JP7402541B2 - 抗インフルエンザノイラミニダーゼモノクローナル抗体およびその使用 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１８年５月３日に提出された米国仮出願第６２／６６６，１８０号の優先権を主張する。本出願の内容は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。

政府の利益
本発明は、国立衛生研究所により授与された５Ｒ２１ＡＩ１１６２８５およびＮＩＨ ２７２２０１４００００５Ｃの下、政府の支援によってなされた。政府は本発明において一定の権利を有する。

本発明は、抗インフルエンザノイラミニダーゼ広域中和モノクローナル抗体（ｍＡｂ）またはその抗原結合断片に関する。本発明はさらに、抗体または抗原結合断片の治療的使用に関する。

一般に「インフルエンザ」として知られるインフルエンザは、インフルエンザウイルスによって引き起こされる感染症である。インフルエンザウイルスには、Ａ、Ｂ、Ｃ、およびＤの４種類が存在する。ヒトインフルエンザＡ型およびＢ型ウイルスは、該疾患の季節性の流行を引き起こす。インフルエンザ予防の最初のかつ最も重要なステップは、毎年インフルエンザの予防接種を受けることである。認可されたインフルエンザワクチンは７０年以上前から利用可能であるが、インフルエンザ感染は依然として主要な公衆衛生上の懸念事項である。毎年、米国では、インフルエンザは約１５，０００人の死亡および約３００，０００人の入院の原因となっており、世界全体では、年間約３００万～５００万人の重症例と、２０万人～５０万人の死亡が発生している（Ｇｉｒａｒｄ ＭＰ，ｅｔ ａｌ．２００５．Ｖａｃｃｉｎｅ ２３：５７０８－５７２４；Ｎｏｇａｌｅｓ Ａ，ｅｔ ａｌ．２０１６．Ｉｎｔ Ｊ Ｍｏｌ Ｓｃｉ １８；Ｄｕｓｈｏｆｆ Ｊ，ｅｔ ａｌ．２００６．Ａｍ Ｊ Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌ １６３：１８１－１８７；Ｄｏｓｈｉ Ｐ．２００８．Ａｍ Ｊ Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ ９８：９３９－９４５；およびＴｈｏｍｐｓｏｎ ＷＷ，ｅｔ ａｌ．２００９．Ａｍ Ｊ Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ ９９ Ｓｕｐｐｌ ２：Ｓ２２５－２３０）。さらに、病院の費用または学校や就業日を逃したために、米国の経済的負担は年間平均８００億ドルを超える（Ｍｏｌｉｎａｒｉ ＮＡ，ｅｔ ａｌ．２００７．Ｖａｃｃｉｎｅ ２５：５０８６－５０９６；Ｇａｓｐａｒｉｎｉ Ｒ，ｅｔ ａｌ．２０１２．Ｈｕｍ Ｖａｃｃｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ ８：２１－２８；およびＫｅｅｃｈ Ｍ，ｅｔ ａｌ．２００８．Ｐｈａｒｍａｃｏｅｃｏｎｏｍｉｃｓ ２６：９１１－９２４）。多様なインフルエンザ株に対する広範な防御を付与する新しいワクチン戦略および治療法が必要である。

本発明は、抗インフルエンザノイラミニダーゼ広域中和モノクローナル抗体またはその抗原結合断片を提供することにより、その必要性に対応する。

一態様において、本発明は、インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼに特異的に結合する、以下を含む単離された抗体またはその抗原結合断片を提供する：（ｉ）配列番号３～５、配列番号１１～１３、配列番号１９～２１、配列番号２７～２９、配列番号３５～３７、配列番号４３～４５、配列番号５１～５３、配列番号５９～６１、配列番号６７～６９からなる群から選択されるＨＣＤＲセットのそれぞれの配列を含むＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、およびＨＣＤＲ３を含む重鎖可変領域（ＨＣＤＲ）、ならびに（ｉｉ）配列番号６～８、配列番号１４～１６、配列番号２２～２４、配列番号３０～３２、配列番号３８～４０、配列番号４６～４８、配列番号５４～５６、配列番号６２～６４、および配列番号７０～７２からなる群から選択されるＬＣＤＲセットのそれぞれの配列を含むＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２およびＬＣＤＲ３を含む軽鎖可変領域（ＬＣＤＲ）。いくつかの実施形態において、重鎖可変領域は、配列番号１、９、１７、２５、３３、４１、４９、５７、および６５からなる群から選択される配列を含むことができ、軽鎖可変領域は、配列番号２、１０、１８、２６、３４、４２、５０、５８、および６６からなる群から選択される配列を含むことができる。一例では、重鎖可変領域は配列番号２７～２９の配列を含み、軽鎖可変領域は配列番号３０～３２の配列を含む。

上記の抗体またはその抗原結合断片を用いたクロスブロッキングアッセイにおいてインフルエンザウイルスのノイラミニダーゼへの結合について競合する、単離された抗体またはその抗原結合断片がさらに提供される。

上記の抗体または抗原結合断片は、変異型Ｆｃ定常領域を含むことができる。単離された抗体または抗原結合断片は、キメラ抗体、ヒト化抗体、またはヒト抗体であり得る。抗体または断片は、治療薬、ポリマー、検出可能な標識、または酵素に共役させることができる。ポリマーの例として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）が挙げられる。治療薬の例として、細胞毒性薬が含まれる。

第２の態様において、本発明は、上記の抗体または抗原結合断片のいずれか１つのＣＤＲ、重鎖もしくは軽鎖可変領域、または抗原結合部分のうちの１つ以上をコードする単離された核酸を提供する。核酸を使用して、ＨＣＤＲもしくはＬＣＤＲＳの１つ以上のセット、抗体もしくは抗原結合断片の鎖、または上記の抗体もしくは断片を有するポリペプチドを発現させることができる。この目的のために、核酸を適切な調節配列に作動可能に連結して、発現ベクターを生成することができる。したがって、本発明の範囲内には、ベクターを含む培養宿主細胞と、ポリペプチド、抗体、またはその抗原結合部分を産生するための方法とが含まれる。この方法は、上述のように、上記抗体のＣＤＲ、ポリペプチド、重鎖可変領域もしくは軽鎖可変領域、またはその抗原結合部分の１つ以上をコードする核酸配列を含むベクターを含む培養宿主細胞を得ることと、ベクターによってコードされるポリペプチドの発現および抗体またはその断片のアセンブリを可能にする条件下で、細胞を培地中で培養することと、培養細胞または細胞の培地から抗体または断片を精製することと、を含む。

上記の抗体または断片は、インフルエンザウイルスを中和する方法、またはインフルエンザウイルス感染を治療、予防または制御する方法において使用することができる。この方法は、治療有効量の抗体または断片を、それを必要とする対象に投与することを含む。したがって、本発明はまた、（ｉ）抗体またはその抗原結合断片、および（ｉｉ）薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する。

本発明の１つ以上の実施形態の詳細は、以下の説明に記載される。本発明の他の特徴、目的、および利点は、説明および特許請求の範囲から明らかになるであろう。

図１Ａおよび図１Ｂは、インフルエンザＮ２およびＮＢ特異的ヒトモノクローナル抗体が末梢血形質芽細胞から単離されたことを示す一連の図である。免疫の１週間後に末梢血から形質芽細胞（ＣＤ１９＋ＩｇＤ－ＣＤ３８＋ＣＤ２７＋＋）を単一細胞選別し、ＲＴ－ＰＣＲに供して免疫グロブリン重鎖および軽鎖可変領域を増幅およびクローニングし、組換えヒトモノクローナル抗体（ｈｍＡｂｓ）を得た。ＨｍＡｂがノイラミニダーゼ（ＮＡ）反応を標的とするかについて酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によりスクリーニングした。３つのＮ２特異的ｈｍＡｂ（Ａ）および６つのＮＢ特異的ｈｍＡｂ（Ｂ）を、ＥＬＩＳＡによって複数のＮＡタンパク質への結合について試験した。 図１Ｃは、ＮＡ Ｂ／ホンコン／３３０／２００１に対するＫＰＦ２の親和性が、ＫＰＦ２がチップに結合し、異なる濃度でＮＡが流れ込んだ表面プラズモン共鳴によって決定されたことを示す図である。 図２Ａ、図２Ｂ、および図２Ｃは、Ｎ２およびＮＢ ｈｍＡｂがインビトロ中和活性を示すことを示す図および表である。Ｍａｄｉｎ－Ｄａｒｂｙイヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞を１００プラーク形成単位（ＰＦＵ）の示されるウイルスに感染させ、１時間後にｈｍＡｂ希釈液を添加し、４通りの培養物を４８～６０時間インキュベートした。ウイルス感染は、蛍光検出またはクリスタルバイオレット染色によって定量化した（Ｂ／山形／１６／８８）。 図２Ａ、図２Ｂ、および図２Ｃは、Ｎ２およびＮＢ ｈｍＡｂがインビトロ中和活性を示すことを示す図および表である。Ｍａｄｉｎ－Ｄａｒｂｙイヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞を１００プラーク形成単位（ＰＦＵ）の示されるウイルスに感染させ、１時間後にｈｍＡｂ希釈液を添加し、４通りの培養物を４８～６０時間インキュベートした。ウイルス感染は、蛍光検出またはクリスタルバイオレット染色によって定量化した（Ｂ／山形／１６／８８）。 図２Ａ、図２Ｂ、および図２Ｃは、Ｎ２およびＮＢ ｈｍＡｂがインビトロ中和活性を示すことを示す図および表である。Ｍａｄｉｎ－Ｄａｒｂｙイヌ腎臓（ＭＤＣＫ）細胞を１００プラーク形成単位（ＰＦＵ）の示されるウイルスに感染させ、１時間後にｈｍＡｂ希釈液を添加し、４通りの培養物を４８～６０時間インキュベートした。ウイルス感染は、蛍光検出またはクリスタルバイオレット染色によって定量化した（Ｂ／山形／１６／８８）。 図３は、ＮＢ特有のｈｍＡｂがＢ／ブリスベン／６０／２００８感染に対する防御を付与することを示す図である。Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ｎ＝６／群）に、２０ｍｇ／ｋｇのアイソタイプ対照（ＩＣ）またはＮＢ特異的ｈｍＡｂを腹腔内投与し、６時間後に１０６ＰＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスでチャレンジした。感染後２日目および４日目に肺ウイルスが測定された。 図４は、ＮＢに特異的なｈｍＡｂがＢ／ブリスベン／６０／２００８感染に対して治療活性を有することを示す図である。Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ｎ＝６／群）をＰＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスでチャレンジした後、感染後２４時間に、２０ｍｇ／ｋｇのＩＣまたはＮＢ特異的ｈｍＡｂを腹腔内投与した。感染後２日目および４日目に肺ウイルスが測定された。 図５Ａ、図５Ｂ、および図５Ｃは、インフルエンザＢ型ウイルス（ＩＢＶ）ＮＡ特異的ｈＭＡｂがビクトリアおよび山形系統を認識することを示す図および写真である。ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂは、不活化インフルエンザワクチン（ＩＩＶ）免疫後の形質芽細胞から生成された。（図５Ａ）増加する濃度のｈＭＡｂを、示されるＮＡタンパク質およびＩＩＶ（ＦＬＵＺＯＮＥ）への結合についてＥＬＩＳＡにより試験した。ＲＵ、相対単位。（図５Ｂ）尿素の濃度を増加させながら、ＮＡタンパク質への結合力について１μｇ／ｍｌのｈＭＡｂを試験した。（図５Ｃ）ＭＤＣＫ細胞を示されるウイルスにモック感染させるか（モック）または感染させ（ＭＯＩ０．１）、１７時間後に固定し、１μｇ／ｍｌのＮＡ特異的ｈＭＡｂで染色し、免疫蛍光アッセイ（ＩＦＡ）によりＮＡタンパク質発現を評価した。ＫＰＦ１は、このＩＦＡの内部対照として使用されるＨ１特異的ｈＭＡｂである。バー、１００μｍ。この図で使用されている名称は以下の通りである：マレーシア、Ｂ／マレーシア／２５０６／２００４；オハイオ、Ｂ／オハイオ／０１／２００５；ブリスベン、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８；ネバダ、Ｂ／ネバダ／０３／２０１１；山形、Ｂ／山形／１６／１９８８；シドニー、Ｂ／シドニー／５０７／２００６；ウィスコンシン、Ｂ／ウィスコンシン／０１／２０１０；テキサス、Ｂ／テキサス／０６／２０１１；リー、Ｂ／リー／１９４０；ｐＨ１Ｎ１、Ａ／カリフォルニア／４＿ＮＹＩＣＥ＿Ｅ３／２００９。 図５Ａ、図５Ｂ、および図５Ｃは、インフルエンザＢ型ウイルス（ＩＢＶ）ＮＡ特異的ｈＭＡｂがビクトリアおよび山形系統を認識することを示す図および写真である。ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂは、不活化インフルエンザワクチン（ＩＩＶ）免疫後の形質芽細胞から生成された。（図５Ａ）増加する濃度のｈＭＡｂを、示されるＮＡタンパク質およびＩＩＶ（ＦＬＵＺＯＮＥ）への結合についてＥＬＩＳＡにより試験した。ＲＵ、相対単位。（図５Ｂ）尿素の濃度を増加させながら、ＮＡタンパク質への結合力について１μｇ／ｍｌのｈＭＡｂを試験した。（図５Ｃ）ＭＤＣＫ細胞を示されるウイルスにモック感染させるか（モック）または感染させ（ＭＯＩ０．１）、１７時間後に固定し、１μｇ／ｍｌのＮＡ特異的ｈＭＡｂで染色し、免疫蛍光アッセイ（ＩＦＡ）によりＮＡタンパク質発現を評価した。ＫＰＦ１は、このＩＦＡの内部対照として使用されるＨ１特異的ｈＭＡｂである。バー、１００μｍ。この図で使用されている名称は以下の通りである：マレーシア、Ｂ／マレーシア／２５０６／２００４；オハイオ、Ｂ／オハイオ／０１／２００５；ブリスベン、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８；ネバダ、Ｂ／ネバダ／０３／２０１１；山形、Ｂ／山形／１６／１９８８；シドニー、Ｂ／シドニー／５０７／２００６；ウィスコンシン、Ｂ／ウィスコンシン／０１／２０１０；テキサス、Ｂ／テキサス／０６／２０１１；リー、Ｂ／リー／１９４０；ｐＨ１Ｎ１、Ａ／カリフォルニア／４＿ＮＹＩＣＥ＿Ｅ３／２００９。 図６Ａ、図６Ｂ、および図６Ｃは、ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂがウイルス感染およびＮＡ活性を阻害する能力を示す図および写真である。（図６Ａ）蛍光ベースのマイクロ中和試験。ＭＤＣＫ細胞を示されるｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルス（Ｂ／ブリスベン／６０／２００８またはｒｅＢ／山形／１６／１９８８）に感染させ、ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂの２倍段階希釈液（開始濃度１０μｇ／ｍｌ）とともにインキュベートした。蛍光マイクロプレートリーダーを使用してウイルス中和を評価および定量化し、シグモイド用量反応曲線を用いて感染力のパーセンテージを計算した。ｈＭＡｂの非存在下でのモック感染細胞およびウイルスを内部対照として使用した。阻害のパーセンテージは、ｈＭＡｂの非存在下での感染に対して正規化した。データは、３通り測定された結果の平均を示す。ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂに対応する５０％阻害濃度（ＩＣ_５０）値は、それぞれ、蛍光ベースのアッセイ（ＦＡ）または従来のウイルス中和アッセイ（ＶＮ）およびｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルスまたは野生型（ＷＴ）ウイルスを使用して決定した。（図６Ｂ）ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂはＮＡ酵素活性を阻害する。Ｂ／ブリスベン／６０／２００８またはＢ／山形／１６／１９８８ＷＴウイルスをＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂの２倍段階希釈液とともにプレインキュベートし、フェチュインでコーティングされたプレート上で１８時間のインキュベーション後にＮＡ活性を決定した。データは、２つのウェルからのウイルス単独でのＮＡ活性の平均パーセンテージを表す。活性のパーセンテージおよびＩＣ５０は、シグモイド用量反応曲線を用いて計算した。（図６Ｃ）ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂは、ＩＢＶオセルタミビル耐性変異を認識する。ＭＤＣＫ細胞を示されるＷＴおよびＮＡ（Ｅ１１７ＡおよびＨ２７３Ｙ）ウイルスに感染させ（ＭＯＩ０．１）、ｈＭＡｂ結合（１μｇ／ｍｌ）をＩＦＡにより評価した。バー、１００μｍ。 図６Ａ、図６Ｂ、および図６Ｃは、ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂがウイルス感染およびＮＡ活性を阻害する能力を示す図および写真である。（図６Ａ）蛍光ベースのマイクロ中和試験。ＭＤＣＫ細胞を示されるｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルス（Ｂ／ブリスベン／６０／２００８またはｒｅＢ／山形／１６／１９８８）に感染させ、ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂの２倍段階希釈液（開始濃度１０μｇ／ｍｌ）とともにインキュベートした。蛍光マイクロプレートリーダーを使用してウイルス中和を評価および定量化し、シグモイド用量反応曲線を用いて感染力のパーセンテージを計算した。ｈＭＡｂの非存在下でのモック感染細胞およびウイルスを内部対照として使用した。阻害のパーセンテージは、ｈＭＡｂの非存在下での感染に対して正規化した。データは、３通り測定された結果の平均を示す。ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂに対応する５０％阻害濃度（ＩＣ_５０）値は、それぞれ、蛍光ベースのアッセイ（ＦＡ）または従来のウイルス中和アッセイ（ＶＮ）およびｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルスまたは野生型（ＷＴ）ウイルスを使用して決定した。（図６Ｂ）ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂはＮＡ酵素活性を阻害する。Ｂ／ブリスベン／６０／２００８またはＢ／山形／１６／１９８８ＷＴウイルスをＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂの２倍段階希釈液とともにプレインキュベートし、フェチュインでコーティングされたプレート上で１８時間のインキュベーション後にＮＡ活性を決定した。データは、２つのウェルからのウイルス単独でのＮＡ活性の平均パーセンテージを表す。活性のパーセンテージおよびＩＣ５０は、シグモイド用量反応曲線を用いて計算した。（図６Ｃ）ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂは、ＩＢＶオセルタミビル耐性変異を認識する。ＭＤＣＫ細胞を示されるＷＴおよびＮＡ（Ｅ１１７ＡおよびＨ２７３Ｙ）ウイルスに感染させ（ＭＯＩ０．１）、ｈＭＡｂ結合（１μｇ／ｍｌ）をＩＦＡにより評価した。バー、１００μｍ。 図７は、ＭＤＣＫ細胞を示されるウイルスにモック感染させるか（モック）または感染させ、その後固定し、１μｇ／ｍｌのＮＡ特異的ｈＭＡｂで染色し、ＩＦＡによりＮＡタンパク質発現を評価した。ＫＰＦ１は、このＩＦＡの内部対照として使用されるＨ１特異的ｈＭＡｂである。 図８Ａ、図８Ｂ、および図８Ｃは、１０９２Ｂ６ Ｎ２ｈｍＡｂのインビボでの予防活性を示す一連の図である。雌のＣ５７ＢＬ／６マウスに、２０ｍｇ／ｋｇの１０９２Ｂ６またはアイソタイプ対照ｈｍＡｂを腹腔内（ｉｐ）投与した。投与後６時間に、１×１０^６フォーカス形成単位（ＦＦＵ）Ｘ３１のインフルエンザウイルスをマウスの鼻腔内（ｉｎ）に接種した。（Ａ）ウイルス複製は、感染後４日目に感染マウスの肺のウイルス力価を測定することにより決定した（群当たりｎ＝３匹のマウス）。体重（Ｂ）および生存（Ｃ）をモニターした（群当たりｎ＝５匹のマウス）。 図９Ａおよび図９Ｂは、ＩＢＶ ｈＭＡｂのインビボでの予防活性および治療活性を示す図である。（Ａ）予防活性雌のＣ５７ＢＬ／６マウス（群当たりｎ＝３匹のマウス／時点）に、２０ｍｇ／ｋｇの示されるＩＢＶ ＮＡｈＭＡｂを腹腔内投与するか、または２０ｍｇ／ｋｇの無関係なＩＣ １０６９ Ｄ６ ｈＭＡｂを腹腔内投与した。投与後６時間目に、１×１０^６ＦＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８をマウスに鼻腔内接種した。（Ｂ）治療活動。雌のＣ５７ＢＬ／６マウス（群当たりｎ＝３匹）に１×１０^６ＦＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８を鼻腔内接種し、２４時間後に、２０ｍｇ／ｋｇの示されるＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂまたは無関係なＩＣ１０６９ Ｄ６ ｈＭＡｂを腹腔内投与した。ウイルス複製（ＡおよびＢ）は、感染後（ｄｐｉ）２日目および４日目に感染マウスの肺のウイルス力価を測定することにより決定した。各記号は、個々のマウスを表す。「＆」記号は、群当たり１匹または２匹のマウスにのみウイルスが検出されたことを示す。「ｆ」は、群内のいずれのマウスにもウイルスが検出されなかったことを示す。＊、Ｐ＜０．０５（複数の結果の補正を伴う一元配置ＡＮＯＶＡを使用）。

本発明は、少なくとも一部、特定のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片の予想外の抗インフルエンザ広域中和活性に基づく。これらの抗体および抗原結合断片は、インフルエンザ感染からの保護における新規治療戦略を構成する。

インフルエンザの抗原連続変異および抗原不連続変異、ならびに主に株特異的抗体（Ａｂｓ）を誘発する傾向により、人類は、免疫が制限されているかまったく存在しない場合がある、パンデミックの可能性を持つ新しい株の波の影響を受けやすい。その後、新しい臨床的介入、特に、多様な株に対する広範な活性を有するものが必要とされる。血球凝集素（ＨＡ）の特異性は、季節性不活化インフルエンザワクチンおよび感染に対する液性反応を支配するが、ＮＡを標的とする抗体も生成される。ＮＡ特異的抗体は、主にその酵素活性を阻害し、感染細胞からのウイルスの放出を防ぐことによって作用することが示唆されている。ＨＡと比較して、インフルエンザの種類およびサブタイプが異なるＮＡ間の多様性は大幅に少ないため、それが広範な防御免疫を誘導するための貴重な標的であることが示唆される。

免疫原性はあるものの、ＮＡ特異的抗体の優位性はＨＡ抗体の優位性よりもはるかに低く、おそらくそれは、ＮＡがビリオン表面のＨＡの量の４分の１に過ぎないためである。ＮＡの年間変異率はＨＡの場合よりも低く、酵素部位の一部（ＩＬＲＴＱＥＳＥＣ、配列番号７３）はインフルエンザＡウイルス（ＩＡＶ）およびＩＢＶで保存されたままであるため、ＮＡは万能ワクチンおよび治療用ヒトモノクローナルＡｂ（ｈＭＡｂ）開発の潜在的に有効な標的となる。

ＮＡは、多種多様な糖タンパク質、糖脂質、およびオリゴ糖からの末端シアル酸の切断を触媒し、ヒト分離株は、主に、α２－６シアル酸よりもα２－３結合シアル酸のより効率的な切断を示す。ＮＡは、インフルエンザウイルス感染の最終段階において重要であり、感染細胞表面および新たに形成されたビリオンからシアル酸を除去し、子孫ウイルスの放出および隣接細胞への感染の拡大を容易にする。ＮＡはまた、ムチン、繊毛、および細胞の多糖外被上のシアル酸を除去することにより、ヒト気道の繊毛上皮を介したウイルスの浸透を促進し得る。したがって、ＨＡに対する抗体とは異なり、ＮＡに対する抗体は、インフルエンザを直接中和しているようには見えないが、酵素部位の活性をブロックすることにより、感染細胞からのインフルエンザウイルスの拡散を防ぐ。さらに、ＮＡ特異的Ａｂは、Ｆｃ領域の関与を通じてウイルスの除去に役立ち、補体活性化、抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）、および抗原依存性細胞傷害（ＡＤＣＰ）を媒介し得る。

したがって、ＮＡ特異的Ａｂは、ＮＡによる能動免疫またはＮＡ特異的ポリクローナルもしくはモノクローナルＡｂによる受動免疫のいずれかを用いて、インフルエンザウイルス感染を予防および治療することができる。ＩＩＶに対するヒトＮＡ特異的Ｂ細胞応答の正確な特徴、特にインフルエンザウイルス感染からの防御を直接媒介するＩＩＶで誘導したＮＡ特異的抗体の可能性は、十分に解明されていないままである。

ヒトが防御活性を有するＮＡ特異的Ａｂを生成するかどうかを決定するために、本発明は、季節性インフルエンザ不活化ワクチンで免疫した対象の形質芽細胞を調べ、インビトロで強力なウイルス中和活性を有するものを含むいくつかのＮＡ特異的ヒトモノクローナルＡｂを単離した。ＮＡ Ｂ特異的ｈｍＡｂの１つであるＫＰＦ２は、山形系統とビクトリア系統の両方からＮＡを認識し、マウスに予防的に投与すると殺菌免疫をもたらした。これらの結果は、季節性インフルエンザワクチンがヒトにおいて防御的ＮＡ特異的ｍＡｂを誘導することを示唆している。

本明細書に開示される結果は、季節性ＩＩＶが、ＩＢＶに対して広範かつ強力なインビトロおよびインビボでのウイルス阻害を示すＩＢＶ ＮＡ特異的血清抗体およびＢ細胞ならびに単離されたｈＭＡｂを誘導することを示した。結果はまた、ＩＢＶ感染症の治療的処置のためにｈＭＡｂでＩＢＶ ＮＡを標的とすることの実現可能性を示している。

広範な抗ウイルス作用を示すｈＭＡｂは、ワクチン誘発免疫がまだ達成されていないインフルエンザウイルス感染を予防および治療するための（ワクチンの欠如［例えば、パンデミック］、準最適なワクチン、および／またはワクチン未接種の集団を表す）、または既存の抗ウイルス薬の有効性が限られている場合の、有効な免疫療法の優れた選択肢である。多様なインフルエンザ株に対して抗ウイルス活性を有し、入院患者および合併症のない感染症の治療のための臨床試験中であるいくつかのＨＡ特異的ｈＭＡｂが単離されており、インフルエンザ特異的ｈＭＡｂの臨床的実現可能性および可能性を浮き彫りにしている。発明者の知る限り、本明細書に開示される抗体は、記載される広範な抗ウイルス活性を有する最初のＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂを意味する。ウイルスを検出以下に抑制した１０８６Ｆ８および１０９２Ｄ４を含むがこれらに限定されない、本明細書に記載されるｈＭＡｂは、インフルエンザウイルス感染の予防および治療に使用することができる。
抗体
本明細書に開示される本発明は、抗インフルエンザ広域中和モノクローナル抗体またはその抗原結合断片に関与する。これらの抗体は、複数のインフルエンザウイルス株を中和する中和抗体のクラスを指す。抗体は、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８等のインフルエンザウイルスによる致死的攻撃から、対象（例えば、以下の例に示すマウス）を予防的および治療的に保護することができる。

以下に列挙するのは、いくつかの例示的な抗体の重鎖（ＨＣ）可変領域および軽鎖（ＬＣ）可変領域のアミノ酸配列であり、ここでは、重鎖ＣＤＲ１～３（ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、およびＨＣＤＲ３）および軽鎖ＣＤＲ１～３（ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２、およびＬＣＤＲ３）が太字で示されている。

断片
特定の実施形態において、本明細書に提供される抗体は抗体断片である。抗体断片は、限定されないが、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆａｂ’－ＳＨ、Ｆ（ａｂ’）_２、Ｆｖ、および一本鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）断片、ならびに以下に記載される他の断片、例えば、ダイアボディ、トリアボディ、テトラボディ、および単一ドメイン抗体を含む。特定の抗体断片の概説については、Ｈｕｄｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．９：１２９－１３４（２００３）を参照されたい。ｓｃＦｖ断片の概説については、例えば、Ｔｈｅ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ｖｏｌ．１１３，Ｒｏｓｅｎｂｕｒｇ ａｎｄ Ｍｏｏｒｅ ｅｄｓ．，（Ｓｐｒｉｎｇｅｒ－Ｖｅｒｌａｇ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ），ｐｐ．２６９－３１５（１９９４）のＰｌｕｃｋｔｈｕｎを参照されたく、また、ＷＯ９３／１６１８５、および米国特許第５，５７１，８９４号および同第５，５８７，４５８号も参照されたい。サルベージ受容体結合エピトープ残基を含み、増加したインビボ半減期を有するＦａｂおよびＦ（ａｂ’）２断片の考察については、米国特許第５，８６９，０４６号を参照されたい。

ダイアボディは、二価または二重特異性であり得る２つの抗原結合部位を有する抗体断片である。例えば、ＥＰ４０４，０９７、ＷＯ１９９３／０１１６１；Ｈｕｄｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．９：１２９－１３４（２００３）；およびＨｏｌｌｉｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：６４４４－６４４８（１９９３）を参照されない。トリアボディおよびテトラボディは、Ｈｕｄｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．９：１２９－１３４（２００３）にも記載されている。

単一ドメイン抗体は、抗体の重鎖可変ドメインの全部もしくは一部、または軽鎖可変ドメインの全部もしくは一部を含む抗体断片である。特定の実施形態において、単一ドメイン抗体は、ヒト単一ドメイン抗体である（ＤＯＭＡＮＴＩＳ，Ｉｎｃ．、Ｗａｌｔｈａｍ，Ｍａｓｓ．；例えば、米国特許第６，２４８，５１６号を参照）。

抗体断片は、本明細書に記載されるように、インタクトな抗体のタンパク質分解消化、および組換え宿主細胞（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉまたはファージ）による産生を含むがこれらに限定されない様々な技術によって作製され得る。
キメラおよびヒト化抗体
特定の実施形態において、本明細書に提供される抗体はキメラ抗体である。特定のキメラ抗体は、例えば、米国特許第４，８１６，５６７号、およびＭｏｒｒｉｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８１：６８５１－６８５５（１９８４））に記載されている。一例において、キメラ抗体は、非ヒト可変領域（例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、またはサル等の非ヒト霊長類に由来する可変領域）およびヒト定常領域を含む。さらなる例において、キメラ抗体は、クラスまたはサブクラスが親抗体のものから変更された「クラス転換された」抗体である。キメラ抗体は、その抗原結合断片を含む。

特定の実施形態において、キメラ抗体は、ヒト化抗体である。典型的には、非ヒト抗体は、親の非ヒト抗体の特異性および親和性を保持しながら、ヒトに対する免疫原性を低下させるためにヒト化される。一般に、ヒト化抗体は、ＨＶＲ、例えば、ＣＤＲ（またはその一部）が非ヒト抗体に由来し、ＦＲ（またはその一部）がヒト抗体配列に由来する１つ以上の可変ドメインを含む。ヒト化抗体はまた、任意選択的に、ヒト定常領域の少なくとも一部を含むであろう。いくつかの実施形態において、ヒト化抗体中のいくつかのＦＲ残基は、例えば、抗体の特異性または親和性を回復または改善するために、非ヒト抗体（例えば、ＨＶＲ残基が由来する抗体）からの対応する残基で置換される。

ヒト化抗体およびそれらを作製する方法は、例えば、Ａｌｍａｇｒｏ ａｎｄ Ｆｒａｎｓｓｏｎ，Ｆｒｏｎｔ．Ｂｉｏｓｃｉ．１３：１６１９－１６３３（２００８）に概説されており、例えば、Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３－３２９（１９８８）；Ｑｕｅｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：１００２９－１００３３（１９８９）；米国特許第５，８２１，３３７号、同第７，５２７，７９１号、同第６，９８２，３２１号、および同第７，０８７，４０９号；Ｋａｓｈｍｉｒｉ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ３６：２５－３４（２００５）（特異性決定領域（ＳＤＲ）移植法について記載）；Ｐａｄｌａｎ，Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２８：４８９－４９８（１９９１）（「リサーフェイシング」について記載）；Ｄａｌｌ’Ａｃｑｕａ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ３６：４３－６０（２００５）（「ＦＲシャッフリング」について記載）；ならびにＯｓｂｏｕｒｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ３６：６１－６８（２００５）およびＫｌｉｍｋａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｒ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，８３：２５２－２６０（２０００）（ＦＲシャッフリングへの「誘導選択」手法を記載）にさらに記載されている。

ヒト化に使用することができるヒトフレームワーク領域は以下を含むが、これらに限定されない：「ベストフィット」法を用いて選択されるフレームワーク領域（例えば、Ｓｉｍｓ ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１：２２９６（１９９３））；軽鎖または重鎖可変領域の特定のサブグループのヒト抗体のコンセンサス配列に由来するフレームワーク領域（例えば、Ｃａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８９：４２８５（１９９２）；およびＰｒｅｓｔａ ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１５１：２６２３（１９９３））；ヒト成熟（体細胞突然変異）フレームワーク領域またはヒト生殖系列フレームワーク領域（例えば、Ａｌｍａｇｒｏ ａｎｄ Ｆｒａｎｓｓｏｎ，Ｆｒｏｎｔ．Ｂｉｏｓｃｉ．１３：１６１９－１６３３（２００８）を参照）；ＦＲライブラリーのスクリーニングに由来するフレームワーク領域（例えば、Ｂａｃａ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：１０６７８－１０６８４（１９９７）およびＲｏｓｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７１：２２６１１－２２６１８（１９９６）を参照）。
ヒト抗体
特定の実施形態において、本明細書に提供される抗体はヒト抗体である。ヒト抗体は、当該技術分野で既知の様々な技術を使用して、または本明細書に記載の技術を使用して産生することができる。ヒト抗体は、一般的に、ｖａｎ Ｄｉｊｋ ａｎｄ ｖａｎ ｄｅ Ｗｉｎｋｅｌ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．５：３６８－７４（２００１）ａｎｄ Ｌｏｎｂｅｒｇ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０：４５０－４５９（２００８）に記載されている。

ヒト抗体は、抗原投与に応答してインタクトなヒト抗体またはヒト可変領域を有するインタクトな抗体を産生するように修飾されているトランスジェニック動物に免疫原を投与することにより調製することができる。そのような動物は、典型的には、内因性免疫グロブリン遺伝子座に取って代わるか、または染色体外に存在するかもしくは動物の染色体にランダムに組み込まれる、ヒト免疫グロブリン遺伝子座の全部または一部を含む。そのようなトランスジェニックマウスでは、内因性免疫グロブリン遺伝子座は通常不活化されている。トランスジェニック動物からヒト抗体を得るための方法の概説ついては、Ｌｏｎｂｅｒｇ，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．２３：１１１７－１１２５（２００５）を参照されたい。また、例えば、ＸＥＮＯＭＯＵＳＥテクノロジーについて記載している米国特許第６，０７５，１８１号および同第６，１５０，５８４号；ＨＵＭＡＢ技術について記載している米国特許第５，７７０，４２９号；Ｋ－Ｍ ＭＯＵＳＥ技術について記載している米国特許第７，０４１，８７０号、ならびにＶＥＬＯＣＩＭＯＵＳＥ技術について記載している米国特許出願公開第ＵＳ２００７／００６１９００号も参照されたい。そのような動物によって生成されたインタクトな抗体のヒト可変領域は、例えば、異なるヒト定常領域と組み合わせることによって、さらに修飾され得る。

ヒト抗体は、ハイブリドーマベースの方法で作製することもできる。ヒトモノクローナル抗体を産生するためのヒト骨髄腫およびマウス－ヒトヘテロ骨髄腫細胞株が記載されている。（例えば、Ｋｏｚｂｏｒ Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１３３：３００１（１９８４）；Ｂｒｏｄｅｕｒ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，ｐｐ．５１－６３（Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９８７）；およびＢｏｅｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４７：８６（１９９１）を参照）。ヒトＢ細胞ハイブリドーマ技術を介して生成されるヒト抗体は、Ｌｉ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１０３：３５５７－３５６２（２００６）にも記載されている。追加の方法は、例えば、米国特許第７，１８９，８２６号（ハイブリドーマ細胞株からのモノクローナルヒトＩｇＭ抗体の産生を記載）およびＮｉ，Ｘｉａｎｄａｉ Ｍｉａｎｙｉｘｕｅ，２６（４）：２６５－２６８（２００６）（ヒト－ヒトハイブリドーマを記載）に記載されているものが含まれる。ヒトハイブリドーマ技術（トリオーマ技術）は、Ｖｏｌｌｍｅｒｓ ａｎｄ Ｂｒａｎｄｌｅｉｎ，Ｈｉｓｔｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｈｉｓｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ，２０（３）：９２７－９３７（２００５）およびＶｏｌｌｍｅｒｓ ａｎｄ Ｂｒａｎｄｌｅｉｎ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ｆｉｎｄｉｎｇｓ ｉｎ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ａｎｄ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，２７（３）：１８５－９１（２００５）にも記載されている。

ヒト抗体はまた、ヒト由来のファージディスプレイライブラリーから選択されたＦｖクローン可変ドメイン配列を単離することによっても生成され得る。次いで、そのような可変ドメイン配列を、所望のヒト定常ドメインと組み合わせることができる。抗体ライブラリーからヒト抗体を選択するための技術を以下に記載する。

本発明の抗体は、所望の活性（１つまたは複数）を有する抗体についてコンビナトリアルライブラリーをスクリーニングすることによって単離することができる。例えば、ファージディスプレイライブラリーを作製し、所望の結合特性を有する抗体についてそのようなライブラリーをスクリーニングするための様々な方法が当該技術分野で既知である。そのような方法は、例えば、Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ ｅｔ ａｌ．，ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ １７８：１－３７（Ｏ’Ｂｒｉｅｎ ｅｔ ａｌ．，ｅｄ．，Ｈｕｍａｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，Ｎ．Ｊ．，２００１）に概説されており、例えば、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３４８：５５２－５５４；Ｃｌａｃｋｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３５２：６２４－６２８（１９９１）；Ｍａｒｋｓ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２２：５８１－５９７（１９９２）；Ｍａｒｋｓ ａｎｄ Ｂｒａｄｂｕｒｙ，ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ２４８：１６１－１７５（Ｌｏ，ｅｄ．，Ｈｕｍａｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，Ｎ．Ｊ．，２００３）；Ｓｉｄｈｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３３８（２）：２９９－３１０（２００４）；Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３４０（５）：１０７３－１０９３（２００４）；Ｆｅｌｌｏｕｓｅ，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１（３４）：１２４６７－１２４７２（２００４）；およびＬｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２８４（１－２）：１１９－１３２（２００４）にさらに記載されている。

特定のファージディスプレイ法では、ＶＨおよびＶＬ遺伝子のレパートリーがポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって別々にクローニングされ、ファージライブラリーにおいてランダムに組み換えられ、次いで、Ｗｉｎｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１２：４３３－４５５（１９９４）に記載されているように抗原結合ファージについてスクリーニングすることができる。ファージは、典型的には、ｓｃＦｖ断片またはＦａｂ断片のいずれかとして、抗体断片を提示する。免疫源からのライブラリーは、ハイブリドーマを構築する必要なく、免疫原に対して高親和性抗体を提供する。あるいは、Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ，１２：７２５－７３４（１９９３）に記載されているように、ナイーブレパートリーを（例えば、ヒトから）クローニングして、免疫することなく広範な非自己抗原および自己抗原に対する抗体の単一供給源を提供することができる。最後に、Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ ａｎｄ Ｗｉｎｔｅｒ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：３８１－３８８（１９９２）によって記載されているように、幹細胞から再配列されていないＶ－遺伝子セグメントをクローニングし、ランダム配列を含むＰＣＲプライマーを使用して、高度に可変性のＣＤＲ３領域をコードし、インビトロで再配列を実現することにより、ナイーブライブラリーを合成的に作製することもできる。ヒト抗体ファージライブラリーを記載している特許公報は、例えば、米国特許第５，７５０，３７３号、ならびにおよび米国特許公開第２００５／００７９５７４号、同第２００５／０１１９４５５号、同第２００５／０２６６０００号、同第２００７／０１１７１２６号、同第２００７／０１６０５９８号、同第２００７／０２３７７６４号、同第２００７／０２９２９３６号、および同第２００９／０００２３６０号を含む。ヒト抗体ライブラリーから単離された抗体または抗体断片は、本明細書においてヒト抗体またはヒト抗体断片と見なされる。
変異体
特定の実施形態において、本明細書に提供される抗体のアミノ酸配列変異体が企図される。例えば、抗体の結合親和性および／または他の生物学的特性を改善することが望ましい場合がある。抗体のアミノ酸配列変異体は、抗体をコードするヌクレオチド配列に適切な修飾を導入することによって、またはペプチド合成によって調製することができる。そのような修飾は、例えば、抗体のアミノ酸配列内における残基の欠失および／または挿入および／または置換を含む。最終構築物が所望の特徴、例えば抗原結合を有する限り、最終構築物に到達するために、欠失、挿入、および置換の任意の組み合わせを行うことができる。

置換、挿入、および欠失変異体
特定の実施形態において、１つ以上のアミノ酸置換を有する抗体変異体が提供される。置換突然変異誘発の対象となる部位には、ＨＶＲおよびＦＲが含まれる。保存的置換は本明細書において定義される。アミノ酸置換を目的の抗体に導入し、生成物を所望の活性、例えば、抗原結合の保持／改善、免疫原性の低下、またはＡＤＣＣもしくはＣＤＣの改善についてスクリーニングすることができる。

したがって、本発明の抗体は、本明細書に記載のＣＤＲ、重鎖可変領域、または軽可変領域、例えば、配列番号１～７２の１つ以上の保存的修飾を含むことができる。本発明に開示されるペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質の保存的修飾または機能的均等物は、ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質のポリペプチド誘導体、例えば、１つ以上の点突然変異、挿入、欠失、短縮、融合タンパク質、またはそれらの組み合わせを有するタンパク質を指す。それは、親ペプチド、ポリペプチド、またはタンパク質（本発明に開示されるもの等）の活性を実質的に保持している。一般に、保守的修飾または機能的均等物は、少なくとも６０％（例えば、６０％～１００％までの任意の数、例えば、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％、および９９％を含む）親（例えば、配列番号１～７２の１つ）と同一である。したがって、１つ以上の点突然変異、挿入、欠失、短縮、融合タンパク質、またはそれらの組み合わせを有する重鎖可変領域または軽可変領域、およびそれらの可変領域を有する抗体が、本発明の範囲内にある。

本明細書で使用される場合、２つのアミノ酸配列間のパーセント相同性は、２つの配列間のパーセント同一性と同等である。２つの配列間のパーセント相同性は、２つの配列の最適なアラインメントのために導入する必要がある、ギャップの数および各ギャップの長さを考慮に入れた、それらの配列によって共有される同一位置の数の関数であり（すなわち、％相同性＝同一位置の数／位置の総数×１００）。２つの配列間の配列の比較およびパーセント同一性の決定は、後述の非限定的な例に記載されるように、数学的アルゴリズムを使用して達成することができる。

２つのアミノ酸配列間のパーセント同一性は、ＡＬＩＧＮプログラム（バージョン２．０）に組み込まれたＥ．Ｍｅｙｅｒｓ ａｎｄ Ｗ．Ｍｉｌｌｅｒのアルゴリズム（Ｃｏｍｐｕｔ．Ａｐｐｌ．Ｂｉｏｓｃｉ．，４：１１－１７（１９８８））を使用して、ＰＡＭ１２０重み残基表、ギャップ長ペナルティ１２、ギャップペナルティ４を用いて決定することができる。さらに、２つのアミノ酸配列間のパーセント同一性は、ＧＣＧソフトウェアパッケージ（ｗｗｗ．ｇｃｇ．ｃｏｍで入手可能）のＧＡＰプログラムに組み込まれたＮｅｅｄｌｅｍａｎ ａｎｄ Ｗｕｎｓｃｈ（Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．４８：４４４－４５３（１９７０））アルゴリズムを使用して、Ｂｌｏｓｓｕｍ ６２マトリックスまたはＰＡＭ２５０マトリックスのいずれか、および１６、１４、１２、１０、８、６、もしくは４のギャップ重みは、または１、２、３、４、５、もしくは６の長さ重みを用いて決定することができる。

追加的または代替的に、本発明のタンパク質配列は、例えば、関連する配列を同定するために、公開データベースに対する検索を実行するための「クエリ配列」としてさらに使用することができる。このような検索は、Ａｌｔｓｃｈｕｌ，ｅｔ ａｌ．（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３－１０のＸＢＬＡＳＴプログラム（バージョン２．０）を使用して実行することができる。本発明の抗体分子に相同なアミノ酸配列を得るために、ＸＢＬＡＳＴプログラムを用いて、スコア＝５０、ワード長＝３で、ＢＬＡＳＴタンパク質検索を実行することができる。比較の目的でギャップのあるアラインメントを得るためには、Ａｌｔｓｃｈｕｌ ｅｔ ａｌ．，（１９９７）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２５（１７）：３３８９－３４０２に記載されているようにＧａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴを利用することができる。ＢＬＡＳＴおよびＧａｐｐｅｄ ＢＬＡＳＴプログラムを利用する場合、それぞれのプログラム（例えば、ＸＢＬＡＳＴおよびＮＢＬＡＳＴ）のデフォルトパラメータを使用することができる。（ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖを参照）。

本明細書で使用される場合、「保存的修飾」という用語は、アミノ酸配列を含む抗体の結合特性に大幅に影響を与えないまたはそれを変更しないアミノ酸修飾を指す。そのような保存的修飾は、アミノ酸の置換、付加、および欠失を含む。修飾は、部位特異的突然変異誘発およびＰＣＲ媒介突然変異誘発等の当該技術分野で既知の標準的な技術によって本発明の抗体に導入することができる。「保存的アミノ酸置換」は、アミノ酸残基が、類似の側鎖を有するアミノ酸残基で置換されたものである。類似の側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは、当該技術分野で定義されている。これらのファミリーは以下を含む：
塩基性側鎖を有するアミノ酸（例えば、リジン、アルギニン、ヒスチジン）、
酸性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸）、
非荷電極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン、トリプトファン）、
非極性側鎖を有するアミノ酸（例えば、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン）、
β分岐側鎖を有するアミノ酸（例えば、スレオニン、バリン、イソロイシン）、および
芳香族側鎖を有するアミノ酸（例えば、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）。

非保存的置換では、これらのクラスの１つのメンバーを別のクラスと交換する必要がある。

例示的な置換変異体は、親和性成熟抗体であり、これは、例えば、Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ ｅｔ ａｌ．，ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ １７８：１－３７（Ｏ’Ｂｒｉｅｎ ｅｔ ａｌ．，ｅｄ．，Ｈｕｍａｎ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，Ｎ．Ｊ．，（２００１）に記載されるようなファージディスプレイに基づく親和性成熟技術を用いて、便利に生成することができる。アミノ酸配列の挿入は、１つの残基から１００以上の残基を含むポリペプチドまでの長さの範囲のアミノ酸末端および／またはカルボキシル末端融合、ならびに単一または複数のアミノ酸残基の配列内挿入を含む。末端挿入の例として、Ｎ末端メチオニル残基を有する抗体が挙げられる。抗体分子の他の挿入変異体は、酵素（例えば、ＡＤＥＰＴのため）または抗体の血清半減期を延長するポリペプチドに対する抗体のＮ末端またはＣ末端への融合を含む。

グリコシル化変異体
特定の実施形態において、本明細書に提供される抗体は、抗体がグリコシル化される程度を増加または減少させるように変更される。抗体へのグリコシル化部位の付加または欠失は、１つ以上のグリコシル化部位が作製されるかまたは除去されるようにアミノ酸配列を変更することによって便利に達成することができる。

例えば、非グリコシル化抗体（すなわち、グリコシル化を欠いた抗体）を作製することができる。グリコシル化を変更して、例えば、抗原に対する抗体の親和性を高めることができる。そのような炭水化物修飾は、例えば、抗体配列内のグリコシル化の１つ以上の部位を変更することによって達成することができる。例えば、１つ以上のアミノ酸置換を行って、１つ以上の可変領域フレームワークグリコシル化部位の排除をもたらし、それによってその部位でのグリコシル化を排除することができる。そのようなグリコシル化は、抗原に対する抗体の親和性を高めることができる。そのような手法は、Ｃｏらによる米国特許第５，７１４，３５０号および同第６，３５０，８６１号にさらに詳細に記載されている。

Ｎ２９７上の定常領域のグリコシル化は、Ｎ２９７残基を別の残基、例えば、Ｎ２９７Ａに変異させることによって、かつ／または隣接するアミノ酸、例えば２９８を変異させ、それによってＮ２９７上のグリコシル化を低減することによって、防ぐことができる。

追加的または代替的に、フコシル残基の量が減少した低フコシル化抗体または二等分ＧｌｃＮａｃ構造が増加した抗体等の、変更された種類のグリコシル化を有する抗体を作製することができる。そのような変更されたグリコシル化パターンは、抗体のＡＤＣＣ能を高めることが実証されている。そのような炭水化物修飾は、例えば、変更されたグリコシル化機構を有する宿主細胞において抗体を発現させることによって達成することができる。変更されたグリコシル化機構を有する細胞は当該技術分野で記載されており、本明細書に記載の組換え抗体を発現させ、それによりグリコシル化が変更された抗体を産生する宿主細胞として使用することができる。例えば、ＨａｎａｉらによるＥＰ１，１７６，１９５は、細胞株で発現される抗体が低フコシル化を示すように、機能的に破壊された、フコシルトランスフェラーゼをコードするＦＵＴ８遺伝子を有する細胞株を記載している。ＰｒｅｓｔａによるＰＣＴ公開ＷＯ０３／０３５８３５は、Ａｓｎ（２９７）結合炭水化物にフコースを付着させる能力が低下しており、その宿主細胞で発現される抗体の低フコシル化ももたらす、変異チャイニーズハムスター卵巣細胞株、Ｌｅｄ ３細胞について記載している（Ｓｈｉｅｌｄｓ，Ｒ．Ｌ．ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７７：２６７３３－２６７４０も参照のこと）。ＵｍａｎａらによるＰＣＴ公開ＷＯ９９／５４３４２は、操作された細胞株で発現される抗体が、該抗体のＡＤＣＣ活性の増加をもたらす二等分ＧｌｃＮａｃ構造の増加を示すように、糖タンパク質修飾グリコシルトランスフェラーゼ（例えばベータ（ｌ，４）－Ｎ－アセチルグルコサミニルトランスフェラーゼＩＩＩ（ＧｎｔＩＩＩ））を発現するように操作された細胞株について記載している（Ｕｍａｎａ ｅｔ ａｌ．（１９９９）Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．１７：１７６－１８０）も参照のこと）。
Ｆｃ領域変異体
本明細書に記載の抗体の可変領域は、Ｆｃ、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３またはＩｇＧ４ Ｆｃに結合（例えば、共有結合または融合）することができ、これは、任意のアロタイプまたはアイソアロタイプであり得、例えば、ＩｇＧ１の場合、Ｇｌｍｌ（ａ）、Ｇｌｍ２（ｘ）、Ｇｌｍ３（ｆ）、Ｇｌｍｌ７（ｚ）；ＩｇＧ２の場合、Ｇ２ｍ、Ｇ２ｍ２３（ｎ）；ＩｇＧ３の場合、Ｇ３ｍ、Ｇ３ｍ２１（ｇｌ）、Ｇ３ｍ２８（ｇ５）、Ｇ３ｍｌ ｌ（ｂ０）、Ｇ３ｍ５（ｂｌ）、Ｇ３ｍｌ３（ｂ３）、Ｇ３ｍｌ４（ｂ４）、Ｇ３ｍｌ０（ｂ５）、Ｇ３ｍｌ５（ｓ）、Ｇ３ｍｌ６（ｔ）、Ｇ３ｍ６（ｃ３）、Ｇ３ｍ２４（ｃ５）、Ｇ３ｍ２６（ｕ）、Ｇ３ｍ２７（ｖ）；およびＫの場合、Ｋｍ、Ｋｍｌ、Ｋｍ２、Ｋｍ３であり得る（例えば、Ｊｅｆｆｅｒｉｅｓ ｅｔ ａｌ．（２００９）ｍＡｂｓ １：１を参照）。特定の実施形態において、本明細書に記載の抗体可変領域を、１つ以上の活性化Ｆｃ受容体（ＦｃγＩ、ＦｃγｌｌａまたはＦｃγＩＩＩａ）に結合するＦｃに結合し、それによってＡＤＣＣを刺激し、Ｔ細胞枯渇を引き起こし得る。特定の実施形態において、本明細書に記載の抗体可変領域は、枯渇を引き起こすＦｃに結合される。

特定の実施形態において、本明細書に記載の抗体可変領域は、典型的には、血清半減期、補体固定、Ｆｃ受容体結合、および／または抗原依存性細胞傷害等の抗体の１つ以上の機能特性を変更するために、１つ以上の修飾を含むＦｃに結合され得る。さらに、本明細書に記載の抗体は、１つ以上の機能特性を変更するために、化学的に修飾され得る（例えば、１つ以上の化学部分が抗体に付着され得る）か、またはそのグリコシル化を変更するように修飾され得る。Ｆｃ領域の残基の番号付けは、ＫａｂａｔのＥＵインデックスのものである。

Ｆｃ領域は、免疫グロブリン、好ましくはヒト免疫グロブリンの定常領域に由来するドメインを含み、定常領域の断片、類似体、変異体、変異体または誘導体を含む。適切な免疫グロブリンは、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、および他のクラス、例えば、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、およびＩｇＭを含む。免疫グロブリンの定常領域は、免疫グロブリンのＣ末端領域に相同な、天然に存在するまたは合成により産生されたポリペプチドとして定義され、ＣＨ１ドメイン、ヒンジ、ＣＨ２ドメイン、ＣＨ３ドメイン、またはＣＨ４ドメインを、別々にまたは組み合わせて含むことができる。いくつかの実施形態において、本発明の抗体は、野生型ＩｇＡ１のもの以外のＦｃ領域を有する。抗体は、ＩｇＧ（例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、およびＩｇＧ４）またはＩｇＡ２、ＩｇＤ、ＩｇＥおよびＩｇＭ等の他のクラスのＦｃ領域を有することができる。ＦｃはＩｇＡ１の変異型であり得る。

免疫グロブリンの定常領域は、Ｆｃ受容体（ＦｃＲ）結合および補体固定を含む多くの重要な抗体機能に関与している。ＩｇＡ、ＩｇＧ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＭとして分類される重鎖定常領域の５つの主要なクラスが存在し、それぞれがアイソタイプによって指定される特徴的なエフェクター機能を有する。例えば、ＩｇＧは、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、およびＩｇＧ４として知られる４つのサブクラスに分類される。

Ｉｇ分子は、複数のクラスの細胞受容体と相互作用する。例えば、ＩｇＧ分子は、ＩｇＧクラスの抗体に特異的な３つのクラスのＦｃγ受容体（ＦｃγＲ）、すなわちＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ、およびＦｃγＲＩＩＬと相互作用する。ＩｇＧがＦｃγＲ受容体に結合するための重要な配列は、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインに位置することが報告されている。抗体の血清半減期は、その抗体がＦｃＲに結合する能力に影響される。

特定の実施形態において、Ｆｃ領域は、変異Ｆｃ領域であり、例えば、望ましい構造的特徴および／または生物学的活性を提供するように、親Ｆｃ配列（例えば、後に変異体を生成するように修飾される、未修飾Ｆｃポリペプチド）に対して（例えば、アミノ酸置換、欠失および／または挿入により）修飾されているＦｃ配列である。例えば、親Ｆｃと比較して、（ａ）増加もしくは減少したＡＤＣＣ、（ｂ）増加もしくは減少した補体媒介性細胞傷害（ＣＤＣ）、（ｃ）増加もしくは減少したＣ１ｑに対する親和性、および／または（ｄ）増加もしくは減少したＦｃ受容体に対する親和性を有するＦｃ変異体を生成するために、Ｆｃ領域に修飾を行うことができる。そのようなＦｃ領域変異体は、一般に、Ｆｃ領域に少なくとも１つのアミノ酸修飾を含む。アミノ酸修飾を組み合わせることが特に望ましいと考えられる。例えば、変異Ｆｃ領域は、例えば、本明細書で同定される特定のＦｃ領域位置の、２つ、３つ、４つ、５つ等の置換をその中に含み得る。

変異体Ｆｃ領域はまた配列変更を含んでもよく、ジスルフィド結合形成に関与するアミノ酸が除去されるか、または他のアミノ酸で置き換えられる。そのような除去は、本明細書に記載の抗体を産生するために使用される宿主細胞に存在する他のシステイン含有タンパク質との反応を回避し得る。たとえシステイン残基が除去された場合でも、一本鎖Ｆｃドメインは、非共有結合的に一緒に保持された二量体Ｆｃドメインを形成することができる。他の実施形態において、Ｆｃ領域は、選択された宿主細胞とより適合性になるように修飾され得る。例えば、プロリンイミノペプチダーゼ等のＥ．ｃｏｌｉの消化酵素によって認識され得る典型的な天然Ｆｃ領域のＮ末端近くのＰＡ配列を除去することができる。他の実施形態において、Ｆｃドメイン内の１つ以上のグリコシル化部位が除去されてもよい。通常グリコシル化されている残基（例えば、アスパラギン）は、細胞溶解反応を付与し得る。そのような残基は、欠失させるか、またはグリコシル化されていない残基（例えば、アラニン）で置換することができる。他の実施形態において、Ｃｌｑ結合部位等の補体との相互作用に関与する部位がＦｃ領域から除去され得る。例えば、ヒトＩｇＧ１のＥＫＫ配列を欠失させるかまたは置換することができる。特定の実施形態において、Ｆｃ受容体への結合に影響を与える部位、好ましくはサルベージ受容体結合部位以外の部位を除去されてもよい。他の実施形態において、ＡＤＣＣ部位を除去するようにＦｃ領域を修飾することができる。ＡＤＣＣサイトは当該技術分野で既知であり、例えば、ＩｇＧ１のＡＤＣＣ部位に関してはＭｏｌｅｃ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２９（５）：６３３－９（１９９２）を参照されたい。変異Ｆｃドメインの特定の例は、例えば、ＷＯ９７／３４６３１およびＷＯ９６／３２４７８に開示されている。

一実施形態において、Ｆｃのヒンジ領域は、ヒンジ領域内のシステイン残基の数が変更されるように、例えば、増加または減少するように修飾される。この手法は、Ｂｏｄｍｅｒらによる米国特許第５，６７７，４２５号にさらに記載されている。Ｆｃのヒンジ領域内のシステイン残基の数は、例えば、軽鎖と重鎖のアセンブリを容易にするため、または抗体の安定性を増加または減少させるために変更される。一実施形態において、抗体のＦｃヒンジ領域は、抗体の生物学的半減期を減少させるように変異される。より具体的には、抗体が、天然ＦｃヒンジドメインスタフィロコクシルプロテインＡ（ＳｐＡ）結合と比較して損なわれたＳｐＡ結合を有するように、１つ以上のアミノ酸変異がＦｃヒンジ断片のＣＨ２－ＣＨ３ドメインインターフェース領域に導入される。この手法は、Ｗａｒｄらによる米国特許第６，１６５，７４５号にさらに詳細に記載されている。

さらに他の実施形態において、抗体のエフェクター機能（複数可）を変更するために、少なくとも１つのアミノ酸残基を異なるアミノ酸残基で置き換えることによりＦｃ領域が変更される。例えば、アミノ酸残基２３４、２３５、２３６、２３７、２９７、３１８、３２０および３２２から選択される１つ以上のアミノ酸は、抗体がエフェクターリガンドに対して変更された親和性を有するが、親抗体の抗原結合能力を保持するように、異なるアミノ酸残基で置き換えることができる。親和性が変更されるエフェクターリガンドは、例えば、Ｆｃ受容体または補体のＣＩ成分であり得る。この手法は、Ｗｉｎｔｅｒらによる米国特許第５，６２４，８２１号および同第５，６４８，２６０号にさらに詳細に記載されている。

別の例において、アミノ酸残基３２９、３３１および３２２から選択される１つ以上のアミノ酸は、抗体が変更されたＣｌｑ結合および／または低下もしくは消失させたＣＤＣを有するように、異なるアミノ酸残基で置き換えることができる。この手法は、Ｉｄｕｓｏｇｉｅらによる米国特許第６，１９４，５５１号にさらに詳細に記載されている。

別の例では、アミノ酸位置２３１および２３９内の１つ以上のアミノ酸残基が変更され、それにより、補体を固定する抗体の能力が変更される。この手法は、ＢｏｄｍｅｒらによるＰＣＴ公開ＷＯ９４／２９３５１にさらに記載されている。

さらに別の例において、以下の位置で１つ以上のアミノ酸を修飾することによって、Ｆｃ領域を、ＡＤＣＣを増加させるように、かつ／またはＦｃγ受容体に対する親和性を増加させるように修することができる：２３４、２３５、２３６、２３８、２３９、２４０、２４１、２４３、２４４、２４５、２４７、２４８、２４９、２５２、２５４、２５５、２５６、２５８、２６２、２６３、２６４、２６５、２６７、２６８、２６９、２７０、２７２、２７６、２７８、２８０、２８３、２８５、２８６、２８９、２９０、２９２、２９３、２９４、２９５、２９６、２９８、２９９、３０１、３０３、３０５、３０７、３０９、３１２、３１３、３１５、３２０、３２２、３２４、３２５、３２６、３２７、３２９、３３０、３３１、３３２、３３３、３３４、３３５、３３７、３３８、３４０、３６０、３７３、３７６、３７８、３８２、３８８、３８９、３９８、４１４、４１６、４１９、４３０、４３３、４３４、４３５、４３６、４３７、４３８または４３９。例示的な置換は、２３６Ａ、２３９Ｄ、２３９Ｅ、２６８Ｄ、２６７Ｅ、２６８Ｅ、２６８Ｆ、３２４Ｔ、３３２Ｄ、および３３２Ｅを含む。例示的な変異は、２３９Ｄ／３３２Ｅ、２３６Ａ／３３２Ｅ、２３６Ａ／２３９Ｄ／３３２Ｅ、２６８Ｆ／３２４Ｔ、２６７Ｅ／２６８Ｆ、２６７Ｅ／３２４Ｔ、および２６７Ｅ／２６８Ｆ７３２４Ｔを含む。ＦｃγＲと補体との相互作用を増強するための他の修飾は、限定されないが、置換２９８Ａ、３３３Ａ、３３４Ａ、３２６Ａ、２４７Ｉ、３３９Ｄ、３３９Ｑ、２８０Ｈ、２９０Ｓ、２９８Ｄ、２９８Ｖ、２４３Ｌ、２９２Ｐ、３００Ｌ、３９６Ｌ、３０５Ｉ、および３９６Ｌを含む。これらおよび他の修飾は、Ｓｔｒｏｈｌ，２００９，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２０：６８５－６９１において概説されている。

Ｆｃγ受容体への結合を増加させるＦｃ修飾は、Ｆｃ領域のアミノ酸位置２３８、２３９、２４８、２４９、２５２、２５４、２５５、２５６、２５８、２６５、２６７、２６８、２６９、２７０、２７２、２７９、２８０、２８３、２８５、２９８、２８９、２９０、２９２、２９３、２９４、２９５、２９６、２９８、３０１、３０３、３０５、３０７、３１２、３１５、３２４、３２７、３２９、３３０、３３５、３３７、３３３８、３４０、３６０、３７３、３７６、３７９、３８２、３８８、３８９、３９８、４１４、４１６、４１９、４３０、４３４、４３５、４３７、４３８または４３９のいずれか１つ以上におけるアミノ酸修飾を含み、Ｆｃ領域の残基の番号付けはａｂａｔにおけるようなＥＵインデックスのものである（ＷＯ００／４２０７２）。

Ｆｃに加えることができる他のＦｃ修飾は、ＦｃγＲおよび／または補体タンパク質への結合を減少または消失させるためのものであり、それにより、ＡＤＣＣ、ＡＤＣＰ、およびＣＤＣ等のＦｃ媒介エフェクター機能を減少または消失させる。例示的な修飾は、限定されないが、位置２３４、２３５、２３６、２３７、２６７、２６９、３２５、および３２８における置換、挿入、および欠失を含み、番号付けはＥＵインデックスに従う。例示的な置換は、限定されないが、２３４Ｇ、２３５Ｇ、２３６Ｒ、２３７Ｋ、２６７Ｒ、２６９Ｒ、３２５Ｌ、および３２８Ｒを含み、番号付けはＥＵインデックスに従う。Ｆｃ変異は、２３６Ｒ／３２８Ｒを含み得る。ＦｃγＲと補体との相互作用を低減するための他の修飾は、置換２９７Ａ、２３４Ａ、２３５Ａ、２３７Ａ、３１８Ａ、２２８Ｐ、２３６Ｅ、２６８Ｑ、３０９Ｌ、３３０Ｓ、３３１Ｓ、２２０Ｓ、２２６Ｓ、２２９Ｓ、２３８Ｓ、２３３Ｐ、および２３４Ｖ、ならびに変異的もしくは酵素的手段による、またはタンパク質をグリコシル化しない細菌等の生物における産生による２９７位のグリコシル化の除去を含む。これらおよび他の修飾は、Ｓｔｒｏｈｌ，２００９，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２０：６８５－６９１に概説されている。

任意選択的に、Ｆｃ領域は、当業者に既知の追加のおよび／または代替の位置に天然に存在しないアミノ酸残基を含み得る（例えば、米国特許第５，６２４，８２１号、同第６，２７７，３７５号、同第６，７３７，０５６号、同第６，１９４，５５１号、同第７，３１７，０９１号、同第８，１０１，７２０号、ＷＯ００／４２０７２、ＷＯ０１／５８９５７、ＷＯ０２／０６９１９、ＷＯ０４／０１６７５０、ＷＯ０４／０２９２０７、ＷＯ０４／０３５７５２、ＷＯ０４／０７４４５５、ＷＯ０４／０９９２４９、ＷＯ０４／０６３３５１、ＷＯ０５／０７０９６３、ＷＯ０５／０４０２１７、ＷＯ０５／０９２９２５およびＷＯ０６／０２０１１４を参照）。

阻害性受容体ＦｃγＲＩＩｂに対する親和性を増強するＦｃ変異体も使用することができる。そのような変異体は、例えばＢ細胞および単球を含むＦｃγＲＩＩｂ細胞に関連する免疫調節活性を有するＦｃ融合タンパク質を提供し得る。一実施形態において、Ｆｃ変異体は、１つ以上の活性化受容体と比較して、ＦｃγＲＩＩｂに対する選択的に増強された親和性を提供する。ＦｃγＲＩＩｂへの結合を変更するための修飾は、ＥＵインデックスに従って、２３４、２３５、２３６、２３７、２３９、２６６、２６７、２６８、３２５、３２６、３２７、３２８、および３３２からなる群から選択される位置での１つ以上の修飾を含む。ＦｃγＲＩＩｂ親和性を増強するための例示的な置換は、２３４Ｄ、２３４Ｅ、２３４Ｆ、２３４Ｗ、２３５Ｄ、２３５Ｆ、２３５Ｒ、２３５Ｙ、２３６Ｄ、２３６Ｎ、２３７Ｄ、２３７Ｎ、２３９Ｄ、２３９Ｅ、２６６Ｍ、２６７Ｄ、２６７Ｅ、２６８Ｄ、２６８Ｅ、３２７Ｄ、３２７Ｅ、３２８Ｆ、３２８Ｗ、３２８Ｙ、および３３２Ｅを含むが、これらに限定されない。例示的な置換は、２３５Ｙ、２３６Ｄ、２３９Ｄ、２６６Ｍ、２６７Ｅ、２６８Ｄ、２６８Ｅ、３２８Ｆ、３２８Ｗ、および３２８Ｙを含む。ＦｃγＲｌｌｂへの結合を強化するための他のＦｃ変異体は、２３５Ｙ／２６７Ｅ、２３６Ｄ／２６７Ｅ、２３９Ｄ／２６８Ｄ、２３９Ｄ／２６７Ｅ、２６７Ｅ／２６８Ｄ、２６７Ｅ／２６８Ｅ、および２６７Ｅ／３２８Ｆを含む。

Ｆｃ領域のそのリガンドに対する親和性および結合特性は、平衡方法（例えば、ＥＬＩＳＡまたはラジオイムノアッセイ）、または動力学（例えば、ＢＩＡＣＯＲＥ分析）、ならびに間接的結合アッセイ、競合的阻害アッセイ、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）、ゲル電気泳動およびクロマトグラフィー（例えば、ゲル濾過）等の他の方法を含むが、これらに限定されない、当業者に既知の多様なインビトロアッセイ法（生化学または免疫学ベースのアッセイ）により決定され得る。これらおよび他の方法は、試験される成分の１つ以上に対する標識を利用してもよく、かつ／または発色性、蛍光性、発光性、または同位体性標識を含むがこれらに限定されない様々な検出方法を採用してもよい。結合親和性および動力学の詳細な説明は、抗体－免疫原相互作用に焦点を当てている、Ｐａｕｌ，Ｗ．Ｅ．，ｅｄ．，Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，４ｔｈ Ｅｄ．，Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ－Ｒａｖｅｎ，Ｐｈｉｌａｄｅｌｐｈｉａ（１９９９）に見出すことができる。

特定の実施形態において、抗体は、その生物学的半減期を延長させるように修飾される。様々な手法が可能である。例えば、これは、ＦｃＲｎに対するＦｃ領域の結合親和性を増加させることによって行うことができる。例えば、米国特許第６，２７７，３７５号に記載されているように、以下の残基の１つ以上を変異させることができる：２５２、２５４、２５６、４３３、４３５、４３６。特定の例示的な置換は、以下のうちの１つ以上を含む：Ｔ２５２Ｌ、Ｔ２５４Ｓ、および／またはＴ２５６Ｆ。あるいは、生物学的半減期を延長するために、米国特許第５，８６９，０４６号および同第６，１２１，０２２号に記載されるように、ＩｇＧのＦｃ領域のＣＨ２ドメインの２つのループから取ったサルベージ受容体結合エピトープを含むように、抗体をＣＨ１またはＣＬ領域内で変更することができる。ＦｃＲｎへの結合を増加させるおよび／または薬物動態特性を改善する他の例示的な変異体は、例えば２５９Ｉ、３０８Ｆ、４２８Ｌ、４２８Ｍ、４３４Ｓ、４３４Ｈ、４３４Ｆ、４３４Ｙ、および４３４Ｍを含む、位置２５９、３０８、４２８、および４３４での置換を含む。ＦｃＲｎへのＦｃ結合を増加させる他の変異体は、２５０Ｅ、２５０Ｑ、４２８Ｌ、４２８Ｆ、２５０Ｑ／４２８Ｌ（Ｈｉｎｔｏｎ ｅｔ ａｌ，，２００４，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７９（８）：６２１３－６２１６，Ｈｉｎｔｏｎ ｅｔ ａｌ．２００６ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １７６：３４６－３５６）、２５６Ａ、２７２Ａ、２８６Ａ、３０５Ａ、３０７Ａ、３０７Ｑ、３１１Ａ、３１２Ａ、３７６Ａ、３７８Ｑ、３８０Ａ、３８２Ａ、４３４Ａ（Ｓｈｉｅｌｄｓ ｅｔ ａｌ，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００１，２７６（９）：６５９１－６６０４）、２５２Ｆ、２５２Ｔ、２５２Ｙ、２５２Ｗ、２５４Ｔ、２５６Ｓ、２５６Ｒ、２５６Ｑ、２５６Ｅ、２５６Ｄ、２５６Ｔ、３０９Ｐ、３１１Ｓ、４３３Ｒ、４３３Ｓ、４３３Ｉ、４３３Ｐ、４３３Ｑ、４３４Ｈ、４３４Ｆ、４３４Ｙ、２５２Ｙ／２５４Ｔ／２５６Ｅ、４３３Ｋ／４３４Ｆ／４３６Ｈ、３０８Ｔ／３０９Ｐ／３１１Ｓ（Ｄａｌｌ Ａｃｑｕａ ｅｔ ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２００２，１６９：５１７１－５１８０，Ｄａｌｌ’Ａｃｑｕａ ｅｔ ａｌ．，２００６，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８１：２３５１４－２３５２４）を含む。ＦｃＲｎ結合を調節するための他の修飾は、Ｙｅｕｎｇ ｅｔ ａｌ．，２０１０，Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ，１８２：７６６３－７６７１に記載されている。特定の実施形態において、特定の生物学的特徴を有するハイブリッドＩｇＧアイソタイプを使用することができる。例えば、ＩｇＧ１／ＩｇＧ３ハイブリッド変異体は、２つのアイソタイプが異なる位置で、ＣＨ２および／またはＣＨ３領域のＩｇＧ１位置を、ＩｇＧ３からのアミノ酸で置換することによって構築され得る。したがって、１つ以上の置換、例えば、２７４Ｑ、２７６Ｋ、３００Ｆ、３３９Ｔ、３５６Ｅ、３５８Ｍ、３８４Ｓ、３９２Ｎ、３９７Ｍ、４２２Ｉ、４３５Ｒ、および４３６Ｆを含むハイブリッド変異体ＩｇＧ抗体を構築することができる。本明細書に記載の他の実施形態において、ＩｇＧ１／ＩｇＧ２ハイブリッド変異体は、２つのアイソタイプが異なる位置で、ＣＨ２および／またはＣＨ３領域のＩｇＧ２位置をＩｇＧ１からのアミノ酸で置換することによって構築され得る。したがって、１つ以上の置換、例えば、以下のアミノ酸置換のうちの１つ以上を含むハイブリッド変異体ＩｇＧ抗体が構築され得る：２３３Ｅ、２３４Ｌ、２３５Ｌ、２３６Ｇ（２３６位でのグリシンの挿入を指す）、および３２１ｈ。

さらに、ＦｃγＲ１、ＦｃγＲＩＩ、ＦｃγＲＩＩＩ、およびＦｃＲｎに対するヒトＩｇＧ１の結合部位がマッピングされ、結合が改善された変異体が記載されている（Ｓｈｉｅｌｄｓ，Ｒ．Ｌ．ｅｔ ａｌ．（２００１）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７６：６５９１－６６０４を参照）。位置２５６、２９０、２９８、３３３、３３４、および３３９での特異的変異は、ＦｃγＲＩＩＩへの結合を改善することが示された。さらに、以下の組み合わせ変異体がＦｃγＲＩＩＩ結合を改善することが示された：Ｔ２５６Ａ／Ｓ２９８Ａ、Ｓ２９８Ａ／Ｅ３３３Ａ、Ｓ２９８Ａ／Ｋ２２４ＡおよびＳ２９８Ａ／Ｅ３３３Ａ／Ｋ３３４Ａ：これは増強されたＦｃγＲＩＩＩａ結合およびＡＤＣＣ活性を示すことが示されている（Ｓｈｉｅｌｄｓ ｅｔ ａｌ．，２００１）。Ｓ２３９Ｄ／Ｉ３３２ＥおよびＳ２３９Ｄ／Ｉ３３２Ｅ／Ａ３３０Ｌ変異を有する変異体を含む、ＦｃγＲＩＩＩａへの高度に増強された結合を有する他のＩｇＧ１変異体が同定されており、それらはカニクイザルサルにおいて、ＦｃγＲＩＩＩａに対する親和性の最大の増加、ＦｃγＲＩＩｂ結合の低下、および強い細胞毒性活性を示した（Ｌａｚａｒ ｅｔ ａｌ．，２００６）。アレムツズマブ（ＣＤ５２特異的）、トラスツズマブ（ＨＥＲ２／ｎｅｕ特異的）、リツキシマブ（ＣＤ２０特異的）、およびセツキシマブ（ＥＧＦＲ特異的）等の抗体への三重変異の導入は、インビトロで大幅に増強されたＡＤＣＣ活性に変換され、Ｓ２３９Ｄ／Ｉ３３２Ｅ変異体は、サルのＢ細胞を枯渇させる能力の増強を示した（Ｌａｚａｒ ｅｔ ａｌ．，２００６）。さらに、Ｂ細胞悪性腫瘍および乳癌のモデルにおいて、ヒトＦｃγＲＩＩＩａを発現するトランスジェニックマウスでＦｃγＲＩＩＩａへの増強された結合および付随して増強されたＡＤＣＣ活性を示したＬ２３５Ｖ、Ｆ２４３Ｌ、Ｒ２９２Ｐ、Ｙ３００ＬおよびＰ３９６Ｌ変異を含むＩｇＧ１変異体が同定されている（Ｓｔａｖｅｎｈａｇｅｎ ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｎｏｒｄｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ．，２０１１）。使用できる他のＦｃ変異体は、Ｓ２９８Ａ／Ｅ３３３Ａ／Ｌ３３４Ａ、Ｓ２３９Ｄ／Ｉ３３２Ｅ、Ｓ２３９Ｄ／Ｉ３３２Ｅ／Ａ３３０Ｌ、Ｌ２３５Ｖ／Ｆ２４３Ｌ／Ｒ２９２Ｐ／Ｙ３００Ｌ／Ｐ３９６Ｌ、およびＭ４２８Ｌ／Ｎ４３４Ｓを含む。

特定の実施形態において、ＦｃγＲへの結合が低下したＦｃが選択される。ＦｃγＲ結合が低下した例示的なＦｃ、例えば、ＩｇＧ１ Ｆｃは、以下の３つのアミノ酸置換を含む：Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５ＥおよびＧ２３７Ａ。

特定の実施形態において、補体固定が低下したＦｃが選択される。補体結合が低下した例示的なＦｃ、例えば、ＩｇＧ１ Ｆｃは、以下の２つのアミノ酸置換を有する：Ａ３３０ＳおよびＰ３３１Ｓ。

特定の実施形態において、本質的にエフェクター機能を有しない、すなわち、ＦｃγＲへの結合が低下し、補体固定が低下したＦｃが選択される。エフェクターレスである例示的なＦｃ、例えば、ＩｇＧ１ Ｆｃは、以下の５つの変異を含む：Ｌ２３４Ａ、Ｌ２３５Ｅ、Ｇ２３７Ａ、Ａ３３０ＳおよびＰ３３１Ｓ。

ＩｇＧ４定常ドメインを使用する場合、通常、ＩｇＧ１のヒンジ配列を模倣し、それによってＩｇＧ４分子を安定化する、置換Ｓ２２８Ｐを含めることが好ましい。

抗体誘導体
本明細書に提供される抗体は、当該技術分野で既知であり、容易に入手可能な追加の非タンパク質部分を含むようにさらに修飾され得る。抗体の誘導体化に適した部分は、限定されないが、水溶性ポリマーを含む。

水溶性ポリマーの非限定的な例として、ＰＥＧ、エチレングリコール／プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ－１，３－ジオキソラン、ポリ－１，３，６－トリオキサン、エチレン／無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸（ホモポリマーまたはランダムコポリマーのいずれか）、およびデキストランまたはポリ（ｎ－ビニルピロリドン）ポリエチレングリコール、プロプロピレングリコールホモポリマー、プロプロピレンオキシド／エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール（例えば、グリセロール）、ポリビニルアルコール、ならびにそれらの混合物が挙げられるが、これらに限定されない。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中での安定性のために製造において利点を有し得る。ポリマーは、任意の分子量のものであってもよく、分岐または非分岐であり得る。抗体に付着するポリマーの数は変動し得るが、複数のポリマーが付着する場合、それらは同じ分子でもまたは異なる分子でもよい。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数および／または種類は、限定されないが、改善されるべき抗体の特定の特性または機能、抗体誘導体が定義された条件下で治療に使用されるかどうか、を含む考慮事項に基づいて決定することができる。

別の実施形態において、放射線への曝露によって選択的に加熱され得る抗体と非タンパク質部分との共役が提供される。一実施形態において、非タンパク質部分はカーボンナノチューブである（Ｋａｍ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ１０２：１１６００－１１６０５（２００５））。放射線は、任意の波長であり得、限定されないが、正常な細胞には害を与えないが、非タンパク質部分を抗体－非タンパク質部分の近位の細胞が死滅される温度まで加熱する波長を含む。

本明細書に記載される抗体の別の修飾は、ペグ化である。抗体をペグ化して、例えば、抗体の生物学的（例えば、血清）半減期を延長することができる。抗体をペグ化するために、抗体またはその断片は、典型的には、１つ以上のＰＥＧ基が抗体または抗体断片に付着する条件下で、ＰＥＧの反応性エステルまたはアルデヒド誘導体等のＰＥＧと反応させる。好ましくは、ペグ化は、反応性ＰＥＧ分子（または類似の反応性水溶性ポリマー）とのアシル化反応またはアルキル化反応を介して実施される。本明細書で使用される場合、「ポリエチレングリコール」という用語は、モノ（ＣＩ－ＣＩＯ）アルコキシ－またはアリールオキシ－ポリエチレングリコールまたはポリエチレングリコール－マレイミド等の他のタンパク質を誘導体化するために使用されている任意の形態のＰＥＧを包含することが企図される。特定の実施形態において、ペグ化される抗体は、非グリコシル化抗体である。タンパク質をペグ化するための方法は当該技術分野で既知であり、本明細書に記載の抗体に適用することができる。例えば、ＮｉｓｈｉｍｕｒａらによるＥＰ０ １５４３１６およびＩｓｈｉｋａｗａらによるＥＰ０４０１３８４を参照されたい。

本発明はまた、治療薬、ポリマー、検出可能な標識または酵素に共役された本明細書に記載のヒトモノクローナル抗体を包含する。一実施形態において、治療薬は細胞毒性薬である。一実施形態において、ポリマーはＰＥＧである。
制作方法
抗体は、例えば、米国特許第４，８１６，５６７号に記載されているように、組換え方法および組成物を使用して産生することができる。一実施形態において、本明細書に記載の抗体をコードする単離された核酸が提供される。そのような核酸は、抗体のＶＬを含むアミノ酸配列および／またはＶＨを含むアミノ酸配列（例えば、抗体の軽鎖および／または重鎖）をコードし得る。さらなる実施形態において、そのような核酸を含む１つ以上のベクター（例えば、発現ベクター）が提供される。さらなる実施形態において、そのような核酸を含む宿主細胞が提供される。そのような一実施形態において、宿主細胞は、以下を含む（例えば、形質転換されている）：（１）抗体のＶＬを含むアミノ酸配列および抗体のＶＨを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含むベクター、または（２）抗体のＶＬを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第１のベクター、および抗体のＶＨを含むアミノ酸配列をコードする核酸を含む第２のベクター。一実施形態において、宿主細胞は、真核生物、例えば、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞またはリンパ系細胞（例えば、Ｙ０、ＮＳ０、Ｓｐ２０細胞）である。一実施形態において、抗体を作製する方法が提供され、この方法は、抗体の発現に適した条件下で、上記のように抗体をコードする核酸を含む宿主細胞を培養し、任意選択的に宿主細胞（または宿主細胞培養培地）から抗体を回収することを含む。

抗体の組換え産生のために、例えば上記のように、抗体をコードする核酸が単離され、宿主細胞におけるさらなるクローニングおよび／または発現のために１つ以上のベクターに挿入される。そのような核酸は、従来の手順を使用して（例えば、抗体の重鎖および軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合することができるオリゴヌクレオチドプローブを使用することによって）容易に単離され、配列決定される。

抗体をコードするベクターのクローニングまたは発現に適した宿主細胞は、本明細書に記載の原核生物または真核生物の細胞を含む。例えば、抗体は、特にグリコシル化およびＦｃエフェクター機能が必要とされない場合、細菌で産生され得る。細菌における抗体断片およびポリペプチドの発現については、例えば、米国特許第５，６４８，２３７号、同第５，７８９，１９９号、および同第５，８４０，５２３号を参照されたい。（また、Ｅ．ｃｏｌｉにおける抗体断片の発現について記載しているＣｈａｒｌｔｏｎ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．２４８（Ｂ．Ｋ．Ｃ．Ｌｏ，ｅｄ．，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，Ｎ．Ｊ．，２００３），ｐｐ．２４５－２５４も参照のこと。）発現後、抗体は、細菌細胞のペーストから可溶性画分中に単離することができ、さらに精製することができる。

原核生物に加えて、糸状菌または酵母等の真核微生物は、真菌および酵母株を含む抗体をコードするベクターの適切なクローニングまたは発現宿主であり、それらは、グリコシル化経路が「ヒト化」されており、部分的または完全にヒトグリコシル化パターンを有する抗体の産生をもたらす真菌および酵母株を含む。Ｇｅｒｎｇｒｏｓｓ，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．２２：１４０９－１４１４（２００４）、およびＬｉ ｅｔ ａｌ，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．２４：２１０－２１５（２００６）を参照されたい。

グリコシル化抗体の発現に適した宿主細胞は、多細胞生物（無脊椎動物および脊椎動物）にも由来する。無脊椎動物の細胞の例は、植物および昆虫の細胞を含む。多数のバキュロウイルス株が同定されており、特にＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ細胞のトランスフェクションのために、昆虫細胞と併せて使用することができる。

植物細胞培養も宿主として利用することができる。例えば、米国特許第５，９５９，１７７号、同第６，０４０，４９８号、同第６，４２０，５４８号、同第７，１２５，９７８号、および同第６，４１７，４２９号（トランスジェニック植物で抗体を産生するためのＰＬＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ技術について記載している）を参照されたい。

脊椎動物細胞も宿主として使用することができる。例えば、懸濁液中で増殖するように適合された哺乳動物細胞株が有用であり得る。有用な哺乳動物宿主細胞株の他の例は、ＳＶ４０（ＣＯＳ－７）によって形質転換されたサル腎臓ＣＶ１株、ヒト胎児腎臓株（例えば、Ｇｒａｈａｍ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｇｅｎ Ｖｉｒｏｌ．３６：５９（１９７７）に記載される２９３細胞または２９３細胞）、ベビーハムスター腎臓細胞（ＢＨＫ）、マウスセルトリ細胞（例えば、Ｍａｔｈｅｒ，Ｂｉｏｌ．Ｒｅｐｒｏｄ．２３：２４３－２５１（１９８０）に記載されるＴＭ４細胞）、２３：２４３－２５１（１９８０））、サル腎臓細胞（ＣＶ１）、アフリカミドリザル腎臓細胞（ＶＥＲＯ－７６）、ヒト子宮頸癌細胞（ＨＥＬＡ）、イヌ腎臓細胞（ＭＤＣＫ；バッファローラット肝細胞（ＢＲＬ ３Ａ）、ヒト肺細胞（Ｗ１３８）、ヒト肝細胞（Ｈｅｐ Ｇ２）、マウス乳腺腫瘍（ＭＭＴ ０６０５６２）、ＴＲＩ細胞（例えばＭａｔｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎａｌｓ Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．３８３：４４－６８（１９８２）に記載される）、ＭＲＣ５細胞、およびＦＳ４細胞である。他の有用な哺乳動物宿主細胞株は、ＤＨＦＲ^－ ＣＨＯ細胞を含むＣＨＯ細胞（Ｕｒｌａｕｂ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７７：４２１６（１９８０））、ならびにメラノーマ細胞株Ｙ０、ＮＳ０、Ｓｐ２／０等を含む。抗体産生に適した特定の哺乳動物宿主細胞株の概説については、例えば、Ｙａｚａｋｉ ａｎｄ Ｗｕ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．２４８（Ｂ．Ｋ．Ｃ．Ｌｏ，ｅｄ．，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，Ｎ．Ｊ．），ｐｐ．２５５－２６８（２００３）を参照されたい。
組成物および製剤
本発明の抗体は、単独で、またはヒトにおけるヒトインフルエンザ感染の治療のための追加の抗インフルエンザウイルス抗体を含む抗体カクテルとして、抗ウイルス療法を開発するための優れた方法を意味する。

別の態様において、本発明は、薬学的に許容される担体と一緒に製剤化される、本明細書に記載の本発明の抗体を含む医薬組成物を提供する。組成物は、任意選択的に、別の抗体または治療薬等の１つ以上の追加の薬学的に活性な成分を含み得る。本発明の医薬組成物はまた、例えば、別の免疫刺激剤、抗ウイルス剤、またはワクチン等との併用療法において投与することもできる。特定の実施形態において、組成物は、本発明の抗体を少なくとも１ｍｇ／ｍｌ、５ｍｇ／ｍｌ、１０ｍｇ／ｍｌ、５０ｍｇ／ｍｌ、１００ｍｇ／ｍｌ、１５０ｍｇ／ｍｌ、２００ｍｇ／ｍｌ、１～３００ｍｇ／ｍｌ、または１００～３００ｍｇ／ｍｌの濃度で含む。

医薬組成物は、任意の数の賦形剤を含むことができる。使用することができる賦形剤は、担体、界面活性剤、増粘剤または乳化剤、固体結合剤、分散剤または懸濁助剤、可溶化剤、着色剤、香味剤、コーティング、崩壊剤、潤滑剤、甘味料、防腐剤、等張剤、およびそれらの組み合わせを含む。適切な賦形剤の選択および使用は、Ｇｅｎｎａｒｏ，ｅｄ．，Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ，２０ｔｈ Ｅｄ．（Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ Ｗｉｌｌｉａｍｓ＆Ｗｉｌｋｉｎｓ ２００３）に教示されており、その開示は参照により本明細書に組み込まれる。

好ましくは、医薬組成物は、静脈内、筋肉内、皮下、非経口、脊髄または表皮投与（例えば、注射または注入による）に適している。投与経路に応じて、活性化合物を材料でコーティングして、酸の作用およびそれを不活性化する可能性のある他の天然の条件から保護することができる。本明細書で使用される「非経口投与」という句は、通常は注射による、経腸および局所投与以外の投与様式を意味し、限定されないが、静脈内、筋肉内、動脈内、髄腔内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、気管内、皮下、表皮下、関節内、被膜下、くも膜下、脊髄内、硬膜外および胸骨内の注射および注入を含む。あるいは、本明細書に記載の本発明の抗体は、局所、表皮または粘膜投与経路、例えば、鼻腔内、経口、膣、直腸、舌下または局所の非経口経路を介して投与することができる。

本発明の医薬組成物は、薬学的に許容される塩の形態であり得る。「薬学的に許容される塩」は、親化合物の望ましい生物学的活性を保持し、望ましくない毒物学的効果を与えない塩を指す。そのような塩の例として、酸付加塩および塩基付加塩が挙げられる。酸付加塩は、塩酸、硝酸、リン酸、硫酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、リン等の非毒性の無機酸、ならびに脂肪族モノおよびジカルボン酸、フェニル置換アルカン酸、ヒドロキシアルカン酸、芳香族酸、脂肪族および芳香族スルホン酸等の非毒性の有機酸を含む。塩基付加塩は、ナトリウム、カリウム、マグネシウム、カルシウム等のアルカリ土類金属、およびＮ、Ｎ’－ジベンジルエチレンジアミン、Ｎ－メチルグルカミン、クロロプロカイン、コリン、ジエタノールアミン、エチレンジアミン、プロカイン等の無毒性の有機アミンを含む。

本発明の医薬組成物は、滅菌水溶液または分散液の形態であり得る。それはまた、マイクロエマルジョン、リポソーム、または高い薬物濃度に適した他の秩序だった構造で製剤化することもできる。

本明細書に記載の本発明の抗体は、徐放性製剤として投与することができ、その場合、より低い頻度の投与が必要とされる。投与量および頻度は、患者における抗体の半減期によって異なる。一般に、ヒト抗体が最も長い半減期を示し、ヒト化抗体、キメラ抗体、および非ヒト抗体がそれに続く。投与量および投与頻度は、治療が予防的であるか治療的であるかに応じて異なり得る。予防的な用途では、比較的低用量が長期間にわたって比較的まれな間隔で投与される。一部の患者は、生涯治療を受け続ける。治療的な用途では、疾患の進行が減少または終了するまで、好ましくは、患者が疾を患の症状の部分的または完全な寛解を示すまで、比較的短い間隔で比較的高い投与量が必要とされる場合がある。その後、患者は予防投与計画を受けることができる。

担体材料と組み合わせて単一の剤形を生成することができる活性成分の量は、治療される対象および特定の投与様式に応じて異なり、一般に、治療効果をもたらす組成物の量である。一般に、１００パーセントのうち、この量は、薬学的に許容される担体と組み合わせて、約０．０１％～約９９％の活性成分、好ましくは約０．１％～約７０％、最も好ましくは約１％～約３０％の活性成分の範囲である。

投与計画は、最適な所望の応答（例えば、治療応答）を提供するように調整することができる。例えば、単会ボーラスを投与することができ、いくつかの分割された用量を経時的に投与することができ、または治療状況の緊急性によって示されるように、用量を比例的に減少または増加させることができる。投与の容易さおよび投与量の均一性のために、投与単位形態で非経口組成物を処方することは特に有利である。本明細書で使用される「投与単位形態」は、治療される対象の単位投与量として適した物理的に別個の単位を指す：各単位は、必要な薬学的担体と合わさって所望の治療効果をもたらすように計算された所定の量の活性化合物を含む。あるいは、抗体は徐放性製剤として投与することができ、その場合、より低い頻度の投与が必要とされる。抗体の投与の場合、投与量は、宿主の体重の約０．０００１～１００ｍｇ／ｋｇ、より一般的には０．０１～５ｍｇ／ｋｇの範囲である。例えば、投与量は、０．３ｍｇ／ｋｇ体重、１ｍｇ／ｋｇ体重、３ｍｇ／ｋｇ体重、５ｍｇ／ｋｇ体重もしくは１０ｍｇ／ｋｇ体重、または１～１０ｍｇ／ｋｇの範囲内であり得る。例示的な治療計画は、週に１回、２週間に１回、３週間に１回、４週間に１回、月に１回、３ヶ月に１回、または３～６ヶ月に１回の投与を伴う。本発明の抗体の好ましい投与計画は、静脈内投与による１ｍｇ／ｋｇ体重または３ｍｇ／ｋｇ体重を含み、抗体は、以下の投与スケジュールの１つを用いて与えられる：（ｉ）６回の投与を４週間ごと、次いで３か月ごと、（ｉｉ）３週間ごと、（ｉｉｉ）３ｍｇ／ｋｇ体重を１回、その後３週間ごとに１ｍｇ／ｋｇ体重。いくつかの方法では、約１～１０００μｇ／ｍｌの血漿抗体濃度を達成し、いくつかの方法では、約２５～３００μｇ／ｍｌを達成するように投与量が調節される。本発明の抗体の「治療有効投与量」は、好ましくは、疾患症状の重症度の軽減、疾患症状のない期間の頻度および期間の増加、または疾患の苦痛による機能障害または身体障害の予防をもたらす。例えば、対象におけるインフルエンザ感染の治療のために、「治療有効投与量」は、インフルエンザウイルスの複製または宿主細胞による取り込みを、未治療の対象と比較して好ましくは少なくとも約２０％、より好ましくは少なくとも約４０％、さらにより好ましくは少なくとも約６０％、さらにより好ましくは少なくとも約８０％阻害する。治療有効量の治療用化合物は、インフルエンザウイルスを中和するか、または別様に、典型的にはヒトであるかまたは別の哺乳動物であり得る対象の症状を改善することができる。医薬組成物は、インプラント、経皮パッチ、およびマイクロカプセル化送達系を含む制御放出製剤であり得る。エチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル、およびポリ乳酸等の生分解性、生体適合性ポリマーを使用することができる。例えば、Ｓｕｓｔａｉｎｅｄ ａｎｄ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ｒｅｌｅａｓｅ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｊ．Ｒ．Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，ｅｄ．，Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，１９７８を参照されたい。

治療用組成物は、（１）無針皮下注射デバイス（例えば、ＵＳ５，３９９，１６３、５，３８３，８５１、５，３１２，３３５、５，０６４，４１３、４，９４１，８８０、４，７９０，８２４、および４，５９６，５５６）、（２）マイクロ輸液ポンプ（ＵＳ４，４８７，６０３）、（３）経皮デバイス（ＵＳ４，４８６，１９４）、（４）注入装置（ＵＳ４，４４７，２３３および４，４４７，２２４）、および（５）浸透圧デバイス（ＵＳ４，４３９，１９６および４，４７５，１９６）（その開示は参照により本明細書に組み込まれる）等の医療機器を介して投与することができる。

特定の実施形態において、本明細書に記載される本発明のヒトモノクローナル抗体は、インビボでの適切な分布を確実にするように製剤化され得る。例えば、本発明の治療化合物が血液脳関門を通過することを確実にするために、それらは、特定の細胞または器官への選択的輸送を増強するための標的化部分をさらに含み得るリポソーム中に製剤化され得る。例えば、ＵＳ４，５２２，８１１、５，３７４，５４８、５，４１６，０１６、および５，３９９，３３１；Ｖ．Ｖ．Ｒａｎａｄｅ（１９８９）Ｃｌｉｎ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２９：６８５；Ｕｍｅｚａｗａ ｅｔ ａｌ，（１９８８）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１５３：１０３８；Ｂｌｏｅｍａｎ ｅｔ ａｌ．（１９９５）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３５７：１４０；Ｍ．Ｏｗａｉｓ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂ．Ａｇｅｎｔｓ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．３９：１８０；Ｂｒｉｓｃｏｅ ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ａｍ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１２３３：１３４；Ｓｃｈｒｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．（１９９４）．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：９０９０；Ｋｅｉｎａｎｅｎ ａｎｄ Ｌａｕｋｋａｎｅｎ（１９９４）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３４６：１２３；およびＫｉｌｌｉｏｎ ａｎｄ Ｆｉｄｌｅｒ（１９９４）Ｉｍｍｕｎｏｍｅｔｈｏｄｓ ４：２７３を参照されたい。
使用法と方法
インフルエンザに対する現在の抗ウイルス治療（例えば、オセルタミビル／タミフル、アマンタジン／リマンタジン）は最適ではなく、耐性の発生率が高く、治療域が限られている（症状の発症後４８時間以内に開始する必要がある）（Ｂｅｉｇｅｌ Ｊ，ｅｔ ａｌ．２００８．Ａｎｔｉｖｉｒａｌ Ｒｅｓ ７８：９１－１０２；Ｇａｒｃｉａ－Ｓａｓｔｒｅ Ａ．２００６．Ｅｍｅｒｇ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ １２：４４－４７；ａｎｄ Ｍａｒａｔｈｅ ＢＭ，ｅｔ ａｌ．２０１６．Ｓｃｉ Ｒｅｐ ６：２６７４２）。モノクローナル抗体は、一部には、その高度な特異性、限られたオフターゲット効果、および優れた安全性プロファイルのために、成長している薬剤クラスであり続けている。本明細書に記載の抗体、組成物および製剤は、インフルエンザウイルスを中和し、それによってインフルエンザ感染を治療するために使用することができる。

したがって、一態様において、本明細書に記載の抗体は、インフルエンザウイルスを治療するために使用することができる。インフルエンザウイルスの中和は、（ｉ）インフルエンザウイルスの標的細胞への結合を阻害する、（ｉｉ）標的細胞によるインフルエンザウイルスの取り込みを阻害する、（ｉｉｉ）インフルエンザウイルスの複製を阻害する、および（ｉｖ）感染細胞からのインフルエンザウイルス粒子の放出を阻害することによって行うことができる。当業者は、インフルエンザウイルスの中和を評価するための任意のアッセイを実施する能力を有する。特に、抗体の中和特性は、様々な試験によって評価でき、それらは全て、（ｉ）インフルエンザウイルスの標的細胞への結合の阻害、（ｉｉ）標的細胞によるインフルエンザウイルスの取り込みの阻害、（ｉｉｉ）インフルエンザウイルス複製の阻害、および（ｉｖ）感染細胞からのインフルエンザウイルス粒子の放出の阻害の結果を評価することができる。換言すると、異なる試験を実施して、同じ結果、すなわち、インフルエンザウイルスの感染力の喪失が観察される可能性がある。したがって、一実施形態において、本発明は、治療有効量の本明細書に記載の本発明の抗体を対象に投与することを含む、対象におけるインフルエンザウイルスを中和する方法を提供する。

本発明の別の態様は、インフルエンザ関連疾患を治療する方法を提供する。そのような方法には、治療的（インフルエンザ感染後）および予防的（インフルエンザ曝露、感染または病態の前）が含まれる。例えば、インフルエンザ感染のために個体を治療する治療的および予防的方法は、インフルエンザ感染または病態を有するまたは有するリスクのある個体の治療、インフルエンザ感染を有する個体の治療、ならびに、個体におけるインフルエンザ感染の可能性を減少もしくは減少させるため、インフルエンザ感染に対する個体の感受性を減少もしくは低下させるため、または個体におけるインフルエンザ感染を阻害もしくは予防するため、および感染した個体から未感染の個体へのインフルエンザの伝播を減少させる、低下させる、阻害または抑制するために、インフルエンザ感染から個体を保護する方法を含む。そのような方法は、インフルエンザ感染または病態を有するまたは有するリスクのある個体を治療的または予防的に治療（ワクチン接種または免疫）するために、本発明の抗体または本明細書に開示される抗体を含む組成物を投与することを含む。したがって、方法は、インフルエンザ感染または病態を治療するか、または感染からの保護（例えば、予防的保護）を個体に提供することができる。

一実施形態において、インフルエンザ関連疾患を治療する方法は、インフルエンザ感染または病態に関連する１つ以上の生理学的状態または症状を軽減し、それによってインフルエンザ関連疾患を治療するのに十分な量で、本明細書に開示される抗体または治療用組成物を、それを必要とする個体に投与することを含む。

一実施形態において、本明細書に開示される抗体または治療用組成物は、インフルエンザ関連疾患を治療するために使用される。本明細書に開示される抗体または治療用組成物の使用は、インフルエンザ感染または病態に関連する１つ以上の生理学的状態または症状を軽減することによってインフルエンザ関連疾患を治療する。この実施形態の態様において、本明細書に開示される抗体または治療用組成物の投与は、インフルエンザ感染または病態に関連する１つ以上の生理学的状態または症状を軽減し、それによってインフルエンザに基づく疾患を治療するのに十分な量である。この実施形態の他の態様において、本明細書に開示される抗体または治療用組成物の投与は、インフルエンザのクリアランスもしくは除去を増加、誘導、増強、増大、促進もしくは刺激するのに十分な量であるか、または、インフルエンザの別の個体への伝播を減少、低下、阻害、抑制、予防、制御、もしくは限定する。

インフルエンザ感染または病態に関連する１つ以上の生理学的状態または症状は、本明細書に開示される治療方法に応答するであろう。インフルエンザ感染または病態の症状は、感染の段階によって異なる。

本発明の別の態様において、本明細書に記載の抗体は、例えば、インフルエンザ感染の進行を監視する、そのような感染の治療に対する患者の反応を監視する等の際に使用するために、様々な検出方法で使用することができる。本開示は、個体から得られた生物学的試料中のノイラミニダーゼポリペプチドを検出する方法を提供する。この方法は一般的に以下を含む：ａ）生物学的試料を対象の抗ノイラミニダーゼ抗体と接触させる、およびｂ）試料中に存在するエピトープへの抗体の結合があればそれを検出する。場合によっては、抗体は検出可能な標識を含む。生物学的試料中に検出されたノイラミニダーゼポリペプチドのレベルは、インフルエンザ感染の段階、程度、または重症度の指標を提供することができる。生物学的試料中に検出されたノイラミニダーゼポリペプチドのレベルは、インフルエンザ感染の治療に対する個体の反応の指標を提供することができる。

本明細書に記載の抗体は、インフルエンザウイルスを中和し、それによってインフルエンザ感染を治療するために、他の抗インフルエンザウイルス抗体のうちの１つ以上と一緒に使用することができる。
定義
本明細書で言及される「抗体」という用語は、全抗体および任意の抗原結合断片またはその一本鎖を含む。全抗体は、ジスルフィド結合によって相互接続された少なくとも２つの重（Ｈ）鎖および２つの軽（Ｌ）鎖を含む糖タンパク質である。各重鎖は、重鎖可変領域（本明細書ではＶ_Ｈと略される）および重鎖定常領域から構成される。重鎖定常領域は、Ｃ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２、およびＣ_Ｈ３の３つのドメインから構成される。各軽鎖は、軽鎖可変領域（本明細書ではＶ_Ｌと略される）および軽鎖定常領域から構成される。軽鎖定常領域は１つのドメイン、Ｃ_Ｌから構成される。Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌ領域は、より保存されたフレームワーク領域（ＦＲ）と称される領域の間に散在する、相補性決定領域（ＣＤＲ）と称される超可変領域にさらに細分化することができる。各Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌは、アミノ末端からカルボキシ末端まで配置された、３つのＣＤＲおよび４つのＦＲからなる：ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４。重鎖可変領域のＣＤＲおよびＦＲは、ＨＦＲ１、ＨＣＤＲ１、ＨＦＲ２、ＨＣＤＲ２、ＨＦＲ３、ＨＣＤＲ３、ＨＦＲ４である。軽鎖可変領域のＣＤＲおよびＦＲは、ＬＦＲ１、ＬＣＤＲ１、ＬＦＲ２、ＬＣＤＲ２、ＬＦＲ３、ＬＣＤＲ３、ＬＦＲ４である。重鎖および軽鎖の可変領域は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。抗体の定常領域は、免疫系の様々な細胞（例えば、エフェクター細胞）および古典的な補体系の第１の成分（ＣＩｑ）を含む、宿主組織または因子への免疫グロブリンの結合を媒介することができる。

本明細書で使用される、抗体の「抗原結合断片または部分」（または単に「抗体断片または部分」）という用語は、抗原（例えば、インフルエンザＡまたはＢウイルスのノイラミニダーゼ）に特異的に結合する能力を保持する抗体の１つまたは複数の断片を指す。抗体の抗原結合機能は、完全長抗体の断片によって行われ得ることが示されている。抗体の「抗原結合断片または部分」という用語に包含される結合断片の例として、（ｉ）Ｆａｂ断片、Ｖ_Ｌ、Ｖ_Ｈ、Ｃ_Ｌ、およびＣ_Ｈ１ドメインから成る一価の断片；（ｉｉ）Ｆ（ａｂ’）２断片、ヒンジ領域でジスルフィド架橋によって結合される２つのＦａｂ断片を含む２価の断片；（ｉｉｉ）Ｆａｂ’断片、Ｆａｂと事実上同じであるが、ヒンジ領域の一部を有する（ＦＵＮＤＡＭＥＮＴＡＬ ＩＭＭＵＮＯＬＯＧＹ（Ｐａｕｌ ｅｄ．，３^ｒｄ ｅｄ．１９９３）を参照）；１９９３））；（ＩＶ）Ｖ_ＨおよびＣ_Ｈ１ドメインからなるＦｄ断片；（ｖ）抗体の単一アームのＶ_ＬおよびＶＨドメインからなるＦｖ断片、（ｖｉ）ＶＨからなるｄＡｂ断片（Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．，（１９８９）Ｎａｔｕｒｅ ３４１：５４４－５４６）ドメイン；（ｖｉｉ）単離されたＣＤＲ；ならびに（ｖｉｉｉ）ナノボディ、単一の可変ドメインおよび２つの定常ドメインを含む重鎖可変領域が挙げられる。さらに、Ｆｖ断片の２つのドメインであるＶＬとＶＨは別々の遺伝子によってコードされるが、組換え法を用いて、ＶＬおよびＶＨ領域が対を成して一価の分子を形成する単一タンパク鎖（一本鎖ＦｖまたはｓｃＦｖとして知られる）として作製することができる合成リンカーによってそれらを結合させることができる：例えば、Ｂｉｒｄ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４２：４２３－４２６；およびＨｕｓｔｏｎ ｅｔ ａｌ．（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５：５８７９－５８８３）を参照されたい。そのような一本鎖抗体もまた、抗体の「抗原結合断片または部分」という用語に包含されることが意図される。これらの抗体断片は、当業者に既知の従来の技術を使用して得られ、断片は、インタクトな抗体の場合と同じ様式で有用性についてスクリーニングされる。

本明細書で使用される「単離された抗体」は、異なる抗原特異性を有する、他の抗体を実質的に含まない抗体を指すことを意図する（例えば、インフルエンザＡまたはＢウイルスのノイラミニダーゼに特異的に結合する単離された抗体は、ノイラミニダーゼ以外の抗原に特異的に結合する抗体を実質的に含まない）。単離された抗体は、他の細胞物質および／または化学物質を実質的に含まなくてもよい。

本明細書で使用される「モノクローナル抗体」または「モノクローナル抗体組成物」という用語は、単一分子組成の抗体分子の調製物を指す。モノクローナル抗体組成物は、特定のエピトープに対して単一の結合特異性および親和性を示す。

「ヒト抗体」という用語は、フレームワークおよびＣＤＲ領域の両方がヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来する可変領域を有する抗体を含むことを意図する。さらに、抗体が定常領域を含む場合、その定常領域もヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来する。本発明のヒト抗体は、ヒト生殖系列免疫グロブリン配列によってコードされないアミノ酸残基（例えば、インビトロでのランダムもしくは部位特異的突然変異誘発によって、またはインビボでの体細胞突然変異によって導入される突然変異）を含むことができる。しかしながら、本明細書で使用される「ヒト抗体」という用語は、マウス等の別の哺乳動物種の生殖系列に由来するＣＤＲ配列がヒトフレームワーク配列に移植されている抗体を含むことは意図しない。

「ヒトモノクローナル抗体」という用語は、フレームワーク領域とＣＤＲ領域の両方がヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来する可変領域を有する、単一の結合特異性を示す抗体を指す。一実施形態において、ヒトモノクローナル抗体は、トランスジェニック非ヒト動物、例えば、トランスジェニックマウスから得られたＢ細胞を含むハイブリドーマであって、不死化細胞に融合されたヒト重鎖導入遺伝子および軽鎖導入遺伝子を含むゲノムを有するハイブリドーマによって産生され得る。

本明細書で使用される「組換えヒト抗体」という用語は、組換え手段によって調製、発現、作成、または単離される全てのヒト抗体、例えば（ａ）ヒト免疫グロブリン遺伝子を遺伝子導入または染色体導入した動物（例えば、マウス）またはそれから調製されたハイブリドーマから単離された抗体（以下でさらに説明）、（ｂ）ヒト抗体を発現するように形質転換された宿主細胞から、例えばトランスフェクトーマから単離された抗体、（ｃ）組換えコンビナトリアルヒト抗体ライブラリーから単離された抗体、および（ｄ）ヒト免疫グロブリン遺伝子配列を他のＤＮＡ配列にスプライシングすることに関与する任意の他の手段によって調製、発現、作成または単離された抗体。そのような組換えヒト抗体は、フレームワークおよびＣＤＲ領域がヒト生殖系列免疫グロブリン配列に由来する可変領域を有する。しかしながら、特定の実施形態において、そのような組換えヒト抗体は、インビトロ突然変異誘発（または、ヒトＩｇ配列を遺伝子導入した動物が使用される場合、インビボ体細胞突然変異誘発）に供することができ、したがって、組換え抗体のＶ_ＨおよびＶ_Ｌ領域のアミノ酸配列が、ヒト生殖系列Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌ配列に由来し、関連しているが、天然ではインビボでのヒト抗体生殖系列レパートリー内に自然には存在しない可能性がある配列である。

「アイソタイプ」という用語は、重鎖定常領域遺伝子によってコードされる抗体クラス（例えば、ＩｇＭまたはＩｇＧ１）を指す。「抗原を認識する抗体」および「抗原に特異的な抗体」という句は、本明細書では「抗原に特異的に結合する抗体」という用語と互換的に使用される。

「ヒト抗体誘導体」という用語は、ヒト抗体の任意の修飾形態、例えば、抗体と別の薬剤または抗体との共役を指す。「ヒト化抗体」という用語は、マウス等の別の哺乳動物種の生殖系列に由来するＣＤＲ配列がヒトフレームワーク配列に移植されている抗体を指すことを意図する。ヒトフレームワーク配列内でさらなるフレームワーク領域の修飾が行われてもよい。

「キメラ抗体」という用語は、可変領域配列が１つの種に由来し、定常領域配列が別の種に由来する抗体、例えば、可変領域配列がマウス抗体に由来する抗体に由来し、定常領域配列がヒト抗体に由来する抗体を指すことを意図する。この用語はまた、その可変領域配列またはＣＤＲ（複数可）が１つの供給源（例えば、ＩｇＡ１抗体）に由来し、定常領域配列またはＦｃが異なる供給源（例えば、異なる抗体、例えば、ＩｇＧ、ＩｇＡ２、ＩｇＤ、ＩｇＥまたはＩｇＭ抗体など）に由来する抗体を指す場合もある。

本明細書で使用される場合、「親和性」という用語は、分子（例えば、抗体）の単一結合部位とその結合パートナー（例えば、抗原）との間の非共有結合的な相互作用の全体的な強さを指す。別段の指示がない限り、本明細書で使用される場合、「結合親和性」は、結合対のメンバー（例えば、抗体と抗原）間の１：１の相互作用を反映する固有の結合親和性を指す。分子ＸのそのパートナーＹに対する親和性は、一般に解離定数（ＫＤ）で表すことができる。親和性は、本明細書に記載されているものを含む、当該技術分野で既知の一般的な方法によって測定することができる。

本明細書で使用される場合、「インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼに特異的に結合する」抗体は、インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼに結合するが、非インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼには実質的に結合しない抗体を指す。

好ましくは、抗体は、「高親和性」で、すなわち、１×１０^－７Ｍ以下、より好ましくは５×１０^－８Ｍ以下、より好ましくは３×１０^－８Ｍ以下、１×１０^－８Ｍ以下、より好ましくは５×１０^－９Ｍ以下、またはさらにより好ましくは１×１０^－９Ｍ以下のＫＤでノイラミニダーゼに結合する。本明細書で使用される場合、タンパク質または細胞に「実質的に結合しない」という用語は、タンパク質または細胞に結合しないまたは高い親和性で結合しないこと、すなわち、１×１０^－６Ｍ以上、より好ましくは１×１０^－５Ｍ以上、より好ましくは１×１０^－４Ｍ以上、より好ましくは１×１０^－３Ｍ以上、さらにより好ましくは１×１０^－２Ｍ以上のＫＤでタンパク質または細胞に結合することを意味する
本明細書で使用される「Ｋａｓｓｏｃ」または「Ｋａ」という用語は、特定の抗体－抗原相互作用の会合速度を指すことを意図し、一方、本明細書で使用される「Ｋｄｉｓ」または「Ｋｄ」という用語は、特定の抗体－抗原相互作用の解離速度を指すことを意図する。本明細書で使用される「ＫＤ」という用語は、Ｋａに対するＫｄの比（すなわち、Ｋｄ／Ｋａ）から得られ、モル濃度（Ｍ）として表される解離定数を指すことを意図する。抗体のＫＤ値は、当該技術分野で十分に確立された方法を用いて決定することができる。抗体のＫＤを決定するための好ましい方法は、表面プラズモン共鳴を使用すること、好ましくは、Ｂｉａｃｏｒｅ（登録商標）システム等のバイオセンサーシステムを使用することによるものである。

本明細書で使用される「エピトープ」という用語は、パラトープとして知られる抗体分子の可変領域内の特異的抗原結合部位と相互作用する抗原決定基を指す。単一の抗原が１つより多くのエピトープを有する場合がある。したがって、異なる抗体は、抗原上の異なる領域に結合する可能性があり、異なる生物学的効果を有し得る。「エピトープ」という用語はまた、Ｂ細胞および／またはＴ細胞が応答する抗原上の部位も指す。また、抗体が結合する抗原の領域も指す。エピトープは、構造的または機能的として定義され得る。機能性エピトープは、一般に構造的エピトープのサブセットであり、相互作用の親和性に直接寄与する残基を有する。エピトープはまた、立体配座であってもよく、すなわち、非線形アミノ酸から構成され得る。特定の実施形態において、エピトープは、アミノ酸、糖側鎖、ホスホリル基、またはスルホニル基等の分子の化学的に活性な表面基である決定基を含んでもよく、特定の実施形態において、特定の三次元構造特性および／または特定の電荷特性を有し得る。エピトープは、典型的には、固有の空間配置に、少なくとも３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、または１５個のアミノ酸を含む。どのエピトープが所与の抗体によって結合されるかを決定するための方法（すなわち、エピトープマッピング）は当該技術分野で周知であり、例えば、ノイラミニダーゼタンパク質からの重複または隣接ペプチドが所与の抗体との反応性について試験される免疫ブロット法および免疫沈降法を含む。エピトープの空間配置を決定する方法は、当該技術分野および本明細書に記載の技術、例えば、Ｘ線結晶学および２次元核磁気共鳴を含む（例えば、Ｅｐｉｔｏｐｅ Ｍａｐｐｉｎｇ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．６６，Ｇ．Ｅ．Ｍｏｒｒｉｓ，Ｅｄ．（１９９６）を参照）。

「エピトープマッピング」という用語は、抗体－抗原認識のための分子決定基の同定のプロセスを指す。

抗体または抗体断片に関する「エピトープに結合する」または「エピトープを認識する」という用語は、抗原内のアミノ酸の連続または不連続セグメントを指す。当業者は、これらの用語が、抗体または抗体断片がエピトープ配列内の全てのアミノ酸と直接接触していることを必ずしも意味しないことを理解している。

２つ以上の抗体に関する「同じエピトープに結合する」という用語は、抗体が、アミノ酸の同じ、重複する、または取り囲む連続または不連続セグメントに結合することを意味する。当業者は、「同じエピトープに結合する」という句が、抗体が全く同じアミノ酸に結合または接触することを必ずしも意味しないことを理解している。抗体が接触する正確なアミノ酸は異なり得る。例えば、第１の抗体は、第２の抗体によって結合されたアミノ酸のセグメントによって完全に取り囲まれたアミノ酸のセグメントに結合することができる。別の例では、第１の抗体は、第２の抗体によって結合された１つ以上のセグメントと大幅に重複するアミノ酸の１つ以上のセグメントに結合する。本明細書の目的のために、そのような抗体は「同じエピトープに結合する」と見なされる。

「標的への結合について他の抗体と競合する」抗体は、標的への他の抗体の結合を（部分的または完全に）阻害する抗体を指す。２つの抗体が標的への結合について互いに競合するかどうか、すなわち、一方の抗体が他方の抗体の標的への結合を阻害するかどうか、およびその程度は、既知の競合実験を用いて決定することができる。特定の実施形態において、抗体は、標的への別の抗体の結合と競合し、少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％阻害する。阻害または競合のレベルは、どの抗体が「ブロッキング抗体」（すなわち、最初に標的とインキュベートされる寒冷抗体）であるかに応じて異なり得る。競合アッセイは、例えば、Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂ Ｐｒｏｔｏｃ；２００６；ｄｏｉ：１０．１１０１／ｐｄｂ．ｐｒｏｔ４２７７、またはＣｈａｐｔｅｒ １１ ｏｆ”Ｕｓｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ”ｂｙ Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，ＵＳＡ １９９９に記載されるように実施することができる。競合する抗体は、同じエピトープ、重複するエピトープ、または隣接するエピトープに結合する（例えば、立体障害によって証明されるように）。他の競合的結合アッセイとして以下が挙げられる：固相直接または間接ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）、固相直接または間接酵素免疫測定法（ＥＩＡ）、サンドイッチ競合アッセイ（Ｓｔａｈｌｉ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ９：２４２（１９８３）を参照）、固相直接ビオチン－アビジンＥＩＡ（Ｋｉｒｋｌａｎｄ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７：３６１４（１９８６）を参照）、固相直接標識アッセイ、固相直接標識サンドイッチアッセイ（Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｌａｎｅ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（１９８８）を参照）、１－１２５標識を使用した固相直接ラベルＲＩＡ（Ｍｏｒｅｌ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２５（１）：７（１９８８）を参照）、固相直接ビオチン－アビジンＥＩＡ（Ｃｈｅｕｎｇ ｅｔ ａｌ．，Ｖｉｒｏｌｏｇｙ １７６：５４６（１９９０））、および直接標識ＲＩＡ。（Ｍｏｌｄｅｎｈａｕｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．３２：７７（１９９０））。

本明細書で使用される場合、「免疫応答」という用語は、外来物質に対する脊椎動物内の生物学的応答を指し、該応答が、これらの物質およびそれらによって引き起こされる疾患から生物を保護する。免疫応答は、免疫系の細胞（例えば、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、マクロファージ、好酸球、マスト細胞、樹状細胞または好中球）およびこれらの細胞のいずれかまたは肝臓によって産生される可溶性高分子（抗体、サイトカインおよび補体を含む）の作用によって媒介され、侵入する病原体、病原体に感染した細胞もしくは組織、癌性もしくは他の異常な細胞、または自己免疫もしくは病的炎症の場合、正常なヒト細胞もしくは組織の選択的標的化、結合、損傷、破壊および／または脊椎動物の体からの排除をもたらす免疫反応には、例えば、Ｔ細胞、例えば、エフェクターＴ細胞、またはＣＤ４＋もしくはＣＤ８＋Ｔ細胞等のＴｈ細胞の活性化または阻害、あるいはＴｒｅｇ細胞の阻害が含まれる。

本明細書で使用される「検出可能な標識」という用語は、放射性同位体、蛍光剤、化学発光体、発色団、酵素、酵素基質、酵素補因子、酵素阻害剤、発色団、色素、金属イオン、金属ゾル、リガンド（例えば、ビオチン、アビジン、ストレプトアビジンまたはハプテン）、挿入染料等を含むがこれらに限定されない、検出の可能な分子を指す。「蛍光剤」という用語は、検出可能な範囲の蛍光を示すことができる物質またはその一部を指す。

本明細書で使用される場合、「対象」という用語は動物を指す。好ましくは、動物は哺乳動物である。対象はまた、例えば、霊長類（例えば、ヒト）、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、イヌ、ネコ、ウサギ、ラット、マウス、魚、鳥等を指す。好ましい実施形態において、対象はヒトである。

本明細書で使用される場合、本発明の化合物の「治療有効量」という用語は、対象の生物学的または医学的応答を誘発する、または症状を改善し、疾患の進行を緩徐にするもしくは遅延させる本発明の化合物の量を指す。一実施形態において、この用語は、微生物のコロニー形成または感染を阻害または低減する量を指す。一実施形態において、この用語は、感染を阻害もしくは低減する量、または細菌バイオフィルムの形成を防止もしくは破壊する量を指す。単独で投与される個々の活性成分に適用される場合、この用語はその成分のみを指す。組み合わせに適用される場合、この用語は、組み合わせて、連続してまたは同時に投与されるかどうかにかかわらず、治療効果をもたらす活性成分を合わせた量を指す。

本明細書で使用される場合、「薬学的に許容される担体または賦形剤」という用語は、組成物の活性成分（複数可）の生物学的活性の有効性を妨害せず、それが投与される濃度で宿主に対して過度に誘導ではない担体媒体または賦形剤を指す。本発明の文脈において、薬学的に許容される担体または賦形剤は、好ましくは局所製剤に適している。この用語には、限定されないが、溶媒、安定剤、可溶化剤、張度増強剤、構造形成剤、懸濁剤、分散剤、キレート化剤、乳化剤、消泡剤、軟膏基剤、皮膚軟化剤、皮膚保護剤、ゲル形成剤、増粘剤、ｐＨ調整剤、防腐剤、浸透増強剤、錯化剤、潤滑剤、粘滑剤、粘度増強剤、生体接着性ポリマー、またはそれらの組み合わせが含まれる。薬学的に活性な物質の製剤化のためのそのような薬剤の使用は、当該技術分野で周知である（例えば、その全体が参照により本明細書に組み込まれる”Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ”，Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎ，１８ｔｈ Ｅｄ．，１９９０，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．：Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡを参照）。

本明細書で使用される場合、任意の疾患または障害を「治療する」または「治療」という用語は、一実施形態において、疾患または障害を改善すること（すなわち、疾患の発生またはその臨床症状の少なくとも１つの停止または低減すること）を指す。別の実施形態において、「治療する」または「治療」は、患者が認識することができない少なくとも１つの物理的パラメータを改善することを指す。さらに別の実施形態において、「治療する」または「治療」は、物理的に（例えば、識別可能な症状の安定化）、生理学的に（例えば、物理的パラメータの安定化）、またはその両方のいずれかで、疾患または障害を調節することを指す。さらに別の実施形態において、「治療する」または「治療」は、疾患または障害の発症または発生または進行を予防または遅延させることを指す。

本明細書で使用される場合、本発明の文脈で（特に特許請求の範囲に関連して）使用される用語「ａ」、「ａｎ」、「ｔｈｅ」および同様の用語は、本明細書に別段の指示がない限り、または文脈によって明らかに矛盾しない限り、単数形および複数形の両方を包含すると解釈されるべきである。本明細書における値の範囲の列挙は、その範囲内にある各々の別個の値を個々に参照する簡略的な方法として機能することを意図するものである。本明細書に別段の指示がない限り、個々の値は、それが本明細書に個別に記載されているかのように本明細書に組み込まれる。本明細書に記載の全ての方法は、本明細書に別段の指示がない限り、または文脈によって明らかに矛盾しない限り、任意の適切な順序で実行することができる。本明細書に提供されるありとあらゆる例、または例示的な言語（例えば「等」）の使用は、単に本発明をより明確にすることを意図しており、別様に特許請求される本発明の範囲に制限を課すものではない。本明細書のいかなる言語も、本発明の実施に不可欠な特許請求されていない要素を示すものとして解釈されるべきではない。

「約」という用語は、所与の値または範囲の１０％以内、好ましくは５％以内、より好ましくは１％以内を指す。あるいは、「約」という用語は、当業者によって考慮される場合、平均の許容可能な標準誤差内を指す。

実施例１
この実施例では、以下の例２～７で使用される材料と方法について説明する。

対象。ロチェスター大学医療センター（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｒｏｃｈｅｓｔｅｒ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｃｅｎｔｅｒ）で、標準治療として２０１４年～２０１５年の季節性ＱＵＡＤＲＩＶＡＬＥＮＴ ＩＩＶ［ＳＡＮＯＦＩ ＰＡＳＴＥＵＲ ＦＬＵＺＯＮＥ；Ａ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０７／２００９ Ｘ－１７９Ａ（Ｈ１Ｎ１）ｐｄｍ０９、Ａ／Ｔｅｘａｓ／５０／２０１２ Ｘ－２２３Ａ（Ｈ３Ｎ２）、Ｂ／Ｍａｓｓａｃｈｕｓｅｔｔｓ／２／２０１２、およびＢ／Ｂｒｉｓｂａｎｅ／６０／２００８ウイルス］を投与する前、その７日後、および１か月後に、１７人の健康な成人対象から末梢血を採取した。後腸骨稜から体積５０ｍｌの骨髄穿刺液を得た。対象は、署名済みの書面によるインフォームドコンセントを提供した。全ての手順および方法は、ロチェスター大学医療センターの研究対象審査委員会によって承認され、全ての実験は、関連するガイドラインおよび規制に従って実施された。末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）および血漿は、細胞調製チューブ（ＣＰＴ）（ＢＥＣＴＯＮ，ＤＩＣＫＩＮＳＯＮ、Ｆｒａｎｋｌｉｎ Ｌａｋｅｓ，ＮＪ，ＵＳＡ）を使用して単離した。

細胞とウイルス。モック；ＡＴＣＣ ＣＣＬ－３４）およびヒト胎児腎臓（ＨＥＫ２９３Ｔ；ＡＴＣＣ ＣＲＬ－１１２６８）細胞は、５％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）および１％ＰＳＧ（ペニシリン、１００単位／ｍｌ；ストレプトマイシン、１００μｇ／ｍｌ；Ｌ－グルタミン、２ｍＭ）を添加したダルベッコの改変イーグル培地（ＤＭＥＭ：ＭＥＤＩＡＴＥＣＨ，ＩＮＣ）で、３７℃、５％ＣＯ_２で培養した。

組換えインフルエンザウイルスＡ／カリフォルニア／４＿ＮＹＩＣＥ＿Ｅ３／２００９（ｐＨ１Ｎ１）、Ｂ／山形／１６／１９８８、およびＢ／ブリスベン／６０／２００８のＷＴウイルスまたはｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルスは以前に記載されている。Ｂ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスからの６つの内部遺伝子（ＰＢ２、ＰＢ１、ＰＡ、ＮＰ、Ｍ、およびＮＳ－ｍＣｈｅｒｒｙ）ならびにＢ／山形／１６／１９８８（ｒｅＢ／山形／１６／１９８８ ｍＣｈｅｒｒｙ）ウイルスからのＨＡおよびＮＡを含むリアソータントは、プラスミドベースの逆遺伝学技術を用いて生成した。ＮＡにアミノ酸置換Ｅ１１７ＡまたはＨ２７３Ｙ（Ｅ１１９ＡまたはＨ２７４Ｙ［Ｎ２ナンバリング］）を含む２つの組換えＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルス株は、プラスミドベースの逆遺伝学技術を使用して生成した。ＩＢＶ Ｂ／マレーシア／２５０６／２００４（ＮＲ－９７２３）、Ｂ／オハイオ／０１／２００５（ＮＲ－４１８０１）、Ｂ／ネバダ／０３／２０１１（ＮＲ－４４０２３）、Ｂ／シドニー／５０７／２００６（ＮＲ－３６５２６）、Ｂ／テキサス／０６／２０１１（ＮＲ－４４０２４）、およびＢ／リー／１９４０（ＮＲ－３１７８）はＢＥＩ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳから入手し、ＩＢＶ Ｂ／ウィスコンシン／０１／２０１０（ＦＲ－８０６）はＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ ＲＥＡＧＥＮＴ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳ（ＩＲＲ）から入手した。３３℃でＭＤＣＫ細胞においてウイルス滴定を行い、ストックを作製した。感染のために、ウイルスストックをリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）－０．３％ウシアルブミン（ＢＡ）－１％ペニシリン－ストレプトマイシン（ＰＳ）（ＰＢＳ／ＢＡ／ＰＳ）で希釈した。ウイルス感染を行った後、細胞は、ＤＭＥＭ、０．３％ＢＡ、１％ＰＳＧ、および１μｇ／ｍｌトシルスルホニルフェニルアラニルクロロメチルケトン（ＴＰＣＫ）処理トリプシン（ＳＩＧＭＡ）を含む感染後（ｐ．ｉ．）培地に維持した。ウイルス力価は、以前に記載されたように、ＭＤＣＫ細胞および抗ＨＡヤギポリクローナル抗体（ＢＥＩ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳ；ＮＲ－３１６５）を使用した免疫焦点アッセイによって決定し、力価を１ミリリットル当たりのＦＦＵのレベルとして表す。

ヒトモノクローナル抗体の生成とスクリーニング。免疫の７日後に採取された新鮮なＰＢＭＣを、以前に記載されたようにフローサイトメトリーのために染色した。ＦＡＣＳＡＲＩＡセルソーター（ＢＤ ＢＩＯＳＣＩＥＮＣＥＳ）を用いて、形質芽細胞（ＣＤ１９＋ＩｇＤ－ＣＤ３８＋ＣＤ２７＋＋）の直接単一細胞選別を行い、ウェル当たり０．５×ＰＢＳ、１０ｍＭジチオスレイトール（ＤＴＴ）（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ）、および８Ｕ ＲＩＢＯＬＯＣＫ（ＴＨＥＲＭＯ ＦＩＳＨＥＲ）ＲＮａｓｅ阻害剤の４μｌの混合物を含む９６ウェルＰＣＲプレート（ＢＩＯ－ＲＡＤ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，ＣＡ）に入れた。プレートをＡＬＵＭＡＳＥＡＬ９６シーリングホイル（ＥＸＣＥＬ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ，Ｉｎｃ．）で密閉し、逆転写ＰＣＲ（ＲＴ－ＰＣＲ）に使用するまで－８０℃で瞬間凍結して保存した。ｃＤＮＡを合成し、ＩｇＨ、Ｉｇλ、およびＩｇκＶ遺伝子転写産物に対してネステッドＰＣＲを行った後、以前に記載されたように線形Ｉｇカセットを作製した。ヒト胎児腎臓細胞（ＨＥＫ２９３Ｔ；ＡＴＣＣ ＣＲＬ－１１２６８）を、９６ウェル平底プレートに、ＤＭＥＭ－１０％ＨＹＣＬＯＮＥ ＦＥＴＡＬＣＬＯＮＥ ＩＩ（ＧＥ ＨＥＡＬＴＨＣＡＲＥ ＬＩＦＥ ＳＣＩＥＮＣＥＳ、Ｌｏｇａｎ，ＵＴ）－１×抗生物質／抗真菌剤（ＧＩＢＣＯ，ＬＩＦＥ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）中２７，０００細胞／ウェルで播種した。３７℃、５％ＣＯ_２でのインキュベーションの４８時間以内に、培養物は７０％～８０％コンフルエンスに達した。培地をウェル当たり１００μｌのＤＭＥＭ－２．５％ＨＹＣＬＯＮＥ ＦＥＴＡＬＣＬＯＮＥ ＩＩ－１ｘ抗生物質／抗真菌剤（２．５％ＦＣＩＩ）に交換した。精製された線形カセットを、ＪＥＴＰＲＩＭＥトランスフェクション試薬（ＰＯＬＹＰＬＵＳ、Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ＮＹ）を使用してトランスフェクトした。約４８時間後、さらに１５０μｌの２．５％ＦＣＩＩを各ウェルに添加し、プレートをさらに３日間インキュベートした後、分泌されたＩｇＧを含む培地を回収した。回収した培地を、０．５μｇ／ｍｌの組換えＩＢＶ ＮＡタンパク質（Ｂ／フロリダ／０４／２００９；ＢＥＩ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）でコーティングしたＥＬＩＳＡプレート（ＮＵＮＣ ＭＡＸＩＳＯＲＰ；ＴＨＥＲＭＯ ＦＩＳＨＥＲ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ、Ｒｏｃｈｅｓｔｅｒ，ＮＹ）でスクリーニングし、西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）－結合抗ヒトＩｇＧ（ＪＡＣＫＳＯＮ ＩＭＭＵＮＯＲＥＳＥＡＲＣＨ、Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）で検出した。バックグラウンドレベルを差し引くために、６５０ｎｍでの光学密度（ＯＤ）の読み取り値を用いてプレートを４５０ｎｍで読み取った。ウェルは、陰性対照（ＰＢＳ）のＯＤの３倍を超えるＯＤ値で「陽性」と指定した。

陽性のｈＭＡｂを含む永久プラスミドを生成するために、精製されたＰＣＲ産物をＧＥＮＥＷＩＺＩＮＣ（Ｓｏｕｔｈ Ｐｌａｉｎｆｉｅｌｄ，ＮＪ）で配列決定し、ＩＧＢＬＡＳＴおよびＩＭＧＴ／Ｖ－ＱＵＥＳＴによって分析し、最も高い同一性を有する生殖系列Ｖ（Ｄ）Ｊ遺伝子セグメントを同定し、配列特性を決定した。発現ベクターのクローニングおよびヒトＨＥＫ２９３Ｔ細胞のトランスフェクションは、以前に記載されたように行った。ＩｇＧは、ＭＡＧＮＡタンパク質ＧまたはＡビーズ（ＰＲＯＭＥＧＡ、Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）を用いて培養上清から精製した。１０６９Ｄ６はヒトＩｇＧ１ＭＡｂであり、アイソタイプ対照として使用した。

結合特性（ＥＬＩＳＡおよび結合力）。ＥＬＩＳＡプレート（ＮＵＮＣ ＭＡＸＩＳＯＲＰ；ＴＨＥＲＭＯ ＦＩＳＨＥＲ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ、Ｇｒａｎｄ Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）を１μｇ／ｍｌの組換えＮＡまたはＨＡタンパク質（ＢＥＩ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）または０．５μｇ／ｍｌの呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）融合（Ｆ）タンパク質でコーティングしまし、ｈＭＡｂまたは血漿をＰＢＳで希釈し、ＨＲＰ結合抗ヒトＩｇＧ（ＪＡＣＫＳＯＮ ＩＭＭＵＮＯ－ＲＥＳＥＡＲＣＨ、Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）で結合を検出した。血漿を５倍希釈（１：１００～１：６２，５００）で試験し、曲線下面積（ＡＵＣ）値を決定した。選択したＥＬＩＳＡでは、尿素の濃度を増加させながらＥＬＩＳＡプレートに添加し、プレートを室温で１５分間インキュベートした後、抗ＩｇＧ－ＨＲＰで検出して結合力を評価した。

ウイルス中和および蛍光ベースのマイクロ中和アッセイ。ウイルス中和アッセイは、以前に記載されたようにＷＴウイルスおよびｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルスを使用して行った。端的に述べると、ＭＤＣＫ細胞のコンフルエントな単層（５×１０^４細胞／ウェル、９６ウェルプレートフォーマット、３連）を２００ＦＦＵの示されるウイルスに感染させた。１時間のウイルス吸着後、細胞を１μｇ／ｍｌのＴＰＣＫ処理トリプシンおよび示されるｈＭＡｂの２倍段階希釈液（開始濃度１０μｇ／ｍｌ）を添加したＰＩ培地で３３℃に維持した。蛍光ベースのマイクロ中和アッセイでは、感染後４８～７２時間に、細胞単層をＰＢＳで洗浄した後、蛍光プレートリーダー（ＤＴＸ－８８０；ＢＥＣＴＯＮ ＤＩＣＫＥＮＳＯＮ）を使用して赤色蛍光を定量化した。ｈＭＡｂの非存在下でのｍＣｈｅｒｒｙウイルス感染細胞の蛍光値を用いて１００％ウイルス感染を計算した。ウイルス感染してない細胞を使用して、蛍光バックグラウンドを計算した。ＷＴウイルスの中和は、感染後９６～１２０時間にクリスタルバイオレット染色によって決定した。中和の平均およびＳＤを計算するために３連のウェルを使用し、シグモイド用量反応曲線（ＧＲＡＰＨＰＡＤ ＰＲＩＳＭ、ｖ７．０）を用いてＩＣ_５０値を決定した。

酵素結合レクチンアッセイ（ＥＬＬＡ）。ウイルスＮＡの活性を阻害するＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの能力は、以前に記載されたように標準ＥＬＬＡを用いて測定した。端的に述べると、１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）（希釈緩衝液）を添加したダルベッコのＰＢＳ（ＤＰＢＳ）（ＧＩＢＣＯ）中で、ｈＭＡｂの２倍段階希釈液（開始濃度１μｇ／ｍｌ）を所定ウイルス濃度のＢ／ブリスベン／６０／２００８またはＢ／山形／１６／１９８８ＷＴウイルスとともに２時間、室温でプレインキュベートした。ウイルス－ｈＭＡｂ希釈液を５０μｇ／ｍｌのフェチュイン（ＳＩＧＭＡ）でコーティングされた９６ウェルプレートに添加し、３７℃で１８時間インキュベートした。次いで、プレートを０．０５％Ｔｗｅｅｎ ２０を含むＰＢＳで徹底的に洗浄し、希釈緩衝液中のＨＲＰ結合ピーナッツレクチン凝集素（ＳＩＧＭＡ）とともに室温で２時間インキュベートした。プレートをＰＢＳ－ＴＷＥＥＮで洗浄した後、反応を３’，５，５－テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）基質（ＢＩＯＬＥＧＥＮＤ）で室温で１５～２０分間展開し、２ＮＨ_２ ＳＯ_４で停止し、４５０ｎｍ（ＶＭＡＸキネティックマイクロプレートリーダー；ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＤＥＶＩＣＥＳ）で読み取った。ＩＣ５０は、シグモイド用量反応曲線（ＧＲＡＰＨＰＡＤ ＰＲＩＳＭ、ｖ７．０）を用いて決定した。

免疫蛍光アッセイ。ＭＤＣＫ細胞のコンフルエントな単層（２×１０^５細胞／ウェル、２４ウェルプレートフォーマット）を、示されるＷＴウイルスにモック感染または感染させた（感染多重度［ＭＯＩ］０．１）。感染後１７時間に、細胞を４％パラホルムアルデヒド（ＰＦＡ）で固定し、０．５％ＴＲＩＴＯＮＸ－１００－ＰＢＳを用いて室温で１５分間透過処理した。次いで、細胞を、１μｇ／ｍｌのＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂまたは対照としてのＩＡＶ ＨＡ ｈＭＡｂ ＫＰＦ１とともに３７℃で１時間インキュベートした。次いで、細胞をフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）結合二次抗ヒトＡｂ（ＤＡＫＯ）とともに３７℃で１時間インキュベートした。画像は、１０倍の対物レンズを備えた蛍光顕微鏡（ＯＬＹＭＰＵＳ ＩＸ８１）およびカメラ（ＱＩＭＡＧＩＮＧ、ＲＥＴＩＧＡ ２０００Ｒ）を使用して撮像した。

抗体分泌細胞の酵素結合免疫吸着スポット（ＥＬＩＳｐｏｔ）アッセイ。インフルエンザ抗原特異的抗体分泌細胞（ＡＳＣ）の頻度は、以前に記載されたようにＥＬＩＳｐｏｔアッセイによって測定した。端的に述べると、ＥＬＩＳｐｏｔアッセイプレートを組換えＮＡ（５μｇ／ｍｌＢ／フロリダ／０４／２００９またはＢ／ホンコン／３３０／２００１ウイルス；ＢＥＩ ＲＥＳＯＵＲＣＥＳ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ，ＵＳＡ）またはＦＬＵＺＯＮＥ ＩＩＶワクチン（６μｇ／ｍｌ、ＳＡＮＯＦＩ ＰＡＳＴＥＵＲ ＩＮＣ．、Ｓｗｉｆｔｗａｔｅｒ，ＰＡ，ＵＳＡ）のいずれかで一晩コーティングし、５００，０００または１００，０００ＰＢＭＣとともに３７℃で約４０時間インキュベートした。結合した抗体は、アルカリホスファターゼ結合抗ヒトＩｇＧ（ＪＡＣＫＳＯＮ ＩＭＭＵＮＯＲＥＳＥＡＲＣＨ）（１μｇ／ｍｌ）を用いて検出した。各ウェルのスポットは、ＣＴＬ免疫スポットリーダー（ＣＥＬＬＵＬＡＲ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ ＬＴＤ．、Ｓｈａｋｅｒ Ｈｅｉｇｈｔｓ，ＯＨ，ＵＳＡ）を使用して計数した。

マウスにおけるＮＡ特異的ｈＭＡｂの予防的および治療的保護活性。雌のＣ５７ＢＬ／６マウス（５～７週齢）は、国立がん研究所（ＮＣＩ）から購入し、特定病原体除去条件下でロチェスター大学の動物管理施設で飼育した。全ての動物プロトコルは、ロチェスター大学の動物資源委員会によって承認され、全米研究評議会の実験動物の管理と使用に関する指針の推奨事項に準拠していた。ウイルス感染のために、マウスを２，２，２－トリブロモエタノール（ＡＶＥＲＴＩＮ；２４０ｍｇ／ｋｇ体重）で腹腔麻酔し、次いで、１０^６ＦＦＵのインフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８ＷＴウイルスを最終体積３０μｌで鼻腔内接種した。ＮＡ ｈＭＡｂの予防効果を決定するために、感染の６時間前に、２０ｍｇ／ｋｇのｈＭＡｂ、無関係なアイソタイプ対照１０６９ Ｄ６ ｈＭＡｂ、またはＰＢＳをマウス（ｎ＝６）に腹腔内投与した。治療効果を調べるために、感染後２４時間に、２０ｍｇ／ｋｇの示されるＮＡｈＭＡｂ、アイソタイプ対照ＩｇＧ、またはＰＢＳをマウスの群（ｎ＝６）に腹腔内注射した。ウイルス複製は、感染後２日目と４日目に感染マウスの肺で測定されました。複製のレベルを決定するために、各群から３匹のマウスを致死量のアベルチンの投与および放血によって安楽死させ、肺を外科的に抽出して均質化した。ウイルス力価（ミリリットル当たりのＦＦＵ）は、上に示したように免疫焦点アッセイによって決定した。幾何平均力価とデータ表示は、ＧＲＡＰＨＰＡＤ ＰＲＩＳＭ（ｖ７．０）を使用して行った。

ディープシーケンシングによる免疫グロブリンレパートリー分析。ＰＢＭＣは、上記のようにＣＰＴに採取された全血から単離した。免疫の７日後に採取された試料に加えて、ワクチン接種の２ヶ月以上前、ワクチン接種の７週間後、およびワクチン接種の１５ヶ月以上後に採取された血液試料からもＰＢＭＣを単離した。最終的な血液試料では、約５，０００万個のＰＢＭＣを使用して、ビオチン化抗ＣＤ３、抗ＣＤ４、および抗ＣＤ１４抗体を、ネガティブセレクションの抗ビオチンマイクロビーズ（ＭＩＬＴＥＮＹＩ ＢＩＯＴＥＣ、Ａｕｂｕｒｎ，ＣＡ）とともに用いてＢ細胞を濃縮した。インフルエンザワクチン接種後１２ヶ月以上で骨髄穿刺液を採取し、ＦＩＣＯＬＬ－ＰＡＱＵＥ ＰＬＵＳ培地（ＧＥ ＨＥＡＬＴＨＣＡＲＥ ＢＩＯＳＣＩＥＮＣＥＳ、Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ，ＰＡ）に細胞を浮かべて単核細胞を単離した。次いで、約４，０００万個の細胞をＣＤ１３８マイクロビーズ（ＭＩＬＴＥＮＹＩ ＢＩＯＴＥＣ）とともに使用して、製造業者のプロトコルに従ってＣＤ１３８陽性画分を単離した。陽性画分全体をＲＬＴ緩衝液（ＱＩＡＧＥＮ、Ｈｉｌｄｅｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ、カタログ番号７９２１６）で溶解し、ＲＮＡ単離を行うことができるまで－８０℃で保存した。ＲＮＥＡＳＹ ＭＩＮＩＫＩＴ（ＱＩＡＧＥＮ）を使用して全ての試料からＲＮＡを単離し、ＤＮａｓｅ Ｉ（ＴＵＲＢＯＤＮＡ－ＦＲＥＥキット；ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、Ｖｉｌｎｉｕｓ，Ｌｉｔｈｕａｎｉａ）で処理し、ＱＳＣＲＩＰＴ ｃＤＮＡ合成キット（ＱＵＡＮＴＡＢＩＯ、Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）でｃＤＮＡを合成するために使用した。得られたｃＤＮＡを、以前に記載されたようにＰＬＡＴＩＮＵＭ ＴＡＱ高忠実度ポリメラーゼ（ＩＮＶＩＴＲＯＧＥＮ、Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を使用した後続のＰＣＲに使用した。ＶＨ３－１５（ＴＡＡＲＡＧＧＴＧＴＣＣＡＧＴＧＴ、配列番号７４）およびＶＨ３－２３（ＡＧＴＴＴＧＧＧＣＴＧＡＧＣＴＧＧＣＴＴ、配列番号７５）に特異的なフォワードプライマーを使用して、クローニングされたモノクローナル抗体の系統メンバーを検出するために、標的ＰＣＲを行った。ゲル抽出されたＰＣＲ産物は、ロチェスター大学ゲノミクス研究センターに提出され、そこで２ｎＭに正規化する前に、ＱＵＢＩＴ蛍光定量（ＴＨＥＲＭＯ ＦＩＳＨＥＲ）およびＢＩＯＡＮＡＬＹＺＥＲ（ＡＧＩＬＥＮＴ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ、Ｓａｎｔａ Ｃｌａｒａ，ＣＡ）サイジング、定量化、および品質管理を行い、ＭＩＳＥＱシステム（ＩＬＬＵＭＩＮＡ、Ｉｎｃ．、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）のためにフローセルへのハイブリダイゼーションおよびクラスター生成を行った。ペアエンドリード（３００×３２５ｂｐ）を作成した。配列分析および系統ツリーのアセンブリは、以前に記載されたように社内のカスタム分析パイプラインを使用して行った。全ての配列は、ＩＭＧＴ．ＯＲＧ／ＨＩＧＨＶＱＵＥＳＴを用いて整列させた。系統ツリーは、対応するＭＡｂ配列を含む系統（同一のＶＨ、ＪＨ、およびＨＣＤＲ３の長さと８５％以上のＨＣＤＲ３類似性を有する配列のクラスター）を同定することによって作成した。ＣＤ１３８骨髄試料から得られたシングルトンを除いて、特定のＶＤＪヌクレオチド配列（シングルトン）が１回出現する系統内の配列を除去した。得られた配列は、ＰＨＹＬＩＰのＰＲＯＴＰＡＲＳツール（バージョン３．６９５）を使用して分析し、設定１、４、および５をオンにした。次いで、社内のカスタムスクリプトを使用して出力ファイルを解析し、重複した推定される配列を個々のノードに集約し、ＣＹＴＯＳＣＡＰＥを使用して視覚化した。

統計分析。有意性は、ＧＲＡＰＨＰＡＤ ＰＲＩＳＩＭ、ｖ７．０を使用して決定した。血清結合抗体評価の結果の評価には対応のあるｔ検定を適用し、ＥＬＩＳＰＯＴ評価の結果の評価にはマンホイットニー検定を使用した。一元配置分散分析（ＡＮＯＶＡ）を使用して、インビボでのウイルス力価の統計的有意性を決定した。
実施例２
インフルエンザＮ２およびＮＢ特異的ヒトモノクローナル抗体を末梢血形質芽細胞から単離した。端的に述べると、免疫の１週間後に末梢血から形質芽細胞（ＣＤ１９＋ＩｇＤ－ＣＤ３８＋ＣＤ２７＋＋）を単一細胞選別し、ＲＴ－ＰＣＲに供して免疫グロブリン重鎖および軽鎖可変領域を増幅およびクローニングし、組換えｈｍＡｂを得た。ＨｍＡｂをＮＡ反応性についてＥＬＩＳＡによりスクリーニングした。３つのＮ２特異的ｈｍＡｂ（図１Ａ）および６つのＮＢ特異的ｈｍＡｂ（図１Ｂ）を、ＥＬＩＳＡによって複数のＮＡタンパク質への結合について試験した。図１Ｃに示されるように、ＮＡ Ｂ／ホンコン／３３０／２００１に対するＫＰＦ２の親和性は、ＫＰＦ２がチップに結合し、ＮＡが異なる濃度で流れ込んだ表面プラズモン共鳴によって決定した。

免疫グロブリン遺伝子の使用量および生殖系列からの突然変異は、配列決定およびＩＧＢＬＡＳＴ分析によって決定した。その結果を下の表に示す。

次いで、抗体のインビトロ中和活性を調べた。ＭＤＣＫ細胞を１００ＰＦＵの示されるウイルスに感染させ、１時間後にｈｍＡｂ希釈液を添加し、培養物を４通り４８～６０時間インキュベートした。ウイルス感染は、蛍光検出またはクリスタルバイオレット染色によって定量化した（Ｂ／山形／１６／８８）。図２Ａ～図２Ｃに示されるように、Ｎ２およびＮＢｈｍＡｂはインビトロで中和活性を示した。

ＮＢに特異的なｈｍＡｂがウイルス感染からの保護を付与するかどうかを調べるためにアッセイを実施した。Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ｎ＝６／群）に、２０ｍｇ／ｋｇのアイソタイプ対照またはＮＢ特異的ｈｍＡｂを腹腔内投与し、６時間後に１０６ＰＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスでチャレンジした。感染後２日目および４日目に肺ウイルスが測定された。図３に示されるように、ＮＢに特異的なｈｍＡｂは、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８感染からの保護を付与した。

Ｃ５７ＢＬ／６マウス（ｎ＝６／群）をＰＦＵのＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスでチャレンジした後、感染後２４時間に、２０ｍｇ／ｋｇのＩＣまたはＮＢ特異的ｈｍＡｂを腹腔内投与した。感染後２日目および４日目に肺ウイルスが測定された。図４に示されるように、ＮＢに特異的なｈｍＡｂは、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８感染に対して治療活性を有する。
実施例３
上記のように、ＩＩＶで誘導したＩＢＶ ＮＡ特異的抗体の特徴と機能的可能性を定義するために、Ｄ７形質芽細胞は、ＩＢＶ ＮＡ特異的血漿ＩｇＧレベルの上昇を示した２人の対象（１０５および１３４）からの単一細胞として選別され、免疫グロブリン重鎖および軽鎖可変領域をクローニングして、組換え完全ｈＭＡｂを生成した。続いて、２０１６／２０１７ ＩＩＶ（ＦＬＵＺＯＮＥ）に加えて、ビクトリア（Ｂ／ホンコン／３３０／２００１）および山形（Ｂ／フロリダ／０４／２００６）ウイルス系統からの組換えＩＢＶ ＮＡタンパク質への強い結合を示す６つのＩＢＶＮＡ特異的ｈＭＡｂを単離した（図５Ａ）。

ＩＡＶ Ｎ２に対する反応性は検出されなかったことから、これらのＩＢＶ ＮＡｈＭＡｂの非常に特異的な結合が示唆される。ｈＭＡｂのＮＡへの結合の安定性は、尿素濃度を増加させて処理することによって得た。結合安定性が低下した１１２２Ｃ６を除いて、全てのｈＭＡｂは、８Ｍ尿素処理においてＩＢＶＮＡ Ｂ／ホンコン／３３０／２００１に対する結合活性の７５％超を維持した。これらのｈＭＡｂは、同様に、４Ｍ尿素中でＮＡ Ｂ／フロリダ／０４／２００６に対するそれらの結合活性を維持したが、レベルは、８Ｍ尿素において実質的に減少した（図５Ｂ）。結合親和性は、１０９２Ｄ４ｈＭＡｂおよび表面プラズモン共鳴を用いてさらに試験した。１０９２Ｄ４は、Ｂ／ホンコン／３３０／２００１とＢ／フロリダ／０４／２００６の両方のＮＡタンパク質に非常に高い親和性で結合した：具体的には、結合の平衡解離定数は、それぞれ１００ｐＭおよび１８５ｐＭであった。

天然のＮＡを認識するＩＢＶ特異的ｈＭＡｂの能力を定義するために、ＭＤＣＫ細胞をＩＡＶ（Ａ／カリフォルニア／０４／０９ Ｈ１Ｎ１）またはＩＢＶウイルスに感染させ、ｈＭＡｂ結合をＩＦＡにより評価した。１１２２Ｃ６を除く全てのＩＢＶｈＭＡｂは、私見した全てのビクトリアおよび山形系統のＩＢＶを認識した。さらに、１０９２Ｄ４、１０９２Ｅ１０、１０８６Ｃ１２、および１１２２Ｃ７は、共通の祖先Ｂ／リー／４０ウイルス株も認識した（図５Ｃ）。ＨＭＡｂ １１２２Ｃ６は最も限られた幅を示し、ＥＬＩＳＡによるＮＡ Ｂ／ホンコン／３３０／２００１へのより強い結合と一致するＩＢＶＢ／オハイオ／０１／２００５（ビクトリア系統）感染細胞にのみ実質的な結合を示した（図５Ａ）。これらの結果は、ＩＩＶで誘導した形質芽細胞が高親和性の広く反応性のＩＢＶＮＡ特異的ｈＭＡｂを含むことを示している。
実施例４
対象１３４からクローニングされた２つのｈＭＡｂ（１０８６Ｃ１２および１０８６Ｆ８）は、同じ可変重鎖（ＶＨ３－３０）およびラムダ軽鎖（Ｖλ１－４７）遺伝子の使用量とＣＤＲ３の長さを共有し、７７％のＨＣＤＲ３相同性および８６％のＬＣＤＲ３相同性を示すため、クローン的に関連している可能性がある。ｈＭＡｂ １０８６Ｃ１２のＶＨ鎖は、生殖系列ＶＨ３－３０から１０８６Ｆ８よりも高いレベルの突然変異を示したが、１０８６Ｆ８のＶλはＶλ１－４７生殖系列から１０８６Ｃ１２よりも高い突然変異を示した。同様に、ｈＭＡｂ １０９２Ｄ４および１１２２Ｃ７はクローン的に関連しており、同じ可変重鎖（ＶＨ３－２３）および軽鎖（Ｖλ６－５７）遺伝子の使用量を共有し、生殖系列からの突然変異の程度が同程度である。これらの２つのｈＭＡｂにも、λＣＤＲ３およびＨＣＤＲ３の同一の例があり、末端残基のみが異なる（１０９２Ｄ４＝Ｄ、１１２２Ｃ７＝Ｅ）。ＮＡ特異的１０９２Ｅ１０ ｈＭＡｂは、ｈＭＡｂの中で最も長い（２２アミノ酸）ＨＣＤＲ３を有するという特徴がある。全てのＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂは、生殖系列から中程度の突然変異を示したことから（ＶＨ：８％～１５％のアミノ酸（ａａ）、ＶＬ：６％～１１％のａａ）、親和性成熟が起こったことが示唆される。ｈＭＡｂがクローニングされた形質芽細胞によって発現された天然の重鎖定常領域配列を調べると、ＩｇＡ１である１１２２Ｃ６を除いて、全てがＩｇＧ１であった。
実施例５
この例では、発明者らは次に、蛍光ベースのマイクロ中和アッセイを使用することにより、同定された６つのＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂがウイルス感染を阻害する能力を評価した。そのために、ＭＤＣＫ細胞をビクトリア系統の代表的なメンバーであるｍＣｈｅｒｒｙ発現インフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスに感染させ、次いでＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの２倍段階希釈液（開始濃度１０μｇ／ｍｌ）とともにインキュベートし、続いて阻害レベルの定量化を行った（図６Ａ）。特に、ｈＭＡｂ １０８６Ｃ１２、１０８６Ｆ８、１０９２Ｄ４、１０９２Ｅ１０、および１１２２Ｃ６は、ウイルス感染に対して用量依存的な阻害活性を示したが、有効性のレベルは異なり、１０９２Ｅ１０が最も強力なｈＭＡｂであった。しかしながら、ｈＭＡｂ １１２２Ｃ７は、アッセイで試験された濃度では有意な阻害を示さなかった（図６Ａ）。

ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの阻害活性がビクトリア系統のＩＢＶに特異的であるかどうか、または山形系統のＩＢＶを阻害する能力も有するかどうかを判断するために、プラスミドベースの逆遺伝子系を用いて、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスの６つの内部遺伝子（ＰＢ２、ＰＢ１、ＰＡ、ＮＰ、Ｍ、およびＮＳ－ｍＣｈｅｒｒｙ）と、山形系統の代表的なメンバーであるインフルエンザＢ／山形／１６／１９８８ウイルスのＨＡおよびＮＡとを含む組換えｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルスを生成した。次いで、６つのＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂが感染を阻害する能力を、上記の蛍光ベースのマイクロ中和アッセイを使用して評価した。特に、ｍＣｈｅｒｒｙを発現するＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスで以前に観察されたように、最も有効な中和ｈＭＡｂは、１０８６Ｃ１２、１０８６Ｆ８、１０９２Ｄ４、および１１２２Ｃ６であった。さらに、ｈＭＡｂ １０９２Ｅ１０および１１２２Ｃ７は、より高い濃度でのみ阻害を示した（図６Ａ）。古典的なシグモイド用量反応曲線を用いて決定したＩＣ_５０値は、２つのｍＣｈｅｒｒｙ発現ウイルス株の阻害レベルが類似していることを示した（図６Ａ）。

次いで、従来のＶＮアッセイを使用して、６つのＩＢＶＮＡ特異的ｈＭＡｂによるインフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８およびＢ／山形／１６／１９８８ＷＴウイルスの阻害をさらに評価した。結果は、ＷＴウイルスおよびｍＣｈｅｒｒｙウイルスで同等レベルの阻害を示した（図６Ａ）。さらに、シグモイド用量反応を用いて計算された阻害のパーセンテージによって示されるように、ＶＮデータは蛍光手法で以前に観察されたデータと相関していた（図６Ａ）。ｈＭＡｂ １０９２Ｄ４は、全ての感染力アッセイで最大の効力（ＩＣ５０’＜０．５μｇ／ｍｌ）を示し、１０８６Ｃ１２および１１２２Ｃ６（ＩＣ５０’＜１．０μｇ／ｍｌ）および１０８６Ｆ８（ＩＣ５０’＜５．０μｇ／ｍｌ）がそれに続き、１０９２Ｅ１０および１１２２Ｃ７が最も弱い活性を示した。

ウイルスＮＡの主な機能は、細胞表面上のシアル酸残基の切断であり、成熟ビリオンの放出を可能にし、それが新しい細胞に感染する。したがって、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの阻害機構をよりよく理解するために、インフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８およびＢ／山形／１６／１９８８ＷＴウイルスを抗原として用いたＥＬＬＡを使用することによりシアル酸切断を評価した（図６Ｂ）。興味深いことに、全てのｈＭＡｂは、両方のウイルス株でウイルスＮＡの活性を効率的に阻害した（図６Ｂ）。

さらに、オセルタミビルに耐性があると以前に記載されているＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂが、アミノ酸置換Ｅ１１７ＡまたはＨ２７３Ｙ（Ｅ１１９ＡまたはＨ２７４Ｙ［Ｎ２ナンバリング］）を含む２つの組換えＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルス株のＮＡに結合する能力を評価するためにアッセイを実施した。そのために、ＷＴウイルスまたは変異ウイルスに感染させたＭＤＣＫ細胞を、免疫蛍光アッセイによってｈＭＡｂのパネルでプローブした。全てのＩＢＶ ｈＭＡｂは、使用されたウイルスとは無関係に、感染細胞を同様に認識した（図６Ｃ）。総合すると、これらの知見は、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂがＮＡ酵素活性を阻害し、感染細胞からの子孫ビリオンの放出をブロックすることによってウイルスの拡散を阻害し、１０９２Ｄ４、１０８６Ｃ１２、１０８６Ｆ８、および１１２２Ｃ６が１０９２Ｅ１０および１１２２Ｃ７よりもインビトロでより有効であることを示唆している。
実施例６
ＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂの広範かつロバストなインビトロ中和活性を考慮して、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂパネルのインビボでの保護幅を調査するために感染のマウスモデルを用いてアッセイを実施した（図９）。

最初に、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの予防効果を評価するために、マウスの群にＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂ １０８６Ｆ８、１０８６Ｃ１２、１０９２Ｄ４、１０９２Ｅ１０、および１１２２Ｃ６を投与した：ＩｇＧアイソタイプ対照ｈＭＡｂ；またはＰＢＳのみ。ＨＭＡｂを２０ｍｇ／ｋｇ体重で腹腔内投与した：この用量は、他の抗ＮＡ ＭＡｂを評価した以前の研究および観察されたインビトロ活性に基づいて選択された。ｈＭＡｂは、１０^６ＦＦＵのインフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８ＷＴウイルスによる鼻腔内（ｉｎ）チャレンジの６時間前に投与した（図９Ａ）。インビトロ感染力アッセイがＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスに対して低レベルの有効性を示したため、ｈＭＡｂ １１２２Ｃ７はこれらの試験に含めなかった（図６Ａ）。感染マウスの肺のウイルス力価を、感染後２日目（ｎ＝３）および４日目（ｎ＝３）に決定し、ウイルス阻害の尺度として用いた（図９Ａ）。ＩｇＧアイソタイプ対照ｈＭＡｂまたはＰＢＳで処理したマウスは、感染後２日目および４日目に、肺において約１０^５～５×１０^５ＦＦＵ／ｍｌの同様の高いウイルス力価を示した。特に、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂを投与したマウスは、それらの時点で、感染動物の肺において有意に（Ｐ＜０．０５）低いウイルス力価を示したか、または検出可能なウイルスを示さなかった（図９Ａ）。ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂ １０９２Ｄ４および１０８６Ｆ８が最も有効であり、１０９２Ｄ４処理マウスではウイルスは検出されず、感染後２日目に３匹の１０８６Ｆ８処理マウスのうち１匹にのみウイルスが検出された。感染後４日目では、ウイルス複製は１０９２Ｄ４処理マウスおよび１０８６Ｆ８処理マウスで最も低く、各群からの１匹のマウスにおいて検出限界を下回っていた。１０８６Ｃ１２および１１２２Ｃ６はどちらも、検出限界をわずかに上回るレベルである２００～９００ＦＦＵ／ｍｌまでウイルス複製を抑制した。１０９２Ｅ１０で処理されたマウスの肺におけるウイルス量は、より高い変動性を有する他のＩＢＶ ＮＡｈＭＡｂで処理された動物よりも平均してわずかに高かった。これらのデータは、１０９２Ｅ１０がインフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルス感染の阻害に関しては依然として効率的であったものの、あまり強力なｈＭＡｂではなかった我々のインビトロ阻害アッセイ（図６）のデータと相関していた。

ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂの治療効果も評価した（図９Ｂ）。その目的のために、１０^６ＦＦＵのインフルエンザＢ／ブリスベン／６０／２００８ＷＴウイルスに感染させたマウスの群を、感染後２４時間に２０ｍｇ／ｋｇのＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂで処理した。さらに、ＩｇＧアイソタイプ対照ｈＭＡｂまたはＰＢＳで処理した動物の対照群を含めた（図９Ｂ）。ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂによる処理が肺のウイルス量を減少させることができるかどうかを評価するために、感染マウスの肺におけるウイルス複製を感染後２日目（ｎ＝３）および４日目（ｎ＝３）に測定した。対照処理群と比較して、また予防的分析と相関して、ＩＢＶ ＮＡ ｈＭＡｂによるマウスの処理は、感染マウスの肺におけるウイルス複製のレベルを有意に（Ｐ＜０．０５）減少させた（図９Ｂ）。

総合すると、これらのデータは、同定されたＭＡｂがＩＢＶ感染に対してインビトロで強力な予防的および治療的活性を有し、肺におけるウイルスの播種を大幅に減少させることができることを示している。
実施例７
長寿命の骨髄形質細胞は、持続的な循環抗体の主要な供給源であると推定される。Ｄ７形質芽細胞から単離されたＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂが長寿命の骨髄形質細胞で持続するかどうかを決定するために、１年後に対象１０５から骨髄を採取した：この時点で、ＩＢＶ ＮＡ特異的血漿ＩｇＧは依然として検出可能であった。骨髄ＣＤ１３８＋形質細胞、全骨髄Ｂ細胞、およびＤ７全末梢血Ｂ細胞を、免疫グロブリンレパートリーのＶＨ３標的ディープシーケンシングに供した。ＣＤ１３８＋形質細胞および全骨髄Ｂ細胞の間で１０９２Ｅ１０クローン系統のメンバーを同定した：ＣＤ１３８＋形質細胞の多くは、１０９２Ｅ１０ｈＭＡｂで見られたものを超えるさらなる体細胞超変異を示していた。同様に、１０９２Ｄ４／１１２２Ｃ７クローン系統のメンバーが、Ｄ７全末梢血Ｂ細胞にも見られるものと同一のＶＨ配列を有するものも含めて、ＣＤ１３８＋形質細胞内に見られた。これらの結果は、保護効果を有するＩＢＶ ＮＡ特異的Ｂ細胞系統が、ＩＩＶ免疫後に長寿命のＣＤ１３８＋骨髄形質細胞レパートリー内で持続することを示している。

試験した各ｈＭＡｂは、組換えおよび天然のＩＢＶ ＮＡに結合して山形系統およびビクトリア系統の両方からのＩＢＶのＮＡ酵素活性を強力に阻害し、また、１１２２Ｃ７を例外として、両方の系統からのＩＢＶの複製も強力に阻害した（ＩＣ_５０’＜５μｇ／ｍｌ）。この実質的な抗ウイルス幅は、全てのｈＭＡｂで２０年以上の分離株、１０８６Ｃ１２、１０９２Ｄ４、１０９２Ｅ０１、および１１２２Ｃ７ ｈＭＡｂで７０年以上の分離株におよび、祖先のＢ／リー／１９４０ウイルス分離株も認識したことから、幅広いＩＢＶ分離株にわたって十分に保存されたエピトープが存在することが示唆される。ｈＭＡｂによるＮＡ酵素活性の阻害と、オセルタミビル耐性を付与するＮＡの突然変異を有するＩＢＶを認識するさらなる能力は、ｈＭＡｂの結合がＥ１１７またはＨ２７３に依存するのではなく、ＮＡ活性部位内の、または基質が活性部位に接近するのを立体的に妨げるように活性部位に十分近接した他のエピトープに依存することを示唆している。

試験した全てのＩＢＶ ＮＡ特異的ｈＭＡｂは、それらのインビトロ抗ウイルス特性およびＮＡ阻害特性と一致して、マウスにおけるＩＢＶ感染に対する予防的および治療的活性を示した。特に、Ｂ／ブリスベン／６０／２００８ウイルスに対して最大のインビボ活性を示した１０８６Ｆ８および１０９２Ｄ４は、数匹のマウスにおいてウイルスを検出可能なレベル未満に抑制したことを含めて、インビトロでのＢ／ブリスベン／６０／２００８ウイルス複製の阻害において最も強力なｈＭＡｂであった（ＩＣ_５０’＜０．５μｇ／ｍｌ）が、ＥＬＬＡ活性においては他のｈＭＡｂに劣っていた。
実施例８
上記の実施例５に記載されたものと同様のアッセイを実施して、上記のＮ２特異的ｍＡｂ：１０９２Ａ９、１０９２Ｂ６、１０９２Ｇ４、および１０９０Ｇ９を調べた。その結果を図７に示す。端的に述べると、ＭＤＣＫ細胞を示されるウイルスにモック感染または感染させ、その後固定し、１μｇ／ｍｌのＮＡ特異的ｈＭＡｂで染色し、ＮＡタンパク質発現をＩＦＡによって評価した。ＫＰＦ１は、このＩＦＡの内部対照として使用されるＨ１特異的ｈＭＡｂである。結果は、複数のＨ３Ｎ２ウイルスに結合するｍＡｂの幅が増加したことを示している。

上記の実施例６に記載されたものと同様のアッセイを実施して、１０９２Ｂ６Ｎ２ｈｍＡｂのインビボでの予防活性を調べた。その結果を図８Ａ、図８Ｂおよび図８Ｃに示す。結果は、Ｈ３Ｎ２感染マウスにおけるウイルス負荷を軽減し、生存率を高める１０９２Ｂ６の能力を示している。

前述の実施例および好ましい実施形態の記載は、特許請求の範囲によって定義される本発明を限定するものではなく、例示するものとして解釈されるべきである。容易に理解されるように、上記の特徴の多数の変形例および組み合わせは、特許請求の範囲に記載される本発明から逸脱することなく用いられ得る。そのような変形例は、本発明の範囲からの逸脱とは見なされず、そのような全ての変形例は、以下の特許請求の範囲に含まれることが意図される。本明細書において言及される全ての参考文献は、その全体が参考により組み込まれる。

Claims (17)

1. （ｉ）ＨＣＤＲ１、ＨＣＤＲ２、およびＨＣＤＲ３を含む重鎖可変領域、ならびに
   （ｉｉ）ＬＣＤＲ１、ＬＣＤＲ２およびＬＣＤＲ３を含む軽鎖可変領域から成り、
   前記ＨＣＤＲ１、前記ＨＣＤＲ２、前記ＨＣＤＲ３、前記ＬＣＤＲ１、前記ＬＣＤＲ２および前記ＬＣＤＲ３は、配列番号１１～１６、配列番号２７～３２、配列番号３５～４０、配列番号４３～４８、配列番号５１～５６、および配列番号５９～６４からなる群から選択されるＣＤＲセットのそれぞれの配列を含む、インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼに特異的に結合する、単離された抗体またはその抗原結合断片。
2. 前記重鎖可変領域及び前記軽鎖可変領域は、配列番号９～１０、配列番号２５～２６、配列番号３３～３４、配列番号４１～４２、配列番号４９～５０、または配列番号５７～５８のそれぞれの配列を含む、請求項１に記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
3. 前記重鎖可変領域は配列番号２７～２９の配列を含み、前記軽鎖可変領域は配列番号３０～３２の配列を含む、請求項１に記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
4. 請求項１～３のいずれかに記載の抗体またはその抗原結合断片を用いたクロスブロッキングアッセイにおいて、インフルエンザウイルスのノイラミニダーゼへの結合について競合する、単離された抗体またはその抗原結合断片。
5. 変異型Ｆｃ定常領域をさらに含む、請求項１～４のいずれかに記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
6. 前記抗体が、キメラ抗体、ヒト化抗体またはヒト抗体である、請求項１～５のいずれかに記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
7. 前記抗体または断片は、治療薬、ポリマー、検出可能な標識、または酵素に共役されている、請求項１～６のいずれかに記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
8. 前記ポリマーはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）である、請求項７に記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
9. 前記治療薬は細胞毒性薬である、請求項７に記載の単離された抗体またはその抗原結合断片。
10. 請求項１～９のいずれか一項に記載の、抗体またはその抗原結合部分の重鎖もしくは軽鎖可変領域をコードする、単離された核酸。
11. 請求項１０に記載の核酸を含む、発現ベクター。
12. 請求項１１に記載の発現ベクターを含む、培養宿主細胞。
13. 請求項１に記載の抗体またはその抗原結合部位のＣＤＲ、重鎖可変領域もしくは軽鎖可変領域をコードする核酸配列を含むベクターを含む培養宿主細胞を得ることと、
    ベクターによってコードされるポリペプチドの発現および抗体またはその断片のアセンブリを可能にする条件下で、細胞を培地中で培養することと、
    培養細胞または細胞の培地から抗体または断片を精製することとを含む、抗体またはその抗原結合部分を調製する方法。
14. 請求項１～９のいずれかに記載の抗体またはその抗原結合断片および薬学的に許容される担体を含む、医薬組成物。
15. インフルエンザウイルスの中和に使用するための、請求項１～９のいずれかに記載の抗体もしくはその抗原結合断片、または請求項１４に記載の組成物。
16. インフルエンザウイルス感染の治療に使用するための、請求項１～９のいずれかに記載の抗体もしくはその抗原結合断片、または請求項１４に記載の組成物。
17. インフルエンザウイルスの中和、またはインフルエンザウイルスの感染の治療に使用するための、請求項１～９のいずれかに記載の抗体またはその抗原結合断片、及び二次抗体またはその抗原結合断片。