JPH04500008A - 特定細胞分離装置及び特定細胞分離方法 - Google Patents

特定細胞分離装置及び特定細胞分離方法

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 鉗 細胞11@縮物からの選択的細胞分離用システム挟止分野 本発明は、不均質細胞混合物から特定細胞集団を分離するための新規なシステム に関するものである。
発咀偽背景 細胞分離分野においては、血液中の血漿から細胞を分離すること、および例えば 赤血球の如き種々の型の細胞を白血球などから遠心分離により分離することは− i的である。しかしながら、他の細胞とほんの僅かだけ異なる細胞をそれらの懸 濁液中で分離する必要性がしばしばある。細胞がほとんど等しい比重を有してい る場合には、それらを遠心分離によって分離することはできない。
例えば、種々の型の白血球を骨!1111縮物または末梢血液幹細胞濃縮物から 単離することが望まれている。骨髄濃縮物からの神経芽細胞腫の選択的分離を行 うことも望まれている。血液細胞分離器を使用して製造されたリンパ細胞1m物 から特定のT−リンパ細胞部分集合集団(ヘルパー−インデューサーまたはサプ レッサー−細胞毒性T−リンパ細胞)を選択的に分離することが望まれている。
さらに、リンパ液で活性化されたキラー(LAK)細胞、腫瘍浸潤リンパ(TI L)細胞、または活性化されたキラー単細胞の先駆体を、リンパ細胞もしくは単 細胞fA縮物からまたは組繊細胞製剤から選択的に分離することも望ましい。
例えばサラエル(Sauer)他の米国特許番号4.710.412の如き最近 の先行技術によると、比較的大きい集団から細胞の個別部分集合を実質的な量で 磁気的に分離することが可能になっている。これはまた、得られるであろう精製 された細胞集団を用いる研究や治療技術の新展型を開くものである。
細胞分離に関する分野における最近の別の方法は、生理的に吸着または共有結合 された化学試薬または生化学試薬を存する中空繊維、平らなシート膜または充填 床球もしくは粒子マトリックス物質を、全血などから選択的に細胞を分離するた めに使用している。これらの装置は、全血または血液成分の連続的流入および逆 流を可能にするように設計されている。これらの装置は正常の血液流速では希望 する細胞濃度が他の細胞型と比べて非常に低くなる条件下で操作されるため、こ の分離方法はしばしば効率的ではない。
発明の記載 本発明では、不均質な細胞混合物から特定の細胞集団を選択的に分離するための 改良されたシステムが提供される。不均質な細胞混合物をfA縮物の物理的性質 を基にして選択的な細胞濃縮物を分離することにより不均質な細胞混合物から選 択的な細胞濃縮物を得るための手段に最初にかけることができる。好適には、選 択的な細胞濃縮物が本発明のシステムおよび方法と共に使用される。特に、第一 の分離段階としては遠心分離を使用することができる。希望する型の細胞の分離 用には多種類の型の細胞遠心分離システムを使用することができる。
粒子手段を内部に有する柔軟で折りたたみ可能な無菌的に密封された容器が提供 さねへここで粒子手段は好適にはそれと化学的に共有結合された物質を有してお り、該物質は他の細胞を除外しながら希望する細胞にだけ結合可能である。その ような共有結合される物質の例には、抗体、抗原、蛋白質、糖蛋白質、多11類 、または脂肪多糖類が包含される0粒子手段は長期にわたり容器壁などと接触す るようになっている。
不均質な細胞混合物または細胞4縮物を容器内の粒子手段と密に接触させるため の手段が提供される。これは簡単には、細胞混合物または濃縮物の生成位置と粒 子手段の間を連結している柔軟な無菌的導管システムであることができる。次に 粒子手段を用いる細胞混合物または−a縮物の培養を行って、細胞濃縮物からの 特定細胞集団を粒子と選択的に結合させて、粒子/細胞結合体を生成することが できる。
すると、新しい粒子/細胞結合体は細胞の残りとは相当異なる性質を有している ため、それらを例えば遠心分離により他の細胞から分離することは容易なことと なろう、好適には、常磁性である粒子を使用し、磁石システムにより分離するこ とができる。
最初の細胞流体容量は培養期間中に容器内に残っており、その時点で粒子との結 合が生しる。また、培養期間中に追加量の細胞混合物または′a縮物を容器中に 加えるための手段を備えることもできる。
上記の如く他の細胞から粒子/細胞結合体を分離した後に、例えば周知の方法で 粒子および細胞の間の結合を除去することにより、特定の細胞集団を粒子からま たはその逆に分離して、精製された細胞選択集団がそれ以後の使用のために供さ れる。一方、未結合細胞が希望する細胞であり、粒子/細胞結合体から除去でき る。
粒子が常磁性である時には、粒子/細胞結合体を磁石手段の作用により固定位置 に保持することができ、細胞濃縮物の残りの未結合部分がその位置から除去され る。
好適には、粒子/細胞結合体を保持する磁石手段は第一および第二の隔てられた 磁石部材を規定することができ、一方は他方の下流にあるため、下流に隔てられ ている第二の磁石部材は第一の磁石部材が拾い損ねた結合した粒子/細胞結合体 を拾うことができ、その結果、粒子/細胞結合体は残りの細胞と共に下流にし) くことはない。
磁石手段は、柔軟で折りたたみ可能な容器を運びそして配置する手に隣接して配 置することができ、該容器は粒子/細胞結合体を運んで容器の少なくとも1個の 内壁部分が磁石手段の磁場内にくるようにさせる。従って、この内壁部分は粒子 /細胞結合体が保持されている固定位置として機能する。
折りたたみ可能な容器をその内壁部分を磁場内に1きながら平らに圧縮し、細胞 ′a縮動物残部らの粒子/細胞結合体の分離を促進するための平らな圧縮手段を 備えることもできる。
特に、第二磁石部材は第一磁石部材の磁場より狭くしかも距離の短い磁場を有し ているのであるが、より強い常磁性粒子保持用の磁石表面と隣接している比較的 強い磁場を有している。好適には、第一磁石部材の磁気範囲はそこに置かれてい る流体容器の幅と実質的に等しい。これにより容器中の常磁性粒子の大部分が磁 場の範囲内となりそして磁石表面に引き付けられる。
粒子手段を含有している容器が血液細胞分離遠心分離器用の柔軟な複数室挿入部 材と無菌的に連結していることも好ましい、そのような挿入部材は該遠心分離器 中で典型的に使用されている使い捨ての血液運搬用の内部柔軟性部分である。
それは本発明に従う容器と一体に無菌的に連結されているため、新たに集められ た血液細胞を挿入部材から粒子手段を有する容器に、それらの間に殺菌性連結部 を設ける必要なしに、無菌的に移すことができる。これにより、本発明に従う使 用が非常に簡単になり、そして無菌状態が保たれる可能性が増加する。
また、希望により粒子手段を有する第一容器を、常磁性粒子手段または他の型の 粒子手段を含有している第一容器からの処理された細胞を受けるための別の柔軟 で折りたたみ可能な容器手段と、無菌的に連結させることもできる。典型的には 、第二の柔軟で折りたたみ可能な容器は上記の第一容器と別の折りたたみ可能な 容器手段の間で密封して無菌的に連結されておりそして配置されている。これは 上記の第二磁石に対して配置されている下流収集区域として作用して、細胞分離 操作中に第一溶液が圧縮されている第一磁気的手段を逃れた粒子/細胞結合体を 収集することができる。第二の柔軟で折りたたみ可能な容器は好適には六角形で あり、反対側の角に入り口および出口を有しており、該第二容器中でそれと連結 している流管に関して一般的に遅い細胞流を生じさせる。流管の直径は典型的に は第二容器の幅の1/4以下である。また、特に磁気的分離中の第二容器を通る 流路は非常に浅くすべきであり、典型的には0.02−0.1インチである。
さらに、本発明に従い下記の工程を含む方法を実施することができる。患者から の血液を第一容器中で集めるかまたは患者を血液分離遠心分離器とつないで遠心 分離器を操作して細胞濃縮物を製造し、それを第一容器中に集める。第一容器を 密封する0粒子手段があらかじめ容器中にない場合には、それらを容器中にある 種の無菌的方法で入れるか、または容器内に配置されている内部容器を容器の外 部から破壊してそれらを容器内に放出させる。このようにして細胞および粒子手 段を混合する。次に、あらかしめ一体的に連結されていない場合には第一容器を クランプで挾まれている分離セントの入り口と連結させる。第一容器および第一 容器と分離セント残部との間の希望する第二室の両者が磁気分離器手段中に置か れている。第一磁石は今は希望する細胞と結合されている粒子手段の粒子を引き 付けて、粒子手段を第一袋中に分離セントに向かう製法の残りの内容物として保 持する。同じ原理が第二磁石の影響下にある第二室中でも起きて、粒子手段およ び付着細胞が第一容器の内容物の残部と共に下方に流れる可能性を排除または大 きく減少させる。
次にクランプを開くかおよび/またはポンプを作動させて第一容器からの流を第 二容器中に流し始めそして第二磁石の磁場を越えて分離セントの貯蔵容器中に流 す。次に貯蔵容器を密封し、その後に、貯蔵容器を任意に取り外す。
次に磁石を除去しそして付着細胞を流して、1個以上の貯蔵容器が純粋な細胞/ 粒子結合体を含有しながら他方の貯蔵容器が第一容器の残存内容物を含有してい る。この後に、一般的方法を使用して粒子手段の粒子を付着細胞から分離し、次 に細胞を遠心分離または例えば濾過もしくは磁気的分離の如き他の希望する手段 により分離し、そして純粋な細胞貯蔵用の容器に送る。粒子と細胞との間の連結 を切るために使用される手段はもちろん特定の結合剤に依存している。例えば、 粒子手段を特定の希望する細胞用の抗体で被覆することもでき、その結果として 細胞が粒子手段と結合する。次に、結合を切ろうとする時には、適当な試薬を使 用して結合を切ることができる。
本発明の方法の利点は、本発明の磁気的分離システムをバッチ方法で細胞aW物 と共に使用することである。細胞濃縮物では、分離しようとする特定の細胞集団 が比較的高濃度で存在しており、それは分離力学にとっては好ましい傾向である 。別の利点は、血液細胞を分離しようとする状況下では非−特定細胞反応を減少 させる予備的な典型的遠心分離細胞分離方法により多くの望ましくない血液細胞 型はすでに数量的に大きく減じられており例えば、最小の赤血球細胞、血小板、 および顆粒球汚染を伴うリンパ細胞濃度の収集を血液細胞分離器を用いて実施で きる。
さらに、本発明の条件下における細胞4縮物への粒子手段粒子の導入により、粒 子手段を有する容器内で貯蔵しながら一定容量条件下で培養が起きる。従って、 粒子/細胞結合体の生成用の好ましい最終的培養条件をさらに容易に得るために 、システム溶液組成物を遠心分離することができる。次にこれらの条件を非常に 応用自在な方法で特定目的用に最適にできる。
粒子/細胞結合体のそれ以後の分離も本発明の条件下では有利であり、分離時間 は比較的迅速であり、しかも最初のi動物中の細胞型が少ないなら望ましくない 汚染細胞の数の少ない最終的生成物を与える。
上記の如く、粒子手段と共有結合されている物質は、例えば、抗体、抗原、蛋白 質、糖蛋白質、多W類、脂肪多m類であることができる。該物質は、核酸、脂質 分子、または分離しようとする細胞集団に対する選択的な結合親和力を示す物質 の合成的にもしくは化学的に改質された成分であることもできる。そのような化 学的共存結合用に使用される方法は周知であり、そして親和クロマトグラフィー および他の選択的吸着用途用の結合されたマトリックス物賀の製造において使用 されている。セファロースに対する共有結合技術、ゲル化、または他の球の例は 、下記の文献中に見られる;ハビーブ(Habeeb)、「免疫吸着剤の新規な 製造(A Novel Preparation of Immunoadso rbents)J、バイシミ力・工・バイオフィジカ・アクタ(B i o c  h 1m1ca et Biophysica Acta)、673 (19 81)、527−538iカンビニル(Camb i e r)他、「単離され たホスホリルコリン結合用リンパ細胞。■0機能的抗原結合用細胞の固相吸着剤 型乱用の分裂可能な架橋結合剤の使用」、ジャーナル・オブ・イミュノロジカル ・メソンズ(J。
unal of Immunological Methods)、51(19 B2)209−221 ;およびボナファス(Bonna f ous)他、「 分裂可能な水銀〜硫黄結合により固定された配位子」:ジャーナル・オブ・イミ ュノロジカル・メリンス(Jounal or Immunological  Methods)、58 (19833)、93−107゜本発明の粒子手段を 懸濁させられる溶液は緩衝食塩水溶液であることができ、それは例えばアルブミ ンの如き蛋白質を含有することができそして不均質な細胞e4縮物および粒子手 段と結合する生物学的結合用物質の生理的条件と相客性である。この溶液は、球 または粒子と共有結合される物質に殺菌性を付与するようなそれの化学的組成お よび性質に構成することができる。さらに、球または粒子懸濁液を不均質な細胞 a動物に加える時には生成した混合物の性質が球または粒子結合体を生成する傾 向があるような溶液を化学的組成および性質で構成することもできる。
例えば、不均質な細胞混合物または′a縮動物骨髄製剤であることができ、そこ では細胞を細胞濃縮遠心分離器などの中でさらに濃縮することができる。さらに 、不均質な細胞混合物は組織誘導細胞懸濁液またはコ亥遠心分離装置を用いて末 梢血液から製造された細胞′a、縮物動物ることもできる。後者の例は、例えば 前記のC33000血液細胞分離器またはオートフェレシス(Autopher esis)−C装置の如き血液細胞分離器を用いて製造された血小板、リンパ細 胞、顆粒球、単核細胞、または末梢骨髄幹細胞製剤である。
° 血液細胞分離器の遠心分離能力を用いて不均質な細胞fA縮物中での非結合 細胞から粒子/細胞結合体をそれ以後に分離できるようにするためには、該シス テム中で使用される球または粒子を特定の寸法および特定の比重性質に関して選 択することができる0例えばフィコルーハイバク(F ico I I−Hyp aque)またはペルコル(Percoll)の如き溶液を使用してこの分離を 促進させることができる。
粒子手段の球または粒子は多数の異なる物質、例えばポリスチレン、ラテックス 、プラスチック共重合体、ガラス、合成的に製造されたゲル球などからなること ができる。好適には、該物質は良好な機械的性質を有しており球または粒子の剥 離または破壊を防止し、そして容易に化学的共有結合が可能となるものであろう 。
球または粒子がマグネタイト粒子の周りで生成して、上記の如き磁石を使用して の球または粒子/細胞結合体の分離を可能にすることが好ましい。例えば、19 87年10月26日に出願された「磁気的に応答する重合体粒子の製造方法およ びそれの用途」という名称のチェオーフーエイJ、ワン(Chaeo−huei 、J、Wang)他の特許出願番号113.294中に記されている如き方法に 従い粒子を製造することができる。
本発明で使用される粒子手段の典型的な寸法は、約2−10ミクロン、好適には 約3−5ミクロン、であることができる。粒子を液体懸濁液状で加えて、典型的 には濃いスラジ状の物質を製造することができる。
10m1程度の該液体懸濁液を、10万一20#個の粒子を典型的には含んでい る分離用の細胞を受けるための袋の中に入れることができる。粒子が長すぎる時 間にわたって袋内に保持されることがいずれの理由、例えば袋の壁との相互作用 のために、望ましくない時には、それらを例えば殺菌性連結器の如き一般的手段 により別個に袋に加えることができ、またはそれらを袋内の詭い容器内に入れて おき使用時に破壊して袋の内部にこの脆い容器から加えることもできる。
上記の如く、本出願で使用される種々の容器は好適には本発明に従う処理中の殺 菌性連結の必要性を避けるためにそれらの最初の製造時に一体的に一緒に連結さ れている。しかしながら、それらを殺菌性連結器と共に連結することもでき、そ れらの多数の設計、例えば米国特許番号Re、32,056のもの、は周知であ る。
ニューヨーク州グレート・ネックのダイナル・カンパニーは、本発明に従い使用 できる常磁性微細球を製造している。
典型的な血液細胞分離用では、粒子手段の微細球の使用数は約10万一1億個で ある。上記の如き第一および第二の磁気的分離器を使用する時には、微細球およ びそれと結合している細胞の細胞懸濁液からの除去は定量的であり、本発明の磁 気的分離システムを通過した後の下方流中では事実上微細球が見られないことが 見いだされている。
凹皿Ω記載 図1は細胞を選択的に分離するための本発明に従う装置の部分的に図式的な平面 図である。
図2は図1の装置と共に使用される磁気的分離装置の一部の透視図である。
図3は図1の装置と共に使用される磁気的分離器の他部分の透視図である。
図4は操作位置における分離システムの透視図である。
図5は図2−4の磁気的分離器中で使用された複合磁石の平面図である。
図6は図5の磁石の端面図である。
図7は図2−4の磁気的分離器中で使用された第二複合磁石の端面図である6特 定実施倒p説朋 図1を参照すると、本発明に従い不均質な細胞混合物から細胞の個々の集団また は集団群を分離するための使い捨てシステム10が開示されている。
本発明と共に使用できる細胞4縮器部分12が図式的に示されており、そしてそ れは米国特許番号4,379,452または4.410,026中に示されてい る如きデザインであることができ、または細胞4縮用の周知の装置中で使用可能 な細胞濃縮器部品であることもできる。例えば、バクスター・ヘルスケア・コー ポレーションにより販売されているC33000”°九分離システムを使用する ことができ、或いはバクスター・ヘルスケア・コーポレーションにより販売され ているオートフェレンスーC4,8・分離システムまたは他の同様な希望する装 置を使用することもできる。
遠心分層器システム】2の出口14のところで、例えば濃縮器システム12中で 全血から分離されたリンパ細胞の如き希望する細胞集団を供給することができる 。多分他の白血球細胞と混合されているであろうリンパ細胞が柔軟な導管16を 通って一般的に従来デザインの柔軟で折りたたみ可能な容器18の中に行き、該 容器は一定の白血球範晴の細胞壁中の特定標識蛍白質に対する抗体または他の細 胞結合剤でさらにコーティングされている例えばポリメチルメタクリレートの如 きプラスチックでコーティングされている酸化第二鉄の如き常磁性物質を含むミ クロン寸法粒子の粒子手段を含有しているため、白血球および粒子20が互いに 選択的に結合して、残りの白血球および他の細胞は除外される。
本発明の装置は、柔軟で折りたたみ可能な容器18と柔軟で折りたたみ可能な容 器24との間を連結している柔軟な管状物22も有しており、一端では管状物2 2をそして他端で出口管状物26と連結している。管状物26は管状物28.3 0に分岐しており、それらのそれぞれは他の柔軟で折りたたみ可能な容器32. 34と連結している。
細胞濃Iii器部分12は好適には柔軟な容器18と一体的に連結しており、8 亥連結は希望により一般的な殺菌性連結器システムによりなされている。さらに 、粒子20を容器18の外部に貯蔵しそして殺菌性連結器手段と連結させること もでき、またはそれらを袋28の脆い容器内部中に置くこともでき、ここで容器 は使用時に破壊できるため、ある程度の接着がそこで起きている際にも粒子2o は袋の壁と過剰時間にわたって相互作用をしない。もちろん、粒子が袋の壁と相 互作用しない場合には粒子20を袋内に自由に置くことができる。
細胞を分離しそして分H’装置12中で濃縮しそして袋18に移した後に、第一 の細胞−含有容器18を線16の熱密封およびクランプ36の操作により密封す ることができる(しかし、クランプ36は操作の初期段階に閉じることができる )、微細球または粒子20がすでに容器に加えられていない場合には、それらを その時点で加え、その後、第一容器の内容物、特に細胞および微細球または粒子 、を静かに混合することができる。この時点で、選択された粒子細胞と粒子また は微細球20の抗体被覆の間で結合が生しる。
その後に、容器18がそこに示されているように室24から始まり袋32.34 を含んでいる本発明の下流セット部分と一体的に連結されていない場合には、そ のような連結を殺菌性の無菌的方法で、例えば周知のデザインの殺菌性連結器シ ステムの使用によるような一般的手段により、行うことができる1図4の好適態 様では、種々の部品が一体化されており、連結の不便さおよび容器内容物の汚染 危険性が避けられる。
その後に、容器18および24は磁気的分離器40に入れられ、該分離器は図2 −7中に種々の面から示されている。
分離器40は、磁石組み立て部品44.46を有する上部の基礎部品42を備え ている。上部の回転可能なヒンジ付き圧縮具部品49は平らな表面下部分50を 含んでおり、そしてそれはベース42により支えられており、それの閉しられた 位置の磁石46と重なっている。上部のベース部品42は従ってそれぞれが磁石 44および磁石42と対している2個の空間を与え、それらの磁石はそれぞれ袋 18および袋24を受けるように配置されている0通路47および空間48が管 状物22用の余地を与えており、一方通路51が管状物26を受けるために備え られている。
さらに、下部のベース部品52はクレードル区域54中の上部ベース部品42を 受けるために配置されていて、管状物26がローラーポンプ組み立て部品53と 連結できて、袋18から出た細胞流を中間袋24を通して容器32または34の 一方または他方に調節しながらポンプで送る。
ヒンジ付きカバー56が配置されており、上部ベース部品42中に設置されてい るように袋18の頂部で下になっている。上部の回転可能なヒンジ付き圧縮具部 品49が同様な方法で柔軟な室24の上で下方に圧縮させている。特定の圧縮具 部品49の目的は、処理中の室24の流路の厚さを正確に規定して付随している 磁石を越える波路を例えば約0.05インチのような非常に浅い深さにすること である。同様に、磁石44は室18と関連するように配置されている。ここにさ らに詳細に記載されている如く、磁石44および46はそこに配置されている容 器、すなわちそれぞれ容器18および24中を通過する常磁性粒子を捕獲しそし て保持するために適切に構成された磁場を与えるように設計されている。これに 関すると、磁石44は粒子の比較的大きい割合を捕獲する絶えに磁石46より大 きい磁場範囲を有するであろう。このため、その中をii1遇する細胞が磁石4 4.46により発生する場により強く影響を受けるような位置になる。従って、 磁気法と結合された細胞は磁石の一方または他方に保持されるであろう。
適当な上部ベース部品42を有する磁気的分離器装置40を使用する利点は、上 部ベース部品42が使用前に4°C程度の温度に再冷蔵できることである。従っ て、冷たい磁石は細胞を操作中ムこ冷たく保ち、同時に磁場強度も幾分増加させ る。冷たい細胞は比較的不活性でありしかも比較的良好に保存される。また、低 温においては、常磁性法と非−特異的細胞との相互作用を減少できる。例えば、 存在している食細胞は低温に保たれる時には摂取使用可能な球の中で比較的不活 性である。
容器18.24が磁石44.46上に置かれている時には、クランプ36を開く ことができ、そして回転可能な圧力部品56を静かに閉して容器18を平らに圧 縮しそして磁石44上に残っている細胞および袋から出たそれらの担体液体を圧 縮できる。圧縮器56はプラスチック袋18が絞られて袋からの効率的な流が比 較的一定に調節されるような方法で磁石44に磁気的に引き付けられるような寸 法および配置にされている磁気化可能金属片を含有することもできる。一方、ロ ーラーポンプ53を作動させて、細胞およびそれらの担持液体を袋18から流出 させることもできる。細胞およびそれらの担持液体が管状物22を通って流れる につれて、磁石44からの磁場は粒子または微細球20およびそれらが結合して いる細胞を引き付けて、そのような微細球20を磁石44と最も近い袋ユ8の内 壁57(図6)に対して一般的にはしっかりと固定させ、粒子20およびそれら の結合細胞は保たれながら、残存細胞および懸−/IAf1.体は管状物22を 通って袋18から出る。
粒子20および結合している細胞が第一磁石44を逃れた場合には、それらを容 器24と第二磁石46との間の相互作用により収集することができ、該磁石の下 でそれは内壁59(図7)に対して保持される。相当な流条件下でも、拡大され た容器24はその中を通る比較的遅い流条件を示している。ヒンジ付き圧縮具部 品49は、圧縮具部品49をその場で適当な間隔および量の磁力を用いて保持す るような寸法にされている4個の金属ボルト81を含有している。圧縮具部品4 9の表面50は正確にl!械製作されており、容器24中の流路の厚さを正確に 規定している。この流路の浅い深さにより、存在している粒子または微細球を磁 石46の磁場の影響下に押し流して、容器24の内壁59の上に保ちながら、残 りの細胞および液体は容器24から出て管状物26を通って例えば袋32中に流 れる。そのような環境下では、管状物30ははずされて、袋34は空に保たれて いる。
次に圧力部品56を使用して袋18から出た全ての存在している可能性のある液 体および細胞を絞り、少量の細胞−相容性懸濁液体をシステム中に殺菌性連結器 口61、充填用の管33、または他の一体的に連結された容器を介して通過させ て、常磁性粒子と未結合の残存細胞をシステムを通して袋32に流す。
次に、−i的なりランプ手段により管状物28を閉しそして管状物30を開く。
システムを磁石44.46の影響下か−ら除去し、そしてさらに懸濁液/溶液を 容器18中に通して粒子20と結合された細胞を管状物22を通し、室24を通 して流して、そこに保持されている結合された細胞を吸収し、そして容器34中 に流す。
次に、容器32.34をシステムから一般的方法での管状物2日、30の密封お よび切断により分離し、ここで細胞の希望する特定集団は細胞主体から分離され そして分離用途用の分離容器34中に置かれる。
上記の如く、磁石44は磁石46より大きい磁場範囲を有するように設計されて いる。好適には、この磁場範囲は容器1Bの幅と少なくとも等しいものから約3 /4までであり、そしてより好適にはその幅と実質的に等しい。これにより、容 器1日内の常磁性粒子の大部分は磁場により捕獲されそして磁石44の表面に引 き付けられる。従って、磁石44は約1/2インチー1インチの、好適にはl/ 2インチ−3/4インチの、磁場範囲を有する。
典型的には、比較的大きい磁場範囲を有する磁石は比較的低い表面磁場強度を有 している。希望する磁場範囲を与えるが実質的な表面磁場強度も保持している粒 子磁気的組み立て部品が、図5および6に参考に記載されている。磁石組み立て 部品46は、同様な構造に製造することができる。磁石組み立て部品44は、鋼 柱部品66により分離されておりしかもそれと接触している棒磁石64の積層を 含んでいるように示されている。これは「NJおよびr5.の文字により示され ており、それらのそれぞれは互いに面している各磁石のまとめられた北極または 南極を示している。棒磁石64は長い側部68および端部70を規定しており、 そして棒磁石のN極およびS極は図5に示されている長い側部の反対の対に沿っ て規定されている。好適には棒磁石はネオジミウム、鉄およびホウ素の高磁性合 金製である。図5では、示されている磁石組み立て部品の面72は使用時に袋1 8の外壁に対して静止しているため、磁石組み立て品44からの磁場は粒子20 の保持のために容器18中を通る。
図6に関すると、磁石組み立て部品44の端面図が示されており、面72は図5 に示されている面である。そこに示されている如く、種部品66により分離され ている磁石64は磁性化不能なアルミニウム板74などの上に静止して、各磁石 および種部品を支持している。
種部品66がそれぞれ棒磁石64から離れている平行な端部面に沿って角度の付 いている溝76を規定しており、そしてそれは組み立て部品44の面74と反対 側であり、その面は本発明における如き常磁性粒子中で生成した粒子/細胞結合 体を保持する固定位置である。
棒磁石64、種部品66、および支持W74を一般的方法で非−磁性セメントと 一緒に結合させることもでき、または適当なりランプもしくは保持片を使用する こともできる。ここで使用するのに適している磁石は、ケンタンキー州エリザベ スタウンのクスシブル・マグネティックス・カンパニーから得られる。磁石組み 立て部品44は、厚さが0.50インチである磁石64および厚さが0,25イ ンチである種部品66を含有している。これは、磁石の表面で7000−910 0ガウス(平均8300ガウス)の局在最大値を有する磁場を発生させ、そして それは磁石表面から1cmの距離のところで1100−1700ガウス(平均1 400ガウス)に減少する。この磁石組み立て部品は磁石表面に比較的強い磁気 保持力および比較的良好な磁気[範囲逸脱、l (reach out)力の両 者を与えて、磁石表面からある距離(1″まで)では球を破壊させる。
磁石組み立て部品46は、厚さが、25インチである磁石64および厚さが00 1インチである種部品66を含有している。これは、磁石の表面で7300−8 000ガウスの局在最大値を有する磁場を発生させ、そしてそれは磁石表面から Icmの距離のところで80−500ガウスに減少する。磁石組み立て部品44 と比べて、磁石組み立て部品46は磁石表面で比較的強い磁気保持力を有してい るが比較的少ない磁気「範囲逸脱」力を有しており、従って比較的狭い磁場を有 している。第二の柔軟な容B24は磁石46の特定磁場の利点を与えるように設 計されている。第一容器18は細胞分離用に磁石組み立て部品44の上に静止す るように示されている。
従って、無菌的な簡素化された方法で4縮細胞の特定集合部分を単離するための システムが提供され、該細胞は希望する目的用に指示されているように分離でき る。
下記の実施例および本出願の他の開示は説明目的用にだけ供されており、そして 下記の請求の範囲に記載されている本出願の発明の範囲を限定しようとするもの ではない。
実施例1 この実施例は、全血から集められたT−−−ルバー/インチユーザーリンパ細胞 の分離における本発明の装置および方法の特定適用を示している。
籠゛′の11浩 約500m1O全血を標準的フェンワル・ソデューム・サイトレート・ダブル・ ブランド・パック(Fenwal Sodium C1trate DoubI e Blood Pack)中で集め、そして2個のパックに分けて各パックを 290m1とした。ヘスパン・ヘタスターチ(Hespan Hetastar ch)(,55m1)を各パ、りに加え、そしてパンクを前後運動で静かに傾け ることにより内容物を混合した。赤色細胞を自然に沈澱させ、そして分子状細胞 を含有している血漿層をフェンヮル(Fenwal)血漿抽出器および標準的移 動管セットを使用して標準的フェンフル600m1移動パックに移した。該移動 パンクを遠心分離して血漿から細胞を粒状化させ、そして血漿を血漿抽出器を使 用して別の移動パンクに移した。10%の牛胎児血清を含有している80m1の ハンクス・バランスド・ソルト・ソリューション(HBSS)を加えそして袋を 前後に静かに傾けることにより、細胞を再懸濁させた。細胞懸濁液の検定試料を 2%酢酸中で計数しそして細胞懸濁液に関する2、8XlO’単核細胞の合計細 胞収穫量を計算した。細胞の計数後に、別の100m1のHBSSを移動パック に加え、そして細胞懸i液を混合した。細胞懸濁液の1/2を第二の移動バック に移して、各袋中の100m1のHBSS中で合計で約1.4X10’この単核 細胞を与えた。
−人 か の1III′告 約1グラムの常磁性法(アミノ表面官能基を有するバンデンクス球)を食塩水溶 液で5回洗浄し、そして50m1のガラス試験管内の20m1食塩水中に再懸濁 させた。1.0mlの5PDPの20ミリモル溶液および無水エタノールからな る新たに製造されたN−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)プロピ オネート(SPDP)を試験管に加えた。管を4°Cにおいて30分間にわたり 端から端まで回転させて、チオール誘導体を製造した。次に球状製剤を燐酸塩緩 衝食塩水中で5回洗浄し、各洗浄後に球を磁石で集めた。最後に、球を20m1 の燐酸塩緩衝食塩水中に再懸濁させた。
ハッカ不ズミの抗−Leu3a抗体(CDd型抗体−2m1の燐酸塩緩衝食塩水 中の2mg)をO,1mlの無水エタノール中20mM5PDPに加えた。混合 物を500m1の燐酸塩緩衝食塩水に対して一夜透析させた。
生成した抗体溶液を50m1のガラス遠心分離管中で誘導化された球!!!濁液 に加えた。管を室温において端から端まで回転させて抗体を球に結合させた。次 に、球を燐酸塩緩衝食塩水で5回洗浄し、そして30m1の燐酸塩緩衝食塩水中 に再懸濁させた。
このようにして、生じた抗体はピリジルジチオ活性基を運びながら、球はそれら のジチオスレイトール処理のために結合されたスルフヒドリル活性基を運んでい る。従って、まとめると、抗体および球は縮合反応から生したジスルフィド結合 により化学的に一緒に結合され、2−チオールピリジンが副生物として分離され る。
入れ−CD に・1 〕の4 43300mの上記の如くして製造された抗体〜結合法(7X10q個の球)を 上記の如くして製造された細胞懸濁液の各袋に21ゲージ針付き20m1注射器 を用いて加えた。生成した懸濁液は5対1の球対細胞の比を有しており、そして それを静かに混合し、次にコール−バーマー回転器の上に4の設定値で30分間 にわたり4℃において置いた。球および細胞懸濁液を含有している袋1日(図1 )は、これも図1に示されている拡大室24中で連結している管22.26を通 して、600m1のフェンヮル移動バック32と連結されていた。袋18は管セ ットの充填管33を通して1,000m1の生理的食塩水溶液袋とも連結されて おり、容器18および空の移動パンク320間のセットの充填を可能にしていた 。
生成した相互関連している袋の充填後に、システムを特に図2に示されている如 く上部磁石台42中に設置し、袋28は区域44中に置かれており、そして容器 24は区域46中に置かれていた。適当な管状物22は通路47を通っている区 域4日中に貯蔵されており、一方、管26は通fm51中に設置されており、そ してローラーポンプ53を通って細くなっていた。各磁石44.46は細胞の連 続的冷却のために約4°Cに予備冷却されていた。上部台42を底部台52上に 設置させながら、ヒンジ付きカバー49.56を次に閉した(図4)。
結合されたCD4抗体を介しての球に対する適当な細胞の完全結合を可能にしそ して磁石44に隣接している袋1Bの内表面における生成した球−細胞結合体の 最大成熟を可能にするための約5分間が経過した後に、ローラーポンプ53を作 動させて毎分10m1の流体速廣で収集袋32中にポンプで加えた。袋18から 逃げた球−細胞結合体を袋24中の第二磁石46の影響下において磁石と隣接し ている室24の内表面上で破壊させ、一方、球とそのように結合されていない細 胞は流体と共に収集袋32に流出した。
流体の袋18および容器24を実質的に空にした後に、袋18中の球〜細胞結合 体を100m1の生理的食塩水中に再懸濁させながら、袋18および容器24を 各磁石上のそれらの位置から除去し、そしてそうしながら管26を通る流を閉し た。その後に、袋18および容器24を上部磁石台42上のそれらの位置に再配 置し、そして懸濁している食塩水溶液を袋18からローラーポンプ53により前 記の如く管26を通って収集袋32に、常磁性味と結合していない残りの細胞と 共に、除去された。
次に、管26を通る流を閉じた後に、袋18および容器24を再び磁石の影響下 から取り除いた。袋18および容器24中の球−細胞結合体を100m1の25 mMジチオスレイトール含有生理的食塩水中に再懸濁させて、細胞と球との間の 結合を破壊させた。袋18および容器24を回転器上に4”Cにおいて20分間 装いた。次に、袋18および容器24を1リツトルのフェンワルPL269組織 培養フラスコ(図1中では容器34として表示されている)と連結させた。この 後に、袋18および容器24を上部台42中に再配置し、ヒンジ付き圧縮板を閉 し、そして常磁性球粒子を磁石と隣接してトラップに保持しながら袋の流体内容 物を組織培養フラスコ34中に流し入れた。
そのようにして、CD4抗体の作用に対して陽性である遊離リンパ細胞が混合物 中の他の細胞から分離され、そして組織培養フラスコ34または希望により図1 に特に示されているような血液袋34中で単離された形で提供される。
袋24から下方にある分離セント中の残存細胞も比較的多量の生理的食塩水と共 にフラスコまたは袋34中に流し入れられる。
フラスコ34中の細胞を遠心分離により集めそして補充グルタミンを含有してい る100m1のRPM11640組織培養媒体中に再懸濁させ、そしてその後の 研究のために二酸化炭素培養器中に置くことができる。
実施例I 細胞が球粒子表面と接触している生物学的製剤により認識できるそれらの表面上 の腫瘍関連抗原を表示している時には、実施例1で開示されている方法と同様な 方法により、一般的に骨髄から下記の型の細胞二B−リンパ腫、神経芽細胞種、 胸部症、または白血病細胞:を除去することができる。従って、本発明は自生的 骨髄移植前の骨髄細胞の精製方法として使用することができる。
骨髄を一般的細胞分訓器により処理してそこから単核細胞製剤を抽出できる。
二の単核細胞製剤をハツカネズミから誘導されたモノクローン性抗体のパネルを 用いてI!瘍細胞に対して培養し、洗浄して過剰の抗体を除去し、そして次に実 施例1に記載されている如くして常磁性味と共に培養し、山羊の抗ハツカネズミ 抗体で被覆して、腫瘍細胞を球と選択的に結合させることができる。次に腫瘍細 胞を実施例1中の如くそこに開示されている型の磁気分離器を用いて除去する。
実施例1 本発明の使用の別技術として、対移植片宿主疾病を防止するための同種移植の前 に、T−リンパ細胞を実施例2に記されている単核細胞製剤から除去することが できる。これは、骨髄移植片が癌の治療用にまたは癌治療とは別の放射線露呈後 の骨髄の再構成用に供される場合に、使用できる。この場合には、骨髄からの単 核細胞製剤をハツカネズミのモノクローン性抗体(例えば、抗CD3)で処理し て、山羊の抗ハツカネズミ抗体被覆球による結合用のT−リンパ細胞に標識を付 ける。
実施例( 実施例2中の如くして骨髄からあらかじめ製造された単核細胞製剤を上記の方法 と同様な方法で処理して、常磁性味と結合されたハツカネズミのモノクローン性 抗体を使用して単核細胞製剤から多性能幹細胞を選択することができる。単離さ れた幹細胞は従って骨髄移植用に使用することができる。この方式を使用して、 対移植片宿主疾病を抑制しながら、実質的にIll瘍細胞を含まない自生的骨髄 移植物を提供するために使用できる。そのような単離された幹細胞を遺伝子治療 において使用することもでき、そこでは遺伝子を骨髄移植物としての移植前に幹 細胞中に挿入する。
犬施別五 適当なモノクローン性抗体を使用する実施例1の方法と実質的に同様な方法によ り、肝臓細胞またはインシュリン分泌膵臓ベータ細胞を単離しそしてその後に適 当な培養媒体中で培養して器官移植用に細胞を拡大さゼることかできる。
実施例1 適当なモノクローン性抗体を使用する実施例1の方法と実質的に同様な方法によ り、例えば破傷風トキソイド充填リンパ細胞の如き細胞毒性T−リンパ細胞の特 定集団を選択することができる。これらの細胞は実施例1の技術と同様な技術に より分離され、試験管内で増殖されそして自己免疫疾病(例えば無筋力症)に介 在する特定B−リンパ細胞に対する細胞毒性細胞を目標付けることができる。
この方法で、疾病に介在する細胞をその場で破壊することができる。
FIG、 1 補正書の翻訳文提出書(特許法第184条の7第1項)平成3年4月11日

Claims (39)

    【特許請求の範囲】
  1. 1.特定の細胞集団を不均質な細胞混合物から選択的に分離するためのシステム であり、 選択的細胞濃縮物を該濃縮物の物理的性質を基にして分離することにより該不均 質な細胞混合物から選択的細胞濃縮物を得るための手段、該細胞濃縮物からの一 部だけの細胞と結合可能な物質を連結させて有している粒子手段を有する容器、 該容器中で該細胞濃縮物を該粒子手段と密に接触させて、それにより該粒子手段 を用いて該細胞濃縮物を培養可能にさせ、それにより該細胞濃縮物からの特定細 胞集団を該粒子手段と選択的に結合させて、粒子/細胞結合体を生成するための 手段、および 該細胞濃縮物の残部から該粒子/細胞結合体を分離するための手段を含んでいる 、システム。
  2. 2.最初の細胞濃縮物流体容量が培養期間中に該容器内に残っている、請求項1 記載のシステム。
  3. 3.さらに、培養期間中に追加量の該細胞濃縮物を該容器に加えるための手段も 含んでいる、請求項1記載のシステム。
  4. 4.該粒子手段が常磁性物質を含んでおり、そして該粒子/細胞結合体を分離す るための手段が該細胞濃縮物の残部未結合部分を該位置から除去しながら該粒子 /細胞結合体を固定位置に保持させるための磁石手段を含んでいる、請求項1記 載のシステム。
  5. 5.該磁石手段が第一および第二の間隔か置かれている磁石部材を規定しており 、該第二磁石部材は第一磁石部材より狭い磁場を与えるがそれの表面では強い磁 気保持力を与える、請求項4記載のシステム。
  6. 6.該磁石手段が少なくとも1個の柔軟で折りたたみ可能な容器を該容器の少な くとも1個の内壁部分が該磁石手段の磁場内になるように運びそして配置するた めの手段と隣接して配置されており、該内壁部分は該固定位置として作用してい る、請求項4記載のシステム。
  7. 7.該折りたたみ可能な容器を平らに押さえながら該内壁部分を内部に0.02 −0.1インチの細胞流通路さを与える磁場内にいれて、該細胞濃縮物残部から の該粒子/細胞結合体の分離を促進するための平らに圧縮する手段も供されてい る、請求項6記載のシステム。
  8. 8.粒子手段を有する該容器が柔軟で折りたたみ可能な容器である、請求項4記 載のシステム。
  9. 9.粒子手段を有する該容器が血液細胞分離遠心分離器用の柔軟な複数室挿入手 段と無菌的に連結しており、それにより、間に殺菌性連結部を形成する必要なし に新たに集められた血液細胞の濃縮留分を該挿入手段から粒子手段を有する該容 器に無菌的に移すことができる、請求項4記載のシステム。
  10. 10.請求項4記載のシステム中で使用するための、該常磁性粒子手段を密封し て含有している柔軟で折りたたみ可能な第一容器であり、該柔軟で折りたたみ可 能な容器が該第一容器からの処理された細胞を受けるための別の柔軟で折りたた み可能な容器手段と無菌的に連結されており、該第一容器は血液細胞分離遠心分 離用の柔軟な手段とも無菌的に連結されており、それにより、間に殺菌性連結部 を形成する必要なしに集められた血液細胞の新たに濃縮された留分を挿入手段か ら該第一容器にそして該第一容器から別の容器手段に無菌的に移すことができる ような容器。
  11. 11.全分離中に該常磁性粒子手段の追加保持用の磁石手段との相互作用のため に、柔軟で折りたたみ可能な第二容器が該第一容器および該別の折りたたみ可能 な容器手段とそれらの間で無菌的に密封して連結されている、請求項4記載のシ ステム。
  12. 12.粒子手段と連結している該物質が抗体、抗原、蛋白質、グリコ蛋白質、多 糖類、脂肪多糖類、核酵、および脂質からなる群から選択される、請求項4記載 のシステム。
  13. 13.該細胞濃縮功用の波路が備えられており、それは入り口および出口を反対 側の端部に規定している拡大された柔軟な容器を含んでおり、該入り口および出 口の断面積が該容器の断面積の1/4以下である、請求項4記載のシステム。
  14. 14.該容器が六角形であり、該入り口および出口がそれの反対側の角に配置さ れている、請求項13記載のシステム。
  15. 15.特定細胞集団を不均質な細胞混合物から選択的に分離するためのシステム であり、 希望する細胞だけと結合できて粒子/細胞結合体を生成する物質と連結している 粒子手段を有する折りたたみ可能な第一容器、該柔軟で折りたたみ可能な容器を 含んでいる流路を規定する手段、該容器内で該細胞混合物を粒子手段と密に接触 させて、それにより該粒子手段を用いる該細胞混合物の培養を可能にし、それに より該細胞混合物からの特定細胞集団を選択的に該粒子手段と結合させて、該粒 子/細胞結合体を生成するための手段、および 該粒子/細胞結合体を固定位置に保持しながら該細胞混合物の残部未結合部分を 該流路に沿って動かして該位置から除くための順番に該流路に沿って配置されて いる第一および第二の間隔がおかれている磁石部材であり、該第一および第二の 磁石部材は少なくとも1個の柔軟で折りたたみ可能な容器を該容器の少なくとも 1個の内壁部分が該磁石手段の磁場内になるように運びそして配置するための手 段と隣接して配置されており、該内壁部分は該固定位置として作用しており、該 第二磁石部材は該第一磁石部材から下方に配置されており第一磁石部材より狭い 磁場を与えるがそれの表面ではそれより強い磁気保持力を与えるような該第一お よび第二の部品 を含んでいる、該システム。
  16. 16.柔軟で折りたたみ可能な第二容器が粒子手段を有する該第一容器と無菌的 に密に連結されており、該第一磁石部材が該柔軟な第一容器に対して配置されて おりそして該第二磁石部材が該柔軟で折りたたみ可能な第二容器に対して配置さ れている、請求項15記載のシステム。
  17. 17.第二磁石手段に対して配置されている柔軟な第二容器がそれの反対側の端 部に入り口を規定しており、該入り口および出口の断面積は該柔軟な第二容器の 断面積の1/4以下である、請求項16記載のシステム。
  18. 18.該第二容器が六角形であり、該入り口および出口がそれの反対側の角に配 置されている、請求項17記載のシステム。
  19. 19.該折りたたみ可能な容器を平らに押さえながら該内壁部分が内部に0.0 2−0.1インチの細胞流通路厚さを与える該磁場内にして、該細胞濃縮物残部 からの該粒子/細胞結合体の分離を促進するための平らに圧縮する手段も供され ている、請求項17記載のシステム。
  20. 20.粒子手段を有する該容器が血液細胞分離遠心分離器用の柔軟な複数室挿入 手段と無菌的に連結しており、それにより、間に殺菌性連結部を形成する必要な しに新たに集められた血液細胞の濃縮された留分を該挿入手段から粒子手段を有 する該容器に無菌的に移すことができる、請求項17記載のシステム。
  21. 21.別の折りたたみ可能な容器が粒子手段を有する該柔軟で折りたたみ可能な 第一容器手段と該流路に沿って連結されており、該柔軟で折りたたみ可能な第二 容器は粒子手段を有する該容器と該別の折りたたみ可能な容器とその間に無菌的 に密に連結されている、請求項20記載のシステム。
  22. 22.第一容器中で血液細胞遠心分離器を摸作して血液細胞を集め、該第一容器 を密封しそして該第一容器を遠心分離器から取り外し、該第一容器中に置かれて いる血液細胞を粒子手段と連結している希望する細胞の一部だけを結合させるこ とのできる物質を有する該第一容器中の常磁性粒子手段と混合し、該第一容器と 管および容器を含む細胞分離装置の入り口との連結を開き、該第一容器と連結さ れている該分離装置の第一容器と第二容器を磁気分離器手段中に設置し、該第一 容器および第二容器中の流を開始させ、ここで該第一および第二容器は該磁気分 離器手段の影響下にあって該粒子手段およびそれと結合している細胞を不動化さ せ、該第二容器および該第一貯蔵容器手段の間の流を閉じ、該第一および第二容 器を磁気分離手段から除去し、該第二容器および第二貯蔵容器手段の間の流れを 開き、そして該粒子手段と結合している細胞の該第二貯蔵容器手段中への流を起 こして、該結合された細胞をシステム中の残りの細胞から分離する段階からなる 、血液細胞の選択的分離方法。
  23. 23.第一容器中に置かれている血液細胞を粒子手段と連結している希望する細 胞の一部だけを結合させることのできる物質を有する該第一容器中に細胞の混合 物を入れ、該第一容器と管および容器を含む細胞分離装置の入り口との連結を開 き、該第一容器と連結されている該分離装置の第一容器と第二容器を第一および 第二の磁石を有する磁気分離器手段中に設置し、ここで該第一磁石は第一容器に 対して配置されておりそして該第二磁石は該第二容器に対して配置されており、 該第二磁石は第一磁石より狭い磁場を与えるがそれの表面において強い磁気保持 力を与え、該第一磁石は該第一容器の幅と実質的に等しい磁性化された範囲を有 しており、該第一容器および第二容器中の流を開始させ、ここで該第一および第 二容器は該磁気分離器手段の影響下にあって該粒子手段およびそれと結合してい る細胞を不動化させ、そして該第二容器から第一貯蔵容器への流を起こして該粒 子手段と結合されていない粒子を受ける段階からなる、細胞の混合物から細胞を 選択的に分離する方法。
  24. 24.該第二容器および該第一貯蔵容器手段の間の流を閉じ、該第一および第二 容器を磁気分離手段から除去し、該第二容器および第二貯蔵容器手段の間の流れ を開き、そして該粒子手段と結合している細胞の該第二貯蔵容器手段中への流を 起こして、該結合された細胞をシステム中の残りの細胞から分離する追加段階も 含んでいる、請求項23記載の方法。
  25. 25.該磁気分離器手段の影響下で少なくとも該第二容器中の細胞流路が0.0 2−0.1インチの厚さに保たれている、請求項23記載の方法。
  26. 26.該第二の容器がそれらの反対側の端部に該細胞流路用の入り口および出口 を規定しており、該入り口および出口は該第二容器の断面積の1/4以下の断面 積を有している、請求項23記載の方法。
  27. 27.該第二容器が六角形であり、該入り口および出口がそれの反対側の角に配 置されている、請求項26記載の方法。
  28. 28.該第二容器および該第一貯蔵容器手段の間の流を閉じ、該第一および第二 容器を磁気分離手段から除去し、該第二容器および第二貯蔵容器手段の間の流れ を開き、該第一および第二容器からの第二貯蔵容器手段中への流を起こしながら 該第一および第二容器を該磁気分離器手段の影響下において、それにより該粒子 手段が該細胞と共に粒子手段からの細胞の分離用の第二貯蔵容器手段中に流れる のを防止するという追加段階も含んでいる、請求項23記載の方法。
  29. 29.該常磁性粒子手段がそれらの表面上に、B−リンパ腫、神経芽細胞腫、胸 部癌、白血病、T−リンパ細胞、および幹細胞からなる群から選択された細胞に 対する特定の抗体を運ぶ、請求項23記載の方法。
  30. 30.常磁性粒子手段を有する第一容器中に置かれている細胞の混合物が骨髄か らあらかじめ分離された分子状細胞の製剤である、請求項29記載の方法。
  31. 31.該常磁性粒子手段を、比較的大きい細胞群からの分離用に、肝臓およびイ ンシュリン分泌膵臓ベータ細胞からなる群から選択された細胞に対する特定の抗 体でコーティングする、請求項23記載の方法。
  32. 32.該常磁性粒子手段がそれらの表面上に、細胞の混合物からの分離用に、細 胞毒性のT−リンパ細胞の特定集団に対する特定抗体を運ぶ、請求項23記載の 方法。
  33. 33.該第一磁気手段が該柔軟で折りたたみ可能な第一容器の幅と実質的に等し い範囲を有する磁場を有している、請求項16記載のシステム。
  34. 34.該第一磁気手段が約1/2インチ−約1インチの範囲を有する磁場を有し ている、請求項33記載のシステム。
  35. 35.該第一磁気手段が約1/2インチ−約3/4インチの範囲を有する磁場を 有している、請求項33記載のシステム。
  36. 36.該第一磁気手段が約1/2インチ−約1インチの範囲を有する磁場を有し ている、請求項23記載の方法。
  37. 37.該第一磁気手段が約1/2インチ−約1/3インチの範囲を有する磁場を 有している、請求項23記載の方法。
  38. 38.該第一磁気手段が約1/2インチ−約1インチの範囲を有する磁場を有し ている、請求項31記載の方法。
  39. 39.該第一磁気手段が約1/2インチ−約1/3インチの範囲を有する磁場を 有している、請求項31記載の方法。
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Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5372439A (en) * 1992-12-18 1994-12-13 Zebra Technologies Corporation Thermal transfer printer with controlled ribbon feed
JP2002515319A (ja) * 1998-05-17 2002-05-28 チェイム デヴィッドソン, 選択された粒子、特に生物細胞を磁気的に分離するための方法と装置
JP2009517067A (ja) * 2005-12-02 2009-04-30 バイオ−ノーブル オーワイ 生物学的成分の濃縮ユニット及び濃縮方法
JP2011505890A (ja) * 2007-12-07 2011-03-03 ミルテンイ バイオテック ゲーエムベーハー 試料処理システムおよび方法
JP2015503730A (ja) * 2011-12-21 2015-02-02 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニーBecton, Dickinson And Company 磁気標識サンプル成分の無菌分離のためのフローサイトメトリーシステム
JP2018191630A (ja) * 2017-05-15 2018-12-06 高雄醫學大學 細胞の分離純化装置
US10914671B2 (en) 2018-04-27 2021-02-09 Becton, Dickinson And Company Flow cytometers having enclosed droplet sorters with controlled aerosol content and methods of using the same
US11035776B2 (en) 2018-10-30 2021-06-15 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module with alignment window, systems and methods of use thereof
US11609177B2 (en) 2016-04-15 2023-03-21 Becton, Dickinson And Company Enclosed droplet sorter and methods of using the same

Families Citing this family (39)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0513219B1 (en) * 1990-01-31 1996-04-03 Baxter International Inc. Flexible bag assembly for magnetic separator
US5439586A (en) * 1993-09-15 1995-08-08 The Terry Fox Laboratory Of The British Columbia Cancer Agnecy Magnetic filter with ordered wire array
JPH0780041A (ja) * 1993-09-20 1995-03-28 Terumo Corp 細胞保存バッグシステム
EP0672458A3 (en) * 1994-03-04 1996-02-28 Cleveland Clinic Foundation Magnetic cytometry method and apparatus.
CA2161958C (en) * 1994-03-14 2010-02-23 Ahmad-Maher Moubayed Method and apparatus for semi-automated cell separation
GB9425138D0 (en) 1994-12-12 1995-02-08 Dynal As Isolation of nucleic acid
ATE340254T1 (de) * 1995-04-06 2006-10-15 Miltenyi Biotec Inc Verfahren zur freisetzung von magnetischen teilchen, die an zelloberflächen gebunden sind
US5998224A (en) * 1997-05-16 1999-12-07 Abbott Laboratories Magnetically assisted binding assays utilizing a magnetically responsive reagent
US6294342B1 (en) 1999-09-29 2001-09-25 Abbott Laboratories Magnetically assisted binding assays utilizing a magnetically responsive reagent
WO2001083002A2 (en) * 2000-05-03 2001-11-08 Eligix, Inc. Whole blood separator apparatus and method of use
GB0013658D0 (en) 2000-06-05 2000-07-26 Dynal Asa Nucleic acid isolation
WO2002010771A1 (en) * 2000-08-01 2002-02-07 Carepoint Diagnostics, Inc. Analysis of biological samples for platelet activation or coagulation activation markers using microparticules
US6984522B2 (en) 2000-08-03 2006-01-10 Regents Of The University Of Michigan Isolation and use of solid tumor stem cells
DE10127068A1 (de) * 2001-05-23 2002-11-28 Bio Medical Apherese Systeme G Vorrichtung und Verfahren zum Inkubieren und Wiederabtrennen von Magnetteilchen in und von flüssige biologische Dispersionen
EP1442115B9 (en) 2001-11-15 2009-12-16 Children's Medical Center Corporation Methods of isolation, expansion and differentiation of fetal stem cells from chorionic villus, amniotic fluid, and placenta and therapeutic uses thereof
JP2006511206A (ja) 2002-08-27 2006-04-06 ステムセルズ, インコーポレイテッド 富化された中枢神経系幹細胞集団および前駆体細胞集団、ならびにこれらの集団を同定し、単離し、そして富化する方法
EP1494028A1 (en) * 2003-07-03 2005-01-05 Labsoft Diagnostics AG Immunomagnetic separation of specific target cells
RU2252037C1 (ru) * 2003-10-14 2005-05-20 Германов Евгений Павлович Система коррекции биологической жидкости
US7985340B2 (en) 2005-12-02 2011-07-26 Invitrogen Dynal As Magnetic separator
GB2445073A (en) * 2006-12-18 2008-06-25 Ge Healthcare Bio Sciences Ab Cell separation device
WO2008103265A2 (en) 2007-02-16 2008-08-28 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Methods of using ledgf/p75
AU2008355123B2 (en) 2008-04-21 2014-12-04 Viacyte, Inc. Methods for purifying endoderm and pancreatic endoderm cells derived from human embryonic stem cells
US8338170B2 (en) 2008-04-21 2012-12-25 Viacyte, Inc. Methods for purifying endoderm and pancreatic endoderm cells derived from human embryonic stem cells
CN105349517B (zh) 2008-11-14 2021-05-04 维赛特公司 源于人多能干细胞的胰腺细胞的包封
WO2010075500A1 (en) 2008-12-23 2010-07-01 Stemcells California, Inc Target populations of oligodendrocyte precursor cells and methods of making and using same
EP2597153B1 (en) 2011-11-25 2016-10-05 Miltenyi Biotec GmbH Cell separation method
DE102014106603A1 (de) * 2014-05-12 2015-11-12 Verein zur Förderung von Innovationen durch Forschung, Entwicklung und Technologietransfer e.V. (Verein INNOVENT e.V.) Verfahren und Vorrichtung zur Abreicherung von zirkulierenden Tumorzellen aus einer Zellsuspension
AU2015259295A1 (en) 2014-05-15 2017-01-12 Kellbenx Incorporated Preparation of fetal nucleated red blood cells (NRBCs) for diagnostic testing
EP3662941B1 (en) * 2015-02-20 2023-06-28 Terumo BCT, Inc. Composite liquid bag system holder
US11268056B2 (en) * 2015-12-29 2022-03-08 Life Technologies Corporation Flexible bioprocessing container with partial dividing partition
CN109196357A (zh) * 2016-03-07 2019-01-11 日立化学高级疗法解决方案有限责任公司 用于标记和选择活细胞的封闭系统
JP2020512179A (ja) 2016-12-02 2020-04-23 テルモ ビーシーティー、インコーポレーテッド 複合流体の分離
EP3427052A4 (en) * 2017-03-27 2019-12-04 Hitachi Chemical Advanced Therapeutics Solutions, LLC CLOSED SYSTEM FOR MARKING AND SELECTING LIVING CELLS
US20210147807A1 (en) 2017-06-14 2021-05-20 Helmholtz Zentrum Munchen - Deutsches Forschungszentrum Fur Gesundheit Und Umwelt (Gmbh) Methods for purifying endoderm and pancreatic endoderm cells derived from human embryonic stem cells
US11275075B2 (en) 2018-04-27 2022-03-15 Becton, Dickinson And Company Collection systems for flow cytometrically sorted samples and methods of using the same
CN112135789B (zh) 2018-05-08 2023-09-08 生物磁性解决方案有限责任公司 从柔性一次性袋中分离细胞的刚性腔室
WO2020223596A1 (en) 2019-05-02 2020-11-05 Kellbenx Incorporated Filtration-based methods for preparing fetal nucleated red blood cells (nrbcs) for diagnostic testing
WO2021092141A1 (en) * 2019-11-05 2021-05-14 Biomagnetic Solutions Llc An improved large scale immunomagnetic separation device
US20210387176A1 (en) * 2020-06-16 2021-12-16 Sani-Tech West, Inc. Closed fluid receiving and sampling container

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3200988A1 (de) * 1982-01-14 1983-07-28 Thomas A. Dr. 6900 Heidelberg Reed Verfahren und vorrichtung zur abtrennung von organischen stoffen aus einer suspension oder loesung
US4554088A (en) * 1983-05-12 1985-11-19 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
DE3444939A1 (de) * 1984-12-08 1986-06-12 Bayer Ag, 5090 Leverkusen Magnetische microspheres
US4710472A (en) * 1985-09-25 1987-12-01 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Magnetic separation device
WO1987006844A1 (en) * 1986-05-16 1987-11-19 Omega Medicinteknik Ab Method and apparatus for plasmapheresis
EP0398880A4 (en) * 1988-01-04 1990-12-27 E.I. Du Pont De Nemours And Company Multiple stage affinity process for isolation of specific cells from a cell mixture

Cited By (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5372439A (en) * 1992-12-18 1994-12-13 Zebra Technologies Corporation Thermal transfer printer with controlled ribbon feed
JP2002515319A (ja) * 1998-05-17 2002-05-28 チェイム デヴィッドソン, 選択された粒子、特に生物細胞を磁気的に分離するための方法と装置
JP4713735B2 (ja) * 1998-05-17 2011-06-29 バイオセプ リミテッド 選択された粒子、特に生物細胞を磁気的に分離するための方法と装置
JP2009517067A (ja) * 2005-12-02 2009-04-30 バイオ−ノーブル オーワイ 生物学的成分の濃縮ユニット及び濃縮方法
JP2011505890A (ja) * 2007-12-07 2011-03-03 ミルテンイ バイオテック ゲーエムベーハー 試料処理システムおよび方法
US9551643B2 (en) 2011-12-21 2017-01-24 Becton, Dickinson And Company Flow cytometric systems for sterile separation of magnetically labeled sample components
JP2015503730A (ja) * 2011-12-21 2015-02-02 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニーBecton, Dickinson And Company 磁気標識サンプル成分の無菌分離のためのフローサイトメトリーシステム
US11609177B2 (en) 2016-04-15 2023-03-21 Becton, Dickinson And Company Enclosed droplet sorter and methods of using the same
JP2018191630A (ja) * 2017-05-15 2018-12-06 高雄醫學大學 細胞の分離純化装置
US10914671B2 (en) 2018-04-27 2021-02-09 Becton, Dickinson And Company Flow cytometers having enclosed droplet sorters with controlled aerosol content and methods of using the same
US11441996B2 (en) 2018-04-27 2022-09-13 Becton, Dickinson And Company Flow cytometers having enclosed droplet sorters with controlled aerosol content and methods of using the same
US11035776B2 (en) 2018-10-30 2021-06-15 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module with alignment window, systems and methods of use thereof
US11530977B2 (en) 2018-10-30 2022-12-20 Becton, Dickinson And Company Particle sorting module with alignment window, systems and methods of use thereof

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CA1335181C (en) 1995-04-11
EP0438520B1 (en) 1994-08-24

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