JP7471579B1 - 立体細胞構造体を製造する方法 - Google Patents
立体細胞構造体を製造する方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP7471579B1 JP7471579B1 JP2023074637A JP2023074637A JP7471579B1 JP 7471579 B1 JP7471579 B1 JP 7471579B1 JP 2023074637 A JP2023074637 A JP 2023074637A JP 2023074637 A JP2023074637 A JP 2023074637A JP 7471579 B1 JP7471579 B1 JP 7471579B1
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- culture
- cells
- cell structure
- dimensional cell
- cavity
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims abstract description 18
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims abstract description 231
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 claims abstract description 18
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims abstract description 17
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims abstract description 17
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims abstract description 17
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims abstract description 10
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 42
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 claims description 28
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 claims description 27
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 claims description 14
- 210000002615 epidermis Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000010030 laminating Methods 0.000 claims description 4
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 abstract description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 24
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 22
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 22
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 21
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 14
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 14
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 14
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 12
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 11
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 9
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 8
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 7
- 241000486679 Antitype Species 0.000 description 6
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 6
- 229920002683 Glycosaminoglycan Polymers 0.000 description 5
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 5
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 5
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 5
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 4
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 4
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 4
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 4
- 238000003501 co-culture Methods 0.000 description 4
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 239000012091 fetal bovine serum Substances 0.000 description 4
- 238000007490 hematoxylin and eosin (H&E) staining Methods 0.000 description 4
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 3
- XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N Silicon Chemical compound [Si] XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 210000001339 epidermal cell Anatomy 0.000 description 3
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 3
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 3
- 210000003780 hair follicle Anatomy 0.000 description 3
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 229910052710 silicon Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000010703 silicon Substances 0.000 description 3
- 230000029663 wound healing Effects 0.000 description 3
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 2
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 2
- 238000003149 assay kit Methods 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 239000000515 collagen sponge Substances 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 2
- 238000005469 granulation Methods 0.000 description 2
- 230000003179 granulation Effects 0.000 description 2
- 238000012744 immunostaining Methods 0.000 description 2
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 2
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 2
- 230000001737 promoting effect Effects 0.000 description 2
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 2
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 2
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 2
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 2
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 2
- NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 2,3-bis(butanoylsulfanyl)propyl butanoate Chemical compound CCCC(=O)OCC(SC(=O)CCC)CSC(=O)CCC NHBKXEKEPDILRR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 241000725101 Clea Species 0.000 description 1
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 1
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 1
- 102000000503 Collagen Type II Human genes 0.000 description 1
- 108010041390 Collagen Type II Proteins 0.000 description 1
- 102000004127 Cytokines Human genes 0.000 description 1
- 108090000695 Cytokines Proteins 0.000 description 1
- 206010063560 Excessive granulation tissue Diseases 0.000 description 1
- PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N Isoflurane Chemical compound FC(F)OC(Cl)C(F)(F)F PIWKPBJCKXDKJR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102100024616 Platelet endothelial cell adhesion molecule Human genes 0.000 description 1
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 1
- 206010039509 Scab Diseases 0.000 description 1
- 235000010724 Wisteria floribunda Nutrition 0.000 description 1
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 1
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000033115 angiogenesis Effects 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 230000008602 contraction Effects 0.000 description 1
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 230000002950 deficient Effects 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 238000007876 drug discovery Methods 0.000 description 1
- 230000002500 effect on skin Effects 0.000 description 1
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000013401 experimental design Methods 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 210000001126 granulation tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 210000004263 induced pluripotent stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 229960002725 isoflurane Drugs 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 230000005305 organ development Effects 0.000 description 1
- 230000000144 pharmacologic effect Effects 0.000 description 1
- -1 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 230000002062 proliferating effect Effects 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 1
- 230000003014 reinforcing effect Effects 0.000 description 1
- 239000012679 serum free medium Substances 0.000 description 1
- VSIVTUIKYVGDCX-UHFFFAOYSA-M sodium;4-[2-(2-methoxy-4-nitrophenyl)-3-(4-nitrophenyl)tetrazol-2-ium-5-yl]benzene-1,3-disulfonate Chemical compound [Na+].COC1=CC([N+]([O-])=O)=CC=C1[N+]1=NC(C=2C(=CC(=CC=2)S([O-])(=O)=O)S([O-])(=O)=O)=NN1C1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 VSIVTUIKYVGDCX-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 1
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 1
- 238000007619 statistical method Methods 0.000 description 1
- 238000009864 tensile test Methods 0.000 description 1
- 231100000820 toxicity test Toxicity 0.000 description 1
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 1
- 210000001835 viscera Anatomy 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- XOSXWYQMOYSSKB-LDKJGXKFSA-L water blue Chemical compound CC1=CC(/C(\C(C=C2)=CC=C2NC(C=C2)=CC=C2S([O-])(=O)=O)=C(\C=C2)/C=C/C\2=N\C(C=C2)=CC=C2S([O-])(=O)=O)=CC(S(O)(=O)=O)=C1N.[Na+].[Na+] XOSXWYQMOYSSKB-LDKJGXKFSA-L 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
【課題】本発明は、縫合可能な強度を有する立体細胞構造体を提供することを目的としている。【解決手段】本発明の立体細胞構造体を製造する方法は、（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程とを含んでいる。【選択図】なし
Description
本発明は、立体細胞構造体を製造する方法に関しており、特に強度の高い立体細胞構造体を製造する方法及び当該方法により製造された立体細胞構造体、並びにそれを用いて人工皮膚を製造する方法及び当該方法により製造された人工皮膚に関する。
近年の新しい医療技術として、培養細胞を利用した再生医療が注目されている。人体への移植を目的として、人工組織や人工臓器などの立体細胞構造体の作製が研究されている。人工皮膚は、人体の表面に適用するためアクセスが比較的容易であり、移植後の状況を目視で確認し、不具合部分があればその部分のみの再手術も可能であるなどの理由により、再生医療の分野では参入しやすい分野である。また、人工組織や人工臓器などの立体細胞構造体は、薬理試験若しくは毒性試験、又は発生学の試験などにも利用することができる。ヒト細胞などを用いて立体細胞構造体を作製し、生体内の環境に近い環境での試験を容易に実施することができれば、創薬研究、パーソナライズした投薬診断、又は各器官発生の観察研究などが効率的に行えるようになることが期待される。
特許文献１及び非特許文献１には、複数の細胞凝集体（スフェロイド）を、複数の糸状又は針状部材で形成された支持体内の空間の中で培養して融合させ、立体細胞構造体を作製する方法が記載されている。また、臨床で使用される人工皮膚の分野の製品としては、ヒト（自己）表皮由来細胞シートやコラーゲンスポンジ層及び補強フィルムからなる二層性の人工皮膚が承認されている。
Bioengineering of a scaffold-less three-dimensional tissue using net mould, Katsuhisa Sakaguchi et al 2021 Biofabrication 13 045019, https://doi.org/10.1088/1758-5090/ac23e3
従来の方法で作製した立体細胞構造体や臨床で使用されている表皮由来細胞シート及び人工皮膚は、縫合可能な強度を有しておらず利用範囲が限られていた。そこで、本発明は、縫合可能な強度を有する立体細胞構造体を提供することを目的としている。
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討した結果、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む元細胞を特定の方法で三次元培養することで、縫合可能な強度を有する立体細胞構造体を製造できることを見出し、本発明を完成させた。すなわち、本発明は、以下に示す立体細胞構造体を製造する方法、人工皮膚を製造する方法、立体細胞構造体、及び人工皮膚を提供するものである。
〔１〕立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含む、方法。
〔２〕前記元細胞が、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔３〕前記元細胞が、スフェロイドの形態である、前記〔１〕に記載の方法。
〔４〕前記工程２が、前記キャビティーの内部空間を前記元細胞で満たす工程を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔５〕前記元細胞を、前記立体細胞構造体の破断力が０．０８Ｎ以上になるまで培養する、前記〔１〕に記載の方法。
〔６〕前記立体細胞構造体のうち前記キャビティーの外側に溢れ出した部分を回収する工程をさらに含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔７〕前記立体細胞構造体が、培養真皮を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔８〕前記キャビティーの下面及び／又は上面が、櫛形状又は網目形状である、前記〔１〕に記載の方法。
〔９〕前記キャビティーの側面が、複数のフレームを積層して形成されたものである、前記〔１〕に記載の方法。
〔１０〕前記〔１〕～〔９〕のいずれか１項に記載の方法で製造された立体細胞構造体を、表皮用部材と積層する工程を含む、人工皮膚の製造方法。
〔１１〕内部に培養開始時に使用された元細胞を含み、かつ、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成されている立体細胞構造体であって、
破断力が０．０８Ｎ以上である、立体細胞構造体。
〔１２〕前記元細胞が、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む、前記〔１１〕に記載の立体細胞構造体。
〔１３〕培養真皮を含む、前記〔１１〕に記載の立体細胞構造体。
〔１４〕前記〔１１〕～〔１３〕のいずれか１項に記載の立体細胞構造体と、それに積層された表皮用部材とを含む、人工皮膚。
〔１〕立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含む、方法。
〔２〕前記元細胞が、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔３〕前記元細胞が、スフェロイドの形態である、前記〔１〕に記載の方法。
〔４〕前記工程２が、前記キャビティーの内部空間を前記元細胞で満たす工程を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔５〕前記元細胞を、前記立体細胞構造体の破断力が０．０８Ｎ以上になるまで培養する、前記〔１〕に記載の方法。
〔６〕前記立体細胞構造体のうち前記キャビティーの外側に溢れ出した部分を回収する工程をさらに含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔７〕前記立体細胞構造体が、培養真皮を含む、前記〔１〕に記載の方法。
〔８〕前記キャビティーの下面及び／又は上面が、櫛形状又は網目形状である、前記〔１〕に記載の方法。
〔９〕前記キャビティーの側面が、複数のフレームを積層して形成されたものである、前記〔１〕に記載の方法。
〔１０〕前記〔１〕～〔９〕のいずれか１項に記載の方法で製造された立体細胞構造体を、表皮用部材と積層する工程を含む、人工皮膚の製造方法。
〔１１〕内部に培養開始時に使用された元細胞を含み、かつ、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成されている立体細胞構造体であって、
破断力が０．０８Ｎ以上である、立体細胞構造体。
〔１２〕前記元細胞が、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む、前記〔１１〕に記載の立体細胞構造体。
〔１３〕培養真皮を含む、前記〔１１〕に記載の立体細胞構造体。
〔１４〕前記〔１１〕～〔１３〕のいずれか１項に記載の立体細胞構造体と、それに積層された表皮用部材とを含む、人工皮膚。
本発明に従えば、培養チャンバーのキャビティーから溢れるまで立体細胞構造体を成長させることにより、縫合可能な強度を有する立体細胞構造体を製造できる。したがって、生体への移植に有用な立体細胞構造体を提供することができる。
以下、本発明をさらに詳細に説明する。
本発明は立体細胞構造体を製造する方法に関しており、増殖能を有する元細胞（オリジナル細胞）と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程（工程１）を含んでいる。本明細書に記載の「立体細胞構造体」とは、細胞が複数層重なって形成された立体構造体のことをいい、細胞外マトリックスも含む培養組織のことをいう。
本発明は立体細胞構造体を製造する方法に関しており、増殖能を有する元細胞（オリジナル細胞）と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程（工程１）を含んでいる。本明細書に記載の「立体細胞構造体」とは、細胞が複数層重なって形成された立体構造体のことをいい、細胞外マトリックスも含む培養組織のことをいう。
本明細書に記載の「元細胞」とは、培養の開始に用いる培養対象の細胞のことをいう。前記元細胞は、インビトロで増殖可能なものであれば特に制限されず、例えば、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞、あるいは胚性幹細胞又は人工多能性幹細胞などを含んでもよい。また、前記元細胞は、１つ１つの分離した細胞として用意してもいいし、細胞同士が凝集したスフェロイドの形態で用意してもよい。前記スフェロイドの大きさは、特に制限されないが、例えば、その粒径が、約１００～約３００μｍ、約１００～５００μｍ、約１００～約７５０μｍ、約１００～約１０００μｍ、又は約１００～約２５００μｍであってもよい。
前記培養チャンバーにおいては、前記キャビティーの内部空間内に培養液が循環可能である必要があるため、前記培養チャンバー及び前記キャビティーの下面、上面、又は側面は、培養液が通過可能な空隙を有している。空隙の形成方法は特に制限されないが、例えば、前記キャビティーの下面及び／又は上面は、櫛形状又は網目形状であってもよく、前記キャビティーの側面は、複数のフレームを積層して形成されたものであり、当該フレーム間に空隙が存在していてもよい。具体的には、図１に示すように、前記培養チャンバーのキャビティーの下面、上面、及び側面を、櫛形状に配置した複数のワイヤ１で構成してもよい。培養液は、当該ワイヤ間の空隙を自由に通過して、前記培養チャンバーのキャビティーの内部空間１１の中を循環することができる。より具体的には、特許文献１又は非特許文献１に記載されている培養チャンバーや、市販のネットモールド（ティシューバイネット社製）を使用してもよい。
本発明の方法は、前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程（工程２）を含んでいる。この工程においては、前記元細胞を、前記培養チャンバーのキャビティーの内部空間内に供給してもいいし、当該キャビティーの上部に配置した後に、前記培養チャンバーの上面をセットするときに当該キャビティーの内部空間に押し込んでもよい。
ある態様では、工程２は、前記キャビティーの内部空間を前記元細胞で満たす工程を含む。ここでいう「満たす」とは、前記元細胞が、前記キャビティーの上面と接するまで導入されている状態をいい、前記キャビティーの上部に前記元細胞を配置して前記培養チャンバーの上面をセットするときに押し込んだ結果、前記キャビティーの上面と接するまで導入された状態となった場合も含まれる。
本発明の方法は、前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程（工程３）を含んでいる。前記培養チャンバーにおいては、前記キャビティーの内部空間内に前記培養液が循環可能であるため、例えば、図１に示されているように、元細胞２を培養チャンバーのキャビティーの内部空間１１に供給した後に、当該培養チャンバー全体を培養液３の中に保持すれば、前記キャビティーの内部空間に供給した前記元細胞に前記培養液が行き渡る。前記培養液の組成は、特に制限されず、前記元細胞の種類や培養目的に応じて適宜選択することができる。
本発明の方法は、前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程（工程４）を含んでいる。すなわち、本発明の方法においては、形成される立体細胞構造体が、前記キャビティーの上面、下面、又は側面のいずれかを超えて、その外側まで溢れ出るまで培養を継続する。例えば、図２に示すように、上面、下面、及び側面が複数のワイヤ１で構成されたキャビティーの内部空間を元細胞２で満たして培養を開始し（図２ａ）、当該キャビティーの内部空間で立体細胞構造体４が形成されても培養を続け（図２ｂ）、当該キャビティーから溢れ出るまで立体細胞構造体４１を成長させる（図２ｃ）。前記キャビティーから溢れ出るまで成長した立体細胞構造体４１は、大きく分けて３つの部分、すなわち元細胞２を多く含む前記キャビティー内の中央部分４１３と、最外層４１１と、中間層４１２とから構成されている（図２ｃ）。
ある態様では、あるキャビティーの側面などから溢れ出した立体細胞構造体の一部分が、近傍のキャビティーの側面などから溢れ出した別の立体細胞構造体の一部分と一体となって、大きな立体細胞構造体を形成してもよい。
従来の培養方法では、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成される立体細胞構造体を、前記キャビティーの内部空間で支持することで形成することが目的とされており、前記キャビティー外に立体細胞構造体が成長することを想定していなかった。しかし、驚くべきことに、前記キャビティーの内部空間内で立体細胞構造体が形成された後にもさらに培養を続け、前記立体細胞構造体を前記キャビティーの外側まで成長させることで、その破断力（破断強度）が増加し、縫合にも耐えられる立体細胞構造体が形成されることが分かった。
工程４において前記立体細胞構造体が形成されるまでの前記元細胞の培養期間は、特に制限されないが、例えば、単独のキャビティーで立体細胞構造体を作製する場合、当該キャビティーの内部空間を前記元細胞で満たした状態で培養を開始してから、約２か月以上、約３か月以上、約４か月以上、又は約５か月以上であってもよく、約１０か月以下又は約９か月以下であってもよい。あるいは、培養チャンバー内のキャビティーの内部空間よりも大きなスフェロイドの形態の元細胞を、キャビティーの上に等間隔に配置し、培養チャンバーの上面をセットしてスフェロイドをキャビティーの内部空間内に押し込んだ状態で培養を開始する場合、培養チャンバー全体に占めるスフェロイド（元細胞）の割合にもよるが、例えば、培養期間は、約２週間以上又は約１か月以上であってもよく、約８か月以下又は約７か月以下であってもよい。ある態様では、前記元細胞を、前記立体細胞構造体の破断力が、約０．０８Ｎ以上、約０．１Ｎ以上、約０．２Ｎ以上、又は約０．３Ｎ以上になるまで培養してもよい。なお、前記立体細胞構造体の破断力は、ＥＺ Ｔｅｓｔ（島津製作所）などの公知の破断力測定装置又は引張試験機で測定することができる。
本発明の方法により製造された立体細胞構造体は、縫合可能な強度を有しているため、生体への移植に有利に利用できる。その利用方法は特に制限されず、例えば、前記立体細胞構造体を培養真皮として創傷部位などの皮膚欠損部に移植してもよく、あるいは、前記立体細胞構造体を内臓の欠損部に移植してもよい。特定の理論に拘束されるものではないが、例えば、前記立体細胞構造体は、生体の細胞組織構造に近似しているため、移植部位でスキャフォールド（足場）として機能し、当該立体細胞構造体の内側に移植部位周辺の細胞が入り込み、欠損部位の皮膚又は臓器の再生を促すことができると考えられる。なお、前記立体細胞構造体は、元細胞が含まれている中央部分を中心として、水平に上下に分割可能であり、上下に分割された立体細胞構造体においては、重層化していない細胞を多数含む中間層部分を移植先表面に接触させることができるため、移植部位周辺の細胞が入り込みやすく、スキャフォールドとしての機能がより期待できる。
ある態様では、本発明の方法は、前記立体細胞構造体のうち前記キャビティーの外側に溢れ出した部分を回収する工程をさらに含んでもよい。当該部分を回収した後に、前記立体細胞構造体の中央部分を含む残りの部分の培養を続ければ、当該立体細胞構造体が前記キャビティーの外側まで再度成長し、その溢れ出した部分を再度回収して利用することもできる。
本発明の方法は、本発明の目的を損なわない限り、任意の工程をさらに含んでもよい。例えば、本発明の方法は、前記培養チャンバーから形成された立体細胞構造体を取り出す工程をさらに含んでもよく、工程４の途中で、前記培養液を交換する工程、及び／又は、培養中の細胞を洗浄する工程を含んでもよい。
別の態様では、本発明は、内部に培養開始時に使用された元細胞を含み、かつ、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成されている立体細胞構造体にも関しており、当該立体細胞構造体の破断力は、約０．０８Ｎ以上、約０．１Ｎ以上、約０．２Ｎ以上、又は約０．３Ｎ以上である。本発明の立体細胞構造体は、本発明の一態様として上述した立体細胞構造体を製造する方法に従って調製することができる。
また別の態様では、本発明は、本発明の一態様として上述した本発明の方法で製造した立体細胞構造体を、表皮用部材と積層する工程を含む、人工皮膚の製造方法にも関している。あるいは、本発明は、本発明の一態様として上述した立体細胞構造体と、それに積層された表皮部材とを含む、人工皮膚にも関している。前記人工皮膚は、創傷部位への移植などに有用である。
前記表皮用部材としては、当技術分野で使用されているものを特に制限されることなく採用することができ、例えば、前記表皮用部材は、表皮細胞シートなどであってもよい。前記立体細胞構造体と前記表皮用部材とを積層すれば、人工皮膚を生体に移植したときの生着効率が高くなる。
以下、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明の範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
［試験例１］立体細胞構造体の調製
（１）細胞培養
通常ヒト皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ；ＣＣ－２５０９、ロンザ社）を、ＦＫＣＭ培地（フコク社）に１０％のウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ ＦＢＳ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）及び１％のペニシリン－ストレプトマイシン（シグマ－アルドリッチ社）を加えた培地で、インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ2）の中で３日間培養した。増殖した細胞を継代し、４～５継代まで培養した細胞を以降の試験に使用した。
（１）細胞培養
通常ヒト皮膚線維芽細胞（ＮＨＤＦ；ＣＣ－２５０９、ロンザ社）を、ＦＫＣＭ培地（フコク社）に１０％のウシ胎児血清（Ｇｉｂｃｏ ＦＢＳ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）及び１％のペニシリン－ストレプトマイシン（シグマ－アルドリッチ社）を加えた培地で、インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ2）の中で３日間培養した。増殖した細胞を継代し、４～５継代まで培養した細胞を以降の試験に使用した。
（２）スフェロイドの調製
スフェロイドをシリコンディンプルプレート（ＤＰ１０－１、ティシューバイネット社）で調製した。具体的には、ＮＨＤＦをＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて回収し、ＦＫＣＭ培地を用いて１×１０6個／ｍＬの細胞懸濁液を作製した。２０ｍＬの細胞懸濁液を、１プレート当たり４５００個のディンプルを有するシリコンディンプルプレート（ＤＰ１０－１、ティシューバイネット社）に播き、インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ2）の中で１２時間培養した。その結果、直径約２００μｍのスフェロイドが得られた。
スフェロイドをシリコンディンプルプレート（ＤＰ１０－１、ティシューバイネット社）で調製した。具体的には、ＮＨＤＦをＴｒｙｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いて回収し、ＦＫＣＭ培地を用いて１×１０6個／ｍＬの細胞懸濁液を作製した。２０ｍＬの細胞懸濁液を、１プレート当たり４５００個のディンプルを有するシリコンディンプルプレート（ＤＰ１０－１、ティシューバイネット社）に播き、インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ2）の中で１２時間培養した。その結果、直径約２００μｍのスフェロイドが得られた。
（３）立体細胞構造体の調製
ネットモールドＮＭ１４－２（ティシューバイネット社）の上面及び下面には、直径１００μｍのステンレススチールワイヤーが１００μｍ間隔で平行に（櫛状に）配置されており、スフェロイドは通り抜けできないように構成されている。本試験では、ネットモールドＮＭ１４－２を使用し、０．１ｍｍ厚のサイドネットを１０枚重ねることで、６ｍｍ×６ｍｍ×１ｍｍの内部空間を有するキャビティーを含む培養チャンバーを形成した。この内部空間に、常法により上記スフェロイドを供給し、この培養チャンバーを４０ｍＬのＦＫＣＭ培地（１０％ウシ胎児血清及び１％ペニシリン－ストレプトマイシン添加）を含む１２０ｍＬ容量の滅菌容器（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の中に配置した。
ネットモールドＮＭ１４－２（ティシューバイネット社）の上面及び下面には、直径１００μｍのステンレススチールワイヤーが１００μｍ間隔で平行に（櫛状に）配置されており、スフェロイドは通り抜けできないように構成されている。本試験では、ネットモールドＮＭ１４－２を使用し、０．１ｍｍ厚のサイドネットを１０枚重ねることで、６ｍｍ×６ｍｍ×１ｍｍの内部空間を有するキャビティーを含む培養チャンバーを形成した。この内部空間に、常法により上記スフェロイドを供給し、この培養チャンバーを４０ｍＬのＦＫＣＭ培地（１０％ウシ胎児血清及び１％ペニシリン－ストレプトマイシン添加）を含む１２０ｍＬ容量の滅菌容器（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の中に配置した。
上記培養チャンバーを含む滅菌容器を、インキュベーター（３７℃、５％ＣＯ2）内の高湿度対応振とう機ＣＳ－ＬＲ（タイテック社）にセットし、培地の循環を促すために４０ｒｐｍで振とうした。このようにして、上記スフェロイドを、毎週半量の培地を交換しながら、２～６か月間培養した。培養期間が２か月になると、形成された立体細胞構造体は、キャビティーの上面及び下面からそれぞれ５００μｍ程度溢れ出し、キャビティーの側面から数ミリ程度溢れ出した状態となったが、それ以上培養しても、上面及び下面から溢れ出した部分の厚さはあまり変わらなかった。
培養後に、ネットモールド内の立体細胞構造体を常法により取り出し、以降の試験に使用した。また、直径３ｍｍのサンプルは、直径３ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）で切り取ることにより調製した。
（４）組織染色
直径３ｍｍに切り出した立体細胞構造体（６か月間培養したもの）を、常法によりホルマリンで固定してパラフィン包埋し、当該立体細胞構造体の中央で厚さ５μｍの切片を作製した。この切片をヘマトキシリン・エオジン（ＨＥ）染色、エラスチカ・ワンギーソン（ＥＶＧ）染色、又はアルシアンブルー染色に供し、あるいは、抗タイプＩコラーゲン抗体又は抗タイプＩＩコラーゲン抗体を用いて常法により免疫染色した。
直径３ｍｍに切り出した立体細胞構造体（６か月間培養したもの）を、常法によりホルマリンで固定してパラフィン包埋し、当該立体細胞構造体の中央で厚さ５μｍの切片を作製した。この切片をヘマトキシリン・エオジン（ＨＥ）染色、エラスチカ・ワンギーソン（ＥＶＧ）染色、又はアルシアンブルー染色に供し、あるいは、抗タイプＩコラーゲン抗体又は抗タイプＩＩコラーゲン抗体を用いて常法により免疫染色した。
ＨＥ染色の光学顕微鏡写真（図３Ａ）を見ると、培養開始時にスフェロイドが存在していた中央部分の外側に、細胞の密度が比較的低いが細胞外マトリックスを介して組織を構成している中間層と、立体細胞構造体の表面で密に多層構造を含んでいる最外層とが形成されていることが分かった。ＥＶＧ染色の光学顕微鏡写真（図３Ｂ）によると、膠原線維を主体とした立体細胞構造体が形成されていた。アルシアンブルー染色の光学顕微鏡写真（図３Ｃ）によれば、酸性ムコ多糖類は立体細胞構造体の中間層部分に多く存在していることが分かった。そして、抗タイプＩコラーゲン抗体又は抗タイプＩＩコラーゲン抗体による免疫染色の光学顕微鏡写真（図３Ｄ及び図３Ｅ）によれば、タイプＩコラーゲン及びタイプＩＩコラーゲンは立体細胞構造体の全体にわたって広く存在し、特に最外層に多く存在していることが分かった。
これらの組織染色の結果より、立体細胞構造体は、培養の開始時に使用した元細胞と、それに由来する培養細胞と、酸性ムコ多糖類及びコラーゲンなどの細胞外マトリックスとが一体となって構成されたものであることが理解でき、また、当該立体細胞構造体は、生体の細胞組織構造（例えば真皮構造）と類似した構造を有していることから、生体移植時の良好な適合性が期待された。
［試験例２］立体細胞構造体の特性解析
（１）破断力の測定
立体細胞構造体を６ｍｍ平方の大きさにカットし、その下から２．５ｍｍの中央部にポリプロピレン縫合糸（糸サイズ５－０）を通し、糸の長さが５ｃｍとなるように糸の末端を結んだ。この上側３ｍｍの部分を破断力測定装置（ＥＺ Ｔｅｓｔ、島津製作所）の上のクランプではさみ、結んだ糸の下端を下のクランプではさんで、１００ｍｍ／分の速度で培養真皮が破けるまで引っ張った。
（１）破断力の測定
立体細胞構造体を６ｍｍ平方の大きさにカットし、その下から２．５ｍｍの中央部にポリプロピレン縫合糸（糸サイズ５－０）を通し、糸の長さが５ｃｍとなるように糸の末端を結んだ。この上側３ｍｍの部分を破断力測定装置（ＥＺ Ｔｅｓｔ、島津製作所）の上のクランプではさみ、結んだ糸の下端を下のクランプではさんで、１００ｍｍ／分の速度で培養真皮が破けるまで引っ張った。
（２）乾燥重量の測定
６ｍｍの立体細胞構造体を凍結乾燥機ＶＤ－２５０Ｒ（タイテック社）を用いて３日間乾燥させ、その乾燥重量を電子天秤で測定した。
６ｍｍの立体細胞構造体を凍結乾燥機ＶＤ－２５０Ｒ（タイテック社）を用いて３日間乾燥させ、その乾燥重量を電子天秤で測定した。
（３）コラーゲン量の測定
コラーゲン定量アッセイキット（ＱｕｉｃｋＺｙｍｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中のコラーゲン量を測定した。取扱説明書に従って操作し、反応試薬の５７０ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定し、コラーゲン量を算出した。
コラーゲン定量アッセイキット（ＱｕｉｃｋＺｙｍｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中のコラーゲン量を測定した。取扱説明書に従って操作し、反応試薬の５７０ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定し、コラーゲン量を算出した。
（４）硫酸化グリコサミノグリカン量の測定
Ｂｌｙｓｃａｎグリコサミノグリカンアッセイキット（Ｂｉｏｃｏｌｏｒ社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中の硫酸化グリコサミノグリカン（ｓＧＡＧ）量を測定した。取扱説明書に従って操作し、反応試薬の６５６ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定し、ｓＧＡＧ量を算出した。
Ｂｌｙｓｃａｎグリコサミノグリカンアッセイキット（Ｂｉｏｃｏｌｏｒ社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中の硫酸化グリコサミノグリカン（ｓＧＡＧ）量を測定した。取扱説明書に従って操作し、反応試薬の６５６ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定し、ｓＧＡＧ量を算出した。
（５）生細胞数の比較
ＷＳＴ－８による生細胞数測定試薬Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔ Ｒｅａｇｅｎｔ ＳＦ（ナカライテスク社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中の生細胞数を測定した。取扱説明書に従って操作し、試験波長４５０ｎｍ及び参照波長６５０ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定して、それらの吸光度の差を生細胞数の指標とし、立体細胞構造体中の細胞の生存状態を比較した。
ＷＳＴ－８による生細胞数測定試薬Ｃｅｌｌ Ｃｏｕｎｔ Ｒｅａｇｅｎｔ ＳＦ（ナカライテスク社）を用いて、直径３ｍｍの立体細胞構造体サンプル中の生細胞数を測定した。取扱説明書に従って操作し、試験波長４５０ｎｍ及び参照波長６５０ｎｍの吸光度をマイクロプレートリーダーで測定して、それらの吸光度の差を生細胞数の指標とし、立体細胞構造体中の細胞の生存状態を比較した。
（６）試験結果
２か月、４か月、又は６か月培養して調製した培養真皮を使用して測定した破断力、乾燥重量、コラーゲン量、及びｓＧＡＧ量を表１に示す。
２か月、４か月、又は６か月培養して調製した培養真皮を使用して測定した破断力、乾燥重量、コラーゲン量、及びｓＧＡＧ量を表１に示す。
従来は、ネットモールドを用いてスフェロイドを培養する期間は３週間程度であったが、それを超えてスフェロイドを培養すると、特に２か月を超えたあたりからは、立体細胞構造体の破断力が著しく増加した。一方、各立体細胞構造体の乾燥重量には大きな差はなく、長期培養にもかかわらず細胞の生存状態は良好なまま維持されていた。コラーゲン量及びｓＧＡＧ量は培養期間に応じて減少する傾向があった。
比較のため、コラーゲンスポンジ層からなる市販の人工皮膚（ペルナックＧプラス(R)、グンゼ社）の破断力を測定すると、７０ｍＮ程度だった。培養期間が２か月以上の立体細胞構造体の破断力はそれよりも高く、縫合にも耐えられると考えられた。
［試験例３］移植実験
（１）実験設計及び手術方法
試験例１に記載の方法で４か月培養して作製した立体細胞構造体（培養真皮）を、直径６ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）で切り出し、鑷子を用いて水平方向で上下２つの立体細胞構造体に分けて動物実験に使用した。２４匹のＢＡＬＢ／ｃＡＪｃｌ－ｎｕ／ｎｕマウス（オス、７週齢）（日本クレア社）を常法により飼育し、対照群、培養真皮群、及び市販人工真皮群の３群に分けた。なお、すべての苦痛を伴う作業はイソフラレン麻酔下で行った。
（１）実験設計及び手術方法
試験例１に記載の方法で４か月培養して作製した立体細胞構造体（培養真皮）を、直径６ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）で切り出し、鑷子を用いて水平方向で上下２つの立体細胞構造体に分けて動物実験に使用した。２４匹のＢＡＬＢ／ｃＡＪｃｌ－ｎｕ／ｎｕマウス（オス、７週齢）（日本クレア社）を常法により飼育し、対照群、培養真皮群、及び市販人工真皮群の３群に分けた。なお、すべての苦痛を伴う作業はイソフラレン麻酔下で行った。
適用手術においては、ドーナッツ型のシリコンスキンスプリント（外径１８ｍｍ、内径１２ｍｍ、厚さ０．５ｍｍ；富士システムズ社）を、接着剤（アロンアルファ；第一三共社）により皮膚に貼り付けた。当該スキンスプリントは、創傷部位の収縮を防ぐために５－０ナイロン糸（ベアーメディック社）を用いて皮膚に縫い付けた。そして、当該スキンスプリントの穴の内側中央に、直径６ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）及びはさみを用いて、直径６ｍｍの全層皮膚欠損創を作製した。
培養真皮群及び市販人工真皮群のマウスの皮膚欠損部には、移植用培養真皮又はペルナックＧプラス(R)（グンゼ社）をそれぞれ移植し、対照群のマウスの皮膚欠損部には、何も埋め込まなかった。創傷部位をシリコンメッシュシート（直径６ｍｍ、ＳＩメッシュ、アルケア社）で覆い、それを５－０ナイロン糸で縁の上皮に縫い付けた。そして、汚染及び機械的ストレスを防ぐために、創傷部位をガーゼでさらに覆い、サージカルテープ（シルキーテックス、アルケア社）で固定した。処置後のマウスは、個別にケージに入れて、動物施設で飼育した。
（２）創傷治癒の評価
術後７日目及び１４日目に、創傷治癒状態を評価した。各評価時点で、各群のマウス４匹ずつを二酸化炭素ガス吸入により犠牲死させ、創傷部位の肉眼観察画像をデジタルカメラで取得した。また、創傷部位のサンプルを周辺組織とともに回収して、１０％ホルマリン液にて固定し、パラフィン包埋して各創傷部位の中央を軸方向に切片化した。そして、切片をＨＥ染色、アゾカルミン－アニリンブルー（ＡＺＡＮ）染色、及びＣＤ３１の免疫染色に供した。
術後７日目及び１４日目に、創傷治癒状態を評価した。各評価時点で、各群のマウス４匹ずつを二酸化炭素ガス吸入により犠牲死させ、創傷部位の肉眼観察画像をデジタルカメラで取得した。また、創傷部位のサンプルを周辺組織とともに回収して、１０％ホルマリン液にて固定し、パラフィン包埋して各創傷部位の中央を軸方向に切片化した。そして、切片をＨＥ染色、アゾカルミン－アニリンブルー（ＡＺＡＮ）染色、及びＣＤ３１の免疫染色に供した。
新生上皮の長さは、ＨＥ染色の切片において光学顕微鏡を用いて測定した。創傷部位及び新生上皮には毛包がなく、周辺組織には毛包が存在しているため、当該毛包を指標として創傷部位を特定し、当該創傷部位の上部に連なって形成された上皮細胞の層（ヘマトキシリンで濃い青色に染色）を新生上皮と判断した。
創傷部位の筋肉層の上に新しく形成された真皮様組織の領域は、ＡＺＡＮ染色の切片において光学顕微鏡を用いて測定した。肉芽組織における線維性結合組織は、アニリンブルーでライトブルーに染まり、ダークブルーに染まった傷の端の真皮とは区別することができるため、ライトブルーに染まった部分を新生真皮様組織と判断し、その面積をＢＺ－Ｘ８００解析ソフト（キーエンス社）によって測定した。
新生真皮様組織の単位面積あたりの新生毛細血管の総面積を、常法により行った抗ＣＤ３１抗体による免疫染色（ＤＡＢ染色）の切片において測定した。ＤＡＢ染色の茶色について閾値を設定し、この閾値以上の発色濃度の領域を、ＢＺ－Ｘ８００解析ソフト（キーエンス社）を用いて測定した。そして、血管の管状構造が見えた領域を測定して、当該領域の合計を新生毛細血管の面積として計算し、ＡＺＡＮ染色で決定された肉芽領域面積で除した結果を単位肉芽面積あたりの新生毛細血管面積とした。
（３）統計解析
統計学的有意性は、Ｔｕｋｅｙ－Ｋｒａｍｅｒ多重比較法を用いて評価した。データはすべて平均値±標準偏差で表されており、Ｐ＜０．０５のときに統計学的に有意であるとした。
統計学的有意性は、Ｔｕｋｅｙ－Ｋｒａｍｅｒ多重比較法を用いて評価した。データはすべて平均値±標準偏差で表されており、Ｐ＜０．０５のときに統計学的に有意であるとした。
（４）結果
図４に、手術直後、術後７日目、及び術後１４日目の、創傷部位の写真を示す。創傷は痂皮で覆われていた。明らかな感染兆候は認められず、施術は適切に行われたことが確認できた。また、創傷部位をＨＥ染色した切片の写真を図５示す。移植した培養真皮（破線で囲われた部分）の生着が確認できた。
図４に、手術直後、術後７日目、及び術後１４日目の、創傷部位の写真を示す。創傷は痂皮で覆われていた。明らかな感染兆候は認められず、施術は適切に行われたことが確認できた。また、創傷部位をＨＥ染色した切片の写真を図５示す。移植した培養真皮（破線で囲われた部分）の生着が確認できた。
術後７日目及び１４日目の、創傷部位における新生上皮の長さを表２に示す。培養真皮群では、術後７日目及び１４日目で、対照群及び市販人工真皮群と比較して新生上皮がより長く形成されていた。
術後７日目及び１４日目の、創傷部位における新生真皮様組織の面積を比較すると、各群の間に有意な差はなかったものの、培養真皮群では、術後７日目を過ぎると、対照群及び市販人工真皮群と比較して広い領域で新生真皮様組織が形成される傾向があった。
術後７日目及び１４日目の、創傷部位における新生毛細血管の面積を表３に示す。培養真皮群では、術後１４日目に、対照群及び人工真皮群と比較して毛細血管がより多く形成された。
（５）考察
本発明の方法に従って製造した立体細胞構造体は、創傷部位に生着し、培養真皮として機能した。線維芽細胞は血管新生を促進するサイトカインを算出することが知られており、そのため、当該立体細胞構造体を培養真皮として移植すると、その内部に血管上皮細胞や線維芽細胞などが入り込み、新生毛細血管の形成や新生上皮細胞の形成が促されたと考えられる。
本発明の方法に従って製造した立体細胞構造体は、創傷部位に生着し、培養真皮として機能した。線維芽細胞は血管新生を促進するサイトカインを算出することが知られており、そのため、当該立体細胞構造体を培養真皮として移植すると、その内部に血管上皮細胞や線維芽細胞などが入り込み、新生毛細血管の形成や新生上皮細胞の形成が促されたと考えられる。
［試験例４］表皮細胞シートとの共培養
試験例１に記載の方法で４か月培養して作製した立体細胞構造体を直径６ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）で切り出し、鑷子を用いて水平方向で上下２つの立体細胞構造体に分けて移植用培養真皮として使用した。２４ウェル細胞インサートを２４ウェルプレートにセットし、その細胞インサート内に、移植用培養真皮を立体細胞構造体の最外層だった部分が上になるように入れ、その上に同じサイズで切り出した表皮細胞シート（ジェイス(R)、ジャパン・ティッシュエンジニアリング社）を重ね、１０％ウシ胎児血清を加えた線維芽細胞無血清培地（ＦＫＣＭ）を各ウェルに０．９ｍＬずつ添加し、３７℃、５％ＣＯ2の条件で気液界面培養を行った。
試験例１に記載の方法で４か月培養して作製した立体細胞構造体を直径６ｍｍの生検用パンチ（カイインダストリーズ社）で切り出し、鑷子を用いて水平方向で上下２つの立体細胞構造体に分けて移植用培養真皮として使用した。２４ウェル細胞インサートを２４ウェルプレートにセットし、その細胞インサート内に、移植用培養真皮を立体細胞構造体の最外層だった部分が上になるように入れ、その上に同じサイズで切り出した表皮細胞シート（ジェイス(R)、ジャパン・ティッシュエンジニアリング社）を重ね、１０％ウシ胎児血清を加えた線維芽細胞無血清培地（ＦＫＣＭ）を各ウェルに０．９ｍＬずつ添加し、３７℃、５％ＣＯ2の条件で気液界面培養を行った。
共培養１日後に、共培養物を回収し、それを試験例３と同様にして皮膚欠損部に移植した。術後７日目に創傷治癒状態を確認したところ、移植した共培養物の生着及び新生上皮の形成が確認された。
［試験例５］大型の立体細胞構造体の簡易培養
試験例１の（２）と同様にしてスフェロイド形態のＮＨＤＦを調製し、大きな凝集塊（直径１０００μｍ以上のもの）になっているものを選択した。培養チャンバーとしてネットモールドＮＭ１４－２（ティシューバイネット社）を用意し、そのステンレススチールワイヤーの間隔を縦横共に１ｍｍに調整して、キャビティーの上にスフェロイドを等間隔に配置した（図６のａ）。常法により培養チャンバーの上面をセットしてスフェロイドをキャビティーの内部空間内に押し込み、試験例１の（３）と同様にして培養した。
試験例１の（２）と同様にしてスフェロイド形態のＮＨＤＦを調製し、大きな凝集塊（直径１０００μｍ以上のもの）になっているものを選択した。培養チャンバーとしてネットモールドＮＭ１４－２（ティシューバイネット社）を用意し、そのステンレススチールワイヤーの間隔を縦横共に１ｍｍに調整して、キャビティーの上にスフェロイドを等間隔に配置した（図６のａ）。常法により培養チャンバーの上面をセットしてスフェロイドをキャビティーの内部空間内に押し込み、試験例１の（３）と同様にして培養した。
１月培養した後、ネットモールドの上下のネットを外して中間のネットを１枚だけ残したときの外観写真を図６のｂに示す。スフェロイド状態の元細胞は、培養当初に配置されていたキャビティー部分を越えて、培養チャンバー全体に広がって増殖し、立体細胞構造体を形成した。この立体細胞構造体の断面を染色すると、図７に示されているように、立体細胞構造体の端まで細胞が行き届いていることが分かった（図７の大きな空洞は、キャビティーを区切っていたワイヤの跡である）。また、図７の部分拡大写真を見ると、この試験例の方法で作製した立体細胞構造体においても、培養開始時にスフェロイドが存在していた中央部分の外側に、細胞の密度が比較的低いが細胞外マトリックスを介して組織を構成している中間層と、立体細胞構造体の表面で密に多層構造を含んでいる最外層とが形成されていること、すなわち、生体の細胞組織構造（例えば真皮構造）と類似した構造が形成されていることが確認できた。したがって、培養チャンバーの使い方を調節することにより、所望の大きさの立体細胞構造体を作製することができる。
以上より、培養チャンバーのキャビティーから溢れるまで立体細胞構造体を成長させることにより、縫合可能な強度を有する立体細胞構造体を製造できることが分かった。このような立体細胞構造体は、培養真皮などの生体移植物として有用である。
１ ワイヤ
１１ 培養チャンバーのキャビティーの内部空間
２ 元細胞
３ 培養液
４ キャビティーの内部空間で形成された立体細胞構造体
４１ キャビティーから溢れるまで成長した立体細胞構造体
４１１ 立体細胞構造体の最外層
４１２ 立体細胞構造体の中間層
４１３ 立体細胞構造体の中央部分
１１ 培養チャンバーのキャビティーの内部空間
２ 元細胞
３ 培養液
４ キャビティーの内部空間で形成された立体細胞構造体
４１ キャビティーから溢れるまで成長した立体細胞構造体
４１１ 立体細胞構造体の最外層
４１２ 立体細胞構造体の中間層
４１３ 立体細胞構造体の中央部分
Claims (11)
- 立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの側面を超えて外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含み、
前記元細胞が、培養中に細胞外マトリックスを産生する細胞を含む、方法。 - 立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含み、
前記元細胞が、培養中に細胞外マトリックスを産生する細胞を含み、
前記工程（４）が、前記元細胞を前記立体細胞構造体の破断力が０．０８Ｎ以上になるまで培養を続ける工程を含む、方法。 - 立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含み、
前記元細胞が、培養中に細胞外マトリックスを産生する細胞を含み、
前記工程（４）が、前記元細胞を２か月以上培養する工程を含む、方法。 - 立体細胞構造体を製造する方法であって、
（１）増殖能を有する元細胞と、下面、上面、及び側面により囲われた内部空間を有するキャビティーを含み、かつ培養液が前記内部空間内に循環可能であるように形成された培養チャンバーとを用意する工程と、
（２）前記元細胞を、前記培養チャンバーに供給する工程と、
（３）前記培養チャンバー全体を培養液内に保持する工程と、
（４）前記元細胞を培養して、前記元細胞と、それに由来する培養細胞と、培養中に産生された細胞外マトリックスとが一体となることで構成され、かつ前記キャビティーの外側まで成長した立体細胞構造体を形成させる工程と
を含み、
前記元細胞が、培養中に細胞外マトリックスを産生する細胞を含み、
前記元細胞が、前記チャンバー内のキャビティーの内部空間よりも大きなスフェロイドの形態である、方法。 - 前記元細胞が、線維芽細胞及び／又は線維芽細胞分化能を有する細胞を含む、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記元細胞が、スフェロイドの形態である、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法。
- 前記工程（２）が、前記キャビティーの内部空間を前記元細胞で満たす工程を含む、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記立体細胞構造体のうち前記キャビティーの外側に溢れ出した部分を回収する工程をさらに含む、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記立体細胞構造体が、培養真皮を含む、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
- 前記キャビティーの下面及び／又は上面が、櫛形状又は網目形状であり、及び／又は、
前記キャビティーの側面が、複数のフレームを積層して形成されたものである、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。 - 請求項１～４のいずれか１項に記載の方法で製造された立体細胞構造体を、表皮用部材と積層する工程を含む、人工皮膚の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2023074637A JP7471579B1 (ja) | 2023-04-28 | 2023-04-28 | 立体細胞構造体を製造する方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2023074637A JP7471579B1 (ja) | 2023-04-28 | 2023-04-28 | 立体細胞構造体を製造する方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP7471579B1 true JP7471579B1 (ja) | 2024-04-22 |
Family
ID=90735797
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2023074637A Active JP7471579B1 (ja) | 2023-04-28 | 2023-04-28 | 立体細胞構造体を製造する方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP7471579B1 (ja) |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2012205516A (ja) | 2011-03-29 | 2012-10-25 | Osaka Univ | 人工皮膚モデルの製造方法、及び人工皮膚モデル |
| WO2018051415A1 (ja) | 2016-09-13 | 2018-03-22 | 次郎 大野 | ３次元細胞構造体の製造方法およびそれに用いる支持体 |
| WO2019012622A1 (ja) | 2017-07-12 | 2019-01-17 | 次郎 大野 | 任意形状の３次元細胞構造体の製造装置およびその製造方法 |
| WO2019093477A1 (ja) | 2017-11-10 | 2019-05-16 | 凸版印刷株式会社 | 人工脂肪組織及びその製造方法、人工皮膚の製造方法並びに脂肪細胞の培養剤 |
| JP2021045159A (ja) | 2014-11-05 | 2021-03-25 | オルガノボ インコーポレイテッド | 人工三次元皮膚組織、そのアレイ、およびその製造方法 |
| JP2022032393A (ja) | 2020-08-12 | 2022-02-25 | ティシューバイネット株式会社 | 上皮構造を持つ人工皮膚、及びその作成方法 |
-
2023
- 2023-04-28 JP JP2023074637A patent/JP7471579B1/ja active Active
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2012205516A (ja) | 2011-03-29 | 2012-10-25 | Osaka Univ | 人工皮膚モデルの製造方法、及び人工皮膚モデル |
| JP2021045159A (ja) | 2014-11-05 | 2021-03-25 | オルガノボ インコーポレイテッド | 人工三次元皮膚組織、そのアレイ、およびその製造方法 |
| WO2018051415A1 (ja) | 2016-09-13 | 2018-03-22 | 次郎 大野 | ３次元細胞構造体の製造方法およびそれに用いる支持体 |
| WO2019012622A1 (ja) | 2017-07-12 | 2019-01-17 | 次郎 大野 | 任意形状の３次元細胞構造体の製造装置およびその製造方法 |
| WO2019093477A1 (ja) | 2017-11-10 | 2019-05-16 | 凸版印刷株式会社 | 人工脂肪組織及びその製造方法、人工皮膚の製造方法並びに脂肪細胞の培養剤 |
| JP2022032393A (ja) | 2020-08-12 | 2022-02-25 | ティシューバイネット株式会社 | 上皮構造を持つ人工皮膚、及びその作成方法 |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Biofabrication，2021年，Vol.13，045019, p.1-10, suppl Data，https://doi.org/10.1088/1758-5090/ac23e3 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US10865373B2 (en) | Regenerated hair follicle primordium aggregation manufacturing method, hair follicle tissue-containing sheet, and method for manufacturing hair follicle tissue-containing sheet | |
| JP6140240B2 (ja) | 組織工学的に作製された絹製臓器 | |
| Yoon et al. | Development of cell-laden 3D scaffolds for efficient engineered skin substitutes by collagen gelation | |
| US9321998B2 (en) | Method of preparing regenerated hair follicle germ for transplantation in which hair color is controlled, composition including regenerated hair follicle germ for transplantation, and method of transplanting regenerated hair follicle germ | |
| ES2717637T3 (es) | Método para producir un primordio de órgano regenerativo dotado de una guía para trasplante | |
| KR100905900B1 (ko) | 콜라겐을 함유한 관절연골 치료용 이중 지지체 | |
| CN107073168B (zh) | 组织移植物 | |
| RU2498808C2 (ru) | Способ лечения состояния ротовой полости больного (варианты) | |
| CA2559585A1 (en) | Biological tissue sheet, method of forming the same and transplantation method by using the sheet | |
| WO2009107266A1 (ja) | 人工皮膚の製造方法 | |
| JP7471579B1 (ja) | 立体細胞構造体を製造する方法 | |
| CZ2012678A3 (cs) | Způsob zpracování odběrů pupečníkové krve, zpracování a uchování získané odpadní pupečníkové krve a její terapeutické využití | |
| US20200208106A1 (en) | Production Method of Multiple Regenerated Hair Follicle Primordia, Production Method of Hair Follicle Tissue-Containing Sheet, Hair Regeneration Kit and Method for Screening Hair Growth promoter or Hair Growth Inhibitor | |
| KR102201546B1 (ko) | 세포가 적재된 생체 이식용 무세포 진피층 및 이의 제조방법 | |
| WO2007029676A1 (ja) | 生体組織シート及びその作製方法 | |
| CN114929856A (zh) | Ipsc衍生的肺泡细胞的高通量培养 | |
| JP5066699B2 (ja) | 粘膜組織由来の線維芽細胞、これを含有する組織改善材及びこれらの製造方法並びに利用方法 | |
| WO2016088373A1 (ja) | 移植用培養細胞シート、移植用培養細胞シートの製造方法、及び、移植用の骨組織作製方法 | |
| ES2353990B1 (es) | Elaboracion de tejidos artificiales mediante ingenieria tisular utilizando biomateriales de fibrina y agarosa. | |
| Wonski | Development of Biologically-Engineered Blood Vessels Towards Clinical Translation | |
| JP2004222836A (ja) | 培養真皮シートの製造方法および培養真皮シート | |
| Nomhwange | Development and Characterisation of Nano Fiber Based Skin Equivalent Model | |
| JP2022155546A (ja) | 細胞シートの製造方法 | |
| CN117417876A (zh) | 预载有VEGF165基因修饰的iPS-HFSCs的组织工程皮肤及其制备方法 | |
| Perko | Applying Mesenchymal Stromal Cells and Platelet-Rich Plasma on a Collagen Matrix to Improve Fascial Repair |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20230428 |
|
| A871 | Explanation of circumstances concerning accelerated examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A871 Effective date: 20230428 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20230517 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20230615 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20230809 |
|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20231016 |
|
| A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20231208 |
|
| A911 | Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911 Effective date: 20240131 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20240311 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20240401 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 7471579 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |