JPH0318877B2 - - Google Patents
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- JPH0318877B2 JPH0318877B2 JP58091682A JP9168283A JPH0318877B2 JP H0318877 B2 JPH0318877 B2 JP H0318877B2 JP 58091682 A JP58091682 A JP 58091682A JP 9168283 A JP9168283 A JP 9168283A JP H0318877 B2 JPH0318877 B2 JP H0318877B2
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- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Description
本発明は、生物活性物質の固定化方法に関す
る。更に詳しくは、酵素、微生物などの生物活性
物質を樹脂成形品上に固形化する方法に関する。 従来から酵素、微生物などの生物活性物質を
種々の材料上に固定化し、例えばバイオセンサー
用膜、アフイニテイクロマトグラフイー、バイオ
リアクターなどの用途に用いることが行われてい
る。一方、やはり従来から人工血管、カテーテ
ル、人工臓器などの材料として用いられているポ
リテトラフルオロエチレンなどのフツ素樹脂に、
例えばウロキナーゼ酵素を固定すれば、生体材料
の問題点となつている抗血栓性の特性を付与する
ことができるなどの効果が期待される。即ち、耐
熱性、耐薬品性、酸素透過性などの性質ですぐれ
た特性を示すフツ素樹脂に、生物学的特性を更に
付加させることができれば、それの応用範囲は質
的にもまた量的にも飛躍的に拡大できることが期
待されるのである。 その一つの手段として、まずフツ素樹脂成形品
上にアミノ基を導入し、それを足掛りとして生物
活性物質をそこに固定させることが考えられる
が、元来含窒素基を有しない材料上に、通常の有
機合成反応によりアミノ基を導入するためには煩
雑な工程を必要とする。特にフツ素樹脂の如き材
料の場合には、そこにアミノ基を導入すること
は、有機合成反応によつてはほぼ不可能であり、
即ち例えばポリテトラフルオロエチレンでは、C
−F結合力が大きく、またF原子がC−C結合の
周囲を隈なく埋めていて、C−F結合に対する他
の原子や官能性基からの攻撃を防いでいるため、
アミノ基の導入は不可能である。従つて、アミノ
基を足掛りとして、そこに生物活性物質を固定化
させることも、当然不可能であつた。 本発明者は、有機合成反応に代る方法により、
フツ素樹脂成形品上にアミノ基を導入する方法に
ついて種々検討の結果、窒素ガス雰囲気下での低
温プラズマによりそこにアミノ基を結合させ、そ
れを足掛りとして生物活性物質を固定化させ得る
ことをここに身出した。 従つて、本発明は生物活性物質の固定化方法に
係り、この方法では、窒素ガス雰囲気下での低温
プラズマによりフツ素樹脂成形品表面にアミノ基
を結合させ、次いでこれをアミノ基と反応する多
官能性基を有する架橋剤と反応させた後、生物活
性物質溶液と接触させ、フツ素樹脂成形品上に生
物活性物質を固形化させることが行われる。 窒素ガス雰囲気下での低温プラズマ処理は、例
えば第1図にその概要が示されるような装置を用
いて行われる。即ち、真空ポンプ1、リークバル
ブ2およびメインバルブ3に接続され、真空計4
を備えたプラズマ反応器5内にフツ素樹脂成形品
6を収容し、反応器内を高真空にした状態で、窒
素ガスボンベ7からの窒素ガスを流量調節バルブ
8を通して反応器内に約0.01〜0.1Torrの圧力迄
導入し、高周波発生装置(13.56MHz)9および
マツチングユニツト10よりなる、電力約40〜70
ワツトの高周波電源を用いて、約15〜60℃で約1
〜20分間プラズマ反応器内にグロー放電を生ぜし
めることにより、フツ素樹脂成形品上にアミノ基
を結合せしめる。 この低温プラズマ処理によるアミノ基の生成
は、赤外分光光度計を用い、アミノ基の特有吸収
である1600cm-1付近の吸収度を測定することによ
り確認された。また、生成アミノ基の定量は、窒
素の元素分析により行われ、更にその最適処理条
件は、濡れ角を測定することにより求めることが
できる。 このようにして低温プラズマ処理により、その
表面にアミノ基を結合させたフツ素樹脂成形品
は、アミノ基と反応する多官能性基を有する架橋
剤と反応せしめる。かかる架橋剤としては、比較
的短かい構造を有する化合物が好ましく、具体的
には例えばグルタルアルデヒドなどのジアルデヒ
ド基含有化合物またはトルイレンジイソシアー
ト、4,4′−ジフエニルメタンジイソシアネー
ト、バイトリレンジイソシアネート、1,5−ナ
フタレンジイソシアネートなどのジイソシアネー
ト基含有化合物が用いられる。反応は、これらの
多官能性基含有化合物の溶液、一般には水溶液中
に一定時間プラズマ処理成形品を浸漬することに
より行われる。そして、アミノ基と次のように反
応するものと考えられる。 〜NH2+R(CHO)2→ 〜N=CHRCHO 〜NH2+R′(NCH)2→ 〜NHCONHR′NCO これらの架橋剤反応物は、水洗後生物活性物質
の溶液、一般には水性溶液中に浸漬させるなどし
て接触させる。そして、次のように結合して、固
定化されるものと考えられる。 生物活性物質 〜N=CHRCHO――――――――→ 〜N=CHRCH=N | 生物活性物質 生物活性物質 〜NHCONHR′NCOH――――――――→ 〜NHCONHR′NHCON | 生物活性物質 ここで、生物活性物質としては、酵素、微生物
などが用いられる。酵素としては、例えばグリコ
ースオキシダーゼ、アミノ酸オキシダーゼ、コレ
ステロールオキシダーゼ、ウリカーゼなどのオキ
シダーゼ類、ウリアーゼ、クレアキニナーゼ、グ
ルタミナーゼ、ペニシリナーゼ、カタラーゼ、パ
ーオキシダーゼ、インベルターゼ、ムタロター
ゼ、アミラーゼ、パパイン、トリプシンなどのプ
ロテアーゼ類、グリコースイソメラーゼ、ウロキ
ナーゼなどが挙げられる。また、微生物として
は、例えばシユードモナス・フルオレツセンス、
バチルス・ズブチリス、シユードモナス・エルギ
ノーサなどの細菌類、アスペルギルス・ニガー、
リゾプス・ホルモセンシスなどの糸状菌類、スト
レプトミセス・グリセウスなどの放線菌類、酵母
菌、かびなどが挙げられる。この他に、その構造
中にアミノ基を有するたん白質などの生物学的活
性を有する他の物質にも、本発明方法は適用され
る。 このようにして、本発明方法によつて膜状物、
球状物などのフツ素樹脂成形品上に固定させた生
物活性物質は、前述の既知の用途に用いられるば
かりではなく、抗血栓性人工血管、抗血栓性カテ
ーテル、抗血栓性人工臓器などにも、いずれも有
効に使用することができる。 次に、実施例について本発明を説明する。 実施例 1 市販の酸素透過性ポリテトラフルオロエチレン
樹脂膜(厚さ0.03mm、島津製作所製XD−3Aを用
いたX線回析法による結晶化度81.2%)につい
て、第1図に示される低温プラズマ発生装置を用
い、窒素ガス圧力0.05Torr、電力40〜60W、時
間1〜9分間の条件下で、プラズマ処理を行なつ
た。 樹脂膜上に結合されるアミノ基を形成させるた
めの最適条件を決定するために、プラズマ処理膜
について、逆浸透水を用いた濡れ角の測定を行な
つた。これは、樹脂膜上にアミノ基が結合してい
れば親水性が増し、樹脂膜の表面張力が減少し、
濡れ角が小さくなるからである。25℃、1分間の
測定条件下での濡れ角の測定を、種々のプラズマ
処理条件下で得られた樹脂について行ない、その
結果を次の表に示した。
る。更に詳しくは、酵素、微生物などの生物活性
物質を樹脂成形品上に固形化する方法に関する。 従来から酵素、微生物などの生物活性物質を
種々の材料上に固定化し、例えばバイオセンサー
用膜、アフイニテイクロマトグラフイー、バイオ
リアクターなどの用途に用いることが行われてい
る。一方、やはり従来から人工血管、カテーテ
ル、人工臓器などの材料として用いられているポ
リテトラフルオロエチレンなどのフツ素樹脂に、
例えばウロキナーゼ酵素を固定すれば、生体材料
の問題点となつている抗血栓性の特性を付与する
ことができるなどの効果が期待される。即ち、耐
熱性、耐薬品性、酸素透過性などの性質ですぐれ
た特性を示すフツ素樹脂に、生物学的特性を更に
付加させることができれば、それの応用範囲は質
的にもまた量的にも飛躍的に拡大できることが期
待されるのである。 その一つの手段として、まずフツ素樹脂成形品
上にアミノ基を導入し、それを足掛りとして生物
活性物質をそこに固定させることが考えられる
が、元来含窒素基を有しない材料上に、通常の有
機合成反応によりアミノ基を導入するためには煩
雑な工程を必要とする。特にフツ素樹脂の如き材
料の場合には、そこにアミノ基を導入すること
は、有機合成反応によつてはほぼ不可能であり、
即ち例えばポリテトラフルオロエチレンでは、C
−F結合力が大きく、またF原子がC−C結合の
周囲を隈なく埋めていて、C−F結合に対する他
の原子や官能性基からの攻撃を防いでいるため、
アミノ基の導入は不可能である。従つて、アミノ
基を足掛りとして、そこに生物活性物質を固定化
させることも、当然不可能であつた。 本発明者は、有機合成反応に代る方法により、
フツ素樹脂成形品上にアミノ基を導入する方法に
ついて種々検討の結果、窒素ガス雰囲気下での低
温プラズマによりそこにアミノ基を結合させ、そ
れを足掛りとして生物活性物質を固定化させ得る
ことをここに身出した。 従つて、本発明は生物活性物質の固定化方法に
係り、この方法では、窒素ガス雰囲気下での低温
プラズマによりフツ素樹脂成形品表面にアミノ基
を結合させ、次いでこれをアミノ基と反応する多
官能性基を有する架橋剤と反応させた後、生物活
性物質溶液と接触させ、フツ素樹脂成形品上に生
物活性物質を固形化させることが行われる。 窒素ガス雰囲気下での低温プラズマ処理は、例
えば第1図にその概要が示されるような装置を用
いて行われる。即ち、真空ポンプ1、リークバル
ブ2およびメインバルブ3に接続され、真空計4
を備えたプラズマ反応器5内にフツ素樹脂成形品
6を収容し、反応器内を高真空にした状態で、窒
素ガスボンベ7からの窒素ガスを流量調節バルブ
8を通して反応器内に約0.01〜0.1Torrの圧力迄
導入し、高周波発生装置(13.56MHz)9および
マツチングユニツト10よりなる、電力約40〜70
ワツトの高周波電源を用いて、約15〜60℃で約1
〜20分間プラズマ反応器内にグロー放電を生ぜし
めることにより、フツ素樹脂成形品上にアミノ基
を結合せしめる。 この低温プラズマ処理によるアミノ基の生成
は、赤外分光光度計を用い、アミノ基の特有吸収
である1600cm-1付近の吸収度を測定することによ
り確認された。また、生成アミノ基の定量は、窒
素の元素分析により行われ、更にその最適処理条
件は、濡れ角を測定することにより求めることが
できる。 このようにして低温プラズマ処理により、その
表面にアミノ基を結合させたフツ素樹脂成形品
は、アミノ基と反応する多官能性基を有する架橋
剤と反応せしめる。かかる架橋剤としては、比較
的短かい構造を有する化合物が好ましく、具体的
には例えばグルタルアルデヒドなどのジアルデヒ
ド基含有化合物またはトルイレンジイソシアー
ト、4,4′−ジフエニルメタンジイソシアネー
ト、バイトリレンジイソシアネート、1,5−ナ
フタレンジイソシアネートなどのジイソシアネー
ト基含有化合物が用いられる。反応は、これらの
多官能性基含有化合物の溶液、一般には水溶液中
に一定時間プラズマ処理成形品を浸漬することに
より行われる。そして、アミノ基と次のように反
応するものと考えられる。 〜NH2+R(CHO)2→ 〜N=CHRCHO 〜NH2+R′(NCH)2→ 〜NHCONHR′NCO これらの架橋剤反応物は、水洗後生物活性物質
の溶液、一般には水性溶液中に浸漬させるなどし
て接触させる。そして、次のように結合して、固
定化されるものと考えられる。 生物活性物質 〜N=CHRCHO――――――――→ 〜N=CHRCH=N | 生物活性物質 生物活性物質 〜NHCONHR′NCOH――――――――→ 〜NHCONHR′NHCON | 生物活性物質 ここで、生物活性物質としては、酵素、微生物
などが用いられる。酵素としては、例えばグリコ
ースオキシダーゼ、アミノ酸オキシダーゼ、コレ
ステロールオキシダーゼ、ウリカーゼなどのオキ
シダーゼ類、ウリアーゼ、クレアキニナーゼ、グ
ルタミナーゼ、ペニシリナーゼ、カタラーゼ、パ
ーオキシダーゼ、インベルターゼ、ムタロター
ゼ、アミラーゼ、パパイン、トリプシンなどのプ
ロテアーゼ類、グリコースイソメラーゼ、ウロキ
ナーゼなどが挙げられる。また、微生物として
は、例えばシユードモナス・フルオレツセンス、
バチルス・ズブチリス、シユードモナス・エルギ
ノーサなどの細菌類、アスペルギルス・ニガー、
リゾプス・ホルモセンシスなどの糸状菌類、スト
レプトミセス・グリセウスなどの放線菌類、酵母
菌、かびなどが挙げられる。この他に、その構造
中にアミノ基を有するたん白質などの生物学的活
性を有する他の物質にも、本発明方法は適用され
る。 このようにして、本発明方法によつて膜状物、
球状物などのフツ素樹脂成形品上に固定させた生
物活性物質は、前述の既知の用途に用いられるば
かりではなく、抗血栓性人工血管、抗血栓性カテ
ーテル、抗血栓性人工臓器などにも、いずれも有
効に使用することができる。 次に、実施例について本発明を説明する。 実施例 1 市販の酸素透過性ポリテトラフルオロエチレン
樹脂膜(厚さ0.03mm、島津製作所製XD−3Aを用
いたX線回析法による結晶化度81.2%)につい
て、第1図に示される低温プラズマ発生装置を用
い、窒素ガス圧力0.05Torr、電力40〜60W、時
間1〜9分間の条件下で、プラズマ処理を行なつ
た。 樹脂膜上に結合されるアミノ基を形成させるた
めの最適条件を決定するために、プラズマ処理膜
について、逆浸透水を用いた濡れ角の測定を行な
つた。これは、樹脂膜上にアミノ基が結合してい
れば親水性が増し、樹脂膜の表面張力が減少し、
濡れ角が小さくなるからである。25℃、1分間の
測定条件下での濡れ角の測定を、種々のプラズマ
処理条件下で得られた樹脂について行ない、その
結果を次の表に示した。
【表】
第2図のグラフは、30°〜80°の濡れ角を示す樹
脂膜を与えるプラズマ処理条件(電力および時
間)を等高線図として示したものである。 なお、濡れ角の測定と同様に、低温プラズマ処
理された樹脂膜の表面状態を走査型電子顕微鏡
(日立−明石製MSM−7)を用いて、10000倍に
拡大して観察したが、未処理樹脂膜のそれとの間
に違いはみられなかつた。 次に、プラズマ処理膜について、赤外分光光度
計(日立製作所製260−30を用いて、アミノ基の
定性試験を行なつた。上記表に示された処理膜
は、いずれも1600cm-1にアミノ基特有の吸収を示
した。そして、その吸収度は、上記濡れ角のデー
ターに対応し、No.7のものが透過度が最も小さか
つた。 また、ケルダール窒素分析装置(三菱化成製
KN−13)を用いて、窒素の元素分析法によるア
ミノ基の定量を行なつた。それによると、上記No.
7のものは、ポリテトラフルオロエチレン40mg当
り0.04μgのアミノ基が結合していることが判つ
た。 これらの試験結果から、アミノ基の結合が確認
されたポリテトラフルオロエチレン樹脂膜のNo.7
について、酵素の固定化操作が次の工程順を追つ
て行なわれた。即ち、こ樹脂膜を、トルイレンジ
イソシアネートを0.5%含有するn−ヘキサン溶
液中に5分間浸漬した後、逆浸透水で洗浄し、次
いで1mg/ml濃度のインベルダーゼ酵素(生化学
工業製品)の水溶液中に1時間浸漬した。その
後、水溶液から引き上げた膜をPH7のリン酸緩衝
液で十分洗浄した後、同じ緩衝液中に浸漬しなが
ら4℃で保存した。なお、リン酸緩衝液の調整に
はKH2PO4が用いられ、そのPHはNaOHで調整さ
れた。 固定化されたインベルターゼ量を、ゲルダール
窒素分析法で測定すると、ポリテトラフルオロエ
チレン40mg当り0.1μgのインベルターゼが結合し
ていることが判つた。 このポリテトラフルオルエチレン樹脂膜上に固
定されたインベルターゼ酵素が活性を保持してい
るか否かを、基質としてしよ糖を用いた所定のネ
ルソン−ソモギイ法で測定した。この場合のイン
ベルターゼ酵素の作用は、次の如くである。 しよ糖+水インベルターゼ ―――――――――→ ぶどう糖+果糖 そして、生成したぶどう糖を発色させ、紫外お
よび可視吸光光度計(島津製作所製UV−190)
で750nmの波長を測定することにより定量した。
その結果、非結合酵素の活性に対する相対的な活
性値は85%であつた。 この結果から、インベルターゼ酵素は、その活
性を殆んど損うことなく、ポリテトラフルオルエ
チレン樹脂膜上に固定されたことが確認された。 実施例 2 実施例1の酵素の固定化操作において、架橋剤
としてトルイレンジイソシアネートのn−ヘキサ
ン溶液の代りに5%グルタルアルデヒド水溶液が
用いられた。固定化されたインベルターゼの量
は、ポリテトラフルオロエチレン40mg当り0.07μ
gであり、また非結合酵素の活性値に対する相対
的な活性値は70.5%であつた。 実施例 3 実施例1において、インベルターゼ酵素の代り
に10mg/ml濃度の酵母(s.cerevisiae)水溶液を
用い、酵母の固定化が行なわれた。固定化された
酵母は、酸素消費を示し、活性を有していること
が確認された。 実施例 4 実施例2において、インベルターゼ酵素の代り
に、10mg/ml濃度の酵母(s.cerevisiae)水溶液
を用い、酵母の固定化が行なわれた(ただし、酵
母水溶液中への浸漬時間は5分間)。固定化され
た酵母は、酸素消費を示し、活性を有しているこ
とが確認された。
脂膜を与えるプラズマ処理条件(電力および時
間)を等高線図として示したものである。 なお、濡れ角の測定と同様に、低温プラズマ処
理された樹脂膜の表面状態を走査型電子顕微鏡
(日立−明石製MSM−7)を用いて、10000倍に
拡大して観察したが、未処理樹脂膜のそれとの間
に違いはみられなかつた。 次に、プラズマ処理膜について、赤外分光光度
計(日立製作所製260−30を用いて、アミノ基の
定性試験を行なつた。上記表に示された処理膜
は、いずれも1600cm-1にアミノ基特有の吸収を示
した。そして、その吸収度は、上記濡れ角のデー
ターに対応し、No.7のものが透過度が最も小さか
つた。 また、ケルダール窒素分析装置(三菱化成製
KN−13)を用いて、窒素の元素分析法によるア
ミノ基の定量を行なつた。それによると、上記No.
7のものは、ポリテトラフルオロエチレン40mg当
り0.04μgのアミノ基が結合していることが判つ
た。 これらの試験結果から、アミノ基の結合が確認
されたポリテトラフルオロエチレン樹脂膜のNo.7
について、酵素の固定化操作が次の工程順を追つ
て行なわれた。即ち、こ樹脂膜を、トルイレンジ
イソシアネートを0.5%含有するn−ヘキサン溶
液中に5分間浸漬した後、逆浸透水で洗浄し、次
いで1mg/ml濃度のインベルダーゼ酵素(生化学
工業製品)の水溶液中に1時間浸漬した。その
後、水溶液から引き上げた膜をPH7のリン酸緩衝
液で十分洗浄した後、同じ緩衝液中に浸漬しなが
ら4℃で保存した。なお、リン酸緩衝液の調整に
はKH2PO4が用いられ、そのPHはNaOHで調整さ
れた。 固定化されたインベルターゼ量を、ゲルダール
窒素分析法で測定すると、ポリテトラフルオロエ
チレン40mg当り0.1μgのインベルターゼが結合し
ていることが判つた。 このポリテトラフルオルエチレン樹脂膜上に固
定されたインベルターゼ酵素が活性を保持してい
るか否かを、基質としてしよ糖を用いた所定のネ
ルソン−ソモギイ法で測定した。この場合のイン
ベルターゼ酵素の作用は、次の如くである。 しよ糖+水インベルターゼ ―――――――――→ ぶどう糖+果糖 そして、生成したぶどう糖を発色させ、紫外お
よび可視吸光光度計(島津製作所製UV−190)
で750nmの波長を測定することにより定量した。
その結果、非結合酵素の活性に対する相対的な活
性値は85%であつた。 この結果から、インベルターゼ酵素は、その活
性を殆んど損うことなく、ポリテトラフルオルエ
チレン樹脂膜上に固定されたことが確認された。 実施例 2 実施例1の酵素の固定化操作において、架橋剤
としてトルイレンジイソシアネートのn−ヘキサ
ン溶液の代りに5%グルタルアルデヒド水溶液が
用いられた。固定化されたインベルターゼの量
は、ポリテトラフルオロエチレン40mg当り0.07μ
gであり、また非結合酵素の活性値に対する相対
的な活性値は70.5%であつた。 実施例 3 実施例1において、インベルターゼ酵素の代り
に10mg/ml濃度の酵母(s.cerevisiae)水溶液を
用い、酵母の固定化が行なわれた。固定化された
酵母は、酸素消費を示し、活性を有していること
が確認された。 実施例 4 実施例2において、インベルターゼ酵素の代り
に、10mg/ml濃度の酵母(s.cerevisiae)水溶液
を用い、酵母の固定化が行なわれた(ただし、酵
母水溶液中への浸漬時間は5分間)。固定化され
た酵母は、酸素消費を示し、活性を有しているこ
とが確認された。
第1図は、本発明で用いられる低温プラズマ処
理装置の概要を示すものである。また、第2図
は、プラズマ処理された樹脂膜に一定の濡れ角を
与えるプラズマ処理条件を等高線図として示した
ものである。 (符号の説明)、1……真空ポンプ、5……プ
ラズマ反応器、6……フツ素樹脂成形品、7……
窒素ボンベ、9……高周波発生装置。
理装置の概要を示すものである。また、第2図
は、プラズマ処理された樹脂膜に一定の濡れ角を
与えるプラズマ処理条件を等高線図として示した
ものである。 (符号の説明)、1……真空ポンプ、5……プ
ラズマ反応器、6……フツ素樹脂成形品、7……
窒素ボンベ、9……高周波発生装置。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 窒素ガス雰囲気下での低温プラズマによりフ
ツ素樹脂成形品表面にアミノ基を結合させ、次い
でこれをアミノ基と反応する多官能性基を有する
架橋剤と反応させた後、生物活性物質溶液と接触
させ、フツ素樹脂成形品上に生物活性物質を固定
させることを特徴とする生物活性物質の固定化方
法。 2 フツ素樹脂成形品としてポリテトラフルオロ
エチレン樹脂膜が用いられる特許請求の範囲第1
項記載の生物活性物質の固定化方法。 3 生物活性物質が酵素である特許請求の範囲第
1項記載の生物活性物質の固定化方法。 4 生物活性物質が微生物である特許請求の範囲
第1項記載の生物活性物質の固定化方法。 5 アミノ基反応性多官能性基含有架橋剤がジア
ルデヒド基含有化合物である特許請求の範囲第1
項、第3項または第4項記載の生物活性物質の固
定化方法。 6 アミノ基反応性多官能性基含有架橋剤がジイ
ソシアネート基含有化合物である特許請求の範囲
第1項、第3項または第4項記載の生物活性物質
の固定化方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58091682A JPS59216587A (ja) | 1983-05-25 | 1983-05-25 | 生物活性物質の固定化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58091682A JPS59216587A (ja) | 1983-05-25 | 1983-05-25 | 生物活性物質の固定化方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS59216587A JPS59216587A (ja) | 1984-12-06 |
JPH0318877B2 true JPH0318877B2 (ja) | 1991-03-13 |
Family
ID=14033261
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58091682A Granted JPS59216587A (ja) | 1983-05-25 | 1983-05-25 | 生物活性物質の固定化方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS59216587A (ja) |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2504087B2 (ja) * | 1987-12-16 | 1996-06-05 | エヌオーケー株式会社 | 生理活性物質固定化用担体の製造法 |
JPH01262794A (ja) * | 1988-04-09 | 1989-10-19 | Toshio Yoshimura | 繊維、フィルム状固定化酵素用担体 |
US5028657A (en) * | 1988-07-18 | 1991-07-02 | Industrial Research Technology Institute | Use of plasma to immobilize protein on polymeric surfaces |
JP2778048B2 (ja) * | 1988-10-07 | 1998-07-23 | エヌオーケー株式会社 | 生体物質固定化用担体の製造法 |
JPH0391481A (ja) * | 1989-08-18 | 1991-04-17 | Natl Sci Council | プラズマ表面処理法による固定化グルコース酸化酵素膜の製造法 |
-
1983
- 1983-05-25 JP JP58091682A patent/JPS59216587A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS59216587A (ja) | 1984-12-06 |
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