JPH044899A - マイコプラズマの検出方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、マイコプラズマの検出方法に関し、更に詳細
には該マイコプラズマの特異的なＤＮＡ領域の検出に関
する。本発明はまた、このような検出のための検出キッ
トに関する。

〔従来の技術〕

１９世紀末にウシの呼吸器病の病原体として発見された
マイコプラズマは広く動物界、植物界で生息し、その一
部は宿主の疾病の原因となっている。例えば、ヒトの原
発性異型肺炎、ニワトリの呼吸器マイコプラズマ症、ブ
タのマイコプラズマ肺炎などがあり、その診断、治療、
予防などの研究が活発に行われている。また、組織培養
中のマイクプラズマ汚染も発見され、汚染マイコプラズ
マの検出方法並びに除去方法などの研究も進行している
。更に、実験動物は医学・生物学の研究の上で果す重要
性が近年高まり、その品質についても高度なものが要求
されてきており、マウス、ラット等の実験動物のコロニ
ーを維持、管理する上でもマイクプラズマ汚染の診断と
予防は重要な項目となってきている。

マイコプラズマの検出方法としては、分離培養方法、Ｄ
ＮＡ蛍光染色方法、生化学的方法、免疫学的方法などが
開発されている。

〔発明が解決しようとする課題〕

上記各方法は、マイコプラズマの検出方法として、通常
利用されてはいるが、その操作は煩雑であり、簡便な方
法ではない。一方、近年種々の遺伝子診断方法が開発さ
れてきた。マイコプラズマの特徴はその遺伝子により規
定されている。このマイコプラズマに特徴的な遺伝子配
列を高感度かつ迅速に検出できればマイコプラズマの存
在を簡便に、確定することができ、家畜、実験動物、組
織培養等の管理が容易となる。

すなわち、本発明の目的はマイコプラズマ−般に共通な
遺伝子配列を明らかにし、その検出方法及びそれに用い
るキットを提供することにある。

〔課題を解決するための手段〕

本発明を概説すれば、本発明の第１の発明は、マイコプ
ラズマの検出方法に関し、マイコプラズマのｒＲＮＡを
コードしているＤＮＡ配列、又はその一部のマイコプラ
ズマに特異的なＤＮＡ配列を検出することを特徴とし、
また第２の発明は、上記第１の発明の方法を用いて検出
を行うだめのマイコプラズマ検出キットに関し、マイコ
プラズマの特異なＤＮＡ領域を増幅させるための特定の
ブライマーを含有していることを特徴とする。

マイコプラズマのｒ　ＲＮＡをコードするＤＮＡは、１
６ＳｒＲＮＡ−スペーサー領域−２３３ｒＲＮＡ−スペ
サー領域−５３ｒ　ＲＮＡの各ＤＮＡ配列で構成されて
いる。本発明者らは前記課題を解決するために１１種の
マイコプラズマのｒ　ＲＮＡをコードしているＤＮＡ配
列の一部、すなわち１６ＳｒＲＮΔ−スペーサー領域−
２３３ｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ配列の一部を明
らかにし、次にマイコプラズマ一般に共通なＤＮＡ配列
を見出した。

次に、遺伝子検出方法として現在最も高感度で簡便なＰ
　ＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ　Ｃｈａｉｎ　Ｒｅａｃ
ｔｉｏｎ）法〔サイキ（３ａｉｋｉ）ら、サイエンス（
Ｓｃｉｅｎｃｅ）、第２３０巻、第１３５０〜１３５４
頁、（１９８５）］を行うために、マイコプラズマに共
通なＤＮＡ配列の特定領域ＤＮＡをＰＣＲ法で増幅する
ためのオリゴヌクレオチドブライマーを合成した。

また増幅されたマイコプラズマＤＮＡを検出するための
プローブも合成した。次に各マイコプラズマＤＮＡを鋳
型としてＰＣＲ法を行い、すべてのマイコプラズマＤＮ
Ａの特定領域が効率よく増幅、検出されることを見出し
た。

以下順を追って本発明を具体的に説明する。

マイコプラズマの検出に用いられるｒＲＮＡをコードす
るＤＮＡ配列としては、マイコプラズマに共通な配列で
あれば良いが、例えば１６ＳｒＲＮＡ−スペーサー領域
−２３ＳｒＲＮＡをコードするＤＮＡ配列より共通配列
を見出せば良い。マイコプラズマの１６３ｒＲＮＡ−ス
ペーサー領域−２３ＳｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ
配列は次のように決定される。

例えば、培養細胞汚染マイコプラズマの中で高い割合を
占めるマイコプラズマ　ファーメンタンス（Ｍｙｃｏｐ
ｌａｓｍａ　ｆｅｒｍｅｎｔａｎｓ）　Ｐ　Ｇ　１８株
、マイコプラズマ　ハイオリニス（Ｍ、　ｈｙｏｒｈｉ
ｎｉｓ）ＢＴＳＴ株、マイコプラズマ　オーラレ（Ｍ、
ｏｒａ−１ｅ）　Ｃ８１９２９９株、マイコプラズマ、
ホミニス（Ｍ、ｈｏｍｉｎｉｓ）　Ｐ　Ｇ　２１株、マ
イコプラズマ　サリバリウム（Ｍ、　ｓａｌｉｖａｌｉ
ｕｍ）　Ｐ　０２０株、マイコプラズマ　アルギニニ（
Ｍ、ａｒｇｉｎｉｎｉ）０２３０株、ウレアプラズマ　
ウレアリテイカム（Ｕｒｅａｐｌａｓｍａｕｒｅａｌｙ
ｔｉｃｕｍ）Ｔ　９６０株、マウス、ラットの病原性マ
イコプラズマである、マイコプラズマプＪｌ／　モニス
（Ｍ、　ｐｕ　１ｍｏｎ　ｉｓ）　ｍ　５３株、マイコ
プラズマアルスリティディス（Ｍ、ａｒｔｈｒｉｔｉｄ
ｉｓ）　ＰＯ２株、マイコプラズマ　ニューロリテイカ
ム（Ｍ、ｎｅｕｒｏｌｙｔｉｃｕｍ）　Ｐ　Ｇ　２８株
、ブタの病原性マイコプラズマである、マイコプラズマ
　ノ１イオーーｓ−モ＝工（Ｍ、ｈｙｏｐｎｅｕｍｏｎ
ｉａｅ）　Ｖ　Ｐ　Ｐ　１１株、ヤギの病原性マイコプ
ラズマである、マイコプラズマ　カプリコラム（Ｍ、ｃ
ａｐｒｉｃｏｌｕｍ）　ＣＡＬＩＦ。

Ｋ１０株をそれぞれ培養し、次にＤＮＡを調製する。一
方、マイコプラズマ　カブリコラムの１６ＳｒＲＮＡ−
スペーサー領域−２３Ｓ　ｒ　ＲＮＡをコードするＤＮ
Ａ配列〔モレキュラー　アンド　ジェネラル　ジェネテ
ィックス（Ｍｏ　１ｅｃｕ　ｔａｒａｎｄ　Ｇｅｎｅｒ
ａｌ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）第１９６巻、第３１７〜３２
２頁（１９８４））］の本明細書の添付図面の第１図に
示すＤＮＡ配列より、この領域及び他のマイコプラズマ
ＤＮＡもＰＣＲ法で増幅できる一対のブライマ一対、例
えば下記表１のブライマ一対を選定する。

なお、第１図は、マイコプラズマ　カブリコラムの１９
２２ｂｐの塩基配列を示す図である。

表　　１ ５’　ＧＴＡＡＴＣＧＣＧＡＡＴＣＡＧＣＴＡＴＧ　３
’　　　ブライマー１−１このブライマ一対はＤＮＡ合
成機により合成でき、ＨＰＬＣにて精製できる。このブ
ライマ一対を用い、マイコプラズマ　カブリコラム以外
の上記１１種のＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ反応を行い、
ＤＮＡ配列決定用のＤＮＡの増幅を行う。

ＰＣＲ法についてはタック−ポリメラーゼ（Ｔａｑ−ｐ
ｏｌｙｍｅｒａｓｅ）を含む遺伝子増幅キット及び自動
遺伝子増幅装置が宝酒造社から市販されており、これと
前述のブライマ一対を用い、マイコプラズマＤＮＡの増
幅反応を行う。

ＰＣＲ法としては、酵素として、例えば耐熱性タック−
ポリメラーゼを用い、ＤＮＡの変性（９５℃）の工程、
ブライマーＤＮＡのアニリング（３７℃）の工程、ＤＮ
Ａ相補鎖の酵素的合成（７２℃）の工程より成る温度サ
イクルを５０回繰返し、目的遺伝子を増幅する。この場
合アニーリング温度、温度サイクル回数は、鋳型ＤＮＡ
とブライマーＤＮＡのＴｍ鋳型、ブライマー間の相同性
を考慮して適宜選定される。

次に増幅されたＤＮＡの塩基配列を決定する。

ＰＣＲ法によって増幅されたＤＮＡの塩基配列決定は、
−旦ＤＮＡをＭ１３又はｐＵＣ等のファージ又はプラス
ミドベクターにクローニングする方法、又はこのクロー
ニングのステップを省略し、直接ＰＣＲ増幅ＤＮＡを用
いる方法〔ダイレクト　シーフェンス（Ｄｉｒｅｃｔ　
５ｅｑｕｅｎｃｅ）法〕で決定することができる。タッ
ク−ポリメラーゼを用いたイン　ビトｏ　（ｉｎ　ｖｉ
ｔｒｏ）Ｄ　Ｎ　Ａ合成の際に起こりうるミスインコー
ポレーションに起因するＤＮＡ配列の読み間違いを防ぐ
ためにも、また時間、費用を節約するためにも、ダイレ
クト　シーエンス法が有利である。

ダイレクト　シーフェンス法において、従来はＰＣＲ増
幅の際に２つのブライマー比を１＝１００程度にしてお
いて、片側のＤＮＡ鎖を、もう一方のＤＮＡ鎮より過剰
に生じさせ〔非対称Ｐ　ＣＲ（Ａｓｙｍｍｅｔｒｉｃ　
Ｐ　ＣＲ）　］　、得られた一重鎖ＤＮへを鋳型に用い
て行うのが主流であった。しかし、この方法では、用い
るブライマーによってプライミング効率が大きく異なる
ため、−本領Ｄ　Ｎ　Ａをシーフェンス反応用に十分量
得るために、あらかじめ実験を行ってブライマーの濃度
比を決めておく必要があっな。今回のように多くのサン
プルの塩基配列を決める必要がある場合は、これは実際
的ではない。本発明者らは、−本領ＤＮＡを生じさせな
いで、二本鎖ＤＮＡをそのまま用いて塩基配列を決定す
る方法を検討した。その結果、塩基配列決定用ブライマ
ーを鎮状の鋳型ＤＮＡにアニールさせる場合において、
鋳型ＤＮＡを熱変性させた後、従来専ら用いられてきた
ように徐冷するのではなく急冷することによってブライ
マーと鋳型との会合が、鋳型同士の会合より、より優先
して起こることを見出し、この急冷方法を適用すること
により、二本鎖で鎮状のＰＣＲ増幅ＤＮＡを鋳型として
用いた場合でも容易にジデオキシ法によりマイコプラズ
マの塩基配列を決定することができた。また、この方法
を用いる場合、ラジオアイソトープ等で末端をａｍした
ブライマーを用いれば、読み取り可能なシーフェンスラ
ダーを得るために必要な鋳型ＤＮＡの精製法としては、
ＰＥＧを用いた分別沈殿法でＰＣＲ増幅産物からブライ
マーを除くという簡便な操作で十分である。

その各マイコプラズマの１６ＳｒＲＮＡ−スペーサー領
域−２３３ｒＲＮＡをコードするＤＮＡ配列は、第２図
〜第１５図に示すとおりである。すなわち、第２図はマ
イコプラズマ　ハイオリニス（４８０ｂｐ）の、第３図
はマイコプラズマ　オーラμ（４６０ｂｐ）の、第４図
はマイコプラズマ　サリバリウム（４３８ｂｐ）の、第
５図はマイコプラズマ　アルギニニ（４００ｂｐ）の、
第６図はマイコプラズマ　ブルモニス（５１３ｂｐ）の
、第７図はマイコプラズマ　ニューロリティカム（５３
９ｂｐ）の、第８図はマイコプラズマ　アルスリティデ
ィス（４４４ｂｐ）の、第９図はマイコプラズマ　バイ
オニューモニエ（７３１ｂｐ）の、第１０図及び第１１
図はマイコプラズマ　ファーメンタンス（５２２ｂｐ）
の、第１２図及び第１３図はマイコプラズマホミニス（
それぞれ４０６　ｂｐ、及び４０５　ｂｐ）の、第１４
図及び第１５図はウレアプラズマウレアリティカム（そ
れぞれ５１７　ｂｐ、及び５１６　ｂｐ）のそれぞれの
ＤＮＡ配列を示している。

第１図〜第１５図のマイコプラズマＤＮＡ配列の相同性
を検討し、これらのマイコプラズマに特有な共通配列を
選定し、検出すればマイコプラズマ一般が検出できる。

これらの配列の検出方法としては、遺伝子工学的検出方
法を用いれば良いが、前述のＰＣＲ法が現在量も高感度
な検出方法である。ＰＣＲ法であらゆるマイコプラズマ
ＤＮＡを増幅するためのブライマーとしては、領域内で
マイコプラズマすべてに関してアニーリングできるブラ
イマーＤＮＡ対であれば良いし、そのようなブライマ一
対を複数用意して混合して使用してもよい。

ブライマ一対としては、例えば表２のブライマ一対を、
ＤＮＡ合成機で合成し、ＨＰＬＣで精製できる。

５’　ＡＣＡＣＣ八ＴへへへＡＧＣＴＧＧＴＡＡＴ　３
’　　　ブライマー２−１５”　ＧＣへへＣＣＡＣＣへ
へへＡＡＣＴＣＴ　３’　　　　ブライマー２−２５’
　ＧＴＴＣＴＴＴＧＡＡＡＡ［ｌ’ＴＧＡＡＴ　３’　
　　　ブライマー３−１ＰＣＲ法としては使用ブライマ
一対を選択し、次いで例えばアニーリング温度５５℃、
サイクル回数３０回の条件でＰＣＲ反応を行えば良い。

増幅後のマイコプラズマＤＮＡの検出は、例えばアガロ
ースゲル電気泳動、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、
スポット法、及びサインプロット法を用いて行うことが
できる。スポット法、サインプロット法の際は増幅領域
内でプローブＤＮＡを選択すれば良い。その−例として
は、表３のプローブ１を、ブライマー２−１、ブライマ
ー２−２を用いた場合のＰＣＲ増幅ＤＮＡの検出用プロ
ーブとして用いても良い（表３）。

表　　３ ５　’　ＧＴＴ（’ＴＴＴＧＡＡＡＡＣＴＧＡＡＴ　３
’　　プローブ１プローブＤＮＡは前記ブライマーＤＮ
Ａと同様の方法で合成、精製することができる。プロー
ブＤＮＡは、標識化することにより、高感度な検出が可
能となる。

標識化の方法は放射性同位元素標識法に限らず、酵素標
識、蛍光標識、ビオチン、アビジン系標識、ケミプロー
ブ標識法等公知の方法なら何でもよい。

実際選定されたブライマーを用い、各マイコプラズマＤ
ＮＡの特定領域をＰＣＲ反応で増幅することができ、電
気泳動法、サザンハイプリダイゼーション法等により高
感度に検出することができる。

一方、個々の各マイコプラズマＤＮＡを特異的に増幅す
るためには、ブライマー領域内で各マイコプラズマに特
異的なＤＮＡ配列となるように、少なくとも一方のブラ
イマーを選定すれば良い。その−例として、マイコプラ
ズマ　バイオニューモニエだけを特異的に増幅するプラ
イマ一対として、表４に示すようなものを選定できる。

５’　ＡＣＡＣＣＡＴＧＧＧＡＧＣＴＧＧＴＡＡＴ　３
’　　　プライマー４−１このようにマイコプラズマ一
般に共通なＤＮＡ配列、及び各マイコプラズマに特異的
なＤＮＡ配列が明らかになることにより、試料中のマイ
コプラズマの検出、汚染マイコプラズマの同定、病原性
マイコプラズマの検出等を高感度に行うことができる。

なお、表１に示したマイコプラズマ　カプリコラムのＤ
ＮＡ配列より選択したブライマ一対は、他の１１種のマ
イコプラズマＤＮＡをＰＣＲ法で増幅することができる
が、他のマイコプラズマのＤＮＡ配列と、配列が完全に
一致しておらず、ＰＣＲ反応において、３７℃での了ニ
ーリングが必要で、反応サイクルも５０回行うことによ
り増幅できる。このため、他の細菌のＤＮＡ例えば大腸
菌に一１２株ＤＮＡや、枯草菌ＤＮＡをも増幅した。

一方、表２に示すブライマ一対は、マイコプラズマに特
有で、ＤＮＡ配列も一致し、ＰＣＲ反応において、５５
℃での了ニーリング、反応サイクル３０回でマイコプラ
ズマＤＮＡを特異的に増幅し、上記細菌ＤＮＡの増幅は
認められなかった。

ＰＣＲ法の場合、マイコプラズマ感染細胞１個よりの検
出が可能であり、マイコプラズマの早期検出が可能とな
り、汚染細胞、汚染動物等の管理が容易となる。

また、本発明に従って、マイコプラズマ特定ＤＮＡ領域
を増幅させるためのブライマ一対をそろえてキットして
おくことにより、マイコプラズマの検出を簡便に行うこ
とができる。なお、キットに用いる試薬は溶液状でも良
いし、凍結乾燥物でもよい。

以上ＰＣＲ法を用いたマイクプラズマの高感度検出法に
ついて詳細に説明してきたが、本発明はＰＣＲ法に限定
されるものではなく、特定のＤＮＡ及びその相補鎖を高
感度に検出する方法はすべて本発明に含まれるものであ
り、例えｉｆ　Ｑβ−レプリケース　アンブリフィケー
ション　システム〔バイオ／テクノロジー（Ｂｉｏ／ｌ
ｅｃｈｎｏｌｏｇｙ）　、第６巻、第１１９７頁（１９
８８年）〕による方法が挙げられる。

〔実施例〕

以下本発明を実施例をもって詳細に説明するが、本発明
はこれら実施例によって限定されるものではない。

実施例１ マイコプラズマの１６ＳｒＲＮＡ−スペーサー領域−２
３３ｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ領域の塩基配列決
定 （１）　　マイコプラズマＤＮＡの調製培養細胞に高頻
度で汚染するマイコプラズマとして、マイコプラズマ　
ファーメンタンスＰＧ１８株、マイコプラズマ　ハイオ
リニスＢＴＳ７株、マイコプラズマ　オーテレＣ８１９
２９９株、マイコプラズマ　ホミニスＰＧ２１株、マイ
コプラズマ　サリバリウムＰＧ２０株、マイコプラズマ
　アルギニニ０２３０株、ウレアプラズマ　ウレ了すテ
ィカムＴ９６０株、マウス病原性マイコプラズマとして
、マイコプラズマ　ブルモニスｍ５３株、マイコプラズ
マ　アルスリティディスＰＧ６株、マイコプラズマ　ニ
ューロリティカムＰＧ２８株、ブタ病原性マイコプラズ
マとして、マイコプラズマ　バイオニューモニエＶＰＰ
ＩＩ株、ヤギ病原性マイクプラズマとして、マイコプラ
ズマ　カブリコラムＣＡＬＩＦ。

Ｋ１０株（いずれも東大医学部附属動物実験施設より分
与）を公知の改良したニドワード（Ｂｄｗａｒｄ）培地
３１を用いて、３７℃で培養し、１００００ｇ　。

１時間遠心して培地を除いた。ＴＥ緩衝液〔１０ｍＭ）
　リス（Ｔｒｉｓ）−ＨＣＩ、ｐＨ７，５、１ｍＭ　　
ＢＤＴＡ　　〕　で菌体を洗浄後、ラジン（Ｒａｚｉｎ
）らの方法〔インターナショナル　ジャーナル　才ブ　
システマチック　バクテリオロジ−（Ｉ　ｎｔ、　Ｊ、
５ｙｓｔ、　Ｂａｃｔｅｒ　１−０１、）、第３３巻、
第２０１〜２０６頁（１９８３）　）で各マイコプラズ
マＤＮＡを調製した。

（２）個々のマイコプラズマの１６ＳｒＲＮＡ−スペー
サー領域−２３ＳｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ領域
の塩基配列決定 マイクプラズマ　カブリコラムの既知の１６ＳｒＲＮＡ
及び２３ＳｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ配列より当
該領域をＰＣＲ法で増幅するための一対のオリゴヌクレ
オチド　表１のブライマー１−１及びブライマー１−２
を選定し、アプライドバイオシステムズ社のＤＮＡ合成
機を用いて合成し、脱保護の後イオン交換ＨＰＬＣ（Ｔ
　Ｓ　Ｋゲル、ＤＢＡＢ−２Ｓｉｌｌカラム）で精製し
、セブーパク（ＳＢＰ−Ｐ＾に）Ｃ，、（ウォーターズ
社）で脱塩し、各ＤＮＡを約５０μｇ得た。

実施例１−（１）で調製したマイコプラズマのＤＮＡ５
０１ｇをそれぞれ０．５　ｒｎＩ！用チューブに取り、
１０μｌのＩＯＸ増幅用緩衝液、１６μｌの１．２５ｍ
Ｍ　　ｄＮＴＰ混合液（ｄＡＴＰ、　ｄＧＴＰ、　ｄＣ
ＴＰ。

ｄＴＴＰ）　　　１μｌの２０ｐＭブライマー１−１．
１μ１０２０ｐＭブライマー１−２．０．５μｌの５ユ
ニット／μｌタック−ポリメラーゼを加え、更に滅菌水
を加えて１００μβの溶液にした。

この反応液は上層に１００μｍのミネラルオイル（シグ
マ社）を加えた後、自動遺伝子増幅装置サーマル−サイ
クラ−（Ｔｈｅｒｍａｌ−Ｃｙｃｌｅｒ）（宝酒造社販
売）により増幅反応を行った。反応条件は、９４℃、３
０秒間の変性→３７℃、２分間のブライマーの了ニーリ
ング→７２℃、２分間の合成反応のサイクルを５０サイ
クル行った。

反応後、上層のミネラルオイルを除去した後、反応液の
２μｌを取り、１％アガロース（全酒造社製）ゲル電気
泳動を行い、エチジウムブロマイドでＤＮＡを染色し、
ＤＮＡの増幅を確翳忍した。

その結果、ウレアプラズマ　ウレアリティカムでは約５
５０ｂｐと１５０ｂｐのバンドが検出され、他のマイコ
プラズマでは約４５０ｂｐから７００ｂｐの単一なバン
ドが検出された。

次に反応液９８μｌを１．５ｍｌ容の別のエッペンドル
フチューブに移しＴＥ（１０ｍＭ）リスＨＣＩ、　１　
ｍＭ　ＢＤＴ＾、ｐＨ８，０）緩衝液で飽和したフェノ
ールとクロロホルムの等量混合液で抽出した後、上層を
別のエッペンドルフチューブに取り、１０μｌの３モル
酢酸ナトリウム溶液、２５０μｌのエタノールを加え、
かくはんして、−８０℃に１５分間放置後、１６０００
ｒｐｍで１０分間遠心して上清を除去しＤＮＡ沈殿を回
収した。

次いで８０％エタノール２００μｌを加え、１６０００
ｒｐｍで３分間遠心後、上清を除去した後真空乾燥した
（エタノール沈殿）。単一バンドが検出された１１種の
マイコプラズマＤＮＡに関しては１００μｌのＴＥ緩衝
液に溶解し２０％ポリエチレングリコール、２．５モル
塩化ナトリウム溶液６０μｍを加えてかくはんして０℃
に１時間放置後、１６０００ｒｐｍで１０分間遠心して
上清を除去した。得られたＤＮＡ沈殿を８０％エタノー
ルで洗浄し、真空乾燥した後１００μｌの水に溶かした
。２種類のバンドが得られた。

ウレアプラズマ　ウレアリティカムに関しては、エタノ
ール沈殿したＤＮＡを１０μ矛のＴＥ緩衝液に溶解し１
％低融点アガロース〔ジ−プラーク　アガロース（Ｓｅ
ａ　Ｐｌａｑｕｅ　Ａｇａｒｏｓｅ）、宝酒造〕ゲルで
電気泳動後、約５５０ｂｐの大きさのバンドを切出し、
ジーン　クリーン（ＧＢＮＢＣＬＢＡＮ）　ｎキット〔
フナコシ薬品■〕を用いてＤＮＡを１００μｌの水に抽
出した。フェノールとクロロホルムの等量混合液で処理
した後エタノール沈殿を行い、２０μｌの水に溶解した
。

このようにして得られたＤＮＡを鋳型として次のように
直接ジデオキシ法によるＤＮＡ配列決定を行った。ＰＣ
ＲによるＤＮＡ増幅に用いたブライマー１−１、及びブ
ライマー１−２をメガラベル（ＭＢＧＡＬＡＢＢＬ）キ
ット（全酒造）を用いて５′末端を３２ｐでラベルした
。ラベルしたブライマー１−１、あるいはブライマー１
−２をｌ　ｐｍｏｌ、鋳型ＤＮＡを約０．８　ｐｍｏｌ
、×１０緩衝液　（７０ｍＭ）リス−〇ＣＩ　、ｐＨ７
，５，２００ｍＭ塩化ナトリウム、７０ｍＭ塩化マグネ
シウム、１ｍＭＨＯＴ＾）１．５μｌに水を加え１４μ
ｌにした後、９４℃で３分間加熱し水中で急冷した。１
μｌのフレノウ（２ユニツト）（宝酒造）を加えて混合
後３μｍを４種類のｄＮＴＰ−ｄｄＮＴＰの混合液２μ
ｌが入った４本のチューブに分注し混合した。

４種類のｄＮＴＰ−ｄｄＮＴＰの混合液の組成は次のよ
うである。（Ｇ）８３μＭ　ｄＡＴＰ、ｄＴＴＰ。

４、２　μＭ　ｄｃ’ＧＴＰ（７−ｄｅａｚａ２’　ｄ
ＧＴＰ）　、２．５　ｔ−ｔＭｄｃＴＰ、５８μＭ　ｄ
ｄＧＴＰ、（Ａ）８３μＭｄｃ７ＧＴＰ、　ｄ　ＴＴＰ
、　２．５　）ｔＭ　ｄ　ＣＴＰ、　４．２　μＭｄＡ
ＴＰ、１００μＭ　ｄｄＡＴＰ、（Ｔ）８３μＭｄｃ’
ＧＴＰ、　ｄ　ＡＴＰ、　２．５　μＭ　ｄ　ＣＴＰ、
　４．２　μＭｄＴＴＰ、２００μＭ　ｄｄＴ’Ｔ’ｐ
、　（Ｃ）　　６２μＭｄｃ’ＧＴＰ、　ｄ　Ａ　Ｔ　
Ｐ　Ｘｄ　Ｔ　Ｔ　Ｐ　、　２．５　μＭ　ｄ　ＣＴＰ
１５０μＭｄｄＣＴＰ０ 混合した反応液を４２℃で２０分間保持し、チエイス混
合液（１ｍＭ、　ｄＧＴＰ、　ｄＡＴＰ、　ｄＴＴＰ。

ｄＣＴＰ）　　１μｌを加え更に２０分間保持した後、
４μｌの反応停止液（９５％ホルムアミド、２０ｍＭ　
ＢＤＴＡ　、　０．０５％ブロモフェノールブルー０．
０５％キシレンシアツールＦＦ）を加えた。

９４℃で３分間加熱後、氷上で急冷した後、変性ポリア
クリルアミドゲルにより電気泳動し、オートラジオグラ
フィー後、ラダーを読み取りＤＮＡ配列決定を行った。

マイコプラズマ　ハイオリニス、マイコプラズマ　オー
ラレ、マイコプラズマ　サリバリウム、マイコプラズマ
　アルギニニ、マイコプラズマ　プルモニス、マイコプ
ラズマ　アルスリティディス、マイコプラズマ　ニュー
ロリティカム、マイコプラズマ　バイオニューモニエの
各ＤＮＡ配列は第２図〜第９図に示すとおりである。

一方、マイコプラズマ　ファーメンタンス、マイコプラ
ズマ　ホミニス、ウレアプラズマウレアリティカムに関
して２個のラダーが連続して生じる個所があった。これ
らのマイコプラズマに関しては、ＰＣＲで増幅したＤＮ
Ａ断片約２５０ｎｇをＤＮＡプランティング　キット（
Ｂｌｕｎｔｉｎｇ　ｋｉｔ）　（宝酒造）を用いて末端
を平滑化した。平滑化したＤＮＡ断片５０ｎｇとｐＨｃ
１８を制限酵素旧ｎｃＩ［で切断したＤＮＡ断片１１０
０ｎをＤＮＡライゲーション　キット（宝酒造）を用い
てライゲーションを行った。反応液をコーエン（Ｃｏｈ
ｅｎ）らの方法により大腸菌ＪＭ１０９の形質転換に用
い、形質転換菌をＪ、ビエイラ（Ｊ、　Ｖｉｅｉｒａ）
らの方法で選別した。３種のマイコプラズマに関して得
られた白コロニーを１２個ずつ選び０．５　ｒｄ用チュ
ーブに５０μｌの滅菌水で懸濁し、５分間加熱処理した
後、ジーン　アンプ７Ｍ　　キット（Ｇｅｎｅ　Ａｍｐ
”Ｋｉｔ）　（宝酒造社販売）に含まれている１０μｌ
の１０×増幅用緩衝液　［１００ｍＭ）　リス−ＨＣｌ
、ｐｈ　　８Ｊ、５００ｍＭＫＣｌ、　　１５　ｍＭ　
ＭｇＣ１，，０，１％（Ｗ／Ｖ）ゼラチン〕、１６μ矛
の１．２５ｍＭ　　ｄＮＴＰ混合液（ｄＡＴＰ。

ｄＧＴＰ、ｄＣＴＰ、ｄＴＴＰ）　　１μｌの１０μＭ
のＭ１３プライマーＭ４　（宝酒造社製）　　１μｌの
１０ｍＭＭ１３プライマーＲＶ　（宝酒造社製）０．５
μｌの５ユニット／μβタック−ポリメラーゼを加え、
更に滅菌水を加えて１００μｌの溶液にした。

この反応液は上層に１００μｌのミネラルオイルを加え
た後、自動遺伝子増幅装置サーマル−サイクラ−により
増幅反応を行った。反応条件は、９４℃、１分間の変性
→５５℃、２分間のプライマーのアニーリング→７２℃
、２分間の合成反応のサイクルを２５サイクル行った。

反応後、上層のミネラルオイルを除去した後、反応液の
１０μｌを取り、１％丁ガロース（宝酒造社製）ゲル電
気泳動を行い、エチジウムブロマイドでＤＮＡを染色し
、増幅されたＤＮＡの長さを確認し、３種類のマイコプ
ラズマに関して増幅されたＤＮＡを３クローンずつプラ
イマー１−１、プライマー１−２を用いて同様に直接Ｄ
ＮＡ配列決定を行った。その結果、３種類のマイコプラ
ズマに関して２種類ずつのＤＮＡ配列を得た。その配列
は第１０図〜第１５図に示すとおりである。

実施例２ マイコプラズマＤＮＡのＰＣＲによる増幅（１）　　オ
リゴヌクレオチドプライマーＤＮＡの合成及び精製 図面に示したマイコプラズマＤＮＡの共通配列を増幅す
るために選択した表２に示した２対のブライマーＤＮＡ
対をアプライドバイオシステムズ社のＤＮＡ合成機を用
いて合成し、脱保護の後、イオン交換ＨＰＬＣ（Ｔ　Ｓ
　Ｋ　ケル、ＤＢＡＢ−２ＳＷカラム）で精製し、セブ
ーパクＣ１６（ウォーターズ社）で脱塩し、各ＤＮＡを
約５０ｎｇ得た。

（２）マイコプラズマ共通配列ＤＮＡのＰＣＲによる増
幅 実施例１−（１）で調製した１２種類の各マイコプラズ
マＤＮＡ５ｎｇ、及び対照とするため調製したマウスＤ
ＮＡ５ｎｇ、大腸菌に一１２株ＤＮＡ　５　ｎｇ、枯草
菌ＩＳＷ　１２１４株ＤＮＡ５ｎｇを鋳型ＤＮＡとして
、それぞれ０．５−容エッペンドルフチューブに２本ず
つとり、１０μｌの１０×増幅用緩衝液、１６μｍの１
．２５ｍＭ　　ｄＮＴＰ混合液（ｄＡＴＰ、　ｄＧＴＰ
、　ｄＣＴＰ、　ｄＴＴＰ）を加え、各鋳型ＤＮＡの一
方のチューブに１μ矛の２０μＭブライマー２−１．１
μｌの２０μＭブライマー２−２、もう一方のチューブ
に１μβの２０μＭブライマー３−１と１μｌの２０μ
Ｍブライマー３−２を加え、０．５μｍの５ユニット／
μβタック−ポリメラーゼを加え、更に滅菌水を加えて
１００μｌの溶液にした。

この反応液は上層に１００μｌのミネラルオイルを加え
た後、自動遺伝子増幅装置サーマルサイクラ−により増
幅反応を行った。反応条件は、９４℃、３０秒間の変性
→５５℃、２分間のプライマーのアニーリング→７２℃
、１分間の合成反応のサイクルを３０サイクル行った。

反応後、上層のミネラルオイルを除去した後、反応液の
５μｌを取り、１％アガロース（宝酒造社製）ゲル電気
泳動を行い、エチジウムブロマイドでＤＮＡを染色し、
ＤＮＡの増幅を確認した。

その結果、いずれのブライマ一対を用いた場合でも各マ
イコプラズマについて、それぞれのＤＮＡ配列より予想
される長さのバンドが検出された。しかし、マウスＤＮ
Ａ、大腸菌に一１２ＤＮＡ、枯草菌ＩＳＷ　１２１４株
ＤＮＡを鋳型とした場合には、バンドは検出されず、各
プライマー対は、マイコプラズマｒＲＮＡをコードする
ＤＮＡに特異的であった。

実施例３ ブタ肺炎マイコプラズマ　ハイオニューモニよＤＮＡの
ＰＣＲによる増幅 （１）　　オリゴヌクレオチド　プライマーＤＮＡの合
成及び精製 マイコプラズマ　バイオニューモニエのｒＲＮＡをコー
ドするＤＮＡ配列より選定した、該マイコプラズマに特
異的なＤＮＡ配列を増幅するための表３に示したプライ
マ一対を実施例２−（１）と同様に合成、精製し、それ
ぞれ約５０ｎｇのＤＮＡを得た。

（２）フィコプラズマ　ハイオニューモニよＤＮＡのＰ
ＣＲによる増幅 鋳型ＤＮＡとして実施例１−（１）で調製した各マイコ
プラズマＤＮＡ５ｎｇ及び前述のマウスＤＮ　Ａ　５　
ｎｇ、大腸菌ＤＮＡ５ｎｇ、枯草菌ＤＮＡ　５ｎｇ１ブ
ライマ一対として上記３−（１）で得たプライマーを用
い実施例２−（２）と同様にＰＣＲ反応を行い、ＤＮＡ
の増幅及び検出を行った。その結果、マイコプラズマ　
バイオニューモニエのＤＮＡについてのみそのＤＮＡ配
列より予想された長さのバンドが検出され、他のマイコ
プラズマＤＮＡ、マウスＤＮＡ、大腸菌ＤＮＡ、枯草菌
ＤＮＡを鋳型とした場合にはバンドは検出されず、この
プライマ一対はマイコプラズマバイオニューモニエを特
異的に増幅した。

実施例４ サザンハイブリダイゼーションによるマイコプラズマＤ
ＮＡの検出 （１）　　マイコプラズマＤＮＡの検出実施例２−（２
）でプライマ一対として、プライ７−２−１、ブライ７
−２−２を用いてＰｃＲ反応を行った反応溶液２μｌを
１％アガロースゲルに電気泳動し、アルカリ変性後、ナ
イロンメンプラン〔アマ−ジャム　ハイボンド−Ｎ（Ａ
ｍｅｒｓｈａｍ　Ｈｙｂｏｎｄ−Ｎ）　〕に−晩サザン
プロットした。紫外線トランスイルミネーター（２５４
ｎｍ）に１０分間照射させ、ＤＮＡをメンプランに固定
させた。

このメンプランは、プレハイブリダイゼーション緩衝液
（５×デンハーツ液、５ＸＳＳＣ。

０．１％ＳＤＳ、　１００　、ｕｇ／ｍｌ！サケ精子Ｄ
ＮＡ）５ｄ中で５０℃、２時間プレハイブリダイゼーシ
ョンを行った。次に、プローブとして、実施例２−（１
）で合成したブライマー３−１を用い、該プローブを３
２ｐにてラベルしたものを加え１晩ハイブリダイゼーシ
ヨンを行った。

プローブの３２ｐ−ラベルはメガラベル　キット（宝酒
造）を用いて次のように行った。１０ｐ　ｍｏｌのプロ
ーブ、１μｌの１０×リン酸化緩衝液、５０μＣｉのＣ
ｒ−”Ｐ〕ＡＴＰ　（アマージャム社）１０ユニツトの
Ｔ４−ポリヌクレオチドキナーゼを含む反応液に滅菌水
を加えて１０μｍにし、３７℃、３０分間反応させた。

反応後、９４℃、５分間処理し、この反応液の全量（約
１０　”ｃｐｍ）をハイブリダイゼーションに用いた。

ハイブリダイゼーション後、メンプランを２ｘＳＳＣ，
０，１％ＳＤＳを含む洗浄液１で室温１０分間で４回洗
浄し、続いて１ｘＳＳＣ１０，１％ＳＤＳを含む洗浄液
２で５５℃、５０分間で２回洗浄した。メンプランは乾
燥させた後、Ｘ線フィルム（富士フィルム）を入れたカ
セット内で一７０℃、−晩感光させ、オートラジオグラ
フをとった。

この結果、１２種類のマイコプラズマＤＮＡの増幅物に
ついてはすべてバンドが検出されたが、マウスＤＮＡ、
大腸菌ＤＮＡ、枯草菌ＤＮＡを鋳型とした反応溶液では
バンドは認められなかった。

実施例５ マイコプラズマＤＮＡの増幅・検出キットの作成 試料中のマイコプラズマＤＮＡを増幅・検出するための
キットを作成した。

マイコプラズマ共通配列増幅・検出キット共通配列ＤＮ
Ａ増幅用ブライマーとして、表２のブライマー２−１及
びブライマー２−２が各２０μＭ溶液となるようにＴＥ
緩衝液２０μｌに溶解し、マイコプラズマ　プライマー
液（Ａ剤）とした。また表２のブライマー３−１及び３
−２が各２０μＭ溶液となるようにＴＥ緩衝液２０μｌ
に溶解し、マイコプラズマ　プライマー液（Ｂ剤）とし
た。

Ａ剤を選択し、マイコプラズマＤＮＡを増幅する場合の
ＤＮＡ検出用プローブとして、表３のプローブ１の２μ
ｇ−ｔ−ＴＥ緩衝液２０μβに溶解し、マイコプラズマ
　プローブ液（Ｃ剤）とした。

Ａ剤、Ｂ剤、及びＡ剤とＣ剤の組合せでキットＩ〜■を
作成した（表５）。

表　　５ °Ｆ　マイコプラズマ　ハイオニューモニよＤＮＡ増幅
・検出用キット マイコプラズマ　ハイオニューモニよＤＮＡ増幅用ブラ
イマーとして、表４のブライマー４１、及び４−２が各
２０μＭ溶液となるようにＴＥ緩衝液２０μｌに溶解し
、マイコプラズマ　プライマー液（Ｄ剤）としキラ）Ｉ
Ｖを作成した（表６） 表　　６ 〔発明の効果〕 以上、詳細に説明したように、本発明により、マイコプ
ラズマ一般に共通な特異的遺伝子領域が明らかとなり、
この領域を検出することによる、試料中のマイコプラズ
マの高感度検出方法及び検出キットが提供された。

また、新たに１１種のマイコプラズマのｒＲＮＡをコー
ドするＤＮＡ配列の一部が明らかとなり、これらの各マ
イコプラズマＤＮＡに特徴的な領域の検出が可能となり
、ブタ肺炎マイコプラズマ　バイオニューモニエを特異
的に検出するキットも提供された。

【図面の簡単な説明】

第１図はマイコプラズマ　カプリコラムの１９９２ｂｐ
の塩基配列を示す図、第２図はマイコプラズマ　ハイオ
リニスの４８０ｂｐの塩基配列を示す図、第３図はマイ
コプラズマ　オーラレの４６０ｂｐの塩基配列を示す図
、第４図はマイコプラズマ　サリバリウムの４３８ｂｐ
の塩基配列を示す図、第５図はマイコプラズマ　アルギ
ニニの４００ｂｐの塩基配列を示す図、第６図はマイコ
プラズマ　ブルモニスの５１３ｂｐの塩基配列を示す図
、第７図はマイコプラズマ　ニューロリティカムの５３
９ｂｐの塩基配列を示す図、第８図はマイコプラズマ　
アルスリティディスの４４４　ｂｐの塩基配列を示す図
、第９図はマイコプラズマ　バイオニューモニエの７３
１１）ｐの塩基配列を示す図、第１０図及び第１１図の
マイコプラズマ　ファーメンタンスのそれぞれ５２２ｂ
ｐの塩基配列を示す図、第１２図及び第１３図はマイコ
プラズマ　ホミニスのそれぞれ４０６ｂｐ及び４０５ｂ
ｐの塩基配列を示す図、第１４図及び第１５図はウレア
プラズマ　ウレアリティカムのそれぞれ５１７ｂｐ及び
５１６ｂｐの塩基配列を示す図である。

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １、マイコプラズマの検出方法において、マイコプラズ
   マのｒＲＮＡをコードしているＤＮＡ配列、又はその一
   部のマイコプラズマに特異的なＤＮＡ配列を検出するこ
   とを特徴とするマイコプラズマの検出方法。 ２、請求項１記載の方法を用いて検出を行うための検出
   キットであって、マイコプラズマの特異なＤＮＡ領域を
   増幅させるための特定のプライマーを含有していること
   を特徴とするマイコプラズマ検出キット。