JPH01167667A - 多糖抗原の免疫学的測定法 - Google Patents
多糖抗原の免疫学的測定法Info
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- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
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- Y10T436/25—Chemistry: analytical and immunological testing including sample preparation
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
生物試料中或いはそれらの培養物中に存在する細菌類ま
たは真菌類の多糖抗原を免疫学的に測定するＫは、はと
んどの場合抗原を遊離するための前処理が必要である。
たは真菌類の多糖抗原を免疫学的に測定するＫは、はと
んどの場合抗原を遊離するための前処理が必要である。
実際には、抗原を遊離するために種々の方法、具体的に
は１００℃での加熱、３７℃に於ける酵素処理、或いは
二段階操作での亜硝酸ナトリウムによる抽出、などが使
用されている。
は１００℃での加熱、３７℃に於ける酵素処理、或いは
二段階操作での亜硝酸ナトリウムによる抽出、などが使
用されている。
これらの抗原を抽出する他の公知の方法は、高濃度のフ
ェノール、例えば９０％飽和フェノール（９０％フェノ
ール／１０％水）、によりロ０°０での処理である。
ェノール、例えば９０％飽和フェノール（９０％フェノ
ール／１０％水）、によりロ０°０での処理である。
抗原遊離のために１００℃に加熱したシ、酵素処理をす
る方法は特異抗体の存在下ではそれらが変性するため使
用できない。再度のピペット測量もしなければならない
。高濃度のフェノール抽出でも同じで、さらに遠心分離
操作が必要となる。
る方法は特異抗体の存在下ではそれらが変性するため使
用できない。再度のピペット測量もしなければならない
。高濃度のフェノール抽出でも同じで、さらに遠心分離
操作が必要となる。
亜硝酸ナトリウムによる抽出では二種の異なる試薬を用
い、トリス緩衝液での後処理が必要である。
い、トリス緩衝液での後処理が必要である。
以上のよ５１Ｃ，これらの公知の操作は非常に状況によ
ってお）、時間がか＼るものであって実際の使用に適し
たものではない。
ってお）、時間がか＼るものであって実際の使用に適し
たものではない。
本発明の範囲で、多糖抗原を免疫学的に測定するため、
生物試料或いはその培養物中の細菌類または真菌類の多
糖抗原を遊離する方法が見っかシ、その方法は生物試料
或いはその培養物をフェノール水溶液で処理することよ
勺成る。
生物試料或いはその培養物中の細菌類または真菌類の多
糖抗原を遊離する方法が見っかシ、その方法は生物試料
或いはその培養物をフェノール水溶液で処理することよ
勺成る。
本発明による方法では、１−１０％の７エノール水溶液
を使用し、２〜５％のフェノール水溶液が好ましく、２
％フェノール水溶液が特に好ましい。
を使用し、２〜５％のフェノール水溶液が好ましく、２
％フェノール水溶液が特に好ましい。
本発明による方法では、血液、血清、血漿、尿、糞便或
いは痰が適当な生物試料である。
いは痰が適当な生物試料である。
本発明により提供される方法によると、５容址の生物試
料或いはその培養物に対して１容量のフェノール水溶液
を使用することが発見された。
料或いはその培養物に対して１容量のフェノール水溶液
を使用することが発見された。
本発明によ右方法では、フェノール水溶液は生物試料ま
たは培養物に５−５０分間、好ましくは１５分間作用さ
せる。
たは培養物に５−５０分間、好ましくは１５分間作用さ
せる。
前処理を行なう温度は重要ではない。前処理は通常１５
℃から反応液が沸とうする直前の温度までｙ実施され、
室温が特に好ましい。続く多糖抗原の免疫学的測定のた
めに抽出を行なう必要はなく、従って、免疫的検出は抗
原の遊離を行なった反応液中で実施するこりが出来る。
℃から反応液が沸とうする直前の温度までｙ実施され、
室温が特に好ましい。続く多糖抗原の免疫学的測定のた
めに抽出を行なう必要はなく、従って、免疫的検出は抗
原の遊離を行なった反応液中で実施するこりが出来る。
上述の免疫学的検出法はそれ自体公知の方法、特にいわ
ゆるＲＬＩＳＡ法に従って実施できる。
ゆるＲＬＩＳＡ法に従って実施できる。
本発明による方法は連鎖球菌、特に８ｔｒｅｐｔｏ−ｃ
ｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｓ、抗酸＠（マイコバ
クテリウム）、特にｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕ
ｂｅｒｃｕｌｏａｉ８或いは腸内細菌、特にＫａｃｈｅ
ｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉからの多糖抗原の検出に非常に
適している。
ｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｓ、抗酸＠（マイコバ
クテリウム）、特にｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕ
ｂｅｒｃｕｌｏａｉ８或いは腸内細菌、特にＫａｃｈｅ
ｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉからの多糖抗原の検出に非常に
適している。
本発明の範囲に於いて、本発明による方法は作業が少な
いはか）でなく、多糖抗原の測定に関して多く場合よシ
高い感度を示すことがさらにわかった。
いはか）でなく、多糖抗原の測定に関して多く場合よシ
高い感度を示すことがさらにわかった。
以下の例で本発明を例示する。
例 １
Ａ、１）ウサギの抗酸菌抗体を用いた培養生育細菌必要
な本数の試験管（１０Ｘ２５ｍ＋１）に０．２５−の試
料（細菌けん濁液、血清、液状にした痰、尿）ｔ−ピペ
ットで秤量し、これに０．０５−の反応試薬（フェノー
ルまたはＮａＮＯ２＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは水を
添加する。各試験管に抗−抗酸菌感作ポリスチレンピー
ズ（径＝６．５ｍ）１０えた後、反応液を室温にて６０
分間インキュベートする。続いて、洗滌せずに０．２５
−のウサギ抗−抗酸菌−ペルオキシダーゼ結合体（２０
％仔ウシつ児血清で不活化した０、１Ｍ−トリス−ヒド
ロキシメゾルアミノメタン、−７，０，０，０５％Ｔｗ
ｅ ｅｎ２０および５Ｍｇ／−のウサヤ抗−抗酸菌−ペ
ルオキシダーゼ結合体）を添加する。その後、反応液を
室温で４時間インキエペートする。インキュベーション
彼、ポリスチレンビーズｔＥｘＡ洗滌ｍ（Ｒｏｃｈｅ
）で、各５Ｔｎｌの蒸溜水中で２回洗滌する。
な本数の試験管（１０Ｘ２５ｍ＋１）に０．２５−の試
料（細菌けん濁液、血清、液状にした痰、尿）ｔ−ピペ
ットで秤量し、これに０．０５−の反応試薬（フェノー
ルまたはＮａＮＯ２＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは水を
添加する。各試験管に抗−抗酸菌感作ポリスチレンピー
ズ（径＝６．５ｍ）１０えた後、反応液を室温にて６０
分間インキュベートする。続いて、洗滌せずに０．２５
−のウサギ抗−抗酸菌−ペルオキシダーゼ結合体（２０
％仔ウシつ児血清で不活化した０、１Ｍ−トリス−ヒド
ロキシメゾルアミノメタン、−７，０，０，０５％Ｔｗ
ｅ ｅｎ２０および５Ｍｇ／−のウサヤ抗−抗酸菌−ペ
ルオキシダーゼ結合体）を添加する。その後、反応液を
室温で４時間インキエペートする。インキュベーション
彼、ポリスチレンビーズｔＥｘＡ洗滌ｍ（Ｒｏｃｈｅ
）で、各５Ｔｎｌの蒸溜水中で２回洗滌する。
次にペルオキシダーゼ活性を測定するために各試験管に
０．２５−の基質緩衝液（０，１ｍｏｌ ／ Ｌクエン
酸カリ緩衝液、−５，２、Ｏｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｈ
２Ｏ２およＣＦ ２０ ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｏ−フ
ェニレンジアミン）を添加し、室温で１５分間インキュ
ベートする。
０．２５−の基質緩衝液（０，１ｍｏｌ ／ Ｌクエン
酸カリ緩衝液、−５，２、Ｏｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｈ
２Ｏ２およＣＦ ２０ ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｏ−フ
ェニレンジアミン）を添加し、室温で１５分間インキュ
ベートする。
ペルオキシダーゼ活性を停止し、発色を強めるために１
．０−のｉ Ｎ −Ｈ，Ｓｏ、を添加して３０分間以内
に４９２ ｎｍの波長における吸光を、例えばＥＩＡ光
度計（Ｒｏｃｈｅ ）を用いて測定する。
．０−のｉ Ｎ −Ｈ，Ｓｏ、を添加して３０分間以内
に４９２ ｎｍの波長における吸光を、例えばＥＩＡ光
度計（Ｒｏｃｈｅ ）を用いて測定する。
必要な本数の試験管（１０×２５ＩＩＩＩｍ）に０．２
５−の試料（細菌けん濁液、血清、液状にした痰、尿）
またはＰＨ１（ブランク）をピペットで秤量し、これに
０．０５１ｄの反応試薬（フェノールまたはＮａＮ０２
＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは水を加える。
５−の試料（細菌けん濁液、血清、液状にした痰、尿）
またはＰＨ１（ブランク）をピペットで秤量し、これに
０．０５１ｄの反応試薬（フェノールまたはＮａＮ０２
＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは水を加える。
各試験管に抗−肺炎菌一感作一すスチレンビーズ（径＝
６．５ ｒｓｗ、 ）を添加した後、反応液を室温に
て１５分間インキュベートする。続いて、洗滌操作を行
なわずに０．２５１ｄのウサギ抗−肺炎菌−ペルオキシ
ダーゼ結合体（２０％仔ウシつ児血清で不活化した０、
１ Ｍ −）リス−ヒドロキシメチルアミノメタン、−
７，０，０，０５％Ｔｖｒｅｅｎ ８０および０．７μ
ｇ／ゴのウサイ抗−肺炎菌−ペルオキシダーゼ結合体）
を添加する。その後、反応液を室温で６０分間インキュ
ベートする。インキュベーション後にポリスチレンビー
ズをＥＩＡ洗滌機（Ｒｏｃｈｅ）を用いて各５ＴＩＬｌ
の蒸溜水中で２回洗滌する。次にベルオキシダーぜ活性
を測定するために各試験管に０．２５１１１７の基質緩
衝液（８０ｍｍｏｌ／Ｌクエン酸カリ緩衝液、ｐＨ４−
２５，１−６ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｈ２Ｏ５およびｉ
ｍｍｏｌ／ Ｌ ５ 、５’＝ ５ 、５’−テトラ
メチルベジジンを６．６％２−ｆロバノール加１６．４
％ＤＭＳＯに溶解）を添加し、試験管を室温で５分間放
置する。ペルオキシダーゼ活性を停止し、発色を強める
ために１．０−のＩ Ｎ −ｕ２ｓｏ、を添加して６０
分間以内に４５０ ｎｍの波長における吸光を、例えば
ＢｍＩＡ光度計＜ＲＯＣｈｅ）を用いて測定する。
６．５ ｒｓｗ、 ）を添加した後、反応液を室温に
て１５分間インキュベートする。続いて、洗滌操作を行
なわずに０．２５１ｄのウサギ抗−肺炎菌−ペルオキシ
ダーゼ結合体（２０％仔ウシつ児血清で不活化した０、
１ Ｍ −）リス−ヒドロキシメチルアミノメタン、−
７，０，０，０５％Ｔｖｒｅｅｎ ８０および０．７μ
ｇ／ゴのウサイ抗−肺炎菌−ペルオキシダーゼ結合体）
を添加する。その後、反応液を室温で６０分間インキュ
ベートする。インキュベーション後にポリスチレンビー
ズをＥＩＡ洗滌機（Ｒｏｃｈｅ）を用いて各５ＴＩＬｌ
の蒸溜水中で２回洗滌する。次にベルオキシダーぜ活性
を測定するために各試験管に０．２５１１１７の基質緩
衝液（８０ｍｍｏｌ／Ｌクエン酸カリ緩衝液、ｐＨ４−
２５，１−６ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｈ２Ｏ５およびｉ
ｍｍｏｌ／ Ｌ ５ 、５’＝ ５ 、５’−テトラ
メチルベジジンを６．６％２−ｆロバノール加１６．４
％ＤＭＳＯに溶解）を添加し、試験管を室温で５分間放
置する。ペルオキシダーゼ活性を停止し、発色を強める
ために１．０−のＩ Ｎ −ｕ２ｓｏ、を添加して６０
分間以内に４５０ ｎｍの波長における吸光を、例えば
ＢｍＩＡ光度計＜ＲＯＣｈｅ）を用いて測定する。
必要な本数の試験管（１０Ｘ２５驕）に０．２５−の試
料（細菌けん濁液、血清、尿）或いはＰＨ１（ブランク
）をピペットにて秤量し、０．０５−の反応試薬（フェ
ノールまたはＮａＮＯ２＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは
ｐＢｓ ｔ−添加する。各試験管に抗−Ｅ、 ｃｏｌｉ
−感作ポリスチレンビーズ（径＝６．５ｒｎｒａ ）を
加えた後、反応液を室温で１５分間インキュベートする
。続いて、洗滌操作なしで、０．２５−のウサギ−抗−
Ｅ、 ｃｏｌｉ−ペルオキシダーゼ結合体（２０％仔ウ
シつ児血清で不活化した０、１Ｍトリスヒドロキシメチ
ルアミノメタン、ｐ’７−０．０−０５ ％ Ｔｗｅｅ
ｎ ２０および１μｇ／ｍＡ！のウサイー抗−Ｅ、ｃｏ
ｌｉ−ペルオキシダーゼ結合体）を添加する。その後、
反応液を室温で６０分間インキュヘートスーる。インキ
ュベーション後、ポリスチレンビーズをＥＩＡ洗滌機（
Ｒｏ ｃ ｈｅ）で、各５ ｒｒｔｌの蒸溜水中で２回
洗滌する一０次にペルオキシダーゼ活性を測定するため
に各試験管に０．２５ｍの基質緩衝液（０−１ｍｏｌ
／ Ｌクエン酸カリ緩衝液、…５．２．６ｍ ｍｏｌ
／ Ｌ Ｈ２Ｏ２および２０ ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｏ
−フェニレンジアミン）を添加し、室温で１５分間イン
キュベートする。ペルオキシダーゼ活性を停止し、発色
を強めるために１．Ｏｄのｉ Ｎ −ａ、ｓｏ、を添加
して６０分間以内に４９２ ｍｍの波長における吸光を
、例えば１ｎＩＡ光度計（ＲｏＣｈｅ）を用いて測定す
る。
料（細菌けん濁液、血清、尿）或いはＰＨ１（ブランク
）をピペットにて秤量し、０．０５−の反応試薬（フェ
ノールまたはＮａＮＯ２＋酢酸＋トリス緩衝液）或いは
ｐＢｓ ｔ−添加する。各試験管に抗−Ｅ、 ｃｏｌｉ
−感作ポリスチレンビーズ（径＝６．５ｒｎｒａ ）を
加えた後、反応液を室温で１５分間インキュベートする
。続いて、洗滌操作なしで、０．２５−のウサギ−抗−
Ｅ、 ｃｏｌｉ−ペルオキシダーゼ結合体（２０％仔ウ
シつ児血清で不活化した０、１Ｍトリスヒドロキシメチ
ルアミノメタン、ｐ’７−０．０−０５ ％ Ｔｗｅｅ
ｎ ２０および１μｇ／ｍＡ！のウサイー抗−Ｅ、ｃｏ
ｌｉ−ペルオキシダーゼ結合体）を添加する。その後、
反応液を室温で６０分間インキュヘートスーる。インキ
ュベーション後、ポリスチレンビーズをＥＩＡ洗滌機（
Ｒｏ ｃ ｈｅ）で、各５ ｒｒｔｌの蒸溜水中で２回
洗滌する一０次にペルオキシダーゼ活性を測定するため
に各試験管に０．２５ｍの基質緩衝液（０−１ｍｏｌ
／ Ｌクエン酸カリ緩衝液、…５．２．６ｍ ｍｏｌ
／ Ｌ Ｈ２Ｏ２および２０ ｍ ｍｏｌ ／ Ｌ Ｏ
−フェニレンジアミン）を添加し、室温で１５分間イン
キュベートする。ペルオキシダーゼ活性を停止し、発色
を強めるために１．Ｏｄのｉ Ｎ −ａ、ｓｏ、を添加
して６０分間以内に４９２ ｍｍの波長における吸光を
、例えば１ｎＩＡ光度計（ＲｏＣｈｅ）を用いて測定す
る。
例・２
グラン（ＢＣ（））
Ｄｉｆｃｏ社のミドルデルツク寒天を含む試験管数本に
Ｓｅｒｕｍ Ｉｎ５ｔｉｔｕｔｅ Ｂｅｒｎｅ （ベル
ン血清研究所）から入手したＢＣＧワクチンの開封した
ばかりのアンプルを植菌し尼。およそ１週間インキュベ
ーションした後、コロニーを生理ＮａＣｌ溶液で洗滌し
、マクファランド濃度を約０．５に調整した。
Ｓｅｒｕｍ Ｉｎ５ｔｉｔｕｔｅ Ｂｅｒｎｅ （ベル
ン血清研究所）から入手したＢＣＧワクチンの開封した
ばかりのアンプルを植菌し尼。およそ１週間インキュベ
ーションした後、コロニーを生理ＮａＣｌ溶液で洗滌し
、マクファランド濃度を約０．５に調整した。
けん濁液を５等分し、各種前処理を行なった。
その後、−段階酵素免疫アッセイを各処理について実施
した。試験の方法は例１に従った。
した。試験の方法は例１に従った。
次のような結果が得られた。
８．２）肺炎菌
８ｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅを
血液平板上で一晩培養した。その後、マクファランド濃
度が１．０となるように生理的Ｎａｃ ｊ溶液中にコロ
ニーをけん濁した。けん濁液を５等分し、各種前処理を
行なった。続いて一段階の酵素免疫アッセイを実施し九
。試験操作は実施例１に従った。
血液平板上で一晩培養した。その後、マクファランド濃
度が１．０となるように生理的Ｎａｃ ｊ溶液中にコロ
ニーをけん濁した。けん濁液を５等分し、各種前処理を
行なった。続いて一段階の酵素免疫アッセイを実施し九
。試験操作は実施例１に従った。
次の結果が得られた。
Ｂ、５）Ｒａｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉＬｃｏｌｉ
ＡＴＣＣ１９１１０を血液平板上で一晩培養した。そ
の後、コロニーを生理的ＮａＣ＃溶液にけん濁してマク
ファランド濃度１．０となるよう調整した。けん濁液′
ｔ−４等分し、各種処理を行なった。それぞれについて
続いて一段階酵素免疫アツセイを実施した。試験の実施
は方法の部を参照のこと。
ＡＴＣＣ１９１１０を血液平板上で一晩培養した。そ
の後、コロニーを生理的ＮａＣ＃溶液にけん濁してマク
ファランド濃度１．０となるよう調整した。けん濁液′
ｔ−４等分し、各種処理を行なった。それぞれについて
続いて一段階酵素免疫アツセイを実施した。試験の実施
は方法の部を参照のこと。
次のような結果が得られた。
例 ６
患者からの試料を用いてさらに調査を行なった。
実施例１に従って一段階ＲＩＡ試験を実施した。前処理
は添付の衣に従って行なった。
は添付の衣に従って行なった。
次の結果が得られた。
Claims (11)
- （１）多糖抗原の免疫学的測定のための生物試料中のま
たは同試料の培養物中の細菌類或いは真菌類からの多糖
抗原の遊離方法において、生物試料または培養物を水性
フェノール溶液で処理することを特徴とする方法。 - （２）１−１０％のフェノール水溶液を使用する特許請
求の範囲第（１）項記載の方法。 - （３）２−５％のフェノール水溶液を使用する特許請求
の範囲第（１）項または（２）項記載のいずれか一つの
方法。 - （４）生物試料が血液、血清、血漿、尿、糞便または痰
である特許請求の範囲第（１）項〜（３）項のいずれか
一つに記載の方法。 - （５）２％のフェノール水溶液を使用する特許請求の範
囲第（１）項〜（４）項のいずれか一つに記載の方法。 - （６）生物試料または培養物５部に対して１部の水性フ
ェノール溶液を使用する特許請求の範囲第（１）項〜（
５）項のいずれか一つに記載の方法。 - （７）水性フェノール溶液を試料または培養物に５〜３
０分間作用させる特許請求の範囲第（１）項〜（６）項
のいずれか一つに記載の方法。 - （８）水性フェノール溶液を試料または培養物に１５分
間作用させる特許請求の範囲第（７）項記載の方法。 - （９）生物試料またはその培養物を特許請求の範囲第（
１）項〜（８）項のいずれか一つに記載の方法により前
処理し、続いてそれ自体公知の方法によつて多糖抗原を
免疫学的に検出することより成る、生物試料またはそれ
より得られる培養物中の細菌類または真菌類からの多糖
抗原の免疫学的測定方法。 - （１０）連鎖球菌、抗酸菌または腸内細菌からの多糖抗
原を検出する特許請求の範囲第（９）項記載の方法。 - （１１）Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｎｅｕｍｏｎｉ
ａｅ、ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｎｍｔｕｂｅｒｃｕｌｏ
ｓｉｓまたはＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉからの多
糖抗原を検出する特許請求の範囲第（１０）項に記載の
方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CH461687 | 1987-11-27 | ||
| CH04616/87-3 | 1987-11-27 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH01167667A true JPH01167667A (ja) | 1989-07-03 |
Family
ID=4279430
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63297993A Pending JPH01167667A (ja) | 1987-11-27 | 1988-11-25 | 多糖抗原の免疫学的測定法 |
Country Status (3)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5126244A (ja) |
| EP (1) | EP0322549A3 (ja) |
| JP (1) | JPH01167667A (ja) |
Families Citing this family (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6060237A (en) * | 1985-02-26 | 2000-05-09 | Biostar, Inc. | Devices and methods for optical detection of nucleic acid hybridization |
| US5482830A (en) * | 1986-02-25 | 1996-01-09 | Biostar, Inc. | Devices and methods for detection of an analyte based upon light interference |
| US5468606A (en) * | 1989-09-18 | 1995-11-21 | Biostar, Inc. | Devices for detection of an analyte based upon light interference |
| US5541057A (en) * | 1989-09-18 | 1996-07-30 | Biostar, Inc. | Methods for detection of an analyte |
| US5639671A (en) * | 1989-09-18 | 1997-06-17 | Biostar, Inc. | Methods for optimizing of an optical assay device |
| US5550063A (en) * | 1991-02-11 | 1996-08-27 | Biostar, Inc. | Methods for production of an optical assay device |
| US5955377A (en) * | 1991-02-11 | 1999-09-21 | Biostar, Inc. | Methods and kits for the amplification of thin film based assays |
| US5418136A (en) * | 1991-10-01 | 1995-05-23 | Biostar, Inc. | Devices for detection of an analyte based upon light interference |
| DE69127628T2 (de) * | 1991-10-01 | 1998-01-22 | Biostar Inc | Hochempfindlicher optischer Immunoassay durch Gebrauch von Enzymmarkierten Reagenz |
| US5308983A (en) * | 1992-07-02 | 1994-05-03 | Harrick Scientific Corporation | Spectroscopic accessory with microscope illuminator |
| US5494829A (en) * | 1992-07-31 | 1996-02-27 | Biostar, Inc. | Devices and methods for detection of an analyte based upon light interference |
| US5552272A (en) * | 1993-06-10 | 1996-09-03 | Biostar, Inc. | Detection of an analyte by fluorescence using a thin film optical device |
| US6844199B1 (en) * | 1997-03-14 | 2005-01-18 | The Board Of Governors For Higher Education, State Of Rhode Island And Providence Plantations | Direct detection of bacteria-antibody complexes via UV resonance Raman spectroscopy |
| CN1087748C (zh) * | 1999-07-22 | 2002-07-17 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | 具有il－1受体拮抗活性的微生物多糖或其盐或水解产物，其制备方法和含有它的药物组合物 |
Family Cites Families (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3148120A (en) * | 1952-01-24 | 1964-09-08 | Wander Ag Dr A | Hot aqueous phenol extraction of gramnegative bacterial lipopolysaccharides |
| GB1073694A (en) * | 1965-05-24 | 1967-06-28 | Twyford Lab Ltd | Preparation of bacterial lipopolysaccharides |
| US4029762A (en) * | 1971-11-17 | 1977-06-14 | Max-Planck-Gesellschaft Zur Forderung Der Wissenschaften E.V. | Lipid A-preparation |
| US4285936A (en) * | 1979-12-10 | 1981-08-25 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army | Method for producing a vaccine against bacterial infections caused by pseudomonas aeruginosa |
| US4755382A (en) * | 1985-06-13 | 1988-07-05 | Monsanto Company | Immunostimulating method |
-
1988
- 1988-11-15 EP EP19880119002 patent/EP0322549A3/de not_active Withdrawn
- 1988-11-17 US US07/272,288 patent/US5126244A/en not_active Expired - Lifetime
- 1988-11-25 JP JP63297993A patent/JPH01167667A/ja active Pending
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0322549A3 (de) | 1991-05-08 |
| EP0322549A2 (de) | 1989-07-05 |
| US5126244A (en) | 1992-06-30 |
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