JPH04117299A - 細菌検出方法 - Google Patents
細菌検出方法Info
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- JPH04117299A JPH04117299A JP23540190A JP23540190A JPH04117299A JP H04117299 A JPH04117299 A JP H04117299A JP 23540190 A JP23540190 A JP 23540190A JP 23540190 A JP23540190 A JP 23540190A JP H04117299 A JPH04117299 A JP H04117299A
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、細菌を寒天培地上で培養し、還元系発色試薬
を用いて検出する方法に関する。
を用いて検出する方法に関する。
[従来技術]
食品及び医療業界等において、細菌の生菌数を測定する
ことは食品及び関連設備等環境全般の細菌による汚染状
況を知ると共に、食中毒の予防ならびに衛生管理、指導
の上で重要である。
ことは食品及び関連設備等環境全般の細菌による汚染状
況を知ると共に、食中毒の予防ならびに衛生管理、指導
の上で重要である。
従来、細菌の生菌数を測定する方法としては、標準寒天
培地等の固形培地を用いて検体がら採取した細菌を培養
し、出現したコロニーを肉眼で測定する方法等がある。
培地等の固形培地を用いて検体がら採取した細菌を培養
し、出現したコロニーを肉眼で測定する方法等がある。
また、コロニーの測定を容易にするために培地中に還元
系発色試薬、例えば2.3.5− トリフェニルテトラ
ゾリウムクロライド(TTC)等を添加して、細菌の産
生する脱水素酵素により発色試薬が還元されコロニーが
出現した部分を赤紫色に呈色させてコロニーを測定する
方法も知られている。
系発色試薬、例えば2.3.5− トリフェニルテトラ
ゾリウムクロライド(TTC)等を添加して、細菌の産
生する脱水素酵素により発色試薬が還元されコロニーが
出現した部分を赤紫色に呈色させてコロニーを測定する
方法も知られている。
しかしながら、従来用いられている検査用固形培地では
、細菌の培養に20〜48時間の長時間を要するために
、迅速な検査が要求される実際の検査には十分対応でき
ないという大きな問題点があった。また、細菌の検出を
より容易にするために添加されている発色試薬の中には
、細菌の増殖を阻害する作用があるものや色調変化が鮮
明でないものもあり、迅速な測定には余り好ましくない
ことも分かっている。例えば、TTCは、培地に添加し
た場合コロニーが赤紫色を呈して測定し易い利点がある
が、反面細菌の増殖を若干阻害する作用がある。特に、
ブドウ球菌等のグラム陽性球菌に対して阻害作用が著し
いことが分かっている。
、細菌の培養に20〜48時間の長時間を要するために
、迅速な検査が要求される実際の検査には十分対応でき
ないという大きな問題点があった。また、細菌の検出を
より容易にするために添加されている発色試薬の中には
、細菌の増殖を阻害する作用があるものや色調変化が鮮
明でないものもあり、迅速な測定には余り好ましくない
ことも分かっている。例えば、TTCは、培地に添加し
た場合コロニーが赤紫色を呈して測定し易い利点がある
が、反面細菌の増殖を若干阻害する作用がある。特に、
ブドウ球菌等のグラム陽性球菌に対して阻害作用が著し
いことが分かっている。
[発明が解決しようとする問題点]
従って、本発明の目的は、細菌の培養が短時間で行なえ
、かつ簡便で高感度に細菌を検出することができる細菌
の検査方法を提供することである。
、かつ簡便で高感度に細菌を検出することができる細菌
の検査方法を提供することである。
[問題点゛を解決するための手段コ
本発明者らは、鋭意研究の結果、トリブチケースソイ寒
天培地及び肉汁加寒天培地の混合培地で検体中の細菌を
培養させると、短時間で増殖させることができることを
見出し、本発明を完成した。
天培地及び肉汁加寒天培地の混合培地で検体中の細菌を
培養させると、短時間で増殖させることができることを
見出し、本発明を完成した。
すなわち、本発明は、トリプチケースソイ寒天培地及び
肉汁加寒天培地から成る寒天培地で細菌を培養した後、
還元系発色試薬を含有する支持体を該寒天培地上に重層
し、還元系発色試薬の色調の変化により細菌を検出する
ことを特徴とする細菌検出方法を提供する。
肉汁加寒天培地から成る寒天培地で細菌を培養した後、
還元系発色試薬を含有する支持体を該寒天培地上に重層
し、還元系発色試薬の色調の変化により細菌を検出する
ことを特徴とする細菌検出方法を提供する。
[発明の効果]
本発明の細菌検査方法により、細菌を簡便、迅速にかつ
高感度に検出することができる。また、広範囲の種類の
細菌を検出することが可能であるので一般的な検査には
非常に有用である。
高感度に検出することができる。また、広範囲の種類の
細菌を検出することが可能であるので一般的な検査には
非常に有用である。
[発明の詳細な説明]
本発明の細菌検出方法において用いる寒天培地(以下2
本寒天培地と言う)は、トリプチケースソイ寒天培地と
肉汁加寒天培地とを混合比9:l〜4:6、好ましくは
6.4〜5:5で混合したものを用いることができる。
本寒天培地と言う)は、トリプチケースソイ寒天培地と
肉汁加寒天培地とを混合比9:l〜4:6、好ましくは
6.4〜5:5で混合したものを用いることができる。
従来−射的に用いられている標準寒天培地と細菌の増殖
性を比較した場合、トリプチケースソイ寒天培地はコロ
ニー数は多いが個々のコロニーが小さいという欠点があ
り、肉汁加寒天培地は個々のコロニーは大きいがその数
が少ないという欠点を有していた。
性を比較した場合、トリプチケースソイ寒天培地はコロ
ニー数は多いが個々のコロニーが小さいという欠点があ
り、肉汁加寒天培地は個々のコロニーは大きいがその数
が少ないという欠点を有していた。
しかしながら、両培地を上記の割合で混合して得られる
本寒天培地は、コロニーの増殖性、大きさ共に細菌の検
出には十分なものである。
本寒天培地は、コロニーの増殖性、大きさ共に細菌の検
出には十分なものである。
さらに、本寒天培地には、細菌の増殖をさらに促進させ
て培養時間を短縮し、迅速に検査を行なうために細菌増
殖促進効果を有する物質を添加することができる。増殖
促進物質としては、従来用いられているビタミン類、T
CA回路関連物質、各種アミノ酸等を用いることができ
るが、本発明においてはピルビン酸ナトリウム、L−グ
ルタミンを用いることが特に好ましい。ピルビン酸ナト
リウムを添加する場合、添加濃度は好ましくは0001
〜0.05重量%、より好ましくは0.005〜0.0
1重量%である。添加濃度が0.0075重量%より高
くなると若干の増殖阻害が認められる。ピルビン酸ナト
リウムは寒天培地を調製する時に一緒に加えてから滅菌
することができる。また、L−グルタミンを添加する場
合は、添加濃度は好ましくは0.075〜0.1重量%
である。添加量が0.1重量%を越えるとL−グルタミ
ンが瀉解しにく(なるので好ましくない。し−グルタミ
ンは滅菌済の培地に無菌的に加えることができる。
て培養時間を短縮し、迅速に検査を行なうために細菌増
殖促進効果を有する物質を添加することができる。増殖
促進物質としては、従来用いられているビタミン類、T
CA回路関連物質、各種アミノ酸等を用いることができ
るが、本発明においてはピルビン酸ナトリウム、L−グ
ルタミンを用いることが特に好ましい。ピルビン酸ナト
リウムを添加する場合、添加濃度は好ましくは0001
〜0.05重量%、より好ましくは0.005〜0.0
1重量%である。添加濃度が0.0075重量%より高
くなると若干の増殖阻害が認められる。ピルビン酸ナト
リウムは寒天培地を調製する時に一緒に加えてから滅菌
することができる。また、L−グルタミンを添加する場
合は、添加濃度は好ましくは0.075〜0.1重量%
である。添加量が0.1重量%を越えるとL−グルタミ
ンが瀉解しにく(なるので好ましくない。し−グルタミ
ンは滅菌済の培地に無菌的に加えることができる。
本寒天培地は37〜38℃で7〜8時間培養することが
好ましい。8時間以上培養してもコロニー数にはほとん
ど変化が見られない。
好ましい。8時間以上培養してもコロニー数にはほとん
ど変化が見られない。
本発明において、本寒天培地で増殖し、目視で確認でき
ないコロニーを高感度に検出するために還元発色試薬を
含有させた支持体を培地上に載せ、細菌の産生ずる脱水
素酵素で還元発色試薬が還元され色調が変化することで
コロニーをより正確に測定することができる0本発明に
用いられる還元系試薬としては、TTC、レザズリンナ
トリウム、3−(p−ヨードフェニル)−2−(p−ニ
トロフェニル)−5−フェニル−2Hテトラゾリウムク
ロライド(INT)等を挙げることができる。中でもI
NTは色調変化(無色から赤紫色に変化する)が明瞭で
検出感度に優れているので最も好ましく用いられる。
ないコロニーを高感度に検出するために還元発色試薬を
含有させた支持体を培地上に載せ、細菌の産生ずる脱水
素酵素で還元発色試薬が還元され色調が変化することで
コロニーをより正確に測定することができる0本発明に
用いられる還元系試薬としては、TTC、レザズリンナ
トリウム、3−(p−ヨードフェニル)−2−(p−ニ
トロフェニル)−5−フェニル−2Hテトラゾリウムク
ロライド(INT)等を挙げることができる。中でもI
NTは色調変化(無色から赤紫色に変化する)が明瞭で
検出感度に優れているので最も好ましく用いられる。
還元系試薬は、吸水性のある支持体に適当な溶媒に溶解
して含浸させるかあるいは粉末状のものを接着剤で塗沫
して用いることができる。支持体としては、吸水性のあ
ろ紙又は合成樹脂性のフィルムが好ましく用いられるが
、これらに限定されるものではない。例えば、INTを
用いる場合、INTを0.1〜5 mg/+1の濃度に
水又は適当な緩衝液に溶解し、ろ紙に染み込ませた後乾
燥させて用いることができる。特に、INTをM/10
トリス塩酸緩衝液(pH8,O)に濃度0.8mg/w
+1で溶解して用いる時、最も高感度に細菌を検出する
ことができる。また、INTは粉末のまま乳鉢等で細か
くすりつぶした後、接着剤で合成樹脂性フィルムに塗沫
して用いることもできる。この場合、フィルム及び接着
剤の材質は還元性物質に対して不活性であれば構わない
が、アクリル系の接着剤や塩化ビニル系のフィルムを使
用し、フィルム当たり10〜100 tcg7cm”
、好ましくは30ug/cm”塗沫するのが望ましい。
して含浸させるかあるいは粉末状のものを接着剤で塗沫
して用いることができる。支持体としては、吸水性のあ
ろ紙又は合成樹脂性のフィルムが好ましく用いられるが
、これらに限定されるものではない。例えば、INTを
用いる場合、INTを0.1〜5 mg/+1の濃度に
水又は適当な緩衝液に溶解し、ろ紙に染み込ませた後乾
燥させて用いることができる。特に、INTをM/10
トリス塩酸緩衝液(pH8,O)に濃度0.8mg/w
+1で溶解して用いる時、最も高感度に細菌を検出する
ことができる。また、INTは粉末のまま乳鉢等で細か
くすりつぶした後、接着剤で合成樹脂性フィルムに塗沫
して用いることもできる。この場合、フィルム及び接着
剤の材質は還元性物質に対して不活性であれば構わない
が、アクリル系の接着剤や塩化ビニル系のフィルムを使
用し、フィルム当たり10〜100 tcg7cm”
、好ましくは30ug/cm”塗沫するのが望ましい。
本発明の細菌検査方法は、検体として食品関連では食材
、調理した食品、加工品、調理に使用する器具、器材、
調理に従事する人の手指等を対象として行なうことがで
きる。また、医療関連では、院内の机、床、患者、医療
従事者の手指等が挙げられる。検体が固体の場合、寒天
培地を直接密着させるか或は寒天培地を滑らせて細菌を
採取し、検体が液体状の場合は至適量を寒天に滴下した
後コンラージ棒で均一に拡散させて細菌を採取すること
ができる。
、調理した食品、加工品、調理に使用する器具、器材、
調理に従事する人の手指等を対象として行なうことがで
きる。また、医療関連では、院内の机、床、患者、医療
従事者の手指等が挙げられる。検体が固体の場合、寒天
培地を直接密着させるか或は寒天培地を滑らせて細菌を
採取し、検体が液体状の場合は至適量を寒天に滴下した
後コンラージ棒で均一に拡散させて細菌を採取すること
ができる。
次に、本発明の細菌検査方法を具体的に説明するが、こ
れに限られるものではない。
れに限られるものではない。
まず、トリプチケースソイ寒天培地、肉汁加寒天培地及
び細菌増殖促進物質としてピルビン酸ナトリウムを精製
水に加えて加熱滅菌した後、L−グルタミン溶液を無菌
的に添加してシ々−レに分注、放冷して固化する。寒天
培地は検体から細菌を採取し37〜38℃で7〜8時間
培養した後、シャーレを取り出してINTを含有させた
ろ紙を寒天培地上に重層して5分間放置する。シャーレ
の底からINTの色調変化を観察する。細菌が存在すれ
ばろ紙が無色から赤紫色に発色する。
び細菌増殖促進物質としてピルビン酸ナトリウムを精製
水に加えて加熱滅菌した後、L−グルタミン溶液を無菌
的に添加してシ々−レに分注、放冷して固化する。寒天
培地は検体から細菌を採取し37〜38℃で7〜8時間
培養した後、シャーレを取り出してINTを含有させた
ろ紙を寒天培地上に重層して5分間放置する。シャーレ
の底からINTの色調変化を観察する。細菌が存在すれ
ばろ紙が無色から赤紫色に発色する。
定量する場合は、細菌の存在を示す赤紫色の斑点を計数
し、コロニー数とする。
し、コロニー数とする。
「実施例コ
以下、本発明を実施例を挙げて具体的に説明するが、本
発明の実施例はこれらに限られるものではない。
発明の実施例はこれらに限られるものではない。
叉111ニ
トリプチケースソイ寒天培地(BBLマイクロバイオロ
ジーシステム社製)20g及び肉汁加寒天培地(オクソ
イド社製)20gを精製水IP!に加え121℃で15
分間加熱滅菌した後、シャーレ(直径3.5c+s )
に4.5w+1ずつ分注し、放冷固化させた。比較培地
として標準寒天培地(日水製薬株式会社製)35gを精
製水lI2に加え同様にして滅菌、分注した。36人の
両手指をそれぞれの寒天培地に擦り付けて菌を採取した
後、37℃で8時間培養した。シャーレを取り出し培地
上にINT含有フィルムを重層し5分間放置した後、出
現したコロニー数を数えた。シャーレ当たり10個以上
のコロニーが出現したものを陽性として各培地の歯検出
の陽性率を求めた。同様の試験を2度行なった。その結
果を表1に示す。
ジーシステム社製)20g及び肉汁加寒天培地(オクソ
イド社製)20gを精製水IP!に加え121℃で15
分間加熱滅菌した後、シャーレ(直径3.5c+s )
に4.5w+1ずつ分注し、放冷固化させた。比較培地
として標準寒天培地(日水製薬株式会社製)35gを精
製水lI2に加え同様にして滅菌、分注した。36人の
両手指をそれぞれの寒天培地に擦り付けて菌を採取した
後、37℃で8時間培養した。シャーレを取り出し培地
上にINT含有フィルムを重層し5分間放置した後、出
現したコロニー数を数えた。シャーレ当たり10個以上
のコロニーが出現したものを陽性として各培地の歯検出
の陽性率を求めた。同様の試験を2度行なった。その結
果を表1に示す。
なお、INT含有フィルムは日東電工社製白色フィルム
にINTを30μg/cm”の割合で塗沫したものを用
いた。
にINTを30μg/cm”の割合で塗沫したものを用
いた。
表1から明らかなように、本発明による方法での歯検出
陽性率は約56%、標準寒天培地を用いた場合は約35
%であり、本発明の方法が優れていることが分かる。
陽性率は約56%、標準寒天培地を用いた場合は約35
%であり、本発明の方法が優れていることが分かる。
表
叉IU九2
実施例1の本寒天培地に、ピルビン酸ナトリウムをそれ
ぞれ0.0.001.0.0(125,0,(1050
、0075,0,01,0,05重量%添加する以外は
実施例1と同様にして寒天培地を作製した。次に、予め
菌のコロニー形成単位fcFU/ff1llを約500
CFII/mlに滅菌食塩水で調整した指標菌1 (黄
色ブドウ球菌)、2(表皮ブドウ球菌)、3(表皮ブド
ウ球菌)を各々滅菌ろ紙(直径3 cm)に02m1ず
つ滴下し、該ろ紙を各寒天培地に密着させて菌を接種し
た後、37℃で8時間培養した。培養後、シャーレを取
り出し実施例1と同様にして出現したコロニー数を数え
、シャーレ3枚の平均値を求めた。その結果を表2に示
す。
ぞれ0.0.001.0.0(125,0,(1050
、0075,0,01,0,05重量%添加する以外は
実施例1と同様にして寒天培地を作製した。次に、予め
菌のコロニー形成単位fcFU/ff1llを約500
CFII/mlに滅菌食塩水で調整した指標菌1 (黄
色ブドウ球菌)、2(表皮ブドウ球菌)、3(表皮ブド
ウ球菌)を各々滅菌ろ紙(直径3 cm)に02m1ず
つ滴下し、該ろ紙を各寒天培地に密着させて菌を接種し
た後、37℃で8時間培養した。培養後、シャーレを取
り出し実施例1と同様にして出現したコロニー数を数え
、シャーレ3枚の平均値を求めた。その結果を表2に示
す。
表2からピルビン酸ナトリウムを添加することにより菌
の検出率が高くなることが分かる0反面ピルビン酸ナト
リウム濃度が0.075%より高くなると菌の増殖が若
干悪くなる傾向が見られた。
の検出率が高くなることが分かる0反面ピルビン酸ナト
リウム濃度が0.075%より高くなると菌の増殖が若
干悪くなる傾向が見られた。
表
叉11引旦
実施例1と同様にして調製、滅菌した寒天培地を55℃
に保温しておき、L−グルタミンを無菌的に0.0.0
75.0,01.005.0.1重量%ずつ添加、溶解
した後、各々シャーレ(直径3.5cm )に分注し放
冷同化した。得られた寒天培地は実施例2と同様にして
指標菌を接種、培養し、出現したコロニー数を数え、シ
ャーレ3枚の平均値を求めた。その結果を表3に示す。
に保温しておき、L−グルタミンを無菌的に0.0.0
75.0,01.005.0.1重量%ずつ添加、溶解
した後、各々シャーレ(直径3.5cm )に分注し放
冷同化した。得られた寒天培地は実施例2と同様にして
指標菌を接種、培養し、出現したコロニー数を数え、シ
ャーレ3枚の平均値を求めた。その結果を表3に示す。
表3より、L−グルタミンを添加することにより細菌の
増殖が促進されることが分かる。
増殖が促進されることが分かる。
表
実m
指標菌lのみを接種することを除いて実施例1と同様に
して寒天培地にて培養した。培養5.6.7.8.10
.15.24.48時間後にシャーレを取り出し、IN
T、TTC又はレザズリンナトリウム含有ろ紙を重層し
5分間放置した後、還元系発色試薬の色の変化又は目視
で判定してコロニー数を数え、シャーレ3枚の平均値を
求めた。なお、INT、TTC及びレザズリンナトリウ
ム含有ろ紙の調製は次のように行なった。
して寒天培地にて培養した。培養5.6.7.8.10
.15.24.48時間後にシャーレを取り出し、IN
T、TTC又はレザズリンナトリウム含有ろ紙を重層し
5分間放置した後、還元系発色試薬の色の変化又は目視
で判定してコロニー数を数え、シャーレ3枚の平均値を
求めた。なお、INT、TTC及びレザズリンナトリウ
ム含有ろ紙の調製は次のように行なった。
すなわち、M/10トリス塩酸緩衝液(pH8,0)に
INTを0.8+ng/ml 、TTCを0.8■g/
ml 、レザズリンナトリウムを0.32mg/+ol
の濃度で溶解した各液にろ紙を浸漬した。
INTを0.8+ng/ml 、TTCを0.8■g/
ml 、レザズリンナトリウムを0.32mg/+ol
の濃度で溶解した各液にろ紙を浸漬した。
結果を表4に示す。
還元系発色試薬としてINTを用いる時、細菌の検出感
度が最も良いことが分かる。
度が最も良いことが分かる。
表
叉Jl旦
実施例1で調製した寒天培地にピルビン酸ナトリウム0
.075%及びL−グルタミン0.1%を加えることを
除いて実施例4と同様にして指標菌lを接種、培養した
。比較寒天培地として実施例1で用いた標準寒天培地を
用いた。培養5.6.7.8.1O115,24,48
時間後にシャーレを取り出し、実施例1で使用したIN
T含有フィルムを重層し5分間放置した後、コロニーの
数を数え、シャーレ3枚の平均値を求めた。結果を表5
に示す。
.075%及びL−グルタミン0.1%を加えることを
除いて実施例4と同様にして指標菌lを接種、培養した
。比較寒天培地として実施例1で用いた標準寒天培地を
用いた。培養5.6.7.8.1O115,24,48
時間後にシャーレを取り出し、実施例1で使用したIN
T含有フィルムを重層し5分間放置した後、コロニーの
数を数え、シャーレ3枚の平均値を求めた。結果を表5
に示す。
本発明の検出方法を用いた方が細菌の増殖が早く、迅速
に細菌の検出ができることが分かる。
に細菌の検出ができることが分かる。
表
塞JJL旦
実施例5で調製した本寒天培地及び標準寒天培地で36
人の両手から菌を採取し、37℃で8時間培養した。培
養後、シャーレを取り出し実施例5で用いたINT含有
フィルムを重層して5分間放置した。出現したコロニー
の数を数え、シャーレ当たり10個以上のコロニーが出
現したものを陽性とした。同様の検査を2度行なった。
人の両手から菌を採取し、37℃で8時間培養した。培
養後、シャーレを取り出し実施例5で用いたINT含有
フィルムを重層して5分間放置した。出現したコロニー
の数を数え、シャーレ当たり10個以上のコロニーが出
現したものを陽性とした。同様の検査を2度行なった。
その結果を表6に示す。
本発明の検出方法での陽性率は67〜68%、標準寒天
培地を用いた方法での陽性率は33〜36%であり、本
発明の検出方法の方が細菌の検出率が高いことが分かる
。
培地を用いた方法での陽性率は33〜36%であり、本
発明の検出方法の方が細菌の検出率が高いことが分かる
。
表
実11引ユ
実施例5で調製した本寒天培地及び標準寒天培地に表7
に示す市販の各種食材を検体として菌を採取し37℃で
8時間培養した。培養後、シャーレを取り出し、実施例
5で用いたINT含有フィルムを重層して5分間放置し
た。出現したコロニーの数を数えた。結果を表7に示す
。
に示す市販の各種食材を検体として菌を採取し37℃で
8時間培養した。培養後、シャーレを取り出し、実施例
5で用いたINT含有フィルムを重層して5分間放置し
た。出現したコロニーの数を数えた。結果を表7に示す
。
表7から、本発明の検出方法の方がより細菌数を正確に
検出できることが分かる。
検出できることが分かる。
表
衷1u九旦
実施例6で調製した本寒天培地に表8に示す各種好気性
菌をブイヨンで培養し、シャーレ当たり100個程度の
菌数になるように希釈して接種した。37℃で8時間培
養した後、シャーレを取り出し、実施例5で用いたIN
T含有フィルムを重層して5分間放置した。出現したコ
ロニーの数を数えた。結果を表8に示す、なお、検出さ
れたコロニーの数により次のように検出感度を評価した
。
菌をブイヨンで培養し、シャーレ当たり100個程度の
菌数になるように希釈して接種した。37℃で8時間培
養した後、シャーレを取り出し、実施例5で用いたIN
T含有フィルムを重層して5分間放置した。出現したコ
ロニーの数を数えた。結果を表8に示す、なお、検出さ
れたコロニーの数により次のように検出感度を評価した
。
+十+:コロニー数50以上
++:コロニー数2数階5〜
49ココロー数11〜24
一:コロニー数10以下
表8から、本発明の検出方法は一般的に検査対象となる
好気性菌全てについて検出が可能であり、検出感度も高
い優れた方法であることが分かる。
好気性菌全てについて検出が可能であり、検出感度も高
い優れた方法であることが分かる。
Claims (5)
- (1)トリプチケースソイ寒天培地及び肉汁加寒天培地
から成る寒天培地で細菌を培養した後、還元系発色試薬
を含有する支持体を該寒天培地上に重層し、還元系発色
試薬の色調の変化により細菌を検出することを特徴とす
る細菌検出方法。 - (2)上記寒天培地中に細菌の増殖を促進する物質を含
有することを特徴とする請求項1記載の細菌検出方法。 - (3)細菌を増殖する物質がピルビン酸ナトリウム及び
L−グルタミンであり、添加濃度がそれぞれ0.001
〜0.05%、0.075〜0.1%であることを特徴
とする請求項2記載の細菌検出方法。 - (4)還元系発色試薬が3−(p−ヨードフェニル)−
2−(p−ニトロフェニル)−5−フェニル−2Hテト
ラゾリウムクロライドであることを特徴とする請求項1
ないし3のいずれか1項に記載の細菌検出方法。 - (5)還元系発色試薬を含有する支持体が吸水性のある
紙又は合成樹脂性フィルムであることを特徴とする請求
項1ないし4のいずれか1項に記載の細菌検出方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23540190A JPH04117299A (ja) | 1990-09-05 | 1990-09-05 | 細菌検出方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP23540190A JPH04117299A (ja) | 1990-09-05 | 1990-09-05 | 細菌検出方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04117299A true JPH04117299A (ja) | 1992-04-17 |
Family
ID=16985548
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP23540190A Pending JPH04117299A (ja) | 1990-09-05 | 1990-09-05 | 細菌検出方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH04117299A (ja) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6265203B1 (en) | 1995-12-27 | 2001-07-24 | Chisso Corporation | Microorganism culture material containing a water-soluble polymer layer and a porous matrix layer |
US6331429B1 (en) | 1996-07-17 | 2001-12-18 | Chisso Corporation | Culture medium for microorganisms |
DE19602345C2 (de) * | 1996-01-24 | 2002-12-12 | Biotest Ag | Verfahren zur Verbesserung des Wachstums und des kolorimetrischen Nachweises von Bakterien, Hefen, Pilzen oder Kokken |
JP2010529861A (ja) * | 2007-06-15 | 2010-09-02 | マイクロファージ・インコーポレーテッド | バクテリオファージ増幅を向上させた微生物の検出方法 |
WO2011132480A1 (ja) | 2010-04-19 | 2011-10-27 | Jnc株式会社 | 微生物検出用テトラゾリウム化合物、微生物検出用試薬および微生物の検出方法 |
-
1990
- 1990-09-05 JP JP23540190A patent/JPH04117299A/ja active Pending
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US6265203B1 (en) | 1995-12-27 | 2001-07-24 | Chisso Corporation | Microorganism culture material containing a water-soluble polymer layer and a porous matrix layer |
DE19602345C2 (de) * | 1996-01-24 | 2002-12-12 | Biotest Ag | Verfahren zur Verbesserung des Wachstums und des kolorimetrischen Nachweises von Bakterien, Hefen, Pilzen oder Kokken |
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JP2010529861A (ja) * | 2007-06-15 | 2010-09-02 | マイクロファージ・インコーポレーテッド | バクテリオファージ増幅を向上させた微生物の検出方法 |
WO2011132480A1 (ja) | 2010-04-19 | 2011-10-27 | Jnc株式会社 | 微生物検出用テトラゾリウム化合物、微生物検出用試薬および微生物の検出方法 |
US11022556B2 (en) | 2010-04-19 | 2021-06-01 | Jnc Corporation | Tetrazolium compound for detecting microorganisms, reagent for detecting microorganisms and method for detecting microorganisms |
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