JP7395353B2 - 止血材 - Google Patents
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Description
前記脂質が、1種又は2種以上のアニオン性脂質を含んでなる、前記止血材。
[2]前記基材が、多孔質基材であり、
前記脂質が、前記多孔質基材の細孔の表面に担持されている、[1]に記載の止血材。
[3]前記脂質が、前記多孔質基材の細孔の少なくとも一部を占める、[2]に記載の止血材。
[4]前記多孔質基材が、繊維基材である、[2]又は[3]に記載の止血材。
[5]前記繊維基材に対する前記脂質の担持量が、前記繊維基材の平面視面積あたり1~1000g/m2である、[4]に記載の止血材。
[6]前記基材を支持する支持部材をさらに備える、[1]~[5]のいずれか一つに記載の止血材。
[7]前記支持部材が吸液性を有する、[6]に記載の止血材。
[8]前記1種又は2種以上のアニオン性脂質が、以下の式(I)~(VI):
Mは、HO-又はM0-NH-を表し、
M0は、生理的pHにおいて負に帯電し得る、アミノ酸残基、アミノ酸誘導体の残基、ペプチド残基又はそれらの塩を表し、
Rは、炭化水素基を表し、
Lは、-CO-O-、-O-CO-、-CO-NH-、-NH-CO-、-CO-S-、-S-CO-又は-S-S-を表し、
Xは、炭化水素基、中性アミノ酸残基又はポリアルキレングリコール残基を表し、
pは、0以上の整数を表し、
qは、0以上の整数を表し、
Yは、以下の式(VII):
式(VII)及び(VIII)中、
R、L、X、p及びqは、前記と同義であり、
(*b1)、(*b2)及び(*b3)は、それぞれの単位Y1の結合手を表し、
(*b4)は、それぞれの基Y2の結合手を表し、
それぞれの単位Y1の結合手(*b1)は、式(III)、(IV)又は(VI)における(CH2)qと結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成する別の単位Y1の結合手(*b2)又は(*b3)と結合しており、
それぞれの基Y2の結合手(*b4)は、式(III)、(IV)又は(VI)における(CH2)qと結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成するいずれかの単位Y1の結合手(*b2)又は(*b3)と結合しており、
Zは、以下の式(IX):
式(IX)、(X)及び(XI)中、
M、L、X、p及びqは、前記と同義であり、
(*c1)、(*c2)及び(*c3)は、それぞれの単位Z1の結合手を表し、
(*c4)及び(*c5)は、それぞれの基Z2の結合手を表し、
それぞれの単位Z1の結合手(*c1)は、式(V)又は(VI)における(CH2)qと結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成する別の単位Z1の結合手(*c2)又は(*c3)と結合しており、
それぞれの基Z2の結合手(*c4)又は(*c5)は、式(V)又は(VI)における(CH2)qと結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成するいずれかの単位Z1の結合手(*c2)又は(*c3)と結合している。]
で表されるカルボン酸型脂質から選択される1種又は2種以上のカルボン酸型脂質を含む、[1]~[7]のいずれか一つに記載の止血材。
[9]M0で表される前記アミノ酸残基が、酸性アミノ酸残基又は中性アミノ酸残基である、[8]に記載の止血材。
[10]前記酸性アミノ酸残基が、アスパラギン酸残基又はグルタミン酸残基である、[9]に記載の止血材。
[11]M0で表される前記アミノ酸誘導体の残基が、塩基性アミノ酸誘導体の残基であり、
前記塩基性アミノ酸誘導体に導入されている誘導体化が、塩基性アミノ酸の側鎖のアミノ基の、次式:-NH-CO-R1[式中、-NH-は、前記塩基性アミノ酸の側鎖のアミノ基に由来し、R1は、炭化水素基を表す。]で表される基へのアミド化である、[8]に記載の止血材。
[12]M0で表される前記ペプチド残基が、2~7個のアミノ酸残基で構成されるペプチド残基である、[8]に記載の止血材。
[13]M0で表される前記ペプチド残基が、1個又は2個以上の酸性アミノ酸残基を含むペプチド残基である、[8]又は[12]に記載の止血材。
[14]M0で表される前記ペプチド残基が、アスパラギン酸残基及びグルタミン酸残基から選択される2個以上の酸性アミノ酸残基を含むペプチド残基である、[13]に記載の止血材。
[15]M0で表される前記ペプチド残基が、以下の式(XII):
で表されるペプチド残基である、[14]に記載の止血材。
[16]前記塩が、カルシウム塩、マグネシウム塩、ナトリウム塩及びカリウム塩からなる群から選択される、[8]~[15]のいずれか一つに記載の止血材。
[17]Yが、以下の式(XIII)、(XIV)、(XV)及び(XVI):
Y1は、1個の単位Y1を表し、
Y2は、1個の基Y2を表し、
(*b)は、式(III)、(IV)又は(VI)における(CH2)qと結合する単位Y1の結合手を表す。]
で表される直鎖及び分岐鎖から選択される、[8]~[16]のいずれか一つに記載の止血材。
[18]Zが、以下の式(XVII)、(XVIII)、(XIX)及び(XX):
Z1は、1個の単位Z1を表し、
Z2は、1個の基Z2を表し、
(*c)は、式(V)又は(VI)における(CH2)qと結合する単位Z1の結合手を表す。]
で表される直鎖及び分岐鎖から選択される、[8]~[17]のいずれか一つに記載の止血材。
[19]前記1種又は2種以上のアニオン性脂質が、リン脂質及びステロールから選択される1種又は2種以上の脂質を含む、[1]~[18]のいずれか一つに記載の止血材。
[20]前記脂質が、脂質粒子、脂質粒子の凝集体及び脂質膜から選択される1種又は2種以上の形態で、前記基材の表面に担持されている、[1]~[19]のいずれか一つに記載の止血材。
[21]前記脂質粒子、前記脂質粒子の凝集体及び前記脂質膜の表面が、生理的pHにおいて負に帯電する、[20]に記載の止血材。
[22]前記脂質粒子又は前記脂質粒子の凝集体が、生理的条件において-12mV以下のゼータ電位を有する、[21]に記載の止血材。
[23]前記脂質粒子及び前記脂質粒子の凝集体を構成する脂質粒子が、30~5000nmの平均粒子径を有する、[20]~[22]のいずれか一つに記載の止血材。
[24]前記脂質粒子及び前記脂質粒子の凝集体を構成する脂質粒子が、リポソーム、ミセル、ナノスフェア、マイクロスフェア、ナノクリスタル及びマイクロクリスタルからなる群から選択される形態である、[20]~[23]のいずれか一つに記載の止血材。
[25]前記脂質膜が、10~1000nmの厚みを有する、[20]に記載の止血材。
本発明の止血材は、水不溶性の基材と、該基材の表面に担持された脂質とを備え、該脂質は、1種又は2種以上のアニオン性脂質を含んでなる。本発明の止血材は、必要に応じて、基材を支持する支持部材を備えていてもよい。
本発明の止血材は、水不溶性の基材を備える。
本発明の止血材は、基材を支持する支持部材を備えていてもよい。支持部材は、必要に応じて設けられる部材である。本発明の止血材の取り扱いやすさを向上させる点から、本発明の止血材は、基材を支持する支持部材を備えることが好ましい。
本発明の止血材は、基材の表面に担持された脂質を備え、該脂質は、1種又は2種以上のアニオン性脂質を含んでなる。基材の表面に担持された脂質が血液と接触すると、基材の表面に担持された脂質に含まれるアニオン性脂質は負に帯電した状態となる。負に帯電したアニオン性脂質は、複数の血小板(特に、活性化した血小板)と結合し、血小板の粘着及び/又は凝集を促進することができ、ひいては、血液の凝固を促進することができる。これにより、本発明の止血材は、血液の止血作用を促進することができる。本発明の止血材の止血作用は、血小板粘着促進作用及び/又は血小板凝集促進作用を有する脂質が多孔質基材、特に繊維基材に担持されていることによって、すなわち、脂質が血小板粘着促進作用及び/又は血小板凝集促進作用を有することに加え、脂質が多孔質基材、特に繊維基材に担持されていることによって、特に効果的に発揮される。
第1の態様に係る脂質は、カルボン酸型脂質(I)~(VI)から選択される1種又は2種以上のカルボン酸型脂質を含んでなる。以下、カルボン酸型脂質(I)~(VI)を包括して「本発明のカルボン酸型脂質」という場合がある。
カルボン酸型脂質(I)は、以下の式(I)で表される。なお、式(I)において、2以上の同一の記号(例えば、L、X等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
カルボン酸型脂質(III)は、以下の式(III)で表される。なお、式(III)に存在する複数の同一の記号(例えば、L、X、q、Y等)の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
カルボン酸型脂質(IV)は、以下の式(IV)で表される。なお、式(IV)に存在する複数の同一の記号(例えば、q、Y等)の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
カルボン酸型脂質(V)は、以下の式(V)で表される。なお、式(V)に存在する複数の同一の記号(例えば、L、X、q、Z等)の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
カルボン酸型脂質(VI)は、以下の式(VI)で表される。なお、式(VI)に存在する複数の同一の記号(例えば、L、X、q、Y、Z等)の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
式(III)、(IV)、(V)及び(VI)において、以下の式(BP)で表される分岐部分は、例えば、三官能性化合物に由来する(すなわち、三官能性化合物の残基である)。三官能性化合物の残基は、別段規定される場合を除き、三官能性化合物から3個の反応性官能基を除いた部分を意味する。なお、三官能性化合物の3個の反応性官能基は、分岐部分に隣接する部分(-CO-又は-L-)の形成に使用される。このため、三官能性化合物の残基は、三官能性化合物から3個の反応性官能基を除いた部分と定義されている。
式(III)、(IV)及び(VI)において、Yは、1個以上の単位Y1で構成される分岐鎖本体部と、該分岐鎖本体部に結合した1個以上の基Y2とで構成される分岐鎖を表すか、又は、1個の基Y2で構成される直鎖を表す。式(III)、(IV)及び(VI)のそれぞれに存在する複数のYの意義は、Yの定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、それぞれのYの構造式に複数の同一の記号(例えば、R、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
式(V)及び(VI)において、Zは、1個以上の単位Z1で構成される分岐鎖本体部と、該分岐鎖本体部に結合した1個以上の基Z2とで構成される分岐鎖を表すか、又は、1個の基Z2で構成される直鎖を表す。式(V)及び(VI)のそれぞれに存在する複数のZの意義は、Zの定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、それぞれのZの構造式に複数の同一の記号(例えば、M、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
以下、カルボン酸型脂質(I)の製造方法の一実施形態について説明する。なお、ある1個の化合物の構造式に複数の同一の記号(例えば、L、X等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、2個以上の化合物の構造式に同一の記号(例えば、L、X等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
MがM0-NH-である場合、以下の式:
M0-NH2
[式中、M0は、上記と同義である。]
で表される化合物(1)を準備する。
以下の式:
HOOC-X-A1
[式中、Xは、上記と同義であり、A1は、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(2)を準備する。
必要に応じて、以下の式(3):
D1-X-[L-X]p-1-Ep (3)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、D1及びEpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(3)を準備する。
以下の式(4):
A2-R (4)
[式中、Rは、上記と同義であり、A2は、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(4)を準備する。
式(I)におけるpが0である場合、化合物(2)の官能基A1と、化合物(4)の官能基A2とを常法に従って反応させ、MがHO-であるカルボン酸型脂質(I)を製造する。MがHO-であるカルボン酸型脂質(I)のカルボキシル基と、化合物(1)のアミノ基とを反応させることにより、あるいは、化合物(1)のアミノ基と、化合物(2)のカルボキシル基とを常法に従って反応させ、式:M0-NH-CO-X-A1で表される化合物を製造し、次いで、製造された化合物の官能基A1と、化合物(4)の官能基A2とを常法に従って反応させることにより、MがM0-NH-であるカルボン酸型脂質(I)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。2個の官能基の反応によって形成されるLの具体例は、官能基E1及び官能基D2の反応により形成されるLの具体例と同様である。
以下、カルボン酸型脂質(II)の製造方法の一実施形態について説明する。
MがM0-NH-である場合、化合物(1)を準備する。
A2がカルボキシル基である化合物(4)を準備する。
化合物(4)は、MがHO-であるカルボン酸型脂質(II)である。
化合物(1)のアミノ基と、A2がカルボキシル基である化合物(4)のカルボキシル基とを常法に従って反応させることにより、MがM0-NH-であるカルボン酸型脂質(II)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。
以下、カルボン酸型脂質(III)の製造方法の一実施形態について説明する。なお、ある1個の化合物の構造式に2個以上の同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、2個以上の化合物の構造式に同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
MがM0-NH-である場合、化合物(1)を準備する。
化合物(2)を準備する。
必要に応じて、化合物(3)を準備する。
以下の式(5)で表される化合物(5)を準備する。
必要に応じて、以下の式(6)で表される化合物(6)を準備する。
必要に応じて、以下の式(7):
F1-X-[L-X]p-1-Gp (7)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、F1及びGpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(7)を準備する。
必要に応じて、以下の式(8):
H1-X-[L-X]p-1-Ip (8)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、H1及びIpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(8)を準備する。
以下の式(9):
A3-R (9)
[式中、Rは、上記と同義であり、A3は、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(9)を準備する。
化合物(5)の官能基Q2及びQ3に直鎖又は分岐鎖を導入することにより、以下の式(5-Y)で表される化合物(5-Y)を製造する。式(5-Y)中、Yは上記と同義である。
式(III)におけるpが0である場合、化合物(5-Y)の官能基Q1と、化合物(2)の官能基A1とを常法に従って反応させることにより、MがHO-であるカルボン酸型脂質(III)を製造する。MがHO-であるカルボン酸型脂質(III)のカルボキシル基と、化合物(1)のアミノ基とを常法に従って反応させることにより、あるいは、化合物(1)のアミノ基と、化合物(2)のカルボキシル基とを常法に従って反応させ、次いで、得られた化合物の官能基A1と、化合物(5-Y)の官能基Q1とを常法に従って反応させることにより、MがM0-NH-であるカルボン酸型脂質(III)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。2個の官能基の反応によって形成されるLの具体例は、官能基E1及び官能基D2の反応により形成されるLの具体例と同様である。
以下、カルボン酸型脂質(IV)の製造方法の一実施形態について説明する。
MがM0-NH-である場合、化合物(1)を準備する。
Q1がカルボキシル基である化合物(5)を準備する。
工程9Cと同様にして、化合物(5)の官能基Q2又はQ3に直鎖又は分岐鎖を導入することにより、MがHO-であるカルボン酸型脂質(IV)を製造する。次いで、MがHO-であるカルボン酸型脂質(IV)の官能基Q1(カルボキシル基)と、化合物(1)のアミノ基とを常法に従って反応させることにより、カルボン酸型脂質(IV)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。
以下、カルボン酸型脂質(V)の製造方法の一実施形態について説明する。なお、ある1個の化合物の構造式に2個以上の同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、2個以上の化合物の構造式に同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
MがM0-NH-である場合、化合物(1)を準備する。
化合物(2)を準備する。
必要に応じて、化合物(3)を準備する。
以下の式(14)で表される化合物(14)を準備する。
必要に応じて、以下の式(15)で表される化合物(15)を準備する。
必要に応じて、以下の式(16):
J1-X-[L-X]p-1-Kp (16)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、J1及びKpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(16)を準備する。
必要に応じて、以下の式(17):
T1-X-[L-X]p-1-Up (17)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、T1及びUpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(17)を準備する。
以下の式(18):
A4-R (18)
[式中、Rは、上記と同義であり、A4は、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(18)を準備する。
化合物(14)の官能基Q7及びQ8に直鎖又は分岐鎖を導入することにより、以下の式(14-Z)で表される化合物(14-Z)を製造する。式(14-Z)中、Zは上記と同義である。
式(V)におけるpが0である場合、化合物(14-Z)の官能基Q9と、化合物(18)の官能基A4とを常法に従って反応させることにより、カルボン酸型脂質(V)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。2個の官能基の反応によって形成されるLの具体例は、官能基E1及び官能基D2の反応により形成されるLの具体例と同様である。
以下、カルボン酸型脂質(VI)の製造方法の一実施形態について説明する。なお、ある1個の化合物の構造式に2個以上の同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。また、2個以上の化合物の構造式に同一の記号(例えば、L、X、p、q等)が存在する場合、これらの同一の記号の意義は、当該記号の定義の範囲内にある限り、同一であってもよいし、異なっていてもよい。
工程9Cと同様にして、化合物(5)の官能基Q2及びQ3に直鎖又は分岐鎖を導入することにより、化合物(5-Y)を製造する。
工程9Eと同様にして、化合物(14)の官能基Q7又はQ8に直鎖又は分岐鎖を導入することにより、化合物(14-Z)を製造する。
必要に応じて、以下の式(25):
V1-X-[L-X]p-1-Wp (25)
[式中、L及びXは、上記と同義であり、pは1以上の整数を表し、V1及びWpは、それぞれ独立して、カルボキシル基、アミノ基、ヒドロキシル基又はチオール基を表す。]
で表される化合物(25)を準備する。
式(VI)におけるpが0である場合、化合物(14-Z)の官能基Q9と、化合物(5-Y)の官能基Q1とを常法に従って反応させることにより、カルボン酸型脂質(VI)を製造する。この際、反応に関与しない官能基は、必要に応じて、保護基によって保護し、反応に関与する官能基同士を反応させた後、脱保護することができる。保護基による保護及び脱保護は、常法に従って行うことができる。2個の官能基の反応によって形成されるLの具体例は、官能基E1及び官能基D2の反応により形成されるLの具体例と同様である。
第1の態様に係る脂質粒子、脂質粒子の凝集体又は脂質膜は、カルボン酸型脂質以外の1種又は2種以上の脂質を含んでいてもよい。カルボン酸型脂質以外の脂質としては、例えば、リン脂質、糖脂質、ステロール等が挙げられる。以下、リン脂質、糖脂質及びステロールについて説明する。
リン脂質としては、例えば、グリセロリン脂質、スフィンゴリン脂質、カルジオリピン等が挙げられる。リン脂質は、生理的pHにおいて負に帯電するリン脂質であってもよいし、生理的pHにおいて両イオン性である(すなわち、負に帯電する部分と正に帯電する部分とを有する)リン脂質であってもよい。リン脂質には、リン脂質が有するリン酸基が形成する塩も含まれ、リン酸基の塩としては、例えば、カルシウム塩、マグネシウム塩、カリウム塩等が挙げられる。リン脂質は、1種を単独で使用してもよいし、2種以上を組み合わせて使用してもよい。以下、グリセロリン脂質、スフィンゴリン脂質及びカルジオリピンについて説明する。
グリセロリン脂質としては、例えば、以下の式(i)で表される構造を有する脂質が挙げられる。グリセロリン脂質は、生理的pHにおいて負に帯電するグリセロリン脂質であってもよいし、生理的pHにおいて両イオン性であるグリセロリン脂質であってもよい。生理的pHにおいて負に帯電するグリセロリン脂質としては、例えば、以下の式(i)において、X1で表される基が、カチオン性基以外の基(アニオン性基又は電気的に中性な基)であるグリセロリン脂質が挙げられる。生理的pHにおいて両イオン性であるグリセロリン脂質としては、例えば、以下の式(i)において、X1で表される基が、カチオン性基であるグリセロリン脂質が挙げられる。
スフィンゴリン脂質としては、例えば、以下の式(ii)で表される構造を有する脂質が挙げられる。スフィンゴリン脂質は、生理的pHにおいて負に帯電するスフィンゴリン脂質であってもよいし、生理的pHにおいて両イオン性であるスフィンゴリン脂質であってもよい。生理的pHにおいて負に帯電するスフィンゴリン脂質としては、例えば、以下の式(ii)において、X4で表される基が、カチオン性基以外の基(アニオン性基又は電気的に中性な基)であるスフィンゴリン脂質が挙げられる。生理的pHにおいて両イオン性であるスフィンゴリン脂質としては、例えば、以下の式(ii)において、X4で表される基が、カチオン性基であるスフィンゴリン脂質が挙げられる。
カルジオリピンとしては、例えば、以下の式(iii)で表される構造を有する脂質が挙げられる。カルジオリピンは、生理的pHにおいて負に帯電するカルジオリピンであってもよいし、生理的pHにおいて両イオン性であるカルジオリピンであってもよい。
糖脂質としては、例えば、グリセロ糖脂質、スフィンゴ糖脂質等が挙げられる。糖脂質に2個以上のアシル基が含まれる場合、2個以上のアシル基は同一であってもよいし、異なっていてもよい。アシル基に含まれる炭化水素基の具体例は、上記と同様である。アシル基に含まれる炭化水素基の炭素数は、好ましくは1~4、さらに好ましくは1~2、さらに一層好ましくは2である。糖脂質は、1種を単独で使用してもよいし、2種以上を組み合わせて使用してもよい。
ステロールとしては、例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ジヒドロコレステロール、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール、チモステロール、エルゴステロール、キャンペステロール、フコステロール、22-ケトステロール、20-ヒドロキシステロール、7-ヒドロキシコレステロール、19-ヒドロキシコレステロール、22-ヒドロキシコレステロール、25-ヒドロキシコレステロール、7-デヒドロコレステロール、5α-コレスト-7-エン-3β-オール、エピコレステロール、デヒドロエルゴステロール、硫酸コレステロール、ヘミコハク酸コレステロール、フタル酸コレステロール、リン酸コレステロール、吉草酸コレステロール、コレステロールヘミサクシネート、3βN-(N’,N’-ジメチルアミノエタン)-カルバモイルコレステロール、コレステロールアセテート、コレステリルオレート、コレステリルリノレート、コレステリルミリステート、コレステリルパルミテート、コレステリルアラキデート、コプロスタノール、コレステロールエステル、コレステリルフォスフォリルコリン、3,6,9-トリオキサオクタン-1-オール-コレステリル-3e-オール等が挙げられる。ステロールは、1種を単独で使用してもよいし、2種以上を組み合わせて使用してもよい。
第1の態様に係る脂質粒子、脂質粒子の凝集体又は脂質膜は、脂肪酸を含んでいてもよい。脂肪酸は、飽和脂肪酸であってもよいし、不飽和脂肪酸であってもよい。脂肪酸の炭素数は、特に限定されないが、10~24、さらに好ましくは12~22、さらに一層好ましくは14~18である。脂肪酸としては、例えば、カプリル酸、ペラルガン酸、カプリン酸、ウンデシレン酸、ラウリン酸、トリデシレン酸、ミリスチン酸、ペンタデシレン酸、パルミチン酸、マーガリン酸、ステアリン酸、ノナデシレン酸、アラキジン酸、ドデセン酸、テトラデセン酸、オレイン酸、リノール酸、リノレイン酸、アイコセン酸、エルシン酸、ドコサペンタエン酸等が挙げられる。脂肪酸は、1種を単独で使用してもよいし、2種以上を組み合わせて使用してもよい。
第2の態様に係る脂質粒子、脂質粒子の凝集体又は脂質膜は、生理的pHにおいて負に帯電する1種又は2種以上のリン脂質を含んでなる。生理的pHは、通常pH5.5~9.0、好ましくはpH6.5~8.0、さらに好ましくはpH7.0~7.8である。生理的pHにおいて負に帯電するリン脂質は、好ましくは、生理的pHにおいて負に帯電するグリセロリン脂質、スフィンゴリン脂質又はカルジオリピンである。リン脂質、グリセロリン脂質、スフィンゴリン脂質及びカルジオリピンに関する説明は、第1の態様と同様である。生理的pHにおいて負に帯電するグリセロリン脂質は、好ましくは、上記式(i)において、X1で表される基が、カチオン性基以外の基(アニオン性基又は電気的に中性な基)であるグリセロリン脂質である。生理的pHにおいて負に帯電するスフィンゴリン脂質は、好ましくは、上記式(ii)において、X4で表される基が、カチオン性基以外の基(アニオン性基又は電気的に中性な基)であるスフィンゴリン脂質である。
本発明の止血材は、例えば、以下の工程:
(a)水不溶性の基材を準備する工程;
(b)アニオン性脂質を含んでなる脂質を準備する工程;及び
(c)工程(a)で準備された基材に、工程(b)で準備された脂質を担持させる工程
を含む方法により製造することができる。
以下の脂質を合成し、実施例で使用した。
以下の手順に従って、DHSGを合成した。なお、DHSGは、MがM0-NH-である本発明のカルボン酸型脂質(例えば、Glu-DHSG、Asp-DHSG、AG-DHSG等)を合成する際、出発物質として使用することができる。
以下の手順に従って、DHSGの親水性部分(カルボキシル基)にアスパラギン酸残基を導入し、カルボン酸型脂質(Asp-DHSG)を合成した。
以下の手順に従って、DHSGの親水性部分(カルボキシル基)にグルタミン酸残基を導入し、カルボン酸型脂質(Glu-DHSG)を合成した。
以下の手順に従って、DHSGの親水性部分(カルボキシル基)に2個のアスパラギン酸残基と1個のグルタミン酸残基とで構成されるペプチド残基(AG残基)を導入し、カルボン酸型脂質(AG-DHSG)を合成した。
以下の手順に従って、式(e2)で表されるカルボン酸型脂質を合成した。なお、このカルボン酸型脂質は、MがM0-NH-である本発明のカルボン酸型脂質を合成する際、出発物質として使用することができる。すなわち、このカルボン酸型脂質の親水性部分(カルボキシル基)に、上記と同様にして、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基等のアミノ酸残基、AG残基等のペプチド残基等を導入することにより、MがM0-NH-である本発明のカルボン酸型脂質を合成することができる。
(1)リポソームの調製
以下の手順に従ってリポソームを調製した。その際、上述の合成方法により得られたカルボン酸型脂質とともに、以下の脂質(市販品)を使用した。なお、以下、コレステロールを「Chol」と表記する場合がある。
DPPC(1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルコリン,日本精化株式会社製)
DPPG(1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルグリセロール,日油産業株式会社製)
DPPS(1,2-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルセリン,日油産業株式会社製)
コレステロール(日本精化株式会社製)
PEG-DSPE(1,2-ジステアロイル-sn-グリセロ-3-ホスファチジルエタノールアミン-N-[モノメトキシポリ(エチレングリコール)],日油株式会社製)
以下の手順に従って、リポソームの平均粒子径を測定した。
0.2μmフィルターで濾過した0.1mg/mLのリポソーム分散液1mLを、エアダスターでほこり等を除去したディスポセルに入れ、Zetasizer nano(Malvern Panalytical Ltd.製)を使用して、平均粒子径の測定を行った(25℃,n=3)。リポソームの平均粒子径を表2に示す。
以下の手順に従って、リポソームのゼータ電位を測定した。
ゼータ電位測定用セル(Folded capillary cells)(DTS1061、Malvern Panalytical Ltd.製)に、2.5mLシリンジを使用して0.1mg/mLのリポソーム分散液を1mL入れ、セル内の気泡を除去した後、Zetasizer nano(Malvern Panalytical Ltd.製)を使用して、pH7.4、25℃でゼータ電位の測定を行った(n=3)。リポソームのゼータ電位の平均値を表2に示す。
以下の手順に従って、活性化血小板凝集能の評価に使用する血小板サンプルを調製した。
18Gの翼状針と20mLシリンジとを使用して、心臓穿刺法によりモルモット(Hartley、オス、8週齢、体重450g、日本SLC株式会社製)から約15mLの血液を採取し、14mLチューブ2本に同量ずつ移した。次いで、全血の体積に対して1/10となるように3.8%クエン酸ナトリウムを添加、混合し、ポリスポイトを使用して2回ゆっくりと撹拌して混合物を得た。次いで、得られた混合物を遠心分離(600rpm、室温、15分)し、上清の多血小板血漿(PRP)を回収した。次に、PRP回収後の血液を再度遠心分離(2000rpm、室温、10分)し、上清の乏血小板血漿(PPP)を回収した。多項目自動血球計測装置を使用して、回収したPRP及びPPPの血小板数を測定し、PRP、PPP及びHEPES-Tyrodeバッファーを、血小板濃度が2.0×105/μLとなるように混合して、血小板サンプル得た。
96ウェルガラスボトムプレートに、上記の方法により調製されたモルモット由来の血小板サンプル(血小板濃度:2.0×105/μL)50μLと、蛍光物質DiO(3,3’-ジオクタデシルオキサカルボシアニンパークロレート)又はDiD(1,1’-ジオクタデシル-3,3,3’,3’-テトラメチルインドジカルボシアニンパークロレート)で標識したリポソームを含有するリポソーム分散液(200μM、5μL)とを混合し、室温で2分間静置した。必要に応じ、血小板を活性化するADP(1μM、5μL)を添加し、室温で4分間静置した後、8%ホルマリン(60μL、最終濃度4%)を使用して室温で30分間固定し、固定完了後、HEPES-Tyrodeバッファー(100μL)で3回洗浄して、血小板凝集塊を得た。蛍光顕微鏡(20倍又は60倍)を使用して、得られた血小板凝集塊中の蛍光標識リポソームの観察を行った。リポソーム分散液を使用して得られた血小板凝集塊の観察結果(蛍光顕微鏡写真)を図3A、3B及び3Cに示す。実施例1(L551DHSG)、実施例3(LDHSG)、実施例5(L555Glu-DHSG)、実施例6(L555AG-DHSG)、実施例7(L555DPPG)、実施例8(L555DPPS)、実施例9(L055(Asp))及び実施例10(L05[10](AG))では、標識としてDiDを使用した(図3A,図3C)。実施例2(L555DHSG)では、標識としてDiO及びDiDを使用した(図3A,図3B)。実施例4(L555Asp-DHSG)では、標識としてDiOを使用した(図3B)。また、ImageJを使用して、図3A、3B及び3Cに示された各血小板凝集塊中の蛍光標識リポソームの蛍光強度の測定を行った。蛍光強度の測定結果を表3に示す。なお、表3における蛍光強度の値は、実施例2(L555DHSG)を使用した場合の蛍光強度を1としたときの相対値である。
以下の手順に従って、ポリ-L-乳酸樹脂止血材の止血能を評価した。
以下の手順に従って、セルローススポンジ(支持部材の一例)と、セルローススポンジ上に形成されたポリ-L-乳酸樹脂製繊維シート(基材の一例)とを有する基材複合体を作製した。
繊維シートを構成する繊維の平均径を、以下の手順により測定した。
繊維シートから採取した5mm角のサンプルを、走査型電子顕微鏡(株式会社日立製作所社製S-3500N型)にて倍率3,000倍で撮影した。画像処理ソフト(WINROOF(登録商標))を使用して、得られたサンプルの写真中から無作為抽出した50本の単繊維直径をμm単位で小数の1桁目まで測定し、小数第一位を四捨五入して繊維径を算出した。サンプリングを5回行い、それぞれ50本の単繊維直径を算出し、合計250本の単繊維直径の和を全数(250)で除して、平均繊維径(μm)を単純平均値として算出した。作製された上記繊維シートの平均繊維径は1.4μmであった。
繊維シートの坪量を、JIS L 1913:1998 6.2に準拠した手順により測定した。
基材複合体を、20℃、相対湿度65%の条件下で24時間静置し、調湿した。次いで、基材複合体の複数の箇所から2cm角のサンプルを採取し、サンプルから繊維シート片を剥離し、各繊維シート片の重量(g)を測定し、各繊維シート片の坪量(1m2当たりの重量(g/m2))を算出した。サンプリングを10回行い、10個の繊維シート片の坪量の平均値を算出し、この平均値を繊維シートの坪量(g/m2)とした。繊維シートの坪量は20g/m2であった。
上述した手順に従って作製した基材複合体を金属製ポンチで型抜きし、13mm径の円柱状の基材複合体を得た。得られた円柱状の基材複合体の基材部分(繊維シート部分)に、濃度30mg/mLの実施例1~4及び7~8のtert-ブチルアルコール溶液をそれぞれ66.7μL噴霧し、-40℃で12時間凍結乾燥させることにより止血材を作製した。以下、実施例1~4及び7~8のtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材をそれぞれ本発明例の止血材A1~A4、A7及びA8という。また、tert-ブチルアルコール溶液に代えてtert-ブチルアルコールを66.7μL噴霧する点を除き、上記と同様にして作製した止血材を対照の止血材という。
3%イソフルラン麻酔下のモルモット(Slc:Hartley、8週齢、雄、日本SLC株式会社製)を背位に固定し、腹壁を正中切開し、肝臓左葉を露出させた。切断面の幅が10mmになるように切開辺縁部をハサミで一部切除し、創面全体から出血させた。創面を被覆するように止血材を貼付し、指で圧迫止血した。2分毎に止血材を剥離し、創面からの湧血状況を確認した。剥離後5秒以内に湧血が見られた場合には、剥離した止血材を再度創面に貼付した。剥離後5秒間湧血が見られなかった時点で止血とし、止血材貼付から止血までの時間(止血時間)を計測した。また、肝臓切除前に肝臓周辺に不織布を敷き、止血中に湧出した血液を吸収させ、血液を吸収した止血材及び不織布の術前後の重量差から出血量を算出した。止血時間(分)を表4に、出血量(mg)を表5に示す。なお、止血材ごとに止血を3回ずつ行い、3回の止血時間及び出血量の平均値を、各止血材の止血時間及び出血量とした。
以下の手順に従って、コラーゲン止血材の止血能を評価した。
以下の手順に従って、止血材を作製した。
市販のコラーゲン使用吸収性局所止血材インテグラン(登録商標)(株式会社高研)を金属製ポンチで型抜きし、13mm径の円形状のコラーゲン製繊維シートを得た。得られた繊維シートに、濃度20mg/mLの実施例1及び2のリポソーム分散液、並びに比較例1のリポソーム分散液をそれぞれ100μL噴霧し、-40℃で12時間凍結乾燥させ、コラーゲン製繊維シート(基材の一例)と、コラーゲン製繊維シートに担持されたリポソームとを有する止血材を作製した。以下、実施例1のリポソーム分散液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材B1」、実施例2のリポソーム分散液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材B2」、比較例1のリポソーム分散液を使用して作製した止血材を「比較例の止血材」という。対照として、リポソーム分散液に代えてダルベッコPBSを100μL噴霧する点を除き、上記と同様にして作製した止血材(以下「対照の止血材」という)を使用した。また、対照として、未処理ガーゼ及び未処理コラーゲン製繊維シートを使用した。
各止血材の止血時間及び出血量の評価は、上記と同様の手順に従って行った。各止血材の出血量及び止血時間を図4及び図5にそれぞれ示す。なお、出血量及び止血時間は、各止血材について8匹のモルモットで止血を行い、8匹のモルモットにおける止血時間及び出血量の平均値として算出した。
血小板付着率の評価は、次のようにして行った。止血材をシートホルダーに入れ,シリンジ上部から血液1.5mLを添加した。血液が自然落下で止血材を通過した後、通過した血液を回収した。添加した血液及び回収した血液中の血小板数を多項目自動血球計数装置にて測定し、通過前後の血小板数を比較することで止血材の血小板付着率(%)を算出した(血小板付着率(%)=(通過前の血小板数-通過後の血小板数/通過前の血小板数)×100)。
(1)リン脂質の入手
DPPAナトリウム塩(1,2-Dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphatidic acid, sodium salt)を、日油産業株式会社より購入した(COATSOME MA-6060LS)。次の方法に従って、DPPAナトリウム塩における-O-P(=O)(-OH)(-O-Na+)を、-P(=O)(-OH)(-OH)に変換し、酸型DPPAを作製した。なお、アニオン型DPPAは、DPPAナトリウム塩よりも、t-ブチルアルコールに対する溶解度が高い。
上記と同様にして、セルローススポンジと、セルローススポンジ上に形成されたポリ-L-乳酸樹脂製繊維シートとを有する基材複合体を作製し、作製された基材複合体を金属製ポンチで型抜きし、13mm径の円柱状の基材複合体を得た。得られた円柱状の基材複合体の基材部分(繊維シート部分)に、30mg/mLのDPPAナトリウム塩のtert-ブチルアルコール分散液及び30mg/mLのDPPAナトリウム塩の酸型DPPAのtert-ブチルアルコール溶液を、それぞれ66.7μL噴霧し、乾燥させることにより、止血材を作製した。実施例11では、DPPAナトリウム塩のtert-ブチルアルコール分散液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材C1」という)、実施例12では、酸型DPPAのtert-ブチルアルコール溶液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材C2」という)を作製した。
上記と同様にして、モルモットを用いたin vivo止血試験を行い、止血時間及び出血量を定量することにより、止血材C1及びC2の止血能を評価した。なお、対照として、脂質を担持させる前の基材複合体の止血時間及び出血量も定量した。結果を表6及び表7に示す。表6及び表7に示すように、止血材C1及びC2の止血時間は、脂質を担持させる前の基材複合体の止血時間よりも短く、止血材C1及びC2の出血量は脂質を担持させる前の基材複合体の出血量よりも少なかった。
(1)脂質の合成
上記と同様にしてDHSGを合成し、合成されたDHSGを使用して上記と同様にしてAsp-DHSG、Glu-DHSG及びAG-DHSGを合成した。
DHSG、Asp-DHSG、Glu-DHSG及びAG-DHSGを、上記と同様にして作製した。上記と同様にして、セルローススポンジと、セルローススポンジ上に形成されたポリ-L-乳酸樹脂製繊維シートとを有する基材複合体を作製し、作製された基材複合体を金属製ポンチで型抜きし、13mm径の円柱状の基材複合体を得た。得られた円柱状の基材複合体の基材部分(繊維シート部分)に、30mg/mLのDHSG、Asp-DHSG、Glu-DHSG及びAG-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を、それぞれ66.7μL噴霧し、乾燥させることにより、止血材を作製した。実施例13では、DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材D1」という)を作製し、実施例14では、Asp-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材D2」という)を作製し、実施例15では、Glu-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材D3」という)を作製し、実施例16では、AG-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して止血材(以下「本発明例の止血材D4」という)を作製した。
止血材D1、D2、D3及びD4から、それぞれ、DHSG、Asp-DHSG、Glu-DHSG及びAG-DHSGを担持させた基材部分(繊維シート部分)を取り出した。12ウェルプレートに、取り出した基材部分(繊維シート部分)と、上記の方法により調製されたモルモット由来PRP(2.0×105/μL) 1mLを添加した。その後、血小板を活性するADP(1μM、100μL)を添加し、室温で5分間静置した後、DPBS 1mLで2回洗浄した。その後、基材部分(繊維シート部分)に付着した血小板を溶解するために、0.5%Triton X 500μLを添加し、室温で1時間静置することにより、血小板溶解溶液を得た。96ウェルプレートに上記の方法により調製された血小板溶解溶液 10μLと、Pierce(商標) 660nm Protein Assay Kit 150μLを添加し、5分間静置した。マイクロプレートリーダーを用いて660nmの吸光度を測定することにより、タンパク質を定量し、洗浄されずに繊維シートに付着した血小板数の指標とした。結果を図7及び図8に示す。なお、図8における結果は、止血材D1を使用した場合の血小板数を1としたときの相対値である。図7及び図8中、「DHSG」は止血材D1に関する結果を、「Asp-DHSG」は止血材D2に関する結果を、「Glu-DHSG」は止血材D3に関する結果を、「AG-DHSG」は止血材D4に関する結果を示す。
上記と同様にして、モルモットを用いたin vivo止血試験を行い、止血時間及び出血量を定量することにより、止血材D2、D3及びD4の止血能を評価した。なお、対照として、脂質を担持させる前の基材複合体の止血時間及び出血量も定量した。結果を表8及び表9に示す。表8及び表9に示すように、止血材D2、D3及びD4の止血時間は脂質を担持させる前の基材複合体の止血時間よりも有意に短く、止血材D2、D3及びD4の出血量は、脂質を担持させる前の基材複合体の出血量よりも少なかった。
上記と同様にして、セルローススポンジと、セルローススポンジ上に形成されたポリ-L-乳酸樹脂製繊維シートとを有する基材複合体を作製し、作製された基材複合体を金属製ポンチで型抜きし、13mm径の円柱状の基材複合体を得た。得られ円柱状の基材複合体の基材部分(繊維シート部分)に、30mg/mLの脂質溶液を66.7μL噴霧し、乾燥させることにより、止血材を作製した。脂質溶液としては、DPPAナトリウム塩のtert-ブチルアルコール分散液(実施例17)、酸型DPPAのtert-ブチルアルコール溶液(実施例18)、DHSGのtert-ブチルアルコール溶液(実施例19)、Asp-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液(実施例20)、Glu-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液(実施例21)、AG-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液(実施例22)、DMPSナトリウム塩のtert-ブチルアルコール分散液(実施例23)及びDSPGナトリウム塩のtert-ブチルアルコール分散液(実施例24)を使用した。DPPAナトリウム塩、酸型DPPA、DHSG、Asp-DHSG、Glu-DHSG及びAG-DHSGは、上記と同様にして調製した。DMPS(1,2-Dimyristoyl-sn-glycero-3-phospho-L-serine, sodium salt)は、日油産業株式会社製のものを使用し、DSPG(1,2-Disteanoyl-snーGlycero-3-[Phoapho-rac-(1-glycerol)](Sodium Salt))は、日本精化株式会社製のものを使用した。以下、DPPAナトリウム塩のtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E1」、酸型DPPAのtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E2」、DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E3」、Asp-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E4」、Glu-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E5」、AG-DHSGのtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E6」、DMPSナトリウム塩のtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E7」、DSPGナトリウム塩のtert-ブチルアルコール溶液を使用して作製した止血材を「本発明例の止血材E8」という。
2・・・脂質粒子
3・・・支持部材
10・・・止血材
Claims (9)
- 水不溶性の基材と、前記基材の表面に担持された脂質とを備える止血材であって、
前記脂質が、1種又は2種以上のアニオン性脂質を含んでなり、
前記1種又は2種以上のアニオン性脂質が、以下の式(III)~(VI):
Mは、同一又は異なって、HO-又はM 0 -NH-を表し、
M 0 は、同一又は異なって、アスパラギン酸残基及びグルタミン酸残基から選択される酸性アミノ酸残基、又は、アスパラギン酸残基及びグルタミン酸残基から選択される2~5個の酸性アミノ酸残基で構成されるペプチド残基を表し、
Rは、同一又は異なって、炭素数12~22の炭化水素基を表し、
Lは、同一又は異なって、-CO-O-、-O-CO-、-CO-NH-、-NH-CO-又は-S-S-を表し、
Xは、同一又は異なって、炭素数1~6の炭化水素基を表し、
pは、同一又は異なって、0以上4以下の整数を表し、
qは、同一又は異なって、0以上8以下の整数を表し、
Yは、同一又は異なって、以下の式(VII):
式(VII)及び(VIII)中、
R、L、X、p及びqは、前記と同義であり、
(*b1)、(*b2)及び(*b3)は、それぞれの単位Y1の結合手を表し、
(*b4)は、それぞれの基Y2の結合手を表し、
それぞれの単位Y1の結合手(*b1)は、式(III)、(IV)又は(VI)における(CH 2 ) q と結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成する別の単位Y1の結合手(*b2)又は(*b3)と結合しており、
それぞれの基Y2の結合手(*b4)は、式(III)、(IV)又は(VI)における(CH 2 ) q と結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成するいずれかの単位Y1の結合手(*b2)又は(*b3)と結合しており、
Zは、同一又は異なって、以下の式(IX):
式(IX)、(X)及び(XI)中、
M、L、X、p及びqは、前記と同義であり、
(*c1)、(*c2)及び(*c3)は、それぞれの単位Z1の結合手を表し、
(*c4)及び(*c5)は、それぞれの基Z2の結合手を表し、
それぞれの単位Z1の結合手(*c1)は、式(V)又は(VI)における(CH 2 ) q と結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成する別の単位Z1の結合手(*c2)又は(*c3)と結合しており、
それぞれの基Z2の結合手(*c4)又は(*c5)は、式(V)又は(VI)における(CH 2 ) q と結合しているか、又は、前記分岐鎖本体部を構成するいずれかの単位Z1の結合手(*c2)又は(*c3)と結合している。]
で表されるカルボン酸型脂質から選択される1種又は2種以上のカルボン酸型脂質を含む、前記止血材。 - 前記基材が、多孔質基材であり、
前記脂質が、前記多孔質基材の細孔の表面に担持されている、請求項1に記載の止血材。 - 前記脂質が、前記多孔質基材の細孔の少なくとも一部を占める、請求項2に記載の止血材。
- 前記多孔質基材が、繊維基材である、請求項2又は3に記載の止血材。
- 前記1種又は2種以上のアニオン性脂質が、リン脂質及びステロールから選択される1種又は2種以上の脂質を含む、請求項1~7のいずれか一項に記載の止血材。
- 前記脂質が、脂質粒子、脂質粒子の凝集体及び脂質膜から選択される1種又は2種以上の形態で、前記基材の表面に担持されている、請求項1~8のいずれか一項に記載の止血材。
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