JPH0249576A

JPH0249576A - 新規微生物及びその菌体の製造方法及びその微生物を用いた廃水の処理方法

Info

Publication number: JPH0249576A
Application number: JP20160188A
Authority: JP
Inventors: Masaaki Tsuzaki; 真彰津崎; Shinya Nakamoto; 信也中本; Hiroshi Kuraishi; 倉石　衍
Original assignee: NEC Corp
Current assignee: NEC Corp
Priority date: 1988-08-11
Filing date: 1988-08-11
Publication date: 1990-02-19
Also published as: JPH0426835B2

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】（産業上の利用分野）本発明は、パラコッカス（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ）属に
属し水酸化テトラメチルアンモニウム（以下ｆＴＭＡＨ
Ｊ　、！：称す）の分解能を有する新規細菌に関し、更
に前記細菌菌体の製造方法に関し、更に前記細菌を用い
た半導体工場から排出される光感応性樹脂（以下「フォ
トレジスト」と称す）の現像廃水の処理方法に関するも
のである。

（従来の技術）ＴＭＡＨは半導体工場ではポジ型フォトレジストの現像
液として使用されている。シリコン等の基板上に置かれ
紫外線により露光された前記フォトレジストは、露光さ
れた領域が酸に変化し、その酸をアルカリ剤で中和し溶
出し易くする。

ＴＭＡＨは前記アルカリ剤として使用されている。

そのため現像廃液と呼ばれるポジ型フォトレジストの現
像工程からの廃液は、組成としてはＴＭＡＨが主であり
、ＴＭＡＨ以外には若干の露光されたフォトレジストを
含んでいるにすぎない。このことから前記現像廃液の処
理は、ＴＭＡＨの処理にほかならない。

従来、ＴＭＡＨを含む現像廃液の処理は、微生物学的に
は困難とされていた。その理白は、ＴＭＡＨが微生物に
とって難分解性物質とされていたためである。そのため
濃厚な廃水は燃焼し、希薄な廃水は逆浸透膜やイオン交
換樹脂を用いて処理を行なっていた。しかしこれらの方
法は処理コストが高いという問題がある。

またＴＭＡＨ分解微生物の報告は少なく、ハンプトン（
Ｄ、　Ｈａｍｐｔｏｎ）とザソトマン（Ｌ、　Ｊ、　Ｚ
ａｔｍａｎ）による５Ｈ２株（バイオケミカル・ソザイ
アテイ斗うンザクションズ（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　
５ｏｃｉｅｔｙ　Ｔｒａｎｓａｃｔｉｏｎｓ）、１巻、
６６７−６６８頁、１９７３年）や浦上ら（日本発酵工
学大会講演要旨集、１５４頁１９８７年）によるシュウ
トモナス・アミノボランス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ　
ａｍｉｎｏｖｏｒａｎｓ）及びプロトモナス・エクスト
ロクエンス（Ｐｒｏｔｏｍｏｎａｓｅｘｔｏｒｑｕｅｎ
ｓ）及びミコバクテリウム、エスピー（Ｍｙｃｏｂａｃ
ｔｅｒｉｕｍ　ｓｐ、）や拝見らニヨルノカルティア・
エスピー−８−２５５株（Ｎｏｃａｒｄｉａ　ｓｐ、　
Ｓ−２５５、特開昭６２−４６１５５、及び、公害と対
策、２４巻、３号、２０８−２１２頁、１９８８年）が
あるにすぎない。またＴＭＡＨの分解経路については、
前述のザソトマンらによると、まずテトラメチルアンモ
ニウムがトリメチルアミンに分解され、その後トリメチ
ルアミンの分解経路で分解されるとされている。しかし
、テトラメチルアンモニウムからトリメチルアミンへ代
謝する酵素は不安定であるとされており、生化学的な解
明はされていない。

（発明が解決しようとする問題点）上記したようにこれまで行なわれてきた現像廃水のコス
トを低減するためには、微生物による処理を行なうこと
が望ましい。しかし微生物処理を用いる場合、その装置
に必要な敷地面積や処理能力の安定性などが問題となる
。また半導体の製造工程上において前記現像廃液は他の
廃水と混合しない状態で取り出すことが可能であり、前
記現像廃水単独で処理を行なう方法を用いることが容易
であり、且つ効果的でもある。そのため微生物処理に用
いる微生物としてはＴＭＡＨに強い資化性もしくは分解
能力を有し、且つ他の有機物の混入等の影響を受けにく
いものを利用することが望ましい。

また、上記ＴＭＡＨ資化能を有する微生物は廃水処理に
おいて使用する場合、培養により菌体を得ることができ
れば、例えば活性汚泥のような通常の廃水処理に用いら
れている微生物に添加して使用したり、培養した菌体の
みを固定化して使用することも可能である。そのために
培養が容易なものであることが極めて重要である。

（問題を解決するための手段）本発明の微生物はパラコッカス属に属し、ＴＭＡＨ資化
能を有する。ＴＭＡＨ分解能を有する新規細菌としては
パラコッカス・エスピー・ＴＭＡ−Ｂ株（以下ｒＴＭＡ
−Ｂ株］と称す）がある。なおＴＭＡ−Ｂ株は微工研条
寄第１９５９号として工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。

この新規細菌は、水酸化テトラメチルアンモニウム、ト
リメチルアミン、ジメチルアミン、メチルアミン、トリ
メチルアミンＮ−オキシド、蟻酸、酢酸、ピルビン酸、
Ｌ−セリンの中から選ばれた少なくとも一種を主たる炭
素源とする培地に培養し、該培養液から細菌の菌体を分
離することにより得られる。

光感応樹脂の現像廃液を微生物を用いて処理する方法に
おいて、本発明になる新規細菌であるパラコッカス属に
属し水酸化テトラメチルアンモニラムを分解しうる相菌
もしくは該細菌を含む微生物群を用いることができる。

（作用）本発明者らは活性汚泥等から、ひいては廃水の処理コス
ト低減につながるＴＭＡＨ資化能の強い微生物を検索し
、複数の微生物菌株を分離した。その中でＴＭＡＨに強
い資化能を有する微生物を検索した結果、パラコッカス
属に属するＴＭＡ−Ｂ株を得た。本発明で使用するＴＭ
Ａ−Ｂ株は下記のごとき菌学的性質を有する。

１形態学的性質細胞は丸みをおびた短稈状で、大きさは０．５〜０．８
　Ｘ　Ｏ，６〜１．１マイクロメートル、普通細胞は単
独又はまれに２連、運動性及び鞭毛を有さず、グラム染
色性陰性、胞子を形成せず、抗酸性染色は陰性である。

２培養的性質 ■肉汁寒天平板培養３０°Ｃ１１週間の培養で、クリーム色がかった白色で
、円形、凸レンズ状で平滑、不透明、光沢のある小さな
コロニーを形成。

■肉汁寒天斜面培養３０°Ｃ１１週間の培養で、生育はやや弱く褐色がかっ
たクリーム色、不透明、光沢有り。

■肉汁液体培養３０°Ｃ１２週間の培養で、全体的に極弱く濁る。沈澱
及びリングの形成は見られない。

■ＴＭＡＨ寒天平板培養３０°Ｃ１５日間の培養で、薄いクリーム色がかった白
色、円形、凸レンズ状、平滑で光沢があり、不透明のコ
ロニーを形成。

■ＴＭＡＨ寒天斜面培養３０°Ｃ１３日間の培養で生育する。薄いクリーム色が
かった白色、光沢有り、不透明。

■ＴＭＡＨ液体培養３０°Ｃ１１週間で全体的に白濁。リングの形成は見ら
れず、若干の沈澱が見られる。

■肉汁ゼラチン穿刺培養３０°Ｃ１１週間の培養で、表面に生育する。その後穿
刺部にも生育するが下層部にはほとんど生育しない。ゼ
ラチンを液化しない。

■リドマスクミルク：変化なし。

３生理学的性質 ■硝酸塩の還元：還元する。

■脱窒反応：速度は遅いが脱窒を行なう。

■ＭＲテスト：陰性。

■ｖｐテスト：陰性。

■インドールの生成：陰性。

■硫化水素の生成：陰性。

■デンプンの加水分解：陰性。

■クエン酸の利用性：陰性。

■無機窒素源の利用性：アンモニウム塩を利用する。硝
酸塩を利用しない。

［株］色素の生成：色素は生成しない。

◎ウレアーゼ：陰性。

［相］オキシダーゼ：陽性。

＠カタラーゼ：陽性。

０生育の範囲：　ｐＨ６〜８で生育するが、ｐＨ６，９
〜７．８が好ましい。２０〜４０°Ｃで生育するが、２
５〜３７°Ｃが好ましい。

［相］酸素に対する態度：好気性。

＠０−Ｆテスト：糖を分解しない。

０糖類から酸及びガスの生成：好気的及び嫌気的な培養でＬ−アラビノース、Ｄ−キシ
ロース、Ｄ−グルコース、Ｄ−マンノース、Ｄ−フルク
トース、Ｄ−ガラクトース、麦芽糖、ショ糖、トレハロ
ース、Ｄ−ソルビット、Ｄ−マンニット、イノジット、
グリセリン、デンプンの全てから酸もガスも生成しない
。

＠栄養要求性：生育にはチアミン（ビタミンＢ□）を要
求する。

０貯蔵物資：ポリ手−ヒドロキシ酪酸を蓄積する。

０各種有機物の利用性：寒天培地で以下の各有機物（最終濃度０．１重量％）を
資化する。蟻酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、ピルビン
酸ナトリウム、乳酸ナトリウム、Ｌ−セリン、ＴＭＡＨ
１塩化テトラメチルアンモニウム、トリノチルアミン、
ジメチルアミン、メチルアミン、トリメチルアミンＮ−
オキシド、エチルトリメチルアンモニウム。前記と同じ
条件で以下の各有機物を資化しない。プロピオン酸ナト
リウム、酪酸ナトリウム、シュウ酸ナトリウム、アジピ
ン酸、マロン酸ナトリウム、グルコン酸ナトリウム、ク
エン酸ナトリウム、コハク酸ナトリウム、フマル酸ナト
リウム、酒石酸ナトリウム、Ｌ−アスパラギン酸ナトリ
ウム、ＤＬ−フェニルアラニン、Ｌ−プロリン、Ｌ−ア
スパラギン、Ｌ−アルギニン、Ｌ−アラニン、Ｌ−バリ
ン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−イソロイシン
、Ｌ−リジン、Ｌ−システィン、Ｌ−グルタミン、グリ
シン、Ｄ−グルコース、Ｄ−ガラクトース、Ｌ−アラビ
ノース、Ｄ−フルクトース、Ｄ−マンノース、Ｄ−リボ
ース、Ｄ−キシロース、ショ糖、ラクトース、メリビオ
ース、麦芽糖、トレハロース、セロビオース、Ｌ−ラム
ノース、Ｌ−ソルボース、可溶性デンプン、メタノール
、エタノール、プロパツール、イソプロパツール、ブタ
ノール、イソブタノール、メチルエチルケトン、グリセ
ロール、イノジット、Ｄ−マンニット、Ｄ−ソルビット
、バクトートリプトン（Ｂａｃｔｏ−Ｔｒｙｐｔｏｎｅ
）、バクトーペプトン（Ｂａｃｔｏ−Ｐｅｐｔｏｎｅ）
、塩化テトラエチルアンモニウム、塩化テトラプロピル
アンモニウム、塩化テトラブチルアンモニウム、塩化コ
リン、塩化トリメチルフェニルアンモニウム。またメタ
ンは資化できない。

４化学分類学的性質 ■ＤＮＡのＧ＋Ｃ（グアニン＋シトシン）含量ニア１．
５±０．２モル％。

■主なキノン型：補酵素Ｑ（ユビキノン）−１０゜■主
な脂肪酸：　Ｃ１８：１゜主な３−ヒドロキシ脂肪酸は
ＣＩＯ：Ｏｏ前記諸性質をバーシーズ・マニュアル・オブ・システマ
テイック・バクテリオロジー（Ｂｅｒｇｅｙ’ｓ　Ｍａ
ｎｕａｌ　ｏｆＳｙｓｔｅｍａｔｉｃ　Ｂａｃｔｅｒｉ
ｏｌｏｇｙ）、第１巻、１９８４年（以下［バーシーズ
・マニュアル］と称す）に基づいて分類すると、ダラム
陰性で好気性の丸みを帯びた短い桿菌であり、オキシダ
ーゼ陽性及びカタラーゼ陽性で脱窒能を有することから
、パラコッカス属に属する細菌であると決定した。この
決定にあたり最もパラコッカス属の特徴を表わしている
ＴＭＡ−Ｂ株の形態学的特徴を示すために、第２図にＴ
ＭＡ−Ｂ株の電子顕微鏡写真を、第３図には比較のため
にパラコッカス、デニトリフィカンス（Ｐａｒａｃｏｃ
ｃｕｓｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ、ＩＡＭ　１２４７
９）の電子顕微鏡写真を示す。これらの２種の細胞の形
態は、丸みを帯びた短稈状であり極めて類似している。

前記した性質とこの形態学的特徴からＴＭＡ−Ｂ株がパ
ラコッカス属以外の属に属する可能性は否定される。

更に前記バーシーズ、マニュアルにはパラコッカス・デ
ニトリフィカンスとパラコッカス、ハロデニトリフィカ
ンス（Ｐａｒａｃｏｃｃｕｓ　ｈａｌｏｄｅｎｉｔｒｉ
ｆｉｃａｎｓ）の２種が記載されている。この記載によ
ると、パラコッカス・ハロデニトリフィカンスのＤＮＡ
のＧ十〇含量は６４〜６７モル％で、パラコッカス・デ
ニトリフィカンスのＧ十〇の含量は６４〜６６モル％で
あり、ＴＭＡ−Ｂ株の７１．５±０．２モル％とは大き
く違っている。またパラコッカス・デニトリフィカンス
は、ショ糖、トレハロース、マルトース、ヒスチジン、
グルコースを資化できるのに対し、ＴＭＡ−Ｂ株はこれ
ら全てを資化できない。一方バラコノカス・ハロデニト
リフィカンスは生育に３％の塩化ナトリウムを要求する
のに対し、ＴＭＡ−Ｂ株は要求しない。これらのことか
らＴＭＡ−Ｂ株はパラコッカス属に属する新種であると
決定した。なお本菌株は、工業技術院微生物工業技術研
究所に微工研条寄第１９５９号（ＦＥＲＭ　ＢＰ−１９
５９）として寄託されている。

本発明のＴＭＡ−Ｂ株は一般の細菌と同様に変異を起こ
すことがあり、例えば紫外線、Ｘ線、化学薬品（例、ニ
トロソグアニジン、エチルメタンスルホン酸）を用いる
人工変異手段で変異するものであり、どの様な変異株で
あっても本発明の対象とするＴＭＡＨ資化もしくは分解
能を有するものはすべて本発明に用いることができる。

　　。

ＴＭＡ−Ｂ株の培養に関しては、炭素源として蟻酸、蟻
酸塩（例えば蟻酸ナトリウム）、酢酸、酢酸塩（例えば
酢酸ナトリウム）、ピルビン酸、ピルビン酸塩（例えば
ピルビン酸ナトリウム）、乳酸、乳酸塩（例えば乳酸ナ
トリウム）、Ｌ−セリン、ＴＭＡＨ、テトラメチルアン
モニウム塩（例えば塩化テトラメチルアンモニウム）、
トリメチルアミン、ジメチルアミン、メチルアミン、ト
リメチルアミンＮ−オキシド、エチルトリメチルアンモ
ニウム塩などＴＭＡ−Ｂ株が資化しうるものを適宜用い
られる。ＴＭＡＨを基質として培養する場合には、ＴＭ
ＡＨが強いアルカリ性を示すために、事実上酸で中和し
た形の塩化テトラメチルアンモニウムや硫酸テトラメチ
ルアンモニウム等を使用したほうが操作を容易とする場
合もある。窒素源としてはアンモニウム塩が利用できる
。しかしＴＭＡＨ、トリメチルアミン等の窒素を含む有
機物を基質とする培地では、特に窒素源としてアンモニ
ウム塩を添加する必要はない。また他の無機塩としてリ
ン酸塩のような通常細菌の培養に必要な無機塩類が単独
もしくは適宜組み合わせて使用される。また生育にはチ
アミン（ビタミンＢ、）を要求するため、培地にはチア
ミンを微量添加する必要があるが、例えば活性汚泥のよ
うな混合微生物として培養する場合には、特にチアミン
を添加する必要はない。

培養方法としては、一般の好気性細菌の培養方法と同様
の操作で行なうことができ、固体培養でも液体培養でも
よい。液体培養の場合は静置培養、撹拌培養、振盪培養
、通気培養などいずれを実施してもよいが、とくに通気
撹拌培養が望ましい。

この培養液中の溶存酸素濃度には特に限定はないが、通
常は０．５〜２０ｐｐｍが望ましい。

培養条件は、温度２０〜４０°Ｃ１好ましくは２５〜３
７°Ｃ１およびｐＨは６〜９、好ましくは６．９〜７．
８である。これらの条件をはずれて培養した場合には、
本細菌の増殖は悪くなる。

このようにして細菌を培養した後、菌体を培養液より分
離することによっても菌体を得ることができる。分離の
手段としては、培養液そのままを遠心分離する方法、培
養液から菌体を濾過分離する！はうほう、あるいは凝集剤を使用して菌体を凝集させた
後に遠心分離もしくは濾過分離する方法など通常の微生
物の培養液からの分離方法を用いることができる。

またＴＭＡ−Ｂ株の培養菌体を廃水処理に利用する場合
には、培養後の培養液そのもの、もしくは培養液から分
離した菌体のみを、例えば活性汚泥のような廃水を処理
している微生物群と混合したり、また培養した菌体を包
括や吸着により固定化して利用することもできる。

ＴＭＡ−Ｂ株の大きな特徴の一つに、資化できる有機物
の範囲が極めて狭いことがあげられる。この性質は、排
水処理への適応を考えた場合に有利な点が多い。例えば
糖類やアルコール類のような一般の細菌には利用し易い
有機物がＴＭＡＨと共存している場合にも、ＴＭＡ−Ｂ
株は他の有機物の影響を受けずにＴＭＡＨを分解する。

これはＴＭＡＨを含む排水の処理工程に、突発的に他の
有機物が混入した場合にもＴＭＡＨの処理能力を低下さ
せることなく処理を行なうことができることを示してい
る。

また資化できる有機物の範囲が狭いにも関わらず、ＴＭ
ＡＨ，）ジメチルアミン、ジメチルアミン、メチルアミ
ン、トリメチルアミンＮ−オキシド、蟻酸、酢酸、ピル
ビン酸、Ｌ−セリンを、寒天のような固体培地のみなら
ず、液体培地においても資化することができる。そのた
めこれらの有機物を基質とした培地を用いて培養を行な
えば、ＴＭＡ−Ｂ株の細菌菌体を得ることは容易である
。

（実施例１）１リツトル当たり最終的に、Ｋ２ＨＰＯ４１，２ｇ　。

ＫＨ２ＰＯ４０，６２ｇ　、　（ＮＨ４）２８０４０．
５ｇ　、　ＮａＣ１０，１ｇ　。

ＭｇＳＯ４・７Ｈ２００，２ｇ、ＣａＣｌ２・６Ｈ２ｏ
０．０５ｇ、ＦｅＣｌ３・６Ｈ２００，００１ｇ、塩酸
チアミン０．００１ｇを含む基礎培地（ｐＨ７，１）を
蒸気滅菌し、別に濾過滅菌したＴＭＡＨを最終濃度１．
０ｇ／リットルとなるように添加した。この培地に寒天
斜面培地で生育した一白金耳量のＴＭＡ−Ｂ株の菌体を
接種し、３０°Ｃで回転振盪培養を７日間行ない、遠心
分離で集菌した。

第１図に培養期間中の培養液の６６０ｎｍにおける吸光
度と培養液中のＴＭＡＨ濃度の変化を示した。

ＴＭＡＨはイオンクロマトグラムで分析した。図中、１
はＴＭＡ−Ｂ株の増殖を表わす６６０ｎｍの吸光度を、
２は増殖に伴うＴＭＡＨａ度の減少を示している。この
結果、培養液１リツトル当たり乾重量で２９０ｍｇの菌
体を得た。

（実施例２）実施例１と同様の操作で得られた菌体４００ｍｇ（乾重
量）を２０ｍ１の純水に懸濁し、この懸濁液４０ｍ１の
３．５％アルギン酸ナトリウム溶液と混合し、この混合
液を０．１モル／リットルのＣａＣｌ２溶液に滴下して
、アルギン酸ビーズに固定化したＴＭＡ−Ｂ株を得た。

この固定化菌体を実施例１の培地１００ｍ１を入れた５
００ｍ１容三角フラスコに入れ３０°Ｃで回転振盪した
結果、１８時間で培地のＴＭＡＨ濃度は１ｍｇ／リット
ル以下になった。

同様に固定化せずに４０ｍ１の前記懸濁液を実施例１の
培地１００ｍ１を入れた５００ｍ１容三角フラスコに入
れ３０°Ｃで回転振盪した結果、８時間で培地のＴＭＡ
Ｈの濃度は１ｍｇ／リットル以下になった。

（実施例３）実施例１で示した培地に更に最終濃度でグルコース２ｇ
／リットル、カザミノ酸２ｇ／リットル、エタノール２
ｇ／リットルとなるように添加した培地を調製した。こ
の培地１００ｍ１と実施例１で示した培地１００ｍ１を
それぞれに入れた５００ｍ１容三角フラスコに実施例１
と同様の培養を行なった培養７日目の培養液５ｍｌを接
種した。その結果、グルコース等の有機物を添加した培
養液では培養開始５０時間後に、添加しなかった実施例
１と同様の培養液では４５時間後に、培養液のＴＭＡＨ
濃度は１ｍｇ／リットル以下になった。

（実施例４）実施例１の基礎培地にトリメチルアミンを最終濃度１．
３ｇｌリットルになるように添加した培地に、実施例１
と同様の接種を行ない、３０°Ｃで回転振盪培養を行な
った。７日間の培養の後に遠心分離で集菌した結果、１
リツトル肖たり乾重量で４８０ｍｇの菌体を得た。

（実施例５）実施例１の基礎培地にジメチルアミンを最終濃度Ｌ’１
ｇ／リットルになるように添加した培地に、実施例１と
同様の接種を行ない、３０°Ｃで回転振盪培養を行なっ
た。９日間の培養後に遠心分離で集菌した結果、１リッ
トル当たり乾重量で５５０ｍｇの菌体を得た。

（実施例６）実施例１の基礎培地にメチルアミンを最終濃度２．８ｇ
ｌリットルになるように添加した培地に、実施例１と同
様の接種を行い、３０°Ｃで回転振盪培養を行なった。

４日間の培養の後に遠心分離で集菌した結果、１リツト
ル当たり乾重量で４３０ｍｇの菌体を得た。

（実施例７）実施例１の基礎培地にトリメチルアミンＮ−オキシドを
を最終濃度１．５ｇｌリットルになるように添加した培
地に、実施例１と同様の接種を行い、３０°Ｃで回転振
盪培養を行なった。１２日間の培養の後に遠心分離で集
菌した結果、１リツトル当たり乾重量で３１０ｍｇの菌
体を得た。

（実施例８）実施例１の基礎培地に蟻酸ナトリウムを最終濃度２．８
ｇｌリットルになるように添加した培地に、実施例１と
同様の接種を行い、３００Ｃで回転振盪培養を行なった
。７日間の培養の後に遠心分離で集菌した結果、１リツ
トル当たり乾重量で２００ｍｇの菌体を得た。

（実施例９）実施例１の基礎培地に酢酸ナトリウムを最終濃度１．７
ｇｌリットルになるように添加した培地に、実施例１と
同様の接種を行い、３０°Ｃで回転振盪培養を行なった
。５日間の培養の後に遠心分離で集菌した結果、１リツ
トル当たり乾重量で２９０ｍｇの菌体を得た。

（実施例１０）実施例１０基礎培地にＬ−セリンを最終濃度１．５ｇｌ
リットルになるように添加した培地に、実施例１と同様
の接種を行い、３０°Ｃで回転振盪培養を行なった。１
０日間の培養の後に遠心分離で集菌した結果、１リツト
ル当たり乾重量で２２０ｍｇの菌体を得た。

（実施例１１）有効容量１０リツトルの曝気槽と、有効容量３リツトル
の沈降槽とからなる装置でＴＭＡＨの処理を行なった。

曝気槽中の活性汚泥をＭＬＳ８２５００ｍｇ／リットル
となるように調整した。曝気槽には実施例１と同様の操
作で得られたＴＭＡ−Ｂ株の菌体５５０ｍｇ（乾重量）
をカチオン系の高分子凝集剤とともに添加した。この装
置に、現像排水をＴＭＡＨが５０ｍｇ／リットルとなる
ように希釈した希釈廃液を、運転開始後１週間は５リッ
トル／日、その後は１０リットル７日の流量で流入した
。沈降槽最下部から曝気槽へ３リットル７日の流量で沈
降汚泥を返送した。対照として、曝気槽にＴＭＡ−Ｂ株
菌体を添加しなかったこと以外は同様の条件で処理を行
なった。流入開始後３０日１までのＴＭＡＨ濃度を第１
表に示す。

第１表（発明の効果）以上のように、ＴＭＡ−Ｂ株は強いＴＭＡＨ資化能を有
するパラコッカス属に属する新規則菌であり、ＴＭＡＨ
、トリメチルアミン、ジメチルアミン、メチルアミン、
トリメチルアミンＮ−オキシド、蟻酸、酢酸、ピルビン
酸、Ｌ−セリンの少なくとも１つを基質とした培養する
ことで細菌菌体を得ることが容易に可能である。また現
像廃液の処理に用いた場合には、固定化しても活性汚泥
と混合した場合に置いても効果的なＴＭＡＨの分解もし
くは資化ができる。

【図面の簡単な説明】

第１図は実施例１の結果を示すグラフ、第２図はパラコ
ッカス・エスピー・ＴＭＡ−Ｂ株のネガティブ染色した
透過型電子顕微鏡写真で細菌の形態を示す図、第３図は
パラコッカス・デニトリフィカンスのネガティブ染色し
た透過型電子顕微鏡写真で細菌の形態を示す図である。１・・・ＴＭＡ−Ｂ株の増殖を現す吸光度の変化を示ず
曲線、２・・・ＴＭＡＨ濃度の変化を示す曲線。（２４）　／第　　１　　図培養日数（日）笛２　区二１町Ｌ

Claims

【特許請求の範囲】１　パラコッカス属に属し水酸化テトラメチルアンモニ
ウムを資化しうる新規細菌。２　前記パラコッカス属に属し水酸化テトラメチルアン
モニウムを資化しうる細菌が、パラコッカス・エスピー
・ＴＭＡ−Ｂ株（微工研条寄第１９５９号）であること
を特徴とする特許請求の範囲第１項記載の新規細菌。３　パラコッカス属に属し水酸化テトラメチルアンモニ
ウムを資化しうる細菌を、水酸化テトラメチルアンモニ
ウム、トリメチルアミン、ジメチルアミン、メチルアミ
ン、トリメチルアミンＮ−オキシド、蟻酸、酢酸、ピル
ビン酸、Ｌ−セリンの中から選ばれた少なくとも一種を
主たる炭素源とする培地に培養し、該培養液から細菌の
菌体を分離することを特徴とする細菌菌体の製造方法。４　光感応性樹脂の現像廃液を微生物を用いて処理する
方法において、該微生物がパラコッカス属に属し水酸化
テトラメチルアンモニウムを分解しうる細菌もしくは該
細菌を含む微生物群であることを特徴とする廃水の処理
方法。５　前記パラコッカス属に属し水酸化テトラメチルアン
モニウムを資化しうる細菌が、パラコッカス・エスピー
・ＴＭＡ−Ｂ株であることを特徴とする特許請求の範囲
第３項または第４項記載の方法。