューモニ−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍ−ｏｎｉａｅ） のみ Ｂ　フロイント完全アジュバントで免疫増強した１０μｇのエム・ヒオニューモ ニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏ旧ａｅ） Ｃマウス当り１０μｇのＱＡを含有するイスコムマトリックスで免疫増強した１ ０８ｇのエム・ヒオニューモ＝　−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｄ　 マウス当り５μｇのＱＡを含有するイスコムマトリックスで免疫増強した１０μ ｇのエム・ヒオニューモニ−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｅ　マウス 当り２．５μｇのＱＡを含有するイスコムマトリックスで免疫増強した１０μｇ のエム・ヒオニユリックスで免疫増強した１０μｇのエム・ヒオニューモ＝　− （Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｇ　マウス当り５μｇのＱＡを含有する イスコムマトリックスで免疫増強した０８ｇのエム・ヒオニューモニ−（Ｍ、　 ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｈマウス当り５μｇのＱＡを含有するイスコムマ トリックスで免疫増強した１０μｇのエム・ヒオニューモ＝　−（Ｍ、　ｈｙｏ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　＋１０７ｃｆｕのエム・ブルーロニューモニー（Ｍ、 　ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）ＱＡ＝キルＡ 第１回目の免疫の前にマウスの群の尾静脈からあらかしめ採血し、次に１４日後 に採血した。第１回目の免疫から２８日後にマウスにさらにワクチン接種を行い 、７日後に採血し、最後に２回目の免疫の２８日後に採血した。採血の日に血液 から血清を分離し、ＥＬＩＳＡで分析するまで一７０°Ｃて保存した。ワクチン 接種の後に局所的および全病的に有害な反応か起き・Ｓか否かを観察した。

結果 調製物に対して抗原が外米性であるイスコム調製物中のキルＡのアジュバント効 果を評価するために計画された実験の結果を、表１と２に示す。

結果は最大量の蛋白：キルＡ比（１０μｇ：マウス当り１０μｇ）を含有するイ スコム調製物がワクチンに対して最大の応答を示し、フロイント完全アジュバン トよりもよいということはないがほぼ同等の応答を示している。

マウス当りＩＯμｇ未満のキルＡを含有するイスコムワクチンを投与されたマウ スの群は、抗原に対する応答はアジュバントのない抗原のみより良いということ はなかった。

イスコムワクチンまたは抗原のみを投与されたどのマウスも、局所的にもまたは 全身性にもワクチン反応は見られなかった。フロイント完全アジュバントて免疫 したマウスで、免疫点て約３ｍｍの肉芽腫か見られたか、他のマウスと同様に全 身性の異常は見られなかった。

表１−間接酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）で測定したマウスでの抗エム ・ヒオニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏ−旧ａｅ）応答 Ａ　Ｏ，０２３０，１８４ Ｂ　Ｏ，０１９０，１，２６ ＣＯ，０＋９　０．２０３ Ｄ　Ｏ，０１９０，０４３ Ｅ　Ｏ，０＋９　０．０８３ Ｆ　Ｏ，０３２０，０２９ Ｇ　Ｏ，０４２０，０５２ ＨＯ，０４００，１５０ 標準偏差は省略さ１１ている Ｄ　Ｐ　２　’−第２回目のリフ下−ン１妾種のｊ会のｌコム実施例）〕・マウ スでの実験・、マウスて■つへモブイルスブルーロニューモー−（Ｉ（ａｅｍｏ ｐ旧１ｕｓ　ｐｌｅＵｒｏｐＨｅｌＪｍｏｎｌａｅ＞ワクチンのアシコバ〉・ｌ ・としての空のイン二コムマｌ−リ・マウスの評価 不活性化エイヂ・ブルーロニューモニー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐ−ｎｅｕｍｏｎｉ ａｅ）の全菌体と種々のａ度のギルＡで調剤したイスコムマトリックスを含有す るワクチンで、マウスを免疫した。マウス当りｌｏｌｔｇのキルＡを含有するワ クチンで２回免疫したマウスは、フロインドアジュバント中の同数の菌体て免疫 したマウスより、抗体応答か大きかった。低投与量のキルＡは見かけ上アジュバ ント効果かほとんとなかった。イスコムマトリックスを含有するワクチンの投与 による局所性または全身性の有害作用は見られなかった。

エイチ・ブルーロニューモニ−（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏ−旧ａｅ）のＮ ＣＴＣ標準株標準型血清型３２１株）を、ＮＡＤを補足した酵母エキス培地中で 対数増殖期まで増殖させた。培養物を０．２％のホルマリンで不活性化し、リン 酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）で３回洗浄して、洗浄不活性化全細胞抗原調製物 を得た。改変１・−マ（Ｔｂｏｍａ）目盛りのついた。／イバウマーチェンバー （Ｎｅｕ−ｂａｕｍｅｒ　ｃｈａｍｂｅｒ）を用いて細菌の数を数えて抗原を標 準化し、使用するまでＰＢＳ中で４°Ｃに保存した。

１群当り６匹のマウスの群を７エイチ・ジノ１．−ロニユーモ＝−（Ｈ，ｐｌｅ ｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）のみ、ＦＩＡのｘ　イチ０ブルーロニュー“モニ ー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｃ）　、または異なる濃度のキルＡを 含むイスコムマトリックスと一緒のエイチ・ブルーロニコー七−（Ｈ，ｐｌｅｕ ｒｏｐｎｅｕ−ｍｏｎｉａ、ｅ’）で、下記に詳述するように免疫した。最後の 群にはイスコムマトリックスとともにエイチ・ブルー・ロニューモニー（Ｈ，ｐ ｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ＞　とエム°ヒオニューモ＝　−（Ｍ、　ｈｙ ｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）抗原の両方を投与して、２つの抗原間で相互作用かあ るか否かを調べた。免疫の間を３週問おいて２回にわたって、マウスに適当なワ クチンのＯ，１ｍｌを２回の皮下注射を行った。

Ｓ　ＦＩＡ中のＨｐｌ ４　マウス当り１０μｇのＱＡのワクチンを含有するイスコムマトリックスとＨ ｐｌ ５　マウス当り５μｇのＱＡのワクチンを含有するイスコムマトリックスとＨｐ ｌ ６　マウス当り２．５μｇのＱＡのワクチンを含有するイスコムマトリックスト ＨｐＩ ７　マウス当り１．２μｇのＱＡのワクチンを含有するのマイコプラズマ・ヒオ ニューモニ−（Ｍｙｃｏｐｌａ−ｓｍａ　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）抗原を 含有するイスコムマトリックスとＨｐｌ 第１回目のワクチン接種の後どの群にも抗体応答は見られなかった。第２回目の ワクチン接種の後に、免疫した８群中の２群て抗体濃度が急速かつ顕著に上昇し た。

最大の応答は１０μｇのキルＡを含有するイスコムマトリックスと一緒に細菌で 免疫したマウスで見られ、第２回目の免疫後１週間後に測定した光学密度単位（ ＵＯＤ）のピークＯＤは１．２４（±０．１７）であった。

細菌とＦＩＡで免疫したマウスは類似の応答であったが抗体応答はやや小さく、 同じ時のピーク○Ｄは１．１１（±０．０８）ＵＯＤであった。細菌のみ、低投 与量のキルＡ１またはエム・ヒオニューモ＝　−（ＩＪ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏ ｎｉ−ａｅ）抗原と一緒の細菌で免疫したマウスはすべて、類似の応答てあった が抗体応答は小さく、第２回目の免疫の１月後に測定したピーク値は０．４３か ら０．６３ＵＯＤの間にあった。

表　２ 間接酵素結合免疫吸着測定法（ＥＬＩＳＡ）で測定した、抗−エイチ・ブルーロ ニューモニー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）応答 ワクチン接種前　２８ＤＰ２゜ Ａ　Ｏ，８７０，１８９ Ｂ　Ｏ，１７００，４２８ ＣＯ，］、８５　１．００２ Ｄ　Ｏ，１３５１，１６１ Ｅ　Ｏ，１３１０，６２６ Ｆ　Ｏ，１６４０，６４５ Ｇ　Ｏ，１１９０，６２０ ＨＯ，２２７０，４８０ 実施例９　豚での実験 臨床的および血清学的にもエイチ・ブルーロニューモニー（Ｈ，ｐｌｅｕｒｏｐ ｎｅｕｍｏｎｉａｅ）やエム・ヒオニューモニ−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏ旧 ａｅ）の感染の証拠かないことかわかっている群から、３０匹のランドレース交 配（Ｌａｎｄｏｒａｃｅ−ｃｒｏｓｓ）子豚を得た。子豚を他の家畜から隔離し て維持し、標準的子豚／成長飼料を自由に与えた。

継代回数の少ない（１０回未満）エム・ヒオニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅ ｕｍｏｎ　１ａｅ）の野生単離法（ｆｉｅｌｄ　１ｓｏｌａｔｅ）（ＳＶＡ３） を、フリイス（Ｆｒｉｉｓ）培地中で対数増殖期まで培養した。

２０ｍ１の無菌ＰＢＳＡ中に４００μｍのキルＡ溶液と１６００μｍの脂質ミッ クスを加えた。次に混合物を最大速度て渦巻攪拌した後、０．４５μｍフィルタ ーで濾過した。このイスコムミックス１０ｍ１中に、１０ｍ１の４ｎ＋ｇ／ｍｌ のエム・ヒオー、ｘ−モ＝　−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）抗原を加 えて、２ｍｇ／ｍｌの抗原と１ｍｇ／ｍｌのキルＡを含有するｒスコムミソクス を得た。

５匹の豚の群を、２ｍｇ／ｍｌのエム・ヒオニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅ ｕｍｏｎ　１ａｅ）全細胞抗原を含む１ｍｌのイスコムマトリックスで免疫した 。別の５匹には、フロイ：／ドアシュバントで増強した２ｍｇ／ｍｌのエム・ヒ オニューモニー（Ｍ、ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）　ｌ　ｍｌを与えた。最後 の５匹の豚にはＰＢＳＡのみ与えた。

そ豚は３週令で、首の左側の深部の筋肉内へ適当なワクチン１ｍｌの深部筋肉内 注射により、最初のワクチン接種を受けた。２回目の同様の注射は６週間後に首 の右側に行った。２回目の免疫の２週間後子豚が１１１週令なったとき、実験的 に抗原を投与（ｃｈａｌｌｅｎｇｅ）　した。抗原投与の約２週間後に子豚を殺 して死後の肺の病理観察を行った。

ａ）ワクチン接種に対する臨床反応 第１回目または第２回目のワクチン接種の後、豚には有害な臨床症状は見られな かった。との群にも第１回目または第２回目の免疫の後に体温の有意な一、ヒ昇 は見られなかった。フロイント不完全アジュバント中のエム・ヒオニューモニ− （Ｍ、　ｔ＋ｙｏｐｎｅｕｍｏｎ　１ａｅ）抗原で免疫した子豚て、第２回目の 免疫の後に最も高い温度の上Ｍ、（１，１±０．２３℃）が観察された。一般的 に群の平均温度は約０．３°Ｃ上昇したか、これは臨床的発熱症状を引き起こす には不十分であった。エム・ヒオニューモニー（Ｍ。

ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）抗原を含むワクチンが、含まないものより発熱性 が顕著であるということはなかった。

観察したどの場合も注射部位で局所反応か見られたり感じたところはなかった。

子豚の体重増加に関して差は観察されなかった。

ｂ）注射に汀する臨床反応 感染後の臨床反応は見られなか、また。実験的抗原投与で発熱反応（ｐｙｒｅｘ ｉａ）は起きなかりた。抗原投与後２週間、豚は臨床的に正常であった。この期 間の体重増加と食物接種には、群間で有意な差は見られなかった。

Ｃ）血清抗体の測定 第１回目のワクチン接種の後、フロインドアジュバントで増強させたエム・ヒオ ニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏ−旧ａｅ）群にのみ抗体応答が見られ た。しかし第２回目の免疫の後には、エム・ヒオニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐ ｎｅｕｍｏ−ｎｉａｅ）ワクチンを投与されたすべての豚で抗体濃度か顕著に上 昇した。抗原投与前にＥＬＩＳＡ　ＯＤ（４９２０ｍ）で測定した血清エム・ヒ オニューモ、：ｌ−−（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅ−ｕｍｏ旧ａｅ）抗体応答は以下の 通りてあった：イスコムワクチンを投与された豚　０．６±０．１５６フロイン トアジユバントワクチンを 投与された豚　１．７±０．０８９ イスコムマトリツクスワクチンを受けた豚においても、抗エム・ヒオニューモニ −（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）抗体応答が観察すｈｆ：　（ＯＤ　４ ９２ｒ＋ｍ　＝０．６±０．１５６）。

との群においても感染後に抗体濃度の有意な上昇は見最も重症の反応は、フロイ ンドアジュバント中のエム°ヒオニューモニー（Ｍ、　ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉ ａｅ）抗原で免疫した子豚に観察された。反応は複数の分散したチーズ様の肉芽 腫てあり、これは豚のフロインドアジュバントに対する反応に特徴的であった。

イスコムワクチンを投与された豚では病変は観察されなかった。

実施例ＩＯ１羊での実験 少なくとも４年間ＯＥＡのないことかわかっている農場から、ブラックフェース ×スウェールデール（Ｂｌａｃｋ−ｆａｃｅ　ｘ　ｓｗａｌｅｄａｌｅ）羊を得 た。使用前にクラミジアブシタッシ（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ　ｐｓｉｔｔａｃｊ） とトキソプラズマボンブイ（Ｔｏｚｏ　ｐｌａｓｍａ　ｇｏｎｄｉｉ）の抗体に ついて、５−６オの羊をクスリーニングした。羊を他の家畜から隔離して維持し 、それらの生理的および栄養状態に適したレベルで干し草と濃縮物を与えた。

１、ワクチン クラミジアブシタツノ（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ　ｐｓｉｔｔａｃｉ）のＯＥＡ株Ａ ２２と３２６／３を増殖させた後部分精製を行った。

この段階て各法の最初の培養容量１０ＬをＩＬｉ：濃縮して「ＩＯ×抗原」を得 た。

イスコムワクチン（ＩＶ）を以下のようにして調製した；５０ｍ１の１０Ｘ抗原 を１００μＪのゲルタールアルデヒド原液（５０％）で４°Ｃて１５分間処理し た。（ｂ）フィルターで除菌したＰＢＳ中の０１５Ｍのグリシンの５０ｍ１を加 え、懸濁液を４°Ｃて５分間インキュベートした。（ｃ）懸濁液を１７０００ｇ で４°Ｃて４５分間遠心分離し、次にベレットを無ｉ３１　Ｐ　Ｂ　Ｓ　ｐＨ７ ，２で２回洗浄した。（ｄ）ペレットを５０ｍ１ＰＢＳ中に再懸濁させた。

（ｅ）チメロサール（１％；無菌濾過しである）、０．５ｍｌ、を加えて最終濃 度を０．０１％とした。

１００ｍ１の無菌ＰＢＳＡに５０μｍのｌＯ％キルＡ溶液と２ｍｌの脂質ミック スを加えた。混合物を９ｐｓｉ圧（６２ｋＮ／ｍ””）下で攪拌し、２０ｍ１に 濃縮した。無菌ＰＢＳＡを添加して容量を２００ｍ１として、次に容量を２０ｍ １に減少させた。これを２回繰り返した。最終容量を０，４５μｍフィルターで 濾過した。

抗原調製物をイスコムミックスに加えて抗原濃度０．２５×抗原／ｍｌを得た。

一部のオイルヘースワクチン（ＯＢＶ）と一部のアンヒドロゲル吸着水性ワクチ ン（Ａ、　Ａ　Ｖ　）を対照として調製して、それぞれｊ×抗原／ｍｌと０．２ ５　Ｘ抗原／ｍｌを得た。

この実験は５ｎと合計で１０６匹の超の羊から構成された。１．２．３群はそれ ぞれＯＢＶ、ＡＡＶそしてＩｖてワクチン接種した。４群と５群は対照であり、 それぞれ感染２／非ワクチン接種と非感染／非ワクチン接種である。

交尾の９週間前にＯＢＶワクチンをｌ　ｍｌ員投与量としてを１回のみ投Ｉ−７ シた。他の２つのワクチンは交尾の９週間前と３週間向に投惨し、各注射は２ｍ ｌ量から成っていた（す−＼てのワクチン゛は４ｎｇのクラミジア（Ｃｈｌａｍ ｙ“−ｄｊａ）蛋白の有効投！ｆ艦を有していノコ）。

す−・てのワクチ２・・は、首の右側の同定された刈った部位ζご皮下注射した 。

第１群、２群、３群そして４群の畦の羊に８５−９０ｄ、　ｇ、で生きたクラミ ジアを抗原投与した。第５群は処理しなかった。

出産時または中絶て、（入手できる場合は）胎盤をサンプリングした。この時の 羊の状態（生きている、死にかかっている、または死んでいる）を記録した。初 乳を与える以外は、病的な羊を特に生かせる試みはしなかった。

胎盤中にＯＥＡ病変か存在するか否かを調へ、その程度を推定した。胎盤（また は膣の分泌物標本）を改変ジールニールソン法（Ｚｉｅｂｌ−Ｎｅｅｌｓｅｎ　 ｍｅｔｈｏｄ）て染色してクラミジア体の有無を調べ、５−ヨードデオキシリジ ンで処理したＢＨＫ２１中で培養した。

結果 その結果はイスコムワクチンはクラミジア感染に大して防御を与え、そわば少な くとも実験で使用した通常のワクチンにより与えられたものと同等の程度であっ た。

中に入れる。１００μｍの１０％キルＡ溶液を加える。

り言質ミックス４００μｍを加える。馬のインフルエンザ抗原であるＥＲＩＫ− １４抗原成分を、最終濃度か５ｎｇ／ｍ１．ｉ二なるように加える。溶液を最高 の速度で２０秒間渦巻攪拌する。溶液を０．２μｍフィルター（ミリポア社）に 通して除菌する。電子穎微鏡による分析（イスコム構造か観察される）用と、細 菌の汚染の観察用に少量デカントする。＋４°Ｃで保存する。

補正書の翻訳文提出書　（特許舖１８４条）８）平成　４　年　２　月　２８− １

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．（１）細菌またはマイコプラズマに関連する抗原、および（２）この抗原が イスコムに取り込まれていないイスコムマトリックスよりなる、ヒトまたは動物 に使用するためのワクチン。 ２．請求の範囲第１項に記載のワクチンであって、抗原はマイコバクテリウム（ Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、クロストリジウム（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ） 、リケッチヤ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ）、スピロヘータ（Ｓｐｊｒｏｃｈａｅｔ ｅｓ）、エッシャリッチア（Ｅｓｃｈｅ−ｒｉｃｈｉａ）、スタフィロコッカス （Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｉ）、ヘモフィルス（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ）、 ボーデテラ（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ）、ビブリオ（Ｖｉｂｒｉｏ）、サルモネラ （Ｓａ１ｍｏｎｅｌｌａ）、ストレプトコッカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｉ） 、パスツレラ（Ｐａｓｔｅｕｒｅｌｌａ）、レジオネラ（Ｌｅｇｉｏｎｅｌｌａ ）、クラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎ ａｓ）、アクチノバシラス（Ａｃｔｉ−ｎｏｂａｃｌｌｕＳ）、キャンピロバク ター（Ｃａｍｐｙｌｏｂａｃｔｅｒ）、リステリア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ）、マイ コプラズマボビス（Ｍｙｃｏ−ｐｌａｓｍａｂｏｖｉｓ）、エム・ガリセプチカ ム（Ｍ．ｇａｌｌｉｓｅｐｔｉ−ｃｕｍ）、エム・アガラクチー（Ｍ．ａｇａｌ ａｃｔｉａｅ）、エム・ヒオニューモニー（Ｍ．ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ） 、エム・ニューモニー（Ｍ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、エム・シノビー（Ｍ．ｓ ｙｎｏｖｉａｅ）、エムアースリチヂス（ａｒｔｈｒｉｔｉｄｉｓ）、エム・カ プリコリウム（Ｍ．ｃｐｒｉｃｏｌｉｕｍ）、エム・ヂスパー（Ｍ．ｄｉｓｐａ ｒ）、エム・ホミニス（Ｍ．ｈｏｍｉｎｉｓ）、エム・ミコイデス・カプリ亜種 （Ｍ．ｍｙｃｉｏｄｅｓｓｕｂｓ，ｃａｐｒｉ）、エム・オラーレ（Ｍ．ｏｒａ ｌｅ）、エム・オリニューモニー（Ｍ．ｏｒｉｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、エム・ パルモニス（Ｍ．ｐｕｌｍｏｎｉｓ）、エム・シノス（Ｍ．ｃｙｎｏｓ）、エム ヒオリニス（Ｍ．ｈｙｏｒｈｉｎｉｓ）、エム・ミコイデス（Ｍ．ｍｙｃｏｉｄ ｅｓ）、エム・サルバリウム（Ｍ．ｓａｌ−ｖａｒｉｕｍ）およびエム・ファー メンタンス（Ｍ．ｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）の種、属または綱の微生物の１つであ る、または抗原はコリ（Ｃｏｌｉ）中の粘着因子、ポリン（ｐｏｒｎ）蛋白また はビー・パ−夕シス（Ｂ．ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）やナイセリアメニンギチヂス（ Ｎｅｊｓｓｅｒｉａｍｅｎｉｎｇｉｔｊｄｉｓ）の外殻膜蛋白である、上記ワク チン。 ３．イスコムマトリックスはリン脂質および可溶化剤よりなる、請求の範囲第１ 項または第２項に記載のワクチン。 ４．イスコムマトリックスは、オクチルグリコシド、ノニルＮ−メチルグルカミ ド、尿素およびグアニジンより選択される可溶化剤よりなる、前記請求の範囲の うちいずれか１項に記載のワクチン。 ５．イスコムマトリックスは、コレステロール以外のステロールよりなる、前記 請求の範囲のうちいずれか１項に記載のワクチン。 ６．ステロールはラノステロール、ルミステロール、スチグマステロールまたは シトステロールよりなる、請求の範囲第５項に記載のワクチン。 ７．抗原はマイコプラズマ・ヒオニューモニー（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａｈｙｏｐ ｎｅｕｍｏｎｉａｅ）に関連している、前記請求の範囲のうちいずれか１項に記 載のワクチン。 ８．（１）グリコシドとステロールのマトリックスを形成し、（２）該複合体に 細菌またはマイコプラズマに関連する抗原を混合することよりなる、ヒトまたは 動物に使用するためのワクチンの調製方法。 ９．段階（１）でリン脂質が追加的に含まれる、請求の範囲第８項に記載の方法 。 １０．リン脂質はフォスファチジルコリンである、請求の範囲第９項に記載の方 法。 １１．グリコシドはキルＡである、請求の範囲第８項から第１０項までのいずれ か１項に記載の方法。 １２．ステロールはコレステロールである、請求の範囲第８項から第１１項まで のいずれか１項に記載の方法。 １３．（１）グリコシドとステロールのイスコムマトリックスを形成し、（２） イスコムマトリックスを細菌またはマイコプラズマに関連する抗原と混合するこ とよりなるヒトまたは動物に使用するためのワクチンの製造方法において、（１ ）段階（１）でリン脂質と可溶化剤は追加的に使用されるか、または（２）段階 （１）でオクチルグリコシド、ノニルＮ−メチルグルカミド、尿素およびグアニ ジンより選択される可溶化剤が使用されるか、または（３）ステロールはコレス テロールではない、上記方法。 １４．条件（２）または（３）において、段階（１）でリン脂質が追加的に使用 される、請求の範囲第１３項に記載の方法。 １５．条件（３）において、ステロールはラノステロール、ルミステロール、ス チグマステロールまたはシトステロールである、請求の範囲第１３項または１４ 項に記載の方法。 １６．段階（１）で可溶化剤が使用され、イスコムマトリックスの形成の前に可 溶化剤は除去されない、請求の範囲第１３、１４または１５項に記載の方法。 １７．水不溶性抗原よりなる免疫原性複合体の調製方法であって、該方法は抗原 を可溶化剤で可溶化し、可溶化された抗原、グリコシドおよびステロールを混合 し、実質的に可溶化剤を除去せずにイスコムを形成させることよりなる上記方法 。 １８．混合段階でリン脂質が追加的に使用される、請求の範囲第１７項に記載の 方法。 １９．限外濾過、透析、超遠心またはクロマトグラフィー法以外の過程でイスコ ムが形成される、請求の範囲第１７項または１８項に記載の方法。 ２０．可溶化剤はデスオキシコール酸ナトリウム、オクチルグルコシド、ノニル Ｎ−メチルグルカミド、デカノイルＮ−メチルグルカミド、または９から１０個 のオキシエチレン基を有するポリエチレングリコールｐ−イソオクチルフェニル エーテルである、請求の範囲第１７、１８または１９項に記載の方法。 ２１．グリコシド、ステロールおよび可溶化剤を混合し、実質的に可溶化剤を除 去せずにイスコムマトリックスを形成させることよりなる、イスコムマトリック スの作成方法。 ２２．（１）細菌またはマイコプラズマに関連する抗原、および（２）この抗原 がイスコムに取り込まれていないイスコムマトリックスよりなり、動物は豚また は羊である、動物に使用するためのワクチン。