JPH04187084A - 単球表面に発現する抗原及び該抗原に対するモノクローナル抗体 - Google Patents
単球表面に発現する抗原及び該抗原に対するモノクローナル抗体Info
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Landscapes
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- Peptides Or Proteins (AREA)
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明はG M C3F (granulocyte
−macrophage colony−stimul
ating factor)及び(又は) (L
3 (interleukin−3) (7)刺激によ
りヒト単球細胞より産生される新規な表面抗原及び該新
規な表面抗原と特異的に反応するモノクローナル抗体に
関する。 − 従来技術とその課題 従来、刺激を受けたリンパ球、単球、マクロファージ等
は生物学的活性を有する様々な蛋白活性因子を産生じ、
之等を介して免疫系の応答が調節され、修飾されていく
ことが次第に明らかになり、リンパ球の産生ずる上記活
性因子はリンホカインと、単球及びマクロファージの産
生ずる上記活性因子はモノカインと呼ばれたが、その後
、この産生細胞による呼称区分は必ずしも明確でなくな
り、最近は之等の生体防御や免疫に関与する蛋白活性因
子を統一的にサイトカインと呼ぶようになった。
−macrophage colony−stimul
ating factor)及び(又は) (L
3 (interleukin−3) (7)刺激によ
りヒト単球細胞より産生される新規な表面抗原及び該新
規な表面抗原と特異的に反応するモノクローナル抗体に
関する。 − 従来技術とその課題 従来、刺激を受けたリンパ球、単球、マクロファージ等
は生物学的活性を有する様々な蛋白活性因子を産生じ、
之等を介して免疫系の応答が調節され、修飾されていく
ことが次第に明らかになり、リンパ球の産生ずる上記活
性因子はリンホカインと、単球及びマクロファージの産
生ずる上記活性因子はモノカインと呼ばれたが、その後
、この産生細胞による呼称区分は必ずしも明確でなくな
り、最近は之等の生体防御や免疫に関与する蛋白活性因
子を統一的にサイトカインと呼ぶようになった。
該サイトカインは、その主な作用から大別して、インタ
ーロイキン(■L)、インターフェロン(IFN)、コ
ロニー刺激因子(CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)
、T細胞成長因子(TGF)等に分類でき、2等すイト
カインが多くの細胞群に対して働くことか判り、また複
数のサイト力インがある種の細胞群に対して同じ作用を
有することも判り、このため単一サイトカインの作用の
みでは免疫系の賦活化を論じ得なくなり、現在では多く
のサイトカインが互いに関連して複雑なサイトカインネ
ットワークを形成し巧妙に生体防御機構を調整すると考
えられている[中山直樹、細胞工学、 9 (6)
484−492 (1990) コ 。
ーロイキン(■L)、インターフェロン(IFN)、コ
ロニー刺激因子(CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)
、T細胞成長因子(TGF)等に分類でき、2等すイト
カインが多くの細胞群に対して働くことか判り、また複
数のサイト力インがある種の細胞群に対して同じ作用を
有することも判り、このため単一サイトカインの作用の
みでは免疫系の賦活化を論じ得なくなり、現在では多く
のサイトカインが互いに関連して複雑なサイトカインネ
ットワークを形成し巧妙に生体防御機構を調整すると考
えられている[中山直樹、細胞工学、 9 (6)
484−492 (1990) コ 。
上記サイトカインの内でC3Fは、赤血球、白血球、血
小板等の血球系細胞が多能性造血幹細胞と呼ばれる共通
胞から増殖分化を経て生じ、この過程で分化してくる細
胞に対応して、特異的因子の存在が確認され、血球系の
内でも顆粒球(granulocyte ) 、単球(
monocyte) 、?クロファージ(macrop
hage)の各コロニー形成を刺激する因子が全てCS
Fと総称されている。該C3Fには現在次の4種類が知
られている[Metcalf 。
小板等の血球系細胞が多能性造血幹細胞と呼ばれる共通
胞から増殖分化を経て生じ、この過程で分化してくる細
胞に対応して、特異的因子の存在が確認され、血球系の
内でも顆粒球(granulocyte ) 、単球(
monocyte) 、?クロファージ(macrop
hage)の各コロニー形成を刺激する因子が全てCS
Fと総称されている。該C3Fには現在次の4種類が知
られている[Metcalf 。
D、、 Hemopoietic Co1ony St
imulatingFactor。
imulatingFactor。
’Elsevier (1984) ] 。
0マル千C331’ (interleukin 3
) [Ih1e、 J。
) [Ih1e、 J。
N、、et al、、J、Immunol、、131,
282−287(1983) : Yang、 Y、
C,、et al、、 Ce1l、 47. 3
−10 (1986) ] OG M −C3F (granulocyte m
acrophage C3F)o (:、 −C3F
(granulocyte C5F )OM −(:
、 3 F(macrophage C3F)之等は、
赤血球系、顆粒球マクロファージ系、血小板系の全ての
前駆細胞の増殖分化に働く多機能性を持っている。
282−287(1983) : Yang、 Y、
C,、et al、、 Ce1l、 47. 3
−10 (1986) ] OG M −C3F (granulocyte m
acrophage C3F)o (:、 −C3F
(granulocyte C5F )OM −(:
、 3 F(macrophage C3F)之等は、
赤血球系、顆粒球マクロファージ系、血小板系の全ての
前駆細胞の増殖分化に働く多機能性を持っている。
また単球系に関して、血液単球の増殖分化は、M−CS
Fだけでなく、GM−CSFやマルチCSFによっても
促進されることが知られている[0hta、 M、 e
t al、、 Biochem、 Biophys、
ResCommun、、 126.705−711 (
1985)] 。好中球や単球/マクロファージはAD
CC(抗体依存性細胞障害性殺作用)等を介して癌細胞
を直接に攻撃することが知られているが、GM−CSF
で刺激された好中球や単球/マクロファージが少なくと
も一部の癌細胞に対して、より強い細胞殺傷効果を持つ
ことが報告されている[Grabstein、 K、
H,etal、、 5cience、 232.506
(1986) :浅野茂隆、がん治療のあゆみ、8
.11 (1989)]。
Fだけでなく、GM−CSFやマルチCSFによっても
促進されることが知られている[0hta、 M、 e
t al、、 Biochem、 Biophys、
ResCommun、、 126.705−711 (
1985)] 。好中球や単球/マクロファージはAD
CC(抗体依存性細胞障害性殺作用)等を介して癌細胞
を直接に攻撃することが知られているが、GM−CSF
で刺激された好中球や単球/マクロファージが少なくと
も一部の癌細胞に対して、より強い細胞殺傷効果を持つ
ことが報告されている[Grabstein、 K、
H,etal、、 5cience、 232.506
(1986) :浅野茂隆、がん治療のあゆみ、8
.11 (1989)]。
本発明者らもヒト末梢血単球のGM−C’SFに対する
反応性を検討した結果、GM−C3Fの刺激により単球
細胞の細胞増殖反応性及び殺腫瘍性発現を認めたが、之
等の活性は単球細胞の大きさで分離した結果、小さいサ
イズの単球並分画よりもむしろ大きい単球並分画がより
強い増殖反応を示すことが判った。この結果から、単球
は成熟度が異なる細胞並集団からなっていることが示唆
された[稲村典昭、医学のあゆみ、−υリュ(8)、
461−462 (1989)] 。しかし、GM=C
SFを含めたサイト力インは多くの細胞群に対して働き
、サイトカインにより作用を受けた細胞が更に別のサイ
トカイン或は同じサイト力インを産生させることも報告
サレテオリ[Horiguchi、 J、、 et a
l、、 Blood。
反応性を検討した結果、GM−C3Fの刺激により単球
細胞の細胞増殖反応性及び殺腫瘍性発現を認めたが、之
等の活性は単球細胞の大きさで分離した結果、小さいサ
イズの単球並分画よりもむしろ大きい単球並分画がより
強い増殖反応を示すことが判った。この結果から、単球
は成熟度が異なる細胞並集団からなっていることが示唆
された[稲村典昭、医学のあゆみ、−υリュ(8)、
461−462 (1989)] 。しかし、GM=C
SFを含めたサイト力インは多くの細胞群に対して働き
、サイトカインにより作用を受けた細胞が更に別のサイ
トカイン或は同じサイト力インを産生させることも報告
サレテオリ[Horiguchi、 J、、 et a
l、、 Blood。
69、1259−1261 (1987) : Opp
enheim、 J、 J、、 etal、、 Imm
unol、 Today、 7.45 (1986)
:小野崎菊夫、日本臨床、46.18 (19BB)
: Dinarello、 C。
enheim、 J、 J、、 etal、、 Imm
unol、 Today、 7.45 (1986)
:小野崎菊夫、日本臨床、46.18 (19BB)
: Dinarello、 C。
A、、 Adv、Immunol、、 44.’15
3 (1989)] 、新規な生物活性を持つ新しいサ
イト力インが多く発見されつツある[Westwick
、 J、 et al、、 ImmunologyTo
day、10.146 (1989) : Baggi
olini、 M、 et al、。
3 (1989)] 、新規な生物活性を持つ新しいサ
イト力インが多く発見されつツある[Westwick
、 J、 et al、、 ImmunologyTo
day、10.146 (1989) : Baggi
olini、 M、 et al、。
J、 Cl1n、 Invest、、 84.1045
(1989) : Yang、 Y。
(1989) : Yang、 Y。
C,et al、、 Blood、74.1880 (
1989) ]。
1989) ]。
しかしながら、サイトカインの種類、物理的性質、生理
活性等については、いまだ充分に解明されているとはい
えず、このサイトカインの研究のためにも、また更に生
体の免疫系に作用して生体防御機構を調整するためにも
、新規なサイト力インの単離及び該サイトカインに対す
るモノクローナル抗体の製造が望まれており、これによ
って、免疫系が関与する疾患乃至病態の診断や治療法の
開発研究が望まれている。
活性等については、いまだ充分に解明されているとはい
えず、このサイトカインの研究のためにも、また更に生
体の免疫系に作用して生体防御機構を調整するためにも
、新規なサイト力インの単離及び該サイトカインに対す
るモノクローナル抗体の製造が望まれており、これによ
って、免疫系が関与する疾患乃至病態の診断や治療法の
開発研究が望まれている。
本発明者らは、生体防御機構を調整する免疫系について
、鋭意研究を重ねた結果、上記斯界で要望されている新
規なサイトカインの単離に成功し、更に該サイト力イン
に対するモノクローナル抗体の製造にも成功し、ここに
本発明を完成するに至った。
、鋭意研究を重ねた結果、上記斯界で要望されている新
規なサイトカインの単離に成功し、更に該サイト力イン
に対するモノクローナル抗体の製造にも成功し、ここに
本発明を完成するに至った。
課題を解決するための手段
即ち本発明は、GM−CSF及び/又ハr L −3に
よって刺激されたヒト単球細胞表面に発現する抗原及び
該表面抗原に対するモノクローナル抗体に係わる。
よって刺激されたヒト単球細胞表面に発現する抗原及び
該表面抗原に対するモノクローナル抗体に係わる。
本発明の表面抗原は、またウェスタンプロット法による
分子量が43kdである点において特徴付けられる。
分子量が43kdである点において特徴付けられる。
本発明表面抗原は生体防御機構の研究に有用であり、ま
た該表面抗原の利用によれば該表面抗原に対するモノク
ローナル抗体を製造でき、この抗体は例えばリウマチ等
の炎症性疾患の診断等に有用である。
た該表面抗原の利用によれば該表面抗原に対するモノク
ローナル抗体を製造でき、この抗体は例えばリウマチ等
の炎症性疾患の診断等に有用である。
本発明の単球表面に発現する抗原は、ヒトの骨髄やセル
ラインや末梢血の単球を、GM−C3F及び(又は)I
L−3で刺激することにより、該単球表面に発現される
が、無刺激の同末梢血単球表面には発現されない。また
、本発明単球表面に発現する抗原の産生のための末梢血
単球を刺激すべき物質は、上記GM−CSF及びIL−
3に限られており、之等に代えて公知のIL−1α、I
L−1β、G−CSF、TNF、rL−4、IL−6、
IFN−γ、IFN−α、IFN−β、LPS (リポ
ポリサッカライド)等を用いて刺激を行なっても、刺激
された単球は目的とする表面抗原の発現能を有しない。
ラインや末梢血の単球を、GM−C3F及び(又は)I
L−3で刺激することにより、該単球表面に発現される
が、無刺激の同末梢血単球表面には発現されない。また
、本発明単球表面に発現する抗原の産生のための末梢血
単球を刺激すべき物質は、上記GM−CSF及びIL−
3に限られており、之等に代えて公知のIL−1α、I
L−1β、G−CSF、TNF、rL−4、IL−6、
IFN−γ、IFN−α、IFN−β、LPS (リポ
ポリサッカライド)等を用いて刺激を行なっても、刺激
された単球は目的とする表面抗原の発現能を有しない。
更に、単球以外の例えば肺胞マクロファージ(AM)や
リンパ球、顆粒球では、上記GM−CSF及びIL−3
刺激を行なっでも本発明抗原の発現を行ない得す、勿論
他の細胞内毒素の刺激でも該抗原は発現しない。
リンパ球、顆粒球では、上記GM−CSF及びIL−3
刺激を行なっでも本発明抗原の発現を行ない得す、勿論
他の細胞内毒素の刺激でも該抗原は発現しない。
本発明表面抗原は、またシクロへキシミド等の蛋白合成
阻害剤によって細胞表面に表出されるものではない点に
も特徴があり、更にヒト白血病細胞や腫瘍細胞のセルラ
インでも発現されないことを特徴としている。しかして
既知の単球表面に発現する抗原はいずれもかかる特徴は
有していない。
阻害剤によって細胞表面に表出されるものではない点に
も特徴があり、更にヒト白血病細胞や腫瘍細胞のセルラ
インでも発現されないことを特徴としている。しかして
既知の単球表面に発現する抗原はいずれもかかる特徴は
有していない。
以下、本発明の表面抗原及び該抗原に対するモノクロー
ナル抗体につき詳述する。
ナル抗体につき詳述する。
本発明表面抗原は、ヒト末梢血単球をGM−C3F及び
(又は)IL−3により刺激することにより、該単球細
胞にその産生能を付与し、この刺激単球細胞より単離で
きる。また、本発明モノクローナル抗体は上記で得られ
る単球表面に発現する抗原を免疫抗原として利用して製
造できる。
(又は)IL−3により刺激することにより、該単球細
胞にその産生能を付与し、この刺激単球細胞より単離で
きる。また、本発明モノクローナル抗体は上記で得られ
る単球表面に発現する抗原を免疫抗原として利用して製
造できる。
本発明単球表面に発現する抗原の製造のために用いられ
るヒト末梢血単球としては、特に制限はなく、例えばヒ
ト血液よりリンパ球分離培地(Lymphocyte
5eparation medium、 L 3 M)
を用いた比重遠心法にて分離後、カウンターフロー・遠
心溶出法(CCE法、counterflow cen
trifugalelutrition)等の常法によ
り分離できる。上記分離した単球細胞を培地にて0.
1〜100/y/のGM−CSFの存在下で2〜20日
間培養することにより目的の単球表面に発現する抗原産
生株を収得できる。
るヒト末梢血単球としては、特に制限はなく、例えばヒ
ト血液よりリンパ球分離培地(Lymphocyte
5eparation medium、 L 3 M)
を用いた比重遠心法にて分離後、カウンターフロー・遠
心溶出法(CCE法、counterflow cen
trifugalelutrition)等の常法によ
り分離できる。上記分離した単球細胞を培地にて0.
1〜100/y/のGM−CSFの存在下で2〜20日
間培養することにより目的の単球表面に発現する抗原産
生株を収得できる。
ここで培地としては、通常の細胞培養用培地、例えば5
%ウシ胎児血清(F CS)添加RPMI−1640培
地、MEM培地、F−12培地、DMEM培地、その他
この種細胞培養に使用される通常の各種培地をいずれも
利用できる。
%ウシ胎児血清(F CS)添加RPMI−1640培
地、MEM培地、F−12培地、DMEM培地、その他
この種細胞培養に使用される通常の各種培地をいずれも
利用できる。
本発明抗体の製造は、通常の抗体製造法に準じて実施で
きる。抗体の製造は、例えば上記細胞培養により得られ
る本発明表面抗原を免疫抗原として用い、該免疫抗原で
免疫した哺乳動物の形質細胞(免疫細胞)と哺乳動物の
形質細胞腫細胞との融合細胞(hybridoma )
を作成し、これより本発明表面抗原を認識する所望抗体
の産生クローンを選択し、該クローンの培養により実施
できる。
きる。抗体の製造は、例えば上記細胞培養により得られ
る本発明表面抗原を免疫抗原として用い、該免疫抗原で
免疫した哺乳動物の形質細胞(免疫細胞)と哺乳動物の
形質細胞腫細胞との融合細胞(hybridoma )
を作成し、これより本発明表面抗原を認識する所望抗体
の産生クローンを選択し、該クローンの培養により実施
できる。
本発明モノクローナル抗体は、粗製抗体液、即ち抗体産
生ハイプリドーマ培養上清或はマウス腹水として、その
まま使用することもでき、また硫酸アンモニウム分画や
イオン交換クロマトグラフィー或はプロティンA抗原カ
ラム等によるアフィニティークロマトグラフィーにより
精製して使用することもできる。
生ハイプリドーマ培養上清或はマウス腹水として、その
まま使用することもでき、また硫酸アンモニウム分画や
イオン交換クロマトグラフィー或はプロティンA抗原カ
ラム等によるアフィニティークロマトグラフィーにより
精製して使用することもできる。
上記抗体の製造方法において免疫抗原、即ち本発明単球
表面に発現する抗原で免疫される哺乳動物としては、特
に制限はないが、細胞融合に使用される形質細胞腫細胞
との適合性を考慮して選択されるのが好ましく、一般に
はマウス、ラット等が有利に使用できる。
表面に発現する抗原で免疫される哺乳動物としては、特
に制限はないが、細胞融合に使用される形質細胞腫細胞
との適合性を考慮して選択されるのが好ましく、一般に
はマウス、ラット等が有利に使用できる。
免疫は一般的方法により、例えば上記免疫抗原を哺乳動
物に静脈内、皮内、皮下、腹腔内注射等により投与して
実施できる。より具体的には、例えばマウスの場合、免
疫抗原を生理食塩水含有リン酸緩衝液(P B S)や
生理食塩水等で適当濃度に希釈し、所望により通常のア
ジュバントと併用して、供試動物に2〜21日毎に数回
投与し、総投与細胞数が1〜5X10 /マウス程度
になるように実施するのが好ましい。一般にはアジュバ
ントを用いる必要はなく、むしろこれを利用して細胞を
破壊すると、細胞内部の蛋白に対する抗体の出現率が高
くなりあまり好ましくはないが、例えば百日咳ワクチン
、完全フロイントアトシュバント、アラム等を用いるこ
とも可能である。免疫細胞としては、上記最終投与の約
3日後に摘出した牌臓細胞を使用するのか好ましい。
物に静脈内、皮内、皮下、腹腔内注射等により投与して
実施できる。より具体的には、例えばマウスの場合、免
疫抗原を生理食塩水含有リン酸緩衝液(P B S)や
生理食塩水等で適当濃度に希釈し、所望により通常のア
ジュバントと併用して、供試動物に2〜21日毎に数回
投与し、総投与細胞数が1〜5X10 /マウス程度
になるように実施するのが好ましい。一般にはアジュバ
ントを用いる必要はなく、むしろこれを利用して細胞を
破壊すると、細胞内部の蛋白に対する抗体の出現率が高
くなりあまり好ましくはないが、例えば百日咳ワクチン
、完全フロイントアトシュバント、アラム等を用いるこ
とも可能である。免疫細胞としては、上記最終投与の約
3日後に摘出した牌臓細胞を使用するのか好ましい。
上記免疫細胞(!:融合される他方の親細胞としての哺
乳動物の形質細胞−Φ細胞としては、既に公知の各種の
ものを使用できる。該形質細胞腫細胞としては、例えば
P3/X63−Ag3 (X63)[Nature、
256. 495−497 (1975) コ
、 P 3/X 63−Ag3.Ul (P3U1)
[Current Topicsin Microb
iology and Imunology、 81.
1−7(1978)] 、 P3/NS I−1−
Agl−1−A S −1) [Eur、 J、
Immunol、、 6.511−519(1976)
] 、 S p 210−Ag 1 4 (
S p 210)[Nature、 276、
269−270 (197B) コ 、 FO[J
。
乳動物の形質細胞−Φ細胞としては、既に公知の各種の
ものを使用できる。該形質細胞腫細胞としては、例えば
P3/X63−Ag3 (X63)[Nature、
256. 495−497 (1975) コ
、 P 3/X 63−Ag3.Ul (P3U1)
[Current Topicsin Microb
iology and Imunology、 81.
1−7(1978)] 、 P3/NS I−1−
Agl−1−A S −1) [Eur、 J、
Immunol、、 6.511−519(1976)
] 、 S p 210−Ag 1 4 (
S p 210)[Nature、 276、
269−270 (197B) コ 、 FO[J
。
Immunol 、阿eth、、 35.1−21 (
1980) ]等や、ラットにおける210.RCY3
.Ag1.2.3゜(Y 3) [Nature、
277、131−133 (1979) 3 等0)骨
髄腫細胞等を例示できる。
1980) ]等や、ラットにおける210.RCY3
.Ag1.2.3゜(Y 3) [Nature、
277、131−133 (1979) 3 等0)骨
髄腫細胞等を例示できる。
上記免疫細胞と形質細胞腫細胞との融合反応は、公知の
方法、例えばマイルスタイン(Milstein)らの
方法[Method in Enzymology、
Vol、73.3(1981)]等に準じて実施できる
。より具体的には、上記融合反応は、通常の融合促進剤
、例えばポリエチレングリコール(PEG)、センダイ
ウィルス(HVJ)等の存在下に、通常の培地中で実施
され、培地には更に融合効率を高めるためにジメチルス
ルホキシド等の補助剤を必要に応じて添加できる。また
電気処理(電気融合)による方法等をも適宜採用できる
。免疫細胞と形質細胞腫細胞との使用比は、通常の方法
と変りはなく、例えば形質細胞腫細胞に対して免疫細胞
を約1〜10倍程度用いるのが普通である。融合反応時
の培地としては上記形質細胞腫細胞の増殖に通常使用さ
れる各種のもの、例えばRPMI〜1640培地、ME
M培地、その他この種細胞培養に一般に利用されるもの
を例示でき、通常速等培地は牛胎児血清(F CS)等
の血清補液を抜いておくのがよい。
方法、例えばマイルスタイン(Milstein)らの
方法[Method in Enzymology、
Vol、73.3(1981)]等に準じて実施できる
。より具体的には、上記融合反応は、通常の融合促進剤
、例えばポリエチレングリコール(PEG)、センダイ
ウィルス(HVJ)等の存在下に、通常の培地中で実施
され、培地には更に融合効率を高めるためにジメチルス
ルホキシド等の補助剤を必要に応じて添加できる。また
電気処理(電気融合)による方法等をも適宜採用できる
。免疫細胞と形質細胞腫細胞との使用比は、通常の方法
と変りはなく、例えば形質細胞腫細胞に対して免疫細胞
を約1〜10倍程度用いるのが普通である。融合反応時
の培地としては上記形質細胞腫細胞の増殖に通常使用さ
れる各種のもの、例えばRPMI〜1640培地、ME
M培地、その他この種細胞培養に一般に利用されるもの
を例示でき、通常速等培地は牛胎児血清(F CS)等
の血清補液を抜いておくのがよい。
細胞融合は上記免疫細胞と形質細胞腫細胞との所定量を
上記培地内でよく混合し、予め37°C程度に加温した
PEG溶液、例えば平均分子量1000〜6000程度
のものを、通常培地に約30〜6QW/V%の濃度で加
えて混ぜ合せることにより行なわれる。以後、適当な培
地を逐次添加して遠心し、上清を除去する操作を繰返す
ことにより所望のハイブリドーマが形成される。
上記培地内でよく混合し、予め37°C程度に加温した
PEG溶液、例えば平均分子量1000〜6000程度
のものを、通常培地に約30〜6QW/V%の濃度で加
えて混ぜ合せることにより行なわれる。以後、適当な培
地を逐次添加して遠心し、上清を除去する操作を繰返す
ことにより所望のハイブリドーマが形成される。
得られる所望のハイブリドーマの分離は、通常の選別用
培地、例えばHAT培地(ヒポキサンチン、アミノプテ
リン及びチミジンを含む培地)での培養により実施でき
る。該HAT培地での培養は、目的とするハイブリドー
マ以外の細胞(未融合細胞等)が死滅するのに充分な時
間、通常数日〜数週間行なえばよい。かくして得られる
ハイブリドーマは、通常の限界希釈法により目的とする
抗体の検索及び単一クローン化に供される。
培地、例えばHAT培地(ヒポキサンチン、アミノプテ
リン及びチミジンを含む培地)での培養により実施でき
る。該HAT培地での培養は、目的とするハイブリドー
マ以外の細胞(未融合細胞等)が死滅するのに充分な時
間、通常数日〜数週間行なえばよい。かくして得られる
ハイブリドーマは、通常の限界希釈法により目的とする
抗体の検索及び単一クローン化に供される。
目的抗体産生株の検索は、例えば直接又は間接免疫蛍光
抗体法[細胞工学、4.957 (1985)]、Ce
1l−E L T S A法[Engvall、 E、
、 Meth。
抗体法[細胞工学、4.957 (1985)]、Ce
1l−E L T S A法[Engvall、 E、
、 Meth。
Enzymol、、 70.419−439 (198
0)]、プラーク法、スポット法、凝集反応法、オフタ
ロニー(Ouchterlony)法、ラジオイムノア
ッセイ(R/IA)法等の一般に抗体の検出に用いられ
る種々の方法〔「ハイブリドーマ法とモノクローナル抗
体」、株式会社R&Dプラニング発行、第30−53頁
、昭和57年3月5日〕に従い実施でき、特に間接免疫
蛍光抗体法が好ましく、上記検索には前記免疫抗原が利
用できる。
0)]、プラーク法、スポット法、凝集反応法、オフタ
ロニー(Ouchterlony)法、ラジオイムノア
ッセイ(R/IA)法等の一般に抗体の検出に用いられ
る種々の方法〔「ハイブリドーマ法とモノクローナル抗
体」、株式会社R&Dプラニング発行、第30−53頁
、昭和57年3月5日〕に従い実施でき、特に間接免疫
蛍光抗体法が好ましく、上記検索には前記免疫抗原が利
用できる。
かくして得られるGM−C3F乃至IL−3刺激ヒト単
球細胞より産生される本発明表面抗原を認識する所望モ
ノクローナル抗体産生ノ1イブリドーマは、通常の培地
で継代培養でき、また液体窒素中で長期間保存できる。
球細胞より産生される本発明表面抗原を認識する所望モ
ノクローナル抗体産生ノ1イブリドーマは、通常の培地
で継代培養でき、また液体窒素中で長期間保存できる。
上記ハイブリドーマからの本発明モノクローナル抗体の
採取は、該ハイブリドーマを常法に従い培養し、その培
養上清として得る方法やノ1イブリドーマをこれと適合
性のある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として
得る方法等を採用できる。前者の方法は高純度の抗体を
得るのに適しており、後者の方法は抗体の大量生産に適
している。
採取は、該ハイブリドーマを常法に従い培養し、その培
養上清として得る方法やノ1イブリドーマをこれと適合
性のある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として
得る方法等を採用できる。前者の方法は高純度の抗体を
得るのに適しており、後者の方法は抗体の大量生産に適
している。
また上記の如くして得られる抗体は、更に塩析、ゲル濾
過法、アフィニティクロマトグラフィー等の通常の手段
により精製できる。
過法、アフィニティクロマトグラフィー等の通常の手段
により精製できる。
かくして得られる本発明モノクローナル抗体は、これを
利用して、例えば免疫沈降法、アフィニティクロマトグ
ラフィー等の通常の精製手段によりGM−CSF乃至I
L−3刺激ヒト単球細胞より産生される単球表面に発
現する抗原を簡便且つ特異的に精製可能である。
利用して、例えば免疫沈降法、アフィニティクロマトグ
ラフィー等の通常の精製手段によりGM−CSF乃至I
L−3刺激ヒト単球細胞より産生される単球表面に発
現する抗原を簡便且つ特異的に精製可能である。
また上記の如くして得られる本発明抗体の利用によれば
、検体中のGM−CSF乃至IL−3刺激ヒト単球細胞
より産生される単球表面に発現する抗原を、免疫反応に
より特異的に測定できる。
、検体中のGM−CSF乃至IL−3刺激ヒト単球細胞
より産生される単球表面に発現する抗原を、免疫反応に
より特異的に測定できる。
該測定法としては、免疫蛍光抗体法、Cell−ERI
SA法、通常の競合法、サンドイツチ法によるラジオイ
ムノアッセイ(RI A)法、酵素免疫測定法(EL
I SA) 、凝集法等の免疫学的手法が挙げられ、2
等方法の操作、手順等は、常法と変わるところはない。
SA法、通常の競合法、サンドイツチ法によるラジオイ
ムノアッセイ(RI A)法、酵素免疫測定法(EL
I SA) 、凝集法等の免疫学的手法が挙げられ、2
等方法の操作、手順等は、常法と変わるところはない。
上記間接免疫蛍光抗体法は、より具体的には、測定しよ
うとする検体細胞と一定量の本発明モノクローナル抗体
とを反応させた後、標識抗体の一定量を反応させ、次に
サイトフルオロメトリーにて蛍光強度を測定することに
より実施でき、かくして検体中に含まれるGM−CSF
乃至IL−3刺激ヒト単球表面に発現する抗原を定量で
きる。
うとする検体細胞と一定量の本発明モノクローナル抗体
とを反応させた後、標識抗体の一定量を反応させ、次に
サイトフルオロメトリーにて蛍光強度を測定することに
より実施でき、かくして検体中に含まれるGM−CSF
乃至IL−3刺激ヒト単球表面に発現する抗原を定量で
きる。
上記検定法において検体としては、各種の体液、例えば
血液、細胞組織液等に含まれる細胞をいずれも使用でき
る。また体液に遊離してきた抗原も上記検体として使用
できる。之等の内では血液、特に血清又は血漿が好まし
く、之等は更に常法に従い、単球細胞を分離分画して利
用可能である。
血液、細胞組織液等に含まれる細胞をいずれも使用でき
る。また体液に遊離してきた抗原も上記検体として使用
できる。之等の内では血液、特に血清又は血漿が好まし
く、之等は更に常法に従い、単球細胞を分離分画して利
用可能である。
本発明抗体に対する二次抗体の標識物質としては、通常
の各種のもの、例えばグルコアミラーゼ、パーオキシダ
ーゼ、アルカリフォスファターゼ、β−ガラクトシダー
ゼ等の酵素類や、 ■、1311、トリチウム等の
放射性物質等を使用できる。該標識物質による標識化法
は常法に従うことができル[Nature、 194.
495 (1962) ; ActaEndocrli
nol、 5upp1.、168.206 (1972
)等参照]。
の各種のもの、例えばグルコアミラーゼ、パーオキシダ
ーゼ、アルカリフォスファターゼ、β−ガラクトシダー
ゼ等の酵素類や、 ■、1311、トリチウム等の
放射性物質等を使用できる。該標識物質による標識化法
は常法に従うことができル[Nature、 194.
495 (1962) ; ActaEndocrli
nol、 5upp1.、168.206 (1972
)等参照]。
かくして、本発明モノクローナル抗体を用いれば、簡便
且つ高精度に検体中のGM−CSF乃至IL−3反応性
単球細胞を同定及び測定できる。
且つ高精度に検体中のGM−CSF乃至IL−3反応性
単球細胞を同定及び測定できる。
かかる本発明モノクローナル抗体を利用した精製系並び
に測定系の設定、その改変乃至応用は当業者にとり自明
である。
に測定系の設定、その改変乃至応用は当業者にとり自明
である。
発明の効果
本発明によれば、GM−CSF乃至IL−3刺激ヒト単
球細胞より産生される新規な単球表面に発現する抗原及
び該単球表面に発現する抗原に特異的に反応する新規な
モノクローナル抗体が提供される。該モノクローナル抗
体は、例えばリウマチ等の炎症性疾患等の診断乃至治療
に有用である。
球細胞より産生される新規な単球表面に発現する抗原及
び該単球表面に発現する抗原に特異的に反応する新規な
モノクローナル抗体が提供される。該モノクローナル抗
体は、例えばリウマチ等の炎症性疾患等の診断乃至治療
に有用である。
以下、本発明を更に詳しく説明するため実施例を挙げる
が、本発明は之等に限定されるものではない。
が、本発明は之等に限定されるものではない。
実施例 1
モノクローナル抗体の製造
単球の分離は、健常人の末梢血を濃縮した白血球からリ
ンパ球分離培養液(Lymphocytesepara
tion medium : LSM、リットン自パイ
オネティクス社製)を用いた密度勾配遠心法にて、末梢
血単核球を分離後、これを更にベックマン(Beckm
an)社製JE−5,00−ターを用イ、カウンターフ
ロー遠心溶出法(Counterflowcentri
fugal elutrition : CCE法)ニ
ヨリ、リンパ球と単球とに分離した[Akio 0ku
bo、 et al、。
ンパ球分離培養液(Lymphocytesepara
tion medium : LSM、リットン自パイ
オネティクス社製)を用いた密度勾配遠心法にて、末梢
血単核球を分離後、これを更にベックマン(Beckm
an)社製JE−5,00−ターを用イ、カウンターフ
ロー遠心溶出法(Counterflowcentri
fugal elutrition : CCE法)ニ
ヨリ、リンパ球と単球とに分離した[Akio 0ku
bo、 et al、。
Cancer Re5earch、 49.265−
270 (1989)]。
270 (1989)]。
上記により、リンパ球濃縮フラクションと単球濃縮フラ
クションとを、それぞれ2000tpmで12〜16z
11/分と17〜20117分との画分として集めた。
クションとを、それぞれ2000tpmで12〜16z
11/分と17〜20117分との画分として集めた。
上記単球濃縮フラクションの純度は、形態的な試験と非
特異的な酵素染色により、90%以上であると判定され
、またリンパ球濃縮フラクションの純度は同様にして9
9%以上と判定された。
特異的な酵素染色により、90%以上であると判定され
、またリンパ球濃縮フラクションの純度は同様にして9
9%以上と判定された。
次に上記で得た単球細胞を熱不活性化10%牛脂児血清
(F CS)加RPMI−1640培養液(ギブコ(G
IBCO)社製)にゲンタマイシン4o■/lを加えた
培養液(以下これをrCRPMI−1640Jと略称す
る)にて培養した。
(F CS)加RPMI−1640培養液(ギブコ(G
IBCO)社製)にゲンタマイシン4o■/lを加えた
培養液(以下これをrCRPMI−1640Jと略称す
る)にて培養した。
以下の試験において培養細胞は指数増殖期にあるものを
用いた。
用いた。
新鮮分離細胞を5X105個/ zlの濃度にてCRP
MI−1640中に懸濁させ、サイト力インの存在下に
ポリプロピレンチューブ(ファルコン社製)中で37℃
、5%CO2下に培養した。
MI−1640中に懸濁させ、サイト力インの存在下に
ポリプロピレンチューブ(ファルコン社製)中で37℃
、5%CO2下に培養した。
上記により、GM−CSF (リコンビナントヒ)GM
−CSF、特異活性9X106U/■:ジエネティク社
製)100U/z/をヒト単球細胞に添加して4日間培
養したものの内、lX107個を、B A L B /
c Jマウス(雄)10週船灯フレアジャパン(C1
ea Japan)社製)の腹腔内に2週間間隔で3回
投与して免疫した。
−CSF、特異活性9X106U/■:ジエネティク社
製)100U/z/をヒト単球細胞に添加して4日間培
養したものの内、lX107個を、B A L B /
c Jマウス(雄)10週船灯フレアジャパン(C1
ea Japan)社製)の腹腔内に2週間間隔で3回
投与して免疫した。
更に細胞融合の2日前にGM−CSFにて刺激された単
球細胞5X106個を静脈内投与した。
球細胞5X106個を静脈内投与した。
かくして免疫されたマウスの牌細胞を摘出し、37℃に
加温したCRPMI−1640で3回洗浄した。
加温したCRPMI−1640で3回洗浄した。
マウス骨髄腫細胞株p 3− [J l (Curre
ntTopics in Microbiology
and Immunology、 81゜1−7 (
197B))を、同様に洗浄後、上記牌細胞と該腫瘍細
胞とを10=1の割合で用い且つポリエチレングリコー
ル1500 (ベーリンガー・マンハイム社製)を用い
て2等細胞を細胞融合させた。
ntTopics in Microbiology
and Immunology、 81゜1−7 (
197B))を、同様に洗浄後、上記牌細胞と該腫瘍細
胞とを10=1の割合で用い且つポリエチレングリコー
ル1500 (ベーリンガー・マンハイム社製)を用い
て2等細胞を細胞融合させた。
次に上記で得た融合細胞(ハイブリドーマ)を24ウエ
ルプレート(ファルコン社)の2−メルカプトエタノー
ル5X10 Mを含むCRPMI−1640培養液中
に播き、37℃、5%co2.100%湿度の条件でイ
ンキュベーター内で培養した。その後、HAT培地(ヒ
ボキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含むCR
PMI−1640培養液)を加えてハイブリドーマを選
別した。
ルプレート(ファルコン社)の2−メルカプトエタノー
ル5X10 Mを含むCRPMI−1640培養液中
に播き、37℃、5%co2.100%湿度の条件でイ
ンキュベーター内で培養した。その後、HAT培地(ヒ
ボキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含むCR
PMI−1640培養液)を加えてハイブリドーマを選
別した。
そのハイブリドーマの上清を、GM−CSFで4日間培
養された単球との反応性を見る間接蛍光抗体法にてスク
リーニングした。
養された単球との反応性を見る間接蛍光抗体法にてスク
リーニングした。
このスクリーニングにより、陽性ウェル中に反応し、陰
性ウェルに反応しないものを選んだ。尚、陽性ウェルは
GM−CSFで培養した単球細胞の入ったものであり、
陰性ウェルはGM−CSFなしで培養したウェルである
。
性ウェルに反応しないものを選んだ。尚、陽性ウェルは
GM−CSFで培養した単球細胞の入ったものであり、
陰性ウェルはGM−CSFなしで培養したウェルである
。
かくして選ばれたハイブリドーマを、限界希釈法により
クローニングして、目的とする本発明モノクローナル抗
体を産生ずるハイブリドーマ5株を得た。
クローニングして、目的とする本発明モノクローナル抗
体を産生ずるハイブリドーマ5株を得た。
尚、上記間接蛍光抗体法は、上記ハイブリドーマの上清
又は腹水からプロティンAにて精製されたものを細胞懸
濁液中で4℃で30分間反応させた後、細胞をPBS
(リン酸緩衝液)にて洗浄し、更に山羊抗マウスIg(
G+M)抗体(イムノチック社製)で4℃で30分間処
理し、再びPBSにて洗浄後、FACSスキャン(ベク
トンーディキンソン社)にて、蛍光強度を測定した。
又は腹水からプロティンAにて精製されたものを細胞懸
濁液中で4℃で30分間反応させた後、細胞をPBS
(リン酸緩衝液)にて洗浄し、更に山羊抗マウスIg(
G+M)抗体(イムノチック社製)で4℃で30分間処
理し、再びPBSにて洗浄後、FACSスキャン(ベク
トンーディキンソン社)にて、蛍光強度を測定した。
かくして、所望の反応特異性を有する本発明モノクロー
ナル抗体産生ハイブリドーマを得た。之等はそれぞれr
TOMs−1」〜rTOMs−5Jと命名された。
ナル抗体産生ハイブリドーマを得た。之等はそれぞれr
TOMs−1」〜rTOMs−5Jと命名された。
(1)上記で得られたクローンNo、TOMS−1〜同
TOMS−5のそれぞれを、CRPMT−1640培地
にて、5%C02条件下で、37℃で96時間培養した
。培養液を300Orpm。
TOMS−5のそれぞれを、CRPMT−1640培地
にて、5%C02条件下で、37℃で96時間培養した
。培養液を300Orpm。
10分間遠心分離して、目的のモノクローナル抗体を含
む培養上清を得た。
む培養上清を得た。
得られたクローンの内の一株(本発明抗体産生ハイブリ
ドーマTOMS−1)を選定した。
ドーマTOMS−1)を選定した。
該モノクローナル抗体産生細胞は、工業技術院微生物工
業技術研究所にrTOMs−IJなる表示で寄託されて
おり、その寄託番号は微工研菌寄託第11767号(F
ERM P−11767)である。
業技術研究所にrTOMs−IJなる表示で寄託されて
おり、その寄託番号は微工研菌寄託第11767号(F
ERM P−11767)である。
(2) また、上記クローンNo、TOMS−1の1
×106個を、予めブリスタン(アルドリッチ社製)を
接種しておいたB A L B / c J系マウスに
腹腔内投与した。10〜14日後、蓄積された腹水を採
取し、本発明モノクローナル抗体を含む腹水を得た。
×106個を、予めブリスタン(アルドリッチ社製)を
接種しておいたB A L B / c J系マウスに
腹腔内投与した。10〜14日後、蓄積された腹水を採
取し、本発明モノクローナル抗体を含む腹水を得た。
該腹水より、抗体精製キラ) (MOPS Kit ;
バイオ・ラッド社製)を用いて精製抗体TOMS−1を
得た。
バイオ・ラッド社製)を用いて精製抗体TOMS−1を
得た。
以下、上記で得られた本発明モノクローナル抗体の特性
を実施例2として示す。
を実施例2として示す。
実施例 2
■ 抗体のサブクラス
マウスモノクローナル抗体サブクラス同定用キット(セ
ロチック社製)を用いて、本発明抗体のサブクラスを決
定した。
ロチック社製)を用いて、本発明抗体のサブクラスを決
定した。
その結果、本発明抗体のサブクラスはIgG□であった
。
。
■ 抗体産生レベル
実施例1の(1)で得られた培養上清を遠心分離し、上
清をCRPMI−1640培地にて、37℃、5%C0
2の条件下で7日間インビトロ培養を行なった。
清をCRPMI−1640培地にて、37℃、5%C0
2の条件下で7日間インビトロ培養を行なった。
ハイブリドーマが最大細胞密度となったときの培養上清
中のTOMS−1のIgG量を測定した。
中のTOMS−1のIgG量を測定した。
その結果、IgG量は約10μg / yllであった
。
。
■ 免疫沈降法
1) IによるGM−CSF培養単球の標識及び
可溶化 GM−C3Fで4日間刺激処理した単球細胞(5X10
7個10.5y/PBS : Q、OIM。
可溶化 GM−C3Fで4日間刺激処理した単球細胞(5X10
7個10.5y/PBS : Q、OIM。
pH7,0)をヨードゲンのクロロホルム液(1mg
/ 71!−、ピース(Pierce)社製)を用いポ
リプロピレンチューブの底面に均一にコートし、0.5
mC1のNa T CNEN社製、NEZ−033
L40)を加え、室温にて10分間反応させて、細胞表
面をラベルした。次に0.5%ノニデートP−40(N
onidet P−40、NP−40: シ/7” ?
社製)で溶解し、その後、100OOGで15分間遠心
分離して、核等の非可溶化画分を除いた。
/ 71!−、ピース(Pierce)社製)を用いポ
リプロピレンチューブの底面に均一にコートし、0.5
mC1のNa T CNEN社製、NEZ−033
L40)を加え、室温にて10分間反応させて、細胞表
面をラベルした。次に0.5%ノニデートP−40(N
onidet P−40、NP−40: シ/7” ?
社製)で溶解し、その後、100OOGで15分間遠心
分離して、核等の非可溶化画分を除いた。
2)可溶化された溶解産物とTOMS−1、ウサギ抗マ
ウス1g1プロテインA−セファロースとの反応 125■標識された可溶性蛋白質をウサギ抗マウスIg
G(ベチルラボラトリーズ(BethylLabora
tories)社製)とプロティンAセファロース(バ
イオ・ラッド社製)と混合し、室温で2時間反応させた
。その後、遠心分離して上清を得た。
ウス1g1プロテインA−セファロースとの反応 125■標識された可溶性蛋白質をウサギ抗マウスIg
G(ベチルラボラトリーズ(BethylLabora
tories)社製)とプロティンAセファロース(バ
イオ・ラッド社製)と混合し、室温で2時間反応させた
。その後、遠心分離して上清を得た。
この上清は前もって非特異的に吸着する画分を除いたも
のである。
のである。
次に、この上清200μlを予め結合させておいたTO
MS−1+ウサギ抗マウスIg+プロティンA−セファ
ロース(111の10Bg / ylのTOMS−1と
1 zllの50倍希釈したウサギ抗マウスIgと50
μlのプロティンA−セファロースを室温で2時間以上
反応させたもの)と室温で2時間以上反応させた。その
後、PBSを加え、1000Gで15分間遠心分離して
上清を除いた。
MS−1+ウサギ抗マウスIg+プロティンA−セファ
ロース(111の10Bg / ylのTOMS−1と
1 zllの50倍希釈したウサギ抗マウスIgと50
μlのプロティンA−セファロースを室温で2時間以上
反応させたもの)と室温で2時間以上反応させた。その
後、PBSを加え、1000Gで15分間遠心分離して
上清を除いた。
この免疫沈降物を5DS−PAGEにかけて分析した。
その電気泳動条件は次の2通りである。
■ 還元条件:Q、0625Mトリス、2.3%SDS
、10%グリセロール、5 %メルカプトエタノール及び 0.4■/ Illブロモフェノールブルー(pH6,
8) ■ 非還元条件:Q、0625M)リス、2.3%SD
S、10%グリセロール及 び0.4■/ 71ブロモフエノール ブルー(pH6,8) 上記サンプロバッファーを100μlずっ加え、100
℃で3分間処理した。そして遠心分離して、上清20c
z/を、5DS−PAGE (5cmX8cm)(SD
S−ポリアクリルアミドゲル電気泳動)のサンプルとし
た。
、10%グリセロール、5 %メルカプトエタノール及び 0.4■/ Illブロモフェノールブルー(pH6,
8) ■ 非還元条件:Q、0625M)リス、2.3%SD
S、10%グリセロール及 び0.4■/ 71ブロモフエノール ブルー(pH6,8) 上記サンプロバッファーを100μlずっ加え、100
℃で3分間処理した。そして遠心分離して、上清20c
z/を、5DS−PAGE (5cmX8cm)(SD
S−ポリアクリルアミドゲル電気泳動)のサンプルとし
た。
上記の方法はミシェル(Mishell )らの方法に
従った[Mishell、 B、 B、 and Sh
igi、 S、 M、。
従った[Mishell、 B、 B、 and Sh
igi、 S、 M、。
5elected Methods in Ce1lu
lar Immunology、 39B−440(1
980) W、 H,Freeman and Com
pany、 5anFrancisco ]。
lar Immunology、 39B−440(1
980) W、 H,Freeman and Com
pany、 5anFrancisco ]。
上記電気泳動後、ゲルを乾燥用セロファンにはさみ乾燥
させた。この乾燥ゲルをX線フィルム(フジX線フィル
ム、フジフィルム社製)にて露光させて、オートラジオ
グラフィーを実施した。
させた。この乾燥ゲルをX線フィルム(フジX線フィル
ム、フジフィルム社製)にて露光させて、オートラジオ
グラフィーを実施した。
その結果を第1図に示す。
図において、A及びBは非還元状態のゾーンを、C及び
Dは還元状態のゾーンをそれぞれ示し、また図のA及び
Cは新鮮血液から単球を分離したもので、B及びDは単
球をGM−C3Fで刺激して得られた本発明TOMS−
1抗原のゾーンである。
Dは還元状態のゾーンをそれぞれ示し、また図のA及び
Cは新鮮血液から単球を分離したもので、B及びDは単
球をGM−C3Fで刺激して得られた本発明TOMS−
1抗原のゾーンである。
図の左横の数値は同時に用いた分子量マーカーの分子量
(単位k)を示す。
(単位k)を示す。
該図より、GM−CSF刺激処理した単球細胞が表出す
るTOMS−1抗原は、非還元及び還元物共に分子量が
約43kdに相当する位置に検出されていることが判り
、本発明モノクローナル抗体がこれと反応することが判
る。
るTOMS−1抗原は、非還元及び還元物共に分子量が
約43kdに相当する位置に検出されていることが判り
、本発明モノクローナル抗体がこれと反応することが判
る。
実施例 3
本発明単球表面に発現する抗原の性状
■ 本発明単球表面に発現する抗原の産生実施例1に準
じて、FACSスキャンを用いた間接蛍光抗体法により
本発明単球表面に発現する抗原の産生を以下の通り検討
した。
じて、FACSスキャンを用いた間接蛍光抗体法により
本発明単球表面に発現する抗原の産生を以下の通り検討
した。
即ち、CCE法により単球を分離後、単球をGM−CS
FI OOU/zlの量で処理して6日間培養して、抗
原の発現量を間接蛍光抗体法にて測定した。尚、非単球
部分と死細胞の混入物は前方及び側方散乱光により抽出
した。
FI OOU/zlの量で処理して6日間培養して、抗
原の発現量を間接蛍光抗体法にて測定した。尚、非単球
部分と死細胞の混入物は前方及び側方散乱光により抽出
した。
その結果、無処理単球からはTOMS−1抗原は検出さ
れなかった。然し、GM−C3Fで刺激処理し、1日間
培養した単球からは弱い発現の検出が認められた。また
3〜4日間の培養で上記発現はピークに達し、少なくと
も6日間高いピークが続いた。
れなかった。然し、GM−C3Fで刺激処理し、1日間
培養した単球からは弱い発現の検出が認められた。また
3〜4日間の培養で上記発現はピークに達し、少なくと
も6日間高いピークが続いた。
更にGM−CSFの添加量を、無添加と共に0 、 0
1 U/ y(!〜1000 U/ ytl(DC’f
SJ−T:変化すせて単球に添加し、4日間培地にて培
養し、TOMS−1抗原の発現量を検討した。
1 U/ y(!〜1000 U/ ytl(DC’f
SJ−T:変化すせて単球に添加し、4日間培地にて培
養し、TOMS−1抗原の発現量を検討した。
その結果、TOMS−1抗原の発現の検出は、GM−C
SFのIU/71以上の添加処理により検出され、10
0U/ylで最高となった。また、TOMS−1の産生
は100OU/zlにおいても一様に検出された。
SFのIU/71以上の添加処理により検出され、10
0U/ylで最高となった。また、TOMS−1の産生
は100OU/zlにおいても一様に検出された。
■ 本発明単球表面に発現する抗原の誘導に関して、蛋
白合成阻害剤による影響の検討 上記TOMS−1抗原発現の反応性から本発明者らはそ
の発現には新規な蛋白合成を必要とすると推測し、これ
を立証するために、GM−CS F(100TJ/yl
l)の存在下で3日間シクロへキシミド(cycloh
eximide )を、0. 1〜5μg/xlの濃度
で加えて、単球を培養し、TOMS−1抗原の発現を、
実施例3の■の間接蛍光抗体法に準じて試験した。
白合成阻害剤による影響の検討 上記TOMS−1抗原発現の反応性から本発明者らはそ
の発現には新規な蛋白合成を必要とすると推測し、これ
を立証するために、GM−CS F(100TJ/yl
l)の存在下で3日間シクロへキシミド(cycloh
eximide )を、0. 1〜5μg/xlの濃度
で加えて、単球を培養し、TOMS−1抗原の発現を、
実施例3の■の間接蛍光抗体法に準じて試験した。
死細胞の影響を回避するために、分析前に直接蛍光色素
(プロピジウムアイオダイド:PI−620:prop
idium 1odide : シグマ社製)2μg7
/11を加えた。そしてFACSスキャンにより染色さ
れた細胞を選び出した。
(プロピジウムアイオダイド:PI−620:prop
idium 1odide : シグマ社製)2μg7
/11を加えた。そしてFACSスキャンにより染色さ
れた細胞を選び出した。
その結果を第2図に示す。
読図の縦軸は蛍光強度(MFI)を、横軸はシクロへキ
シミド濃度(μg/11)をそれぞれ示す。
シミド濃度(μg/11)をそれぞれ示す。
読図よりGM−CSF刺激によるTOMS−1抗原の発
現誘発は、1μg、’r1以上のシクロへキシミド処理
により、完全にブロックされることが判った。即ち、T
OMS−1抗原の発現には新規の蛋白合成が必要である
ことが判った。
現誘発は、1μg、’r1以上のシクロへキシミド処理
により、完全にブロックされることが判った。即ち、T
OMS−1抗原の発現には新規の蛋白合成が必要である
ことが判った。
■ TOMS−1抗原の誘導に関する種々のサイトカイ
ンの影響 次に、他のサイト力インも単球に対してTOMS−1抗
原の発現を誘導するがどうかを検討した。
ンの影響 次に、他のサイト力インも単球に対してTOMS−1抗
原の発現を誘導するがどうかを検討した。
実施例3の■の方法と同様に間接蛍光抗体法により蛍光
強度を測定した。即ち、4日間、培地のみ及び下記各種
物質の所定量添加培地にて、それぞれ、血液単球をイン
キュベートし、TOMS−1抗原の発現を試験した。
強度を測定した。即ち、4日間、培地のみ及び下記各種
物質の所定量添加培地にて、それぞれ、血液単球をイン
キュベートし、TOMS−1抗原の発現を試験した。
(1) GM −CS F (100U/zl)、(
2)M−CSF (100OU/zA’、リコンビナン
ト・ヒト・マクロファージコロニー刺激因子(特異活性
0.8X106U/■:ジェネティク社製) (3) TL−4(100U/y/、リコンビナント
・ヒトインターロイキン−4:特異活性1×106U/
■:小野薬品株式会社製) (4) IL−3(1000//、リコンビナント・
ヒトインターロイキン−3:特異活性2〜4X106U
/■:ジェネティク社製) (5)IFN−γ(100U/y/、リコンビナント・
ヒトインターフェロン−γ:特異活性5.36xlO’
U/■:日本ロッシュ社製)尚、上記各物質は、内毒素
試験(リムルス・アメンボサイトアッセイ(カブトガニ
試験二感度限界0. 1μg/yA’:生化学工業社製
))の結果、毒素の混入の認められないことが確認され
た。
2)M−CSF (100OU/zA’、リコンビナン
ト・ヒト・マクロファージコロニー刺激因子(特異活性
0.8X106U/■:ジェネティク社製) (3) TL−4(100U/y/、リコンビナント
・ヒトインターロイキン−4:特異活性1×106U/
■:小野薬品株式会社製) (4) IL−3(1000//、リコンビナント・
ヒトインターロイキン−3:特異活性2〜4X106U
/■:ジェネティク社製) (5)IFN−γ(100U/y/、リコンビナント・
ヒトインターフェロン−γ:特異活性5.36xlO’
U/■:日本ロッシュ社製)尚、上記各物質は、内毒素
試験(リムルス・アメンボサイトアッセイ(カブトガニ
試験二感度限界0. 1μg/yA’:生化学工業社製
))の結果、毒素の混入の認められないことが確認され
た。
上記試験の結果を第3図に示す。
図においてA−Fは夫々次の物質に対応する。
A・・・(1)GM−CSF
B・・・(2)M−〇SF
C・−・(3) I L −4
D・・・(4) I L l 3
E・・・+5) I F N−γ
F・・・培地のみ
また各図における横軸はLog蛍光強度を、縦軸は細胞
数を示す。
数を示す。
読図より次のことが判る。即ち、TOMS−1抗原の発
現は培地のみの培養では単球から誘導されなかった。一
方GM−CSFとIL−3は単球よりTOMS−1抗原
を誘導した。しかし、IL−3のTOMS−1抗原の誘
導ハG M −CS F−+1:よるTOMS−1抗原
の誘導より弱かった。また、M−CSF、IL−4及び
IFN−γは単球を分化させたり、活性化させたりする
とされているが、TOMS−1抗原を誘導しなかった。
現は培地のみの培養では単球から誘導されなかった。一
方GM−CSFとIL−3は単球よりTOMS−1抗原
を誘導した。しかし、IL−3のTOMS−1抗原の誘
導ハG M −CS F−+1:よるTOMS−1抗原
の誘導より弱かった。また、M−CSF、IL−4及び
IFN−γは単球を分化させたり、活性化させたりする
とされているが、TOMS−1抗原を誘導しなかった。
更に読図には示していないが、TL−1α、I L−1
β、G−CSF (顆粒球−C3F)、TNF、IL−
6及びLPS (リポポリサッカライド)を用いて行な
った同様の試験において、之等各物質もまた単球からの
TOMS−1抗原の発現を誘導しないことを、本発明者
は確認している。
β、G−CSF (顆粒球−C3F)、TNF、IL−
6及びLPS (リポポリサッカライド)を用いて行な
った同様の試験において、之等各物質もまた単球からの
TOMS−1抗原の発現を誘導しないことを、本発明者
は確認している。
またGM−CSFにIFN−γを共存させると、TOM
S−1抗原の発現は抑制され、GM−CSFにI L−
4を共存させると同発現が亢進され、GM−CSFとI
L−3との併用でも相乗作用は認められないことが本
発明者らにより確認された。
S−1抗原の発現は抑制され、GM−CSFにI L−
4を共存させると同発現が亢進され、GM−CSFとI
L−3との併用でも相乗作用は認められないことが本
発明者らにより確認された。
■ 他の血球成分及びヒト株化樹立細胞系によるTOM
S−1抗原の発現についての検討TOMS−1抗原が単
球の以外の他の細胞系から発現されるか或は誘導される
かを検討するために、新たに単球、リンパ球、顆粒球及
び肺胞マクロファージを分離して、GM−CSF (1
00U/11)の存在下、4日間培養後、実施例3の■
と同様にして、間接蛍光抗体法により試験した。
S−1抗原の発現についての検討TOMS−1抗原が単
球の以外の他の細胞系から発現されるか或は誘導される
かを検討するために、新たに単球、リンパ球、顆粒球及
び肺胞マクロファージを分離して、GM−CSF (1
00U/11)の存在下、4日間培養後、実施例3の■
と同様にして、間接蛍光抗体法により試験した。
血球の分離は実施例1の(1)に記載のCCE法より行
なった。
なった。
LSMを用いた比重遠心法により分離された残存細胞中
の顆粒球は、3%デキストラン中に沈殿させることによ
り赤血球細胞から取り出し、そしてそれらをトリス〜N
H4C/中に入れ、残りの赤血球を溶解させた。顆粒球
調整の結果、純度は90%以上となった。
の顆粒球は、3%デキストラン中に沈殿させることによ
り赤血球細胞から取り出し、そしてそれらをトリス〜N
H4C/中に入れ、残りの赤血球を溶解させた。顆粒球
調整の結果、純度は90%以上となった。
肺胞マクロファージは、健常人より気管支ファイバース
コープ(オリンパスBFタイプ、オリンパス光学社製)
を用いた気管支肺胞洗浄により採取した。洗浄された細
胞の89%以上が肺胞マクロファージであった。
コープ(オリンパスBFタイプ、オリンパス光学社製)
を用いた気管支肺胞洗浄により採取した。洗浄された細
胞の89%以上が肺胞マクロファージであった。
上記の細胞は実施例1の■の細胞の培養方法に準じてC
RPMI−1640培地にて培養したものを使用した。
RPMI−1640培地にて培養したものを使用した。
その結果を、第3図と同様にして第4図に示す。
第4図中、左側の欄がいずれもGM−CSF無添加の新
鮮血球のみの対照(コントロール)群の蛍光強度を示し
ており、右側の欄がGM−C3Fで刺激処理した試験群
の同結果を示している。
鮮血球のみの対照(コントロール)群の蛍光強度を示し
ており、右側の欄がGM−C3Fで刺激処理した試験群
の同結果を示している。
また第4図中、第1列目が単球を、第2列目がリンパ球
を、第3列目が顆粒球を、また第4列目が肺胞マクロフ
ァージをそれぞれ示す。
を、第3列目が顆粒球を、また第4列目が肺胞マクロフ
ァージをそれぞれ示す。
上記第4図より、単球をGM−CSFで刺激処理したも
ののみTOMS−1抗原を発現し、新鮮分離血球群及び
単球を除く他のGM−CSF刺激処理群(リンパ球、顆
粒球及び肺胞マクロファージ)では、いずれもTOMS
−1抗原を発現しないことが明らかである。
ののみTOMS−1抗原を発現し、新鮮分離血球群及び
単球を除く他のGM−CSF刺激処理群(リンパ球、顆
粒球及び肺胞マクロファージ)では、いずれもTOMS
−1抗原を発現しないことが明らかである。
次に、種々のヒト血液から得られたヒト株化樹立細胞系
、或はヒト非血液から得られたヒト株化樹立細胞系に関
して、TOMS−1抗原の発現を検討した。
、或はヒト非血液から得られたヒト株化樹立細胞系に関
して、TOMS−1抗原の発現を検討した。
細胞の培養は上記と同様に行なった。培養細胞が指数増
殖期にあるものを間接蛍光抗体法により調べてTOMS
−1抗原の発現の有無を試験した。
殖期にあるものを間接蛍光抗体法により調べてTOMS
−1抗原の発現の有無を試験した。
ヒト株化樹立細胞系としては以下のものを使用した。
oHL−60(前骨髄性白血病二ATCCNo。
CCL 240 : Ga1lo、 R,C,、et
al、。
al、。
Blood、計、 713 (1979))oU937
(組織球白血病:ATCCNo。
(組織球白血病:ATCCNo。
CRL 15 g 3 ; C,Sundstrom
。
。
Int、 J、 Cancer、 17.565−57
7 (1976))OCCRF−CEM (急性Tリン
パ球性白血病:ATCCNo、CCL119:G。
7 (1976))OCCRF−CEM (急性Tリン
パ球性白血病:ATCCNo、CCL119:G。
E、 Foley et al、、 Cancer、
18.522−oDG−75(急性Bリンパ球性白血
病)OK562(ヒト慢性骨髄性白血病赤芽球=ATC
CNo、CCL243: Lozzio、 C,B、 et al、、 Bloo
d、 45゜oDaudi(ヒト・パーキット・リン
パ腫:ATCCNo、CCL213: E、 Klein et al、、 Cancer R
es、、 28゜1300−1310 (196B)) ・A349 (肺胞上皮癌:ATCCNo。
18.522−oDG−75(急性Bリンパ球性白血
病)OK562(ヒト慢性骨髄性白血病赤芽球=ATC
CNo、CCL243: Lozzio、 C,B、 et al、、 Bloo
d、 45゜oDaudi(ヒト・パーキット・リン
パ腫:ATCCNo、CCL213: E、 Klein et al、、 Cancer R
es、、 28゜1300−1310 (196B)) ・A349 (肺胞上皮癌:ATCCNo。
CCL 1 g 5 、D、 J、 Giard e
t al、。
t al、。
J、 Nat、 Cancer In5t、、 51.
1417−OPC−9(肺腺癌: Sakiyama、
S、 et al、。
1417−OPC−9(肺腺癌: Sakiyama、
S、 et al、。
Jap、 J、 Cancer Res、、77、96
5−969ONB−1(神経芽細胞腫:JCRB N
o。
5−969ONB−1(神経芽細胞腫:JCRB N
o。
0621 :三定清雄ほか、自律神経、す、 115
(1973)) 尚、上記でATCCはアメリカン・タイプ・コレクショ
ンであり、J CRBは国立衛生研究所の細胞バンクの
ことである。
(1973)) 尚、上記でATCCはアメリカン・タイプ・コレクショ
ンであり、J CRBは国立衛生研究所の細胞バンクの
ことである。
上記の結果、試験した全てのヒト株化樹立細胞系で、G
M−C3F刺激処理の有無にかかわらず、TOMS−1
抗原の発現は検出されなかった。
M−C3F刺激処理の有無にかかわらず、TOMS−1
抗原の発現は検出されなかった。
第1図は、本発明モノクローナル抗体TOMS=1と、
本発明単球表面に発現する抗原70MS−1抗原との反
応のウェスタンブロッティング分析結果を示す図面に代
わる写真である。 第2図は、本発明単球表面に発現する抗原であるTOM
S−1抗原の発現と蛋白合成阻害剤との関係を示す間接
蛍光抗体法の結果を示すグラフである。 第3図は、本発明単球表面に発現する抗原であるTOM
S−1抗原の誘導に関する種々のサイトカインの影響に
ついての間接蛍光抗体法による結果を示すグラフである
。 第4図は、各種血球成分による本発明単球表面に発現す
る抗原70MS−1抗原の発現についての間接蛍光抗体
法による結果を示すグラフである。 (以 上) 第1図 一ζ−1−一へ1、−一一踊、−へ−)−\)\−−−
AB CD 第2図 (−IJ1〜 シクロへキシミド(ug/ml) 第3図 宏た光度 第4図 析懸 GM−C5F軌激 !L凭度
本発明単球表面に発現する抗原70MS−1抗原との反
応のウェスタンブロッティング分析結果を示す図面に代
わる写真である。 第2図は、本発明単球表面に発現する抗原であるTOM
S−1抗原の発現と蛋白合成阻害剤との関係を示す間接
蛍光抗体法の結果を示すグラフである。 第3図は、本発明単球表面に発現する抗原であるTOM
S−1抗原の誘導に関する種々のサイトカインの影響に
ついての間接蛍光抗体法による結果を示すグラフである
。 第4図は、各種血球成分による本発明単球表面に発現す
る抗原70MS−1抗原の発現についての間接蛍光抗体
法による結果を示すグラフである。 (以 上) 第1図 一ζ−1−一へ1、−一一踊、−へ−)−\)\−−−
AB CD 第2図 (−IJ1〜 シクロへキシミド(ug/ml) 第3図 宏た光度 第4図 析懸 GM−C5F軌激 !L凭度
Claims (3)
- (1)GM−CSF及び/又はIL−3によって刺激さ
れたヒト単球細胞に発現することを特徴とする単球表面
に発現する抗原。 - (2)ウェスタンブロット法による分子量が43kdで
あることを特徴とする請求項(1)に記載の表面抗原。 - (3)請求項(1)に記載の単球表面に発現する抗原に
対するモノクローナル抗体。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2319606A JPH04187084A (ja) | 1990-11-22 | 1990-11-22 | 単球表面に発現する抗原及び該抗原に対するモノクローナル抗体 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2319606A JPH04187084A (ja) | 1990-11-22 | 1990-11-22 | 単球表面に発現する抗原及び該抗原に対するモノクローナル抗体 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04187084A true JPH04187084A (ja) | 1992-07-03 |
Family
ID=18112153
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2319606A Pending JPH04187084A (ja) | 1990-11-22 | 1990-11-22 | 単球表面に発現する抗原及び該抗原に対するモノクローナル抗体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH04187084A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1998024906A3 (en) * | 1996-12-06 | 1998-08-06 | Schering Corp | Isolated mammalian monocyte cell genes; related reagents |
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