JPH02113898A - アンモニアの定量方法およびそれに用いるキット - Google Patents
アンモニアの定量方法およびそれに用いるキットInfo
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- JPH02113898A JPH02113898A JP1183530A JP18353089A JPH02113898A JP H02113898 A JPH02113898 A JP H02113898A JP 1183530 A JP1183530 A JP 1183530A JP 18353089 A JP18353089 A JP 18353089A JP H02113898 A JPH02113898 A JP H02113898A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、体液または他の試料中のアンモニアの定貧方
法、および該方法を行うのに使用する試薬含有キットに
関する。
法、および該方法を行うのに使用する試薬含有キットに
関する。
(従来の技術および発明が解決しようとする課題)血中
アンモニアレベルの決定は、数多くの病的状聾の臨床診
断において重要である。血中アンモニアレベルが上界し
ていることは、肝@疾屯、肝性昏睡、ライエ症候群、心
不全および胎児赤芽球症と関連している。アンモニアレ
ベルをモニターすることはまた、叶臓移植を受けた6者
および過栄jtのΦ各の臨床管理において有用である。
アンモニアレベルの決定は、数多くの病的状聾の臨床診
断において重要である。血中アンモニアレベルが上界し
ていることは、肝@疾屯、肝性昏睡、ライエ症候群、心
不全および胎児赤芽球症と関連している。アンモニアレ
ベルをモニターすることはまた、叶臓移植を受けた6者
および過栄jtのΦ各の臨床管理において有用である。
試料中のアンモニアし・ベルを決定することはまた、化
学工業から食品産業に至る種々の産業分野で行なわれて
いる。化学品、肥料のような原料物質、パン製品やフル
ーツノユースのような食糧品などの試料か定期的に分析
されている。
学工業から食品産業に至る種々の産業分野で行なわれて
いる。化学品、肥料のような原料物質、パン製品やフル
ーツノユースのような食糧品などの試料か定期的に分析
されている。
アンモニアの臨床決定のための従来法では、般に、アン
モニウムイオンから揮発形のアンモニアへの変換をもと
にしたアンモニアの滴定分析または分光分析が行なわれ
ていfこ。しかしながら、系中にアンモニア以外の揮発
成分が含まれている場合には困維が伴った。加えて、ア
ンモニアを決定するときのアッセイ条件はアミド分解反
応および脱アミ、ノ化反応を促進するためアッセイ結果
が不正確なものとなっていた。たとえ、f1ヘルテロソ
ト反応によるアンモニアの分光的決定では、分析に先立
って除タンパク質する必要がある。除タノバク質は酸性
pHで行なわれる工程であり、正常部位にアンモニアが
生成され、間違った高いアンモニア値が得られろ。
モニウムイオンから揮発形のアンモニアへの変換をもと
にしたアンモニアの滴定分析または分光分析が行なわれ
ていfこ。しかしながら、系中にアンモニア以外の揮発
成分が含まれている場合には困維が伴った。加えて、ア
ンモニアを決定するときのアッセイ条件はアミド分解反
応および脱アミ、ノ化反応を促進するためアッセイ結果
が不正確なものとなっていた。たとえ、f1ヘルテロソ
ト反応によるアンモニアの分光的決定では、分析に先立
って除タンパク質する必要がある。除タノバク質は酸性
pHで行なわれる工程であり、正常部位にアンモニアが
生成され、間違った高いアンモニア値が得られろ。
アンモニアの決定のために酵素法を導入することにより
、上記の不都合がなくなった[スカンド(Scand)
のJ 、Cl1n、Lab、 Invest、、 I
6(1964)443参照]。そのような酵素系におい
ては、過剰のα−ケトグルタレート、ニコチンアミドア
デニンジヌクレオチド(NADH)、および■7−グル
タミン酸脱水素酵素(GLDH)が用いられていた。
、上記の不都合がなくなった[スカンド(Scand)
のJ 、Cl1n、Lab、 Invest、、 I
6(1964)443参照]。そのような酵素系におい
ては、過剰のα−ケトグルタレート、ニコチンアミドア
デニンジヌクレオチド(NADH)、および■7−グル
タミン酸脱水素酵素(GLDH)が用いられていた。
そのような酵素系では、アンモニアをα−ケトグルタレ
ートと接触させてグルタメ−1・を生成させ、それと同
時にNA D T−(をNADに酸化していた。
ートと接触させてグルタメ−1・を生成させ、それと同
時にNA D T−(をNADに酸化していた。
N A D Hの減少は試料中のアンモニアの濃変に正
比例しており、340nmにおけるN A D Hの吸
光、空の減少を決定することにより都合よく測定するこ
とができる。
比例しており、340nmにおけるN A D Hの吸
光、空の減少を決定することにより都合よく測定するこ
とができる。
臨床化学の実験室では、初期の酵素法で試料として酸に
より除タンパク質した全血を用いた。上述したように、
そのような除タンパク質は間違った高いアンモニア値を
与えるので、測定の正確さに影響が出る。モンドザック
(Mondzac)ら[J、Lab、clin、Med
、66(1965)526参照コは、除タンパク質した
試料の代わりにヘパリン化した血塁を用いた改良GLD
H法を記載している。この方法の不利な点は、他の血漿
成分(酵素など)がN A D l(と反応するため真
の終点が存在しないように、思われることである。この
ことを回避するために、前インキュベーンヨン時間を1
5〜20分間と長くし、これらの交差反応物質を前以て
反応さけておくことが行なわれた。しかしながら、その
ような前インキュベーションも、これらの交差反応を完
全に除くことはできなかった。
より除タンパク質した全血を用いた。上述したように、
そのような除タンパク質は間違った高いアンモニア値を
与えるので、測定の正確さに影響が出る。モンドザック
(Mondzac)ら[J、Lab、clin、Med
、66(1965)526参照コは、除タンパク質した
試料の代わりにヘパリン化した血塁を用いた改良GLD
H法を記載している。この方法の不利な点は、他の血漿
成分(酵素など)がN A D l(と反応するため真
の終点が存在しないように、思われることである。この
ことを回避するために、前インキュベーンヨン時間を1
5〜20分間と長くし、これらの交差反応物質を前以て
反応さけておくことが行なわれた。しかしながら、その
ような前インキュベーションも、これらの交差反応を完
全に除くことはできなかった。
米国特許下3.929,581号明細書には、モンドザ
ブクの改良法であり、初期の方法の不都合ろくなくなっ
たとされている酵素法が記載されている。この米国特許
は、試料として除タンパク質しない血漿を使用すること
を教示している。試料を還元型ニコチンアニドアデニン
ジヌクレオチド化合物(NADPH)およびG L D
Hと接触させろ。
ブクの改良法であり、初期の方法の不都合ろくなくなっ
たとされている酵素法が記載されている。この米国特許
は、試料として除タンパク質しない血漿を使用すること
を教示している。試料を還元型ニコチンアニドアデニン
ジヌクレオチド化合物(NADPH)およびG L D
Hと接触させろ。
加えて、G L D T−1を安定化し酵素反応を促進
するためにアデノノンニリン酸(ADP)が含まれてい
る。特許権者は、アッセイを行うのに杓5分間かかると
報告しており、これは前インキュベーノヨン朋間を必要
としないという事実に一部よってい・So上記アッセイ
成分を組み合わせると、木質的に交差反応がなく、それ
ゆえアンモニアに特W的なアッセイが得られる。
するためにアデノノンニリン酸(ADP)が含まれてい
る。特許権者は、アッセイを行うのに杓5分間かかると
報告しており、これは前インキュベーノヨン朋間を必要
としないという事実に一部よってい・So上記アッセイ
成分を組み合わせると、木質的に交差反応がなく、それ
ゆえアンモニアに特W的なアッセイが得られる。
一ヒ記特許権咎は、N・〜DHの代わりにNA D P
IIを使用することは1つのニコチンアニドアデニンジ
ヌクレオチド化合物を他のニコチンアニドアデニンジヌ
クレオチド化合物で自明に置き換えたしのではないと議
論した。N A D +−1の使用で交差反応の問題が
見られたので、同じ間厘がN A D P[−(でも起
こることが予想された。さらに、GLDl−(は、N
A D P Hに比べてN 、A D Hと遥かに速や
かに反応するため、NADPHでは望ましくない’FJ
遅い反応となることが教示された。しかしなう(ら、米
国特許下3.929,581号の方法では、これらの問
題のいずれら生じなかったつ(、′2題を解決するため
の手段) 本発明の目的は、除タンパク質する必要なく、またN
A D r−+を使用することなく血中アンモニアレベ
ルを試験する別の方法を提供することにある。
IIを使用することは1つのニコチンアニドアデニンジ
ヌクレオチド化合物を他のニコチンアニドアデニンジヌ
クレオチド化合物で自明に置き換えたしのではないと議
論した。N A D +−1の使用で交差反応の問題が
見られたので、同じ間厘がN A D P[−(でも起
こることが予想された。さらに、GLDl−(は、N
A D P Hに比べてN 、A D Hと遥かに速や
かに反応するため、NADPHでは望ましくない’FJ
遅い反応となることが教示された。しかしなう(ら、米
国特許下3.929,581号の方法では、これらの問
題のいずれら生じなかったつ(、′2題を解決するため
の手段) 本発明の目的は、除タンパク質する必要なく、またN
A D r−+を使用することなく血中アンモニアレベ
ルを試験する別の方法を提供することにある。
本発明の池の目的は、自動化診断システムでも使用可能
なほど充分速く行うことのできる血中アンモニアアッセ
イ法を開発することにある。とりわけ、本発明の他の目
的は、血中アンモニアを試験するための自動化診断シス
テムに使用することのできる試薬試験キットを提供する
ことにある。
なほど充分速く行うことのできる血中アンモニアアッセ
イ法を開発することにある。とりわけ、本発明の他の目
的は、血中アンモニアを試験するための自動化診断シス
テムに使用することのできる試薬試験キットを提供する
ことにある。
すなわち、本発明は、試料中のアンモニアの定量方法で
あって、 (a)試料を、グルタミン酸脱水素酵素、α−ケトグル
タレートおよび還元型ニコチンアミドヒボキサンチンジ
ヌクレオチドリン酸と、存在ずろアンモニアを使い冬く
ずのに充分な時間接触させ、(b)分光光度計または他
の手段により吸光度の変化をホ11定することにより試
料中に存在するアンモニアの9を決定J゛る、ことを特
徴どする方法試1ト中のアンモニアの定量方法でちって
、(a)試料を、α−ケトグルタレートおよび還元型ニ
コヂンアミドヒボキサンヂンノヌクレオチドリン酸と接
触させ、 (b)!r!L初の吸光度を測定し、 (C)実質的にすべてのアンモニアを使い尽くすまで充
分な時間グルタミン酸脱水素酵素を加え、ついで (d)最終の吸光度を測定し、最初と最終の間の吸光度
の変化を計算することにより試料中のアンモニアの量を
決定する、ことを特徴とする方法:(a)バッファー中
のグルタミン酸脱水素酵素およびα−ケトグルタレート
。
あって、 (a)試料を、グルタミン酸脱水素酵素、α−ケトグル
タレートおよび還元型ニコチンアミドヒボキサンチンジ
ヌクレオチドリン酸と、存在ずろアンモニアを使い冬く
ずのに充分な時間接触させ、(b)分光光度計または他
の手段により吸光度の変化をホ11定することにより試
料中に存在するアンモニアの9を決定J゛る、ことを特
徴どする方法試1ト中のアンモニアの定量方法でちって
、(a)試料を、α−ケトグルタレートおよび還元型ニ
コヂンアミドヒボキサンヂンノヌクレオチドリン酸と接
触させ、 (b)!r!L初の吸光度を測定し、 (C)実質的にすべてのアンモニアを使い尽くすまで充
分な時間グルタミン酸脱水素酵素を加え、ついで (d)最終の吸光度を測定し、最初と最終の間の吸光度
の変化を計算することにより試料中のアンモニアの量を
決定する、ことを特徴とする方法:(a)バッファー中
のグルタミン酸脱水素酵素およびα−ケトグルタレート
。
(b)還元型ニコ壬ンアミドヒボギサンチンノヌクレオ
ヂドリン酸;および (c)希釈バブファー からなり、(a)、(b)および(c)!成分を別々の
区画に収納しであることを特徴とする試料中のアンモニ
アレベル測定用キット: (a)約0 、0 f〜1p0.25\1のリン酸バッ
ファーp!17〜7.4;約1iM〜約1〜1のα−ケ
トグルタレート、約100〜約to、0OOU/8!ジ
のグルタミン酸脱水素酵素:およびグリセ【ノール(b
)約0.5〜約10m?viのニコチンアミドヒボキサ
ンチン5jヌケレオチドリン酸水溶液(pH約10)、
および安定化剤、および (c)約001〜約0.25Mのトリス−(ヒドロキノ
メチル)アミノメタノバッファー(p I■約8,2〜
約8.6) からなり、(a)、(b)および(c)各成分を別々の
区画に収納しであることを特徴とfろ試料中のアンモニ
アレベル測定用キット。
ヂドリン酸;および (c)希釈バブファー からなり、(a)、(b)および(c)!成分を別々の
区画に収納しであることを特徴とする試料中のアンモニ
アレベル測定用キット: (a)約0 、0 f〜1p0.25\1のリン酸バッ
ファーp!17〜7.4;約1iM〜約1〜1のα−ケ
トグルタレート、約100〜約to、0OOU/8!ジ
のグルタミン酸脱水素酵素:およびグリセ【ノール(b
)約0.5〜約10m?viのニコチンアミドヒボキサ
ンチン5jヌケレオチドリン酸水溶液(pH約10)、
および安定化剤、および (c)約001〜約0.25Mのトリス−(ヒドロキノ
メチル)アミノメタノバッファー(p I■約8,2〜
約8.6) からなり、(a)、(b)および(c)各成分を別々の
区画に収納しであることを特徴とfろ試料中のアンモニ
アレベル測定用キット。
(a)約16ズg/Ilジのα−ケトグルタレート、約
5720、/v+7!のグルタミン酸脱水素酵素、約0
05〜1のリン酸バッファー(pl−(約7.0〜7,
4)、約33%(v/v)のグリセロール、約0.05
mg/iQのウノガンマグロプリン、および約0 、5
m!7/ −、、(!のアノ化ナトリウム。
5720、/v+7!のグルタミン酸脱水素酵素、約0
05〜1のリン酸バッファー(pl−(約7.0〜7,
4)、約33%(v/v)のグリセロール、約0.05
mg/iQのウノガンマグロプリン、および約0 、5
m!7/ −、、(!のアノ化ナトリウム。
(1))約4*g/m(のニコチンアミトヒボキサンチ
ンノヌクレオヂドリン酸、約50%のプロピレングリコ
ール、約1qg/M(jのアジ化ナトリウム、約31*
g/−ICのホウ酸、約16297 HQのヒノンバソ
ファ、pi−1約10.2.および (c)約0.01Mのトリスバッファー、約5 mg
/ mQのポリオキンエヂレンラウリルエーテル、約0
゜2n/−Qの分子m約500,000の硫酸デキスト
ラン、pI−(約82 からなり、(a)、(b’)および(C)各成分を別々
の区画に収納しであることを特徴とする試料中・)アン
モニア′vl\ル、il’l定用キット、および(r動
量のグルタミン酸脱水素酵素、α−ケトクルタL−−1
−1還元型ニコチンアミドヒボキサンヂノジヌクレオチ
トリノ酸の8)末とバッファーとを1パツケージ中に納
めたことを特徴とする、試料中、つアンモニアレベルl
uす走用キットを提(;(するらの゛ごある。
ンノヌクレオヂドリン酸、約50%のプロピレングリコ
ール、約1qg/M(jのアジ化ナトリウム、約31*
g/−ICのホウ酸、約16297 HQのヒノンバソ
ファ、pi−1約10.2.および (c)約0.01Mのトリスバッファー、約5 mg
/ mQのポリオキンエヂレンラウリルエーテル、約0
゜2n/−Qの分子m約500,000の硫酸デキスト
ラン、pI−(約82 からなり、(a)、(b’)および(C)各成分を別々
の区画に収納しであることを特徴とする試料中・)アン
モニア′vl\ル、il’l定用キット、および(r動
量のグルタミン酸脱水素酵素、α−ケトクルタL−−1
−1還元型ニコチンアミドヒボキサンヂノジヌクレオチ
トリノ酸の8)末とバッファーとを1パツケージ中に納
めたことを特徴とする、試料中、つアンモニアレベルl
uす走用キットを提(;(するらの゛ごある。
・ド発明は、試料中のアンモニアの量を決定するのに用
いる方法およびキットに[シコオるものである。
いる方法およびキットに[シコオるものである。
、!−発明の方法は、試料を、GLDH1lχ−ケ)、
グルタレート、および還元型ニコチンアミドヒポキサン
チンジヌクレオチドリン酸(N I−I XD P H
)と接独さ口、ついてそれから拭t4中に存在するアン
モニアの虫を決定することを含む。
グルタレート、および還元型ニコチンアミドヒポキサン
チンジヌクレオチドリン酸(N I−I XD P H
)と接独さ口、ついてそれから拭t4中に存在するアン
モニアの虫を決定することを含む。
本発明の方法に用いる試2は、キット・′、)形に組g
;イ’)せ、キ・ノドの成分、すなわち々゛ルタミン酸
脱水素酵素/α−ケトグルタレート、NHXDP)(お
よびバッファーを別々に・(1ケーノングし、本発明方
法において試薬システムとして容易に組合わU゛て用い
ることかできる。特に、本発明の試薬はま1こ自動託:
断ンステムに容易に適用することができ、それにより試
験の再現性と正確さが保証されろ。
;イ’)せ、キ・ノドの成分、すなわち々゛ルタミン酸
脱水素酵素/α−ケトグルタレート、NHXDP)(お
よびバッファーを別々に・(1ケーノングし、本発明方
法において試薬システムとして容易に組合わU゛て用い
ることかできる。特に、本発明の試薬はま1こ自動託:
断ンステムに容易に適用することができ、それにより試
験の再現性と正確さが保証されろ。
以下、・ド発明をさらに詳しく説明4”る。
本発明は、試料中に存在するアンモニアの噴を決定する
た、・うり:)一方法およびキットに関4−る。本発明
の方法;よ、試料を、G 1.、 I) H2C−ケト
グルタレートおよびNII KD P I−tと、存在
するアンモニアを使い尽< L :’J +−I XD
P )IをNHxDPに酸化するのに充分な゛1ν間
接触させ、吸・上空こ・)変化を分光光度計上た:よ他
の手段によl)測定し、ついてそれかろ試料中に(j在
するアンモニアのり1を決定する−とからなるや反応は
詳しく記載′A−ると次の、Jン“)になる。
た、・うり:)一方法およびキットに関4−る。本発明
の方法;よ、試料を、G 1.、 I) H2C−ケト
グルタレートおよびNII KD P I−tと、存在
するアンモニアを使い尽< L :’J +−I XD
P )IをNHxDPに酸化するのに充分な゛1ν間
接触させ、吸・上空こ・)変化を分光光度計上た:よ他
の手段によl)測定し、ついてそれかろ試料中に(j在
するアンモニアのり1を決定する−とからなるや反応は
詳しく記載′A−ると次の、Jン“)になる。
(ン1、Dil
Nil+、 + a−ケトグルタレ)十′1IIX
r)P11=−一−−=−−−−=−ンク゛唄タメー)
−Ni1xDi’ N A D P Hを含有する試薬システムに比べて、
NHxDPIで1工]製した試薬:j終へに達するのか
速く、その7rこめ一層効率的な反応ンステJ、か得ら
れる。第1図に示すように、アンモニア濃度が10 u
9/ *f2(v/v)の標皇水溶液を用いて本発明
の方法を行った。同じ方法を用い、NIIにD P I
−1の代わりにN A I) P l−(を用いた一連
の比較試験ら行−・た。二N AI) りI+反応では
、約175秒すなわち約3分間で事由および安定な終I
j入に達しゾこ。NiIXD P I(を含有する方法
では、約125秒すなわち杓1分間またはそれより速く
平衡に達した。
r)P11=−一−−=−−−−=−ンク゛唄タメー)
−Ni1xDi’ N A D P Hを含有する試薬システムに比べて、
NHxDPIで1工]製した試薬:j終へに達するのか
速く、その7rこめ一層効率的な反応ンステJ、か得ら
れる。第1図に示すように、アンモニア濃度が10 u
9/ *f2(v/v)の標皇水溶液を用いて本発明
の方法を行った。同じ方法を用い、NIIにD P I
−1の代わりにN A I) P l−(を用いた一連
の比較試験ら行−・た。二N AI) りI+反応では
、約175秒すなわち約3分間で事由および安定な終I
j入に達しゾこ。NiIXD P I(を含有する方法
では、約125秒すなわち杓1分間またはそれより速く
平衡に達した。
この反応速度の北昇は、本発明の方法を自動診断ンステ
ムに用いる場合にはとりわけ重要である。
ムに用いる場合にはとりわけ重要である。
たとえば、アポットスベクトラムハイパーフォーマンス
ダイアグノスティックンステJ、(AbbottSpe
ctrum I[igh Performance D
iagnostic 5ystel11)(アボット・
ラボラトリーズ、アボットバーク、イリノイ)は、種々
の診断アッセイを行い、その効率が予定している試験の
全反応時間に依存4゛るランダムアクセス分析システム
である。反応時間の短縮により試料の処理量が劇的に増
加ずろ。
ダイアグノスティックンステJ、(AbbottSpe
ctrum I[igh Performance D
iagnostic 5ystel11)(アボット・
ラボラトリーズ、アボットバーク、イリノイ)は、種々
の診断アッセイを行い、その効率が予定している試験の
全反応時間に依存4゛るランダムアクセス分析システム
である。反応時間の短縮により試料の処理量が劇的に増
加ずろ。
このようなNADPHの代わりにN HXD P Iを
用いることによる反応速度の増加は、1こだ単にこイ′
″Lろ2つのジヌクレオヂドリン酸化合物の構造4二の
類似性に着眼すれば予期されなかったしのでp i−)
、とりわけ、ある場合には反対の結果さえ観察されたの
で予期されなかったものであった。たとえば、ストーン
(Stone)ら[B iochem、 23 (19
84)、・1340参照]は、ノヒドロ葉酸すグクタゼ
の場合にはN it XD P I−1はN 、A D
P Hよりら反応が遅かったと報告している。
用いることによる反応速度の増加は、1こだ単にこイ′
″Lろ2つのジヌクレオヂドリン酸化合物の構造4二の
類似性に着眼すれば予期されなかったしのでp i−)
、とりわけ、ある場合には反対の結果さえ観察されたの
で予期されなかったものであった。たとえば、ストーン
(Stone)ら[B iochem、 23 (19
84)、・1340参照]は、ノヒドロ葉酸すグクタゼ
の場合にはN it XD P I−1はN 、A D
P Hよりら反応が遅かったと報告している。
試料としては、面漿、血清、尿または他の体液h・、ら
選ばれたしのを用いることができる。本発明の方法は生
物学的試料に特に適しているらのである(月1どし、化
学プロセスのための原料物質、化学製品および食糧品の
ような産業上または商業上の使用から得られた試料に使
用することができるか、もしくは使用すべく適合するこ
とができろということも千1tJIされる。
選ばれたしのを用いることができる。本発明の方法は生
物学的試料に特に適しているらのである(月1どし、化
学プロセスのための原料物質、化学製品および食糧品の
ような産業上または商業上の使用から得られた試料に使
用することができるか、もしくは使用すべく適合するこ
とができろということも千1tJIされる。
本発明の方法は中性からややアルカリ性のp Hで行う
が、これはGLDHの活性がこのpH範囲で最適である
からである。このpH範囲は、約6から約9.5、好ま
しくは約8から9である。本発明の7ノセイ法は、約8
3から約85のややアルカリ性の範囲、とりわ(土pH
8,4で行うのが特に好ましい。pHをこのアルカリ性
のf!囲に保持するために、トリス−(ヒドロキシメチ
ル)−アミノメタンバッファーを用いるが、池の適当な
バー277−またはバッファー系、たとえばリン酸バッ
ファーやトリエタノールアミンバッファーを用いること
(、できる。
が、これはGLDHの活性がこのpH範囲で最適である
からである。このpH範囲は、約6から約9.5、好ま
しくは約8から9である。本発明の7ノセイ法は、約8
3から約85のややアルカリ性の範囲、とりわ(土pH
8,4で行うのが特に好ましい。pHをこのアルカリ性
のf!囲に保持するために、トリス−(ヒドロキシメチ
ル)−アミノメタンバッファーを用いるが、池の適当な
バー277−またはバッファー系、たとえばリン酸バッ
ファーやトリエタノールアミンバッファーを用いること
(、できる。
試¥;調製物中のGLDI(の濃度は、少な(ともIU
/’1ff(活性111位/1g)であり、反応混合物
中のα−ナトグルタレート:)α9は少なくとも1m〜
1て−5る5さ:I−fD P Hの濃度は、約O,O
S−約05m″N71の範囲でちる。
/’1ff(活性111位/1g)であり、反応混合物
中のα−ナトグルタレート:)α9は少なくとも1m〜
1て−5る5さ:I−fD P Hの濃度は、約O,O
S−約05m″N71の範囲でちる。
C(ζ液試t↓、特に血液、血景、および血、・87ト
リツクス成分を安定化させるために、安定化剤を任きに
用いろことができる。安定化剤は、界面活性剤と硫酸ギ
キスランの混合物であり、好ましくは、ポリエヂレンラ
ウリルエーテルとエチレノオキントおよび分子噴が約5
00,000の硫酸デキスラン23モルとの混合物であ
る。
リツクス成分を安定化させるために、安定化剤を任きに
用いろことができる。安定化剤は、界面活性剤と硫酸ギ
キスランの混合物であり、好ましくは、ポリエヂレンラ
ウリルエーテルとエチレノオキントおよび分子噴が約5
00,000の硫酸デキスラン23モルとの混合物であ
る。
つぎに実施例に基づいて本発明をさらに詳しく説明4−
ろが、本発明はこtlらに限られるらのではf工いっな
お本発明の方法は、少なくと62つの異なるやり方で行
う二とができる。実施例1は、1王程アンモニア試験法
であり、アンモニア(票鵡試r−12試<:yシfこ、
実施例2は、本発明の方法の他の態様を示すしのである
。実施例3は、本発明方法と公知方法と′J)相関関係
を決定したしのである。
ろが、本発明はこtlらに限られるらのではf工いっな
お本発明の方法は、少なくと62つの異なるやり方で行
う二とができる。実施例1は、1王程アンモニア試験法
であり、アンモニア(票鵡試r−12試<:yシfこ、
実施例2は、本発明の方法の他の態様を示すしのである
。実施例3は、本発明方法と公知方法と′J)相関関係
を決定したしのである。
′Jミ璋滑1↓。
下記成分l、2および3を調製した。
成分1;・
NIIyDPH(4tg/l(り
50%プロピレングリコール
アジ(ヒナト′Iウム(] −)c1../プ(★/゛
ν)゛)ホウ酸(3、l =?/ 、1f!h/v))
ビシンベッフy (16、M/ xQ(w/v))p
Illo、2 [成分2] α−ケトグルタレート(+6専g/籾(w/〜・))ゲ
ルタミン酸脱水素酵素(572U/ +Jりリン酸バッ
ファー(0,05M5pH7,0〜7 ・1)33%(
v 、/ v )グリセロールランガンマグロプリン(
0、05tq9/ =0(wr′い)アジ化ナトリウム
(0317″打(ン、/V))−成分3′2 +1−ノr I−グルタし一ト(2,6vN4:iトリ
スバッファー(0,0IM) Brij−35(ICIアメリカ(I CT Ame
ricaslne、、)製、ボリオキシエヂレン(23
)ラウリルエーテルX 5 l119/xch/ν))
硫酸デキストラン(平均分子9500,000XO2R
9/ I&(w/v)) p)(8,2 ト記成分1,2および3を試薬系として【:1:20
(v/v)の比で1昆合した。ついで、本発明のアッセ
イを自動2色診断用アナライザー上で行った。
ν)゛)ホウ酸(3、l =?/ 、1f!h/v))
ビシンベッフy (16、M/ xQ(w/v))p
Illo、2 [成分2] α−ケトグルタレート(+6専g/籾(w/〜・))ゲ
ルタミン酸脱水素酵素(572U/ +Jりリン酸バッ
ファー(0,05M5pH7,0〜7 ・1)33%(
v 、/ v )グリセロールランガンマグロプリン(
0、05tq9/ =0(wr′い)アジ化ナトリウム
(0317″打(ン、/V))−成分3′2 +1−ノr I−グルタし一ト(2,6vN4:iトリ
スバッファー(0,0IM) Brij−35(ICIアメリカ(I CT Ame
ricaslne、、)製、ボリオキシエヂレン(23
)ラウリルエーテルX 5 l119/xch/ν))
硫酸デキストラン(平均分子9500,000XO2R
9/ I&(w/v)) p)(8,2 ト記成分1,2および3を試薬系として【:1:20
(v/v)の比で1昆合した。ついで、本発明のアッセ
イを自動2色診断用アナライザー上で行った。
上記試薬系の250μQアリコートを、30℃に保持し
たキュベツト中に分配した。アンモニアを0.1.2.
4.6.8.10.12、I4.16および18μ9/
xc(w/v)自存する各アンモニア標亭液の試料(2
5μC)を、試薬系を含む@々のキュベツト中に直ちに
分配した。5.6秒後に3=101560nmでの分光
光、実計での最初の読み取りを行った。最初の読み取り
の3分後に2回目の分光光度計での読み取りを行い、2
つの値の間の吸光度の違いを得、各試料中のアンモニア
レベルを計算ずろのに用いた。
たキュベツト中に分配した。アンモニアを0.1.2.
4.6.8.10.12、I4.16および18μ9/
xc(w/v)自存する各アンモニア標亭液の試料(2
5μC)を、試薬系を含む@々のキュベツト中に直ちに
分配した。5.6秒後に3=101560nmでの分光
光、実計での最初の読み取りを行った。最初の読み取り
の3分後に2回目の分光光度計での読み取りを行い、2
つの値の間の吸光度の違いを得、各試料中のアンモニア
レベルを計算ずろのに用いた。
このアッセイの結果を第2図に示す。第2図は、アッセ
イで実際に得られたアンモニア値と予測されたアンモニ
ア値との間の相関係数が1,00であることを示してい
る。第2図の直線の傾きは0993であり、切片は0.
001である。
イで実際に得られたアンモニア値と予測されたアンモニ
ア値との間の相関係数が1,00であることを示してい
る。第2図の直線の傾きは0993であり、切片は0.
001である。
上記成分1.2および3では、記載した濃度のらのを用
いたが、実質的に同様の結果を得るために当業台はこれ
らのatを変えることができる。
いたが、実質的に同様の結果を得るために当業台はこれ
らのatを変えることができる。
寒施ダ壮
成分+12および3は、実施例1と同じである。
成分1(10071(りを成分3 (I xlりと混合
する。
する。
この混合物(0,5p、2)を厚さICJIの2個のキ
ュベツトのそれぞれに分配し、37℃に平衡化する。つ
いで、一方の干ユヘソトには血漿(0,05=C)を加
え、他方のキュベツトには水(0,05s&)を加えて
試料ブランクとする。キュベツトを混合し、340nm
での吸光度の最初の読み取りを行う。ついで、6キユベ
ツトに成分2(0,05yC)をI〕nえ、37°Cで
約3分間反応さ仕ろ。再び吸光度を測定し、2工程間で
の吸光度の違いを得、各試料中でのアンモニアレベルを
計算するのに用いる。
ュベツトのそれぞれに分配し、37℃に平衡化する。つ
いで、一方の干ユヘソトには血漿(0,05=C)を加
え、他方のキュベツトには水(0,05s&)を加えて
試料ブランクとする。キュベツトを混合し、340nm
での吸光度の最初の読み取りを行う。ついで、6キユベ
ツトに成分2(0,05yC)をI〕nえ、37°Cで
約3分間反応さ仕ろ。再び吸光度を測定し、2工程間で
の吸光度の違いを得、各試料中でのアンモニアレベルを
計算するのに用いる。
実施例3
実施例1に記載した手頃に従い、8つの血漿試料につい
てアンモニアレベルを測定した。r81時に同じ試料を
デュポンへ〇Aアンモニアアッセイ法を用いて分析した
。デュポン法は、非常に正確な方法として当業音に知ら
れているしのである。第3図は、本発明の方法をデュポ
ンA CAアンモニア値・lセイ法と比較しfこ場合に
高い相関関係を示す試験結果が得られることを示してい
る。なお第3図の直線の傾きは1.064であり、切片
は−0019であり、相関係数は0.998である。
てアンモニアレベルを測定した。r81時に同じ試料を
デュポンへ〇Aアンモニアアッセイ法を用いて分析した
。デュポン法は、非常に正確な方法として当業音に知ら
れているしのである。第3図は、本発明の方法をデュポ
ンA CAアンモニア値・lセイ法と比較しfこ場合に
高い相関関係を示す試験結果が得られることを示してい
る。なお第3図の直線の傾きは1.064であり、切片
は−0019であり、相関係数は0.998である。
試験を行った全部で89の血漿試料のうち10の代表的
な試料についてのアンモニア測定の結果を下記第1表に
示す。
な試料についてのアンモニア測定の結果を下記第1表に
示す。
試料2 1 0,54 0.48試料3
、 1.:38 1.31試料、1 ’
1.33 1 1.27試115 1 2.0
0 !、92試料6j5,86 □
5,59試料7 1 ・1.53 : 4.26
試料8 5.9″3 i 5.651拭薬
のキット中での配置は、敬多くの異なるやり方で行うこ
とができる。すべての試薬を粉末とし、これらを1)τ
1以て測定した量で1つの容器中に入れ、ついて水また
はバッファーまたはバッファー系を加えて作動試薬とす
ることができる。別法として、キットを種々の粉末およ
び液体試薬の組合わせからなるようにし、これらを使用
音が、昆合十ろかまたはこのアッセイを使用する診断器
具システムによりl混合するようにすることらでとる。
、 1.:38 1.31試料、1 ’
1.33 1 1.27試115 1 2.0
0 !、92試料6j5,86 □
5,59試料7 1 ・1.53 : 4.26
試料8 5.9″3 i 5.651拭薬
のキット中での配置は、敬多くの異なるやり方で行うこ
とができる。すべての試薬を粉末とし、これらを1)τ
1以て測定した量で1つの容器中に入れ、ついて水また
はバッファーまたはバッファー系を加えて作動試薬とす
ることができる。別法として、キットを種々の粉末およ
び液体試薬の組合わせからなるようにし、これらを使用
音が、昆合十ろかまたはこのアッセイを使用する診断器
具システムによりl混合するようにすることらでとる。
1゛〜、ての試薬は、いかなる形態であれ、適当な安定
化剤または安定化システムを含んでいてよい。
化剤または安定化システムを含んでいてよい。
試薬をキット中にバッケーノングすることができ、その
場合は、キットの個々の成分を別々に貯蔵しておき使用
11jにそれらを組合わせる。
場合は、キットの個々の成分を別々に貯蔵しておき使用
11jにそれらを組合わせる。
キット中の試薬の組合わせの一例として3つの別々の区
画からなるものが挙げられ、各区画は次のし)ずれかを
含んでいる。
画からなるものが挙げられ、各区画は次のし)ずれかを
含んでいる。
(a)バッファー中のGLDHおよびα−ケトグルタレ
ート (b)バッファー中のN I(X D P Hlおよび
(c)希釈バッファー キ7 l・中の試薬のパブケーンングの他の方法は、G
LDH,α−ケトグルタレート、NHxDPHおよびバ
ッファーまたはバッファー系を粉末状とし、すべての成
分を1つのパッケージ中で前以て混合しておくらのであ
る。使用者はまた、希釈バッフ7−を支給されるかまた
は使用者自身のバブファーまたは水を用いて試薬システ
ムを使用に適するように元に戻すことができる。AN以
て決められた比i貝で組合わせると作動アンモニア試薬
が得られ、゛吏験室lにより最小の時間消費でアンモニ
アアッセイを行うことができる。キt )□中の各試薬
に対して適用できる前辺て決められた比率の一例として
は、各別々の区画中に以下のものを含むしのが挙げられ
る。
ート (b)バッファー中のN I(X D P Hlおよび
(c)希釈バッファー キ7 l・中の試薬のパブケーンングの他の方法は、G
LDH,α−ケトグルタレート、NHxDPHおよびバ
ッファーまたはバッファー系を粉末状とし、すべての成
分を1つのパッケージ中で前以て混合しておくらのであ
る。使用者はまた、希釈バッフ7−を支給されるかまた
は使用者自身のバブファーまたは水を用いて試薬システ
ムを使用に適するように元に戻すことができる。AN以
て決められた比i貝で組合わせると作動アンモニア試薬
が得られ、゛吏験室lにより最小の時間消費でアンモニ
アアッセイを行うことができる。キt )□中の各試薬
に対して適用できる前辺て決められた比率の一例として
は、各別々の区画中に以下のものを含むしのが挙げられ
る。
(a)約0.01〜約0.25Mのリン酸バッファーp
H7〜?、JI:約1mM〜約IMのα−ケトグルタレ
ート、約100〜+0,000tJ/mcのグルタミン
酸脱水素酵素:およびグリセロール (l〕)水溶液中の約0.5〜約10mMのN HX
D P l−1(pt−i約10)、および安定化剤:
および(c)約001〜約025Mのトリス−(ヒドロ
キンメチル)−アミノメタンバッファー(pH約8.2
〜約86)
H7〜?、JI:約1mM〜約IMのα−ケトグルタレ
ート、約100〜+0,000tJ/mcのグルタミン
酸脱水素酵素:およびグリセロール (l〕)水溶液中の約0.5〜約10mMのN HX
D P l−1(pt−i約10)、および安定化剤:
および(c)約001〜約025Mのトリス−(ヒドロ
キンメチル)−アミノメタンバッファー(pH約8.2
〜約86)
第1図は、アンモニア漂ω試料を用い、本発明により測
定した結果とN)lxDPHの代わりにNA D P
Hを用いた比較法により測定した結果とを比較して示す
グラフ、第2図は、実施例1のアッセイにおいて、アッ
セイで実際に得られたアンモニア値と予測されたアンモ
ニア値との間の相関係数が100であることを示すグラ
フ、第3図は、本発明の方法とデュポンACAアンモニ
アアッセイとの間の相関関係を示すグラフである。 特許出願人 アボット・ラボラトリーズ代理に弁理士前
出 葆はか1名 FiGURE 2
定した結果とN)lxDPHの代わりにNA D P
Hを用いた比較法により測定した結果とを比較して示す
グラフ、第2図は、実施例1のアッセイにおいて、アッ
セイで実際に得られたアンモニア値と予測されたアンモ
ニア値との間の相関係数が100であることを示すグラ
フ、第3図は、本発明の方法とデュポンACAアンモニ
アアッセイとの間の相関関係を示すグラフである。 特許出願人 アボット・ラボラトリーズ代理に弁理士前
出 葆はか1名 FiGURE 2
Claims (8)
- (1)試料中のアンモニアの定量方法であって、(a)
試料を、グルタミン酸脱水素酵素、α−ケトグルタレー
トおよび還元型ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレ
オチドリン酸と、存在するアンモニアを使い尽くすのに
充分な時間接触させ、(b)分光光度計または池の手段
により吸光度の変化を測定することにより試料中に存在
するアンモニアの量を決定する ことを特徴とする方法。 - (2)試料と、グルタミン酸脱水素酵素、α−ケトグル
タレートおよび還元型ニコチンアミドヒポキサンチンジ
ヌクレオチドリン酸との接触を、pH範囲を約6〜約9
.5に保持したバッファー溶液中で行う請求項(1)記
載の方法。 - (3)アンモニアの量の決定をpH約6〜約9.5の範
囲にあるバッファー溶液中で行う請求項(2)記載の方
法。 - (4)試料中のアンモニアの定量方法であって、(a)
試料を、α−ケトグルタレートおよび還元型ニコチンア
ミドヒポキサンチンジヌクレオチドリン酸と接触させ、 (b)最初の吸光度を測定し、 (c)実質的にすべてのアンモニアを使い尽くすまで充
分な時間グルタミン酸脱水素酵素を加え、ついで (d)最終の吸光度を測定し、最初と最終の間の吸光度
の変化を計算することにより試料中のアンモニアの量を
決定する ことを特徴とする方法。 - (5)(a)バッファー中のグルタミン酸脱水素酵素お
よびα−ケトグルタレート; (b)還元型ニコチンアミドヒポキサンチンジヌクレオ
チドリン酸;および (c)希釈バッファー からなり、(a)、(b)および(c)各成分を別々の
区画に収納してあることを特徴とする試料中のアンモニ
アレベル測定用キット。 - (6)(a)約0.01〜約0.25Mのリン酸バッフ
ァ−、pH7〜7.4;約1mM〜約1Mのα−ケトグ
ルタレート;約100〜約10,000U/mlのグル
タミン酸脱水素酵素;およびグリセロール(b)約0.
5〜約10mMのニコチンアミドヒポキサンチンジヌク
レオチドリン酸水溶液(pH約10)、および安定化剤
;および (c)約0.01〜約0.25Mのトリス−(ヒドロキ
シメチル)アミノメタンバッファー(pH約8.2〜約
8.6) からなり、(a)、(b)および(c)各成分を別々の
区画に収納してあることを特徴とする試料中のアンモニ
アレベル測定用キット。 - (7)(a)約16mg/mlのα−ケトグルタレート
、約572U/mlのグルタミン酸脱水素酵素、約0.
05Mのリン酸バッファー(pH約7.0〜7.4)、
約33%(v/v)のグリセロール、約0.05mg/
mlのウシガンマグロブリン、および約0.5mg/m
lのアジ化ナトリウム; (b)約4mg/mlのニコチンアミドヒポキサンチン
ジヌクレオチドリン酸、約50%のプロピレングリコー
ル、約1mg/mlのアジ化ナトリウム、約3.1mg
/mlのホウ酸、約16mg/mlのビシンバッファー
、pH約10.2;および (c)約0.01Mのトリスバッファー、約5mg/m
lのポリオキシエチレンラウリルエーテル、約0.2m
g/mlの分子量約500,000の硫酸デキストラン
、pH約8.2 からなり、(a)、(b)および(c)各成分を別々の
区画に収納してあることを特徴とする試料中のアンモニ
アレベル測定用キット。 - (8)有効量のグルタミン酸脱水素酵素、α−ケトグル
タレート、還元型ニコチンアミドヒポキサンチンジヌク
レオチドリン酸の粉末とバッファーとを1パッケージ中
に納めたことを特徴とする、試料中のアンモニアレベル
測定用キット。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US07/223,056 US5141853A (en) | 1988-07-22 | 1988-07-22 | Determination of ammonia levels in a sample |
US223056 | 1988-07-22 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02113898A true JPH02113898A (ja) | 1990-04-26 |
JP2749135B2 JP2749135B2 (ja) | 1998-05-13 |
Family
ID=22834833
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1183530A Expired - Fee Related JP2749135B2 (ja) | 1988-07-22 | 1989-07-14 | アンモニアの定量方法およびそれに用いるキット |
Country Status (9)
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---|---|
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EP (1) | EP0351774B1 (ja) |
JP (1) | JP2749135B2 (ja) |
KR (1) | KR910003378A (ja) |
AT (1) | ATE112393T1 (ja) |
AU (1) | AU624393B2 (ja) |
CA (1) | CA1338430C (ja) |
DE (1) | DE68918517T2 (ja) |
ES (1) | ES2064390T3 (ja) |
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---|---|---|---|---|
US20060084178A1 (en) * | 2004-10-15 | 2006-04-20 | Peyton Barbara M | Trace ammonia colorimetric test apparatus |
CN104374906B (zh) * | 2014-11-28 | 2016-02-17 | 山东博科生物产业有限公司 | 一种血清氨检测试剂 |
EP3617694A4 (en) | 2017-04-28 | 2020-12-30 | Leadway (HK) Limited | DETECTOR AND SAMPLE DETECTION METHOD WITH THE ABILITY TO VISUALLY READ TEST RESULTS |
WO2020157178A1 (en) * | 2019-01-31 | 2020-08-06 | Roche Diagnostics Gmbh | Stabilization of nadph or nadh in ammonia detection assays |
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---|---|---|---|---|
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YU218175A (en) * | 1974-09-12 | 1984-04-30 | Schwartzhaupt Kg | Process for total or individual determination of lactate dehydrogenase isoenzyme |
JPS57182169A (en) * | 1981-05-02 | 1982-11-09 | Mitsubishi Chem Ind Ltd | Measuring method for antigen-antibody reaction |
JPS61124383A (ja) * | 1984-11-16 | 1986-06-12 | Unitika Ltd | 固定化線維素溶解活性酵素の安定化法 |
US4914040A (en) * | 1988-03-03 | 1990-04-03 | Boehringer Mannheim Gmbh | Reagent and method for determination of a polyvalent substance using an immunoaggregate |
-
1988
- 1988-07-22 US US07/223,056 patent/US5141853A/en not_active Expired - Lifetime
-
1989
- 1989-07-14 AU AU38158/89A patent/AU624393B2/en not_active Ceased
- 1989-07-14 JP JP1183530A patent/JP2749135B2/ja not_active Expired - Fee Related
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- 1989-07-18 DE DE68918517T patent/DE68918517T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1989-07-18 EP EP89113146A patent/EP0351774B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-07-18 ES ES89113146T patent/ES2064390T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1989-07-20 CA CA000606186A patent/CA1338430C/en not_active Expired - Fee Related
- 1989-07-21 KR KR1019890010325A patent/KR910003378A/ko not_active Application Discontinuation
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Publication number | Publication date |
---|---|
ES2064390T3 (es) | 1995-02-01 |
EP0351774A3 (en) | 1990-10-17 |
DE68918517D1 (de) | 1994-11-03 |
US5141853A (en) | 1992-08-25 |
ATE112393T1 (de) | 1994-10-15 |
EP0351774A2 (en) | 1990-01-24 |
AU3815889A (en) | 1990-01-25 |
DE68918517T2 (de) | 1995-05-04 |
EP0351774B1 (en) | 1994-09-28 |
AU624393B2 (en) | 1992-06-11 |
KR910003378A (ko) | 1991-02-27 |
CA1338430C (en) | 1996-07-02 |
JP2749135B2 (ja) | 1998-05-13 |
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