JP7572007B2 - ニコチンアミドモノヌクレオチド(nmn)およびニコチンアミドリボシド(nr)の新規用途 - Google Patents
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Description
(項目A1) Hsd3b6またはそのホモログの活性の改善のための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む組成物。
(項目A1-2) Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患、障害または症状を治療または予防するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む組成物。
(項目A1-3) 前記Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患が、マイボーム腺機能不全、ステロイドホルモン(例えば、テストステロンおよびエストロゲンなど)の低下による疾患、更年期障害、骨粗鬆症、生活習慣病、加齢性腺機能低下症および心筋梗塞からなる群から選択される、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A2) 前記組成物は、対象の眼に投与されることを特徴とする、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A3) マイボーム腺の機能を改善するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む組成物。
(項目A4) マイボーム腺の腺房細胞数を増加させるための、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A5) マイボーム腺からの脂質分泌を増加させるための、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6) マイボーム腺の機能不全を伴う疾患の処置または予防のための、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6-1) ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む、マイボーム腺機能不全を処置または予防するための組成物。
(項目A6-2) 前記マイボーム腺機能不全がマイボーム腺脂分泌減少を伴う、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6-3) 前記マイボーム腺機能不全が炎症性疾患を伴う、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6-4) 前記炎症性疾患が、マイボーム腺炎、(点状)表層角膜炎、眼瞼炎からなる群より選択される少なくとも1種を含む、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6-5) 前記マイボーム腺機能不全が導管内脂質過剰蓄積を伴う、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A6-6) 前記マイボーム腺機能不全が眼不快感、異物感、及び/又は圧迫感を伴う、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目A7) 前記マイボーム腺の機能不全を伴う疾患が、マイボーム腺炎、後部眼瞼炎、角膜炎、結膜炎、マイボーム腺炎角結膜上皮症、眼類天疱瘡、シェーグレン症候群、Stevens-Johnson症候群、移植片対宿主病(GVHD)、および視機能障害からなる群から選択される、前記項目のいずれかに記載の組成物。
(項目B1) 被験体のHsd3b6またはそのホモログの活性を改善するか、Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患、障害または症状を治療または予防する方法。
(項目B2) 前記被験体にニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を投与する工程を含む、項目B1に記載の方法。
(項目B3) さらに、前記被験体のHsd3b6またはそのホモログの活性を測定する工程を含む、項目B1またはB2に記載の方法。
(項目B4) 前記被験体のHsd3b6またはそのホモログの活性を測定し、当該活性が低下している場合に、NMNおよび/またはNRを投与する工程を含む、項目B1~B3のいずれかに記載の方法。
(項目C1) 被験体のマイボーム腺の機能を改善するため、またはマイボーム腺の機能不全を伴う疾患、障害または症状を治療または予防する方法。
(項目C2) 前記被験体にニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を投与する工程を含む、項目C1に記載の方法。
(項目C3) さらに、前記被験体のマイボーム腺機能を確認する工程を含む、項目C1またはC2に記載の方法。
(項目C4) 前記被験体のマイボーム腺機能を確認し、当該機能が低下している場合に、NMNおよび/またはNRを投与する工程を含む、項目C1~C3のいずれかに記載の方法。
(項目C5) 前記マイボーム腺機能は、細隙灯検査、Meibography、Confocal microscopy、DR-1、マイボライン、マイボメトリー、Lipid chemistry、蒸発量、BUT、または自覚症状質問表によって確認される、項目C4に記載の方法。
(項目C6) 前記マイボーム腺の機能不全を伴う疾患、障害または症状が、マイボーム腺炎、後部眼瞼炎、角膜炎、結膜炎、マイボーム腺炎角結膜上皮症、眼類天疱瘡、シェーグレン症候群、Stevens-Johnson症候群、移植片対宿主病(GVHD)、および視機能障害からなる群から選択される、項目C1~C5のいずれかに記載の方法。
(項目C7) マイボーム腺の腺房細胞数を増加させるための、項目C1~C6のいずれかに記載の方法。
(項目C8) マイボーム腺からの脂質分泌を増加させるための、項目C1~C6のいずれかに記載の方法。
(項目C9) マイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するための、項目C1~C6のいずれかに記載の方法。
(項目D1) マイボーム腺の機能を改善する組成物を製造するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)の使用。
(項目D2) 前記組成物がマイボーム腺の腺房細胞数を増加させるためのものである、項目D1に記載の使用。
(項目D3) 前記組成物がマイボーム腺からの脂質分泌を増加させるためのものである、項目D1に記載の使用。
(項目D4) 前記組成物がマイボーム腺の機能不全を伴う疾患の処置または予防のためのものである、項目D1~D3のいずれか1項に記載の使用。
(項目D5) 前記マイボーム腺の機能不全を伴う疾患が、マイボーム腺炎、後部眼瞼炎、角膜炎、結膜炎、マイボーム腺炎角結膜上皮症、眼類天疱瘡、シェーグレン症候群、Stevens-Johnson症候群、移植片対宿主病(GVHD)、および視機能障害からなる群から選択される、D4に記載の使用。
(項目D6) 前記組成物がマイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するためのものである、項目D1~D5のいずれか1項に記載の使用。
(項目E1) マイボーム腺機能不全を処置または予防する組成物を製造するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)の使用。
(項目E2) 前記マイボーム腺機能不全がマイボーム腺脂分泌減少を伴う、項目E1に記載の使用。
(項目E3) 前記マイボーム腺機能不全が炎症性疾患を伴う、項目E1に記載の使用。
(項目E4) 前記炎症性疾患が、マイボーム腺炎、(点状)表層角膜炎、眼瞼炎からなる群より選択される少なくとも1種を含む、項目E3に記載の使用。
(項目E5) 前記マイボーム腺機能不全が導管内脂質過剰蓄積を伴う、項目E1に記載の使用。
(項目E6) 前記マイボーム腺機能不全が眼不快感、異物感、及び/又は圧迫感を伴う、項目E1に記載の使用。
(項目F1) 被験体のHsd3b6またはそのホモログの活性を改善するか、Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患、障害または症状の治療または予防における使用のための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)。
(項目G1) マイボーム腺の機能を改善するため、またはマイボーム腺の機能不全を伴う疾患、障害または症状の治療または予防における使用のための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)。
(項目G2) 前記マイボーム腺の機能不全を伴う疾患、障害または症状が、マイボーム腺炎、後部眼瞼炎、角膜炎、結膜炎、マイボーム腺炎角結膜上皮症、眼類天疱瘡、シェーグレン症候群、Stevens-Johnson症候群、移植片対宿主病(GVHD)、および視機能障害からなる群から選択される、項目G1に記載のニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)。
(項目H1) ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む、マイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するための組成物。
(項目H2) 前記組成物は、対象の眼に投与されることを特徴とする、項目H1に記載の組成物。
(項目I1) 被験体のマイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するための方法。
(項目I2) 前記被験体にニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を投与する工程を含む、項目I1に記載の方法。
(項目J1) マイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するためのニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)。
(項目J2) 対象の眼に投与されることを特徴とする、項目J1に記載のニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)。
(項目K1) マイボーム腺におけるテストステロン生成を増強するための医薬を製造するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)の使用。
(項目K2) 対象の眼に投与されることを特徴とする、項目K1に記載の使用。
本明細書において、「約」とは、特に断らない限り、後に続く数値の±10%を意味する。
ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)は以下の構造
本開示において、NMNおよびNRによるHsd3b6またはそのホモログの活性の改善のための組成物または方法が提供され得る。Hsd3b6は、概日時計によって直接的に制御され、この遺伝子の産物は、アルドステロン生産経路の重要な要素である。加えて、Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患、障害または症状を治療または予防するための組成物または方法が提供され得る。Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患としては、マイボーム腺機能不全、ステロイドホルモン(例えば、テストステロンおよびエストロゲンなど)の低下による疾患、更年期障害、骨粗鬆症、生活習慣病、加齢性腺機能低下症および心筋梗塞などが挙げられるが、これらに限定されない。
本開示の組成物は、適切な剤形に製剤化され得る。例えば、本開示における組成物は、眼科用組成物である場合に、眼注射液、眼軟膏、点眼剤または眼灌流液として提供され得る。組成物は、エアゾール、液剤、エキス剤、エリキシル剤、カプセル剤、顆粒剤、丸剤、軟膏、散剤、錠剤、溶液、懸濁液、エマルジョン等の任意の剤形に製剤化することができる。組成物は、当技術分野で公知の任意の薬学的に許容される添加物および/または賦形剤を含んでよい。添加剤としては、張度調整剤、緩衝剤、防腐剤、共溶媒、および増粘剤が挙げられるがこれらに限定されない。例えば、眼科用組成物は、水性の溶媒(例えば、水)に有効成分を溶解させた液剤の形態で提供され得る。
1つの実施形態において、本開示の利用法としては、例えば点眼剤が挙げられるが、これに限定されず、眼軟膏、前房内への注射、徐放剤への含浸、結膜下注射、全身投与(内服、静脈注射)などの投与形態(投与方法および剤型)も挙げることができる。
本開示において、Hsd3b6またはそのホモログの活性を改善するか、Hsd3b6またはそのホモログの活性に関連する疾患、障害または症状を治療または予防する方法が提供され得る。方法は、被験体にニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を投与することを含み得る。
本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Sambrook J.et al.(1989).Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harborおよびその3rd Ed.(2001); Ausubel, F.M.(1987).Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience; Ausubel, F.M.(1989).Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates and Wiley-Interscience; Innis, M. A.(1990).PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, Academic Press; Ausubel, F.M.(1992).Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates; Ausubel, F.M.(1995).Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Greene Pub. Associates; Innis ,M.A. et al.(1995).PCR Strategies, Academic Press; Ausubel, F.M.(1999).Short Protocols in Molecular Biology: A Compendium of Methods from Current Protocols in Molecular Biology, Wiley, and annual updates; Sninsky, J.J.et al.(1999).PCR Applications: Protocols for Functional Genomics, Academic Press、Gait, M.J.(1985).Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, IRL Press; Gait, M.J.(1990).Oligonucleotide Synthesis: A Practical Approach, IRL Press; Eckstein, F.(1991).Oligonucleotides and Analogues: A Practical Approach, IRL Press; Adams, R.L. et al.(1992).The Biochemistry of the Nucleic Acids, Chapman & Hall; Shabarova, Z. et al.(1994).Advanced Organic Chemistry of Nucleic Acids, Weinheim; Blackburn, G.M. et al.(1996).Nucleic Acids in Chemistry and Biology, Oxford University Press; Hermanson, G.T.(I996).Bioconjugate Techniques, Academic Press、別冊実験医学「遺伝子導入&発現解析実験法」羊土社、1997などに記載されている。これらは本明細書において関連する部分(全部であり得る)が参考として援用される。
[概要]
本実施例では、加齢に伴うマイボーム腺組織の萎縮、およびHsd3b6 KOマウスにおけるマイボーム腺組織の変化を実証する。
(1)Whole mount meibomian glands Herxheimer’s stainingプロトコル
マウスにおけるマイボーム腺組織の染色は以下のプロトコルに従い行った。
染色後のエリア解析は、PhotoshopおよびImageJを用い、染色像と見比べながら色の強さの閾値を決定し、所定の閾値以上の部分の面積に基づき行った。
マウスのHsd3b6遺伝子の開始コドンを含むExon 2領域をloxPで挟みこんだfloxedマウスを作製し、これをCAG-Cre transgenicマウスと交配することによってHsd3b6が発現できなくなったHsd3b6 KOマウスを作製した。
6ヶ月齢のマウスと、24ヶ月齢のマウスにおいて、上述のプロトコルに従ってマイボーム腺組織を染色し、染色された面積を比較した。結果は、図1において示される。加齢により、マイボーム腺組織が萎縮し、マイボーム腺機能不全(MGD)が進行していることが認められた(N=7)。
[概要]
本実施例では、1.5年齢野生型マウスへのNMNもしくはNRの2週間の点眼によるマイボーム腺におけるHsd3b6酵素活性、およびマイボーム腺腺房基底細胞における細胞増殖活性の変化を実証する。
(1)点眼実験の概要は以下のとおりであった。
マウスにおけるマイボーム腺Hsd3b6酵素活性測定は以下のプロトコルに従い行った。
ハンクス平衡塩溶液(HBSS)を1時間以上95% CO2/5% O2でバブリングした。2mLチューブに200μLずつ分注し、95% CO2/5% O2を満たした状態で蓋をした。37℃の水浴でHBSSを温めておき、反応用インキュベーターを37℃に温め、中にmicro tube mixerを設置した。
Flow液体シンチレーションカウンター(Perkin Elmer, Radiomatic 625TR)の主電源をONにし、HPLC(Waters, 2795 Separations Module)の主電源をONにしてセットアップを行った。移動相Aを水、移動相Bをアセトニトリルに置換した。カラム(関東化学, リクロカート250-4 リクロスフェア100RP-18 粒子径5μm 4mm I.D.×250mm)を装着したら、40%アセトニトリル(ACN)(Aが60%、Bが40%)を0.7mL/minで流しておき、このときカラムオーブンの温度を40℃に設定した。
2mLチューブに入った40%ACN 1mLに3H-DHEAを加え、タッピングした。HPLCのホルダーにエッペンをセッティングし、シングル投与を選択した。22分過ぎに出てくる夾雑物のピークは回収せず、夾雑物のピークが23分位で下がると、次は3H-DHEAのピークが現れるのでピークの値の1/3位のc.p.m.になった時点でガラススピッツに回収を開始し、4分の回収により、合計で2.5mL程度が回収された。Voltexでガラススピッツ内の液を撹拌し、25μLを液体シンチレーションカウンターにかけ、25μLをクリアゾル3mLに加えた。噴き出し口からN2がわずかに出ていることを確認して、タイテックのインキュベーターでガラススピッツ内の液を75℃で窒素乾固した。
窒素乾固させておいた3H-DHEAを、室温まで冷ましたら1μL/4,000c.p.m.(25μLを液体シンチレーションカウンターで測った値)のpropylene glycolを加え、5分ボルテックスして3H-DHEAを溶かした。
片目上瞼のマイボーム腺を切り出し、マイボーム腺が露出している側を上にして薬包紙に乗せ、tissue chopperで200μm厚に刻んだ。刻んだマイボーム腺をHBSSに移し、基質溶液を軽くボルテックスしてから24μLをHBSS中に加え、ピペッティングした。
室温、1,500rpmで10分遠心し、上層にある酢酸エチルの層を1.6mL回収し、75℃で窒素乾固した。液が蒸発しきったら、40% ACNを500μL加えて、3分ボルテックスした。2mLチューブに取り付けたMILLIPORE Ultra free-MCに液を移し、室温、12,000gで2分遠心した。ガラススピッツを500μLの40% ACNで共洗いし、2分ボルテックスした。同じカラムのフィルターを通して、室温、12,000gで4分遠心した。Eluteをタッピングで混ぜて10μLをクリアゾル3mLに加えて液体シンチレーションカウンターにかけた(回収率の測定)。
カラムを初期条件で平衡化(ベースラインと圧力が安定するまで)した。測定するサンプル数のサンプルセットを作成した。1本目は分析が安定しないため40% ACNをサンプルとして流した。測定する2mLチューブの蓋を開け、薄く伸ばしたパラフィルムをかぶせ、HPLCにセットした。連続分析をStartした。
HPLCの条件(3H-DHEA)
流速:0.7mL/min カラム温度:40℃
グラジエント
0~30min:40~50% ACN(0.3%/min)
30~35min:70% ACN
35~40min:100% ACN
40~50min:100~40% ACN(6%/min)
50~60min:40% ACN
ProFSAでクロマトグラムを開き、SDA(スムージング機能)levelを8にして、スムージングを行った。Find PeaksとLocate Peaksでピークを表示させ、Report PreviewをコピーしてWordに貼り付け、データを取り出し、以下の式で酵素活性を導き出した。
マウスから眼瞼組織を採集する30分前にBrdU(100 mg/kg体重、Sigma-Aldrich)を腹腔内に注射した。マイボーム腺を含む眼瞼を4%PFAで固定し、パラフィン包埋した。5μmの厚さの切片を10mMクエン酸ナトリウム緩衝液(pH6.0)中で2.5分間加圧処理することにより抗原を賦活化した。切片を抗BrdU抗体(1:1,000希釈;RocklandInc.)を用いて4℃で24時間インキュベートした後、Dako社の2次抗体 Envision+System-HRP Labelled PolymerAnti-Rabbitを用いて3,3'-diaminobenzidine(DAB)により免疫反応を可視化した。各組織切片において、マイボーム腺の基底細胞層のBrdU陽性細胞を20倍の倍率にて撮影したデジタル顕微写真上でカウントした。マイボーム腺腺房の外周長をImageJソフトウェアで計測し、BrdU陽性細胞の総数をこの外周長にてノーマライズした。なお1個体あたり16切片を用いてBrdU陽性細胞数のカウントを行った。
NMN、NR、およびその溶媒液(Vehicle, リン酸緩衝生理食塩水)点眼によるマイボーム腺におけるHsd3b6酵素活性の変化、およびマイボーム腺基底細胞におけるBrdU陽性細胞数の変化が図3に示される。NMN点眼により、Hsd3b6酵素活性とBrdU陽性細胞数が有意に上昇した。NR点眼群についても同様のHsd3b6酵素活性の上昇が見られるとともに、BrdU陽性細胞数が有意に上昇した。すなわち、NMN、NRの点眼により、マイボーム腺局所でのHsd3b6酵素活性が上昇するとともに、マイボーム腺基底細胞の細胞増殖活性が増加することがわかる。
[概要]
本実施例では、1.75年齢野生型マウスへのNMNもしくはNRの3か月間の点眼によるマイボーム腺腺組織容量への影響を実証する。
(1)点眼実験の概要は以下のとおりであった。
NMN、NR、およびその溶媒液(Vehicle, リン酸緩衝生理食塩水)点眼によるマイボーム腺腺容量の変化が図4に示される。NMN点眼群、NR点眼群、どちらにおいても、マイボーム腺腺容量の有意な増大が認められた。
[概要]
本実施例では、1.75年齢野生型マウスへのNMNもしくはNRの3か月間の点眼によるマイボーム腺における脂質成分への影響を実証する。
(1)点眼実験については実施例3と同様に行う。
(2)マウスマイボーム腺からの脂質採取及び脂質解析
安楽死させたマウスの眼瞼から、マイボーム腺を採取する。各動物の片眼から採取した2つのマイボーム腺を、それぞれ、脂質抽出用の1mLのクロロホルム:メタノール=2:1(v/v)溶媒混合物を含むガラスバイアルに入れ、脂質の抽出を行う。抽出液を新しいバイアルに入れ替える。抽出液は、窒素下で溶液を蒸発させ、-20℃以下で数か月保管できる。その後、適切な溶媒に溶かし、APCI法により脂質組成を分析する。
NMN、または、NR点眼群は、対照であるVehicle(リン酸緩衝生理食塩水)点眼群に比べて、マイボーム腺における脂質成分が正常化している。
[材料および方法]
眼瞼から切除したマイボーム腺をメタノール/水(75:25、v/v)でホモジナイズしたのち、ホモジネートに含まれるステロイドをIsoluteSLE+カートリッジ(Biotage社)を用いてジクロロメタンへ抽出し、窒素下で蒸発させたのち、残渣を得た。この残渣を10mg/mL濃度のAmplifex Keto試薬(SCIEX社)を含むメタノール/5%酢酸溶液50μLに溶かし室温で1時間インキュベートしたあと、液体クロマトグラフィーエレクトロスプレーイオン化タンデム質量分析装置(QTRAP 4500 LC-MS/MS System;SCIEX社)を用いた質量分析によりテストステロン濃度を求め(誘導体SRMトランジション:403→164)、摘出したマイボーム腺の湿重量によりノーマライズした。
野生型およびHsd3b6欠損マウスのマイボーム腺組織におけるテストステロン量が図5に示される。野生型マウスに比べHsd3b6を欠損するマウスではマイボーム腺局所に含まれるテストステロンが約50%減少した。またさらに、性腺(精巣)を摘除したHsd3b6ノックアウトマウスでは、マイボーム腺局所に検出されるテストステロンは10%以下に減少した。このことから、マイボーム腺組織においては精巣から供給される循環テストステロンのみならず、それと同程度のマイボーム腺局所のテストステロン産生の寄与があることがわかる。
以上のように、本開示の好ましい実施形態を用いて本開示を例示してきたが、本開示は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願及び他の文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。本願は、日本国特許庁に2019年6月25日に出願された特願2019-117642に対して優先権主張をするものであり、その内容はその全体があたかも本願の内容を構成するのと同様に参考として援用される。
Claims (9)
- マイボーム腺の機能を改善するための、ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む組成物。
- マイボーム腺の腺房細胞数を増加させるための、請求項1に記載の組成物。
- マイボーム腺からの脂質分泌を増加させるための、請求項1に記載の組成物。
- ニコチンアミドモノヌクレオチド(NMN)および/またはニコチンアミドリボシド(NR)を含む、マイボーム腺機能不全を処置または予防するための組成物。
- 前記マイボーム腺機能不全がマイボーム腺脂分泌減少を伴う、請求項4に記載の組成物。
- 前記マイボーム腺機能不全が炎症性疾患を伴う、請求項4に記載の組成物。
- 前記炎症性疾患が、マイボーム腺炎、(点状)表層角膜炎、眼瞼炎からなる群より選択される少なくとも1種を含む、請求項6に記載の組成物。
- 前記マイボーム腺機能不全が導管内脂質過剰蓄積を伴う、請求項4に記載の組成物。
- 前記マイボーム腺機能不全が眼不快感、異物感、及び/又は圧迫感を伴う、請求項4に記載の組成物。
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