JPH022937A - 酵素標識抗体の分離精製方法 - Google Patents
酵素標識抗体の分離精製方法Info
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- JPH022937A JPH022937A JP63150889A JP15088988A JPH022937A JP H022937 A JPH022937 A JP H022937A JP 63150889 A JP63150889 A JP 63150889A JP 15088988 A JP15088988 A JP 15088988A JP H022937 A JPH022937 A JP H022937A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、ヒドロキシアパタイトカラムを用いた酵素標
識抗体の精製法に関するものであり、さらに詳しくは、
酵素標識抗体を未標識抗体および酵素から分離する際に
、ヒドロキシアパタイトカラムを用いる方法に関するも
のである。
識抗体の精製法に関するものであり、さらに詳しくは、
酵素標識抗体を未標識抗体および酵素から分離する際に
、ヒドロキシアパタイトカラムを用いる方法に関するも
のである。
(従来の技術)
酵素免疫測定(EIA)法は、医学、薬学の分野を中心
に種々の物質の特異的かつ高感度な定量分析手段として
広く活用されている。このEIA法による測定において
は、抗原を酵素標識して用いる場合もあるが、−a的に
は抗体を酵素で標識化して用いられる場合が多い。また
、免疫組織化学の分野においても、−酵素標識抗体は広
範囲に利用されている。
に種々の物質の特異的かつ高感度な定量分析手段として
広く活用されている。このEIA法による測定において
は、抗原を酵素標識して用いる場合もあるが、−a的に
は抗体を酵素で標識化して用いられる場合が多い。また
、免疫組織化学の分野においても、−酵素標識抗体は広
範囲に利用されている。
(発明が解決しようとする課題)
抗体を酵素標識する方法としては、グルタルアルデヒド
を用いる方法、過ヨウ素酸法、マレイミド法など多くの
方法が試みられているが、いずれの場合も反応効率10
0%にはならないため、標識反応後のサンプルは標識抗
体と未標識抗体および酵素の混合物となる。測定の感度
を上げ、また非特異的な発色をできるだけ低くおさえる
ためには、この混合物から88抗体だけを精製して用い
る必要が生じる。
を用いる方法、過ヨウ素酸法、マレイミド法など多くの
方法が試みられているが、いずれの場合も反応効率10
0%にはならないため、標識反応後のサンプルは標識抗
体と未標識抗体および酵素の混合物となる。測定の感度
を上げ、また非特異的な発色をできるだけ低くおさえる
ためには、この混合物から88抗体だけを精製して用い
る必要が生じる。
抗体としてFab−化したI(IGを用いる場合には、
ゲル濾過法により標識抗体と未標識抗体の分離を行なう
ことも可能であるが、その他の場合には簡便で有効な分
離手段はほとんど知られていない。
ゲル濾過法により標識抗体と未標識抗体の分離を行なう
ことも可能であるが、その他の場合には簡便で有効な分
離手段はほとんど知られていない。
本発明の目的は、酵素標識抗体を未標識抗体および酵素
から簡便に精製する方法を提供することにある。
から簡便に精製する方法を提供することにある。
(課題を解決するための手段)
上記目的は、酵素標識抗体を分離精製する際に、ヒドロ
キシアパタイトカラムを用いることを特徴とする酵素標
識抗体の分離精製方法により達成される。
キシアパタイトカラムを用いることを特徴とする酵素標
識抗体の分離精製方法により達成される。
本発明の方法を用いて分離するサンプルとしては、マウ
ス、ラット、ウサギ、ヤギ、ヒツジなどの動物を免疫し
て得られるポリクローナル抗体および細胞融合技術など
を利用して得られるマウス、ラット、ヒトなどに由来す
るモノクローナル抗体のいずれもが対象となり得るが、
より完全な分離を得るためには分子として均一であるモ
ノクローナル抗体がより好ましい。
ス、ラット、ウサギ、ヤギ、ヒツジなどの動物を免疫し
て得られるポリクローナル抗体および細胞融合技術など
を利用して得られるマウス、ラット、ヒトなどに由来す
るモノクローナル抗体のいずれもが対象となり得るが、
より完全な分離を得るためには分子として均一であるモ
ノクローナル抗体がより好ましい。
また本発明の方法は、特にクラスがIgGである抗体、
Fab−化されていない抗体を用いる際に有効に用いる
ことができる。
Fab−化されていない抗体を用いる際に有効に用いる
ことができる。
抗体を得るために免疫する抗原としては、ヒトおよび各
種動物由来の細胞、タンパクおよび核酸などの高分子化
合物、ホルモンその他の低分子化合物など、一般に抗原
として使われる全ての物置を用いることができる。低分
子化合物を用いる場合には、抗原性を高めるためにウシ
血清アルブミンなどのタンパク質に結合させた状態で免
疫することが望ましい。
種動物由来の細胞、タンパクおよび核酸などの高分子化
合物、ホルモンその他の低分子化合物など、一般に抗原
として使われる全ての物置を用いることができる。低分
子化合物を用いる場合には、抗原性を高めるためにウシ
血清アルブミンなどのタンパク質に結合させた状態で免
疫することが望ましい。
また、抗体に結合させる酵素としては、西洋ワサビペル
オキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクト
シダーゼなど酵素免疫測定に一般に用いられる多くの酵
素が対象となるが、特に西洋ワサビペルオキシダーゼが
好ましく用いられる。
オキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクト
シダーゼなど酵素免疫測定に一般に用いられる多くの酵
素が対象となるが、特に西洋ワサビペルオキシダーゼが
好ましく用いられる。
これらの酵素を抗体に結合させる方法としては、グルタ
ルアルデヒドを用いる方法、過ヨウ素酸法、マレイミド
法などこれまでに知られている全て方法が可能である。
ルアルデヒドを用いる方法、過ヨウ素酸法、マレイミド
法などこれまでに知られている全て方法が可能である。
結合する酵素の数を一定−にするためにはマレイミド・
ヒンジ法[Yoshitakeら、 J、Bioch
em、 921413(1982) ]が優れており、
特に酵素として西洋ワサビペルオキシダーゼを用いる場
合には、この方法が適している。
ヒンジ法[Yoshitakeら、 J、Bioch
em、 921413(1982) ]が優れており、
特に酵素として西洋ワサビペルオキシダーゼを用いる場
合には、この方法が適している。
本発明で用いられるヒドロキシアパタイトカラムは、一
般のカラムクロマトグラフィー用および高速液体カラム
クロマトグラフィー用のいずれもが使用できる。一般力
ラムクロマトグラフィー用の充填剤としてはB1o−G
e1 HT ”および”8io−Gel HTP “
(バイオ・ラッド社製)など、また高速液体クロマトグ
ラフィー用のカラムとしては、“HC^−Co l u
mn“(三井東圧化学(株)製)など多くの市販品が入
手可能である。
般のカラムクロマトグラフィー用および高速液体カラム
クロマトグラフィー用のいずれもが使用できる。一般力
ラムクロマトグラフィー用の充填剤としてはB1o−G
e1 HT ”および”8io−Gel HTP “
(バイオ・ラッド社製)など、また高速液体クロマトグ
ラフィー用のカラムとしては、“HC^−Co l u
mn“(三井東圧化学(株)製)など多くの市販品が入
手可能である。
分離時間を短くするためには、1ml/min程度の高
淳速が可能な高速液体クロマトグラフィーを用いること
が好ましい。
淳速が可能な高速液体クロマトグラフィーを用いること
が好ましい。
サンプルの溶出のための溶離液としては、リン酸ナトリ
ウムM街液、リン酸カリウム緩衝液など一般にヒドロキ
シアパタイトカラムクロマトで用いられる溶離液が使用
できる。サンプルの溶出は直線濃度勾配、段階的濃度勾
配のいずれもが用いられる。いずれの場合にも低イオン
強度から高イオン強度への濃度勾配が一般的に用いられ
るが、PH勾配による溶出も可能であり、両者を組み合
わせて用いることがさらに好ましい。また、サンプルに
よっては、低能度のカルシウムイオン、マグネシウムイ
オンなどで効果的な分離が得られることもある。
ウムM街液、リン酸カリウム緩衝液など一般にヒドロキ
シアパタイトカラムクロマトで用いられる溶離液が使用
できる。サンプルの溶出は直線濃度勾配、段階的濃度勾
配のいずれもが用いられる。いずれの場合にも低イオン
強度から高イオン強度への濃度勾配が一般的に用いられ
るが、PH勾配による溶出も可能であり、両者を組み合
わせて用いることがさらに好ましい。また、サンプルに
よっては、低能度のカルシウムイオン、マグネシウムイ
オンなどで効果的な分離が得られることもある。
(実施例)
以下本発明を実施例により詳細に説明する。
実施例1
ヒト結腸癌細胞を免疫して得られたマウスモノクローナ
ル抗体、抗CA 19−9抗体(class IIJ
G1 ) [Koprowskiら、Somatic
Ce1l GeneticS、5 957 (1979
) ] 55m]と西洋ワサビペルオキシダーゼ9.2
mgとの結合反応をマレイミド・ヒンジ法により行ない
、11111の反応液を得た。
ル抗体、抗CA 19−9抗体(class IIJ
G1 ) [Koprowskiら、Somatic
Ce1l GeneticS、5 957 (1979
) ] 55m]と西洋ワサビペルオキシダーゼ9.2
mgとの結合反応をマレイミド・ヒンジ法により行ない
、11111の反応液を得た。
このうちの190μmをヒドロキシアパタイトカラム(
三井東圧化学(株)製、HCAカラムA−7610にア
プライし、高速液体クロマトグラフィー(ファルマシア
(株)製、ファルマシアFPLC)を用いて1 ml/
minの流速で10mMリン酸ナトリウム緩衝液PH5
,8(A液)から500mMリン酸ナトリウムM’S液
PH6゜8(B液)への濃度勾配で溶出させた。充分な
分離を得るために、標識抗体の溶出する100mM付近
では濃度勾配をゆるやかにして溶出を行なった。ピーク
の検出は、280nmの紫外吸収およびペルオキシダー
ゼに由来する403nmの可視吸収を同時にモニターし
て行なった。
三井東圧化学(株)製、HCAカラムA−7610にア
プライし、高速液体クロマトグラフィー(ファルマシア
(株)製、ファルマシアFPLC)を用いて1 ml/
minの流速で10mMリン酸ナトリウム緩衝液PH5
,8(A液)から500mMリン酸ナトリウムM’S液
PH6゜8(B液)への濃度勾配で溶出させた。充分な
分離を得るために、標識抗体の溶出する100mM付近
では濃度勾配をゆるやかにして溶出を行なった。ピーク
の検出は、280nmの紫外吸収およびペルオキシダー
ゼに由来する403nmの可視吸収を同時にモニターし
て行なった。
溶出パターンは第1図に示す。実線は各々の波長の吸光
度を、点線はグラジェントを表わす。
度を、点線はグラジェントを表わす。
3個の主要ピークを分収後標識抗体としての活性を測定
した結果、−一一 で示す2番目のピークが目的の標識
抗体であり、1番目のビクは未反応のペルオキシダーゼ
、3番目のとりは未反応の抗体であることが明らかにさ
れた。
した結果、−一一 で示す2番目のピークが目的の標識
抗体であり、1番目のビクは未反応のペルオキシダーゼ
、3番目のとりは未反応の抗体であることが明らかにさ
れた。
実施例2
ヒト乳癌肝転移細胞の膜フラクションを免疫して得られ
たマウスモノクローナル抗体DF3(C1ass I
gG1 ) [Kufcら、HybridOma 、
3223 (1984)] 10mgと西洋ワサビペ
ルオキシダーゼ9.2m(]との結合反応をマレイミド
・ヒンジ法により行ない、2mlの反応液を得た。
たマウスモノクローナル抗体DF3(C1ass I
gG1 ) [Kufcら、HybridOma 、
3223 (1984)] 10mgと西洋ワサビペ
ルオキシダーゼ9.2m(]との結合反応をマレイミド
・ヒンジ法により行ない、2mlの反応液を得た。
このうちの50μlをヒドロキシアパタイトカラム(三
井東圧化学(株)製、HCAカラムA−7610>にア
プライし、実施例1と同じ条件で溶出を行なった。28
0nmの紫外吸収でモニターした溶出パターンを第2図
に示す。各ピークを分収後、各々の403nmの吸収お
よび標識抗体としての活性を測定した結果、1番目のピ
ークは未反応のペルオキシダーゼ、2番目のピークが標
識抗体、3番目のピークは未反応の抗体であることが明
らかにされた。
井東圧化学(株)製、HCAカラムA−7610>にア
プライし、実施例1と同じ条件で溶出を行なった。28
0nmの紫外吸収でモニターした溶出パターンを第2図
に示す。各ピークを分収後、各々の403nmの吸収お
よび標識抗体としての活性を測定した結果、1番目のピ
ークは未反応のペルオキシダーゼ、2番目のピークが標
識抗体、3番目のピークは未反応の抗体であることが明
らかにされた。
(発明の効果)
本発明は酵素標識抗体を簡便かつ短時間に精製する方法
であり、1段階の精製で標識抗体を未標識抗体および酵
素から特異的に単離することができ、酵素免疫測定を用
いた各種疾患の診断、微量物質の定景をはじめとする多
くの分野で極めて有効に活用できる。
であり、1段階の精製で標識抗体を未標識抗体および酵
素から特異的に単離することができ、酵素免疫測定を用
いた各種疾患の診断、微量物質の定景をはじめとする多
くの分野で極めて有効に活用できる。
第1図は実施例1における抗CA19−9抗体と西洋ワ
サビペルオキシダーゼの結合反応後の溶液の分離パター
ンである。第2図は、実施例2におけるDF3抗体と西
洋ワサビペルオキシダーゼの結合反応後の溶液の分離パ
ターンである。 特許出願人 東 し 株 式 会 社 吸光度 lj03nm Q、1 280nm Q、1 %(D;l支)
サビペルオキシダーゼの結合反応後の溶液の分離パター
ンである。第2図は、実施例2におけるDF3抗体と西
洋ワサビペルオキシダーゼの結合反応後の溶液の分離パ
ターンである。 特許出願人 東 し 株 式 会 社 吸光度 lj03nm Q、1 280nm Q、1 %(D;l支)
Claims (1)
- (1)酵素標識抗体を分離精製する際に、ヒドロキシア
パタイトカラムを用いることを特徴とする酵素標識抗体
の分離精製方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63150889A JPH022937A (ja) | 1988-06-17 | 1988-06-17 | 酵素標識抗体の分離精製方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63150889A JPH022937A (ja) | 1988-06-17 | 1988-06-17 | 酵素標識抗体の分離精製方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH022937A true JPH022937A (ja) | 1990-01-08 |
Family
ID=15506599
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63150889A Pending JPH022937A (ja) | 1988-06-17 | 1988-06-17 | 酵素標識抗体の分離精製方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH022937A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7122641B2 (en) | 2001-12-21 | 2006-10-17 | Immunex Corporation | Methods for purifying protein |
WO2011037094A1 (ja) * | 2009-09-25 | 2011-03-31 | Hoya株式会社 | 分離方法 |
US8993715B2 (en) | 2009-07-06 | 2015-03-31 | Canon Kabushiki Kaisha | Labeled protein and method for obtaining the same |
-
1988
- 1988-06-17 JP JP63150889A patent/JPH022937A/ja active Pending
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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