JPH04505452A - 高免疫原性形態のｉｂｄｖ ｖｐ２の生産 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 １６、酵母または他の真核細胞である、請求項１５に記載の宿主細胞。

１７、サツカロミセス・セレビシェ−（隙匹加二ユ匹弦ｃｅｒｅｖ　ｉｓ　１ａ ｅ）またはクルベロミセス・ラクチスに工１ａｃｔｉｓ）である、請求項１６に 記載の宿主細胞。

１８、　ＩＢＤＶのＶＦ６の高免疫原性形態の調製方法であって、請求項１５〜 １７のいずれか一項に記載の宿主細胞を培養して宿主細胞中で適当なヌクレオチ ド配列を発現させ、そして発現生産物を回収する段階を含んで成る方法。

明細書 高免疫原性形態のＩＢＤＶ　ＶＦ６の生産伝染性嚢病ウィルス（ＩＢＤＶ）は、 世界中の家禽産業にとって経済的に重要な主要病原体である。それは、鳥類の２ つの主要な免疫器官のうちの１つであるファブリーキウス嚢中の抗体産生Ｂ細胞 の前駆体を破壊することにより、幼若のニワトリに重い免疫不全を引き起こす。

幼若のニワトリは卵黄中に蓄積された母性抗体により受動的に保護され得る。群 化後重要な最初の４〜５週間の間ニワトリを保護するために受精卵中に高レベル の母性抗体を獲得しようとする予防接種法においては、不活性化された全ウィル スワクチンが現在使用されている。しかしながら、特定の病原体を持たないニワ トリの嚢中にウィルスを増殖させなければならないので、このワクチンは高価で あり製造が困難である。これはまた、バッチごとにウィルス収量の大幅な変動を もたらす。本発明の主目的は、単離したウィルス抗原に基づくサブユニット／分 子ワクチンの開発により、そのような問題点を解決することである。

ＩＢＤＶのゲノムはクローニングされ配列決定されており（国際特許出願ＰＣＴ ／ＡＵ８６１００１５６）　、そして多数のウィルス中和マウスモノクローナル 抗体（ＶＮ　ＭＡｂ）を用いた成る範囲の欠失変異体の発現産物の探査は、立体 配座ＶＮエピトープがＶＰ２遺伝子内の４３７　ｂｐ　、〜匹［−治Ｉ断片によ りコードされることを示している（国際特許出願ＰＣＴ／ＡＵ８６１００１５６ およびＰＣＴ／ＡＬＩ８８１００２０６　）。

大腸菌（Ｅ、ｃｏｌｉ）中で大きいβ−ガラクトシダーゼ融合タンパク質として 発現されたＶＦ６がニワトリにおいてウィルス中和保護抗体の生産を誘導できる ことが以前に示されている（国際特許出願ＰＣＴ／ＡＵ８８１００２０６）。し かしながら、免疫原性か非常に乏しく、保護的免疫応答を惹起せしめるために非 常に多量（〉１■／ニワトリ）の融合タンパク質を注入しなければならない。こ の貧弱な免疫原性は、ＶＮエピトープがおそらく隠蔽されているかまたは不正確 にプロセシングされもしくは折りたたまれている不溶性封入体の形成のためであ り、そしてそれらの封入体を可溶化し再生して重大なＶＮエピトープを生せしめ ることは不可能である。高免疫原性形態においてＶＦ６を発現させることの難し さは、ＶＰ２分子の立体配座依存性および極度の疎水性により一層ひどくなる。

従って、ＶＮエピトープが正確に折りたたまれ且つ容易に利用され得るような形 でＶＦ６を発現せしめることが重要である。

上述のような大きい融合タンパク質としてのＶＦ６の発現は不溶性封入体の形成 をもたらすので、可溶性発現生産物が正しい立体配座を取るであろう期待と共に 、未融合形のＶＦ６を発現せしめる試みを行った。しかしながら、ＶＰ２遺伝子 配列から５つのＮ末端アミノ酸が欠けている今までに入手可能なりローンを使っ ても、本発明者らは大腸菌中で有意な量でそして酵母中では全く未融合ＶＰ２を 生産せしめることができなかった。これは、未融合ＶＰ２分子のタンパク質分解 消化に対する感受性の増加のためかもしれない。

本発明によれば、ＶＰ２構造タンパク質またはＶＰ２構造タンパク質の全部また は部分の抗原性を示すポリペプチドをコードするヌクレオチド配列の発現により 生産される高分子量凝集形のＶＦ６を含んて成る、ＩＢＤＶのＶＰ２構造タンパ ク質の高免疫原性形態が提供される。

好ましくは、ＶＦ６の高分子量凝集形態は、酵母、例えばサツカロミセス・セレ ビシェ−（鎖匹肛凹菖ｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ　）もしくはクルベロミセス ・ラクチス（Ｋｌｕ　ｖｅｒｏｍ　ｃｅｓ　１ａｃｔｉｓ）、または他の真核生 物宿主細胞中での適当なヌクレオチドの発現によって生産される。

同様に好ましくは、該ヌクレオチド配列は、短いＮ末端融合物を有するＶＰ２構 成物、例えば生来のＶＦ６の５つのＮ末端アミノ酸が復元されている構成物、ま たはそれらのアミノ酸がＭＮＳＳＳＶＰＧ　（大腸菌中て発現される構成物につ いて）もしくはＭＦＳＥＬＤＰＱ　（酵母中で発現される構成物について）とい ったオクタペプチドにより置き換えられている構成物として発現されるものであ る。

別の態様において、本発明は、ＩＢＤＶに対する免疫応答を刺激するためのワク チン組成物であって、上述したようなＩＢＤＶのＶＰ２構造タンパク質の高免疫 原性形態と共に、許容される担体を含んで成るワクチン組成物を提供する。所望 により、該組成物はアジュバントを更に含むことかできる。

本発明はまた、特に酵母中での適当なヌクレオチド配列の発現を含んで成るＶＦ ６のこの高免疫原性形態の調製方法、並びに組換えＤＮＡ分子、組換えＤＮＡク ローニングビヒクルまたはベクター、および国際特許出願ＰＣＴ／ＡＵ８６１０ ０１５６に広く記載されたようなこの高免疫原性形態のＶＦ６として発現され得 るヌクレオチド配列を含んで成る宿主細胞（酵母細胞を含む）にも及ぶ。

ＶＰ２Ｐ２Ｏ５つのＮ末端アミノ酸は、国際特許出願ＰＣＴ／ＡＵ８６１００１ ５６およびＰＣＴ／ＡＵ８８１００２０６に記載のクローンＰＯといったＶＰ２ 構成物中には存在しない。未融合の’ＩＩＰ２を生じるであろう成る種の大腸菌 （Ｅ、ｃｏｌｉ）発現ベクターおよび酵母発現ベクターｐＡＡＨ５（Ｂ、Ｄ、Ｈ ａｌｌ、ワシントン大学、シアトル、　Ｌｌ、Ｓ、Ａ。

から入手）中のＰＯ挿入断片の発現は、ＶＰ２タンパク質の安定な合成を生じな かった。小さいＮ末端融合物によるそれらのＮ末端アミノ酸の置換または「生来 の」もしくは「生来に近い」Ｎ末端の回復が組換えＶＦ６を安定化し、従って一 層高い収量を得るのに十分であることを発見した。Ｎ末端融合配列が長くなれば なるほど不溶性封入体を形成する傾向が大きくなることがわかったので、短いＮ 末端融合配列を含めることが好ましい。発現ベクターｐＴＴＱ１８　（Ａｍｅｒ ｓｈａｍ）の多重クローニング部位からのたった８アミノ酸のＮ末端付加が大ｙ ｉｔ、ｍ中でのＶＦ６の発現を安定化した。ＣＵＰＩ遺伝子産物のＮ末端からの ８アミノ酸（細胞内生産の場合）、またはＭＦα１遺伝子産物のプレプロ配列（ 細胞外生産の場合）をＶＦ６のＮ末端に付加した時、同様な結果が酵母において 得られた。それらの結果は、ごく小さいＮ末端融合物が大腸菌と酵母の両方にお けるＶＰ２発現生産物の安定化に十分であることを示す。更に、「生来の」また は野生型のＮ末端配列ＭＴＬＮＳと第２位だけかは異なる「生来に近い」配列で あるＭＳＬＮＳ配列の付加が、酵母における未融合ＶＰ２の安定な合成をもたら した。同様な構造特性を有する他の配列もＶＦ６にＮ末端安定性を提供するであ ろう。

細菌または酵母溶解物を１２．０００　ｒｐｍで回転させた時、生産された小さ いＮ末端融合物を有するＶＦ６の約６０〜８０％が上溝中に残った。残りのＶＦ ６のほとんどは、１２．０００　ｒｐｍペレット中に存在する膜様物質と結合し ていた。大腸菌では、少量の封入体も形成されるという証拠が得られた。幾つか の非イオン性洗剤は１２．０００　ｒｐｍペレットから膜タンパク質を選択的に 除去したが、ペレット中に存在するＶＦ６を可溶化しなかった。

酵母細胞溶解物中に含まれる組換えＶＦ６は、ニワトリに注入すると細胞培養物 中の［ＢＤＶの感染力を中和する高力価の抗体を誘導し、ＥＬＩＳＡにおいてウ ィルスと反応し、モして幼若のニワトリに注入すると感染に対する受動保護を付 与した。

更に詳しくは、予防接種した雌鶏が産んだ卵は、その卵黄中にＩＢＤＶに対する 高力価の抗体を含むことがわかり、そして予防接種した雌鶏の受精卵から鼾化し たニワトリは高力価の循環母性抗体を有していた。この母性抗体のレベルは、感 染用量の１００倍のＩＢＤＶ　（００２／７３）を用いた眼内チャレンジに対し て、婬化後３週間までの間幾羽かのニワトリを保護するのに十分であった。

組換えＶＦ６を予防接種された雌鶏からの子孫の循環中の母性抗体の最小保護力 価は、全ＩＢＤＶに対する母性抗体について報告されたもの（Ｆａｈｅｙら、　 １９８７）と同様であった。これは、組換えＶＦ６に対する抗体の保護能力かも との完全なウィルスに対する抗体のものと同様であることを示した。子孫のニワ トリにおける組換えＶＦ６に対する母性抗体の力価の低下に関する研究は、それ が６日の半減期を有し、もとの完全なウィルスに対する抗体の半減期について報 告されたもの（Ｆａｈｅｙら、　１９８７）と同様であることを示した。

生ワクチンへの暴露により予め感作されている成体の雌鶏に組換えＶＰ２ワクチ ンを注入すると、ウィルス中和抗体とＥＬＩＳＡ抗体の両方において既往歴の血 清抗体応答を誘導した。

本発明の更なる特徴は、下記の実施例および添付図面に記載される。実施例では 、Ｍａｎｉａｔｉｓら、“Ｍｏ１ｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ　：Ａ　Ｌａｂ ｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａド、（１９８２）　Ｃｏ１ｄ　Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａ ｒｂｏｒといった公知の参考書に記載されたような標準技術を使用した。制限酵 素は製造業者の指示に従って使用した。

図面において、 図１は、ＩＢＤＶ抗原の発現のための酵母および大腸菌ベクターの作製を示す。

Ａ、クローンｐＥＸ、　ＰＯ中の［ＢＤＶポリタンパク質配列配列図（ＰＣＴ／ ＡＬ１８６１００１５６に記載）。正方形の箱は、該ポリタンパク質中に４回存 在するペンタペプチド配列ＡＸＡＡＳの繰り返しを表す。Ｂ、酵母中での外来タ ンパク質の銅誘導性発現に使用されるベクターｐＹＥＬＣ５゜Ｃ，ＩＢＤＶ抗原 の生産用の発現クローン。（１）ハ＋ｕ（ＩおよびＰｓｔｌで切断したｐＹＥＬ Ｃ５中にＩＢＤＶポリタンパク質をコードするＳｍａ［−脆ｌ断片（３，Ｏｋｂ ）を挿入することにより、クローンｐＹＥＬＣ５，ＰＯを作製した。

（ｉ　１）ｐＹＥＬｃ５．　ＰＯからＸｈｏＩ断片を除去することによりクロー ンｐＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏ　Ｉを作製した。これは、該ポリタンパク質のＣ 末端の翻訳終結コドンを含むＸｈｏ　［部位の下流の全ＩＢＤＶ配列、並びにＣ ＬＩＰ　１転写ターミネータ−を含むＣＵＰＩＢ下流配列を除去する。次の同位 相性翻訳終結コドンは、ＶＦ６のＣ末端に約１２ＫＤａの無関係タンパク質の付 加をもたらす速成［部位の０．３ｋｂ下流に存在する。（ｉｉｉ）翻訳がＡＸＡ ＡＳのすぐ後ろで停止するｐＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏ　［の改良物がｐＹＥＬ Ｃ５，ＰＯΔＴである。この構成物はｐＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏＩのＸｈｏ［ 部位に挿入されたオリゴヌクレオチド翻訳ターミネータ−を存する。ＭＡｂ　９ ／６を用いたウェスタンプロットでは、軽負荷ゲルにおいてＩＢＤＶ　ＶＰ２ａ 　（約４１　ｋＤ　；　Ａｚａｄら、１９８７）のサイズの単一生成物が検出さ れる。

翻訳生成物は、Ｃ末端に３アミノ酸（ＲＴＨ）少ないことにより、ｐＹＥＬｃ５ ．　ＶＰ２Ｔのもの（下記参照）と異なると思われる。

ｐＹＥＬＣ５，ＰａΔＴ中テノ翻訳は、二番目ノＡＸＡＡＳ　ノＡＸ　（実際に はＡＲ）の直後で終結するように設計される。（ｉｖ）　ｐＹＥＬＣ５のＰｖｕ ［［−３ａ１１部位中へのＳｍａｌ−Ｘｈｏｌ断片の挿入により、ｐＹＥＬＣ５ ，ＶＰ２Ｊ由来の別の構成物を作製した。この構成物は酵母ＣＵＰ１転写ターミ ネータ−を有するが、翻訳は二番目のＡＸＡＡＳから６５コドン下流でいくらか 停止する。（Ｖおよびｖ　ｉ）　ｐＹＥＬＣ５゜ＶＰ２Ｊにおけるミスセンス翻 訳を２つの方策により克服した。

ｐＹＥＬｃ５．　ＶＰ２Ｊをｐｓｔｔで開裂せしめ、次いでｄＮＴＰｓの存在下 でのＴ４ポリメラーゼ処理により３′突比末端を除去した。これの再連結はｐＹ ＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔ　（ｖ）を生じ、そしてこのベクター中ての翻訳はもっと早 く二番目のＡＸＡＡＳのほとんどすぐ下流て終結する。再連結をオリゴヌクレオ チドｄＣＧＧＡＴＣＣＧの存在下切断したベクターｐＴＴＱ１８　（Ｐｈａｒｍ ａｃｉａ）中にクローン１）ＥＸ、　ＰＯ△Ｘｈｏｒ−ＰｓｔＩ　（ＰＣＴ／Ａ Ｕ８８１００２０６）からのＳｍａ　Ｉ−Ｘｂａ　Ｉ断片を挿入することにより 、大腸菌発現クローンｐＴＴＱ１８．　ＶＦ６を作製した。

図２は、図１に記載の６種の酵母発現構成物のクローニング方法を示す。

図３は、酵母形質転換体により生産された［ＢＤＶ抗原のウェスタンプロットを 示す。フィルターＡは抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　９／６で探査し、そしてフィルター Ｂは抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　１７／８０で探査した。Ｂｉｏ−Ｒａｄにより記載さ れた通りに該フィルターをヤギ抗マウス【ｇＧ−西洋ワサビペルオキシダーゼ接 合体（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）と反応させ、次いでＨＲＰ発色試薬と反応させることに より、タンパク質バンドを可視化した。表示のタンパク質は、ベクターｐＹＥＬ Ｃ５（［／　−ン１　）、ｐＹＥＬＣ５，ｐｏ　（レ−ン２　）、ｐＹＥＬＣ５ ，ＰＯΔＸｈｏ［（レーン３）　、ｐＹＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔ　（レーン４）によ り形質転換された酵母からのもの、並びにＩＢＤＶ　（レーン５）からのもので ある。予め染色した分子量マーカーはレーンＭである。フィルターＡに指示した 矢印はＶＰ２ａ（４１ｋＤａ）とＶＰ２ｂ（３７ｋＤａ）の位置を示し、フィル ターＢに指示した矢印はＶＦ６（３２ｋＤａ）の位置を示す。フィルターＡ上の ＶＰ２ａとフィルターＢ上のＶＦ６より大きいポリペプチドバンド（レーン２） は、それぞれ、クローンｐＹＥＬＣ５，ＰＯ中の大ゲノムセグメントから発現さ れた前駆体ポリタンパク質の不完全開裂を表す。

のゲル濾過を示す。上のパネルは種々のＭＡｂとのカラム分画の反応性を示す： ・−・　抗−ＶＦ６　ｖＡｂ　１７／８０　；ムームＶＮ　ＭＡｂ　９／６　； 腸−圃　ＶＮ　ＭＡｂ　３９Ａ０下のパネルはＡ２８０　（実線）と種々の分画 に存在するタンパク質の量（・−−−一・）を示す。○−○は、粉末を差し引く ために、接合されたＲｅｍａｚｏｌ　Ｂｌｕｅ色素と試料とのインキュベーショ ン後に放出された可溶性ペプチドを含む上清のＡ５，５゜て測定したタンパク質 分解活性を示す。

図５は、５ｅｐｈａｃｒｙｌ　Ｓ、３００カラム上でのｐＴＴＱ１８．　ＶＰ２ 溶解物のゲル濾過を示す。上のパネルはＶＮ　ＭＡｂ　９／６　（ムーム）およ び３９Ａ（■−■）との反応性を示す。下のパネルはＡ２ｍ。

（実線）と個々の分画中に存在するタンパク質の量（・−一−−・）を示す。

図６は、不活性化された生来のＶＰ２ａ／２ｂまたは２種の組換えサブユニット ワクチンのいずれが一方を予防接種した成体の雌鶏の血清抗体応答を示す。４羽 の雌鶏のグループにフロイント不完全アジュバント中のＶＰ２ａ／２ｂ　２０μ ｇまたはｐＹＥＬＣ，５−ＰＯもしくはｐＹＥＬＣ，５−ＶＦ６のいずれが４５ μｇをｉ、　ｍ。

接種した。前記組換えタンパク質は、各酵母細胞溶解物の１２に上溝の３３００ 間隙容積分画から再懸濁した４０にベレットであった。Ａ　：　ＥＬ［ＳＡ力価 二Ｂ：ウィルス中和力価。

図７は、ゲル濾過（図３および４）にかけた酵母および大腸菌溶解物の間隙容積 （試験管４５−５５）および包含容積（試験管８ｌ−９０）分画中に存在するＶ Ｆ６のウェスタンプロット分析を示す。分析した試料は１．　ｐＹＥＬｃ５．Ｐ Ｏ：　２．　ｐＹＥＬｃ５．ＰｏΔＸｈｏＩ；　３．　ｐＹＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔ 　；　４．　ｐＴＴＱ１８．ＶＦ６であった。ａおよびｂは、それぞれ間隙容積 および包含容積分画中に存在するタンパク質を表す。フィルターＡは抗−ＶＦ６ 　ＭＡｂ　９／６で探査し、そしてフィルターＢは抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　１７／ ８０で探査した。

図８は、ＲＥＧ　４０００による沈澱後に得られた再溶解されたペレットのタン パク質分解活性（Ａｓｓｓ、、）を示す。間隙試料（試験管４７−５７．図４） ；包含試料（試験管８４−９２．図４）：および未分画の３に上溝のアリコート をＲＥＧ　４０００と混合し、４°Ｃで一晩保存し、そして２５００ｇで遠心し た。・□・間隙試料；・−−−−・包含試料；０−（）３に上溝。

図９は、ＶＰ２タンパク質のＮ末端の回復のためのクローニング方法を示す。

図１０はＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片のアガロースゲルを示す。

反応ＡではオリゴヌクレオチドＮ５２７を使って（ウェル１，３゜５．８）また は反応ＢではオリゴヌクレオチドＮ５２６を使って（ウェル２．４．６．９）ゲ ノムＲＮＡから得られた相補性ＤＮＡを、プライマーＮ５２６とＮ５２７　（ウ ェル１．２．５．６．７）もしくはプライマーＮ５２８とＮ５３３　（ウェル２ ，３）を用いてまたはプライマーを用いずに（ウェル８．９）、ＰＣＲ増幅にお ける鋳型として使用した。ウェル１０の分子量マーカーは叶ｉｇｅｓｔ　（Ｐｈ ａｒｍａｃｉａ）である。ウェル５と６におけるＰＣＲ増幅には、ウェル１と２ におけるものとは異なるＰＣＲ緩衝液を使用した。

図１１はプラスミドの作製および地図を示す。

Ａ、　ｐｒＰ４１　： ＶＦ６　（株００２−７３の）をプラスミドｐＥＸ、　ＰＯΔＸｈｏｌ−Ｐｓｔ ［がらの１．５ｋｂのＳｍａ［−ＸｂａＩ断片としてｐＴＴＱ１８　（Ａｍｅｒ ｓｈａｍ＞のＳｍａ　ｆ−聯１部位にサブクローニングし、ｐＴＴＱ１’８−Ｖ Ｆ６を得た。次いて小さいＤｒａｌ−３ａｌ［断片を除去して１ａｃＺα断片を 除去し、１２マーのＢａｍＨ［リンカ−（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）とｐＵｃ−ｆ　 １　（Ｐｈａｒｍａｃ　ｉａ）からのｆ１遺伝子間領域をその部位に挿入してｐ ｔＰ４１を得た。ＶＦ６の発現はｔａｃプロモーターの調節下にあり、Ｍ１３ヘ ルパーファージを使って一本鎖ＤＮＡを得ることができる。

Ｂ、　ｐｌＰ２０１　： 株００２−７３（７）ＶＦ６　ヲ含ムｐｆＰ４１　ｃ７）ＥｃｏＲＩ−Ｘｈｏｌ 断片が、ゲノムＲＮＡのＰＣＲ増幅により得られた変異株Ｅからの相同領域によ り置き換えられている。

Ｃ，ｐＩＰ２０７　： ＶＦ６のＣ末端半分を含むｐｌＰ２０１の小さい５ａｃｌ断片が、ｐ［Ｐ４１か らの相同断片により置き換えられている。ＶＰ２ハイブリッドタンパク質は、株 ００２−７３からのＣ末端半分に融合した変異体ＥからのＮ末端半分から成る。

Ｄ、酵母発現ベクター１）ＩＰ２１１　：ＶＦ６のＣ末端半分を含むｐＹＥＬＣ ５，ＰＯｈΔＸｈｏ　Ｉの５ａｃｌ−ＸｈｏＩ断片が、ｐｒＰ２０１の相同断片 により置き換えられている。これは、株００２−７３からのＮ末端半分と変異株 ＥからのＣ末端半分から成るＶＰ２ハイブリッドをもたらす。

図１２は、モノクローナル抗体を用いた大腸菌溶解物のドッドブロットを示す。

大腸菌溶解物の３に上清を同等のタンパク質濃度に調整し、モして１：５希釈液 （Ａ−Ｆ）をドツトプロット上に負荷した。ｐｌＰ４１．　ｐＩＰ２０１．　ｐ ＩＰ２０７からの溶解物および５μｇの［ＢＤＶウィルスタンパク質を、指摘の ようにしてＭＡｂ３９Ａ、　ＭＡｂ９／６およびＭＡｂ６／１を用いてドツトプ ロット分析した。

図１３は、成体のニワトリにおけるフロイント不完全アジュバント中）ｐＹＥＬ Ｃ５−ＶＰ２ノ用量応答を示す。Ｅ［、ＩＳＡ　（Ａ）およびウィルス中和（Ｂ ）抗体の力価について血清をアッセイした。

図１４は、フロイント不完全アジュバント中の４５μｇのｐＹＥＬＣ５−ＶＦ６ に対する２羽の感作された成体の雌鶏の血清抗体応答を示す。ＥＬＩＳＡ　（Ａ ）およびウィルス中和（Ｂ）抗体の力価について血清をアッセイした。

実施例１ 種々の長さのＮ末端融合物を育する多数のＶＰ２構成物を大腸菌中で生産せしめ ると、Ｎ末端融合物の長さか増加するにつれて封入体の形成による不溶性の程度 が増加する傾向があることがわかった。ＶＦ６の５つのＮ末端アミノ酸がｐＴＴ Ｑ１８ベクターからの８アミノ酸ＭＮＳＳＳＶＰＧにより置き換えられている構 成物ｐＴＴＱ１８．ＶＰ２　（図ＩＤ参照）は、発現レベルが適度に高く、生産 物が非常に安定であり、そして１２．０００　ｒｐｍ上清中に８０％までが残る ため、最も適当であることがわかった。それは多数ノＶＮ　ＭＡｂト強力に反応 する（ＰＣＴ／ＡＵ８８１００２０６ニ記載）。ウェスタンプロットでは、それ は変性ＶＰ２を認識する抗−ＶＦ６　ＭＡｂと反応する。非変性条件下では、立 体配座エピトープのみを認識するＶＮ　ＭＡｂ　３９Ａと強力に反応し、このこ とは該分子の少なくとも一部分が正確に折りたたまれていることを示唆する。構 成物ｐＴＴＱ１８．　ＶＦ６は更に、多数のＶＮ　ＭＡｂにより免疫沈澱される 。表１に示したように、ニワトリに注入すると抗−ＶＰ２抗体を生産するが、該 抗体は有意な程度にウィルスを中和しない。この状況は、大腸菌由来のＶＦ６か ら免疫感作用複合体（ｌＳＣ０Ｍ５）を作製した時にも改善されなかった。

Ａ　３２００　＜　８０ Ｄ　１６００　＜８０ 実施例２ 酵母由来のＶＦ６の免疫学的特徴づけ 酵母構成物は図ＩＣに示され、クローニング方法は図２に記載される。サツカロ ミセス・セレビシェ−（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）中 で発現されるＶＦ６は銅非誘導性発現ベクターｐＹＥＬＣ５（図ＩＢ参照；オー ストラリア国特許出願１５８４５／８８）を使って生産され、そしてクルベロマ イセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ　１ａｃｔｉｓ）構成物はに、 　１ａｃｔｉｓベクターＥ１（オーストラリア国、キャンベラ、オーストラリア 国立大学。

Ｄ、　Ｃ１ａｒｋ−Ｗａｌｋｅｒ博士から入手）を使って生産された。全ての酵 母構成物において、ＶＦ６の５つのＮ末端アミノ酸を酵母ＣＵＰＩ遺伝子産物の Ｎ末端から誘導したオクタペプチドＭＦＳＥＬＤＰＱにより置き換えた。ｐＹＥ ＬＣ５，ＰＯ構成物は、前駆体ポリタンパク質をコードするＩＢＤＶゲノムの完 全な大セグメントを含む。酵母では、大腸菌と同様に、該前駆体ポリタンパク質 が開裂されてＶＦ６．　ＶＦ６およびＶＦ６を生じる。ＣＬＩＰ　１オクタペプ チドは開裂されたＶＰ２分子のＮ末端に存在する。クローンｐＹＥＬＣ５，ＰＯ ΔＸｈｏ　Ｉ中で生産されたＶＰ２分子は、Ｃ末端に追加の１２　ＫＤａの「無 関係の」タンパク質を含む。この「無関係の」タンパク質は、翻訳終結コドンが ＶＰ２分子のＣ末端に導入されているクローンｐＹＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔにおいて 生産されるＶＦ６には存在しない。Ｋ、ラクチスのＶＦ６はＩ）ＹＥＬＣ５，Ｖ Ｐ２Ｔと同じ挿入断片を有する。

抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　９／６および抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　１７／８０を用いて探 査した発現生成物のウェスタンプロット（図３）は、酵母におけるＩＢＤＶの大 ゲノムセグメント（クローンｐＹＥＬｃ５．ＰＯ）の発現が、大腸菌および無細 胞翻訳系において見られるような前駆体ポリタンパク質から正確にプロセシング されたＶＦ６およびＶＦ６の生成をもたらすことを示す。予想どおり、ＶＦ６お よびＶＰ３コード領域の欠失のため、ＶＦ６はクローンｐＹＥＬＣ，５ＰＯΔＸ ｈＯ１およびｐＹＥＬＣ，ＶＰ２Ｔｌ：おいて生産されない（図１）。

ｐＹＥＬＣ，５ＰＯΔＸｈｏｌにおいて生産されるＶＰ２分子は、Ｃ末端に追加 の１２　ＫＤａの無関係タンパク質を有し、そして翻訳終結コドンがＣ末端に導 入されているクローンｐＹＥＬＣ，ＶＰ２Ｔにおいて生産される正しいサイズの ＶＦ６よりも遅い電気泳動移動度を有する。ＶＰ２ａより下方に出現するバンド は分解生成物である。

免疫原性を評伍するために、二重反復試験において、未感作のＳＰＥニワトリへ のフロイント不完全アジュバント中の酵母溶解物、１２Ｋ　ｒｌ）ｍ上清、また はカラム由来の分画の一回筋肉内注射により（ＶＮ　ＭＡｂを用いた一連のドツ トプロット上での反応性において５０μｇのウィルスＶＰ２と等価）、抗体を惹 起せしめた。全ての酵母構成物が、生来のＶＦ６および大腸菌構成物ｐＴＴＱ１ ８．　ＶＦ６のものと同等の試験管内抗原性を有する。

それらをアジュバント中に乳化させてニワトリに注射すると、非常に有意なＥＬ ＩＳＡおよびＶＮ力価を生じ（表２）、そして接種したニワトリからの血清はＩ ＢＤＶ感染から幼若のニワトリを受動的に保護することが可能である（表３）。

このように、酵母由来のＶＦ６は、それがニワトリにおける保護的抗体応答を誘 導するという点て、生来のウィルスＶＰ２と免疫学的に非常に類似している。

表２：　ウィルスＶＰ２または組換えＩＢＤＶ酵母構成物での免疫ｐＹＥＬＣ５ ，ＰＯΔＴ　”’　３．２００　３２ＯＮＴ＝試験せず 実施例３ 酵母−および大腸菌−由来のＶＦ６のゲル濾過および沈降大腸菌ｐＴＴＱ１８． 　ＶＦ６または酵母ＶＰ２構成物の１２，０００　ｒｐｍ上清を５ｅｐｈａｃｒ ｙｌ　Ｓ−３００カラム上でのゲル濾過にかけた時、ＶＦ６は２つの離れた分画 において溶出した（図４および５）。間隙容積に大きなピークがあり、外観上酵 母では非常に乳濁状であるが大腸菌のはそれが少なく、そしてほとんどタンパク 質を含まない。カラム分画をニトロセルロースフィルター上にドツトプロットし 、そして種々のモノクローナル抗体を用いて探査してＩＢＤＶ抗原の位置を突き 止めた。クローンｐＹＥＬＣ５，ＰＯはＶＰ２遺伝子以外のＩＢＤＶ遺伝物質を 含む唯一のクローンであるので、予想通り、抗−ＶＦ６　ＭＡｂ　１７／８０は クローンｐＹＥＬＣ５，ＰＯからの物質とのみ反応する。この反応は間隙容積分 画に限られる。未変性および変性ＶＰ２を認識するＶＮ　ＭＡｂ　９は、酵母構 成物ｐＹＥＬｃ５．ＰＯ（図４）、ｐＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏｌ、ｐＹＥＬＣ ５，ＶＰ２Ｔ　、　Ｋ、　ラ’）−Ｆ−スＶＰ２Ｔ　（結果は示しテいなイ）、 および大腸菌構成物ｐＴＴＱ１８．ＶＰ２　（図５）の間隙容積分画と包含容積 分画の両方と反応する。未変性ＶＰ２のみを認識するＶＮＭＡｂ　３９Ａは、上 記の全ての構成物からの間隙容積分画と卓越的に反応し、このことは正確に折り たたまれた分子の多（が間隙容積分画に存在することを示唆している。

全ての酵母構成物とｐＴＴＱ１８．　ＶＦ６において、間隙容積分画に存在する ＶＦ６は４０．０００　ｒｐｍで１時間回転させると定量的に沈降する。包含容 積分画に存在するＶＦ６は同じ条件下で沈降しない。これは、間隙容積中に溶出 するＶＦ６が高分子量凝集形で存在することを示唆する。クローンｐＹＥＬＣ５ ，ＰＯでは、ＶＦ６とＶＦ６の両方が間隙容積中に存在し、高速遠心によりＶＦ ６の約５０％がＶＦ６と共沈する。抗−ＶＦ６　ＭＡｂにより免疫沈澱する間隙 容積物質はウェスタンプロットにおいて抗−ＶＦ６　ＭＡｂと反応せず、そして 抗−ＶＦ６　ＭＡｂにより沈澱する物質は抗−ＶＰ３ＭＡｂと反応しない（結果 は示してない）。このことは、ｐＹＥＬＣ５，ＰＯでは間隙容積中に存在するＶ Ｆ６とＶＦ６が互いに複合体化しないことを示す。ｐＹＥＬｃ５．　ＰＯの間隙 容積分画の４０．０００　ｒｐｍペレットはＶＦ６とＶＦ６の両者を含むが、こ のベレットは他の酵母構成物から得られた４０．０００　ｒｐｍペレットより免 疫原性でない（図６ａ、６ｂ）。これは、ＶＦ６がＩＢＤＶの主要な宿主保護抗 原であるという以前の開示（ＰＣＴ／ＡＵ８６１００１５６およびＰＣＴ／ＡＵ ８８１００２０６）を支持する。

間隙容積物質の電子顕微鏡写真は明白な粒子構造を全く示さないが、ＶＮ　ＭＡ ｂおよび免疫金粒子と特異的に結合する不規則な密集体を形成する。

実施例４ Ｓｅｐｈａｃｒｙｌ　Ｓ−３００カラムで分画した大腸菌または酵母構成物にお けるウェスタンプロットを図７に示す。大腸菌ｐＴＴＱ１８、ＶＦ６の間隙容積 分画は全く分解されていないＶＦ６を含み、一方包含容積分画は幾らか分解され た物質を含んだ（図７）。

ｐＹＥＬＣ５，ＰＯオヨびｐＹＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔ並びｉ：　Ｋ、　ラフｆ　ス ＶＰ２Ｔノ間隙容積分画はＶＰ２ａに相当する顕著な４１　ｋＤａバンドを含み 、そしてｐＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏ　ＩではＣ末端の「無関係の」大腸菌配列 の存在のためＶＰ２ａより約１２　ｋＤａ大きいバンドを含む。全ての酵母構成 物の間隙容積中にも種々の量の分解されたＶＦ６が存在する。分解の程度はｐＹ ＥＬＣ５，ＶＰ２Ｔおよびに、ラクチスＶＰ２Ｔではより少ない（結果は示して ない）。ｐＹＥＬＣ５，ＰＯの間隙容積分画は完全にプロセシングされたＶＦ６ を含み、これは間隙容積中のそれの存在がプロセシングされてない前駆体ポリタ ンパク質のせいでないことを示す。分解の程度はＳ、セレビシェ−（Ｓ、ｃｅｒ ｅｖｉｓｉａｅ）生産物の包含容積分画において非常に強い。

大腸菌と酵母の両者において、未分解のＶＦ６が主として高分子量凝集形で存在 する傾向にあることは明らかであろう。

酵母構成物に関するでの上記の結果は全て、チモリアーゼで処理してそれらをス フェロプラストに変換し、次いで手短に超音波処理した酵母細胞を用いて得られ た。この方法は２時間までかかり、細胞性プロテアーゼの放出または活性化を導 く。他の方法では、ブラウンホモジナイザー（ＢｒａｕｎＨｏｍｏｇｅｎｉｚｅ ｒ）中て細胞をガラスピーズと共に敏速に破壊（２分間）し、次いでゲル濾過ま たは沈降により可溶性タンパク質（プロテアーゼを含む）から高分子量凝集体を 分離することにより、タンパク質分解の程度を最小にすることができる。

ＰＭＳＦのようなプロテアーゼ阻害剤の存在および抽呂中のｐＨの低下を用いて ＶＦ６の分解を最小にすることもてきる。

実施例５ 間隙容積分画および包含容積分画の免疫原性酵母構成物および大腸菌ｐＴＴ０１ ８．　ＶＦ６からの包含容積分画は非免疫原性であった。他方、全ての酵母構成 物の間隙容積分画中に存在するＶＦ６は高度に免疫原性であったが、大腸菌ｐＴ ＴＱ１８．　ＶＦ６のそれは非免疫原性であった（表４）。従って、高分子量凝 集形で存在する酵母由来のＶＦ６はニワトリにおいて保護的免疫応答を引き起こ すが、大腸菌の相当物は引き起実施例６ 組換えＩＢＩ）Ｖ　ＶＦ６（７）精製 酵母において細胞内的に生産された組換えＶＦ６はタンパク質分解を受けやすく 、そして成る種の細胞性タンパク質の存在が抗原の競争を導き得る。従って、免 疫原性であって且つ分解性プロテアーゼを含まない形態においてＶＰ２分子を単 離することが望ましい。酵母溶解物中の組換えＶＦ６は２つの形態−多量体形お よび単量体形で存在する。それらの形態は５ｅｐｈａｃｒｙｌ　Ｓ−３００ゲル 浸透クロマトグラフイーにより分離することができる（実施例３）。多量体形は ほとんど分解されず（実施例４）、高度に免疫原性である（実施例５）。酵母溶 解物中に存在するプロテアーゼ活性のほとんどは、多量体ＶＰ２を含むこの間隙 容積分画の後方に溶出する。これは、間隙容積中に存在するＶＦ６の一層大きな 安定性をもたらす一因となり得る。か（して、ゲル濾過は細胞性プロテアーゼか ら多重体形および単量体形のＶＦ６を効果的に分離する。間隙容積中に溶出する ＶＦ６は、４％ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）４０００で沈澱させることが できる（２°Ｃ，１時間）。低速遠心（２０００ｇＸ　１０分間）により回収す ることができる沈澱は、ＶＰ２活性のほとんどを含み（ＭＡｂ　３９Ａとの反応 により評価した時）、大部分の分解性プロテアーゼ活性を含まない（図８）。包 含容積中に溶出する単量体形のＶＦ６は、１０％までのＰＥＧ濃度で沈澱しない 。

ＶＦ６の単量体形と多量体形は、上述したように４％ＰＥＧでの沈澱による酵母 ３に上溝（前のゲル濾過なし）から回収することもできる。図８かられかるよう に、プロテアーゼ活性は、ＰＥＧ濃度か増加につれて増加する量で３に上清から 沈澱する。

４％ＰＥＧでは比較的少量の酵母プロテアーゼがＶＦ６と共に沈澱する。ＶＰ２ 沈澱物は４％ＰＥＧ中で安定に保存でき、この濃度およびそれより高濃度のＰＥ Ｇては、プロテアーゼ活性は阻害されると思われる。

酵母および大腸菌由来の組換えＶＦ６は、ＰＥＧとデキストランから成る水性二 相系を使用することにより、単量体形で且つ免疫原性形において回収することも できる。ブラウンホモジナイザー中でのガラスピーズ磨砕により得られた酵母溶 解物を、７％ＰＥＧ　６０００．５％デキストランＴ５００．２Ｍ　ＮａＣ１， ５０ｍＭリン酸緩衝液ｐＨ６，８に調整し、ＲＴで５分間インキュベートする。

低速遠心により、細胞破砕物を含む別個の中間相により分離された二相が形成す る。下方の高デキストラン相は、大半の細胞性タンパク質と核酸を含む。上方の 高ＰＥＧ相は在校的純粋なＶＦ６を含み、低温でのインキュベーションに次いで 低速遠心によりＶＦ６を回収することができる。

実施例７ ＶＰ２タンパク質のＮ末端の回復 大腸菌ベクターＰＯの操作により、ＩＢＤＶポリタンパク質のＮ末端をコードす るＤＮＡ配列を回復させた。クローンｐＥＸ、　ＰＯ（Ｈｕｄｓｏｎら、１９８ ６）は、ＩＢＤＶの犬ｄｓＲＮＡセグメントによりコードされるＩＢＤＶポリペ プチドの最初の５アミノ酸を除く全てのコード情報を含む。ベクターｐＥＸ、　 ＰＯを圃（とＸｍａｆで切断し、３　ｋｂの１ａｃＺ配列を切除した。Ｔ４　Ｄ ＮＡリガーゼおよび指示された二本鎖オリゴヌクレオチドの存在下で残部を一緒 に融合した。得られたプラスミドｐ５０１とｐ５０２は６　ｋｂのサイズであり 、そして３　ｋｂの欠失を有する点でｐＥＸ、　ＰＯと異なっている。欠失部分 の代わりに、それらは該ポリタンパク質の最初の５アミノ酸（ＭＴＮＬＳ−生来 、またはＭＴＮＬＳ−酵母が好ましい）をコードすることができる０、３３　ｋ ｂ未満の二本鎖人工オリゴヌクレオチドが挿入されている。

該構成物は、最適なコドン使用および効果的な翻訳イニシエーターを有すること により、酵母中での翻訳を最大にするように考案された。上述したように、オリ ゴヌクレオチドをペアにして混合物として合成した。クローニングしたオリゴヌ クレオチドを迅速に識別するために、更なるオリゴヌクレオチド：　３’ＯＨＴ ＧＴ　ＴＡＣＴＧＡ　ＴＴＧ　Ａ　５’ＯＨを合成した。これを放射性ＡＴＰで リン酸化し、該クローンから調製したＤＮＡにハイブリダイズせしめた。このオ リゴヌクレオチドは、１８°Ｃでは添加した二本鎖を含む全てのクローンとハイ ブリダイズしたが、３０°Ｃでは完全に一致しているもののみかハイブリダイズ したままであった。

図９に示した構成物（ｐ５０１とｐ５０２）は、この方法により直接形成された 。それらは４つのヌクレオチドが過剰であるが、読み枠の回復のための適当な候 補である。これは、先ずそれ列ＣＣＣＧＧＧを開裂し、一本鎖末端５’　ＣＣＧ Ｇを残す。ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄ　Ｂｉｏｌａｂｓにより記載された手順に従っ て、マングビーンヌクレアーゼ（Ｐｈａｒｍａｃ　ｉａ）ての処理によりそのよ うな末端を容易に除去した。それらの処理後、開裂されたベクターを分子内的に 再連結せしめ、フレーム内構成物ｐ６０１とｐ６０２を作製した。その部分配列 をそれらの親のベクターの配列と一緒に下記に記載する。

変更されたＮ末端を有するＰＯ構成物 Ｎ末端領域の配列　フレームシフト　クローン名ＭＳＮＬＳ？ＤＱ ＡＴＧ　ＴＣＴ　ＡＡＣＴＴＧ　ＴＣＣＣＧＧＧ　ＧＡＴ　ＣＡＡ　＋１または ＋４　ｐ５０１ｐ６０１およびｐ６１１からのＤＮＡを酵母ｐＡＡＨ５ベクター 中にクローニングした。フレーム内構成物はプロセシングされるポリタンパク質 を生産する。合成されるＶＦ６のレベルは低い（この無制御発現ベクターから予 想される通り）けれとも、ｐＡＡＨ５を使って以前に発現されたものとは異なり ＶＦ６が安定であるように見える。

実施例８ ２つの異なる血清型のＩＢＤＶ（Ｉおよび■）が存在しくＭｃＦｅｒｒａｎら、 　１９８０　；　Ｊａｃｋｗｏｏｄら、　１９８２）　、そして血清型■内には 抗原変異体が存在する（Ｓａｉｆら、　１９８７）。血清型Ｉ由来の組換えＶＦ ６による種畜雌鶏の予防接種はそれらの子孫をＩＢＤＶ感染から保護するが、血 清型Ｉの不活性化ワクチンでの予防接種に耐性である変異株（Ｄｅｌａｗａｒｅ 　Ｅ）か出現している。エスケープ変異体を基にしたワクチンでの予防接種は野 生型株だけでなく変異型株による感染に対しても保護することができるので、市 販のワクチンへの変異株の包含が望ましい。ウィルス中和モノクローナル抗体は 、株００２−７３のＶＦ６の中間の１４５アミノ酸残基（Ａｃｅ　ｌ−３ｐｅ　 Ｉ断片）中の立体配座依存性不連続エピトープを認識する（ＰＣＴ／ＡＵ８８１ ００２０６）。ウィルス中和へｆＡｂ　３９Ａは株Ｅのウィルスタンパク質と反 応しないため、変異株Ｅにおいてはこのエピトープが変更されている。免疫原性 エピトープを含むカセットを作製し、そしてそれを発現ベクター中に挿入するこ とにより、株ＥのＶＦ６をクローニングした。この方法を用いて、将来発生し得 る任意の変異体の免疫原性断片をクローニングしそして発現させることができ、 新しく出現した変異体をワクチン製剤中に迅速に含めることを可能にするだろう 。

Ａ、材料と方法 （ａ）ウィルスのゲノムＲＮＡの単離 変異株Ｄｅｌａｗａｒｅ　Ｅ　（Ｃｅｎｔｒａｌ　Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ　Ｌａ ｂｏｒａｔｏｒｙ。

Ｗｅｙｂｒｉｄｇｅ、　Ｕ、に、により提供）のゲノムＲＮＡを、以前に記載さ れたようにして（Ａｚａｄら、　ｘ９ｓｓ）　ＩＢＤＶ感染嚢から単離した。

７０　ｇの嚢から１．５ｍｇの収量のＲＮＡが得られた。

（ｂ）　ｃＤＮＡ合成およびＰＣＲ増幅のためのプライマーの設計鋳型としてゲ ノムＲＮＡ　、そしてプライマーとしてＶＦ２と相同性を有する合成オリゴヌク レオチドを使って、ｃＤＮＡ合成とＥ株配列のポリメラーゼチェーン反応（ＰＣ Ｒ）増幅により、サブクローニングに適当なりＮＡ断片を得た。プライマーの５ ′末端には、増幅された断片のサブクローニングを容易にするために制限部位が 組み込まれていた。タイプ■のオーストラリア株００２−７３からのＶＦ６の鋤 Ｉ−珈■、論［−釦１．最初のン工１−Ｘｈｏｌまたは最初のＡ　ｃ　ｃ　Ｉ　 −鑞１断片のいずれかを、株Ｅまたは他の任意の変異株からのＶＦ６の対応断片 により置換することを可能にするであろう５つの異なるプライマーを合成煮沸後 の急冷によりゲノムＲＮＡを変性させ、トリ筋芽細胞腫ウィルス由来の逆転写酵 素（ＡＭＶ　ＲＴａｓｅ、　Ｐｈａｒｍａｃｉａ）による相補的ＤＮＡの第−鎖 の合成のための鋳型として使用した。この合成は、コード鎖を与えるためにＶＦ ６のＮ末端に相補的であるオリゴヌクレオチドＮ５２７　（反応Ａ）、または非 コード鎖を与えるためにＣ末端に相補的であるオリゴヌクレオチドＮ５２６　（ 反応Ｂ）のいずれかにより開始した。

（ｄ）　ｃＤＮＡのＰＣＲ増幅 ＲＮＡ−ｃＤＮＡハイブリッドからｌ？ＮＡを加水分解した後、ＰＣＲにより第 −鎖ｃＤＮＡから特定の配列を増幅させた。ＶＦ６のＮ末端およびＣ末端領域に 相補的であるオリゴヌクレオチドＮ５２７およびＮ５２６をプライマーとして使 用した。対照反応においては、オリゴヌクレオチドＮ５２６をシ旦［部位の所で ＶＰ２内部領域に相補的なＮ５３３により置き換え、そしてＮ５２７をＶＦ６の Ｎ末端領域にも結合するＮ５２８により置き換えた。使用したＰＣＲ条件は、９ ５°Ｃで１分間の変性、６０°Ｃで１分間のアニーリングおよび７２°Ｃで２分 間の伸長、を３０サイクルであった。反応生成物をフェノール抽出し、エタノー ル沈澱せしめ、そしてアガロースゲル電気泳動により分析した（図１０）。

り平滑末端にし、生じた１、５ｋｂ断片をアガロースゲルから切り取り、そして Ｇｅｎｅｃｌｅａｎ　（Ｂｉｏ　１０１）で抽出した。次いでこの断片を、それ がオーストラリア株００２−７３のＶＦ６に置きかわったｐＩＰ４１の４．１ｋ ｂ睡ＲＩ−伽Ｉ断片と連結せしめた（図１１）。

制限分析およびＶＰ２ａのＣ末端の直線状エピトープを認識するモノクローナル 抗体（ＭＡｂ）　６／Ｉ　（Ａｚａｄら、　１９８７）を使ったドツトプロット におけるＶＰ２発現についてのスクリーニングにより、株ＥからのＶＦ６を含む クローンｐＩＰ２０１を同定した。

合した株ＥからのＮ末端半分と株００２−７３からのＣ末端半分とから成るハイ ブリッドＶＰ２を得た。これは、ｐｌＰ２０１の１．Ｊｋｂと１断片をｐＩＰ４ １の対応断片と置換することにより行った（図１１）。

ｐｌＰ２０１の制限断片をＭ１３ｍｐ１８およびＭ１３ｍｐ１９の適当な部位中 に連結せしめることにより、ＤＮＡ配列決定用の１１ｆ１３クローｐｒＰ２０１ からのＶＦ６のＣ末端半分を含む５ａｃ（−ＸｈｏＩ断片を酵母発現ベクターｐ ＹＥＬＣ５，ＰＯΔＸｈｏ（（図１ｃ）中にサブクローニングすることにより、 クローンｐ［Ｐ２１１を作製した。該プラスミドを用いてＳ、セレビシェ−（Ｓ 、　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ　）株６６５７−４Ｄを形質転換せしめ、そして二倍 体を選択した。Ｓ、セレビシェ−（Ｓ、　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ　）クローンｐ ［Ｐ２１１を銅誘導性ＶＰ２発現について分析した。クローンｐｌＰ２１１中の ＶＰ２ハイブリッドは、株００２−７３からのＮ末端半分と株ＥからのＣ末端半 分（ＭＡｂ　３９Ａ結合に特異的な領域を有する）を含む。該ハイブリッドタン パク質はＶＰ２Ｐ２Ｏ３ａｃｌ部位において融合している。

異なるＩＢＤＶ株からのＶＰ２分子のＮ末端半分にはアミノ酸変化が全く存在し ない。それらの構成物中のＥ−ＶＦ６　ＤＮＡの存在は、制限分析により確認さ れた。

（ｇ）　ＤＮＡ配列決定 組換えｐｌＰ２０１またはＭ１３クローンの二本鎖配列決定および一本鎖配列決 定は、製造業者の教示に従って、Ｔ７ボリメラーれかを使って、キットにおいて 供給される万能配列決定用プライマーまたはＩＢＤＶ株００２−７３の配列を基 にした合成オリゴヌクレオチドを用いて実施した。

（ｈ）組換えタンパク質の発現および特徴づけ０．４％グルコースと１００μｇ ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地中の大腸菌ＤＨ５α（ＢＲＬ）中にプラス ミドを維持した。０．５ｍＭｒＰＴＧを含むがグルコースを除いた同培地中で２ 時間増殖させることにより、論プロモーターの調節下でのＶＦ６の発現を誘導し た。

酵母では、０．５ｍ１ｌ（Ｃｕ５ＯｔをＹＮＢ　２％グルコース培地に添加しそ して３０℃で２時間増殖させることにより、Ｃ［ＪＰＩプロモーターからのＶＦ ６の発現を誘導した。

リゾチーム処理と超音波処理により細菌を溶解させた。酵母細胞はブラウンホモ ジナイザーにより溶解させた。

タンパク質をドツトプロット、ＳＤＳ　ＰＡＧＥおよびウェスタンプロットによ り分析した。

Ｂ、結果と考察 ＰＣＲのためのプライマーとして保存領域に相補的なオリゴヌクレオチドを使っ て、ゲノムＲＮＡからｒＢＤＶの変異株Ｅの宿主保護抗原ＶＰ２をクローニング した。正しい断片の増幅は、株００２−７３とＥとの間の相違が、ウィルス中和 立体配座エピトープを形成するＶＦ６の中央（Ａｃｃｌ劉匹１領域）に起こって いなければならないという発見に基づいた。ウィルス中和ＭＡＩ）　３９Ａは変 異株Ｅのタンパク質を認識しない。

ｃＤＮＡの合成およびＰＣＲにおけるＶＰ２配列に対するプライマーの特異性は 、種々のプライマーを使った時に予想されるサイズの断片を得ることによって証 明することができる。ＶＰ２特異的ＤＮＡ配列のみが増幅された。プライマーＮ ５２７とＮ５２６を含む反応では、全長ＶＰ２に相当する１、５ｋｂ断片が増幅 され、一方ＶＰ２のＣ末端に相同なプライマーＮ５２６が針４部位（アミノ酸３ ５０）あたりの領域に相同なプライマーＮ５３３により置換されている対照反応 では、わずか１　ｋｂの小さい断片が予想通り合成された（図１０）。

増幅された１、５　ｋｂの全長ＶＰ２断片の末端は、ＥｃｏＲＩおよびＸｈｏＩ で平滑断端にすることができた。この断片をｐＩＰ４１の対応部位に挿入し、オ ーストラリア株００２−７３のＶＦ６を置き換えると、それらの部位が維持され 、その上プライマー中に存在するＣ１ａｌおよびＰｖｕ　ｒ部位が組み込まれた 。正しいクローンｐ！Ｐ２Ｏ１をＣ１ａ！およびハｔｕｌでの制限分析により確 かめた。

ｐ［Ｐ４１とｐｒＰ２０１からのＶＦ６のＮ末端の相違を表７に示す。

（ｉｉ）ＤＮＡ配列 ウィルス中和エピトープを含む株ＥのＳａｃ［−漣ｆ領域を配列決定し、得られ たアミノ酸配列を株００２−７３の配列（Ｈｕｄｓｏｎら、　１９８６）と比較 した。両法は５ａｃｌ−シ副１断片中で１５アミノ酸残基異なる（表９）。株Ｅ における変化の最も顕著な特徴は、第二の親水性ピークの領域における株ＥのＧ ３１７ＤおよびＤ３２２Ｅ置換であった。株Ｅはまた新たなユニークＮｃｏ　Ｉ 制限部位を含み、００２−７３に存在する５ｔｕ１部位を失っており、これが０ ０２−７３とＥ株のＤＮＡ配列との間の便利な区別を与える。

（ｉｉｉ）発現 ｐＩＰ２０１から株Ｅの組換えＶＦ６を発現させることができたが、モノクロー ナル抗体（ＭＡｂ）　９／６および６／１へのそれの結合はｐ［Ｐ４１から発現 されたオーストラリア株のＶＦ６のものより弱かった（図９）。ＭＡｂ　６／１ および９／６を用いたドツトプロットにおいてアッセイすると反応性はわずか約 １１５であり、ＭＡｂ３９Ａとの反応性は完全に失われていた。ｐｒＰ２０１と ｐＩＰ４１のＶＦ６はそれらのＮ末端が異なっており（表７）これがｐＩＰ２０ １における発現レベルの減少または安定性の減少の原因となるかもしれない。こ の相違が重要であるか否か、または発現レベルが両プラスミドで同じであって単 にエピトープが変わったため結合の減少をもたらすのかどうかという疑問を解決 するために、オーストラリア株とＥ株とのＶＰ２ハイブリッドタンパク質を作製 し、そしてＭＡｂとの反応性をドツトプロット上で比較した（図１２）。

プラスミドｐｌＰ２０７は、ＶＰ２内部５ａｃ１部位において融合した株Ｅから のＮ末端半分と株００２−７３からのＣ末端半分とから成るハイブリッドＶＰ２ を含有する。プラスミド２１１では、順序が逆であり、ＶＦ６のＮ末端が株００ ２−７３からの配列から成り、そしてＣ末端が株Ｅからの配列から成る。

変更されたＮ末端を含むｐＥＰ２０７からのハイブリッドＶＰ２のＭＡｂ　３９ Ａ、　９／６および６／１への結合は、ｐ［Ｐ４１　と同様であり、ｐ［Ｐ２Ｏ １よりもずっと強い（図９）。これは、ｐ［Ｐ４１．２０１．２０７および２１ １の発現レベルがＮ末端の相違により影響されず、エピトープの変化のみがＭＡ ｂとの反応性の相違の原因になることを意味する。

プラスミドｐｌＰ２０７と２１１の結合活性の比較は、ＭＡｂ　３９ＡおよびＭ Ａｂ　９により認識される立体配座中和エピトープの形成に関与する残基が、Ｖ Ｆ６の中央のＳａｃ　ｒ部位から離れて位置するという結論をさらに導いた。従 って、ｐ’ＩＰ２１１により生産されるハイブリッドＶＰ２は、変異株Ｅに対す る組換えＩＢＤＶワクチンの有力な候補である。ｐＩＰ２１１からのハイブリッ ドＶＰ２はオーストラリア株００２−７３と同じ発現レベルを有し、変異株Ｅに 特有のエピトープを含む。酵母により発現されたｐＩＰ２１１のハイブリッドＶ Ｐ２を予防接種したニワトリは、ＩＢＤＶ株００２−７３を中和する抗体を生産 した（表９参照）。

表５・　ｃＤＮＡ合成およびＰＣＲ増幅のためのプライマーの設計ＥｃｏＲＩＦ ”ｔｕｌ　Ｃ１ａ工 １４５１１　５’ＴＴ入Ａｕ　９１９工ΔΩＡｃｃＡ　Ｔ入＾ＣＴＧＣＣＣ，Ｃ ＡＧ入丁Ｃ＾ＴＴＡＣＣ入＾Ｔ’ｒｃ丁Ｃ３２表６．　多重クローニング部位へ のＶＦ６のＮ末端融合ＥｅｏＲＩ　５ａｃＩ　Ｘｐｒ＝Ｉ　ＳｍａｒＡＴＧ　人 Ａτ　丁ＣＧ　入ＴＣＧＣＡ　ＴＣＧ　λＴＧ　λＣλ　入λＣＣＴＣＴＣλ　 Ｇλτ　、・ＥｃｏＲｒＰｖｕＩ　Ｃ１ａＸ ！！８：　［ＢＤＶ株００２−７３およびＥのＡｃｃ　［−３ｐｅ　［領域のア ミノ実施例９ ウィルス中和モノクローナル抗体は、ＶＦ６の中央の１４５アミノ酸残基（Ａｃ ｃＩ−浪１断片）内の立体配座依存性不連続エピトープを認識する（　ＰＣＴ／ ＡＬ１８８／（１０２０６）。この断片は卓越的には非常に疎水性の残基から成 るか、一端に近い２つの小さい親水性領域も含む。欠失−発現分析を伴う以前の 研究は、この２つの親水性ピークが立体配座エピトープの形成における重要な決 定基であり得ることを示唆した（　ＰＣＴ／ＡＵ８８１００２０６およびＡｚａ ｄら、　１９８７）。部位特異的突然変異誘発によってこれらの領域を縮小した 。しかしなから、介在する疎水性領域の一重要性も調べた。

血清ｕＩ不活性化ワクチンでの予防接種に耐性であり、そしてウィルス中和コン ホメーションエピトープに特異的なモノクローナル抗体３９Ａに結合す・、る・ 能力を失っている変異株Ｅは、ＭＡｂ　３９Ａ結合に重要な残基を同定するのに 青用であるこ妻がわかった。

、Ａ、材料と方法 １、突然変異誘発およびＶＦ６の発現のためのｐＩＰ４１の作製ＶＰ２（株００ ２−７３の）をプラスミドｐＥＸ、　ＰＯΔＸｈｏｌ−Ｐｓｔｌからの・１．、 ．５に、ｂ　、Ｓｍａ　［−Ｘｂａ　Ｉ断片としてｐＴＴＱ１８　（Ａｍｅｒｓ ｈａｍ）のＳｍａ（−Ｘｂａｌ”部位４に゛サブクローニングし、ｐＴＴｏ　１ ８−ＶＦ６を得た。次いで小さいル１１＝’、ｓａ　ｌ’　Ｉ断７片を削除して １ａｃＺａ断片を除去し、１２マーの堕−［リンカ−（Ｐｈａ−ｒｍａｃｉａ） とｐＵｃ−ｆｌ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）からのｆｌｌ遺伝子領領域その部位に挿 入し、ｐＩＰ４１を得た。ＶＦ６の発現はｔａＣプロモーターの調節下にあり、 Ｍ１３ヘルパーファージを使って一本鎖ＤＮＡを得ることができる。

ファジミドベクターｐＩＰ４１　（または株°ＥからのＶＦ６の復帰変異のため にはｐｌＰ２０１）から得られた一本鎖ＤＮＡ鋳型のオリゴヌクレオチド指向突 然変異誘発により、単一アミノ酸の置換および欠失を生ぜしめた。“ｄｕｔ　Ｕ ｎｇ“法を用いてまたはＡｍｅｒｓｈａｍの突然変異誘発キットを使用すること により、突然変異を生ぜしめた。ｐＩＰ４１中のユニーク５ｔｕＩ部位中にリン カ−を導入することによりアミノ酸の挿入を引き起こした。

３、突然変異体のスクリーニングおよび特徴づけ単一アミノ酸置換において使用 するオリゴヌクレオチドは、それらがプラスミドに新規制限部位を導入して容易 な同定を可能にするように工作した。リンカ−挿入断片も制限酵素消化によりス クリーニングした。全ての突然変異体を二本鎖ＤＮＡシークエンシングにより配 列決定し、予想される置換および挿入を確認した。

３つの異なるモノクローナル抗体（ＭＡｂ）　９／６．３９Ａおよび６／１を使 って突然変異体の表現型を分析した。細胞溶解物をイムノブロッティングにより アッセイし、そして野生型と比較した。ＭＡｂ　９／６と３９ＡはＶＦ６の１４ ５アミノ酸領域を認識する。

ＭＡｂ　６／１はＶＦ６のＣ末端のＡｃｅ　ｌ−５ｐｅ　ｒの外側の領域に結合 し、これを突然変異体により引き起こされたタンパク質中の非特異的変化を検出 するのに使用した。

Ｂ、結果と考察 （ａ）　ＡｃｃＩ−３ｐｅｌ領域内ての突然変異誘発Ａｃｃｌ−漉（領域のいず れかの末端の親水性領域に保存性および非保存性置換を導入し、そしてそれらの 親水性領域間の疎水性領域の寄与を５ｔｕＩ部位へのリンカ−挿入により探査し た。ＭＡｂ結合に対する突然変異の効果をドツトプロットにより分析した。第一 の親水性ピーク中の荷電アミノ酸から中性アミノ酸への置換は、ＭＡｂ結合に全 く影響を与えなかった（表１０）。

ＶＦ６の残基２５３の周囲の８旦１部位の所の疎水性領域中への４アミノ酸（１ ）ＩＰ３９ではＰｒｏ　Ａｓｐ　Ｐｒｏ　ＧｌｙまたはｐｌＰ４１ではＬｅｕ　 Ｔｈｒ　Ｌｅｕ　Ｔｈｒ）の挿入は、ＭＡｂ　３９Ａと９７６の結合を特異的に 阻害した。従ってＭＡｂ　６／１結合は影響を受けなかったので、この領域はエ ピトープの一部分であるかまたはエピトープの形成に特異的に関与する（表１０ ）。

はぼａａ　３００−３２０のの畢１部位に近接した第二の親水性領域の残基も、 立体配座エピトープの形成に重要である。ｐ［Ｐ７７における２３残基の欠失は ＭＡｂ　３９Ａと９７６の結合の低下を導いたか、ＭＡｂ　６／１結合には影響 しなかった。この領域における非保存性単一アミノ酸置換（Ｌｙｓ３０８Ａｌａ およびＬｙｓ３１５Ａ１ａ）はＭＡｂ　６／ｌ結合には影響しないように立体配 座を破壊しそしてタンパク質の不安定性を引き起こした。保存性置換Ｌ）ｌｓ３ １５ＡｒｇはＭＡｂ結合に対して測定可能な影響を与えなかった。

（ｂ）変異株Ｅのエピトープにおける相違株００２−７３のＶＦ６中の立体配座 エピトープを認識するＭＡｂ　３９Ａは変異株ＥのＶＦ６を認識しない。オース トラリア株００２−７３と変異株Ｅ間の立体配座エピトープの相違を招く残基は 、ＶＦ６のＣ末端半分のＳａｃ　Ｉ部位から遠位に位置している。これは、オー ストラリア株と変異株ＥとのＶＰ２ハイブリッドタンパク質を作製しく前の実施 例８１図１１を参照めこと）そしてＭＡｂへの該生成物の結合をドツトプロット において分析することにより（前の実施例８２図１２を参照のこと）証明されて いる。

ＭＡｂ　３９Ａを用いたプラスミドｐ　ｌＰ２Ｏ７（Ｅ　１００２−７３）およ びｐＩＰ２１１（００２−７３／Ｅ　）からのハイブリッドＶＰ２のドツトプロ ットは、各法に特有の表現型を決定する（表１１；プラスミドの詳細については 前の実施例８２図１１を参照のこと）。

株ＥからのＶＦ６のＡｃｅ４−却１断片のアミノ酸配列をオーストラリア株００ ２−７３の対応断片と比較した。両法間で１０５アミノ酸の≧ｌ−５ｐ５Ｉ断片 においてわずか１４残基が異なっており、そのうちの２置換（株００２−７３で の３１７Ｇ１ｙおよび３２２Ａｓｐに比較して株Ｅにおける３１７Ａｓ　Ｉ）お よび３２２ＧＬｕ）のみが第二の親水性ピークに存在していた（前記実施例８２ 表８を参照のこと）。オーストラリア株の配列中のような３２２　Ａｓｐへのｐ ＩＰ２０１中の株ＥからのＶＦ６の第二の親水性ピーク中の単一残基３２２Ｇｌ ｕの変異は、ウィルス中和ＭＡｂ　３９Ａへの結合を００２−７３株のもの同じ レベルに回復するのに十分であった（表１１）。この位置における単−ｂｐ変化 により血清グループ特異性が変更され得るので、この残基は立体配座エピトープ にとって不可欠である。

Ｃ１結論 部位特異的突然変異誘発により、Ａｃｃｌ−亜Ｉ断片において中和立体配座エピ トープの形成に寄与する２つの領域が同定位に近い第二の親水性領域中の残基は 、ＭＡｂ９／６および３９Ａにより認識されるエピトープの形成に特異的に関与 する。

株００２−７３と変異株Ｅとの間の立体配座エピトープの相違の原因となる残基 は、ＶＦ６中の５ａｃ１部位から遠位に位置している。株Ｅ中の単一残基３２２ Ｇｌｕからオーストラリア株の配列中のような３２２Ａｓｐへの復帰変異は、ウ ィルス中和ＭＡｂ　３９Ａへの結合を回復させるのに十分であった。

表１０　：　ｐｌＰ４１における部位特異的突然変異誘発の結果プラスミド　突 然変異　ドツトプロットにおける表現型ＭＡｂ　９／６　３９Ａ　６／１ 実施例１０ 予防接種した雌鶏の卵および子孫のニワトリへの母性抗体の伝達 成体のＳＰＥホワイトレグホン種のニワトリに、フロイント不完全アジュバント 中の４５μｇの組換えタンパク質を８週問おきに２回予防接種した。雌鶏を人工 媒精（ＡＩ）　Ｌ、受精卵を回収した。二回目の予防接種後３〜６週目に集めた 卵においてクロロホルム抽出および元の体積への再構成により卵黄抗体を測定し た。表１２に示した抗体の力価は、各雌鶏からの５〜８個の卵の平均である。二 回目の予防接種後６〜１５週間の間にＡＩ雌鶏からニワトリを鼾化せしめ、３日 齢目に羽から採血した。各雌鶏からの１０〜１５羽のニワトリにおける血清抗体 のレベルを表１２に示す。全ての抗体価はＥＬＩＳＡにより測定した。

卵黄中の抗体の平均力価は、ドナーの雌鶏の循環中のものの半分から１７４であ り、一方で群化したニワトリの循環中の抗体価は変動的であった（表１２）。組 換えサブユニッＨＢＤにより雌鶏において誘導された抗体は、卵黄を経て子孫の ニワトリに伝達された。

表１２二　組換えワクチンが注入された雌鶏の卵および子孫の実施例１１ 組換えＶＦ６による生来および組換えＶＦ６に対する抗血清の吸着 生来のＶＰ２ａ／２ｂと組換えＶＦ６の抗原の関連性を評価するために、種々の 抗血清をｐＹＥＬＣ，５−ＰＯΔＸｈｏｌと多数回吸着させた。

抗血清のアリコート（最初は１００μ４７）を等量の１）ＹＥＬＣ，５−ＰＯΔ Ｘｈｏｌ　（２０μｇ／１００　ａ　１　）と混１合し、３７°Ｃで１時間反応 させた。次いて抗血清を４００．０００　ｇ／ｒ’５分間遠心した。同様にして 抗血清を更に３回吸着させ、各１段階においてＥＬＩＳＡによる滴定用に一部分 を取っておいた。ｐｙＥｔ、ｃ、　５−ＰＯΔｘｈｏｒによる希釈因子について ＥＬｌＳＡ力価を調整した。

表１３ハ、組換えＶＦ６が生来ノＶＰ２ａ／２ｂおよびｐＹＥＬＣ，５−ｐｏ　 ΔＸｈｏ　Ｉに対する抗血清からＥＬＩＳＡ抗′体の大部分を除去したことを示 す。しかしながら、それは、Ｉ）ＹＥＬＣ，５−ＰＯに対する抗体をずっと小さ い比率で除去した。

ウェスタンプロット研究は、ｐＹＥＬＣ，５−ＰＯに対する元の抗血清および吸 着後の抗血清が、組換えＶＦ６での吸着により除去されないＶＦ６に対する抗体 を含むことを示した。この知見は、１１’、１ｆｆｉ）■（００２−７３）　＋ ：１ｍ対シテニワトリを保護するためニハｐＹＥＬｃ、　５−ＰＯを予防接種し た雌鶏からのニワトリにおいて高力価のＥＬＩＳＡ抗□体を必要とするという実 施例１４の知見も説明する。高力価はＶＦ６に対する抗体を反映する。

表１３二　組換えＶＦ６による、生来のおよび組換えＶＦ６に対する抗血清実施 例ｌ２ ｐＹＥＬｃ、　５−ＰＯΔＸｈｏ　［に対するニワトリの用量応答４羽の６週齢 のＳＰＥホワイトレグホン種のニワトリのグループに、フロインドアジュバント 中の１．７μｇ、５μｇ、　１５μｇまたは４５μｇのｐＹＥＬＣ，５−ＰＯΔ Ｘｈｏｆを筋肉内に注射した。組換えタンパク質は酵母細胞溶解物からの３に上 溝分画中に含まれていた。ニワトリを２週問おきに羽静脈から出血させ、血清を ＥＬＩＳＡ　（Ａ）抗体およびウィルス中和（Ｂ）抗体について滴定した。ＥＬ ［ＳＡ抗体とウィルス中和抗体の両方の攻撃および大きさは４５μｇ用量で最大 であり（図１３）そして１．７μｇ用量で最小であるが、予防接種の６週間目抜 の異なる処理グループにおける血清抗体価間に有意な差がなかった。

実施例１３ ｐＹＥＬＣ，５−ＰＯΔＸｈｏ　Ｉに対して感作された雌鶏の血清抗体応答１０ ０週齢ＩＢＤＶ（００２−７３）に暴露された雌鶏に、２００週齢おいてフロイ ント不完全アジュバント中の４５μｇのｐＹＥＬＣ，５−ＰＯΔＸｈｏ　Ｉを筋 肉内に注射した。ウィルス中和抗体とＥＬＩＳＡ抗体の両方か予防接種後２週間 目までに有意に増加しく図１４）、抗体力価は少なくとも更に９週間の間上昇し たままであった。

この実験は、油性アジュバント組換えサブユニ・ノドワクチンが感作された雌鶏 を高度免疫化することができ、これは市販のブロイラー飼育雌鶏における不活性 化ＩＢＤワクチンの一般用途である。

実施例１４ 実施例１Ｏに概説したようにして組換えＩＢＤＶタンパク質を２回予防接種した ＳＰＦ雌鶏から４化したニワトリを、３〜２８日齢の間、毒性ＩＢＤＶ（００２ −７３）の１００ニワトリ感染量の眼内接種によりチャレンジした。大部分のニ ワトリは、チャレンジ３日後の嚢中のＩＢＤウィルス抗原の欠損により評価する と、≧６４００の循環母性抗体力価を有しており、多数のニワトリは死後低い抗 体力価を有しており、それらの幾羽かは感染していた。これは、チャレンジ感染 に耐性の死後に特定の抗体力価を育する多数のニワトリから母性抗体の最小保護 力価を推定することを可能にする。ｐＹＥＬＣ，５−ＰＯを予防接種した雌鶏か ら鼾化したニワトリについては、ＥＬＩＳＡ抗体の最小保護力価は約１．６００ であり（表１４）、一方ｐＹＥＬＣ，５−ＰＯ△ＸｈｏＩを予防接種した雌鶏か ら岬化したニワトリについては、最小保護力価は約４００であった（表１４）。

後者の値は、常用の不活性化油性エマルションＩＢＤワクチン（Ｆａｈｅ）’ら 、　１９８７）で予防接種した雌鶏の子孫について以前に報告されたものと同等 であった。

コノコとは、ＥＬＩＳＡ　ニより評価したｐＹＥＬＣ，５−ＰＯΔＸｈｏ　（４ ｍ　ヨリ誘導した抗体の保護効力が、全ＩＢＤウィルスに対するものに匹敵する ことを示す。逆に言えば、ｐＹＥＬｉｌｌ、、　５−ＰＯに対する抗体の保護Ｅ ＬＩＳＡ力価は、おそら＜　ＶＦ６に対する抗体の存在のために、ｐＹＥＬｃ、 　５−ＰＯΔＸｈｏ　Ｉまたはウィルス全体に対するものよりもずっと高い（実 施例１１を参照のこと）。

ｐＹＥＬＣ，５−ＰＯＯ／１５’０／３　２／７　５／６　−　３／３ｐＹＥＬ Ｃ，５−ＰＯＯ／１９　０／６　０／１６　３／１９　２／９　１１／１１ΔＸ ｈｏ　（ ａ　チャレンジ後３ヨ目に死亡後の感染したニワトリの数特定力価の母性抗体で チャレンジしたニワトリの敷金ての感染したニワトリは≧１６の滑液包中のＩＢ ＤＶ抗体のＥＬＩＳＡ力価を育した。各実験ニワトリグループとチャレンジした ５羽の同年齢のＳＰＥニワトリのグループは、一様に感受性てあった。

参考文献 試験管番号 試験管番号 時間（週） −ＰＯ−＋ＶＰ２　−ＶＰ２（生来） 時間（週） −ＰＯ−４−ＶＰ２　−ＶＰ２　（生来）Ｃ４？　命　、ｌ　＠　會　Ｓ Ｄｅ・ 時間（週） 時間（週） １．７ｕｇ　→５ｕｇ中７５ｕｇ　−４９−４５ｕｇ−ＥＬＩＳＡ雌鶏Ａ→ＳＮ 雌鶏Ａ◆ＥＬＩＳＡ雌鶏Ｂ÷ＳＮ雌鶏Ｂ国際調査報告 Ｉｎｊｅｒｎｓ＋Ｉ＋ｙ＋ｓｌ＾１　ｃａｔ鴫、　ｌｌａ、ＫＴ／Ａｌｌ　５ｏ １０Ｑ２２４ＡＮＩＥＫ丁０　’Ｍ＋　ＩＮＴＥＲＮにｉαＱＬ　９込にΣＲＥ ＰＣＲＴ　ｃａｍη℃Ｗ己ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮ？ａ）、ＫＴ　Ａυ　４ＡＵ 　１９９０８／８ｆｌ　ＥＰ　３６６６Ｂ４　ＷＤ　８８１０２９８

Claims (18)

【特許請求の範囲】
1. １．酵母または他の真核生物宿主細胞中でのＶＰ２構造タンパク質またはＶＰ２ 構造タンパク質の全部もしくは部分の抗原性を示すポリペプチドをコードするヌ クレオチド配列の発現により生産された高分子量凝集形のＶＰ２を含んで成る、 ＩＢＤＶのＶＰ２構造タンパク質の高免疫原性形態。
2. ２．サッカロミセス・セレビシェー（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉ ｓｉａｅ）またはクルベロミセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓｌａ ｃｔｉｓ）中での適当なヌクレオチド配列の発現により生産される、請求項１に 記載の生産物。
3. ３．短いＮ末端融合物を有するＶＰ２構成物を含んで成る、請求項１に記載の生 産物。
4. ４．前記構成物において生来のＶＰ２の５つのＮ末端アミノ酸がＭＮＳＳＳＶＰ ＧまたはＭＦＳＥＬＤＰＱから選択されたオクタペプチドにより置き換えられて いる、請求項３に記載の生産物。
5. ５．本明細書中に記載のクローンｐＴＴＱ１８．ＶＰ２、クローンｐＹＥＬＣ５ ．ＰＯ、クローン　ｐＹＥＬＣ５．ＰＯΔＸｈｏＩ、クローンｐＹＥＬＣ５．Ｐ ＯΔＴ、クローンｐＹＥＬＣ５．ＶＰ２Ｊ、クローンｐＹＥＬＣ５．ＶＰ２Ｔ、 クローノｐＹＥＬＣ５．ＶＰ２ＣまたはクローンＫ．ラクチス（Ｋ．ｌａｃｔｉ ｓ）ＶＰ２Ｔのヌクレオチド配列の発現により生産される、請求項４に記載の生 産物。
6. ６．前記構成物において生来のＶＰ２の５つのＮ末端アミノ酸がペンタペプチド 配列ＭＳＮＬＳにより置き換えられている、請求項３に記載の生産物。
7. ７．本明細書中に記載のクローンｐ６１１のヌクレオチド配列の発現により生産 される、請求項６に記載の生産物。
8. ８．Ｎ末端配列がＩＢＤＶの第一の株に由来しそしてＣ末端配列がＩＢＤＶの第 二の株に由来するハイブリッドＶＰ２構成物を含んで成る、請求項１に記載の生 産物。
9. ９．ＩＢＤＶの第一の株のＶＰ２構造タノパク質のＡｃｃＩ−ＳｐｅＩ領域の少 なくとも一部分が、ＩＢＤＶの第二の株のＶＰ２構造タンパク質の対応部分によ り置き換えられているハイブリッドＶＰ２構成物を含んで成る、請求項１に記載 の生産物。
10. １０．本明細書に記載のプラスミドｐＩＰ２０１、プラスミドｐＩＰ２０７また はプラスミドｐＩＰ２１１のヌクレオチド配列の発現により生産される、ＶＰ２ 構造タンパク質の全部または一部分の抗原性を示すポリペプチドを含んで成る、 請求項１に記載の生産物。
11. １１．許容される担体と共に、請求項１〜１０のいずれか一項に記載のＩＢＤＶ のＶＰ２構造タンパク質の高免疫原性形態を含んで成る、ＩＢＤＶに対する免疫 応答を刺激するためのワクチン組成物。
12. １２．アジュバントを更に含んで成る、請求項１１に記載のワクチン組成物。
13. １３．請求項１〜１０のいずれか一項に記載の生産物をコードするヌクレオチド 配列を含んで成る組換えＤＮＡ分子。
14. １４．請求項１３に記載の組換えＤＮＡ分子および前記ヌクレオチド配列に作用 可能に連結した発現調節配列を含んで成る、組換えＤＮＡクローニングビヒクル またはベクター。
15. １５．請求項１３に記載の組換えＤＮＡ分子、または請求項１３に記載のＤＮＡ クローニングビヒクルもしくはベクターを含有する宿主細胞。
16. １６．酵母または他の真核細胞である、請求項１５に記載の宿主細胞。
17. １７．サッカロミセス・セレビシェー（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｃ ｉｓｉａｅ）またはクルべロミセス・ラクチス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓｌ ａｃｔｉｓ）である、請求項１６に記載の宿主細胞。
18. １８．ＩＢＤＶのＶＰ２の高免疫原性形態の調製方法であって、請求項１５〜１ ７のいずれか一項に記載の宿主細胞を培養して宿主細胞中で適当なヌクレオチド 配列を発現させ、そして発現生産物を回収する段階を含んで成る方法。