JPH0464675B2 - - Google Patents
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- JPH0464675B2 JPH0464675B2 JP13356784A JP13356784A JPH0464675B2 JP H0464675 B2 JPH0464675 B2 JP H0464675B2 JP 13356784 A JP13356784 A JP 13356784A JP 13356784 A JP13356784 A JP 13356784A JP H0464675 B2 JPH0464675 B2 JP H0464675B2
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
〔産業上の利用分野〕
本発明は新規なアルカリ性セルラーゼ生産菌に
関する。 〔従来の技術〕 アルカリ性セルラーゼは、衣料用洗浄剤の新規
成分として近時注目を集めている。然し、自然界
において微生物の産生するセルラーゼは、大部分
が中性乃至酸性において安定な酵素活性を有す
る、所謂中性若しくは酸性セルラーゼであつて、
アルカリ性セルラーゼは極めて少ない。 而して、従来アルカリ性セルラーゼ生産菌によ
りアルカリ性セルラーゼを生産する方法として
は、僅かに2例、バチルス属に属しアルカリ側に
至適PHを有するセルラーゼA生産菌を培養して培
地より採取する方法(特公昭50−28515号公報)、
及びセルロモナス属に属する好アルカリ性細菌を
培養しアルカリセルラーゼ301−Aを生産する方
法(特開昭58−224686号公報)が知られているの
みであつた。 〔発明が解決しようとする問題点〕 従つて、本発明の目的は、アルカリ性セルラー
ゼを生産する新規な微生物を提供することにあ
る。 〔問題点を解決するための手段〕 本発明者は、アルカリ性セルラーゼを生産する
微生物を自然界に求め、鋭意探索を続けてきた
が、今般、栃木県芳賀郡の土壌より採取した放線
菌がアルカリ性セルラーゼを生産することを見出
し、本発明を完成した。 従来放線菌が産生するセルラーゼとして中性若
しくは酸性セルラーゼは公知であつたが(例えば
特公昭56−3032号公報)、本発明の様に放線菌が
アルカリ性セルラーゼを生産することについては
今迄知られていなかつた。 本発明のアルカリ性セルラーゼ生産能を有する
ストレプトマイセス・エスピー(Streptomyces
sp.)KSM−9(微工研菌寄第7620号)及びKSM
−2(微工研菌寄第7621号)は、本発明者が栃木
県芳賀郡の土壌より分離したもので、次の第1表
及び第2表に示す菌学的性質を有する。
関する。 〔従来の技術〕 アルカリ性セルラーゼは、衣料用洗浄剤の新規
成分として近時注目を集めている。然し、自然界
において微生物の産生するセルラーゼは、大部分
が中性乃至酸性において安定な酵素活性を有す
る、所謂中性若しくは酸性セルラーゼであつて、
アルカリ性セルラーゼは極めて少ない。 而して、従来アルカリ性セルラーゼ生産菌によ
りアルカリ性セルラーゼを生産する方法として
は、僅かに2例、バチルス属に属しアルカリ側に
至適PHを有するセルラーゼA生産菌を培養して培
地より採取する方法(特公昭50−28515号公報)、
及びセルロモナス属に属する好アルカリ性細菌を
培養しアルカリセルラーゼ301−Aを生産する方
法(特開昭58−224686号公報)が知られているの
みであつた。 〔発明が解決しようとする問題点〕 従つて、本発明の目的は、アルカリ性セルラー
ゼを生産する新規な微生物を提供することにあ
る。 〔問題点を解決するための手段〕 本発明者は、アルカリ性セルラーゼを生産する
微生物を自然界に求め、鋭意探索を続けてきた
が、今般、栃木県芳賀郡の土壌より採取した放線
菌がアルカリ性セルラーゼを生産することを見出
し、本発明を完成した。 従来放線菌が産生するセルラーゼとして中性若
しくは酸性セルラーゼは公知であつたが(例えば
特公昭56−3032号公報)、本発明の様に放線菌が
アルカリ性セルラーゼを生産することについては
今迄知られていなかつた。 本発明のアルカリ性セルラーゼ生産能を有する
ストレプトマイセス・エスピー(Streptomyces
sp.)KSM−9(微工研菌寄第7620号)及びKSM
−2(微工研菌寄第7621号)は、本発明者が栃木
県芳賀郡の土壌より分離したもので、次の第1表
及び第2表に示す菌学的性質を有する。
【表】
【表】
本発明のストレプトマイセス属に属する新規な
微生物は、これを適当な培地に接種し、培養すれ
ばアルカリ性セルラーゼを生産する。微生物とし
ては、上記菌株はもとより、その変異株も同様に
使用できる。 培養に用いられる培地としては、使用する菌株
が利用し、アルカリ性セルラーゼを順調に生産す
るのに必要な炭素源、窒素源あるいは有機栄養
源、無機塩等からなるものであれば何れでもよ
い。 炭素源としては、例えばカルボキシメチルセル
ロース(CMC)等の可溶性繊維素誘導体、パル
プ粉末、ロ紙粉末、アビセル等の固型繊維等のセ
ルロース等;グルコース、フラクトース、シユク
ロース若しくはソルビトール等の炭水化物;クエ
ン酸、コハク酸等の有機酸;n−ドデカン、n−
ヘキサデカン等の炭化水素等々の資化されるもの
であればいずれも使用できる。これら炭素源のう
ちではセルロース等、就中、可溶性繊維素誘導体
を使用した培地はアルカリ性セルラーゼの生産量
も多く好適である。 窒素源あるいは有機栄養源としては、例えば、
硝酸ナトリウム、硝酸カリウム、硝酸アンモニウ
ム等の硝酸塩類;酵母エキス、肉エキス、ペプト
ン等が挙げられる。 無機塩としては、例えば炭酸ナトリウム、炭酸
カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウ
ム等の炭酸塩;リン酸ナトリウム、リン酸一水素
ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸カ
リウム、ピロリン酸カリウム、ピロリン酸ナトリ
ウム、トリポリリン酸ナトリウム、ヘキサメタリ
ン酸ナトリウム等々のリン酸塩、硫酸マグネシウ
ム等の無機塩が使用できる。就中、炭酸塩を0.1
〜1.5重量%含有する培地はアルカリ性セルラー
ゼの産生量が多く好適である。さらに、微量の重
金属塩類が使用されるが、天然物を含む培地では
必ずしも添加を必要としない。 また、上記以外の栄養源を必要とする変異株を
用いる場合には、その栄養要求を満たす物質を培
地に添加しなければならない。 培養は、培地を加熱等により殺菌後、菌を接種
し、25〜35℃で、2〜4日振盪又は通気撹拌すれ
ば良い。PHは8〜11程度に調整すると良い結果が
得られる。水に難溶性の炭素源等を使用する場合
には、ポリオキシエチレンソルビタン等の各種界
面活性剤を培地に添加することも可能である。 叙上の如くして得られた培養物は、そのまま酵
素源として使用することができる。また、培養物
から分離した生菌体又はその処理物(凍結乾燥体
等)を酵素源として使用することもできる。菌体
を培養物から分離するには通常の固液分離手段が
用いられる。更に、培養液はそのまま酵素源とし
て使用でき、またこれより目的物質であるアルカ
リ性セルラーゼを採取・精製して使用することが
できる。培養液からのアルカリ性セルラーゼの採
取・精製は一般の酵素の採取・精製法に準じて行
うことができる。 〔実施例〕 次に実施例を挙げて本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらによつて限定されるもので
はない。 実施例 1 栃木県芳賀郡の土壌スパーテル1杯分(約0.5
g)を10ml無菌水に懸濁し、充分撹拌した後放置
した。かくして得られる土壌懸濁液上清0.1mlを、
下記組成の分離用寒天培地に塗布した。 組 成: CMC 20g ペプトン 10g 肉エキス 10g KH2PO4 1g NaCl 10g NA2CO3 10g 寒 天 7.5g 水 1000ml PH10.5 次いで、これを30℃で3日間培養し、集落の周
囲にCMCの溶解にもとづく透明帯を有する菌が
出現するものを確認し、明瞭な透明帯を形成する
集落を釣菌し、上記分離用寒天培地と同組成の斜
面寒天培地に接種し30℃で3日間培養し、10本の
斜面培地上の菌株が肉眼的及び顕微鏡的に同一菌
株であることを確認した。 またこれら10菌株の各培地上の性状及び生理学
的性質が同一であることを確認した。 上記菌株の各培地上の性状及び生理学的性質は
前記第1表及び第2表に示したとおりであり、本
発明者はこれをストレプトマイセス・エスピー
(Streptomyces sp.)KSM−2と命名した。 ストレプトマイセス・エスピー
(Streptomyces sp.)KSM−9も同様にして栃
木県芳賀郡の土壌より分離した。 上記試験の結果、各10本の培養菌はすべて自然
界より純粋に分離されたた単一菌株であることが
判る。 次いで、上記で純粋培養された斜面培地上の菌
株より一白金耳を滅菌した10%グリセリン水溶液
(2ml)の入つた凍結保存用バイアルに懸濁し、−
80℃にて凍結保存する。かくして3ケ月凍結保存
後、迅速に解凍し得られる懸濁液の一白金耳を普
通寒天培地に蘇生後前記と同条件下に各培地上で
の性状及び生理学的性質を調べた結果、凍結前と
は変化が認められなかつた。 また、上記凍結及び解凍を1ケ月毎に5度繰り
返した菌株について同様に、各培地上での性状及
び生理学的性質を調べた結果変化は認められなか
つた。 〔参考例〕 次いで実施例1で得た菌株を利用してアルカリ
性セルラーゼを製造した結果を参考例として挙げ
る。なお、参考例において、セルラーゼ活性は次
の方法により測定した。 〔セルラーゼ活性測定法〕 CMC2.5%溶液、グリシンNaCl−NaOH緩衝
液(500mM、PH9.0)、イオン交換水を2:1:
1の割合で混合して基質とする。 基質0.4mlに酵素液0.1mlを加え、40℃で20分間
反応させる。反応終了後、3,5−ジニトロ−サ
リチル酸法(DNS法)にて還元糖の定量を行な
う。すなわち、反応液0.5mlにDNS試薬1mlを加
え、5分間100℃で加熱発色し、冷却後、4.5mlの
イオン交換水を加えて希釈する。これを波長535
mμで比色定量する。 対照は、基質0.4mlに酵素液0.1mlDNS試薬0.5
mlを同時に加え、ただちに5分間100℃で加熱発
色し、同様に比色定量する。 酵素力価の単位は、上記条件下で1分間に1mg
のブドウ糖に相当する還元糖を生成する場合を
100単位とした。また、精製した酵素のセルラー
ゼ活性は、上記条件下で1mgの酵素が1分間に生
成する還元糖の量をグルコース相当量として評価
した。 参考例 1 500ml容量坂口フラスコに、CMC1%、肉エキ
ス1.5%、酵母エキス0.5%、リン酸二水素カリウ
ム0.1%、炭酸ナトリウム0.5%含有する液体培地
(PH9.5)に、ストレプトマイセス・エスピー
KSM−2株をスラントより接種し、30℃にて2
日間培養後、菌体を遠心分離して除去して上清部
を採取した。そのセルラーゼ活性を測定したとこ
ろ、32000ユニツト/(PH9.0)であつた。 更に、この上清部を硫安分画して生成する固型
分を凍結乾燥して酵素粉末を得た。得られた酵素
のセルラーゼ活性は、PH7.0と9.0で各々0.90mg及
び0.44mgグルコース相当量/mg・分であつた。ま
た、この酵素のセルラーゼ活性のPH安定性を調べ
た結果を第1図及び第2図に示す。ただし、第1
図は上記セルラーゼ活性測定法において、酵素液
を40℃で60分間放置した後の残存活性を、第2図
は20℃で24時間放置した場合の残存活性を示すも
のである。 参考例 2 参考例1のストレプトマイセス・エスピー
KSM−2株にかえてストレプトマイセス・エス
ピーKSM−9株を接種した以外は参考例1と同
様に操作して培養液の上清部を採取した。そのセ
ルラーゼ活性を測定したところ、45000ユニツ
ト/(PH9.0)であつた。 更に、この上清部から参考例1と同様にして酵
素粉末を得た。得られた酵素のセルラーゼ活性は
PH7.0と9.0で各々2.01mg及び1.49mgグルコース相
当量/mg・分であつた。また、この酵素のセルラ
ーゼ活性のPH安定性を調べた結果を第3図及び第
4図に示す。なお測定条件はそれぞれ第1図及び
第2図と同じである。
微生物は、これを適当な培地に接種し、培養すれ
ばアルカリ性セルラーゼを生産する。微生物とし
ては、上記菌株はもとより、その変異株も同様に
使用できる。 培養に用いられる培地としては、使用する菌株
が利用し、アルカリ性セルラーゼを順調に生産す
るのに必要な炭素源、窒素源あるいは有機栄養
源、無機塩等からなるものであれば何れでもよ
い。 炭素源としては、例えばカルボキシメチルセル
ロース(CMC)等の可溶性繊維素誘導体、パル
プ粉末、ロ紙粉末、アビセル等の固型繊維等のセ
ルロース等;グルコース、フラクトース、シユク
ロース若しくはソルビトール等の炭水化物;クエ
ン酸、コハク酸等の有機酸;n−ドデカン、n−
ヘキサデカン等の炭化水素等々の資化されるもの
であればいずれも使用できる。これら炭素源のう
ちではセルロース等、就中、可溶性繊維素誘導体
を使用した培地はアルカリ性セルラーゼの生産量
も多く好適である。 窒素源あるいは有機栄養源としては、例えば、
硝酸ナトリウム、硝酸カリウム、硝酸アンモニウ
ム等の硝酸塩類;酵母エキス、肉エキス、ペプト
ン等が挙げられる。 無機塩としては、例えば炭酸ナトリウム、炭酸
カリウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウ
ム等の炭酸塩;リン酸ナトリウム、リン酸一水素
ナトリウム、リン酸二水素ナトリウム、リン酸カ
リウム、ピロリン酸カリウム、ピロリン酸ナトリ
ウム、トリポリリン酸ナトリウム、ヘキサメタリ
ン酸ナトリウム等々のリン酸塩、硫酸マグネシウ
ム等の無機塩が使用できる。就中、炭酸塩を0.1
〜1.5重量%含有する培地はアルカリ性セルラー
ゼの産生量が多く好適である。さらに、微量の重
金属塩類が使用されるが、天然物を含む培地では
必ずしも添加を必要としない。 また、上記以外の栄養源を必要とする変異株を
用いる場合には、その栄養要求を満たす物質を培
地に添加しなければならない。 培養は、培地を加熱等により殺菌後、菌を接種
し、25〜35℃で、2〜4日振盪又は通気撹拌すれ
ば良い。PHは8〜11程度に調整すると良い結果が
得られる。水に難溶性の炭素源等を使用する場合
には、ポリオキシエチレンソルビタン等の各種界
面活性剤を培地に添加することも可能である。 叙上の如くして得られた培養物は、そのまま酵
素源として使用することができる。また、培養物
から分離した生菌体又はその処理物(凍結乾燥体
等)を酵素源として使用することもできる。菌体
を培養物から分離するには通常の固液分離手段が
用いられる。更に、培養液はそのまま酵素源とし
て使用でき、またこれより目的物質であるアルカ
リ性セルラーゼを採取・精製して使用することが
できる。培養液からのアルカリ性セルラーゼの採
取・精製は一般の酵素の採取・精製法に準じて行
うことができる。 〔実施例〕 次に実施例を挙げて本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらによつて限定されるもので
はない。 実施例 1 栃木県芳賀郡の土壌スパーテル1杯分(約0.5
g)を10ml無菌水に懸濁し、充分撹拌した後放置
した。かくして得られる土壌懸濁液上清0.1mlを、
下記組成の分離用寒天培地に塗布した。 組 成: CMC 20g ペプトン 10g 肉エキス 10g KH2PO4 1g NaCl 10g NA2CO3 10g 寒 天 7.5g 水 1000ml PH10.5 次いで、これを30℃で3日間培養し、集落の周
囲にCMCの溶解にもとづく透明帯を有する菌が
出現するものを確認し、明瞭な透明帯を形成する
集落を釣菌し、上記分離用寒天培地と同組成の斜
面寒天培地に接種し30℃で3日間培養し、10本の
斜面培地上の菌株が肉眼的及び顕微鏡的に同一菌
株であることを確認した。 またこれら10菌株の各培地上の性状及び生理学
的性質が同一であることを確認した。 上記菌株の各培地上の性状及び生理学的性質は
前記第1表及び第2表に示したとおりであり、本
発明者はこれをストレプトマイセス・エスピー
(Streptomyces sp.)KSM−2と命名した。 ストレプトマイセス・エスピー
(Streptomyces sp.)KSM−9も同様にして栃
木県芳賀郡の土壌より分離した。 上記試験の結果、各10本の培養菌はすべて自然
界より純粋に分離されたた単一菌株であることが
判る。 次いで、上記で純粋培養された斜面培地上の菌
株より一白金耳を滅菌した10%グリセリン水溶液
(2ml)の入つた凍結保存用バイアルに懸濁し、−
80℃にて凍結保存する。かくして3ケ月凍結保存
後、迅速に解凍し得られる懸濁液の一白金耳を普
通寒天培地に蘇生後前記と同条件下に各培地上で
の性状及び生理学的性質を調べた結果、凍結前と
は変化が認められなかつた。 また、上記凍結及び解凍を1ケ月毎に5度繰り
返した菌株について同様に、各培地上での性状及
び生理学的性質を調べた結果変化は認められなか
つた。 〔参考例〕 次いで実施例1で得た菌株を利用してアルカリ
性セルラーゼを製造した結果を参考例として挙げ
る。なお、参考例において、セルラーゼ活性は次
の方法により測定した。 〔セルラーゼ活性測定法〕 CMC2.5%溶液、グリシンNaCl−NaOH緩衝
液(500mM、PH9.0)、イオン交換水を2:1:
1の割合で混合して基質とする。 基質0.4mlに酵素液0.1mlを加え、40℃で20分間
反応させる。反応終了後、3,5−ジニトロ−サ
リチル酸法(DNS法)にて還元糖の定量を行な
う。すなわち、反応液0.5mlにDNS試薬1mlを加
え、5分間100℃で加熱発色し、冷却後、4.5mlの
イオン交換水を加えて希釈する。これを波長535
mμで比色定量する。 対照は、基質0.4mlに酵素液0.1mlDNS試薬0.5
mlを同時に加え、ただちに5分間100℃で加熱発
色し、同様に比色定量する。 酵素力価の単位は、上記条件下で1分間に1mg
のブドウ糖に相当する還元糖を生成する場合を
100単位とした。また、精製した酵素のセルラー
ゼ活性は、上記条件下で1mgの酵素が1分間に生
成する還元糖の量をグルコース相当量として評価
した。 参考例 1 500ml容量坂口フラスコに、CMC1%、肉エキ
ス1.5%、酵母エキス0.5%、リン酸二水素カリウ
ム0.1%、炭酸ナトリウム0.5%含有する液体培地
(PH9.5)に、ストレプトマイセス・エスピー
KSM−2株をスラントより接種し、30℃にて2
日間培養後、菌体を遠心分離して除去して上清部
を採取した。そのセルラーゼ活性を測定したとこ
ろ、32000ユニツト/(PH9.0)であつた。 更に、この上清部を硫安分画して生成する固型
分を凍結乾燥して酵素粉末を得た。得られた酵素
のセルラーゼ活性は、PH7.0と9.0で各々0.90mg及
び0.44mgグルコース相当量/mg・分であつた。ま
た、この酵素のセルラーゼ活性のPH安定性を調べ
た結果を第1図及び第2図に示す。ただし、第1
図は上記セルラーゼ活性測定法において、酵素液
を40℃で60分間放置した後の残存活性を、第2図
は20℃で24時間放置した場合の残存活性を示すも
のである。 参考例 2 参考例1のストレプトマイセス・エスピー
KSM−2株にかえてストレプトマイセス・エス
ピーKSM−9株を接種した以外は参考例1と同
様に操作して培養液の上清部を採取した。そのセ
ルラーゼ活性を測定したところ、45000ユニツ
ト/(PH9.0)であつた。 更に、この上清部から参考例1と同様にして酵
素粉末を得た。得られた酵素のセルラーゼ活性は
PH7.0と9.0で各々2.01mg及び1.49mgグルコース相
当量/mg・分であつた。また、この酵素のセルラ
ーゼ活性のPH安定性を調べた結果を第3図及び第
4図に示す。なお測定条件はそれぞれ第1図及び
第2図と同じである。
第1図及び第2図は参考例1で得られたアルカ
リ性セルラーゼの活性のPH安定性を示す図面、第
3図及び第4図は参考例2で得られたアルカリ性
セルラーゼの活性のPH安定性を示す図面である。
リ性セルラーゼの活性のPH安定性を示す図面、第
3図及び第4図は参考例2で得られたアルカリ性
セルラーゼの活性のPH安定性を示す図面である。
Claims (1)
- 1 アルカリ性セルラーゼ生産能を有するストレ
プトマイセス・エスピー(Streptomyces sp.)
KSM−9(微工研菌寄第7620号)もしくはKSM
−2(微工研菌寄第7621号)。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13356784A JPS6112282A (ja) | 1984-06-28 | 1984-06-28 | アルカリ性セルラーゼ生産菌 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP13356784A JPS6112282A (ja) | 1984-06-28 | 1984-06-28 | アルカリ性セルラーゼ生産菌 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6112282A JPS6112282A (ja) | 1986-01-20 |
JPH0464675B2 true JPH0464675B2 (ja) | 1992-10-15 |
Family
ID=15107822
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP13356784A Granted JPS6112282A (ja) | 1984-06-28 | 1984-06-28 | アルカリ性セルラーゼ生産菌 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6112282A (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1999025847A2 (en) * | 1997-11-19 | 1999-05-27 | Genencor International, Inc. | Cellulase produced by actinomycetes and method of producing same |
US6187577B1 (en) | 1997-11-19 | 2001-02-13 | Genecor International, Inc. | Cellulase producing Actinomycetes cellulase produced therefrom and method of producing same |
US6190899B1 (en) | 1997-11-19 | 2001-02-20 | Genencor International, Inc. | Cellulase producing actinomycetes, cellulase produced therefrom and method of producing same |
-
1984
- 1984-06-28 JP JP13356784A patent/JPS6112282A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6112282A (ja) | 1986-01-20 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |