JPH0271755A - 人工肝臓装置 - Google Patents
人工肝臓装置Info
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- JPH0271755A JPH0271755A JP63224341A JP22434188A JPH0271755A JP H0271755 A JPH0271755 A JP H0271755A JP 63224341 A JP63224341 A JP 63224341A JP 22434188 A JP22434188 A JP 22434188A JP H0271755 A JPH0271755 A JP H0271755A
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Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は人工肝臓装置に関し、より具体的には、動物の
培養肝細胞を用いた人工肝臓装置に係る。
培養肝細胞を用いた人工肝臓装置に係る。
人工肝臓装置は生体の肝機能の代行若しくは補助を行な
う装置で、重篤な肝不全患者の治療用いられる。従来、
吸着型の人工肝臓、血漿分離型の人工肝臓、および両者
を組合せた人工肝臓装置が臨床的に用いられている。
う装置で、重篤な肝不全患者の治療用いられる。従来、
吸着型の人工肝臓、血漿分離型の人工肝臓、および両者
を組合せた人工肝臓装置が臨床的に用いられている。
吸着型の人工肝臓は、カラム内に活性炭等の吸着剤を充
填したものである。この装置は、血液中に含まれる低分
子量の有機物を比較的効率良く除去することができる。
填したものである。この装置は、血液中に含まれる低分
子量の有機物を比較的効率良く除去することができる。
しかし、中程度の分子量の有機物および高分子量の有機
物を高効率で除去することはできず、満足すべき解毒効
果が得られない。
物を高効率で除去することはできず、満足すべき解毒効
果が得られない。
血漿分離型の人工肝臓装置は、毒性物質を含む患者の血
漿を膜を介して分離し、新鮮な血漿を補液するものであ
る。この装置では、全血からの血漿分離効率に限界があ
るため、毒性物質を含む血漿の一部を再び患者の体内に
戻さなければならず、優れた浄化効率は得られない。ま
た、新鮮な血漿による置換が不可欠であるため、大量の
血漿補液を必要とする。このような大量の血漿補液は、
例えばAIDS等のウィルス感染が血漿製剤の大量使用
者に頻発していることに示されるように、二次感染の原
因になる。
漿を膜を介して分離し、新鮮な血漿を補液するものであ
る。この装置では、全血からの血漿分離効率に限界があ
るため、毒性物質を含む血漿の一部を再び患者の体内に
戻さなければならず、優れた浄化効率は得られない。ま
た、新鮮な血漿による置換が不可欠であるため、大量の
血漿補液を必要とする。このような大量の血漿補液は、
例えばAIDS等のウィルス感染が血漿製剤の大量使用
者に頻発していることに示されるように、二次感染の原
因になる。
上記のように、従来の人工肝臓装置による毒物除去効果
には限界がある。このため、例えば次に述べるように、
近年では動物の細胞を組込んだ代謝型の人工肝臓が広く
研究されている。
には限界がある。このため、例えば次に述べるように、
近年では動物の細胞を組込んだ代謝型の人工肝臓が広く
研究されている。
ソーヤ−(Soyer )等は、単離された肝細胞や肝
臓切片等を用い、直接血液潅流を行なう幾つかの人工肝
臓装置を提案した。しかし、この装置は血球と肝細胞と
の分離がうまくいかないため、実用化されていない。
臓切片等を用い、直接血液潅流を行なう幾つかの人工肝
臓装置を提案した。しかし、この装置は血球と肝細胞と
の分離がうまくいかないため、実用化されていない。
マツムラ(K、N、Matsumura )は、膜に挟
んだ肝細胞と血液とを間接的に接触させる装置を提案し
ている(米国特許第3734851号)。しかし、肝細
胞単独ではその長期に亙る生存が困難であるため、この
装置では肝細胞を用いたことによる治療効果は期待でな
い。
んだ肝細胞と血液とを間接的に接触させる装置を提案し
ている(米国特許第3734851号)。しかし、肝細
胞単独ではその長期に亙る生存が困難であるため、この
装置では肝細胞を用いたことによる治療効果は期待でな
い。
更に、濾過血漿を浮遊培養した肝細胞に直接接触させた
後、肝細胞と浄化された血漿とを濾別し、浄化血漿を患
者に戻す方法が提案されている(特開昭53−9449
6号)。しかし、肝細胞の機能は付着依存性であるため
、浮遊培養法においては肝細胞の機能を長期に亙って維
持するのが困難である。
後、肝細胞と浄化された血漿とを濾別し、浄化血漿を患
者に戻す方法が提案されている(特開昭53−9449
6号)。しかし、肝細胞の機能は付着依存性であるため
、浮遊培養法においては肝細胞の機能を長期に亙って維
持するのが困難である。
また、肝細胞の培養に必要な酸素を供給するための適当
な方法がない。例えば暴気による酸素供給を行なうと、
血清成分が混入しているため著しい泡立ちを生じてしま
う。
な方法がない。例えば暴気による酸素供給を行なうと、
血清成分が混入しているため著しい泡立ちを生じてしま
う。
本発明は上記事情に鑑みてなされたもので、その課題は
、肝細胞を組込んだ代謝型の人工肝臓装置において細胞
密度を高めると共に、細胞の活性および高機能を長期間
維持し、且つ実用上の取扱いの困難さを解消することに
ある。
、肝細胞を組込んだ代謝型の人工肝臓装置において細胞
密度を高めると共に、細胞の活性および高機能を長期間
維持し、且つ実用上の取扱いの困難さを解消することに
ある。
上記本発明の課題は、多孔質膜により隔てられた第−室
および第二室と、コラーゲンゲル内に封入された状態で
前記第−室に充填された肝細胞と、前記第二室に連通し
て設けられた血液流入口および血液流出口とを具備した
人工肝臓装置によって達成される。
および第二室と、コラーゲンゲル内に封入された状態で
前記第−室に充填された肝細胞と、前記第二室に連通し
て設けられた血液流入口および血液流出口とを具備した
人工肝臓装置によって達成される。
本発明においては、肝細胞と共に、肝臓、肺、心臓真皮
由来の線維芽細胞、血管内皮細胞等の間充繊細胞を前記
コラーゲンゲル中に封入するのが好ましい。
由来の線維芽細胞、血管内皮細胞等の間充繊細胞を前記
コラーゲンゲル中に封入するのが好ましい。
本発明に用いる多孔性膜としては、人工腎臓、血漿分離
器、人工肺、除菌フィルター等として既に実用化されて
いる多孔性膜を好適に用いることができる。これらの多
孔性膜は中空糸型と平膜型に大別されるが、その何れを
用いてもよい。この多孔性膜で隔離された一方のコンパ
ートメント内には、肝細胞を含有したコラーゲンゲルを
充填する。また、他方のコンパートメント内には血液を
潅流させる。
器、人工肺、除菌フィルター等として既に実用化されて
いる多孔性膜を好適に用いることができる。これらの多
孔性膜は中空糸型と平膜型に大別されるが、その何れを
用いてもよい。この多孔性膜で隔離された一方のコンパ
ートメント内には、肝細胞を含有したコラーゲンゲルを
充填する。また、他方のコンパートメント内には血液を
潅流させる。
前記コンパートメント内に細胞を含有したゲルマトリッ
クスを充填するには、ゲル形成能を有するコラーゲン溶
液中に肝細胞等を混合し、この液体をコンパートメント
内に注入してゲル化させる。
クスを充填するには、ゲル形成能を有するコラーゲン溶
液中に肝細胞等を混合し、この液体をコンパートメント
内に注入してゲル化させる。
また、本発明の好ましい態様においては、前記血液流入
口に直列に接続された模型酸素付加装置を設ける。
口に直列に接続された模型酸素付加装置を設ける。
本発明の人工肝臓装置において、肝細胞と共に封入され
るコラーゲンゲルは主に次の作用を果す。
るコラーゲンゲルは主に次の作用を果す。
■肝細胞の高密度培養を可能とする。この作用は、人工
肝臓装置のコンパクト化に寄与する。
肝臓装置のコンパクト化に寄与する。
■その内部に肝細胞を封入して安定化することにより、
肝細胞の長期に亙る活性維持を特徴とする特に、間充繊
細胞と共に封入したときに、より優れた活性維持効果が
得られる。
肝細胞の長期に亙る活性維持を特徴とする特に、間充繊
細胞と共に封入したときに、より優れた活性維持効果が
得られる。
■その内部に肝細胞を封入することにより、多孔性膜が
破損したときにも、肝細胞の血液中への漏出を防止する
。
破損したときにも、肝細胞の血液中への漏出を防止する
。
一方、本発明における多孔性膜の主な作用は次の通りで
ある。
ある。
■反応効率を低下させることなく、脆弱な高含水率のゲ
ルを機械的に補強する。
ルを機械的に補強する。
■脆弱な高含水率のゲルを、極細繊維状または極薄フィ
ルム状に成形することを可能にする。これによりゲルの
表面積/体積比を高め、反応効率を顕著に向上させる。
ルム状に成形することを可能にする。これによりゲルの
表面積/体積比を高め、反応効率を顕著に向上させる。
更に、本発明の好ましい態様において用いられる模型酸
素付加装置は、次の作用を奏する。即ち、この模型酸素
付加装置は、脱血ラインで採血された静脈血に酸素を添
加する。こうして、血液は酸素濃度が高められた状態で
人工肝臓装置の前記第二室に流入し、第−室に封入され
た肝細胞による代謝反応を受ける。その際、血液に付加
された酸素は多孔性膜を通って第二室から第一室内に拡
散し、第−室に封入された肝細胞に供給される。この酸
素供給によって、肝細胞の活性をより長期に亙って維持
することが可能となる。
素付加装置は、次の作用を奏する。即ち、この模型酸素
付加装置は、脱血ラインで採血された静脈血に酸素を添
加する。こうして、血液は酸素濃度が高められた状態で
人工肝臓装置の前記第二室に流入し、第−室に封入され
た肝細胞による代謝反応を受ける。その際、血液に付加
された酸素は多孔性膜を通って第二室から第一室内に拡
散し、第−室に封入された肝細胞に供給される。この酸
素供給によって、肝細胞の活性をより長期に亙って維持
することが可能となる。
本発明の人工肝臓装置では多孔質膜内に肝細胞が封入充
填され、解毒処理すべき血液または血漿は多孔質膜を介
した拡散により前記肝細胞と接触し、代謝を受ける構造
はなっている。このため、肝細胞と血液との接触を容易
に行なうことができ、且つ肝細胞が血液中に混入する危
険は完全に解消される。また、使用時における繁雑な操
作も解消される。
填され、解毒処理すべき血液または血漿は多孔質膜を介
した拡散により前記肝細胞と接触し、代謝を受ける構造
はなっている。このため、肝細胞と血液との接触を容易
に行なうことができ、且つ肝細胞が血液中に混入する危
険は完全に解消される。また、使用時における繁雑な操
作も解消される。
第1図は、本発明による人工肝臓装置の一実施例を示し
ている。同図(A)において、1は円筒状のハウジング
である。ハウジング1の両開口端には、下部蓋体2およ
び上部蓋体3が設置されている。下部蓋体2には液体注
入口4が、上部蓋対には液体導出口5が夫々設けられて
いる。また、ハウジング1には血液人口6および血液比
ロアが設けられている。更に、ハウジング1の内部には
多孔質膜からなる中空糸(図示せず)が多数配設されて
いる。これら中空糸の下端は一つに纏められて液体注入
口4に連通され、上端は同様にして液体導出口5に連通
されている。ハウジング1の内部で且つ中空糸の外側の
空隙(ハウジング空間)は、ハウジング1に設けた血液
人口6および血液比ロアに連通している。
ている。同図(A)において、1は円筒状のハウジング
である。ハウジング1の両開口端には、下部蓋体2およ
び上部蓋体3が設置されている。下部蓋体2には液体注
入口4が、上部蓋対には液体導出口5が夫々設けられて
いる。また、ハウジング1には血液人口6および血液比
ロアが設けられている。更に、ハウジング1の内部には
多孔質膜からなる中空糸(図示せず)が多数配設されて
いる。これら中空糸の下端は一つに纏められて液体注入
口4に連通され、上端は同様にして液体導出口5に連通
されている。ハウジング1の内部で且つ中空糸の外側の
空隙(ハウジング空間)は、ハウジング1に設けた血液
人口6および血液比ロアに連通している。
第1図(B)は、ハウジング1内部に配設された中空糸
の状態を拡大して示している。同図において、8は中空
糸を構成する多孔質膜である。この多孔性膜としては、
平均孔径5人〜10u1mのものが好ましい。多孔質膜
中空糸の内部にはコラーゲンゲル9が充填されている。
の状態を拡大して示している。同図において、8は中空
糸を構成する多孔質膜である。この多孔性膜としては、
平均孔径5人〜10u1mのものが好ましい。多孔質膜
中空糸の内部にはコラーゲンゲル9が充填されている。
コラーゲンの濃度は0.05〜0.3%、望ましくは0
.1〜0.2%である。
.1〜0.2%である。
コラーゲンゲル9の中には、肝細胞10が分散状態で封
入されている。肝細胞の封入密度は1×105個/u−
IXIG6個/rat!、より望ましくは4X105個
/11i〜5xto5個/Miである。好ましい・態様
においては、肝細胞以外に間充繊細胞を封入する。その
封入密度は0〜1x106個/IIJ11望ましくは5
X104個/IIJl〜1×106個/1ttit、よ
り望ましくは2X10う個/d〜4X 105個/gで
ある。中空糸の外側の大きい矢印は、ハウジング空間中
の血液の流れを示している。この血液中の基質が、図中
矢印で示すように多孔質膜を透過してゲル中の肝細胞に
まで拡散し、代謝解毒される。
入されている。肝細胞の封入密度は1×105個/u−
IXIG6個/rat!、より望ましくは4X105個
/11i〜5xto5個/Miである。好ましい・態様
においては、肝細胞以外に間充繊細胞を封入する。その
封入密度は0〜1x106個/IIJ11望ましくは5
X104個/IIJl〜1×106個/1ttit、よ
り望ましくは2X10う個/d〜4X 105個/gで
ある。中空糸の外側の大きい矢印は、ハウジング空間中
の血液の流れを示している。この血液中の基質が、図中
矢印で示すように多孔質膜を透過してゲル中の肝細胞に
まで拡散し、代謝解毒される。
次に、第2図を参照し、第1図に示した実施例の人工肝
臓装置を製造する方法を説明する。
臓装置を製造する方法を説明する。
第1図(A)で説明した構造の中空糸型フィルター11
を用意し、その液体注入口4にはバルブ12を介して調
整槽13を接続し、液体導出口5にはポンプ14を接続
する。調整槽13には、動物から分離した肝細胞、間充
繊細胞、コラーゲン溶液および培地を低温にて予め混合
しておく。この混合液をポンプ14で吸引し、中空糸型
フィルター11中に配設された多数の多孔質中空糸の内
部に充填した後、バルブ12を閉じる。次いで、中空糸
型フィルター11の血液人口6に接続した導管15、血
液比ロアに接続した導管16を通して培養液を潅流する
。その際、導管15には酸素付加器17を設け、潅流さ
れる培養液に酸素を添加する。酸素付加器17も、第1
図で説明したと同様の中空糸型フィルターからなり、酸
素供給装置18が接続されている。従って、導管20か
らポンプ19で送給された培養液は酸素付加器17で酸
素を添加された後、中空糸型フィルター11のハウジン
グ空間内に供給され、循環される。こうして、生理的温
度かつ酸素添加された好適な条件で前培養することによ
り、コラーゲンはゲル化し、ゲルに封入された活性の高
い肝細胞が維持される。なお、酸素付加器17に酸素源
としては、20〜60%の02と、0=1096の00
2と、残部の窒素とからなる混合物、望ましくは40〜
50%の02と、50%のCO2と、残部の窒素とから
なる混合ガスを用いるのがよい。
を用意し、その液体注入口4にはバルブ12を介して調
整槽13を接続し、液体導出口5にはポンプ14を接続
する。調整槽13には、動物から分離した肝細胞、間充
繊細胞、コラーゲン溶液および培地を低温にて予め混合
しておく。この混合液をポンプ14で吸引し、中空糸型
フィルター11中に配設された多数の多孔質中空糸の内
部に充填した後、バルブ12を閉じる。次いで、中空糸
型フィルター11の血液人口6に接続した導管15、血
液比ロアに接続した導管16を通して培養液を潅流する
。その際、導管15には酸素付加器17を設け、潅流さ
れる培養液に酸素を添加する。酸素付加器17も、第1
図で説明したと同様の中空糸型フィルターからなり、酸
素供給装置18が接続されている。従って、導管20か
らポンプ19で送給された培養液は酸素付加器17で酸
素を添加された後、中空糸型フィルター11のハウジン
グ空間内に供給され、循環される。こうして、生理的温
度かつ酸素添加された好適な条件で前培養することによ
り、コラーゲンはゲル化し、ゲルに封入された活性の高
い肝細胞が維持される。なお、酸素付加器17に酸素源
としては、20〜60%の02と、0=1096の00
2と、残部の窒素とからなる混合物、望ましくは40〜
50%の02と、50%のCO2と、残部の窒素とから
なる混合ガスを用いるのがよい。
上記で得られた人工肝臓装置は、次のようにして肝不全
患者の治療に用いる。即ち、導管20の末端に挿管した
カニユーレを、例えば患者の大腿動脈または静脈に穿刺
して採血する。採血された血液はポンプ19により酸素
付加器17に送られ、ここで酸素が添加される。酸素付
加器17には熱交換装置を装着しておき、温度を37℃
前後に維持しておくのが好ましい。酸素添加された血液
は、導管15を通って人工肝臓装置の解毒反応槽11に
導入される。この反応槽11において、血液中に含まれ
る毒物は肝細胞により代謝され、解毒される。解毒され
た血液は、導管16を通って患者の大腿静脈等挿入され
たカニユーレを通して返血される。
患者の治療に用いる。即ち、導管20の末端に挿管した
カニユーレを、例えば患者の大腿動脈または静脈に穿刺
して採血する。採血された血液はポンプ19により酸素
付加器17に送られ、ここで酸素が添加される。酸素付
加器17には熱交換装置を装着しておき、温度を37℃
前後に維持しておくのが好ましい。酸素添加された血液
は、導管15を通って人工肝臓装置の解毒反応槽11に
導入される。この反応槽11において、血液中に含まれ
る毒物は肝細胞により代謝され、解毒される。解毒され
た血液は、導管16を通って患者の大腿静脈等挿入され
たカニユーレを通して返血される。
本発明による人工腎臓装置は、上記のように血液の直接
的な浄化に好適に用いられるのみならず、他の態様で使
用することも可能である。例えば、血漿分離器で分離さ
れた血漿の浄化を行ない、血球と併せて返血するシステ
ムで使用することができる。また体液バランス、特に電
解質の補正を目的とし、ダイアライザーと結合して用い
ることもできる。
的な浄化に好適に用いられるのみならず、他の態様で使
用することも可能である。例えば、血漿分離器で分離さ
れた血漿の浄化を行ない、血球と併せて返血するシステ
ムで使用することができる。また体液バランス、特に電
解質の補正を目的とし、ダイアライザーと結合して用い
ることもできる。
以下、具体的な製造例および使用例に基づき、本発明を
より詳細に説明する。
より詳細に説明する。
製造例
5〜8週齢のスプラーグドーリー系ラット(雄)から、
Seglen等の方法に準じて肝細胞を分離した。この
肝細胞4X 107個を、3日齢の同種ラット新生児(
雄)の肺からコラ−ゲナーゼ処理により分離して得た線
維芽細胞(継代数2〜8)2X10’個と併せた。この
細胞を、ダルベツコ改変イーグル培養液(DEN)にコ
ラーゲン0.2%を加えた溶液50111中に浮遊させ
た。DEMの組成は、ハイドロコーチシン 0.4μg
/mi、インスリン 5Mg/r!II!、トランスフ
ェリン5μg/I!AI!、トリョードチロニン 2X
lO−9M 、コレラ毒素10− ” M、アデニン1
0−4M 、EGP lOng/!!Ll、牛胎児血清
10%である。なお、培養液は4℃に冷却して用いた。
Seglen等の方法に準じて肝細胞を分離した。この
肝細胞4X 107個を、3日齢の同種ラット新生児(
雄)の肺からコラ−ゲナーゼ処理により分離して得た線
維芽細胞(継代数2〜8)2X10’個と併せた。この
細胞を、ダルベツコ改変イーグル培養液(DEN)にコ
ラーゲン0.2%を加えた溶液50111中に浮遊させ
た。DEMの組成は、ハイドロコーチシン 0.4μg
/mi、インスリン 5Mg/r!II!、トランスフ
ェリン5μg/I!AI!、トリョードチロニン 2X
lO−9M 、コレラ毒素10− ” M、アデニン1
0−4M 、EGP lOng/!!Ll、牛胎児血清
10%である。なお、培養液は4℃に冷却して用いた。
この細胞浮遊液を調整槽13収容し、第2図で説明した
方法により人工肝臓装置を製造した。中空糸型フィルタ
ー11としては、約13.000本のポリプロピレン製
中空糸(内径200 p 、有効長10.5cTI)を
具備した模型人工肺「キャビオックスn−08(登録商
標)」から熱交換部分を取り除き、そのガス交換部分を
用いた。また、細胞浮遊液充填後の培養は37℃で行な
い、培養液にはDMEを用いた。
方法により人工肝臓装置を製造した。中空糸型フィルタ
ー11としては、約13.000本のポリプロピレン製
中空糸(内径200 p 、有効長10.5cTI)を
具備した模型人工肺「キャビオックスn−08(登録商
標)」から熱交換部分を取り除き、そのガス交換部分を
用いた。また、細胞浮遊液充填後の培養は37℃で行な
い、培養液にはDMEを用いた。
培養7日目における細胞の状態を観察したところ、肝細
胞はゲルの内部全体にネットワークをつくり、細胞間胆
管様構造を形成していた。
胞はゲルの内部全体にネットワークをつくり、細胞間胆
管様構造を形成していた。
比較製造例
製造例で用いたと同じ細胞浮遊液を、直径35oyの疎
水性プラスチックシャーレに211J!分注し、024
0%、0025%、N255%のインキュベータを用い
て37℃で培養した。培養液は1日目に0.5IIi加
え、その後1日おきに交換した。
水性プラスチックシャーレに211J!分注し、024
0%、0025%、N255%のインキュベータを用い
て37℃で培養した。培養液は1日目に0.5IIi加
え、その後1日おきに交換した。
培養7日目における細胞の状態を観察したところ、ゲル
の表面には細胞間胆管様構造を維持した肝細胞のコロニ
ーがみられたが、ゲル内部の肝細胞は崩壊死又はそれに
近い細胞が多かった。
の表面には細胞間胆管様構造を維持した肝細胞のコロニ
ーがみられたが、ゲル内部の肝細胞は崩壊死又はそれに
近い細胞が多かった。
使用例1
上記の製造例で得た人工肝臓装置を用い、第3図に示す
ようにして模擬患者血液の循環解毒実験を行な、っな。
ようにして模擬患者血液の循環解毒実験を行な、っな。
即ち、模擬患者血液を容器21に満し、第2図で培養液
の循環に用いた導管20゜16の端部を容器21内に浸
漬する。ポンプ19により、模擬血液を酸素付加器17
を通して解毒反応槽11に送給し、循環させた。容器2
1は恒温槽22内に配置し、温度を37℃に保持した。
の循環に用いた導管20゜16の端部を容器21内に浸
漬する。ポンプ19により、模擬血液を酸素付加器17
を通して解毒反応槽11に送給し、循環させた。容器2
1は恒温槽22内に配置し、温度を37℃に保持した。
また、マグネティックスクーラー23を用いることによ
り、容器21内の模擬血液を攪拌しながら実験を行なっ
た。
り、容器21内の模擬血液を攪拌しながら実験を行なっ
た。
使用した模擬血液、血液の循環条件は次の通りである。
く模擬患者血液〉
・ヘパリン加牛血 500g
(ヘパリン3単位/aff)
・ヘマトクリット値 85%
・塩化アンモニウム 500μg/旧く循環条件〉
・模擬血液流量 loomJ!/分・酸素吹送量
150 mJ!/分上記の実験において、模擬患
者血液中における塩化アンモニウム濃度および尿素濃度
の経時的に測定したところ、下記第1表に示す結果が得
られた。
150 mJ!/分上記の実験において、模擬患
者血液中における塩化アンモニウム濃度および尿素濃度
の経時的に測定したところ、下記第1表に示す結果が得
られた。
第 1 表
アンモニウム
(μg/dり
循環開始前 530
循環後30分 500
60分 480
120分 450
180分 420
尿素
([/di)
この結果に示されるように、製造例で得られた人工肝臓
では活発な細胞活性が維持され、人工肝臓装置としての
有効性を有していた。
では活発な細胞活性が維持され、人工肝臓装置としての
有効性を有していた。
使用例2
酸素付加器17を取外し、導管20を直接反応槽11に
接続した点を除き、使用例1と同じ循環実験を行なった
。その結果を下記第2表に示す。
接続した点を除き、使用例1と同じ循環実験を行なった
。その結果を下記第2表に示す。
第 2 表
アンモニウム 尿 素
(μg/di) ([/di)
循環開始前 520 t。
循環後30分 500 1360分
490 15 120分 470 18180分
440 2(1この結果は、酸素付加器17
による酸素添加を行なわなくとも、人工肝臓装置として
の充分に機能し得ることを示している。
490 15 120分 470 18180分
440 2(1この結果は、酸素付加器17
による酸素添加を行なわなくとも、人工肝臓装置として
の充分に機能し得ることを示している。
[発明の効果]
以上詳述したように、本発明による人工肝臓装置は肝細
胞の細胞活性を長期に亙って安定に且つ高く維持でき、
連続的に長期間の血液浄化を行なうことができる等、顕
著な効果を奏するものである。
胞の細胞活性を長期に亙って安定に且つ高く維持でき、
連続的に長期間の血液浄化を行なうことができる等、顕
著な効果を奏するものである。
第1図は本発明の一実施例になる人工肝臓装置の説明図
、第2図は第1図の実施例になる人工肝臓装置の製造方
法を示す説明図であり、第3図はその使用実験を示す説
明図である。 1・・・ハウジングである。2・・・下部蓋体、3・・
・上部蓋体、4・・・液体注入口4.5・・・液体導出
口5.6・・・血液入口、7・・・血液出口、8・・・
多孔質膜である。9・・・コラーゲンゲル、10・・・
肝細胞、11・・・中空糸型フィルター 12・・・バ
ルブ、13・・・調整槽、14・・・ポンプ、15.1
6.20・・・導管、17・・・酸素付加器、18・・
・酸素供給装置、19・・・ポンプ、21・・・模擬血
液容器、22・・・恒温槽、23・・・マグネティック
スターラ− (A) (B) 第1図
、第2図は第1図の実施例になる人工肝臓装置の製造方
法を示す説明図であり、第3図はその使用実験を示す説
明図である。 1・・・ハウジングである。2・・・下部蓋体、3・・
・上部蓋体、4・・・液体注入口4.5・・・液体導出
口5.6・・・血液入口、7・・・血液出口、8・・・
多孔質膜である。9・・・コラーゲンゲル、10・・・
肝細胞、11・・・中空糸型フィルター 12・・・バ
ルブ、13・・・調整槽、14・・・ポンプ、15.1
6.20・・・導管、17・・・酸素付加器、18・・
・酸素供給装置、19・・・ポンプ、21・・・模擬血
液容器、22・・・恒温槽、23・・・マグネティック
スターラ− (A) (B) 第1図
Claims (3)
- (1)多孔質膜により隔てられた第一室および第二室と
、コラーゲンゲル内に封入された状態で前記第一室に充
填された肝細胞と、前記第二室に連通して設けられた血
液流入口および血液流出口とを具備したことを特徴とす
る人工肝臓装置。 - (2)前記第二室に供給される血液に酸素を付加するた
めに、前記血液流入口に直列された状態で酸素付加器を
設けた請求項1に記載の人工肝臓装置。 - (3)前記第一室には、肝細胞と共に、肝臓、肺、心臓
真皮由来の線維芽細胞、血管内皮細胞あるいはその他の
間充繊細胞が封入されている請求項1または2に記載の
人工肝臓装置。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63224341A JPH0271755A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 人工肝臓装置 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63224341A JPH0271755A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 人工肝臓装置 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0271755A true JPH0271755A (ja) | 1990-03-12 |
Family
ID=16812239
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63224341A Pending JPH0271755A (ja) | 1988-09-07 | 1988-09-07 | 人工肝臓装置 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0271755A (ja) |
Cited By (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH06284883A (ja) * | 1992-07-10 | 1994-10-11 | Sanyo Chem Ind Ltd | 肝細胞培養方法 |
WO1995002037A1 (de) * | 1993-07-08 | 1995-01-19 | Augustinus Bader | Verfahren und vorrichtung zur behandlung von zellkulturen |
EP0817833A4 (en) * | 1995-03-31 | 1998-11-04 | Univ Minnesota | FILTERING DEVICE |
US5981211A (en) * | 1988-05-23 | 1999-11-09 | Regents Of The University Of Minnesota | Maintaining cells for an extended time by entrapment in a contracted matrix |
US6008049A (en) * | 1996-04-23 | 1999-12-28 | Advanced Tissue Sciences, Inc. | Diffusion gradient bioreactor and extracorporeal liver device |
GB2427556A (en) * | 2005-06-28 | 2007-01-03 | Martin Lister | Artificial liver |
-
1988
- 1988-09-07 JP JP63224341A patent/JPH0271755A/ja active Pending
Cited By (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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WO1995002037A1 (de) * | 1993-07-08 | 1995-01-19 | Augustinus Bader | Verfahren und vorrichtung zur behandlung von zellkulturen |
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US6218182B1 (en) | 1996-04-23 | 2001-04-17 | Advanced Tissue Sciences | Method for culturing three-dimensional tissue in diffusion gradient bioreactor and use thereof |
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